Воздушный метод стерилизации: Воздушный метод стерилизации

Содержание

Воздушный метод стерилизации

Процесс Обоснование
I Подготовка к процедуре
Вымыть руки стандартным способом
Осушить руки сухим, чистым, индивидуальным полотенцем
Механическое удаление грязи, продуктов жизнедеятельности кожи, транзитороной и частично резидентной микрофлоры
Надеть перчатки  
Стерилизации подвергают инструменты, прошедшие предстерилизационную обработку и проверенные на качество предстерилизационной очистки, упаковывают для стерилизации в зависимости от выбранного способа. Для обеспечения качества стерилизации и инфекционной безопасности пациента и персонала.
II Выполнение процедуры
Разложить на металлические сетки хирургические инструменты так, чтобы часть отверстий была открыта для циркуляции нагретого воздуха. Разложить термо-временные индикаторы ИС-180оС Нормы загрузки важны для эффективности стерилизации
 
Если емкость камеры воздушного стерилизатора до 80 дм3. Число контрольных точек 5.
Точка № 1 в центре камеры
Точка № 2 в нижней части камеры справа и точки № 3 слева на одинаковом удалении от двери и задней стенки.
Точка № 4 в нижней части камеры справа и точка № 5 у двери слева
Контроль работы нагревательных элементов, которые находятся в стенках воздушного стерилизатора
 
 
Открыть дверцу воздушного стерилизатора, установить сетки с хирургическими инструментами на полки шкафа Нормы загрузки важны для эффективности стерилизации
 
Закрыть дверцу воздушного стерилизатора  
Включить сеть  
Начать отсчет времени при достижении температуры 180°
Экспозиция 60 минут
Соблюдение режима стерилизации необходимо для достижения наибольшего эффекта
В журнале работы воздушного стерилизатора записать:
Число, температуру воздушного стерилизатора, время начала и окончания стерилизации,
Ф. И.О. проводившего стерилизацию.
Контроль и преемственность
По окончанию стерилизации отключить воздушный стерилизатор  
После остывания сразу же проверить термо-временные индикаторы на соответствие эталона и приклеить их в журнал работы воздушного стерилизатора, выложить инструменты на стерильный стол. Стерилизатор – сооружение не герметичное. Из-за не плотности прилегания прокладки возможен подсос воздуха.
III Завершение процедуры
Снять перчатки стандартным способом и подвергнуть их утилизации в соответствии с действующими СанПиНами. Обеспечение инфекционной безопасности.
Вымыть руки стандартным способом. Осушить руки сухим, индивидуальным или одноразовым полотенцем. Мытье рук наиболее важная процедура в профилактике ВБИ.

Гласперленовый метод стерилизации.
 
  Процесс Обоснование
I Подготовка к процедуре
Вымыть руки стандартным способом. Осушить руки сухим, чистым, индивидуальным, разовым полотенцем. Надеть перчатки. Механическое удаление грязи, продуктов жизнедеятельности кожи, транзиторной и частично резидентной микрофлоры. Мытье рук наиболее важная процедура в профилактике ВБИ.
Стерилизации подвергают инструменты, прошедшие предстерилизационную обработку и проверенные на качество предстерилизационной очистки Для обеспечения качества стерилизации и инфекционной безопасности пациента и персонала.
После дезинфекции провести предстерилизационную обработку стеклянных шариков в 0,5% моющем растворе в течении 15 минут. Очищение стеклянных шариков перед циклом стерилизации инструментов.
Просушить стеклянные шарики при комнатной температуре. На сухих, чистых, гладких поверхностях замедляется рост микроорганизмов.
II Выполнение процедуры:
Засыпать в стерилизационную камеру очищенный и высушенный наполнитель (стеклянные шарики), не доходя до верхней кромки на 10 мм. (рис.7), (рис.8) В соответствии с технологией.
 

Рис. 7 Рис. 8
 
Прогреть в течение 25-30 минут. После включения индикатора «Ready» -температура достигла 1900 С. В дальнейшем, температура поддерживается автоматически. В процессе стабилизации температурный индикатор «Ready» должен периодически включаться и выключаться. Соблюдение режима стерилизации необходимы для достижения наибольшего эффекта.
Поместить стерилизуемые инструменты пинцетом (обязательно сухие) в разогретую камеру, чтобы верхняя граница их рабочей части находилась на глубине не менее 10 мм от поверхности среды Во избежание термических ожогов.
Нормы загрузки важны для эффективности стерилизации.
 
Мелкий инструментарий стерилизуется при температуре 190-2500С -20 сек. Продолжительность стерилизации установлена МЗ РФ на основании проведенных сертификационных испытаний.
Стерилизация крупных инструментов и приспособлений (шпатели, пинцеты, скальпели и т.д.) при температуре 2500С — 3 мин. В журнале отметить дату, температуру, начало и конец стерилизации, подпись ответственного за стерилизацию.
 
Контроль, учет и преемственность.
После завершения стерилизации стерильным пинцетом извлечь стерильные инструменты и выложить в стерильный лоток или на стерильный столик. Бесконтактный метод работы предотвращает реконтаминацию инструментария.
III Завершение процедуры
Снять перчатки стандартным способом и подвергнуть их утилизации в соответствии с действующими СанПиНами. .
 
Обработка использованных перчаток уменьшает загрязнение окружающей среды микроорганизмами.
Вымыть руки стандартным способом.
Осушить руки сухим, индивидуальным или одноразовым полотенцем. Начиная с пальцев, затем кисти и запястья.
Удаление талька во избежании сухости кожи и трещин на руках. Мытье рук наиболее важная процедура в профилактике ВБИ.
Химический метод стерилизации
 
Процесс Обоснование
I Подготовка к процедуре
Поместить свободно изделия в емкость с 6% раствором перекиси водорода, при большой длине изделия укладывают по спирали, каналы и полости заполнить раствором. Плотно закрыть крышкой. При Т0 помещения 18-230 экспозиция–6 ч. При нагревании 6% раствора перекиси водорода до 500 – 3 часа.
Используемые современные стерилянты:
Лизоформин 3000 8% при То-50о экспозиция 1 час.
Сайдекс (без разведения) при комнатной То
металлический инструмент-4 часа
резиновые изделия 10 часов
Бианол 20% при комнатной То для любых изделий медицинского назначения 10 час.
Нормы загрузки важны для эффективности стерилизации. Предотвратить действие испарений раствора на организм медперсонала. Соблюдение режима стерилизации необходимо для достижения наибольшего эффекта.
 
В журнал записать:
число, температуру раствора, температуру помещения, время начала и окончания стерилизации, Ф.И.О. проводившего стерилизацию.
 
Контроль, учет и преемственность
II Выполнение процедуры:
Поставить биксы на подставки с педалями  
Вымыть руки стандартным способом под проточной водой с мылом. Проточная вода способствует удалению микроорганизмов с рук
Открыть крышку бикса со стерильным халатом, нажав на педаль подставки.
Сверить термовременной индикатор стерильности с эталоном.
 
 
Контроль режима стерилизации
Осторожно сверху взять стерильную салфетку и вытереть руки. Замедлить размножение микроорганизмов, которое интенсивно ускоряется во влажной среде.
Обработать руки 70% спиртом дважды. Профилактика ВБИ
Из открытого бикса руками достать:
1- маску, завязать с помощью помощника.
2- надеть халат, пояс завязать с помощью помощника.
Защитная одежда уменьшает риск распространения инфекции
Открыть крышку бикса со стерильными перчатками, нажав на педаль подставки с биксом, проверить термовременной индикатор стерильности.
Надеть стерильные перчатки стандартным способом.
Стерильные перчатки и бесконтактный метод работы защищает от инфицирования стерильные предметы.
Стерильным корнцангом вынимаем изделия из емкости с 6% раствором перекиси водорода и погружаем в стерильную емкость со стерильной дистиллированной водой на 5 минут. При этом корнцангом помешивая изделия в растворе.
При стерилизации 6% перекисью водорода меняем стерильную дистиллированную воду дважды.
Удаление токсических веществ с поверхности обрабатываемых изделий
 
 
Затем стерильным корнцангом перенести изделия в стерильный бикс, выстланный стерильной простынею.
Срок сохранения стерильности 3 суток.
Бикс и стерильная простынь защищают изделие от загрязнения и увеличивают срок сохранения стерильности после стерилизации.
В журнале записать: дату, время, Ф.И.О. ответственного за стерилизацию. Учет и преемственность
III Завершение процедуры
Снять перчатки стандартным способом и подвергнуть их утилизации в соответствии с действующими СанПиНами. Обеспечение инфекционной безопасности
Вымыть руки стандартным способом.  
Осушить руки, начиная с пальцев, затем кисти и запястья, чистым, сухим, индивидуальным или разовым полотенцем. На влажном полотенце возрастает риск роста микроорганизмов.
Контроль качества:
— Наблюдение и оценка деятельности медицинской сестры
— Результаты бактериологического исследования смывов с инструментов
       

Типы (виды) и назначение стерилизаторов

Все виды стерилизаторов имеют свои особенности, подходят для стерилизации определенных материалов и используются в самых разных областях от ЛПУ, поликлиник, медицинских центров и хирургических отделений до фармакологии и промышленности. 

В данном материале рассмотрим какие виды и типы стерилизаторов существуют, в каких областях они применяются.

Виды стерилизаторов:

  • Паровые (автоклавы)
  • Воздушные (сухожаровые шкафы, сухожары, в том числе — инфракрасные)
  • Плазменные (низкотемпературные автоклавы)
  • Газовые (этиленовые)
  • Радиационные стерилизаторы
  • Кварцевые стерилизаторы (гласперленовые, шариковые)
  • Ультразвуковые стерилизаторы
  • УФ-стерилизаторы (ультрафиолетовые).

Каждый тип стерилизатора имеет свои преимущества и особенности, используется в конкретных условиях, для определенных типов загрузок и т.д.

Важно: За всеми стерилизаторами необходимо следить, выполнять ТО, контроль технического состояния.

 


Свяжитесь с нами: ответим на любые вопросы по стерилизационному оборудованию. Поможем проверить текущее состояние. Проведем совместную дистанционную диагностику. Или приедем для полноценной проверки на месте.

Вызвать инженераЗаказать консультацию


 

Применение стерилизаторов

Виды (и типы) стерилизаторов можно довольно условно разделить по областям применения, так как у каждого вида стерилизации есть как свои преимущества, так и ограничения. Часто используется комбинированные виды стерилизации, например, когда более простой метод используется как предварительный. 

 








Паровые стерилизаторы (автоклавы)

Повсеместно: Поликлиники, хирургия, стоматология, косметология, салоны красоты, пищевая промышленность, лаборатории, бытовое использование.

Воздушные стерилизаторы (сухожаровые шкафы, сухожары, в т.ч. инфракрасные)

ЛПУ, стоматология, косметология и салоны красоты, промышленность

Плазменные стерилизаторы (низкотемпературные автоклавы)

Медицина, лаборатории

Газовые (этиленовые)

Промышленное использование

Радиационные стерилизаторы

Медицина

Кварцевые терилизакоры (гласперленовые, шариковые)


Ультразвуковые стерилизаторы

Косметологические кабинеты и клиники, стерилизаторы в салонах красоты, стоматологических кабинетах как дополнительное средство обработки

УФ-стерилизаторы (ультрафиолетовые)

Салоны красоты, косметология, ЛПУ как дополнительное средство стерилизации (в т.ч. при хранении инструмента и приборов)


 

При этом, если говорить о применении различных типов стерилизаторов в медицине, то мы можем встретить автоклавы и сухожары в каждом ЛПУ, плазменные стерилизаторы — чуть реже, так как это более дорогой (хоть и универсальный) метод обеззараживания.

В косметологических клиниках и салонах красоты чаще можно встретить комбинацию из кварцевых стерилизаторов и сухожаровых воздушных шкафов, также часто используются автоклавы, так как сегодня паровая стерилизация уже стала практически стандартом во всех областях. 

Паровые и воздушные стерилизаторы по конструкции

Если говорить об автоклавах и сухожарах, то их можно разделить сразу по нескольким признакам.

Автоклавы и сухожары с вертикальной и горизонтальной загрузкой

По типу загрузки можно классифицировать как паровые, так и воздушные стерилизаторы. Для отечественных автоклавов тип загрузки часто отражают в названии:

ВКВертикальные паровые стерилизаторы (например, ВК-30, ВК-75)

ГКгоризонтальные паровые стерилизаторы (например, ГК-10, ГК-100-3)

Вертикальные автоклавы, как правило, имеют более простое исполнение, меньше автоматики, дешевле горизонтальных, имеют цилиндрическую рабочую камеру. . В то же время стерилизаторы с вертикальной загрузкой — не такие удобные при размещении внутри различных типов инструментария, в них важно внимательно следить за размещением лотков / корзин.

Горизонтальные паровые стерилизаторы сейчас более распространены — это 70-90% всех современных моделей. Более удобны при загрузке/выгрузке, могут выпускаться в любых размерах: от ультракомпактных до очень больших моделей на сотни литров. Практически все зарубежныепаровые стерилизаторыгоризонтального типа.

Для воздушных стерилизаторов (сухожаров) также актуально деление по типу загрузки на вертикальную и горизонтальную. 

Здесь важно отметить, что в вертикальном исполнении можно найти в основном компактные воздушные стерилизаторы, а горизонтальные сухожары всегда большего объема. 

Практически все воздушные стерилизаторы имеют камеру в форме параллелепипеда или куба.

Проходные и непроходные стерилизаторы

Данный тип классификации относится в основном к паровым стерилизаторам, но проходными могут быть и крупные воздушные стерилизаторы и сушильные шкафы, централизованные системы, которые устанавливаются в ЦСО и крупных отделах дезинфекции.

Проходной воздушный стерилизатор — это автоклав, который имеет сразу две дверцы, с одной стороны производится загрузка, с другой — выгрузка.

Проходные стерилизаторы также часто называют сквозными, встраиваемыми, можно встретить название — двухдверный.

Все проходные стерилизаторы, как правило, очень крупные, они встраиваются в стены между грязными и чистыми или условно чистыми) зонами ЦСО для более удобной логистики, а также чтобы избежать пересечения потоков зараженных и стерильных инструментов. 

Почти из любого проходного стерилизатора можно сделать непроходной, заблокировав на программном уровне одну из дверей. Разумеется, особого смысла в этом нет, так как вы просто отключаете функционал, из=за которого стерилизатор при покупке был намного дороже своих аналогов. Это необходимо, например, при неисправностях или в диагностических целях, то есть в очень редких случаях.

Непроходные стерилизаторы — большинство моделей автоклавов и сухожаров. Загрузка и выгрузка инструмента производится через одну единственную дверь.

Настольные, напольные, встраиваемые стерилизаторы

По виду установки стерилизатора можно разделить на 

  • Настольные
  • Напольные
  • Встраиваемые

Настольные стерилизаторы — большинство небольших и средних автоклавов и сухожаров для ЛПУ, лабораторий, косметологических центров, стоматологий и тд. Благодаря небольшим габаритам их можно легко разместить на столе, перемещать и использовать при необходимости.

Напольные стерилизаторы — более крупные, объемные автоклавы и сухожары, как правило, такие версии устанавливаются в ЦСО или поликлиниках с большим потоком пациентов.

Встраиваемые — самые крупные медицинские, фармакологические и промышленные стерилизаторы на сотни (и даже тысячи) литров. Как правило, это автоклавы, газовые, плазменные стерилизаторы, крупные сушильные шкафы.

Малые и большие стерилизаторы

Конечно, само по себе понятие малого или большого можно считать условным, но в контексте малых и больших стерилизаторов обычно имеют ввиду определения из соответствующих ГОСТов и международных стандартов для автоклавов. Здесь речь идет о размерах рабочей камеры автоклава относительно размеров самого стерилизатора.

Полуавтоматические и автоматические стерилизаторы

Данная классификация справедлива в большей степени для автоклавов и сухожаровых шкафов, так как именно они встречаются как в бюджетном, так и в премиум исполнении.

Полуавтоматические стерилизаторы — сухожаровые шкафы и паровые стерилизаторы (S, N-класс), в которых необходимо самостоятельно задавать режимы температуры / давления / времени экспозиции. При этом в системе могут присутствовать таймер, и даже некоторые датчики безопасности.

Автоматические стерилизаторы — снабженные полным комплексом автоматики автоклавы и воздушные стерилизаторы из премиум сегмента.

Стерилизатор — автомат требуем от оператора минимум действий (правильная загрузка, выбор программы, разгрузка).

  • Все параметры автоматически контролируются встроенными микроконтроллерами
  • Оператор выбирает из встроенного меню заранее заданную программу
  • Присутствует возможность программирования пользовательских режимов
  • Существует множество систем защиты (контроль давления, температуры, качества воды, концентрации агента (для плазменных и газовых стерилизаторов).
  • Существует программа самодиагностики, индикация ошибок и тд.

Газовые и плазменные стерилизаторы всегда автоматические, так как это более сложное и дорогое оборудование, где необходимо контролировать множество параметров, и с этим намного лучше справляется автоматика.

Важно: Все стерилизаторы необходимо своевременно обслуживать. Ремонт стерилизаторов выполняется специализированными сервисными организациями с соответствующими лицензиями, сертификатами и разрешениями у сотрудников.

При первом же проявлении проблемы, отклонении от нормы необходимо сразу же обратиться к инженеру для диагностики и устранения неисправности. Работать с неисправным стерилизатором опасно.

Выполняем обслуживание и ремонт стерилизаторов всех видов.


Звоните — ответим на все вопросы, будем рады вам помочь!

Прочие виды стерилизаторов

Ультрафиолетовые стерилизаторы часто применяются как дополнительные, предварительные или промежуточные (как в косметологии, так и в большинстве ЛПУ).

Популярное применение УФ-аппаратов — как стерилизатор для хранения инструментов (или как промежуточный этап между предварительной обработкой и непосредственно стерилизацией в Автоклаве / сухожаре.

Радиационные стерилизаторы применяются как в медицине, так и в фармацевтической промышленности (для стерилизации препаратов), имеют ряд ограничений, то есть используются только с материалами, на которые не оказывают вредного или разрушающего воздействия. Сейчас радиационная стерилизация гамма и бета-излучением — одно из перспективных направлений низкотемпературной стерилизации.

Газовые стерилизаторы (оксид этилена, озон) применяются для низкотемпературной стерилизации наряду с плазменными в ЛПУ и фармакологии. Используются с материалами, чувствительными к температуре и влаге.

 

Вызвать инженераЗаказать консультацию

2. Воздушный метод (сухожаровой шкаф)

Стерилизация осуществляется воздухом
высокой температуры.

Наименование
изделий

Режим
стерилизации

Условия
стерилизации

1. Изделия из металла и стекла (химконтроль
– тиомочевина или ИС – 1800С)

2. Изделия
из силиконовой резины (химконтроль –
винно-каменная кислота или ИС – 1600С)

1800С

60
мин

1600С

150
мин

(2,5 часа)

Изделия в
бязь не упаковываются. Можно изделия
упаковать в крафт бумагу, если они
стерилизуются накануне (крафт бумага
при воздушной стерилизации используется
однократно). Срок стерильности одни
сутки. Чаще изделия стерилизуются
открытым методом в лотках или на
решетках перед началом смены и срок
стерильности изделий 6 часов с учетом
времени остывания инструментов. Шкаф,
после окончания стерилизации,
открывается только при температуре
40-450С. Время остывания шкафа до
температуры 40-450С отнимается от
шести часов, т.е. если шкаф остывает
30 мин., то инструмент используется 5,5
часов.

Шкаф перед закладкой в них изделий
протирается двукратно с интервалом 15
мин. Рабочим дезинфицирующим раствором.
Инструменты в лотках и на решетках
располагаются в один ряд. Лотки в шкаф
устанавливаются в шахматном порядке.
Изделия после стерилизации, оставленные
в закрытом шкафу, стерильно только 3
часа. Индикаторы закладываются в каждый
лоток, на каждую решетку не менее 5 штук
(по середине и по бокам решетки шкафа).

  1. Радиационный метод.

Стерилизация осуществляется гамма-лучами.
Метод этот используется в промышленности.

  1. Гласперленовый метод.

Стерилизация осуществляется при
температуре 2200С – 20 секунд.

Химические методы стерилизации

  1. Газовый метод

Стерилизация осуществляется газами
растворов химических препаратов. Данный
метод имеет недостаток – химические
препараты (формальдегид, окись этилена),
используемые для стерилизации, токсичны,
поэтому изделия после стерилизации
могут быть использованы только после
испарения формальдегида с инструмента,
а на это уходит от 8 до 20 суток.

Данным методом можно стерилизовать
оптику.

  1. Стерилизация растворами химических
    препаратов

Средства, разрешенные для стерилизации
изделий медицинского назначения*

Группа

Название
средства

Режим
применения

Концентрация
(по препарату), %

Время
выдержки

Температура,
0С

Альдегидсодержащие

А-1

10

10
час

21±1

Бианол

20

10
час

21±1

Гигасепт
ФФ

10

10
час

21±1

Глутарал-Н

Активированный
раствор

4
час

10
час

21±1

Деконекс
50 плюс

8

60
мин

50
(начальная)

Деконекс
55 ЭНДО

10

10
час

21±1

Дюльбак
растворимый

Готовый
к применению

10
час

21±1

КолдСпор

20

9
час

21±1

Лизоформин
3000

8

60
мин

50
(начальная)

40
(постоянная)

Новодез
Форте

6

60
мин

50
(начальная)

Сайдекс

Активированный
раствор

10
час

21±1

Септодор-Форте

6

60
мин

50
(начальная)

Стераниос
20% концентрированный

2
(по ДВ)

5
час

6
час

21±1

Эригид
Форте

Готовый
к применению

6
час

7
час

21±1

Кислородсодержащие

Аниоксид
1000

Активированный
раствор

30
мин

45
мин

20±2

Водорода
перекись

6

6
час

3
час

20±2

50
(начальная)

НУ-Суйдекс

Активированный
раствор

10
мин

15
мин

20±1

Секусепт
Пульвер +Активатор

5

10

2
час

1
час

20±2

20±2

Стеррад

В
аппарате «Стеррад 100С»

54
мин

72
мин

46±4

Галагенсодержащие
(хлорсодержащие)

Анолиты:

0,03
(по активному хлору)

15
мин

30
мин

20±2

0,02
(по активному хлору)

60
мин

180
мин

20±2

*химическая стерилизация проводится в
асептических условиях.

  1. Комбинированный (плазменный) метод

Стерилизуются изделия в плазменном
стерилизаторе (типа «Стеррад»).
Стерилизуются изделия из металла,
пластмассы, стекла, кремня, оптики,
волокнистые световодные кабели, зонды
и датчики, электропроводные шнуры и
кабели.

Методы очистки и стерилизации воздуха. — КиберПедия

Введение.

Важным технологическим процессом в биологических производ­ствах является очистка от механических включений и стерилизация воздуха, используемого для вентиляции цехов и боксов, передачи под давлением стерильных культуральных жидкостей и растворов, поддержания избыточного давления в стерильных емкостях. В значи­тельных количествах стерильный воздух используют для аэрации про­цесса культивирования. Отводимый из лабораторных и производ­ственных помещений отработанный воздух также подвергается очистке от присутствующих в нем микроорганизмов и контролируется на чистоту.

 

Фильтры грубой очистки.

 

Предназначены для улавливания основной массы загрязнений, попавших в систему после прохождения фильтров предварительной очистки и компрессора, а также для удлинения срока службы фильтров тонкой очистки, выполняющих основной процесс стерилизации на стадии фильтрации. Как правило, это фильтры большой емкости. Они обслуживают несколько ферментаторов и называются головными. Головной фильтр дублирует работу индивидуальных фильтров и повышает степень очистки и стерилизации воздуха.

 

Головной аэрозольный фильтр. Схема аэрозольных фильтров, изготовленных из волокнистых материалов

 

Головной фильтр (рис. 2.11) обычно представляет собой вертикальный сосуд с решеткой у днища. На решетку укладывают слой стекловаты, а затем слой гранулированного активного угля высотой 0,8-1,0 см и еще слой ваты. На микробиологических предприятиях применяют головные фильтры кассетного типа производительностью 110, 380 и 550 м3/мин. В качестве фильтрующего материала используют стекловолокно с волокнами диаметром 6, 12 и 21 мкм. Головные фильтры стерилизуют острым паром в течение 4 ч при давлении 0,12-0,15 кПа, а затем просушивают сухим воздухом. Головные фильтры обычно имеют низкое сопротивление (100-200 Па) и высокую пылеемкость.

 

Фильтры тонкой очистки.

Фильтры тонкой очистки и стерилизации необходимы для улавливания загрязнений, пропущенных другими фильтрами, а также всех возможных загрязнений, попавших в систему по случайным причинам. Работа этих фильтров должна быть особенно надежной, так как это последняя ступень очистки и стерилизации воздуха на пути к ферментатору. Конструктивно фильтры тонкой очистки во многом похожи на фильтры грубой очистки, только они значительно меньше размерами и в них используются более эффективные фильтрующие материалы (табл. 2.2). В настоящее время разработано несколько конструкций фильтров тонкой очистки различной производительности.


 

Характеристика фильтров тонкой очистки с фильтрующими материалами ФП.

 

На рис. 2.12 представлены схемы фильтров со сменными фильтрующими элементами из нетканых материалов. В конструкции фильтра тонкой очистки Ф1 и Ф2 используется готовый сменный фильтрующий элемент из базальтового супертонкого волокна. Наибольшее распространение для очистки и стерилизации воздуха находят конструкции, в которых используются быстро заменяемые готовые стандартные фильтрующие патроны (рис. 2.12, б).

 

Фильтр тонкой очистки ФТО-60.

 

В микробиологической промышленности для очистки и стерилизации воздуха применяют также фильтры марки ФТО. Эти фильтры набиваются особой устойчивой гидрофобной тканью, которая полностью очищает воздух от микроорганизмов. Фильтры выпускаются различных типов — от ФТО-60 до ФТО-1000. Цифры означают производительность по воздуху в м3/ч. Марку фильтра выбирают в зависимости от производительности ферментатора. Фильтрующий элемент фильтра ФТО-750 имеет диаметр 360 мм и высоту 600 мм. При нагрузке 750 м3/ч сопротивление фильтра составляет 274-294 Па. На рис. 2.13 представлена схема фильтра тонкой очистки ФТО-60. В патронных фильтрах могут быть использованы бумага из базальтовых супертонких волокон, гофрированный базальтовый картон и различные фторопластовые элементы. Фильтры тонкой очистки воздуха практически обеспечивают 100%-ную очистку и стерилизацию воздуха.

 

Они стерилизуются острым паром в технологической обвязке с ферментатором без извлечения фильтрующих элементов из корпуса фильтра. Фильтрующие элементы — пластины и цилиндрические патроны — служат 1,5-2 года.

 

 

Введение.

Важным технологическим процессом в биологических производ­ствах является очистка от механических включений и стерилизация воздуха, используемого для вентиляции цехов и боксов, передачи под давлением стерильных культуральных жидкостей и растворов, поддержания избыточного давления в стерильных емкостях. В значи­тельных количествах стерильный воздух используют для аэрации про­цесса культивирования. Отводимый из лабораторных и производ­ственных помещений отработанный воздух также подвергается очистке от присутствующих в нем микроорганизмов и контролируется на чистоту.


 

Методы очистки и стерилизации воздуха.

 

Культивирование микроорганизмов — продуцентов биологически активных веществ в глубинных условиях помимо собственно биосинтеза включает ряд вспомогательных технологических операций. Прежде всего это получение сжатого стерильного воздуха, подаваемого на аэрацию, приготовление и стерилизация питательной среды, подготовка оборудования. Эти операции во многом определяют качественные и количественные показатели процесса биосинтеза, поэтому к их аппаратурному оформлению и режиму работы предъявляют повышенные требования.

При выращивании микроорганизмов в глубинных условиях требуется непрерывная подача стерильного воздуха в ферментаторы, на аэрацию культуральной жидкости. Воздух, подаваемый в ферментатор, не только снабжает растущую культуру кислородом, но и отводит газообразные продукты обмена и физиологическое тепло, выделяемое микроорганизмами в процессе развития, позволяет достигать однородности микробной суспензии, увеличивает скорость массопередачи и перемешивания жидкой питательной среды.

Очистка и стерилизация воздуха достигаются различными способами, предусматривающими прежде всего уничтожение микроорганизмов или их отделение. Используются методы газовой очистки или применение антисептиков (фенол- и ртуть-содержащих соединений), повышенные или пониженные температуры, ультрафиолетовые облучения, ионизирующие излучения. Примеры промышленного использования антисептиков, повышенных или пониженных температур и других факторов свидетельствуют о их ненадежности. Более того, эти сложные приемы мало экономичны из-за высокой устойчивости спор и конидий к высоким температурам и ионизирующим излучениям. В процессах микробиологического синтеза воздух, подаваемый на аэрацию, должен быть очищен на 99,9999999 % от примесей и микроорганизмов размером до 1 мкм. Это требование заставляет отказаться от многих методов газовой очистки (седиментация, механическая фильтрация, инерционные и центробежные методы, аппараты мокрой очистки) как неэффективных, обеспечивающих удаление только грубых частиц.

Применение электрофильтров дает возможность очистить воздух только на 85-99%.

Наибольшее распространение получил метод фильтрации воздуха через волокнистые (маты, бумага, картон), пористые (полимеры, металлокерамика) или зернистые материалы. Такие материалы недорогостоящи в изготовлении и обладают высокой эффективностью стерилизации. Несмотря на то что волокнистые фильтры имеют диаметр не менее 5 мкм и слабое уплотнение (промежутки не менее 50 мкм), они легко задерживают большинство микроорганизмов со средним размером около 1 мкм. Обработку технологического и вентиляционного воздуха необходимо рассматривать как элемент технологии, играющий существенную роль в обеспечении выпуска продукции высокого качества.

Стерилизация (от лат. sterilis — бесплодный) — полное освобождение различных веществ, предметов от живых микроорганизмов. Среди физических факторов, влияющих на рост и размножение микроорганизмов, наибольшее значение имеет температура.

Простейшим способом стерилизации является обжигание металлических и стеклянных предметов в пламени горелки. Стерилизация сухим жаром производится в сушильных шкафах при 160-165 °С в течение двух часов. Таким методом стерилизуют лабораторную посуду, металлические предметы, некоторые порошкообразные, не портящиеся при нагревании вещества. Стерилизация водяным паром под давлением производят в автоклавах. Насыщенный пар под давлением убивает микроорганизмы и споры быстрее, чем перегретый пар. Сухой воздух (жар) убивает микроорганизмы при более высокой температуре, чем водяной пар. Гибель клеток бактерий, грибов, дрожжей и вирусных частиц при стерилизации высокой температурой происходит либо в результате сгорания клеток, либо в результате коагуляции белковых структур микроорганизмов. Основным недостатком термической стерилизации, несмотря на ее широкое практическое использование, следует считать неизбежные потери питательных свойств среды, поскольку при температурах, необходимых для стерилизации (120-150 °С), большинство субстратов, особенно углеводы, оказываются термически нестабильными. Осмотическое давление отрицательно влияет на биохимическую активность микроорганизмов. Повышение концентрации солей задерживает развитие многих бактерий, однако есть виды, способные развиваться в присутствии концентрированных растворов солей, такие бактерии называют осмофильными (галофильными). Осмотическое давление в клетке регулирует цитоплазматическая мембрана. При высоком осмотическом давлении окружающей среды происходит плазмолиз. Плазмолиз явление обратимое, и если понизить осмотическое давление окружающего микроорганизмы раствора, вода поступает внутрь клетки и возникает явление, противоположное плазмолизу. Ультрафиолетовая компонента солнечного света является главной причиной гибели микробов в наружном воздухе. Смертность микроорганизмов на открытом воздухе достигает 90-99 %, но зависит от вида микроорганизма и может варьировать от нескольких секунд до пары минут. Споры и некоторые виды бактерий окружающей среды имеют стойкость к воздействию солнечного света и могут переносить длительное облучение светом без особого вреда своему организму. Энергия ультрафиолетовой компоненты солнечного света вызывает повреждения микроорганизмов на клеточном и генетическом уровнях, тот же самый ущерб наносится людям, но он ограничен кожей и глазами. Искусственные источники ультрафиолетового излучения (УФИ) используют гораздо более сконцентрированные уровни излучения, нежели те, что представлены в обычном солнечном свете. Ультрафиолетовые лучи распространяются по прямой и действуют преимущественно на нуклеиновые кислоты, оказывая на микроорганизмы как летальное, так и мутагенное воздействие. Бактерицидными свойствами обладают только те лучи, которые адсорбируются протоплазмой микроклетки. Биофизическое действие УФИ на генетический или функциональный аппарат бактерий выглядит следующим образом: излучение вызывает деструктивно-модифицирующее повреждение ДНК, нарушает клеточное дыхание и синтез ДНК, что приводит к прекращению размножения и лизису микробных клеток. В нарушении синтеза ДНК основным является окисление сульфгидрильных групп, что вызывает инактивацию нуклеотидазы и гибель микробной клетки в первом или последующих поколениях. Сила проникновения ультрафиолетовых лучей невелика. Тонкий слой стекла достаточен для того, чтобы не пропустить их. Действие лучей ограничивается поверхностью облучаемого предмета, его чистота имеет большое значение. УФИ высокоактивно, если микроорганизмы и частицы пыли расположены в один слой, при многослойном расположении верхние защищают нижележащие. Защитная оболочка вокруг бактериальной клетки препятствует достижению антимикробного действия. В любой живой клетке существуют биохимические механизмы, способные полностью или частично восстанавливать исходную структуру поврежденной молекулы ДНК. Благодаря радиационному мутагенезу, уцелевшие микроорганизмы способны образовывать новые колонии с меньшей восприимчивостью к облучению. Вероятностный характер стерилизации УФИ изучен в достаточной степени, существуют различные уравнения, характеризующие процесс отмирания бактерий. Эффективность биоцидного действия УФИ зависит от длины волны, интенсивности облучения, времени воздействия, видовой принадлежности обрабатываемых микроорганизмов, расстояния от источника, а также от состояния воздушной среды помещения: температуры; влажности; уровня запыленности; скорости потоков воздуха. Метод заслуженно считается эффективным для обеззараживания поверхностей, при этом доказаны микробиологическое и экономическое преимущество УФИ или его эквивалентная эффективность химическим методам. При использовании ультрафиолетовых облучателей лимитирующим фактором является предельно допустимая доза облучения людей, а не доза, требуемая для уничтожения микроорганизмов в воздухе помещения. Влияние ультразвуковых волн. Ультразвуком (УЗ) называются механические колебания с частотой, превышающей 18 кГц (18 000 колебаний в секунду). УЗ получают с помощью высокочастотного генератора, который превращает частоту электросети в электрический ток высокой частоты. Колебания электрического тока высокой частоты посредством пьезоэлектрического преобразователя превращаются в механические колебания, которые передаются в резервуар с жидкостью. При частоте колебания 1 ,0-1,3 мГц в течение 10 мин оказывает бактерицидный эффект на клетки микроорганизмов. Ультразвук способствует разрыву клеточных стенок и мембран, повреждению флагеллина у подвижных форм микроорганизмов. Влияние ультразвука основано на механическом разрушении микроорганизмов в результате возникновения высокого давления внутри клетки. Это позволяет использовать его в качестве стерилизующего агента, а также применять для инактивации и дезинтеграции вирусов с целью получения антигенов и вирусных вакцин. Стерилизация инфракрасными лучами. Инфракрасные, или тепловые, лучи составляют часть спектра световой радиации, простирающуюся от красного конца видимого спектра в область длинных волн. Источником инфракрасных лучей являются любые нагретые тела. Практически для этой цели могут быть использованы специальные зеркальные тепловые лампы накаливания, выпускаемые отечественной промышленностью. Особенность передачи лучистой энергии заключается в том, что промежуточный слой воздуха между термоизлучателем и облучаемым материалом не нагревается и потери тепла в окружающую среду невелики. Различные типы бактерий в разной степени стойки к ультрафиолетовым излучениям. Так, особостойкими являются споры, многие из которых не теряют своих вегетативных свойств. Высокая влажность воздуха повышает сопротивляемость бактерий, а в тонком слое воды на стерилизацию требуется примерно в десять раз больше энергии по сравнению с той, которая нужна для гибели тех же микроорганизмов в воздухе. С увеличением толщины слоя воды бактерицидные свойства ультрафиолетовых лучей приближаются к нулю. Стерилизация озоном. Механизм инактивации воздушной микрофлоры озоном очень похож на действие озона в воде. Сначала озон воздействует на оболочку микроорганизмов путем реакции с двойными связями липоидов. Затем, благодаря способности разрушать дегидрогеназы клетки, озон воздействует на ее дыхание. В результате нарушения проницаемости оболочки и изменения растворимости белков клетка лизируется. Обнаружено проникновение озона внутрь микробной клетки, вступление его в реакцию с веществами цитоплазмы и превращение замкнутого плазмида ДНК в открытую ДНК, что снижает пролиферацию бактерий. Противовирусное действие озона связывается с разрушением вирусных частиц, инактивацией обратной транскриптазы и влиянием на способность вируса связываться с клеточными рецепторами. Капсулированные вирусы более чувствительны к действию озона. Это объясняется тем, что капсула содержит много липидов, которые легко взаимодействуют с озоном. Наблюдается известное различие между разными видами микроорганизмов по их сопротивляемости действию озона. Довольно быстро погибают возбудители ангины, дифтерии, различные плесени. Как правило, наиболее устойчивы микробы, покрытые оболочкой, как например туберкулезная палочка и микробные споры. Эффективность стерилизующего действия озона зависит от его концентрации, экспозиции, температуры, влажности, вида микроорганизма, pH и исходной обсемененности обеззараживаемого воздуха. Озон в низких концентрациях (около 0,2 мг/м3) не очень эффективен для уничтожения бактерий, так как они восстанавливаются спустя некоторое время после обработки. В этих случаях озон оказывает лишь поверхностное действие (контактируя с внешней оболочкой клетки) и незначительно проникает вглубь. Для полной инактивации микрофлоры помещения необходима высокая концентрация озона и длительное время для контакта с микроорганизмами. Оксиды азота усиливают бактерицидные свойства озона, которые в значительной степени зависят от влажности воздуха. При относительной влажности воздуха ниже 45 % озон почти не оказывает бактерицидного действия, а оптимум его активности лежит между 60-80 % влажности. В профессиональных целях для стерилизации воздуха помещения в присутствии людей генератор озона служить не может, поскольку концентрация озона в несколько раз превышает ПДК для человека. Высокая концентрация выделяющегося озона приводит к деструкции. Таким образом, озонирование высокоэффективно для стерилизации поверхностей и воздушной среды помещения. Невозможность использования метода в присутствии людей и необходимость проводить обеззараживание в герметичном помещении серьезно ограничивает сферу его профессионального применения. Воздействие химического агента. По химическому составу противомикробные антисептические вещества можно разделить на несколько групп. Например, галогены — препараты йода и хлора, они нарушают ферментативные структуры бактериальной клетки, угнетают гидролитическую и дегидрогеназную активность бактерий, инактивируют такие ферменты, как амилазы и протеазы. Перекись водорода, перманганат калия, как и галогены, обладают окислительным действием. Кислоты и их соли, щелочи, спирты и альдегиды повреждают поверхностные структуры бактериальной клетки, клеточную стенку и мембраны, нарушая их избирательную проницаемость и другие функции. Соединения тяжелых металлов обладают антиферментным механизмом действия на бактериальную клетку, при этом изменяется структура дыхательных ферментов, и разобщаются процессы окисления и фосфорилирования в митохондриях. Красители обладают денатурирующим эффектом. К антисептическим химическим веществам относятся группы производных 8-оксихинолина и нитрофурана, которые также нарушают биосинтетические и ферментативные процессы в бактериальной клетке. К наиболее распространенным дезинфицирующим средствам относятся хлорсодержащие, фенольные, перекисные и аммониевые соединения. Стерилизация твёрдых предметов, портящихся при нагревании (некоторые пластмассы, электронная аппаратура и др.), может быть осуществлена обработкой газами (например, окисью этилена в смеси с СО2 или бромистым метилом), спиртом, растворами сулемы. Стерилизация растворов проводится также путем их пропускания через мелкопористые материалы, которые адсорбируют клетки микроорганизмов: каолин, асбест, фарфор и др. Широкое применение нашли мембранные фильтры их изготавливают из специально обработанной нитроцеллюлозы. Бактерии задерживаются пористыми перегородками не потому, что диаметр капиллярных ходов фильтра меньше, чем поперечник бактерий, а вследствие молекулярного притяжения и прилипания взвешенных тел к внутренним стенкам пор. В принципе метод стерилизующей фильтрации является идеальным средством стерилизации лабильных, в том числе термически неустойчивых жидких и газовых сред, поскольку он может быть проведен при низкой температуре и требует лишь градиента давления по разные стороны мембраны. Промышленная очистка и стерилизация воздуха. Как известно, в воздухе содержится взвешенных частиц до 109, в том числе микроорганизмов 0,8-10000 — 100000 на 1 м3. Среди микроорганизмов обнаружены бактерии и их споры, актиномицеты и аспоргенные дрожжи, вирусы и др. Наименьшие размеры, за исключением вирусов, имеют бактерии, диаметр которых 0,5-2,1 мкм и длина до 26 мкм. Это требует при подготовке воздуха его стерилизации. Отечественный и зарубежный опыт показывает, что технологически и экономически оправданным является многоступенчатый способ продувания воздуха через волокнистые, зернистые или пористые материалы. Для больших расходов воздуха широко распространена технологическая схема, представленная на рис. 7.15. Воздух на аэрацию в посевные и производственные ферментеры подается с помощью комрессора. Перед сжатием воздух проходит через масляный или сухой фильтры, где осуществляется его очистка от механических примесей. Нагретый в процессе компреммирования сжатый давлением 0,3 МПа воздух охлаждается в теплообменнике. После ресивера воздух охлаждается в теплообменнике для конденсации влаги. Выходящий из ресивера воздух нагревается в кожухотрубном аппарате. Далее воздух проходит частичную очистку от микроорганизмов в фильтре грубой бактериальной очистки и полностью очищается от микроорганизмов в фильтре тонкой бактериальной очистки. Воздух, выходящий из ферментатора и инокулятора высушивается от влаги на фильтре, достигая расчетной допустимой концентрации микроорганизмов.

 

 

 

Рис. 7.15. Промышленная схема очистки воздуха: 1 — фильтр; 2 — компрессор; 3 — теплообменник; 4 — влагоотделитель; 5 — ресивер; 6 — теплообменник; 7 — головной фильтр (схема Н.А. Войнова)

Некоторые конструкции фильтров для биологической очистки воздуха представлены на рис. 7.16. Глубинный фильтр (рис. 7.16, а) представляет собой емкость, снабженную рубашкой с перфорированными решетками внутри. Между решетками укладывается волокнистый фильтрующий материал. В зависимости от напора сжатого воздуха плотность укладки стекловолокнистого фильтрующего материала составляет 100-500 кг/м. Фильтр с тканью Петрянова (рис. 7.16, б) представляет собой стальной цилиндр с разъемной крышкой и коническим днищем. Внутри фильтра в трубной решетке на резьбе закреплены перфорированные цилиндры, обтянутые слоями ткани через которые проходит воздух и очищается. Фильтр стерилизуется паром с примесью формалина. Необходимая степень биологической очистки воздуха достигается при использовании в качестве фильтрующего материала пористых фильтрующих материалов. Фильтр такой конструкции представлен на рис. 7.16, в. Известны эффективные металлокерамические фильтрующие элементы для очистки микробных частиц диаметром 0,3 мкм. Особенностью фильтрования с помощью этих элементов является тесная взаимосвязь между формой каналов фильтра с периодически изменяющимся диаметром сечения и скоростью движения воздушного потока в этих каналах. При движении воздуха через материал фильтра в нем возникают ультразвуковые колебания, приводящие к осаждению микроорганизмов на стенки фильтра. На основе фильтрующих металлокерамических элементов разработаны парные автоматические фильтрующие комплексы для грубой и тонкой биологической очистки воздуха.

 

Рис. 7.16. Схемы фильтров — а: 1 — корпус; 2 — крышка; 3 — решетки со слоем фильтрующего материала; 4 — днище; 5 — вход воздуха; 6 — выход воздуха; 7 — вход острого пара; 8, 9 — выход; б: 1 — корпус; 2 — фланец; 3 — фильтрующий фторопластовый элемент; 4 — прокладка; 5, 6 — вход и выход воздуха; в: 1 — корпус: 2 — крышка; 3 — фильтр; 4, 5 — выход и вход воздуха (схемы Н.А. Войнова) Отличительной особенностью таких комплексов является гарантированная микробиологическая надежность очистки и полная автоматизация их работы.

Н.А. Воинов, Т.Г. Волова.

Воздушный метод стерилизации сухим горячим воздухом




⇐ ПредыдущаяСтр 15 из 26Следующая ⇒

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух, стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах (рис.75).

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионнонестойких металлов, шприцы с пометкой 200°С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины.

Рис.75 Воздушный стерилизатор

Сухим жаром стерилизуют некоторые термостойкие порошки, масла, тальк, стеклянную тару (ампулы, флаконы и необходимую посуду), вспомогательные материалы.

Стерилизации подвергаются сухие изделия.

Режимы стерилизации:

1. 180°С, 60 минут

2. 160°С, 150 минут

Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию. Изделия выкладывают на перфорированные решетки, располагая их в один слой, не соприкасаясь друг с другом, занимая до 70% площади решетки. Крупные изделия стерилизуют на верхних полках.

Стерилизаторы нельзя открывать во время процесса стерилизации, так как температура резко падает, и могут образоваться воздушные карманы с разницей температур в 30-40°С.

 

 

Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:

Изделия, стерилизуемые в открытом виде без упаковки (рис.76), помещаются на рабочий стол и используются в течение одной рабочей смены.

Если же предметы простерилизованы в крафт-бумаге, они сохраняют стерильность до трех суток.

Стерильность изделий, простерилизованных в бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, сохраняется до 20 суток.

Рис.76 Стерилизация без упаковки

Для контроля воздушной стерилизации применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-180, ИС-160. Термотесты укладываются на каждую полку воздушного стерилизатора в виде конверта в пяти точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново.


Рис.77 Журнал контроля работы стерилизаторов

Работа стерилизаторов отражается в журнале контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава)

(рис.77).

 

Правила укладки изделий медицинского назначения в крафт-пакет.

Одним из обязательных условий эффективной стерилизации является правильная укладка изделий перед проведением стерилизации, выбор оптимальных защитных упаковок.

Рациональная упаковка и укладка бельевых, инструментальных и других наборов способствуют полному удалению воздуха из стерилизуемого материала и проникновению стерилизующего агента в самые глубокие точки упаковок. Максимальное удаление воздуха из камеры и упаковок приводит к тому, что в любом участке стерилизуемых изделий достигается требуемая для стерилизации температура.

В один крафт-пакет укладывается один инструмент!

Стеклянные многоразовые шприцы упаковываются в разобранном состоянии, поршень вынимается из канала шприца, рядом помещаются две иглы: одна – для набора лекарственного средства, другая – для выполнения инъекции.

Размер пакетов подбирается таким образом, чтобы между материалом и краем с термошвом оставался промежуток не менее 3см. Это необходимо сделать, чтобы пакет был закрыт без образования складок, а также во избежание повреждений упаковки.

Заполнение пакетов материалом должно проводиться таким образом, чтобы материал занимал не более ¾ возможного объема, чтобы нижние, боковые и верхние швы не были напряжены. Перед запечатыванием пакетов из них ладонью руки необходимо выдавить воздух, чтобы избежать чрезмерно высокого давления и разрыва запечатанных швов.

Пакеты должны сохранять герметичность и сравнительно легко подвергаться утилизации.

 

 



Рекомендуемые страницы:

ФИЗИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ — Студопедия.Нет

       Паровой метод стерилизации. Его достоинствами являются надежность, не токсичность, низкая цена. Он обеспечивает стерильность не только поверхностей, но и всего изделия, дает возможность использовать различные виды упаковочного материала с различными сроками хранения. Метод осуществляется при сравнительно небольшой температуре (табл. 12), обладает щадящим действием на обрабатываемый материал, позволяет стерилизовать изделия в упаковке, благодаря чему предупреждает опасность реконтаминации. Стерилизующий агент, при этом методе – водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Метод экологически чистый.

       Одним из основных факторов, влияющих на качество стерилизации изделий медицинского назначения в паровом стерилизаторе, является полнота удаления воздуха герметически закрытой паровой камеры. Воздух должен быть удален не только из пространства камеры, но и из каналов и полостей стерилизуемых изделий, а также из пор материалов (резины, текстиля, ваты и т. д.). Остаточный воздух препятствует равномерному и быстрому проникновению пара в труднодоступные места и соответственно замедляет процесс прогрева стерилизуемых изделий. Кроме того, остаточный воздух, смешиваясь с паром, увлажняет и понижает его температуру. Чем больше остаточного воздуха, тем более влажным он делается, что приводит к нарушению требований к пару. Пар должен быть сухим и насыщенным.


       Существуют два способа удаления воздуха из паровых камер, используемых в современных медицинских стерилизаторах: гравитационный и форвакуумный.

       Соответственно паровые стерилизаторы подразделяются на гравитационные и форвакуумные.

       Гравитационные стерилизаторы (с вентилируемыми системами) по ГОСТ Р 13683-2000 предназначены для стерилизации изделий без пор и внутренних полостей. Их рекомендовано использовать для стерилизации герметично закупоренных флаконов с растворами.

       В российских медицинских учреждениях для стерилизации изделий медицинского назначения в настоящее время применяются старые стерилизаторы с гравитационным способом удаление воздуха в течение 10 минут — когда через продувочный клапан в нижней части стерилизатора удаляется воздух, более тяжелый по сравнению с паром, который поступает через клапан в верхней части камеры. Пар постепенно заполняет камеру, вытесняя воздух.

Таблица 12

 

Характеристика парового метода стерилизации

 

 

Окончание табл.

 

       * Рекомендовано для паровых форвакуумных стерилизаторов.

       Форвакуумные стерилизаторы – удаление воздуха осуществляется многократно циклической откачкой воздуха из стерилизационной камеры в течение 30 минут. В камеру подается насыщенный пар и проводится откачка смеси пара и воздуха. Такой цикл удаления повторяется многократно от 3 до 9 раз (в зависимости от марки аппарата) до полного удаления воздуха из камеры (при пористой загрузке, наличия изделий с пустотами). Откачку паро-воздушной смеси проводят либо форвакуумным насосом, либо инжектором.



       Чтобы пар хорошо проникал в различные точки стерилизационной камеры, между изделиями и внутри изделий из текстиля важно соблюдать нормы загрузок, как стерилизатора, так и бикса.

       При работе с паровыми стерилизаторами рекомендуется:

       • биксы укладывать таким образом, чтобы перфорированный пояс или крышка располагались перпендикулярно направлению движения пара в камере;

       • к задней стенке обычно закладываются большие биксы;

       • от дверцы стерилизатора биксы ставят на расстоянии не менее 15 см;

       • биксы с ватой, стерильным материалом должны быть вдали от крана подачи пара;

       • поясок выгрузки на биксе закрывают прямо в камере;

       • камера должна быть заполнена на Уд объема для свободного прохода пара.

       Для выемки стерильного материала персонал должен иметь комплект спецодежды (халат, перчатки, колпак, маску, бахилы), сменяемый 1 раз в смену.

       Паровой метод имеет существенные недостатки: вызывает коррозию инструментов из некоррозионностойких металлов; превращаясь в конденсат, увлажняет стерилизуемые изделия, что ухудшает условия их хранения, увеличивая опасность реконтаминации.

       Воздушный метод стерилизации. Стерилизующим агентом данного метода является сухой горячий воздух (рис. 15). Достоинства метода – его экологическая чистота, отсутствие коррозии металлов, увлажнения упаковки и изделий (табл. 13).

Рис. 15. Виды медицинских стерилизаторов горячим воздухом

       Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85°С до исчезновения видимой влаги.

Таблица 13

Стерилизация воздушным методом (сухой горячий воздух)

 

Окончание табл. 13

 

       Эффективность воздушной стерилизации во многом зависит от равномерного проникновения горячего воздуха со скоростью 1 м/с и соблюдения норм загрузки стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

       Стерилизуемые изделия, равномерно распределяя, укладывают горизонтально поперек полок. Не допустима загрузка стерилизатора навалом, не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Объемные изделия следует класть на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре в стерилизационной камере 40-50°С, отсчет времени стерилизации проводят с момента достижения необходимой температуры.

       Недостатки метода:

       • медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;

       • необходимость использования более высоких температур;

       • невозможность использования для стерилизации изделий из резины, полимеров;

       • непригоден для изделий из текстиля (белья, перевязочного материалов, ваты и пр.) из-за низкой теплопроводности воздуха и опасности самовозгорания.

       Для длительного хранения инструментов (в течение 7 суток), простерилизованных без упаковки, используют столы Панмед-1, Ультролайт и др.

       Эффективность стерилизации паровым и воздушным методами зависит от:

       • должного технического состояния аппаратуры;

       • квалификации медицинского персонала, занимающегося стерилизацией;

       • правильного выбора упаковки и соблюдения плотности загрузки, как стерилизационной коробки, так и камеры стерилизатора;

       • соблюдения режима стерилизации.

       Гласперленовая стерилизация проводится в среде нагретых до 190-250°С стеклянных шариков (гласперленовые стерилизаторы). Изделия стерилизуют в неупакованном сухом виде и используют сразу по назначению. Это изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). Время экспозиции от 20 до 150 с (согласно инструкции).

       Инфракрасная стерилизация осуществляется инфракрасным мощным кратковременным тепловым воздействием, создаваемым галогенными лампами-термоизлучателями, размещенными внутри стерилизационной камеры. Спектр излучения в них смещен в инфракрасный диапазон.

       Стерилизация в неупакованном виде используется для микрохирургических, стоматологический инструментов. Температура стерилизации зависит от режима.

ХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

       При данном методе используются химические вещества в газообразном состоянии или стерилизуемые объекты погружаются в растворы химических веществ.

       Стерилизация растворами – вспомогательный метод, который применяют при невозможности использовать другие. Преимуществами химического метода

Таблица 14

Стерилизация растворами химических средств

 

Стерилизационный
агент

Режим
стерилизации

 

Применяемость

Условия проведения,
оборудование

Температура, °С Время выдержки, мин
1
 
2
 
3
 
4
 
5
 

Перекись водорода 6% (по активнодействующему веществу)

 

Не менее 18
 
360
 

Рекомендуется для
изделий из полимерных
материалов, стекла,
резины, коррозионностойких металлов

Полное погружение
изделия в раствор на
время стерилизационной выдержки. Изделие промывают стерильной водой двукратно. Срок хранения
простерилизованных
изделий в стерильной
емкости (стерилизационная коробка), выложенной

50
 
180
 
Дезоксон-1 (1% раствор по надуксусной кислоте)
 
Не менее 18
 
45
 
Глютаровый альдегид фирмы ВР 2,5% (но активнодействующему веществу) рН 7,0-8,5 Не менее 20
 
360
 
Бианол – 20% рабочий раствор
 
21
 
600
 

Изделия из полимерных
материалов (резины,
пластмассы), стекла,
металлов, эндоскопы и
инструменты к ним

3-е суток. Закрытые
емкости из стекла,
пластмассы или
покрытые эмалью без
повреждений

Лизоформин 3000 – 8% рабочий раствор 40 60

 

Окончание табл.

 

1
 
2
 
3
 
4
 
 

Сайдекс

21

240
 
Инструменты из металлов
 
 
 
600 Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч. эндоскопы и инструменты к ним
 

 

Дюльбак

20

240
 
Инструменты из металлов
 
360 Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч. эндоскопы и инструменты к ним
 
Гигасепт ФФ – 10% рабочий раствор 21 600 Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч. эндоскопы и инструменты к ним
 
Глутарал 21 240 Инструменты из металлов. Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов

 

стерилизации растворами является его повсеместная доступность, легкость в исполнении и надежность (табл. 14). Однако он имеет недостатки: изделия стерилизуют без упаковки, промываются после стерилизации, что может привести к реконтаминации. Используется только при децентрализованной системе.

       Стерилизуемые изделия свободно раскладывают в емкости с растворами. При большой длине они укладываются по спирали, каналы и полости заполняются раствором. После окончания стерилизации изделия трижды (при стерилизации перекисью водорода – дважды) погружают на 5 минут в стерильную воду (или 0,9% физиологический раствор), каждый раз меняя ее, затем стерильным корнцангом их переносят в стерильную емкость (стерилизационная коробка), выложенную стерильной простыней. Срок хранения – трое суток.

       Данный метод применяют для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, или когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендуемые методы стерилизации. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем поверхностям изделия.

       При стерилизации используют емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью без повреждений.

       Для химической стерилизации используют дезсредства со спороцидным действием, разрешенные к применению в установленном порядке, имеющие регистрационное свидетельство, сертификат, методические рекомендации или инструкции по применению.

       При газовой стерилизации используют смесь ОБ (окись этилена с бромистым этилом) и его смеси, формальдегид (табл. 15, 16).

Таблица 15

Химический метод стерилизации (газовый), смесью ОБ и окисью этилена

 

Стерилизующий агент
 
Применяемость
 
Условия проведения
 
Смесь ОБ (окись этилена с бромистым этилом)
 
Оптика, кардиостимуляторы, изделия из полимерных материалов, стекла, металлов
 

Инструментарий
упаковывают в два слоя
полиэтиленовой пленки
толщиной 0,06-0,2 мм,
бумагу: пергаментную,
непропитанную,
мешочную влагопрочную, для упаковки продуктов на автомате марки Е, упаковочную высокопрочную двухслойную. Срок сохранения простерилизованных изделий в упаковке из полиэтиленовой пленки – 5 лет, в пергаменте – 20 суток

Окись этилена
 

Изделия из
полимерных
материалов,
стекла, металлов

Смесь ОБ
 

 

       В газообразном состоянии этилен-оксид не вызывает коррозии металлов, не портит изделий из кожи, шерсти, бумаги, пластмасс. Он является сильным бактерицидным, спороцидным и вирулоцидным средством. Его пары обладают высоким проникновением.

       Преимуществом газовой стерилизации является то, что она осуществляется при невысоких температурах (18-80°С) и изделия стерилизуются в упаковке.

Таблица 16

Газовый метод стерилизации парами раствора формальдегида в этиловом спирте

 

 
 

Режим стерилизации

 
 
 
 
Стерилизующий агент
 
Рабочая температура в стерилизационной камере, °С
 
Время выдержки, мин
 
Применяемость
 
Условия проведения стерилизации
 
Пары 40% раствора формальдегида в этиловом спирте 80 180 Для изделий из полимерных материалов (резины, пластмассы), металла, стекла Стерилизацию проводят в упаковке из двух слоев полиэтиленовой пленки толщиной 0,06-0,2 мм, пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной, бумаги для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаги упаковочной высокопрочной, бумаги двухслойной крепированной. Срок хранения изделий, простерилизованных в упаковке из полиэтиленовой пленки – 5 лет, в 2-х слоях из пергамента и т. д. – 20 суток

 

       Недостатком данного метода является его токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности. Процесс стерилизации имеет продолжительный цикл. Изделия после стерилизации проветриваются до 21 сут. Этилен-оксид редко используется в ЛПУ. Его применяют, когда невозможно обеззараживание инструментов с помощью термической обработки.

       После стерилизации парами раствора формальдегида в этиловом спирте дегазация изделий из полимерных материалов (резины, пластмасс), металла и стекла не требуется, за исключением изделий из пластмассы и резины, контактирующих с кровью.

ХОЛОДНЫЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

       Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующим агентом являются ионизирующее гамма- и бета-излучение. Температура объекта при стерилизации поднимается незначительно, поэтому этот способ называют холодной стерилизацией. Для индивидуальной упаковки помимо бумажных, используют пакеты из полиэтилена. Стерильность в такой упаковке сохраняется годами. Срок годности указывается на упаковке. Этот способ широко применяется на промышленных предприятиях, изготавливающих медицинские изделия одноразового использования (системы для переливания крови, акушерские комплекты).

       При плазменном методе стерилизации используют высокочастотную плазму в отечественных приборах «Пластер», «Ферузо». Для обработки изделий из термолабильных материалов (эндоскопы, кардиостимуляторы, оптические устройства, эндопротезы и т.д.) используется стерилизатор Стеррад 100-8. Данный метод применяют для стерилизации небольших по размерам медицинских изделий (стоматологические боры, иглы для иглотерапии и т.д.).

       Озоновая стерилизация предназначена для обработки малогабаритных изделий простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов. Озон синтезируется из воздуха в газоразрядном реакторе стерилизатора. Время стерилизационной выдержки 50 минут, время дезактивации озона 10 минут. Озоновый стерилизатор (СО-01-С или СО-5) относится к низкотемпературным (температура 40°С), используется для стерилизации сухих скальпелей, пинцетов, зеркал, зондов, шпателей, боров стоматологических в неупакованном виде, размещенных в 1 слой в кювете.

Стерилизация воздуха | Источники света

перейти к содержанию

LightSources Лучший производитель УФ-ламп для OEM-производителей по всему миру

  • 1-800-826-9465 (Северная Америка)
  • +44 1576 220246 (против бактерицидных заболеваний в Европе)
  • +36 2754 1800 (другие страны Европы)
  • +86 21 52662921 (Китай)

MENUMENU

  • Home
  • Решения
        • Бактерицидные УФ лампы
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • Специальные люминесцентные лампы
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • УФ-отверждение
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • Подсветка
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • Фирменные базы и розетки

          • Основания и розетки
          • Специальный керамический материал
        • Патроны и электромонтажные устройства
          • Продукция
          • Дистрибьюторы
        • Лампы для загара
          • Продукты
          • Технологии
          • Образование
          • Дистрибьюторы
        • Сигнальные лампы
          • Продукты
          • Приложения
          • Технологии
          • Образование
          • Дистрибьюторы
  • О
  • Контакты
    • Офисы по всему миру
  • Блог
  • Английский
    • 简体 中文
  • Поиск

    Ищи:

    Поиск

MENUMENU

  • Home
  • Решения
        • Бактерицидные УФ лампы
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • Специальные люминесцентные лампы
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • УФ-отверждение
          • Продукты
          • Приложения
          • Образование
        • Подсветка
          • Продукты

404 Просмотр не найден [имя, тип, префикс]: категория, pdf, contentView

  • Насчет нас

      • Назад
      • История и хронология

      • Заявление о миссии

      • Устав

      • совет директоров

      • Конкурс по номинациям 2020

      • Фонд

      • Комитеты

      • Награды

      • Товарищество

      • Свяжитесь с нами

  • Члены

      • Назад
      • Членство

      • Мой аккаунт

      • Отчеты о членстве

      • Дискуссионный форум

      • ПРОЦЕСС: веб-версия

      • Центральный источник в Интернете

      • Часто задаваемые вопросы о членстве

  • Образование

      • Назад
      • Публикации

      • Курсы

      • Планы урока

      • Подкаст: Обработайте это!

      • Вебинары

      • Видеоролики Envision для обучения персонала

      • Часто задаваемые вопросы об образовании

  • Сертификация

      • Назад
      • Сертификаты IAHCSMM

      • Обучающие видео

      • Экзаменационные правила

      • Продление сертификатов

      • Проверить сертификаты

      • Сертификационный совет

      • Формы и приложения

HVAC УФ-свет, системы обработки воздуха, УФ-стерилизация воздуха

Высокопроизводительная серия CC Ультрафиолетовое освещение HVAC Светильники разработаны специально как системы воздухоочистителя HVAC .Они могут быть установлены в различных конфигурациях для оптимального прохода УФ-стерилизации воздуха и / или для облучения охлаждающих змеевиков и дренажных поддонов. Эти индивидуальные воздухоочистители HVAC UV могут быть установлены на стенках камеры статического давления, или несколько приспособлений могут быть установлены на узлах рамы, охватывающих приточные воздуховоды или охлаждающие змеевики.

Светильники серии

CC предлагаются в одно- и двухламповой конфигурации с «влагозащищенной» конструкцией. Их можно монтировать индивидуально; в застроенных банках; или в параллельных конфигурациях стоечных систем в различных местах, включая змеевики, дренажные поддоны, воздуховоды, камеры смешанного воздуха и вытяжные системы.Серия CC доступна в пяти вариантах длины (18 дюймов, 24 дюйма, 36 дюймов, 48 дюймов и 60 дюймов) и четырех вариантах напряжения (115, 208, 230 или 277 В переменного тока), что обеспечивает гибкость установки практически для любой системы.

Преимущества воздухоочистителя HVAC

  • Повышает качество воздуха в помещении (IAQ) за счет уменьшения количества бактерий, вирусов и плесени, которые либо разрастаются, либо проходят через системы кондиционирования воздуха
  • Снижает риск простуды, гриппа, аллергии и других заболеваний, связанных с системами кондиционирования воздуха
  • «Зеленые» лампы содержат ≤ 8 мг ртути
  • Двухлетняя гарантия на лампы при снижении мощности всего на 20% за два года
  • Пятилетняя непропорциональная гарантия на балласт
  • Непрерывно очищает змеевики, дренажные поддоны, камеры и воздуховоды, исключая дорогостоящие программы очистки и использование вредных химикатов и дезинфицирующих средств
  • Снижение затрат на электроэнергию HVAC за счет восстановления теплопередачи и полезной холодопроизводительности
  • Не производит озона и других вторичных загрязнителей
  • Штекерные соединения означают отсутствие необходимости в полевой проводке для подключения прибора к приспособлению при построении блоков стоечных систем (кроме приложений 277 В)

Чтобы узнать больше о светильниках CC Series HVAC UV light , включая технические характеристики и результаты независимых тестов IES, посетите нашу техническую библиотеку, где вы можете скачать и распечатать литературу.

Продолжительное прямое воздействие ультрафиолетового излучения C может вызвать временное покраснение кожи и раздражение глаз, но не вызывает рак кожи или катаракту. Системы American Ultraviolet разработаны с учетом требований безопасности и при правильной установке профессиональным подрядчиком не допускают воздействия УФ-излучения и обеспечивают безопасную эксплуатацию и техническое обслуживание.

стерилизация горячим воздухом — японский перевод — Linguee

Активация,

[…]
нагрев, отверждение, плавление, усадка, сварка дюйм г , стерилизация , d ry грелка или нагрев дюйм г -air i s i n Все чаще используется в промышленности […]

процессов.

leister.be

ロ セ 熱風機 、 活 性 化 、 加熱 、 曲 、 融解 、 シ 、 着 、 着 、 着 乾 着 、 90乾40 90 40 9040 90 40 90な 工程 で 使用 さ れ ま す。

leister.com

Эта УФ бактерицидная лампа

[…]
подходит f o r воздух p u ri fication, sur fa c e при очистке и т. Д.

cnlight-lighting.com

こ の UV 菌 灯 空 気 浄 、 表面 殺菌 、 水 質 浄 jp

Разъем REDEL XP изготовлен из пластика, который

[…]
удобен y t o стерилизация p r oc esses.

digikey.kr

REDEL XP コ ネ ク タ は 滅菌 加 理 に 都 合 が よ い プ ラ ス ク を.jp

Мы применяем комплексный подход в разработке и установке фармацевтического оборудования с целью предотвращения бактериального заражения через США. e o f стерилизация , e li очистка оборудования и предотвращение попадания посторонних предметов, а также предотвращение перекрестного загрязнения продуктов, произведенных на одном оборудовании c le a n воздух c o nd itioning.

hitachi-pt.com

滅菌 に よ る 雑 菌 汚染 (コ ン タ ミ ネ ー シ ョ ン) の 防止, 装置 の 洗浄 に よ る 残留 物 の 除去, ク リ ー ン 空調 に よ る 外部 か ら の 異物 混入 の 防止 や, 同一 設備 で 生産 さ れ る 製品 相互 の 交差 汚染 (ク ロ ス · コ ン タ ミ ネ ー シ ョ ン) のを 目的 と し て ト ー タ ル 薬 大 の エ ン ジ ン グ 、 施工 実。

hitachi-pt.co.jp

5) Для обеспечения гигиены во время транспортировки контейнер оборудован устройством для приготовления озона

[…]
оборудование f o r стерилизация , d eo dorization […]

и сохраняя свежесть.

yanmar.co.jp

5) 品 め 、 殺菌 、 臭 、 カ ビ 防止 、 鮮 度 保持 が で オ ゾ ン 発 生 装 […

置 を 搭載 し て い ま す。

yanmar.co.jp

Когда

[…]
статус пакета ag e d air c o nd itioner change […]

Часть IV: Руководство по профилактике и контролю инфекций для гибкой желудочно-кишечной эндоскопии и гибкой бронхоскопии — вопросы, связанные с обработкой гибких эндоскопов

ШАГ ИЛИ ПРОЦЕДУРА ОБОСНОВАНИЕ БАРЬЕРЫ ДОПОЛНИТЕЛЬНОЙ ПЕРЕРАБОТКИ
Предварительная очистка (сразу после использования в процедурной)
1. Протрите вводную трубку эндоскопа мягкой одноразовой тканью без ворса или губкой для эндоскопа, смоченной свежеприготовленным ферментным моющим средством. Снижает риск загрязнения рабочего и / или окружающей среды.
2. Промойте каналы для воздуха / воды в соответствии с рекомендациями производителя эндоскопа. Сразу после процедуры промойте все остальные каналы раствором ферментного моющего средства у постели больного, а затем продуйте воздухом. Удаляет крупный мусор и предотвращает высыхание материала пациента, что затрудняет повторную обработку. Необходимо использовать подходящие адаптеры для правильной промывки всех каналов в соответствии с инструкциями производителя.
3. Снимите все съемные детали (например, клапаны) и обработайте соответственно. При необходимости установите водонепроницаемую крышку. Быстрая транспортировка в закрытом контейнере в зону обработки до высыхания материала пациента Предотвращает высыхание материала пациента на эндоскопе и предотвращает загрязнение окружающей среды. Переработка за пределами площадки; может иметь длительное время транспортировки, поэтому выделения высыхают на устройстве.
Проверка герметичности

4.Выполните испытание на герметичность в соответствии с инструкциями производителя.

Примечание : При обнаружении утечки эндоскоп необходимо отремонтировать. Следуйте инструкциям производителя.

Если утечки присутствуют, последующая очистка позволит жидкости попасть в корпус прицела и вызвать повреждение. Материал пациента может попасть в корпус эндоскопа и будет недоступен для очистки; секвестрированная почва препятствует дезинфекции; остаточная почва действует как источник заражения, если зонд используется на другом пациенте.
Ручная очистка и ополаскивание
5. Полностью погрузите телескоп в раствор ферментного моющего средства. Ферментное моющее средство улучшает очищающую способность, расщепляя белки. Погружение уменьшает образование аэрозолей, тем самым снижая риск инфекционной биологической опасности для персонала, занимающегося переработкой.
  1. Прицел погружен не полностью, очистка выполнена не так хорошо.
  2. Недостаточное время контакта с ферментативным моющим средством.
  3. Полная обработка эндоскопа не завершена своевременно. Если эндоскопы, используемые пациентами, пропитываются ферментным детергентом или остаются влажными на ночь, это будет способствовать образованию биопленки.
  4. Ферментативное моющее средство не разбавлено должным образом или не соблюдается требуемая температура для активации продукта, что может привести к неадекватным характеристикам продукта.
6. Очистите все внешние поверхности эндоскопа мягкой безворсовой тканью или губкой для эндоскопа, удерживая эндоскоп в погруженном состоянии.Используйте щетки для эндоскопа, чтобы очистить ВСЕ каналы, когда эндоскоп находится в погруженном состоянии. (ПРИМЕЧАНИЕ: не все каналы можно чистить щеткой — следуйте рекомендациям производителя по очистке каналов). Повторяйте, пока не удалите весь мусор. Чистка щеткой значительно повышает эффективность процесса очистки. Неправильная чистка зубов приводит к остаточному материалу пациента, который может вызвать сбой дезинфекции и привести к передаче болезни от одного пациента к другому.
Убедитесь, что используемая щетка соответствует типу эндоскопа, а диаметр щетины соответствует диаметру канала.Несоответствующие щетки не могут вытеснить биологические материалы или могут повредить внутренние части каналов. Обратитесь к производителю эндоскопа за техническими характеристиками каналов.
7. Используйте адаптеры для очистки, изготовленные производителем, чтобы обеспечить промывку адекватного ферментативного моющего средства через ВСЕ каналы (включая подъемную проволоку, прямую струю, 2-й терапевтический канал, канал баллона) и погрузите в ферментное моющее средство в соответствии с указаниями производителя ферментативного моющего средства. . Остаточный материал в любом канале может представлять риск передачи инфекционного материала следующему пациенту. Если канал заблокирован, жидкость будет течь преимущественно через другие каналы. Поэтому убедитесь, что жидкость течет по всем каналам. Предпочтительный метод промывки инструмента — от конца пуповины к дистальному концу.
8. Выньте эндоскоп из емкости для ферментного моющего средства и поместите в емкость, наполненную чистой водой, для полоскания. Ферменты являются белками и, если их не смыть должным образом, могут способствовать накоплению белка в каналах осциллографа. Достаточное удаление моющего средства не достигается при использовании недостаточного количества воды для полоскания или использованной воды для полоскания. Цикл предварительной промывки некоторых автоматизированных репроцессоров эндоскопии ( AER ) может использоваться для обеспечения достижения необходимого объема промывки.
9. Промойте все каналы достаточным объемом воды, чтобы удалить все моющее средство (как минимум, используйте примерно в три раза больше общего объема каналов, характерного для обрабатываемого эндоскопа.Убедитесь, что используется обильное количество воды, чтобы удалить все ферментные моющие средства). Ферменты являются белками и, если их не смыть должным образом, могут способствовать накоплению белка в каналах осциллографа. Достаточное удаление моющего средства невозможно при использовании недостаточного количества воды для полоскания. Цикл предварительного полоскания некоторых моделей AER может использоваться для обеспечения необходимого объема полоскания.
10. После промывки продуйте все каналы эндоскопа воздухом для удаления воды.Протрите внешние поверхности эндоскопа мягкой одноразовой тканью без ворса, чтобы удалить лишнюю влагу. Остаточная вода разбавит дезинфицирующее средство высокого уровня и снизит его концентрацию. Дезинфицирующее средство высокого уровня, разбавленное остаточной водой, может снизить эффективность дезинфицирующего средства и не продезинфицировать устройство должным образом.
Дезинфекция высокого уровня
11. Следите за минимальной эффективной концентрацией ( MEC ) дезинфицирующего или стерилизующего средства высокого уровня при повторном использовании.Для этой цели доступны специальные тест-полоски для экспресс-теста. Дезинфицирующие средства высокого уровня, которые используются повторно, могут потерять эффективность из-за чрезмерного разбавления и / или инактивации. Отсутствие мониторинга может привести к использованию неэффективных дезинфицирующих средств с высокой концентрацией и неадекватному уничтожению микробов.
12. Полностью погрузите эндоскоп в специальный резервуар, наполненный одобренным дезинфицирующим или стерилизующим средством высокого уровня в соответствии с инструкциями производителя.Используйте адаптеры для очистки эндоскопов, чтобы заполнить ВСЕ каналы адекватным дезинфицирующим или стерилизующим средством высокого уровня (включая подъемный трос, прямую струю, 2-й терапевтический канал, баллонный канал) и смочите в дезинфицирующем или стерилизующем растворе высокого уровня в соответствии с указаниями производителя продукта. . Протрите эндоскоп мягкой безворсовой тканью, чтобы удалить пузырьки с поверхности эндоскопа. (ПРИМЕЧАНИЕ : если AER используется для обработки эндоскопических зондов для ретроградной холангиопанкреатографии ( ERCP ) или других специальных эндоскопов, убедитесь, что все каналы можно дезинфицировать с помощью AER .В противном случае пораженные каналы ДОЛЖНЫ быть очищены / продезинфицированы вручную перед помещением в AER ) . Убийство микробов должно быть эффективным; поэтому подходят только дезинфицирующие средства с антимикобактериальной активностью (например, дезинфицирующие средства высокого уровня) или стерилизующие средства. Дезинфицирующие средства, отличные от одобренных, могут привести к неадекватному уничтожению микробов.
13. Адекватное время контакта и температура имеют решающее значение; поэтому следует контролировать температуру продукта и точно рассчитывать время контакта в соответствии с рекомендациями производителя.Следует рассмотреть возможность использования таймера. Если используется меньше минимального эффективного времени воздействия или температуры, микроорганизмы могут выжить. Это увеличивает риск передачи инфекций. Проблемы с правильным временем часто возникают при ручной дезинфекции, потому что время воздействия дезинфицирующего средства высокого уровня часто не выполняется. Это не проблема с AER , если AER запрограммирован в соответствии с инструкциями производителя по дезинфицирующим или стерилизующим средствам высокого уровня.При использовании AER все же необходимо соблюдать температурные требования.
14. После дезинфекции продуйте все каналы воздухом, чтобы гарантировать удаление всего дезинфицирующего или стерилизующего средства высокого уровня из эндоскопа, и извлеките эндоскоп из дезинфицирующего или стерилизующего средства высокого уровня. Остатки дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня могут вызвать повреждение тканей. Footnote 99 . Необходимо использовать подходящие адаптеры для правильной продувки воздуха через все каналы в соответствии с инструкциями производителя для удаления всего дезинфицирующего или стерилизующего средства высокого уровня из эндоскопа.
Ополаскивание
15. Погрузите эндоскоп в специальный резервуар, наполненный чистой чистой водой, свободной от бактерий, или стерильной водой. Промойте все каналы достаточным объемом воды, чтобы удалить все дезинфицирующее или стерилизующее средство высокого уровня (при минимальном использовании приблизительно в три раза превышающем общий объем канала, характерный для обрабатываемого эндоскопа. Убедитесь, что для удаления всего дезинфицирующего средства высокого уровня используется обильное количество воды. или стерилизующее средство). См. Рекомендации производителя дезинфицирующего или стерилизующего средства высокого уровня для получения информации о соответствующей процедуре промывки.Некоторые дезинфицирующие или стерилизующие средства высокого уровня требуют нескольких полных замен воды. Большинство AER ополаскиваются несколькими литрами воды. Остаточные количества дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня могут вызвать повреждение тканей Footnote 99 ; поэтому для удаления всех остатков крайне важно адекватное полоскание. Проблемы с неправильным ополаскиванием возможны при ручной дезинфекции. Для разных эндоскопов может потребоваться больший объем промывки, чем для других. Поскольку объем полоскания в AER обычно задается заранее и не может быть уменьшен пользователем, если изначально он не был запрограммирован неправильно, AER обеспечивают более надежное полоскание по сравнению с ручными методами, когда пользовательская вариативность является проблемой.

16. Вода для окончательного ополаскивания должна быть стерильной или очищенной от бактерий.

Можно использовать водопроводную воду, но если это так, последующее ополаскивание 70-90% спиртом является КРИТИЧНЫМ между каждым использованием пациента и перед хранением.

Водопроводная вода может содержать микобактерий, Pseudomonas и других микроорганизмов. Следовательно, вода для окончательного ополаскивания не должна содержать бактерий (т.е. фильтроваться через фильтры 0,2 мкм). Фильтрация может производить воду, свободную от бактерий, при условии, что в фильтруемой воде нет вирусов и фильтры запатентованы. Разрастание бактерий в гибких каналах эндоскопа может быть результатом микроорганизмов водопроводной воды во влажных каналах. Это привело к передаче инфекции между пациентами.
Сушка

17. Извлеките эндоскоп из промывочной воды и продуйте все каналы воздухом, чтобы удалить всю оставшуюся промывочную воду. Промойте все каналы 70–90% спиртом (примерно 60 мл промыть все каналы с помощью соответствующих переходников).

(ПРИМЕЧАНИЕ: ополаскивание и сушка спиртом не требуются, если прицел используется сразу на другом пациенте, за исключением случаев, когда заключительное ополаскивание проводилось нефильтрованной водопроводной водой) .

Это облегчает сушку каналов, а также убивает любые микроорганизмы, которые могут присутствовать в водопроводной воде. Отсутствие сушки было связано с передачей инфекции между пациентами из-за чрезмерного роста микробов.
18. После ополаскивания спиртом и перед хранением эндоскопа продуйте все каналы принудительным воздухом.Протрите внешние поверхности эндоскопа мягкой безворсовой тканью, смоченной спиртом. Это облегчает сушку каналов. Отсутствие сушки было связано с передачей инфекции между пациентами из-за чрезмерного роста микробов.
Воздух под высоким давлением (сжатый воздух) может повредить внутренние структуры эндоскопа. Проконсультируйтесь с производителем эндоскопа для получения дополнительной информации.
19. Храните эндоскоп размотанным в вертикальном положении (т.е.е., повесить в закрытом вентилируемом шкафу). Храните съемные и многоразовые детали (например, клапаны и водонепроницаемую крышку) отдельно от прицела. Это облегчает сушку прицела во время хранения и снижает риск повторного загрязнения. Сохранение клапанов включенными во время хранения увеличивает риск того, что остаточная влага останется, увеличивая риск чрезмерного роста микробов и инфекции.

Методы стерилизации | Ветеринарная хирургия

Стерилизация:

Перед любой формой стерилизации хирургические инструменты не должны иметь серьезных загрязнений.Микроорганизмы могут быть скрыты кровью и мусором, что препятствует эффективной стерилизации и загрязняет хирургическое вмешательство. Ультразвуковая очистка полезна для удаления крови и мусора, застрявших в замках коробок и поверхностях захвата инструментов.

Паровая стерилизация:

Автоклав с упаковкой, готовой к стерилизации (открытая дверца) Стерилизация паром — безусловно, наиболее распространенный метод, используемый в ветеринарии. Обычные методы химической стерилизации включают газовую стерилизацию с использованием этиленоксида или перекиси водорода и стерилизацию холодной жидкостью с использованием альдегидов.Стерилизация паром чрезвычайно популярна для дезинфекции инструментов и других хирургических предметов, таких как халаты. Стерилизация паром убивает микроорганизмы за счет использования влаги и сильного тепла, вызывающих коагуляцию клеточных белков, необходимых для выживания. Давление используется для повышения температуры пара и обеспечения более эффективной стерилизации. Такие предметы, как масла и смазки, нельзя стерилизовать паром. Существуют три типа паровых стерилизаторов, включая автоклавы с гравитационным вытеснением, предвакуумный и паропульсирующий.

Автоклавы с гравитационным вытеснением являются наиболее распространенными в частной практике и работают, вводя пар в верхнюю часть камеры автоклава и вытесняя воздух вниз для последующего удаления. После того, как весь воздух в камере заменен паром, в камере достигается определенная температура, которая поддерживается в течение определенного периода времени для уничтожения микроорганизмов.

Автоклавы Prevacuum работают, удаляя весь воздух из камеры с помощью вакуумного насоса, а затем закачивая пар.Это позволяет ускорить процесс стерилизации, а также позволяет пару быстрее проникать в пакеты инструментов. В результате «мгновенная» стерилизация инструментов может быть выполнена, когда они нужны быстро (экстренный или уроненный инструмент) — этот цикл выполняется на неупакованном инструменте и с использованием лотка с отверстиями.

Автоклавы с пульсацией пара работают за счет подачи пара в камеру до заданного давления и удаления воздуха. Эти автоклавы дешевле, но не так быстро, как автоклавы с предварительным вакуумом.Однако они быстрее, чем автоклавы с гравитационным вытеснением.

Стандартная и мгновенная стерилизация:

Отдельный инструмент, готовый к мгновенной стерилизации с индикатором химической стерильности В общем, все инструменты перед помещением в автоклав необходимо тщательно очистить от любых органических остатков. Инструменты должны быть высушены, замки ящиков открыты, а все поверхности должны быть открыты для надлежащей стерилизации. В автоклаве контейнеры размещаются правой стороной вверх, а пакеты инструментов загружаются вертикально и продольно с зазором между ними, позволяющим пару перемещаться вокруг.Автоклав настроен на температуру 121 ° C (250 ° F). Время стерилизации 13-15 минут (при 15 фунтах на квадратный дюйм) является стандартным минимальным временем воздействия, для безопасности часто добавляют дополнительные 2-5 минут. В типичных справочниках указывается время стерилизации 30 минут при 121 ° C для стерилизаторов с гравитационным вытеснением.

Быстрая стерилизация отдельных инструментов может выполняться при 132 ° C (270 ° F) в течение 3-4 минут (при 30 фунтах на квадратный дюйм) в металлическом лотке с окнами, если используется автоклав с предварительным вакуумом.

Холодная стерилизация:

Метод холодной стерилизации Холодная стерилизация часто используется для материалов и инструментов, которые нельзя стерилизовать паром, таких как инструменты с линзами (эндоскопы и артроскопы) и анестезиологическое оборудование.Глютеральдегид — это некоррозионный холодный стерилизатор, который использует алкилирование для уничтожения бактерий, вирусов и спор. Глютеральдегид и другие альдегиды (например, формалин) могут вызывать раздражение кожи и слизистых оболочек и вызывать реакции гиперчувствительности. Инструменты, пропитанные альдегидным средством для холодной стерилизации, перед использованием следует тщательно промыть стерильным физиологическим раствором.

Оксид этилена:

Оксид этилена Оксид этилена является газом при температуре выше 10.9 ° С. Этот метод стерилизации может убить такие микроорганизмы, как все бактерии, споры, грибки и, в основном, крупные вирусные частицы. Уничтожение происходит путем алкилирования; нарушение метаболических функций организмов. Эффективность стерилизации с использованием этого соединения зависит от концентрации газа, температуры, времени воздействия и влажности окружающей среды. Время воздействия может варьироваться от 48 минут до нескольких часов. Газ диффундирует через пакеты инструментов и упаковки, убивая организмы, с которыми он контактирует.Перед завершением стерилизации необходимо провести период аэрации, чтобы оксид этилена мог диффундировать из упаковок. Некоторым объектам, таким как пластмассы и резина, требуется 168 часов или более, прежде чем можно будет обращаться с ними и использовать их, тогда как инструменты из нержавеющей стали требуют мало времени для вентиляции. Для хирургических имплантатов может потребоваться аэрация в течение 14 дней, и имплантация будет безопасной. Контакт с предметами, пропитанными оксидом этилена, может вызвать серьезные ожоги у пациентов и обслуживающего персонала. Оксид этилена воспламеняется и взрывоопасен в смесях с воздухом и вызывает сильное раздражение при вдыхании.Срок хранения стерилизованных упаковок составляет от 15 дней до 1 года. Стерилизация с использованием оксида этилена была запрещена в нескольких странах (включая Канаду) из-за выброса CFC12 во время процесса стерилизации, который повреждает озоновый слой. Предметы, которые ранее подвергались радиационной стерилизации, не должны подвергаться стерилизации оксидом этилена из-за образования токсичного этиленхлоргидрина. Однако новые поколения стерилизаторов оксида этилена, которые не производят CFC, разрешены в Канаде.Предметы, которые ранее подвергались радиационной стерилизации, не должны подвергаться стерилизации оксидом этилена из-за образования токсичного этиленхлоргидрина.

Плазменная стерилизация:

Газообразный перекись водорода используется для образования свободных радикалов, убивающих микроорганизмы в закрытой камере. Радиочастота включается, чтобы активировать процесс, а затем отключается, чтобы превратить химические вещества в безопасный кислород, воду и другие побочные продукты.Стерилизация занимает около 1 часа, и после завершения цикла стерилизации период аэрации не требуется. В некоторых странах этот метод стерилизации быстро заменяет стерилизацию оксидом этилена. Он обладает способностью убивать широкий спектр микроорганизмов, включая микобактерии, устойчивые бактериальные споры, грибы и вирусы. Существенным недостатком является то, что такие материалы, как белье, марлевые губки, дерево, некоторые пластмассы и жидкости нельзя стерилизовать этим методом.

Излучение:

Радиационная стерилизация Производители предварительно упакованных материалов для стерильного ветеринарного использования часто используют ионизирующее излучение. Это дорогостоящий метод стерилизации, который обычно применяется на производственных предприятиях и в крупных больницах. С помощью этого метода часто стерилизуются обычно используемые стерильные хирургические принадлежности, такие как шприцы и катетеры. В ветеринарии радиационная стерилизация также иногда используется для повторной стерилизации предметов, которые предназначены только для одноразового использования и которые нельзя легко стерилизовать другими методами.Предметы, которые ранее подвергались радиационной стерилизации, не должны подвергаться стерилизации оксидом этилена из-за образования токсичного этиленхлоргидрина.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *