Дезинфекция инструментов хирургических: Этапы обработки хирургических инструментов — Мегаобучалка

Содержание

Этапы обработки хирургических инструментов — Мегаобучалка

(ОСТ 42-21-2-85 и приказ МЗ № 408)

1-й этап — дезинфекция.

Цель: обезопасить медицинский персонал от заражения ин­фекциями, передающимися через кровь (СПИД, гепатит).

1. Инструменты в разобранном виде помещают в накопитель – это емкость с водой либо с 1,5% содовым раствором. Здесь они на­ходятся до момента дезинфекции.

2. Дезинфекция инструментов проводится в другой емкости:

— или физическим путем — это кипячение в дистиллированной воде 30 минут либо в 2% растворе соды 15 минут;

— или с помощью одного из химических антисептиков — это в 3% хлорамине 60 минут, в 0,03% нейтральном анолите 30 минут, в 4% перекиси водорода 90 минут и др.

3. После дезинфекции нужно промыть инструменты под проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего вещества.

4. Не забывать, что жидкость-накопитель необходимо обез­заразить прежде, чем вылить: или 30 минут прокипятить, или засыпать сухой хлорной известью по 200 гр. на 1 литр и оставить на 60 минут.

2-й этап — предстерилизационная очистка.

Цель: механическое удаление с инструментов остатков ле­карственных веществ и пр.

1. Погрузить инструменты в подогретый моющий раствор на 15 мин.

2. Промыть щеточкой каждый инструмент в этом растворе.

3. Смыть моющий раствор проточной водой 3-5 мин.

4. Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой.

5. Высушить полотенцем или горячим воздухом.

6. Проконтролировать качество предстерилизационной очи­стки можно азопирамовой, амидопириновой или ортолидиновой пробой, которые обнаруживают остатки крови на инструменте; либо фенолфталеиновой пробой, которая укажет на наличие моющего вещества (см. приказ № 720).

3-й этап — стерилизация.

Цель: обеспечить гибель вегетативных и споровых форм микробов.

1. Сухожаровой метод:

— инструменты разложить равномерно на поднос,

— поставить поднос в сухожаровой шкаф,

— выдержать режим 180° 60 минут.

Можно использовать в течение рабочей смены. Метод является лучшим для стерилизации инструментов.

2. Автоклавирование:

— уложить инструмент в х/б ткань или крафт-пакет,

— поместить в автоклав,

— выдержать режим 2 атм 20 минут.

Можно использовать в течение 3-х суток.

3. Химический метод:

— инструменты с оптикой, из полимеров или резины погру­зить в один из растворов:

· в перекись водорода 6% на 180 мин при температуре 50°

·  в дезоксон-1 1% на 45 мин при температуре 20°

· в сайдекс 2% на 4-10 часов.

 — промыть в 2-х емкостях со стерильной водой по 5 мин в ка­ждой,

   — завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Можно использовать в течение 3-х суток.

Для холодной стерилизации инструментов и эндоскопов в течение 20 минут из современных антисептиков применяются делансин и делансаль, направленные против бактерий, вирусов и грибов.

Обработка операционного поля

Если больной готовится на плановую операцию, то нака­нуне операции он принимает ванну или душ с целью гигиенической подготовки кожи. Это выполняется после таких манипуляций, как промы­вание желудка или постановка клизмы. После ванны необходима смена на­тельного и постельного белья. Это выполняется в хирургическом отделении.

Если больной поступает на экстренную операцию, то прово­дится частичная обработка кожи в приемном отделе­нии.

Непосредственно перед операцией как плановым, так и экс­тренным больным кожа обрабатывается антисептиком, высушивается, проводится сухое бритье, затем обработка спиртом.

Далее проводится обработка операционного поля на операци­онном столе:

— широко и последовательно (от центра к периферии) дважды обраба­тывается вся зона операции, а не только место будущего разреза,

— затем обрабатывается место, ограниченное стерильными простынями,

— обязательно обрабатывается в конце операции перед нало­жением швов,

   и после наложения швов.

При необходимости кожа обрабатывается и по ходу операции.

Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно применяется спиртовой антисептик на кожу.

По ОСТу для обработки операционного поля применяются йодосодержащие препараты (1% йодопирон, 1% йодонат, 1% йодинол), 0,5% раствор хлоргексидина; АХД-2000-специаль, первомур. Из современных кожных антисептиков применяется лизанин-ОП-Ред (красно-оранжевого цвета, окрашивающий и хорошо обозначающий границу поля). Действие его направлено против возбудителей ВБИ, туберкулеза, вирусов и грибов. АХДЗ-3000 применяется для обработки операционного поля, локтевых сгибов доноров и др.

Применение 5% спиртовой настойки йода ЗАПРЕЩЕНО, так она вызывает аллергические реакции и ожоги (приказ МЗ № 720).

Профилактика имплантационной инфекции

Имплантационная инфекция передается через предметы, которые должны на необходимое время остаться в ране. Источником такой инфекции может быть шовный материал, дренажи, катетеры, эндопротезы, пере­саженные органы и множественные металлические конструкции, приме­няемые в травматологии и ортопедии.

Все имплантанты должны быть стерильны, иначе они станут источником гнойно-септических процессов.

Этапы обработки хирургического инструментария. — КиберПедия

ü 1 этап.Дезинфекция.

Цель:Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н2О2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап.Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель:Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-500С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t0 80-850С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап.Стерилизация.

Цель:Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 1800С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н2О2 на 180 мин. при 500С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 200С.

v 2% сайдекс на 4-10 ч.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:можно проверить только бактериологическим путём.

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий:Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.


ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85:1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата:можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов.Меняют цвет. При закладке светлые – 1200С слегка песочного цвета – 1320С светло-коричневые – 1800С тёмно-коричневые (почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ.Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 1200С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевинапри 1320С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 1800С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt0плавления.


Ø С помощью термо-временных индикаторов.Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя.М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача.М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. — Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя.М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так, чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача.М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. — Латексные.

ü Опудренные. — Неопудренные.

ü Диагностические. — Хирургические.

ü Стерильные. — Нестерильные.

Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000.Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.

ü Бланизол.Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ.Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол.Кожный антисептик.

ü Хлорапин.Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин.Кожный антисептик. Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение:Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя.

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню. Развернуть в 1 слой. Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола, но не касалась пола.

ü 2 простынь в 2 слоя. Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см.

ü 3 простынь в 2 слоя. Так, чтобы свисала с края стола на 10 см.

ü 4 простынь так же как 3.

ü 5 простынь в 1 слой. Так, чтобы перекрыла край 2 простыни.

ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.

ü Поднимаемпростынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе. Последнее направление на себя.Кладёмкорнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3. Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапкикладём кольцами друг к другу.

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем. Берём корнцангииперекрываем.

Этапы обработки хирургических инструментов

Этапы обработки хирургических инструментов

1. Дезинфекция

2. Предстерилизационная очистка (ПСО)

3. Стерилизация

Дезинфекция хирургических инструментов (ХИ)

Проведение дезинфекции инструментов сразу после их использования направлено на профилактику профессионального инфицирования медицинского персонала и на профилактику внутрибольничного инфицирования пациентов.

В основном используются два метода дезинфекции изделий медицинского назначения (ИМН):

• физический

• химический

Предварительная очистка инструментов

При применении физических методов дезинфекции обязательно проводят предварительное удаление органических загрязнений (биологических жидкостей, слизь, гной и т.д.). Предварительная очистка применяется только в случаях, когда дезинфектант может фиксировать белковые загрязнения, что затрудняет процесс дезинфекции, например, после использования эндоскопической техники. Для этого применяют альдегидсодержащие «Глутарал», «Колдспор», «Сайдекс» или формалинсодержащие дезинфектанты.

Сразу же после применения инструмента его погружают в емкость с дезраствором таким образом, чтобы он покрывал все инструменты, сложные инструменты разбирают, замки раскрывают. Каналы и полости должны быть заполнены дезраствором так, чтобы в них не содержалось пузырьков воздуха.

Физический метод дезинфекции состоит в использовании физических факторов, в основном высоких температур и сухого и горячего воздуха (при 120 оС), насыщенный пар при избыточном давлении (1,5 атм.).

Химический метод дезинфекции является наиболее распространенным в ЛПУ. Сущность метода состоит в погружении в дез.раствор использованных инструментов. Дезинфекция проводится обязательно в емкостях с крышками. Емкости должны быть из легко обрабатываемых материалов и без повреждения — пластмассовые, эмалированные. По окончании дезинфекции все изделия тщательно промывают проточной водой, строго соблюдая время отмывки, рекомендуемое в методических указаниях на каждое дезинфицирующее средство. Если не указано время промывания, то после основной дезинфекции инструменты ополаскивают проточной водой 3-10 минут, дистиллированной водой – 0,5 минут.

 

Предстерилизационная обработка

Предстерилизационная обработка хир. инструментария — проводится после дезинфекции. Ее виды:

А. Ручная — выполняется в такой последовательности:

1. Ополаскивание под проточной водой — 0,5 минут.

2. Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия на 15 минут при температуре 50 оС. Используются средства, указанные для дезинфекции в смеси с раствором перекиси водорода. БИОЛОТ применяется без перекиси водорода.

3. Мойка в моющем растворе с помощью ерша или ватно-марлевого тампона – 0,5 минут.

4. Ополаскивание проточной водой после мойки «Прогрессом» — не менее 5 минут. Биолотом — 3 минуты. Астрой, Логосом, Айной — 10 минут.

Б. Механизированная мойка производится в специализированных моющих машинах по инструкции.

В. Ультразвуковая предстерилизационная очистка (УЗО) выполняется в специальной камере, заполненной моющим раствором, через которую пропускают ультразвук.

В настоящее время существует ряд средств, позволяющих дезинфекцию и предстерилизационную обработку инструментов объединить в один этап обработки.

Режимы обработки представлены в таблице №2.

 



Таблица 2. Дезинфекция и предстерилизационная очистка ХИ при совмещении в один этап.

Средство Материал ХИ Замачивание в моющем растворе Время мойки Ополаскивание Примечание
Концентрация Экспозиция (мин.) Температура Проточной водой Дистиллированной водой
Аламинол Металл, пластмасса, стекло.
Резина

 
 

 
 
не менее 18
 
0,5
 
 
1,0
3,0
 
 
3,0
 
0,5
 
 
0,5
Срок годности рабочих растворов — 10 суток
Лизетол АФ Металл, Стекло, резина, полимеры
 






не менее 18 0,5 0,5 Рабочие растворы стабильны 1 сутки
Септодор — Форте Металл, резина, стекло 0,4 не менее 18 1,0 3,0 0,5 Срок годности — 10 суток
 
Септабик -Форте Металл, стекло, пластмасса, Резина
 
1.0
1,0
60 120 не менее 18 1,0 3,0 0,5 Срок годности — 5 дней
Дюльбак Стекло, пластмасса, резина, металл
 
не менее 18 0,5 0,5 Срок годности — 1 сутки
Виркон Эндоскопы не менее 18 0,5 — 1 0.5 0,5% — однократно.
1-2% — многократно
1 сутки
ЛОТОС, и др. моющие средства Стекло, металл, резина, полимеры
 
1,5 1,5 Кипячение 0,5
 
 
0,5  
Натрий двууглекислый Стекло, металл, резина, полимеры
 
2,0 Кипячение 0,5 0,5  
Пероксимед Стекло, пластмасса, резина, металл коррозионностойкий 0,5
 
0,5
 
Срок хранения растворов — 5 суток

 

Контроль качества предстерилизационной обработки ХИ

А. На выявление остатков крови могут быть выполнены следующие пробы:

1. Бензидиновая -1 модификация: 0,5% и 1% р-р соляно-кислого бензидина в дистиллированной воде смешивают с равным количеством 3% перекиси водорода;

Бензидиновая -2 модификация: в смесь 5 мл 50% уксусной кислоты и 0,025 сернокислого бензидина добавляют 5 мл 3% перекиси водорода.

2. Амидопириновая: смешивают 2-3 мл 5% спиртового раствора амидопирина, и по 2-3 капли 30% уксусной кислоты и 3% перекиси водорода. 2-3 капли смеси из вышеперечисленных наносят на контролируемое изделие. При наличии остатков крови появляется сине-зеленое окрашивание.

Б. На выявление остатков моющих средств проводится фенолфталеиновая проба:

1-2 капли 1% раствора фенолфталеина наносят на изделие. Розовое окрашивание раствора говорит о наличии моющих средств.

Изделия, дающие положительную пробу на кровь или на моющие средства, обрабатываются повторно до получения отрицательного результата.

Стерилизация хирургического инструментария.

Стерилизация проводится только после дезинфекции, предстерилизационной обработки и высушивания инструментов. Применяют следующие способы.

1. Прокаливание — нагревание в сухом воздухе в специальных герметических камерах, которые называются «сухожаровые шкафы». Инструменты собирают, замки их замыкают. Если стерилизацию проводят непосредственно в операционном блоке рядом с операционной, то инструменты раскладывают в один слой на открытых лотках. Если после стерилизации инструменты необходимо транспортировать в другие помещения или хранить какое-то время, то их помещают или в крафт-пакеты, или в биксы, или другие плотные термоустойчивые емкости и герметизируют. Крафт-пакет представляет собой конверт из неокрашенной плотной бумаги, склеенный с помощью крахмального клея. Пакет может быть использован повторно, но не более 5 раз. Пакет не должен иметь ни механических повреждений, ни следов загрязнения биологическими жидкостями. Инструменты выдерживают 60 минут при температуре 180 оС, достают из шкафа только после остывания.

 

2. Автоклавирование (паровой) — нагревание в насыщенном водяном паре под повышенным давлением. Предварительно инструменты собирают, замки их замыкают, помещают или в биксы, или раскладывают на металлические решетки в один слой и потом упаковывают в двойную бязевую ткань, выдерживают 20 минут при температуре 132 оС. под давлением 2 атмосферы. Извлекают из автоклава только после снижения давления до нормального и неполного остывания.

 

3. Химический способ используется только для стерилизации эндоскопической операционной техники. Состоит из следующих этапов:

1) Отмыв с применением тканевых салфеток, а из каналов — путем подачи воды и воздуха.

2) Предварительная очистка специальными ферментными (энзимными) препаратами без совмещения с дез.средствами, способствующими фиксации белков, и тем самым вторичному загрязнению эндоскопов.

3) Промывание чистой водой, тщательное удаление воды и осушение каналов.

4) Погружение в растворы химических веществ, которые называют «Дезинфектанты» — созданные а основе альдегидов.

5) Отмывание эндоскопов от остатков дез.средств дистиллированной водой в течение 5-10 минут, осушение каналов.

6) Стерилизация проводится в емкостях с герметическими крышками в специально отведенных для этого помещениях, достаточно удаленных от места постоянного пребывания людей. При работе необходимо использовать средства защиты, так как большинство стерлянтов являются агрессивными по отношению к человеку, могут вызвать интоксикацию, отравление, аллергические реакции, даже повреждения слизистых и кожи. После стерилизации стерлянт удаляют с поверхностей инструментов дистиллированной водой методом погружения на 5 минут каждый раз последовательно в две емкости, после стерилизации и промывания инструменты или используют, или упаковывают в стерильные материалы или емкости для хранения и транспортировки.

Используют следующие стерлянты и режимы стерилизации:

Перекись водорода 6% — 360 минут при 18 оС, 180 минут при температуре раствора 50 оС. После использования перекиси отмывание не производится.

Сайдекс — в экспозиции 10 часов. Стерлянт может быть использован многократно — до 10 раз. Изделия, прошедшие стерилизацию таким способом, сохраняют стерильность 3 суток.

Анолит (раствор гипохлорита натрия с кислотностью среды 1,6 – 2,6) — 30 минут. Раствор не вызывает аллергию, но токсичен при вдыхании его паров, вызывает коррозию металлического инструментария, агрессивен и для кожи. Он дешев, вырабатывается из водопроводной воды с добавлением хлористого натрия. Срок годности раствора — 2 дня, хотя сохраняет активность до 30 дней. Для стерилизации его можно использовать в исключительных случаях.

4. Промышленный способ — исполняется вне лечебно-профилактических учреждений, на специальном оборудовании, инструментов, собранных и упакованных как одноразовые изделия. Они проходят такую стерилизацию:

а) газовую (агентом стерилизующим является окись этилена, которая является очень взрывоопасной),

б) лучевую (агентом является ионизирующее излучение).

Хранение хирургического инструментария

После проведенной дезинфекции, предстерилизационной обработки, полного высушивания хирургические инструменты хранятся в собранном виде с замкнутыми замками в шкафах, поверхности которых подвергаются влажной обработке дезинфектантами, и эти шкафы не применяют для других целей. Ампутационные ножи хранятся в сейфе старшей медсестры операционного отделения.

Одноразовые изделия в стерильной упаковке с действующим сроком годности можно сохранять в коробках в сухом месте при комнатной температуре.

Инструменты, прошедшие стерилизацию хранятся только в «чистой зоне» операционной.

• в шторчатых биксах — не более 3 дней

• в микробиологических биксах — 20 дней

• в скрепленных крафт-пакетах — 3 дня

• в склеенных крафт-пакетах — 10 дней

• в бумажных пластиковых пакетах — 6 месяцев

• в бязевых мешках двойных со специальной пропиткой — 20 дней

• в обычных бязевых мешках — 3 дня

Режущий инструментарий, не подвергавшийся тепловой обработке, предназначенный для использования в любое время, хранят в прозрачных, хотя бы с одной стороны, герметически закрытых, химически инертных емкостях, заполненных этиловым спиртом 96%. Например, в лотке, закрытом сверху стеклянной пластиной. Слой над поверхностью инструментов должен быть не менее 2 см.

 

 


Дата добавления: 2015-07-12; просмотров: 11353 | Нарушение авторских прав


Читайте в этой же книге: Протокол №_______ | ОРГАНИЗАЦИОННО-МЕТОДИЧЕСКИЙ БЛОК | ИНФОРМАЦИОННЫЙ БЛОК | Основные принципы | Помощь врачу при наложении швов на кожу. | Тема 1.1. | Тема 1.2. | Занятие 1. | Терминологический диктант |


mybiblioteka.su — 2015-2020 год. (0.011 сек.)

Методы обработки хирургического инструментария

Цель 

Оценка эффективности применения различных дезинфицирующих средств для обработки хирургического инструментария.

Описание 

Медицинская помощь сопряжена с необходимостью проведения многочисленных манипуляций и при этом не всегда есть возможность использовать одноразовый медицинский инструментарий. Часто приходится применять многоразовые хирургические инструменты и обрабатывать их, подвергая химическому и физическому воздействию.

Обработка инструментов является неотъемлемой частью работы любого медицинского учреждения. Благодаря этому достигается полная ликвидация болезнетворных микроорганизмов. В результате некачественной обработки значительно возрастает риск развития инфекционных заболеваний, в том числе и гнойно-септических, как среди пациентов, так и среди сотрудников медицинских учреждений.

Для достижения поставленной цели необходимо решить ряд задач:

• Изучить специальную литературу, посвящённую применению различных дезинфицирующих средств для обработки хирургического инструментария в лечебных учреждениях. 

• Отобрать соответствующие вещества и методики, наиболее часто используемые в условиях современного стационара, а также в других учреждениях, оказывающих медицинские услуги (косметические кабинеты и пр.).

• Оценить «микробный пейзаж» инструментов после контакта с тканями пациента.

• Сравнить эффективность и методику применения различных дезинфицирующих средств при обработке хирургического инструментария перед стерилизацией.


Поиск оптимальных растворов для предстерилизационной обработки инструментов является неотъемлемой частью работы медицинских учреждений для подбора наиболее эффективных и безопасных для каждого, отдельно взятого случая.

В связи с тем, что «микробный пейзаж» постоянно изменяется, всё больше и больше бактерий становятся устойчивыми к различным растворам, применяющимся для обработки инструментария, появляется необходимость в разработке современных средств для борьбы с ними.

Этапы работы:

1. Оценка «микробного пейзажа» хирургического инструментария после контакта с тканями пациента. 

Забор материала для микробиологического анализа проводился с поверхности следующих инструментов: иглодержателя, ножниц, скальпеля, пинцета, корнцанга, шпателя. Материал был погружён в пробирки с подготовленной средой, предоставленной лабораторией. Затем инструменты были помещены в дезинфицирующие средства (0,1-процентный раствор мирамистина, 0,05-процентный раствор хлоргексидина 0,1-процентный раствор аминаз +). Через 60 минут проведён контрольный забор материала с тех же инструментов и погружён в пробирки с той же транспортной средой. Весь материал доставлен в бактериологическую лабораторию.

2. Проведение микробиологического анализа.

Все манипуляции, связанные с посевом и выделением микробных культур, производились в ламинарном боксе.

3. Оценка полученных результатов.

Оснащение и оборудование, использованное в работе:

• дезинфицирующие средства: 0,1-процентный раствор мирамистина, 

0,05-процентный раствор хлоргексидина, 0,1-процентный раствор аминаз +, 

• хирургический инструментарий,

• чашки Петри, 

• пробирки с тиогликолевой и транспортной средой, 

• стерильные микробиологические петли, 

• ламинарный бокс, 

• микроскоп, 

• термостат.

Результаты

В результате проведённого исследования экспериментально установлено, что обработка 0,1-процентным раствором мирамистина,  0,1-процентным раствором аминаз +, 0,05-процентным раствором хлоргексидина подавляет рост бактерий рода Staphylococcus. При этом рост бактерий Pseudomonas aeruginosa подавляется только 0,1-процентным раствором аминаз +. Следовательно, 0,1-процентный раствор аминаз + является наиболее эффективным для обработки хирургического инструментария из тех, что представлены в работе.

Перспективы использования результатов работы

Результаты работы могут быть полезны как ученикам медицинских классов, так и студентам-медикам, медицинскому персоналу, проводящему обработку инструментов.

Сотрудничество с организацией при создании работы

Медицинский центр «Клиника Семейная» и медицинский центр диагностики, профилактики и лечения «ЭндоМедЛаб» 

Особое мнение

«При осуществлении данной работы я узнал очень много интересной информации, которая понадобится мне в будущем, научился проводить микробиологический анализ, сравнительную характеристику полученных результатов, получил опыт в написании исследовательской работы. Всё это я смог воплотить благодаря проекту «Медицинский класс в московской школе». Надеюсь, что это только начало. 

На конференции «Старт в медицину» видел много достойных работ, интересных мастер-классов. Это настоящий старт в будущее, в медицину! Хочу выразить благодарность за предоставленную возможность участвовать 

в конференции»

 

Предстерилизационная обработка хирургических инструментов и других изделий медицинского назначения.

Цель: Предстерилизационная обработкасостоит из двух этапов – дезинфекции и очистки. Целью дезинфекции является уничтожение вегетативных форм микроорганизмов на поверхности изделий медицинского назначения. Очистка проводится для удаления белковых, жировых загрязнений, остатков микроорганизмов и лекарственных препаратов, снижения риска пирогенных реакций.

Показания: подготовка к стерилизации изделий медицинского назначения.

· защитная одежда – халат, шапочка, маска или респиратор, защитные очки, влагостойкий фартук, перчатки из плотной резины, сменная обувь,

· закрывающиеся емкости с соответствующей маркировкой, водный термометр, мерные емкости или дозаторы, кипятильники,

· дезинфекционные и моющие средства для предстерилизационной дезинфекции и очистки, разрешенные к применению в РФ в установленном законом порядке,

· режимы дезинфекции (концентрация раствора и экспозиция) и способ выбираются в зависимости от вида изделия,

· дезинфекция кипячением применяется для изделий из стекла, металла, керамики, резины,

· химическая дезинфекция применяется для изделий из стекла, металла, керамики, резины и полимерных материалов,

· при дезинфекции кипячением в 2% содовом растворе и при использовании некоторых дезинфицирующих средств дезинфекция и очистка могут объединяться в один процесс.

1. Приказ № 408 МЗ СССР от 12 июля 1989 года «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

2. Приказ № 720 МЗ СССР от 31 июля 1978 года « Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».

3. Руководство по организации работы перевязочного кабинета лечебно-профилактического учреждения. Меры профилактики внутрибольничных инфекций и профессиональных заражений медицинских работников. Утверждено зам. председателя комитета по здравоохранению администрации Мурманской области 2 июня 1995 года В.В. Алексеевым.

4. Справочник операционной и перевязочной медсестры. Учебное пособие. Под ред. А.Я.Гриненко. Санкт-Петербург, 1999.

5. Стандарты практической деятельности медицинской сестры. Межрегиональная ассоциация медицинских сестер. Санкт-Петербург, 1999.

Действия. Обоснование.
Дезинфекция.
1. Надеть защитную одежду. Средства для дезинфекции и очистки могут раздражать и повреждать кожу и слизистые оболочки, вызывать отравление.
2. Подготовить плотно закрывающиеся емкости со средствами для дезинфекции и очистки и провести их маркировку. Охрана окружающей среды от токсичных испарений.
3. При не одномоментном поступлении инструментария (например: в перевязочном кабинете) или при его массивном загрязнении кровью или гноем в процессе работы инструментарий собирается в емкость с 2% раствором моющего средства, разрешенного к применению в РФ. Внутренние каналы и полости должны быть полностью заполнены раствором. После накопления инструментария переложить его с помощью пинцета или корнцанга в емкость для последующей дезинфекции. Накопление инструментария проводится при его не одномоментном поступлении для соблюдения режима дезинфекции.
При сильном загрязнении изделий может снижаться эффективность дальнейшей дезинфекции. Использование 2% моющего раствора не обеспечивает дезинфекции. Промывать или перекладывать изделия можно только с помощью инструментария, не погружая руки в перчатках в раствор.
4. Промывные воды с остатками крови или гноя засыпаются сухой хлорной
известью (из расчета-200 г на 1 литр) или сухим нейтральным гипохлоридом
кальция (100 г на 1 литр) на 1 час или обеззараживаются кипячением в течении
30 минут с момента закипания, после чего выливаются в канализацию.
Охрана окружающей среды, обеспечение инфекционной безопасности пациентов и персонала.
5. Инструментарий без видимых загрязнений сразу подвергается химической дезинфекции. Концентрация раствора и экспозиция дезинфекции определяются приказом № 408 и методическими указаниями по применению дезинфицирующих средств:
· погружение на 60 минут в 3% раствор хлорамина,
· погружение на 60 минут в 6% раствор перекиси водорода,
· погружение на 60 минут в 6% раствор перекиси водорода с 0,5% моющим средством (на 1 л 6% раствора перекиси водорода добавляют 5 г моющего средства),
· погружение на 60 минут в 4% раствор формалина,
· погружение на 60 минут в 0,5% раствор дезоксона-1,
· погружение на 10 минут в 2% раствор препарата «Виркон » для изделий из металла, на 30 минут-изделий из стекла и резины,
· погружение на 15 минут в рабочий раствор препарата «Сайдекс» .
 
Антимикробный эффект дезинфицирующего средства зависит от концентрации и времени действия химического вещества.
6. При замачивании следить за тем, чтобы все инструменты были полностью погружены в раствор. Для дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, раствор дез. средства объемом 10-15 мл пропускают через канал для удаления остатков крови и гноя, после чего изделие полностью погружают в раствор. Полное погружение обеспечивает непосредственный контакт всей поверхности предмета с химическим веществом.
7. Все дез. растворы, кроме препаратов Сайдекс, Лизоформин – 3000, Виркон, Лизетол, используются однократно. В соответствии с приказом № 408 и методическими указаниями по применению дезинфицирующих средств.
8. После окончания дезинфекции изделия промыть проточной водой до исчезновения запаха дезинфектанта. Для отмывания изделий от химических веществ, для обеспечения эффективности последующей очистки и стерилизации.
9. При дезинфекции кипячением проводится
· кипячение в дистиллированной воде 30 минут,
· кипячением в 2% содовом растворе 15 минут с момента закипания.
Обеспечение гибели вегетативных форм микроорганизмов.
10. Далее изделия подвергаются предстерилизационной очистке на рабочем месте или в ЦСО.
 
 
Предстерилизационная очистка ( в соответствии с приказом № 408) .
1. Приготовить моющий раствор, содержащий 0,5 % перекиси водорода и 0,5% моющего средства. Подогреть его до 50 градусов. Изделия замочить в моющем растворе при полном погружении на 15 минут и закрыть крышку емкости.
В процессе замачивания температура раствора не поддерживается.
Обеспечение эффективности действия раствора. Обеспечение необходимого контакта изделий с моющим раствором, предотвращения испарения раствора и загрязнения окружающей среды.
 
2. Моющий раствор можно подогревать в течение 1 суток не более 6 раз, если он не изменил свою окраску. Обеспечение эффективности действия раствора.
3. Через 15 минут инструментарий тщательно вымыть в этом моющем растворе при помощи ершей или ватно-марлевых тампонов (каждое изделие не менее 0,5 минуты), особенно в местах соединения стекла с металлом, замках инструментов, в просветах каналов и канюлях игл.
Так как инструментарий обрабатывается ершами после его дезинфекции, то дополнительной дезинфекции ершей после мыться инструментария не требуется. В конце рабочего дня ерши промываются проточной водой и хранятся в сухом виде. Ватно-марлевые тампоны используют однократно, после использования — выбрасываются без дополнительной дезинфекции.
Обеспечение тщательной очистки изделий.
4. После очистки в моющем растворе инструментарий промыть под проточной водой при применении:
· СМС «Прогресс»- не менее 5 минут,
· «Биолот»- не менее 3 минут,
· «Астра», «Лотос», «Лотос-автомат» — не менее 10 минут,
· 2% соды — не менее 5 минут.
Удаление токсических веществ с поверхности обрабатываемых изделий.
5.3атем ополоснуть изделия в дистиллированной воде в течение не менее 0,5 минуты для обессоливания. Удаление солей с поверхности изделий предупреждает образование на них пятен и налетов.
6. Просушить изделия в сушильном шкафу при температуре 85 град. или на открытом воздухе до полного исчезновения влаги. На сухих, чистых и гладких поверхностях резко замедляется рост микроорганизмов.
 
7.Уложить или упаковать изделия для последующей стерилизации. Конечным этапом обработки хирургического инструментария
8. При использовании дезинфекции кипячением в 2% растворе питьевой соды можно совместить дезинфекцию и предстерилизационную очистку в одном растворе, для чего:
· полностью погрузить изделия в 2% раствор питьевой соды и кипятить 15 минут,
· после охлаждения раствора мыть каждое изделие при помощи ватно-марлевых тампонов или ершей в течение 0,5 минуты,
· промыть под проточной водой не менее 5 минут,
· ополоснуть изделия в дистиллированной воде в течение не менее 0,5 минуты для обессоливания,
· просушить изделия в сушильном шкафу или на воздухе.
В соответствии с приказом № 408.
9. При использовании современных средств (например:Септодор- форте, Лизетол АФ и др.), предназначенных одновременно для дезинфекции и предстерилизационной очистки, необходимо руководствоваться методическими указаниями по их применению. Основными этапами обработки являются:
· замачивание изделий в растворе,
· мойка каждого изделия в растворе,
· ополаскивание проточной водой,
· ополаскивание дистиллированной водой.
Обеспечение очистки изделий, совмещенной с дезинфекцией.
10.Проверка качества предстерилизационной очистки проводится путем постановки проб на наличие остатков крови (амидопириновая и азопирамовая пробы) и полноту отмывания изделий от щелочных компонентов моющих средств (фенолфталеиновая проба). Ежедневному контролю подлежит 1% от каждого вида изделий, обработанных за сутки, но не менее 3-5 единиц. Контроль качества предстерилизационной обработки.

Дезинфекция медицинских и парикмахерских инструментов

  1. Главная
  2. Дезинфекция
  3. Дезинфекция инструментов

Дезинфекция инструментов – специфическая сфера обслуживания, необходимая некоторым профессиональным областям. Инструменты, напрямую контактирующие с человеческим телом во время тех или иных косметологических процедур или лечения, подлежат тщательной стерилизации.

Строго обязательно выполнять обеззараживание следующих видов инструментов:

  • Медицинских (стоматологических, хирургических и других инструментов)
  • Парикмахерских инструментов
  • Маникюрных инструментов

Обслуживание следующего посетителя тем же профессиональным оборудованием возможно только после того, как мастером будет выполнена дезинфекция инструментов.

Хирургические инструменты

Ответственность за готовность оборудования к проведению операции лежит на ассистентах хирурга. Строгое соблюдение рекомендаций по эксплуатации хирургических принадлежностей и следование советам по их стерилизации, указанным в инструкции, позволит надолго сохранить их в рабочем состоянии, а также соблюсти все требования к их стерильности.

В стенах больницы профессиональная дезинфекция хирургических инструментов может проводиться по двум базовым схемам.

1. Сразу после врачебных манипуляций предметы собираются в кассету и погружаются в емкость с обеззараживающим раствором. После этого они поочередно промываются раствором для обеззараживания, проточной водой, дистиллированной водой, осматриваются на предмет остатков загрязнений (при их наличии процедура повторяется) и сушатся в сухожаровом шкафу. Контроль качества очистки выполняется путем постановки азопирамовой пробы. Заключительный этап – стерилизация или автоклавирование.

2. Дезинфекция хирургических инструментов вторым методом отличается от первого тем, что первичная стерилизация выполняется в ультразвуковой мойке, заполненной обеззараживающим раствором. В остальном последовательность манипуляций совпадает.

Помимо обеззараживающего ухода за инвентарем требуется и более бдительный контроль за состоянием помещения, то есть регулярная комплексная газопаровая обработка предметов интерьера, стен. Эти мероприятия позволяют полностью привести кабинет в порядок, тщательно стерилизовать его. Для достижения максимальной очистки от микробов и инфекций зачастую привлекаются профессиональные клининговые или санитарно-эпидемиологические службы.

Плановая и постоянная дезинфекция хирургических инструментов – залог безопасности ваших пациентов, а значит, и гарант вашего спокойствия.

Таким образом, остановить увеличение числа заболевших гепатитом, ВИЧ-инфекцией и другими опасными заболеваниями поможет тщательное отношение персонала к своим профессиональным обязанностям. Больница, поликлиника – это всегда зона повышенной опасности, так как на ее территории сконцентрированы опасные патогенные микроорганизмы. Постоянная и скрупулезная дезинфекция медицинских инструментов – эффективный метод для уничтожения бактерий, микробов и вирусов.

Дезинфекция парикмахерских инструментов

К сожалению лишь небольшой процент салонов красоты умеет правильно выполнять стерилизацию рабочего оборудования, а главное – не ленится это делать. Если бы их клиенты узнали об условиях, в которых содержатся инструменты, о регулярности, с которой выполняется дезинфекция парикмахерских инструментов, они бы пришли в откровенный ужас. Помимо невыполнения своих прямых обязанностей – уход за оборудованием и принадлежностями мастеров, не все салоны склонны следить за соблюдением санитарных норм в стенах помещения.

Многие салоны нашли отличный выход в привлечении к работе профессиональных компаний, специализирующихся на обеззараживании помещений. У такого подхода к обслуживанию салона есть множество преимуществ. Во-первых, к санитарной обработке привлекаются специалисты, а мастера занимаются своим прямым делом. Конечно, это не снимает с мастера выполнения его прямой обязанности, которой является дезинфекция парикмахерских инструментов после каждого клиента. Нормы выполнения обеззараживания четко прописаны в соответствующих СанПиН.

Процесс обеззараживания

Правильная дезинфекция состоит из нескольких основных этапов:

  • 1. Механическая очистка – удаление грязи с помощью щетки и воды или специальных обеззараживающих растворов, а также ультразвуковой ванны.
  • 2. Второй этап обработка в стерилизаторе.

Из-за упавшей на пол расчески, в последствии необработанной мастером, салон может потерять ни одного клиента. Так как данная ситуация – наглядно демонстрирует отношение персонала к своей работе.

Качественная дезинфекция парикмахерского инструмента – визитная карточка хорошего салона, благодаря которой салон сможет держать марку и привлекать все новых довольных клиентов.

Профессиональная дезинфекция медицинских инструментов

Врач – самая серьезная и ответственная профессия. Причем, ответственность за успешно выполненную работу врача практически любой специализации лежит не только на нем самом, но и на медицинском персонале, который помогает ему качественно обслуживать пациентов.

Главная жизненно важная работа помощников специалиста – тщательная дезинфекция мед инструментов. Необеззараженный инвентарь врачебного кабинета может вызвать широкий спектр заболеваний от легкого ОРВИ до ВИЧ-инфекции, все зависит от путей передачи инфекции (контактный, через кровь). Современные методы стерилизации позволяют устранить любые патогенные микроорганизмы, очистить инструменты от бактерицидных и вирусных инфекций.

Как считают службы санитарно-эпидемиологического надзора, именно с безответственным отношением обслуживающего персонала поликлиники связано увеличение случаев внутрибольничного инфицирования. Поэтому дезинфекция должна проводиться под контролем ответственных лиц.

Зачем нужна обработка мед инструментов?

Даже при банальном визите к терапевту никто не застрахован от того, что после посещения врача он заболеет ОРВИ, гриппом, ОРЗ. Эти заболевания передаются воздушно-капельным путем, поэтому предотвратить их практически невозможно. В стенах поликлиники ежедневно находятся тысячи заболевших, и даже самые тщательные меры не помогут полностью устранить опасность распространения инфекций.

Для уменьшения рисков в терапевтических кабинетах широко используется одноразовые инструменты для осмотра пациентов. Правда, это возможно не всегда. В случаях, когда принадлежность невозможно заменить одноразовым эквивалентом желательна предварительная дезинфекция мед инструментов. Методы обеззараживания могут быть любыми – обработка спиртовой салфеткой, стерилизатор.

Стоматологические инструментов

Посещение стоматолога – не менее ответственное мероприятие. Не зависимо от вида работ, которые будет выполнять врач (лечение, удаление, протезирование), велика вероятность повредить слизистую оболочку рта и принять в себя инфекцию. Конечно, зубоврачебный кабинет невозможно оснастить сразу десятком профессионально оборудованных мест для лечения. Снизить риски передачи заболевания от одного пациента другому поможет качественная дезинфекция стоматологических инструментов.

После каждого клиента обязательно выполняется стерилизация фрезов, боров и полиров, контактировавших с ротовой полостью пациента. Стоит отметить, что технологически инвентарь зубного врача очень усложнился, большинство наконечников для лечения оснащены воздуховодами и световодами, поэтому для их очистки можно применять не все методы обеззараживания. Например, не всегда допустима дезинфекция стоматологических инструментов методом погружения в обеззараживающий раствор, так как это может привести к их порче.

Обязательно выполняется и внешняя очистка оборудования, с поверхностей удаляются органические вещества и лекарственные средства, то есть выполняется предстерилизационная очистка. После чего помощник врача может приступать к процедуре обеззараживания. Правильный выбор обеззараживающего средства поможет значительно облегчить жизнь персонала, объединив два этапа стерилизации (предстерилизационную очистку и непосредственно обеззараживание) в один.

Качественная дезинфекция стоматологических инструментов поможет предотвратить перекрестное инфицирование во время зубоврачебных манипуляций.

Салонная дезинфекция маникюрных инструментов

Выполнение маникюра – это не только творческий полет фантазии и аккуратность, но и высокая ответственности. Практически сопоставимая с ответственностью врача перед пациентом. Именно поэтому каждая женщина, как правило, очень педантично подходит к выбору мастера, которому она сможет доверить красоту своих рук и свое здоровье. Для того, чтобы не подвергать рискам здоровье своего клиента, каждым мастером должна выполняться регулярная и профессиональная дезинфекция маникюрных инструментов.

Пути инфицирования

Тонкую и нежную кожу рук очень легко поранить, заусенцы, небольшие повреждения кутикулы открывают инфекциям легкий доступ в кровь. Конечно, при обращении в маникюрный кабинет риски получить заражение многократно возрастают, но только в том случае, если мастером не была выполнена дезинфекция инструментов для маникюра. Каждый салон, предлагающий такую услугу как маникюр, обязательно должен быть оборудован стерилизатором. После каждого посетителя мастер должен делать небольшой перерыв и тщательно стерилизовать маникюрные приспособления, и только после этого он может приступать к обслуживанию следующего клиента.

Методы салонной стерилизации

Дезинфекция маникюрных инструментов в профессиональных салонах красоты должна проводиться в несколько этапов:

  • 1. Поверхностная стерилизация – уничтожение микробов и возбудителей инфекций с поверхности приборов.
  • 2. Предстерилизационная очистка – удаление потожировых следов и остатков лекарственных и косметических средств.
  • 3. Непосредственно дезинфекция маникюрных инструментов с помощью профессионального или полупрофессионального оборудования.
  • 4. Стерилизация рук мастера и рук клиента с помощью обеззараживающих растворов.

В некоторых случаях эффективные современные противомикробные средства позволяют первый и второй этап объединить в один. Обычно такой эффект достигается методом погружения инструментов в стерилизационный раствор на время, которое указано в инструкции к препарату.

Отметим, что добросовестной стерилизационной обработке должны подвергаться следующие принадлежности маникюрного кабинета: металлические инструменты, пилки и баффы, щетки, стол, ванночка и валик.

Дезинфекция для маникюра, выполненная таким образом, позволяет полностью очистить приспособления от бактерий и инфекций.

Салон красоты

Потребность в красоте – вечная и непреходящая стала активным рычагом для повсеместного развития и процветания салонов красоты разного уровня. Каждая женщина, направляясь в салон, идет туда не за новой прической, стилем или цветом волос, а именно за вечной красотой и вечной молодостью. Именно поэтому для того, чтобы салон мог успешно конкурировать на рынке этих услуг, необходимо тщательно продумать систему обслуживания клиентов, предусмотреть все риски, которые могут больно ударить по репутации. Одним из таких рисков для салонов, предоставляющих услуги по моделированию прическе, стрижке и покраске волос, является неправильная дезинфекция парикмахерского инструмента или ее отсутствие.

Способы и средства обеззараживания инструментов

В стоматологических поликлиниках и медицинских учреждениях дезинфекция выполнятся обычно методами кипячения, погружения в раствор хлорамина, перекиси водорода или 90% спирта, есть и другие более специфические средства для обеззараживания инструментария врача. Хорошие результаты приносит паровая стерилизация, пар получают из растворов, в которые добавлены различные профессиональные дезинфектанты, поэтому он эффективно удаляет всю патогенную микрофлору с поверхностей.

Помимо того, что дезинфекция должна выполняться всякий раз после того, как они были использованы, необходимо регулярно проводить более тщательную стерилизацию с помощью противомикробных растворов. Это одинаково актуально и для больничных учреждений, и для салонов красоты, особенно частных. Отсутствие таких системных процедур (например, стерилизационной обработки оборудования, тщательной газопаровой обработки или окуривания поверхностей) может привести к тому, что ваша профессиональная зона превратиться в рассадник микробов и инфекций.

Современная обработка инструментов после чистых и гнойных операций.

1. Инструменты после операции
в разобранном виде погружаются в
эмалированный таз с 1% раствором
инкрасепта-И (А) на 2-3 минуты.

2. Затем эти инструменты
перекладываются во второй таз который
также заполнен 1% раствором инкрасепта-И
(А). Экспозиция 30 минут.

3. Через 30 минут эти
инструменты во втором тазу обрабатываются
щетками, ершами (по 1,5 минут на 1 инструмент).

4. Обработанные инструменты
промываются под проточной водой 10 минут.

5. Затем ополаскивают
дистиллированной водой 10 секунд. —

6. Сушат в сухожаровом шкафу
при температуре 80°-90° С,

7. Если инструменты были в
контакте с анаэробной инфекцией, то их
после операции заливают в тазу 6% раствором
пероксида водорода на 1 час, а затем
обрабатывают инкрасептом-И (А) по
вышеуказанной методике.

10. Процесс операции с точки зрения асептики.

11. Подготовка больных к операции. Подготовка и обработка операционного поля. Подготовка операционного поля.

Предварительная подготовка
места предполагаемого разреза
(операционного поля) начинается накануне
операции и включает общую гигиеническую
ванну, душ, смену белья, сбривание волос
сухим способом непосредственно в месте
операционного доступа (при плановых
операциях не ранее 1-2 часов до хирургического
вмешательства, дабы избежать инфицирования
возможных экскориаций и ссадин
госпитальными штаммами патогенных
микроорганизмов). После сбривания волос
кожу протирают 70% раствором спирта.

Наиболее распространенным
способом обработки операционного поля
являются классический метод Филончикова
(1904г.) — Гроссиха (1908г.).В
настоящее время вместо
предложенного в классическом варианте
5% спиртового раствора йода, согласно
приказа № 720, операционное поле
обрабатывается 1% раствором йодоната
или йодопирона. Также возможно применение
0,5% спиртового раствора хлоргексидина
биглюконата с соблюдением той же
последовательности.

Методика.
Перед хирургическим вмешательством на
операционном столе операционное поле
широко смазывают 1% раствором йодоната,
нанося первый мазок в зоне предполагаемого
разреза (I
этап). Непосредственное место операции
изолируют стерильным бельем и вновь
смазывают его 1% раствором йодоната (II
этап). В конце операции перед наложением
(III
этап) и после наложения швов на кожу (IV
этап) ее снова обрабатывают 1% раствором
йодоната.

При непереносимости йода
обработку операционного поля у взрослых
и детей проводят 1% спиртовым раствором
бриллиантового зеленого (метод
Баккала).

Одним из современных
методов
обработки
операционного поля является применение
отечественного антисептика «СЕПТОЦИДА-К».

Загрязненную поверхность
кожи операционного поля очищают водой
с мылом или антисептиком, после чего ее
высушивают стерильной салфеткой и
двукратно обрабатывают салфеткой,
смоченной 5 мл вышеуказанного антисептика
с 30-ти секундным интервалом в течение
5 мин. В конце операции перед наложением
и после наложения швов на кожу рану в
течение 30 секунд смазывают антисептиком.

За рубежом для изоляции
операционного поля широко применяют
специальные стерильные пленки-протекторы,
надежно фиксирующиеся к поверхности
кожи с помощью специальной клеевой
основы.

Медицинское оборудование | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Руководство по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях (2008)

Обеспокоенность по поводу реализации схемы Сполдинга

Одной из проблем реализации вышеупомянутой схемы является чрезмерное упрощение. Например, в схеме не учтены проблемы с переработкой сложного медицинского оборудования, которое часто является термочувствительным, или проблемы инактивации определенных типов инфекционных агентов (например,g., прионы, такие как агент болезни Крейтцфельдта-Якоба [CJD]). Таким образом, в некоторых ситуациях выбор метода дезинфекции остается затруднительным даже после рассмотрения категорий риска для пациентов. Это особенно верно для некоторых медицинских устройств (например, артроскопов, лапароскопов) из критической категории из-за разногласий по поводу того, следует ли их стерилизовать или дезинфицировать на высоком уровне. 28, 86 Термостабильные эндоскопы (например, многие жесткие зонды) следует стерилизовать паром. Некоторые из этих предметов нельзя стерилизовать паром, потому что они чувствительны к нагреванию; Кроме того, стерилизация с использованием этиленоксида (EtO) может занять слишком много времени для повседневного использования пациентами (новые технологии, такие как газовая плазма с перекисью водорода и репроцессор надуксусной кислоты, обеспечивают более короткое время цикла).Однако доказательства того, что стерилизация этих предметов улучшает уход за пациентами за счет снижения риска инфицирования, отсутствуют. 29, 87-91 Многие новые модели этих инструментов могут выдерживать стерилизацию паром, которая для критических предметов является предпочтительным методом.

Другой проблемой при реализации схемы Сполдинга является обработка инструмента в полукритической категории (например, эндоскопа), который будет использоваться вместе с критическим инструментом, контактирующим со стерильными тканями тела.Например, остается ли эндоскоп, используемый для исследования верхних отделов желудочно-кишечного тракта, полукритическим элементом при использовании со стерильными щипцами для биопсии или у пациента, у которого сильное кровотечение из варикозно расширенных вен пищевода? При условии, что достигнута дезинфекция высокого уровня и все микроорганизмы, за исключением спор бактерий, удалены из эндоскопа, устройство не должно представлять риска инфицирования и должно оставаться в полукритической категории. 92-94 Не было зарегистрировано заражение спорообразующими бактериями от должным образом продезинфицированных эндоскопов.

Дополнительная проблема с внедрением системы Сполдинга состоит в том, что оптимальное время контакта для дезинфекции высокого уровня не определено или варьируется в зависимости от профессиональных организаций, что приводит к различным стратегиям дезинфекции различных типов полукритических предметов (например, эндоскопов, аппланационных тонометров, внутриполостные преобразователи, криохирургические инструменты и кольца для установки диафрагмы). До тех пор, пока не будут определены более простые и эффективные альтернативы дезинфекции устройств в клинических условиях, следуя этому руководству, будут разумными другие руководящие принципы CDC 1, 22, 95, 96 и одобренные FDA инструкции для жидких химических стерилизаторов / дезинфицирующих средств высокого уровня.

Начало страницы

Обработка эндоскопов

Врачи используют эндоскопы для диагностики и лечения многочисленных заболеваний. Несмотря на то, что эндоскопы представляют собой ценный диагностический и терапевтический инструмент в современной медицине, а частота инфекций, связанных с их использованием, по сообщениям, очень низка (около 1 из 1,8 миллиона процедур), 97 вспышек заболеваний, связанных со здоровьем, было связано с зараженными эндоскопами, чем к любому другому медицинскому устройству. 6-8, 12, 98 Для предотвращения распространения инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, все термочувствительные эндоскопы (например, эндоскопы желудочно-кишечного тракта, бронхоскопы, назофаригоскопы) необходимо тщательно очищать и, как минимум, подвергать воздействию высоких дезинфекция уровня после каждого использования. Можно ожидать, что дезинфекция высокого уровня уничтожит все микроорганизмы, хотя при большом количестве спор бактерий некоторые из них могут выжить.

Из-за типов полостей тела, в которые они входят, гибкие эндоскопы приобретают высокий уровень микробного загрязнения (бионагрузки) при каждом использовании. 99 Например, бионагрузка, обнаруженная на гибких желудочно-кишечных эндоскопах после использования, составляет 10 5

.

Дезинфекция и стерилизация — Уильям А. Рутала, доктор философии, M.P.H.

Инфекции, связанные со здравоохранением (ИСМП) — это инфекции, вызываемые широким спектром обычных и необычных бактерий, микобактерий, грибов и вирусов во время оказания медицинской помощи. Благодаря достижениям в медицине нуждающимся пациентам была оказана жизненно необходимая помощь, но многие из этих достижений сопряжены с риском ИСМП. В целом в Соединенных Штатах ежегодно проводится 1,7 миллиона HAI, стоимость которых оценивается в 40 миллиардов долларов.Эти инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи, могут быть разрушительными и даже смертельными. По мере того, как наша способность предотвращать ИСМП растет, эти инфекции становятся все более неприемлемыми. Где бы ни оказывалась помощь пациенту, необходимо строгое соблюдение научно обоснованных рекомендаций по профилактике инфекций, чтобы гарантировать, что вся помощь является безопасной.

Ежегодно в США пациентам в больницах проводится 46 миллионов процедур, и около 53,3 миллиона хирургических и нехирургических процедур выполняются во время амбулаторных посещений хирургии.Например, ежегодно проводится не менее 10 миллионов эндоскопий желудочно-кишечного тракта. Каждая из этих процедур включает контакт медицинского устройства или хирургического инструмента со стерильными тканями или слизистыми оболочками пациента. Главный риск всех подобных процедур — занесение инфекции. Несоблюдение правил дезинфекции или стерилизации оборудования несет в себе не только риск, связанный с нарушением барьеров хозяина, но и дополнительный риск передачи от человека к человеку (например, вируса гепатита В) и передачи патогенов, загрязняющих окружающую среду (например,g., Clostridium difficile).

Достижение дезинфекции и стерилизации с использованием дезинфицирующих средств и методов стерилизации имеет важное значение для обеспечения того, чтобы медицинские и хирургические инструменты не передавали инфекционные патогены пациентам. Поскольку нет необходимости стерилизовать все предметы ухода за пациентом, политика в области здравоохранения должна определять, показана ли очистка, дезинфекция или стерилизация, в первую очередь на основе предполагаемого использования предметов.

Множественные исследования во многих странах документально подтвердили несоблюдение установленных руководств по дезинфекции и стерилизации.Несоблюдение научно обоснованных рекомендаций привело к многочисленным вспышкам. Информация на этом веб-сайте поддерживается Уильямом А. Рутала, чтобы помочь профессионалам в области здравоохранения в их разумном выборе и правильном использовании процессов дезинфекции и стерилизации, а также помочь в продвижении систем здравоохранения к устранению ИСМП, связанных с медицинскими и хирургическими инструментами. Он основан на хорошо спланированных исследованиях, оценивающих эффективность (посредством лабораторных исследований) и действенности (посредством клинических исследований) процедур дезинфекции и стерилизации.

.

ссылок | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Руководство по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях (2008)

  1. Гарнер Дж.С., Фаверо МС. Руководство CDC по мытью рук и санитарному контролю в больницах, 1985. Infect. Контроль 1986; 7: 231-43.
  2. Центры по контролю заболеваний. Амбулаторные и стационарные процедуры в США, 1996. Атланта, Джорджия, 1998: 1-39.
  3. Uttley AH, Симпсон, штат Пенсильвания. Аудит дезинфекции бронхоскопа: обзор процедур в Англии и Уэльсе и случаев заражения микобактериями. J. Hosp. Заразить. 1994; 26: 301-8.
  4. Заиди М., Ангуло М., Сифуэнтес-Осорнио Дж. Практика дезинфекции и стерилизации в Мексике. J. Hosp. Заразить. 1995; 31: 25-32.
  5. Маккарти GM, Коваль Дж. Дж., Джон М. А., Макдональд Дж. К.. Практика инфекционного контроля в Канаде: следуют ли стоматологи рекомендациям? J. Can. Вмятина. Доц. 1999; 65: 506-11.
  6. Spach DH, Silverstein FE, Stamm WE. Передача инфекции при эндоскопии желудочно-кишечного тракта и бронхоскопии. Аня. Междунар. Med. 1993; 118: 117-28.
  7. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Уроки вспышек заболеваний, связанных с бронхоскопией. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2001; 22: 403-8.
  8. Вебер Д.Дж., Рутала В.А., ДиМарино А.Дж., мл. Профилактика инфекций после эндоскопии желудочно-кишечного тракта: важность профилактики и обработки. В: ДиМарино А.Дж., младший, Бенджамин С.Б., ред. Заболевания желудочно-кишечного тракта: эндоскопический доступ.Торофар, Нью-Джерси: Slack Inc., 2002: 87-106.
  9. Мейерс Х., Браун-Эллиотт Б.А., Мур Д. и др. Вспышка инфекции Mycobacterium chelonae после липосакции. Clin. Заразить. Дис. 2002; 34: 1500-7.
  10. Lowry PW, Jarvis WR, Oberle AD и др. Mycobacterium chelonae, вызывающая средний отит у пациентов с заболеваниями уха, носа и горла. N. Engl. J. Med. 1988; 319: 978-82.
  11. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Инфекции Pseudomonas aeruginosa, связанные с трансректальной биопсией простаты под контролем УЗИ — Джорджия, 2005.MMWR CDC Surveill. Сумм. 2006; 55: 776-7.
  12. Mehta AC, Prakash UBS, Garland R и др. Профилактика инфекции, связанной с гибкой бронхоскопией. Сундук 2006; 128: 1742-55.
  13. Favero MS, Bond WW. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. В кн .: Блок СС, изд. Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс, 2001: 881-917.
  14. Сполдинг EH. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. В: Лоуренс С., Блок СС, ред.Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Леа и Фебигер, 1968: 517-31.
  15. Simmons BP. Рекомендации CDC по профилактике и борьбе с нозокомиальными инфекциями. Руководство по больничному экологическому контролю. Am. J. Infect. Контроль 1983; 11: 97-120.
  16. Блок СС. Дезинфекция, стерилизация и консервация. Филадельфия: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс, 2001.
  17. Rutala WA, 1994, 1995 и 1996 Комитет руководящих принципов APIC. Руководство APIC по выбору и использованию дезинфицирующих средств.Ассоциация профессионалов в области инфекционного контроля и эпидемиологии, Inc. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 313-42.
  18. Rutala WA. Дезинфекция, стерилизация и утилизация отходов. В: Венцель Р.П., изд. Профилактика и борьба с внутрибольничными инфекциями. Балтимор: Уильямс и Уилкинс, 1997: 539-93.
  19. Rutala WA. Руководство APIC по выбору и использованию дезинфицирующих средств. Am. J. Infect. Контроль 1990; 18: 99-117.
  20. Ассоциация медсестер-медсестер. Рекомендуемые методы дезинфекции высокого уровня.АОРН Дж. 2005; 81: 402-12.
  21. Гарнер Дж.С., Фаверо МС. Рекомендации CDC по профилактике и борьбе с нозокомиальными инфекциями. Руководство по мытью рук и контролю за окружающей средой в больницах, 1985 г. Заменяет руководство по контролю за окружающей средой в больницах, опубликованное в 1981 году. Am. J. Infect. Control 1986; 14: 110-29.
  22. Центры по контролю заболеваний. Руководство по предотвращению передачи вируса иммунодефицита человека и вируса гепатита B работникам здравоохранения и общественной безопасности. MMWR 1989; 38: 1-37.
  23. Центры по контролю заболеваний. Руководство по контролю за инфекциями окружающей среды в медицинских учреждениях, 2003 г. MMWR 2003; 52 (№ RR-10): 1-44.
  24. Bhattachatyya M, Kepnes LJ. Эффективность иммерсионной дезинфекции для гибких волоконно-оптических ларингоскопов. Отоларингол Голова Шея 2004; 130: 681-5.
  25. Hamasuna R, Nose K, Sueyoshi T., Nagano M, Hasui Y, Osada Y. Дезинфекция цистоскопического оборудования на высоком уровне раствором орто-фталевого альдегида. J. Hosp. Заразить. 2004; 57: 346-8.
  26. Foliente RL KB, Aprecio RM, Bains HJ, Kettering JD, Chen YK. Эффективность дезинфицирующих средств высокого уровня для обработки желудочно-кишечных эндоскопов в тестах с моделированием использования. Гастроинтест. Endosc. 2001; 53: 456-62.
  27. Ковач Б.Дж., Чен Ю.К., Кеттеринг Д.Д., Апресио Р.М., Рой И. Дезинфекция желудочно-кишечных эндоскопов на высоком уровне: адекватны ли действующие рекомендации? Am. J. Gastroenterol. 1999; 94: 1546-50.
  28. Rutala WA, Clontz EP, Weber DJ, Hoffmann KK. Методы дезинфекции эндоскопов и других полукритических предметов.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1991; 12: 282-8.
  29. Филлипс Дж., Халка Б., Халка Дж., Кейт Д., Кейт Л. Лапароскопические процедуры: Опрос членов Американской ассоциации гинекологических лапароскопистов за 1975 год. Дж. Репрод. Med. 1977; 18: 227-32.
  30. Muscarella LF. Современные методы обработки инструментов: результаты национального исследования. Уход за желудочно-кишечным трактом 2001; 24: 253-60.
  31. Райт EP, Collins CH, Yates MD. Mycobacterium xenopi и Mycobacterium kansasii в системе водоснабжения больницы.J. Hosp. Заразить. 1985; 6: 175-8.
  32. Уоллес Р.Дж., младший, Браун Б.А., Дриффит, Делавэр. Нозокомиальные вспышки / псевдо-вспышки, вызванные нетуберкулезными микобактериями. Анну. Rev. Microbiol. 1998; 52: 453-90.
  33. Mitchell DH, Hicks LJ, Chiew R, Montanaro JC, Chen SC. Псевдоэпидемия Legionella pneumophila серогруппы 6, связанная с зараженными бронхоскопами. J. Hosp. Заразить. 1997; 37: 19-23.
  34. Meenhorst PL, Reingold AL, Groothuis DG, et al. Нозокомиальная пневмония, связанная с водой, вызванная Legionella pneumophila серогрупп 1 и 10.J. Infect. Дис. 1985; 152: 356-64.
  35. Атлас РМ. Легионелла: от среды обитания до патологии болезней, обнаружения и борьбы. Environ. Microbiol. 1999; 1: 283-93.
  36. Rutala WA, Weber DJ. Вода как резервуар для внутрибольничных возбудителей болезней. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1997; 18: 609-16.
  37. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Экологические проблемы и внутрибольничные инфекции. В: Венцель Р.П., изд. Профилактика и борьба с внутрибольничными инфекциями. Балтимор: Уильямс и Уилкинс, 1997: 491-514.
  38. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Стандарты инфекционного контроля и обработки гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2000; 23: 172-9.
  39. Гердинг Д. Н., Петерсон Л. Р., Веннес Я. Очистка и дезинфекция оптоволоконных эндоскопов: оценка времени воздействия глутаральдегида и сушка на воздухе. Гастроэнтерология 1982; 83: 613-8.
  40. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Руководство по использованию дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня при переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов.
  41. Тернер А.Г., Хиггинс М.М., Крэддок Дж. Дезинфекция иммерсионных баков (Хаббард) в ожоговом отделении больницы. Arch. Environ. Здоровье 1974; 28: 101-4.
  42. Rutala DR, Rutala WA, Weber DJ, Thomann CA. Риски заражения, связанные со спирометрией. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1991; 12: 89-92.
  43. Кон В.Г., Коллинз А.С., Кливленд Дж. Л., Харт Дж. А., Эклунд К. Дж., Мальвиц Д. М.. Руководство по инфекционному контролю в стоматологических учреждениях-2003. MMWR 2003; 52 (№ RR-17): 1-67.
  44. Sehulster L, Chinn RYW, Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в здравоохранении.Руководство по контролю инфекций окружающей среды в медицинских учреждениях. MMWR 2003; 52: 1-44.
  45. Rutala WA, White MS, Gergen MF, Weber DJ. Бактериальное заражение клавиатуры: эффективность и функциональное воздействие дезинфицирующих средств. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2006; 27: 372-7.
  46. Sattar SA, Lloyd-Evans N, Springthorpe VS, Nair RC. Институциональные вспышки ротавирусной диареи: потенциальная роль фомитов и поверхностей окружающей среды как транспортных средств для передачи вируса. J. Hyg. (Лондон). 1986; 96: 277-89.
  47. Вебер DJ, Рутала, Вашингтон. Роль загрязнения окружающей среды в передаче устойчивых к ванкомицину энтерококков. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1997; 18: 306-9.
  48. Уорд Р.Л., Бернштейн Д.И., Ноултон Д.Р. и др. Профилактика передачи ротавирусов от поверхности человеку путем обработки дезинфицирующим спреем. J. Clin. Microbiol. 1991; 29: 1991-6.
  49. Тайлер Р., Эйлифф Г.А., Брэдли С. Вирулицидная активность дезинфицирующих средств: исследования с полиовирусом. J. Hosp. Заразить. 1990; 15: 339-45.
  50. Гвалтни Дж. Младший, Хендли Дж. Передача экспериментальной риновирусной инфекции через зараженные поверхности. Am. J. Epidemiol. 1982; 116: 828-33.
  51. Sattar SA, Jacobsen H, Springthorpe VS, Cusack TM, Rubino JR. Химическая дезинфекция для прерывания передачи риновируса типа 14 с поверхностей окружающей среды на руки. Appl. Environ. Microbiol. 1993; 59: 1579-85.
  52. Sattar SA, Jacobsen H, Rahman H, Cusack TM, Rubino JR. Прекращение распространения ротавируса путем химической дезинфекции.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1994; 15: 751-6.
  53. Rutala WA, Barbee SL, Aguiar NC, Sobsey MD, Weber DJ. Антимикробная активность домашних дезинфицирующих средств и натуральных продуктов в отношении потенциальных патогенов человека. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 33-8.
  54. Сильверман Дж., Васкес Дж. А., Собел Дж. Д., Зервос М. Дж. Сравнительная активность антисептиков и дезинфицирующих средств in vitro по сравнению с клиническими изолятами видов Candida. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 676-84.
  55. Best M, Sattar SA, Springthorpe VS, Kennedy ME.Эффективность выбранных дезинфицирующих средств против Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 1990; 28: 2234-9.
  56. Best M, Kennedy ME, Coates F. Эффективность различных дезинфицирующих средств против Listeria spp. Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 377-80.
  57. Бест М, Спрингторп В.С., Саттар С.А. Возможность проведения испытания комбинированного носителя для дезинфицирующих средств: исследования на смеси пяти типов микроорганизмов. Am. J. Infect. Контроль 1994; 22: 152-62.
  58. Мбитхи Дж. Н., Спрингторп В.С., Саттар С.А.Химическая дезинфекция поверхности окружающей среды вирусом гепатита А. Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 3601-4.
  59. Спрингторп В.С., Гренье JL, Ллойд-Эванс Н., Саттар С.А. Химическая дезинфекция ротавирусов человека: эффективность имеющихся в продаже продуктов в суспензионных тестах. J. Hyg. (Лондон). 1986; 97: 139-61.
  60. Акамацу Т., Табата К., Хиронга М., Каваками Х., Уеда М. Передача инфекции Helicobacter pylori с помощью гибкой волоконно-оптической эндоскопии. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 396-401.
  61. Sattar SA, Спрингторп VS. Выживание и дезинфекция вируса иммунодефицита человека: критический обзор. Rev. Infect. Дис. 1991; 13: 430-47.
  62. Resnick L, Veren K, Salahuddin SZ, Tondreau S, Markham PD. Стабильность и инактивация HTLV-III / LAV в клинических и лабораторных условиях. JAMA 1986; 255: 1887-91.
  63. Weber DJ, Barbee SL, Sobsey MD, Rutala WA. Влияние крови на противовирусную активность гипохлорита натрия, фенольного соединения и соединения четвертичного аммония.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 821-7.
  64. Райс EW, Кларк RM, Johnson CH. Инактивация хлором Escherichia coli O157: H7. Emerg. Заразить. Дис. 1999; 5: 461-3.
  65. Pentella MA, Fisher T, Chandler S, Britt-Ohrmund T, Kwa BH, Yangco BG. Подготовлены ли дезинфицирующие средства для использования в больничных помещениях для ухода за пациентами? Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 103.
  66. Bhalla A, Pultz NJ, Gries DM, et al. Приобретение внутрибольничных патогенов на руках после контакта с поверхностями окружающей среды вблизи госпитализированных пациентов.Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2004; 25: 164-7.
  67. Ray AJ, Hoyen CK, Taub TF, Eckstein EC, Donskey CJ. Нозокомиальная передача устойчивых к ванкомицину энтерококков с поверхностей. JAMA 2002; 287: 1400-1.
  68. Westwood JC, Mitchell MA, Legace S. Санитарно-гигиенические условия в больницах: сильное бактериальное заражение влажной швабры. Appl. Microbiol. 1971; 21: 693-7.
  69. Rutala WA, Weber DJ. Дезинфекция эндоскопов: обзор новых химических стерилизаторов, используемых для дезинфекции высокого уровня. Заразить.Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 69-76.
  70. Рассел А.Д. Бактериальные споры и химические спорицидные агенты. Clin. Microbiol. Ред. 1990; 3: 99-119.
  71. Терлецкий Б, Акслер Д.А. Количественный анализ нейтрализации фунгицидной активности дезинфицирующих средств. Антимикробный. Агенты Chemother. 1987; 31: 794-8.
  72. Кляйн М., ДеФорест А. Инактивация вирусов гермицидами. Chem. Специалисты Мануф. Доц. Proc. 1963; 49: 116-8.
  73. Rutala WA, Cole EC, Wannamaker NS, Weber DJ. Инактивация Mycobacterium tuberculosis и Mycobacterium bovis 14 больничными дезинфицирующими средствами.Am. J. Med. 1991; 91: 267С-271С.
  74. Робисон Р.А., Бодили Х.Л., Робинсон Д.Ф., Кристенсен Р.П. Метод суспензии для определения срока повторного использования химических дезинфицирующих средств во время клинического использования. Appl. Environ. Microbiol. 1988; 54: 158-64.
  75. Isenberg HD, Giugliano ER, France K, Alperstein P. Оценка трех дезинфицирующих средств после стресса при использовании. J. Hosp. Заразить. 1988; 11: 278-85.
  76. Cole EC, Rutala WA, Nessen L, Wannamaker NS, Weber DJ. Влияние методологии, разведения и времени воздействия на туберкулоцидную активность дезинфицирующих средств на основе глутаральдегида.Appl. Environ. Microbiol. 1990; 56: 1813-7.
  77. Power EG, Рассел А.Д. Спорицидное действие щелочного глутарового альдегида: факторы, влияющие на активность, и сравнение с другими альдегидами. J. Appl. Бактериол. 1990; 69: 261-8.
  78. Rutala WA, Gergen MF, Weber DJ. Спорицидная активность химических стерилизаторов, используемых в больницах. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1993; 14: 713-8.
  79. Rutala WA, Gergen MF, Weber DJ. Инактивация спор Clostridium difficile дезинфицирующими средствами. Заразить. Control Hosp.Эпидемиол. 1993; 14: 36-9.
  80. Асчензи JM, Ezzell RJ, Wendt TM. Более точный метод измерения туберкулоцидной активности дезинфицирующих средств. Appl. Environ. Microbiol. 1987; 53: 2189-92.
  81. Коллинз FM. Использование мембранных фильтров для измерения микобактерицидной активности щелочного раствора глутаральдегида. Appl. Environ. Microbiol. 1987; 53: 737-9.
  82. Rubbo SD, Gardner JF, Webb RL. Биоцидная активность глутаральдегида и родственных соединений. J. Appl. Бактериол. 1967; 30: 78-87.
  83. Rutala WA, Weber DJ. Требования к маркировке FDA для дезинфекции эндоскопов: контрапункт. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1995; 16: 231-5.
  84. Коллинз FM. Кинетика туберкулоцидного ответа на щелочной глутаральдегид в растворе и на инертной поверхности. J. Appl. Бактериол. 1986; 61: 87-93.
  85. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. 2005. Стерилизаторы и дезинфицирующие средства высокого уровня, одобренные Управлением по контролю за продуктами и лекарствами (FDA) с общей заявкой на обработку многоразовых медицинских и стоматологических устройств, 13 мая 2005 г.[Эта ссылка больше не активна: www.fda.gov/cdrh/ode/germlab.html].
  86. Crow S, Metcalf RW, Beck WC, Birnbaum D. Дезинфекция или стерилизация? Четыре взгляда на артроскопы. АОРН Дж. 1983; 37: 854-9, 862-8.
  87. Loffer FD. Дезинфекция и стерилизация гинекологического лапароскопического оборудования. Опыт хирургического центра Феникс. J. Reprod. Med. 1980; 25: 263-6.
  88. Джонсон Л.Л., Шнейдер Д.А., Остин М.Д., Гудман Ф.Г., Баллок Дж.М., ДеБруин Дж. Два процента глютаральдегида: дезинфицирующее средство в артроскопии и артроскопической хирургии.J. Bone Joint Surg. 1982; 64: 237-9.
  89. Бернс С., Эдвардс М., Дженнингс Дж. И др. Влияние вариации инвазивных оптоволоконных осциллографов на результаты лечения пациентов. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1996; 17 (доп.): P42.
  90. Fuselier HA, Jr., Mason C. Жидкостная стерилизация в сравнении с дезинфекцией высокого уровня в урологическом кабинете. Урология 1997; 50: 337-40.
  91. Muscarella LF. Дезинфекция высокого уровня или «стерилизация» эндоскопов? Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1996; 17: 183-7.
  92. миль RS. Какие стандарты мы должны использовать для дезинфекции крупного оборудования? J. Hosp. Заразить. 1991; 18: 264-73.
  93. Lee RM, Kozarek RA, Sumida SE, Raltz SL. Риск заражения стерильных щипцов для биопсии в продезинфицированных эндоскопах. Гастроинтест. Endosc. 1998; 47: 377-81.
  94. Кинни Т.П., Козарек Р.А., Ральц С., Аттиа Ф. Загрязнение одноразовых щипцов для биопсии: проспективный анализ in vitro. Гастроинтест. Endosc. 2002; 56: 209-12.
  95. Центры по контролю заболеваний.Рекомендации по предотвращению возможной передачи человеческого Т-лимфотропного вируса типа III / вируса, ассоциированного с лимфаденопатией, через слезы. MMWR 1985; 34: 533-4.
  96. Lettau LA, Bond WW, McDougal JS. Гепатит и диафрагма. JAMA 1985; 254: 752.
  97. Schembre DB. Инфекционные осложнения, связанные с эндоскопией желудочно-кишечного тракта. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 215-32.
  98. Нельсон ДБ. Осложнения инфекционных заболеваний при эндоскопии ЖКТ: Часть II, экзогенные инфекции.Гастроинтест. Endosc. 2003; 57: 695-711.
  99. Чу Н.С., Фаверо М. Микробная флора желудочно-кишечного тракта и очистка гибких эндоскопов. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 233-44.
  100. Alfa MJ, Няня DL. Больничная оценка ортофталевого альдегида как дезинфицирующего средства высокого уровня для гибких эндоскопов. J. Hosp. Заразить. 1994; 26: 15-26.
  101. Веслей Д., Мелсон Дж., Стэнли П. Микробная бионагрузка при повторной обработке эндоскопов и оценка эффективности дезинфекции высокого уровня Cidex PA при использовании.Гастроэнтерол. Nurs. 1999; 22: 63-8.
  102. Chu NS, McAlister D, Antonoplos PA. Уровни естественной бионагрузки обнаруживаются на гибких желудочно-кишечных эндоскопах после клинического использования и ручной очистки. Гастроинтест. Endosc. 1998; 48: 137-42.
  103. Rutala WA, Weber DJ. Обработка эндоскопов: перспектива США. J. Hosp. Заразить. 2004; 56: S27-S39.
  104. Hanson PJ, Gor D, Clarke JR и др. Загрязнение эндоскопов, используемых у больных СПИДом. Ланцет 1989; 2: 86-8.
  105. Hanson PJ, Gor D, Clarke JR, et al.Извлечение вируса иммунодефицита человека с помощью фибробронхоскопов. Торакс 1991; 46: 410-2.
  106. Chaufour X, Дева А.К., Викери К. и др. Оценка дезинфекции и стерилизации многоразовых ангиоскопов на модели утиного гепатита В. J. Vasc. Surg. 1999; 30: 277-82.
  107. Cheung RJ, Ortiz D, DiMarino AJ, Jr. Практика эндоскопической обработки желудочно-кишечного тракта в США. Гастроинтест. Endosc. 1999; 50: 362-8.
  108. Американское общество эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Изложение позиции: обработка гибких желудочно-кишечных эндоскопов.Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 541-6.
  109. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. Содержание и формат предварительного уведомления [510 (k] заявок на жидкие химические стерилизаторы / дезинфицирующие средства высокого уровня). [Эта ссылка больше не активна: www.fda.gov/cdrh/ode/397] 2000.
  110. Ураяма С., Козарек Р.А., Сумида С., Ральц С., Мерриам Л., Петигал П. Микобактерии и глутаральдегид: возможна ли дезинфекция эндоскопов на высоком уровне? Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 451-6.
  111. Джексон Дж, Леггетт Дж., Уилсон Д.А., Гилберт Д.Н.Mycobacterium gordonae в оптоволоконных бронхоскопах. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 19-23.
  112. Martiny H, Floss H, Zuhlsdorf B. Важность очистки для общих результатов обработки эндоскопов. J. Hosp. Заразить. 2004; 56: S16-S22.
  113. Alvarado CJ, Reichelderfer M. Руководство APIC по профилактике инфекций и борьбе с ними в гибкой эндоскопии. Ассоциация профессионалов инфекционного контроля. Am. J. Infect. Контроль 2000; 28: 138-55.
  114. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов.Руководство по использованию дезинфицирующих и стерилизующих средств высокого уровня для обработки гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2000; 23: 180-7.
  115. Общество медсестер и ассистентов гастроэнтерологов. Стандарты инфекционного контроля при переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Гастроэнтерол. Nurs. 2006; 29: 142-8.
  116. Нельсон Д. Б., Джарвис В. Р., Рутала В. А. и др. Многостороннее руководство по переработке гибких желудочно-кишечных эндоскопов. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2003; 24: 532-537.
  117. Мартин М.А., Райхельдерфер М., 1991 и 1993 Комитет руководящих принципов APIC. Руководство APIC по профилактике и контролю инфекций в гибкой эндоскопии. Am. J. Infect. Контроль 1994; 22: 19-38.
  118. Рей Дж. Ф., Халфон П., Ферин Дж. М., Хири Х., Массеефф М. Ф., Узан Д. Риск передачи вируса гепатита С при эндоскопии пищеварительной системы. Гастроэнтерол. Clin. Биол. 1995; 19: 346-9.
  119. Кронмиллер JR, Нельсон DK, Джексон DK, Ким CH. Эффективность традиционных методов эндоскопической дезинфекции и стерилизации против заражения Helicobacter pylori.Helicobacter 1999; 4: 198-203.
  120. Sartor C, Charrel RN, de Lamballerie X, Sambuc R, De Micco P, Boubli L. Оценка процедуры дезинфекции гистероскопов, зараженных вирусом гепатита C. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 1999; 20: 434-6.
  121. Хэнсон П.Дж., Чедвик М.В., Гая Х., Коллинз СП. Исследование дезинфекции глютаральдегидом фиброоптических бронхоскопов, экспериментально зараженных Mycobacterium tuberculosis. J. Hosp. Заразить. 1992; 22: 137-42.
  122. Merighi A, Contato E, Scagliarini R, et al.Повышение качества эндоскопии желудочно-кишечного тракта: микробиологический надзор за дезинфекцией. Гастроинтест. Endosc. 1996; 43: 457-62.
  123. Bond WW. Обработка эндоскопов: проблемы и решения. В: Rutala WA, ed. Дезинфекция, стерилизация и антисептика в здравоохранении. Champlain, New York: Polyscience Publications, 1998: 151–163.
  124. Дева А.К., Викери К., Цзоу Дж., Уэст Р.Х., Харрис Дж. П., Коссарт Я. Внедрение метода тестирования при использовании для оценки дезинфекции хирургических инструментов с использованием модели гепатита B у уток.J. Hosp. Заразить. 1996; 33: 119-30.
  125. Хэнсон П.Дж., Гор Д., Джеффрис Д.Д., Коллинз СП. Устранение ВИЧ с высоким титром из фиброоптических эндоскопов. Gut 1990; 31: 657-9.
  126. Wu MS, Wang JT, Yang JC и др. Эффективное сокращение инфекции Helicobacter pylori после эндоскопии верхних отделов желудочно-кишечного тракта путем механической промывки эндоскопа. Гепатогастроэнтерология. 1996; 43: 1660-4.
  127. Киршке Д.Л., Джонс Т.Ф., Крейг А.С. и др. Загрязнение Pseudomonas aeruginosa и Serratia marcescens, связанное с производственным дефектом бронхоскопов.N. Engl. J. Med. 2003; 348: 214-20.
  128. Srinivasan A, Wolfenden LL, Song X и др. Вспышка инфекции Pseudomonas aeruginosa, связанная с применением гибких бронхоскопов. N. Engl. J. Med. 2003; 348: 221-7.
  129. Качмарек Р.Г., Мур Р.М. мл., МакКрохан Дж. И др. Исследование фактической дезинфекции / стерилизации эндоскопов в медицинских учреждениях в нескольких штатах. Am. J. Med. 1992; 92: 257-61.
  130. Брэдли Ч.Р., Бабб-младший. Обеззараживание эндоскопа: автоматическое против ручного. J. Hosp.Заразить. 1995; 30: 537-42.
  131. Muscarella LF. Преимущества и недостатки автоматических гибких репроцессоров эндоскопов. Am. J. Infect. Контроль 1996; 24: 304-9.
  132. Muscarella LF. Автоматические гибкие репроцессоры эндоскопов. Гастроинтест. Endosc. Clin. N. Am. 2000; 10: 245-57.
  133. Альварадо С.Дж., Штольц С.М., Маки Д.Г. Нозокомиальные инфекции от зараженных эндоскопов: неисправная автоматическая промывка эндоскопов. Исследование с использованием молекулярной эпидемиологии. Am. J. Med. 1991; 91: 272С-280С.
  134. Фрейзер В.Дж., Джонс М., Мюррей П.Р., Медофф Г., Чжан Ю., Уоллес Р.Дж., мл.Загрязнение гибких волоконно-оптических бронхоскопов Mycobacterium chelonae, подключенных к автоматической машине для дезинфекции бронхоскопов. Am. Rev. Respir. Дис. 1992; 145: 853-5.
  135. Cooke RP, Whymant-Morris A, Umasankar RS, Goddard SV. Вода без бактерий для автоматических стирально-дезинфекционных машин: несбыточная мечта? J. Hosp. Заразить. 1998; 39: 63-5.
  136. Muscarella LF. Дежавю … И снова? Важность сушки инструментов. Заразить. Control Hosp. Эпидемиол. 2000; 21: 628-9.
  137. Rutala WA, Weber DJ.Важность просвета в жидкостной химической стерилизации. Am. J. Infect. Контроль 1999; 20: 458-9.
  138. Дуайер Д.М., Кляйн Э.Г., Истре Г.Р., Робинсон М.Г., Нойман Д.А., Маккой Г.А. Инфекции Salmonella newport, передающиеся при оптоволоконной колоноскопии. Гастроинтест. Endosc. 1987; 33: 84-7.
  139. Уиллер PW, Lanc

.

CIDEX OPA, Стандарт дезинфекции высокого уровня

CIDEX OPA Solution — быстрое и эффективное дезинфицирующее средство высокого уровня.
на широком спектре полукритических, термочувствительных медицинских устройств в медицинских учреждениях
по всему миру. CIDEX OPA очень эффективен против широкого спектра микроорганизмов, имеет почти нейтральный уровень pH.

CIDEX OPA Solution обеспечивает быструю пятиминутную расширенную стерилизацию для дезинфекции в автоматическом репроцессоре эндоскопа при 25 ° C или более или за 12 минут при 20 ° C, обрабатываемом вручную.Никаких других новых высокоуровневых
дезинфицирующее средство с такой широкой совместимостью с материалами, как раствор глутарового альдегида, стало доступным в последние 30 лет. Специально нацелен на широкий спектр микобактерий, таких как штаммы M.chelonae, устойчивые к раствору глутаральдегида.

Раствор CIDEX OPA готов к использованию прямо из бутылки и
не требует активации или смешивания. Продукция CIDEX — жизненно важное звено в цепочке
современной дезинфекции медицинского учреждения для
лечебно-хирургических учреждений.Хотя он широко используется в медицинских учреждениях, он также используется немедицинским персоналом для изготовления снаряжения для акваланга (автономный дыхательный аппарат).

Как использовать CIDEX OPA для дезинфекции медицинского оборудования

Шаги по использованию дезинфицирующего раствора с активированным диальдегидом CIDEX в качестве дезинфицирующего средства высокого уровня в медицинских учреждениях:

  • Надевайте средства индивидуальной защиты
  • Очистите медицинские инструменты перед CIDEX OPA
  • Тестирование раствора CIDEX OPA
  • Как использовать CIDEX OPA
  • Процедура дезинфекции
  • Промывание инструментов
  • Сушка инструментов
  • Утилизация использованного раствора CIDEX

Наденьте средства индивидуальной защиты

Очень важно, чтобы персонал всегда носил средства индивидуальной защиты.
оборудование при обращении с загрязненными медицинскими изделиями, стерилизация
продукты и инструменты, требующие обеззараживания.Носите водоотталкивающий
халат, перчатки и средства защиты глаз на протяжении всей процедуры обеззараживания.

Обесцвеченная кожа, слизистые оболочки, испачканная одежда или другое
следует ожидать контакта поверхностей с CIDEX OPA.
Решение. При попадании на кожу промойте это место водой с мылом для
несколько минут. Любое изменение цвета исчезнет в течение нескольких дней.
Избегайте контакта с полом, стенами и прилавками.
Специальные лотки производятся для использования в процессе дезинфекции во избежание контакта с кожей, проливания, разбрызгивания и
контакт с другими поверхностями.

Очистите медицинские инструменты перед CIDEX OPA

Перед расширенной стерилизацией и дезинфекцией высокого уровня можно
начала, тщательная основная очистка медицинских устройств и инструментов
обязательный. Все полукритические медицинские устройства обрабатываются в решении CIDEX OPA Solution
сначала необходимо очистить в соответствии с утвержденным протоколом очистки или стандартом,
например, ASTM F 1518 «Стандартная практика США по очистке и дезинфекции
Гибкие оптоволоконные и видеоэндоскопы, используемые для исследования полости
Внутренности.”

  • Уберите весь мусор. Полностью очистите все поверхности
    приборы и инструменты, внутри и снаружи. Очистите все просветы любой полости
    инструменты, такие как гибкие эндоскопы, с любым мягким моющим средством, предназначенным для
    растворить белки, как
    Ферментное моющее средство ENZOL .
  • Сильнокислые или сильнощелочные моющие средства не подходят
    чистящие средства для использования с CIDEX OPA Solution. Используйте только слабые ферментные
    моющее средство, нейтральное по pH, с низким пенообразованием, легко смываемое с
    медицинские приборы и инструменты.
  • После тщательной очистки промойте каждую поверхность большим количеством жидкости.
    чистой воды, чтобы убедиться, что остатки моющего средства удалены
  • Тщательно удалите излишки воды, оставшиеся после ополаскивания.
    так как вода разбавляет раствор CIDEX OPA и мешает
    средства дезинфекции и стерилизации. Если CIDEX разбавлен ниже
    минимальной эффективной концентрации (MEC) необходимо будет повторить
    процедура дезинфекции свежим раствором.

Каждое медицинское устройство и инструмент будет маркировано
инструкции производителя по очистке, обеззараживанию, разборке и
повторная сборка, а также проверка на герметичность. Обязательно ознакомьтесь с этими инструкциями для
каждое устройство.

Тестирование решения CIDEX OPA

Решение CIDEX OPA требует тестирования перед каждым использованием. Тест-полоски CIDEX OPA Solution используются для подтверждения того, что уровень концентрации орто-фталевого альдегида соответствует минимальной эффективной концентрации (MEC), необходимой для дезинфекции высокого уровня.Требуемый MEC составляет 0,3%. Даже если уровень концентрации остается достаточно высоким, продукты дезинфекции и стерилизации все равно выбрасываются через две недели. Подробные инструкции см. На вкладыше к упаковке тест-полосок CIDEX OPA.

Как использовать решение CIDEX OPA


ВНИМАНИЕ:
Всегда читайте инструкции на вкладыше к упаковке и
этикетка перед каждым использованием.

Решение CIDEX OPA не требует активации или смешивания.Просто
откройте бутылку и вылейте раствор прямо в
Лоток для раствора CIDEX или другой подходящий контейнер.

  • Невскрытая бутылка имеет длительный срок хранения, что позволяет хранить ее в соответствующих условиях в течение двух лет. Открытый флакон необходимо использовать в течение 75 дней.
  • Используйте решение CIDEX OPA только в утвержденной процедуре обработки в автоматическом гибком репроцессоре эндоскопа. Записывайте даты разлива ваших растворов из
    контейнеров и рассчитайте дату окончания срока повторного использования, которая должна быть
    не более 14 дней.Мы рекомендуем использовать журнал CIDEX OPA, чтобы отслеживать
    этого.

Процедура дезинфекции

  • Теперь чистые, в основном сухие устройства можно полностью погрузить в стерилизационный дезинфицирующий раствор.
  • Заполните любые люмены.
  • Установите крышку лотка на лоток.
  • Выдержите 12 минут при комнатной температуре (20º C) для достижения стандарта дезинфекции высокого уровня.

Промывка инструментов

После дезинфекции инструменты необходимо тщательно промыть.

  • Промойте все каналы источником стерильной воды.
  • Промойте каждое медицинское устройство трижды.
  • Промывайте не менее одной минуты, используя каждый раз не менее двух галлонов чистой воды.
  • Advanced Sterilization Products (производитель) рекомендует использовать
    стерильная вода, если не подходит питьевая вода.

Сушка инструментов

Теперь каждое медицинское устройство и инструмент необходимо тщательно высушить.В
продезинфицированное медицинское оборудование готово к использованию. Если он будет храниться, будь
осторожно хранить его, учитывая риск повторного заражения.

Утилизация использованного раствора CIDEX

Использованный раствор CIDEX OPA обычно можно выбросить в канализацию в
в больницу или кабинет врача. Перед тем, как выбросить в канализацию, обязательно ознакомьтесь с местными правилами. при необходимости перед утилизацией раствора CIDEX OPA можно использовать глицин (свободное основание) в качестве нейтрализатора.А
минимум 25 граммов глицина (свободное основание) необходимо использовать для нейтрализации одного
галлон CIDEX OPA Solution. Минимальное рекомендуемое время нейтрализации составляет
один час. После слива раствора в канализацию тщательно промойте сток
вода.

Ортофталевый альдегид, FDA и CDC

В октябре 1999 года Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (FDA) одобрило
использование орто-фталевого альдегида в качестве дезинфицирующего средства высокого уровня для продвинутой стерилизации.FDA одобрило орто-фталальдегид, потому что исследования показали, что в исследованиях in vitro была обнаружена «отличная микробиоцидная активность». Согласно
Центры по контролю и профилактике заболеваний , ортофталевый альдегид уничтожил несколько микроорганизмов, таких как микобакатерии и споры Bacillus subtilis. Было обнаружено, что эти микроорганизмы устойчивы к растворам глутаральдегида, которые широко использовались в то время.

Быстрая и простая дезинфекция на высоком уровне

Время, проведенное в медицинских учреждениях без оказания медицинской помощи, всегда в цене.

  • Быстрое замачивание в течение пяти минут при 25 ° C в автоматических гибких репроцессорах эндоскопов или в течение 12 минут при 20 ° C при ручной обработке делает дезинфицирующее средство CIDEX быстрым способом достижения высокого уровня
    дезинфекция.
  • Термочувствительные медицинские устройства сохранены, а высочайший уровень дезинфекции достигается быстро и эффективно.
  • Отсутствие активации, смешивания или другого приготовления экономит время. Готовая к применению дезинфекция и
    раствор средств стерилизации означает, что дезинфекция начинается, как только
    первичная очистка завершена.
  • Быстрое замачивание, тщательное полоскание
    и достигается сухой дезинфектант высокого уровня.

Меры предосторожности

Дезинфекция инструментов, медицинских приборов и оборудования всегда требует осторожности и особого внимания.

  • Дезинфицирующее средство CIDEX часто предпочтительнее, поскольку оно практически не имеет запаха.
  • CIDEX не требует специальной вентиляции, так как не вызывает раздражения глаз или носовых ходов, но его лучше всего использовать в хорошо вентилируемом помещении.
  • Избегать контакта с глазами, кожей и одеждой. При работе с жидкостью и оборудованием всегда надевайте водоотталкивающий халат, перчатки и защитные очки, так как CIDEX оставляет пятна.

Недостатки

  • CIDEX OPA окрашивает кожу при контакте. Окрашивает слизистые оболочки. Пачкает одежду. Пачкает столешницы, стены или пол.
  • Окрашивание произойдет при прямом контакте, например, при разливе, но также может произойти, если инструменты или оборудование не будут промыты достаточно хорошо и они попадут на кожу или слизистые оболочки пациента.
    мембраны.Обязательно тщательно промойте все продезинфицированные предметы.
  • Прямой контакт с глазами и
    кожа может вызвать раздражение. Повторяющийся контакт с кожей может вызвать повреждение кожи.
    сенсибилизация.
  • Минимальная эффективная концентрация (MEC) CIDEX OPA должна быть проверена с помощью тест-полоски раствора CIDEX OPA перед каждым использованием, чтобы определить, что концентрация ортофталевого альдегида выше MEC
    0,3%.

Часто задаваемые вопросы

Как удалить пятно CIDEX?

Короткий ответ: вы, вероятно, не можете.Серое пятно на коже или слизистых оболочках исчезнет всего за пару дней.

На оборудовании поверхность можно протереть 70% изопропиловым спиртом и безворсовой тканью, если это разрешено инструкциями производителя. Этот процесс сведет к минимуму окрашивание, но не устранит полностью долгосрочные потенциальные пятна. Часто существующие пятна не удаляются.

Что убивает CIDEX OPA?

CIDEX был протестирован и доказал, что минимизирует темпы роста
широкий спектр различных бактерий, в том числе:

  • Staphylococcus aureus
  • Salmonella choleraesuis
  • Pseudomonas aeruginosa
  • Метициллин-резистентный золотистый стафилококк (MRSA)
  • Ванкомицин-устойчивый
  • Enterococcus faecallocis (VRE)

    Энтерококк, устойчивый к стокоцину

  • Pseudomonas aeruginosa

CIDEX был протестирован на уничтожение этих различных вирусов:

  • Адено 2
  • Вируцидный цитомегаловирус Коксаки типа B- 3
  • Вируцидный цитомегаловирус
  • Вируцидный вирус простого герпеса типа 1 и 2 (HSV1 и HSV2)
  • Вируцидный ВИЧ-1
  • Вирулицидный коронавирус человека
  • Вирулицидный грипп типа A (Гонконг)
  • Вируцидный полиомиелит 1
  • Вирулицидный риновирус типа 42
  • Вирулицидный вирус осповакцины

CIDEX был протестирован на уничтожение следующих типов спор:

  • Clostridium sporogenes
  • Bacillus subtilis

Насколько токсичен раствор CIDEX OPA?

Решение CIDEX OPA было тщательно изучено для определения его
токсичность.Результаты демонстрируют продукты дезинфекции и стерилизации.
решение, чтобы быть безопасным, когда он используется по назначению. Это может вызвать поражение глаз, кожи и
раздражение дыхательных путей. Используйте CIDEX OPA в хорошо вентилируемом помещении с личным
защитное оборудование. Для получения дополнительной информации см. Данные по безопасности материалов CIDEX OPA.
Лист.

Чем отличается решение CIDEX OPA от решения Metricde OPA Plus?

Решение MetriCide OPA Plus аналогично решению CIDEX OPA.MetriCide OPA содержит немного большее количество активного ингредиента. Они оба одинаково стабильны,
безопасно и эффективно. Оба имеют длительный срок хранения и одинаковые материалы.
совместимость. Дезинфицирующий раствор MetriCide OPA можно использовать чаще
в течение двух недель, что поможет загруженным медицинским учреждениям сэкономить.

В чем разница между активированным диальдегидным раствором CIDEX и CIDEX OPA? Что лучше для больных раком мочевого пузыря?

CIDEX OPA отличается от раствора активированного диальдегида CIDEX.CIDEX
В активированном растворе диальдегида в качестве дезинфицирующего средства используется глутаральдегид, а в CIDEX
OPA использует орто-фталевый альдегид. Больные раком мочевого пузыря более чувствительны к орто-фталевому альдегиду.
CIDEX OPA не следует использовать для обработки любых используемых урологических инструментов.
для лечения пациентов с раком мочевого пузыря в анамнезе.

В чем разница между перуксусной кислотой и продуктами CIDEX?

Перуксус очень эффективен и используется как альтернатива глутаральдегиду.Кислота имеет запах уксуса, но некоторых может быть менее раздражающим. Надуксусная кислота должна использоваться в вытяжных вентилируемых или закрытых помещениях. Он значительно дороже, менее стабилен, имеет меньший срок хранения и может храниться только в больших объемах. Эндоскопам наносится косметический ущерб, и эта кислота не всегда совместима с дезинфекторами и моющими машинами.

Что такое тест-полоски CIDEX OPA Solution и для чего они нужны?

Тест-полоски CIDEX OPA являются
предназначен для тестирования дезинфицирующего раствора CIDEX OPA перед каждым использованием.Тест-полоски измеряют MEC (минимальную эффективную концентрацию)
дезинфицирующий раствор. Они просты в использовании и чтении.

CIDEX OPA и CIDEX Activated Dialdehyde Solution — это промышленность
стандарты для дезинфекции высокого уровня. Есть много преимуществ, таких как
эффективность, длительный срок хранения и простота использования, что является отличным выбором для
любое учреждение, требующее профилактики инфекций. Больницы, стоматологи, врачебные
офисы, клиники, кабинеты и отделения ветеринарной помощи по всей стране
все достигают высокого уровня дезинфекции с помощью растворов CIDEX OPA и CIDEX.CIDEX
продукция производится подразделением Advanced Sterilization Products.
Ethicon (компания Johnson & Johnson).

CIDEX OPA — эффективное дезинфицирующее средство для медицинских инструментов, не предназначенное для обработки кожи. В качестве антисептического и противомикробного очищающего средства для кожи используйте Hibiclens. Hibiclens нежно и эффективно очищает кожу и поверхностные раны и может защищать кожу до 24 часов. Для получения дополнительной информации о Hibiclens см. Статью нашего блога Hibiclens: Антисептическое очищающее средство для кожи.

CIDEX OPA и широкий спектр продуктов CIDEX доступны на сайте USAMedicalSurgical.com. Не все продукты CIDEX представлены на сайте, поэтому, если вы не найдете то, что ищете,
Пожалуйста, позвоните, чтобы узнать цены и наличие на нашем бесплатном номере (888-215-0718), или напишите нам по электронной почте
[email protected]

.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *