Дезинфекция оттисков в стоматологии: Дезинфекция оттисков, зубных протезов, средства

Содержание

Дезинфекция оттискных материалов

Персонал стоматологических клиник постоянно подвергается воздействию микроорганизмов, которое может привести к таким инфекционным заболеваниям, как общая простуда, пневмония, туберкулез, герпес и гепатит. В особенности с тех пор, как был выявлен синдром приобретенного иммуннодефицита (AIDS,СПИД), повысилась опасность появления потенциальных путей для перекрестной (внутрибольничной) инфекции при работе с оттискными материалами. Перекрестная инфекция может передаваться от пациента к врачу-стоматологу, к ассистенту хирурга-стоматолога и по случайности к зубному технику. Таким образом существует риск инфицирования стоматологического персонала.

Большинство зуботехнических лабораторий не принимают оттиски, пока не получат от врача ортопеда гарантии того, что эти оттиски продезинфицированы. Такое положение создает дополнительные серьезные трудности в работе стоматолога, т.к. получение точных оттисков было сложной задачей и в лучшие времена. Все старание и внимание, потраченные на снятие оттиска высокого качества, могут быть сведены на нет, если этот оттиск будет испорчен во время дезинфекции.

Стоматологу теперь предстоит выбирать наиболее подходящий оттискной материал и соответствующий этому материалу способ дезинфекции.

Дезинфицирующие средства

Стерилизовать оттиски невозможно, т.к. при этом необходимо прибегать к высоким температурам, поэтому остается применять для них дезинфекцию. Наиболее эффективными видами или способами дезинфекции оттисков является погружение их в дезинфицирующие растворы на время до 30 мин. Когда дезинфекцию оттисков погружением в раствор провести нельзя, их можно подвергнуть обработке дезинфицирующим раствором из распылителя или пульверизатора (спреем). Существует много различных растворов, которые можно применять в виде спрея или в которые можно погружать оттиски. Их можно разбить на следующие основные группы:

• Хлорные растворы Они могут оказывать повреждающее действие на кожу, глаза и т.п.; они обесцвечивают одежду, имеют неприятный запах и оказывают сильное коррозионное действие на металлы.

• Альдегидные растворы Они имеют удушающий запах и раздражают кожные покровы и глаза. Коммерческие дезинфицирующие растворы чаще готовят на основе глутарового альдегида, чем на основе формальдегида. В качестве дезинфицирующего раствора предпочитают применять 2%-ые растворы глутарового альдегида.

• Йодные растворы (1% йодоформ)

• Фенолы Влияние дезинфицирующих средств на точность оттискных материалов

Было подробно изучено влияние дезинфицирующих средств на точность и размерную стабильность оттискных материалов; ниже приведены основные результаты изучения, представляющие современный уровень знаний по этому вопросу для различных классов оттискных материалов.

Обратимые гидроколлоиды

Агаровые оттискные материалы можно выдерживать в растворах гипохлорита натрия, йодоформе или в растворе глутарового альдегида с фенольным буфером. Важно тщательно соблюдать инструкции по разбавлению раствора и времени выдержки в нем. Время выдержки в растворе не должно превышать 30 минут. Другой потенциальной опасностью инфицирования агара является возможность перекрестного загрязнения материала при его термостатирования в водяных банях.

Необратимые гидроколлоиды

  Статистически достоверные и значительные размерные изменения происходят в альгинатных оттискных материалах, когда их выдерживают свыше 15 минут в растворах глутарового альдегида, формальдегида или гипохлорита натрия, а когда их обрабатывают спреем фенольного дезинфицирующего средства и оставляют в таком виде на 30 минут, то отливки, полученные впоследствии, явно имеют значительные размерные изменения, что подтверждено и статистически и клинически. Гипохлорит натрия, кроме того, способен частично растворять альгинатный материал. Допустимые размерные изменения оттиска дает выдержка в нейтральных растворах глутарового альдегида или йодоформа в течение не более 15 минут. Однако, было обнаружено, что даже такое короткое время пропитывания альгинатных оттисков в альдегидных растворах, как 2 минуты, ухудшает качество поверхности отливок. 

Таким образом, необратимые гидроколлоидные (альгинатные) оттискные материалы дают искаженные оттиски после их выдержки при погружении в дезинфицирующие растворы, и их можно дезинфицировать, распыляя раствор на поверхность оттиска, ( обрабатывая спреем), и затем помещая обработанный оттиск в герметичный пластиковый пакет на время, рекомендуемое в инструкции изготовителя.

«Внутренняя» дезинфекция, (когда вместо воды для приготовления смеси перед снятием оттиска берут раствор дезинфицирующего средства), — это другая возможность дезинфекции альгинатов, т.к. этот способ позволяет сразу же отливать модель после извлечения оттиска изо рта. На первый взгляд этот способ кажется очень эффективным, но он все же не позволяет разрешить проблему дезинфекции оттискной ложки.

Полисульфиды

Исследования с многочисленными видами дезинфицирующих средств и различными временами выдержки в них, от 10 до 30 минут, показывают, что на полисульфидные оттискные материалы такая дезинфекция, а также дезинфекция распылением этих средств, не оказывает отрицательного действия, и оба способа дезинфекции можно применять для этих материалов.

Полиэфиры

Известно, что полиэфирные оттискные материалы расширяются под воздействием влаги. Поэтому неудивительно, что выдержка этих материалов в различных дезинфицирующих растворах вызывает значительное набухание материала уже через 10 минут. Размерные изменения становятся весьма значительными через 4 часа выдержки материала в 10%-ом водном растворе янтарного альдегида, но через 10 минут размерные изменения материала имеют вполне допустимую величину. Можно дезинфицировать спреем. Следовательно для полиэфирных оттискных материалов рекомендуют использовать дезинфекцию распылением дезинфицирующих средств или погружением в дезинфицирующие растворы, такие как хлорные растворы, на короткое время (не более 10 минут).

Силиконы конденсационного отверждения

Хотя силиконы конденсационного отверждения химически не взаимодействуют со многими дезинфицирующими средствами при их длительной выдержке в растворах этих средств, существуют ограничения, связанные с собственной размерной нестабильностью этих материалов.

Силиконы аддитивного отверждения

Были проведены многочисленные исследования влияния дезинфицирующих средств на размерную стабильность силиконов аддитивного отверждения. В результате пришли к выводу, что отрицательное воздействие на силиконы данного класса со стороны всех возможных вариантов дезинфицирующих средств даже при продолжительном контакте с ними (до 18 часов) отсутствует. Единственный отрицательный момент, который был замечен, заключался в том, что дезинфицирующие средства снижают смачивающую способность модельных материалов по отношению к оттискам из гидрофильных силиконовых материалов.

Методики проведения дезинфекции

Непосредственно после извлечения изо рта пациента оттиски следует промыть в воде для удаления остатков слюны, крови и других загрязнений. Дезинфекцию оттиска следует проводить до отливки модели или до отправки оттиска в зуботехническую лабораторию. Ответственность за передачу оттиска в незагрязненном виде в лабораторию лежит на враче-стоматологе. Как было сказано выше, методика или способ дезинфекции должен выбираться в зависимости от типа оттискного материала и вида дезинфицирующего средства. Необходимо помнить, что целью обработки оттиска является именно дезинфекция, а не стерилизация, т.к. в последнем случае требуется очень длительная выдержка в растворах, которая не всегда может гарантировать стерильность.

Совет Британской Стоматологической Ассоциации (Advice Sheet А12) поясняет, что основные типы оттискных материалов можно дезинфицировать в глутаровом альдегиде, но при этом замечает, что универсального метода для дезинфекции всех существующих типов оттискных материалов не существует. В указанном документе рекомендуется использовать одноразовые оттискные ложки, а техникам советуют работать в перчатках, когда они имеют дело с оттискными материалами и занимаются отливкой моделей.

Американская стоматологическая Ассоциация (АДА) предлагает дезинфицировать полисульфидные и силиконовые материалы конденсационного и аддитивного отверждения путем погружения оттисков на 30 минут в дезинфицирующие растворы глутарового альдегида, а необратимые гидроколлоидные и полиэфирные оттискные материалы дезинфицировать спреем из хлорных растворов. Однако важно, чтобы в каждом случае строго соблюдали рекомендации инструкций изготовителей.

Методики проведения дезинфекции

Альгинаты

Обработать поверхность описка из распылителя (спреем) дезинфицирующим средством и положить описк в герметичный пластиковый пакет на время, рекомендуемое в инструкции изготовителя

Полисульфиды

Выдержать, погрузив силиконы в дезинфицирующий раствор, в течение времени, рекомендованного в инструкции изготовителя, (лучше < 30 мин). 

Полиэфиры

Обработать поверхность описка спреем дезинфицирующего средства или погрузить его в дезинфицирующие растворы на короткое время (< 10 мин).

Основы стоматологического материаловедения


Ричард ван Нурт

Опубликовал Константин Моканов

Эффективная дезинфекция оттисков.

Эффективная дезинфекция оттисков
Всем известно, что при изготовлении зубных протезов возможен перенос инфекции от пациента врачу и ассистенту, находящимся в непосредственном контакте с ним во время приема. Но нельзя недооценивать и другие пути инфицирования, возможно, не такие очевидные, но не менее актуальные.

Оттискные материалы, воск и поверхности изготавливаемых протезов, которые соприкасались с тканями полости рта пациента и загрязнены слюной, кровью и частицами зубной бляшки, являются источниками инфицирования. Таким путем инфекция может передаваться из кабинета в зуботехническую лабораторию техникам, которые непосредственно не контактируют с пациентами, но работают с оттисками и отлитыми по ним моделями, а также с воском и зубными протезами. Согласно информационным источникам, при проведении отливки гипсовых моделей возможен переход с оттиска на модель микроорганизмов, которые сохраняют свою активность в течение 7 суток.

Нельзя забывать и то, что во время примерки изготовленных протезов и прочих конструкций (коронок, металлических каркасов, пластмассовых базисов и т.д.) в полости рта происходит контакт со слюной и кровью пациента. Поэтому после возврашения из кабинета в лабораторию они становятся потенциально инфицированными.

Особенно важно проводить дезинфекцию протезов, принимаемых в починку. Полировка протезов после их коррекции в полости рта способствует распылению инфицированных аэрозольных частиц и мелких брызг. Это также ведет к распространению инфекций. Поэтому для снижения переноса инфекции необходимо, чтобы все конструкции перед дальнейшей их обработай были продезинфицированы.
По данным профессора К. Безманна из Университета Киля, в процессе своей трудовой деятельности через 5-9 лет более 10% зубных техников инфицируются гепатитом В через инфицированные оттиски и
протезы.

Поэтому после извлечения оттисков из полости рта пациента необходимо проводить их дезинфекцию, и только после этого отправлять их в зуботехническую лабораторию. Естественно, требования к используемым дезинфицирующим препаратам очень высоки. Они должны быть быстроактивными против вирусов и бактерий. К тому же эти препараты должны быть пригодны для дезинфекции оттисков из альгината, силикона, полиэфира, сохраняя при этом их точность и совместимость с гипсом, т.е не давать деформацию оттисков. Исходя из этих требований, мы видим, что не любой препарат пригоден для таких целей. Тем не менее, всего лишь одна треть стоматологических практик и лабораторий использует специальный дезинфицирующий препарат для оттисков. Совершенно недопустимым является принятие такого решения, когда специалисты делают выбор в пользу некачественных, но зато дешевых препаратов, не сохраняя при этом качества оттиска и пренебрегая правилами защиты от инфекции.

Из современных средств наиболее эффективным средством для дезинфекции оттисков является готовый к употреблению препарат фирмы Дюрр Дентал — MD 520. Он обладает широким спектром активности; бактерицидный, фунгицидный, туберкулоцидный, вирулицидный, включая вирусы НВѴ,
НСѴ и HIV, а также активен против безоболочковых адено и норовирусов. Также MD 520 используется для дезинфекции протезов, мостов и коронок.

Перед введением любой ортопедической работы в полость рта пациента ее необходимо обязательно дезинфицировать. Для дезинфекции оттисков существуют два метода обеззараживания: первый — методом погружения и второй — методом орошения. MD 520 позволяет обеспечивать высокий уровень дезинфекции оттисков как методом погружения, так и методом орошения.

Оттиски, извлеченные из полости рта пациентов, независимо отиспользуемого метода, первоначально промываются в течение 10 сек струей проточной воды.
Если используется метод погружения, то далее оттиски погружаются в дезинфицирующий раствор на 5 мин. По окончании времени экспозиции оттиски извлекаются из раствора и промываются струей проточной воды в течение 10 сек для удаления остатков дезинфектанта.

При методе орошения используется аппарат Гигоджет, который представляет собой закрытую систему и служит в качестве дезинфицирующего шлюза. При дезинфекции этим методом вначале проводится предварительная очистка оттиска с помощью водного душа, которая длится около 10 сек, при этом вода распыляется одновременно с подачей воздуха. Таким образом достигается очень качественное очищение поверхности, дажё самых мельчайших и труднодоступных участков. И уже после очистки и сушки осуществляется орошение оттисков дезинфицирующим раствором МД 520.

Во время дезинфекции оттиск орошается 10 мл дезинфектанта, что является большим преимуществом данного метода с точки зрения экономного расходования дезинфицирующего средства и возможности проведения одновременной дезинфекции оттисков.
После 10 минут экспозиции оттиск промывается водой и высушивается с помощью воздушного распыления. Длительность всего процесса дезинфекции, с учетом предварительной очистки и высушивания, составляет 12 минут.

Дезинфекция стоматологических оттисков | Мирамистин (Miramistin)

СИМОНЕНКО Р.В., РУДЬКО А.П.

НМУ им. А.А.Богомольца, Киев, Украина

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ДЕЗМИСТИНА ДЛЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ ОТТИСКОВ В ОРТОПЕДИЧЕСКОЙ СТОМАТОЛОГИИ

Цель.

Изучить параметры микробной контаминации стоматологических оттисков и оценить возможность их дезинфекции с помощью препарата дезмистин.

Методы.

Использовали стоматологические оттиски из силиконовых и альгинатных масс, препарат дезмистин, действующим веществом которого является антисептик широкого спектра действия мирамистин (Кривошеин Ю.С., Рудько А.П., «Лекарственный препарат», Патент РФ № 21619661, Евразийский па тент № 005132), общепринятые микробиологические методы исследования.

Результаты.

В ходе исследования установлены количественные показатели контаминации оттисков, разработана методика определения обсемененности оттисков. Подобраны условия про ведения обеззараживания оттисков и определены допустимые уровни загрязнения оттисков органическим субстратом. Показано, что погружение оттисков из силиконовых и альгинатных масс на 10 мин в раствор дезмистина обеспечивает необходимый уровень дезинфекции поверхности оттиска, при котором не нарушаются его линейные и объемные параметры. Помимо предотвращения инфицирования медицинского персонала и пациентов возбудителями бактериальных и вирусных инфекций такая обработка улучшает качество получаемых гипсовых моделей (значительно снижается шероховатость их поверхности).

Выводы.

Обработка стоматологических оттисков из силиконовых и альгинатных масс путем их погружения в дезмистин на 10 минут позволяет проводить их эффективную дезинфекцию. Разработан способ определения микробной контаминации и определены уровни допустимого загрязнения таких оттисков органическим субстратом, не снижающие эффективность дезинфекции их дезмистином.

Новизна плюс чистота! Дезинфекция изготовленных оттисков и зубных протезов.,

Изготовление оттиска — сложное и ответственное дело. Вопрос дезинфекции довольно актуальный в этой работе.  

Как правило, полученные оттиски инфицированы большим количеством микроорганизмов от крови (в результате травмирования слизистой), от выделений из зубодесневых карманов, от ротовой жидкости, от зубного налета.

Процедура дезинфекции оттисков проста:

  • — промывание под струей воды от крови, слюны, и тп
  • — погружение в специальный раствор
  • — промывание проточной водой
  • — простая сушка на воздухе

Все оттиски дезинфицируются похоже. Есть небольшие отличия у заготовок, выполненных из разных материалов. Например, оттиски из силиконовых и альгинатных материалов, гидроколлоида и полиэфирной смолы, заготовки из пластмасс, керамики, металла обеззараживаются примерно в той же последовательности, но с разными химическими растворами. 

Зубные протезы (полные или частично съемные), которые поступают от зубного техника всегда инфицированы различными микроорганизмами.

Это связано с тем что в процессе изготовления они имеют тесный контакт с:

  • — металлическими поддонами
  • — рабочими столами
  • — зуботехническими инструментами
  • — руками зубного техника

Таким образом, все протезы после изготовления должны пройти процедуру дезинфекции.

Обычно, это погружение в специальный раствор.

Металлические протезы или изделия из стоматологического фарфора опускают в раствор глутаральдегида.

Съемные ортодонтические аппараты, зубы из акриловой пластмассы или фарфора укладывают в раствор хлора или йодоформа.

Ортодонтические аппараты (несъемные) и их отдельные элементы (брекеты, резиновые тяги, металлические лигатурные повязки, металлические назубные дуги и т.д.) дезинфицируют двумя способами:

  • — химическим
  • — физическим

Физическая дезинфекция подразумевает под собой стерилизацию в автоклаве.

Химическая — это очистка с помощью специального раствора, подходящего материалу из которого изготовлен протез.

В интернет магазине unident-online.ru Вы сможете найти богатый выбор стерилизационного оборудования.

Берегите здоровье своих пациентов и статус своей организации. Проводите дезинфекцию грамотно. И тогда доверие клиентов Вас только порадует!

Дезинфекция оттиска

Дезинфекция оттиска

Оттиски, извлеченные из полости рта пациента, ополаскивают струей проточной воды в течение 1 минуты.

После этого их погружают в дезинфицирующий раствор (глутаровый альдегид 2,5 pH 7,0-9,7 на 10 минут; глутарекс — на 10 минут; MD-520 — на 10 минут; нейтральный анализ — на 10 минут). Дезинфекцию оттисков проводят в эмалированной или стеклянной посуде, закрытой крышкой при полном погружении оттисков в раствор. При этом уровень раствора под слепком должен быть не менее 1 см. По окончании процедуры оттиски удаляют из раствора и промывают струей воды в течение 0,5-1,0 минуты для удаления остатков дезинфектанта.

В настоящее время существуют современные методики получения анатомических оттисков. Их применяют при незначительной атрофии челюстей.

1. Комбинированная техника снятия анатомических оттисков гидроколлоидными материалами с альгинатами, дающими оптимальные результаты.

2. Одномоментное снятие оттисков с обеих челюстей ложкой типа «SR-Ivofray».

Фирма Ivoclar предлагает современную технологию взаимозаменяемых ложек разных размеров: две для верхней и три для нижней челюсти, с помощью которых получают анатомические оттиски.

Посредством специальных направляющих верхняя и нижняя ложки соединены между собой в единый блок, что обеспечивает перемещение ложек только в сагиттальном направлении. Универсальную ложку для верхней и нижней челюстей проверяют в полости рта больного и при необходимости индивидуализируют. Соединенные между собой ложки для верхней и нижней челюстей вводят боковым вращающим движением в полость рта и накладывают на нижнюю челюсть, после чего большой медленно закрывает рот.

Для регистрации высоты нижнего отдела лица отмечаются точки на носу и на подбородке. Расстояния между ними измеряют циркулем или специальной измерительной линейкой. Во время получения оттиска этот размер является ориентиром получения пространственного взаиморасположения челюстей. Перед получением оттиска больному необходимо дать следующие наставления: язык укладывается в пространство между ложками, а не под ложку; производятся глотательные движения; дышать необходимо через нос; ложки следует прижимать губами, а не челюстью.

Для получения оттисков используются альгинатные материалы густой консистенции, такие как SR-Альгикап или SR-Дуральгин/SR-Дупальфлекс, поставляемые фирмой Ivoclar в капсулах. Сначала капсула раздавливается с помощью сжимателя, а затем ее укрепляют в специальном вибраторе и в течение 30 секунд встряхивают, после чего капсулу помещают в специальный шприц. Весь материал выдавливают сначала на нижнюю ложку, а затем — на верхнюю.

После наложения альгинатного оттискного материала (отдельно в нижнюю и верхнюю ложки) обе ложки последовательно вводят и накладывают на верхнюю и нижнюю челюсти. При этом альгинатная масса верхней и нижней оттискных ложек смыкается (соединяется). Свободной рукой врач поднимает верхнюю губу, и больной медленно закрывает рот. Ложки передвигаются при замыкающих движениях по направлению наименьшего сопротивления и фиксируются в таком положении альгинатным конгломератом.

Когда альгинатная масса выходит за пределы переходной складки, верхняя губа отпускается. Губы больного должны соприкасаться, больной при этом дышит носом и производит глотательные движения.

Во время получения оттиска по отмеченным точкам проверяется межальвеолярная высота, которую можно корригировать только в том случае, когда она превышает измеренное расстояние. Образовавшийся единый блок верхней и нижней оттискных ложек с оттискным материалом выводят из полости рта.

После снятия и дезинфекции анатомический оттиск отправляется в лабораторию, где с помощью него отливается рабочая модель, на которой изготавливается индивидуальная ложка.

Профилактика ВБИ в стоматологиях

Внутрибольничные инфекции в стоматологии

Внутрибольничные инфекции могут вызывать различные микроорганизмы. Чаще всего «виновниками» ВБИ в стоматологии является кокковая флора, попадание которой в рану приводит к развитию альвеолита, периостита, остеомиелита, абсцесса и пр. К случаям внутрибольничной инфекции можно отнести также и заражение пациента парентеральным гепатитом при выполнении стоматологических манипуляций.

Основной принцип профилактики внутрибольничных инфекций очень простой — регулярно проводить необходимые противоэпидемические мероприятия. Эти мероприятия осуществляются, в первую очередь, с помощью дезинфекции и стерилизации. Важно также понимать, что к распространению внутрибольничных инфекций могут быть причастны не только стоматологические инструменты, но и оборудование, мебель, руки стоматолога и даже воздух.

Обработка стоматологического инструментария

К обработке стоматологического инструментария санитарное законодательство выдвигает строгие требования, которые должны выполнять все без исключения стоматологические кабинеты вне зависимости от формы собственности. Такие высокие требования совершенно обоснованы, ведь стоматологические инструменты могут травмировать слизистую оболочку полости рта, что связано с высоким риском заражения инфекциями.

Для бесперебойной работы стоматкабинета необходимо иметь достаточное количество стерильных инструментов, не менее десяти наборов на каждого врача на смену. Такой подход позволит обслужить большое количество пациентов и при этом успевать планомерно обрабатывать использованный инструментарий.

Согласно требованиям санитарного законодательства стоматологические инструменты должны обрабатываться в три этапа:

  1. Дезинфекция;
  2. Предстерилизационная обработка;
  3. Стерилизация.

Дезинфекция стоматологических инструментов

Итак, первым этапом обработки инструментов является дезинфекция, которая призвана максимально снизить уровень контаминации микроорганизмами инструментов. Дезинфекция осуществляется с использованием дезинфицирующих средств. К выбору дезсредства нужно подойти ответственно. Дезинфицирующее средство, во-первых, должно эффективно уничтожать микроорганизмы и во-вторых, не портить инструменты. Этим свойствам в полной мере отвечают дезинфицирующие средства для стоматологий «Септолит Тетра» и «Септолит Денталь».

Дезинфекцию инструментов проводят после каждого клиента. Для этого в емкость с дезсредством погружают использованные инструменты в раскрытом и разобранном виде. Уровень жидкость должен полностью покрывать инструменты. Дезинфекцию необходимо проводить по режиму, применяемому при вирусных инфекциях.

По окончанию времени выдержки приступают к предстерилизационной очистке, которая проводится с целью очищения инструментов от белковых загрязнений. Средства «Септолит Тетра» и «Септолит Денталь» позволяют совместить дезинфекцию и ПСО в один этап. Поэтому после окончания дезинфекции прямо в контейнере с дезсредством проводят тщательное очищение инструментов с помощью щеточек.

Дезинфекцию оттисков и заготовок протезов проводят перед их отправлением в зубочелюстную лабораторию и перед установкой пациенту. После дезобработки оттиски и протезы промывают дистиллированной водой. На этом обработка этих стоматологических изделий окончена.

Стерилизация инструментов

Все изделия, контактирующие с кровью и раневой поверхностью, которые могут приводить к травмированию слизистой, должны подвергаться стерилизации. Обработку стоматологического инструментария проводят с помощью паровой или воздушной стерилизации. Для этого продезинфицированный инструментарий помещают в упаковку (бумажные пакеты или контейнеры) и отправляют в стерилизатор. Стерилизацию в автоклаве проводят в течение 20 минут при температуре 132 °С, в сухожаровом шкафу в течение 60 минут при температуре 180 °С.

Стерильный инструментарий хранят в запакованном виде в крафт-пакетах, а в распакованном виде — в УФ-стерилизаторах. Обратите внимание, что стерильный инструментарий ассистент должен выкладывать на столик непосредственно перед началом манипуляции.

Согласно санитарному законодательству химическая стерилизация с применением дезсредств допускается лишь в тех случаях, когда другие методы стерилизации применить невозможно. Это касается стерилизации инструментов, изготовленных из термолабильных материалов. Химическую стерилизацию проводят строго с соблюдением правил антисептики. После завершения химической стерилизации инструменты промывают дистиллированной водой.

Дезинфекция поверхностей и оборудования

Хорошо известно, что при работе с бормашиной в воздухе образуется аэрозоль из слюны, крови и патогенных микроорганизмов, который оседает на окружающие предметы. Поэтому дезинфекция поверхностей также играет важную роль в профилактике ВБИ.

Влажная уборка в стоматологическом кабинете должна проводиться как минимум дважды в день: обязательно в конце рабочего дня и между приемами посетителей. Уборку проводят с применением моющих и дезинфицирующих средств, например, «Проклин Олдей», «Септолит Лайт», «Септолит Плюс». Во время уборки персонал протирает полы, стены, подоконники, двери, мебель.

Дезобработку оборудования, расположенного в зоне лечения (столик для инструментов, зубоврачебная установка, плевательница, подголовник с подлокотниками и пр.) обрабатывают после каждого посетителя. Для этого можно использовать дезсредства для экспресс-обработки, такие, как аэрозольное средство «Септолит экспресс» и «Септолит антисептические салфетки».

Каждый месяц в помещениях стоматологической клиники проводят генеральную уборку, а в хирургических кабинетах — каждую неделю. Во время уборки с дезсредствами тщательно протираются все поверхности, мебель и оборудование.

Вернуться к списку публикаций

Дезинфекция и стерилизация в стоматологии


Термины и определения общих понятий, используемых в области стерилизации и дезинфекции в стоматологии



Антисептика — комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране или в организме в целом.


Асептика — система мероприятий, направленных на предупреждение внедрения возбудителей инфекции в рану, ткани, органы при хирургических операциях, перевязках и других лечебных и диагностических процедурах.


Бактериостатичность — свойства агентов химической, физической и биологической природы препятствовать размножению бактерий и вызывать бактериостаз.

Бактерицидность — свойство агентов химической, физической и биологической природы вызывать гибель бактерий.

Бактерицидное средство — дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление бактерий в вегетативной форме.



Величина контаминации — количество микроорганизмов на медицинских изделиях или их частях.

Вирулицидное средство — дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее инактивацию вирусов.

Вторичная контаминация — контаминация объектов после их стерилизации или дезинфекции.

Дезинфекционная деятельность — работы и услуги, включающие разработку, испытания, производство, хранение, транспортировку, реализацию средств дезинфекции, стерилизации, дезинсекции, дератизации, их применение для уничтожения возбудителей инфекционных, паразитарных заболеваний и их переносчиков, а также контроль за эффективностью и безопасностью проводимых дезинфекционных и стерилизационных мероприятий.

Дезинфекционные мероприятия — работы по профилактической дезинфекции (дезинфекция, деконтаминация, дезинсекция, дератизация), очаговой дезинфекции (текущая и заключительная дезинфекция, дезинсекция, дератизация), а также по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения.

Дезинфекция — умерщвление на объектах или удаление с объектов патогенных микроорганизмов (обеззараживание) и их переносчиков.


Дезинфекция Высокого Уровня (ДВУ) — уничтожение всех вегетативных бактерий (включая микобактерии туберкулеза), вирусов, грибов и большинства спор, однако возможно сохранение некоторых спор бактерий.


Дезинфицирующий агент — действующее вещество (ДВ), обеспечивающее умерщвление патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на (в) объектах окружающей среды.

Дезинфицирующее средство — физическое или химическое средство, включающее дезинфицирующий агент — действующее вещество (ДВ).


Деконтаминация — снижение количества микроорганизмов на объектах. Инициальное заражение — заражение объектов патогенными микроорганизмами до дезинфекции или стерилизации.

Инициальная контаминация — контаминация объектов до стерилизации или дезинфекции.

Контаминанты — микроорганизмы, обсеменяющие объекты.


Контаминация — обсеменение объектов микроорганизмами.


Нейтрализатор стерилизующего (дезинфицирующего) агента — вещество, которое прекращает действие стерилизующего (дезинфицирующего) агента.

Обеззараживание — умерщвление (или удаление) на (в) объектах окружающей среды патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.


Предстерилизационная очистка — удаление загрязнений с изделий медицинского назначения, подлежащих стерилизации.

Противоэпидемические мероприятия — комплекс санитарно-гигиенических, лечебно-профилактических, вакцинологических, дезинфекционных и административных мероприятий, направленных на предупреждение возникновения, локализацию и ликвидацию возникших эпидемических очагов инфекционных и паразитарных болезней.

Профилактическая дезинфекция — мероприятия по дезинфекции (обеззараживание), дезинсекции и дератизации, проводимые при отсутствии выявленного источника возбудителя инфекции с целью снижения уровня микробной контаминации различных объектов (профилактическая деконтаминация), снижения численности членистоногих (профилактическая дезинсекция) и грызунов (профилактическая дератизация) в помещениях, населенных пунктах и природных станциях.

Профилактическая деконтаминация — снижение микробной обсемененности объектов при отсутствии выявленного источника возбудителя инфекции.

Резистентность — устойчивость организма к воздействию различных повреждающих факторов.

Спороцидное средство — дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление спор микроорганизмов.

Стерилизация изделий — процесс умерщвления на (в) изделиях микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития.


Стерилизующий агент — действующее начало, обеспечивающее гибель микроорганизмов всех видов на (в) изделиях медицинского назначения.


Стерилизующее средство — физическое или химическое средство, включающее в себя стерилизующий агент.

Фунгицидное средство — дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление грибов.

Цикл дезинфекции (стерилизации) — минимальный интервал времени для загрузки, дезинфекции (стерилизации) и выгрузки при дезинфекции (стерилизации) изделий медицинского назначения в кипятильнике, в паровом, воздушном, газовом стерилизаторе или емкости. Экспозиционная выдержка — промежуток времени для наступления дезинфекции (стерилизации).

Дезинфекция оттисков, зубных протезов и других приспособлений и материалов

Дополнительные материалы, относящиеся к этой главе, можно найти на сайте Point.

Эшли Совардс, R.D.H., M.S.D.H., T.T.S. и Кэрол Спир, B.S.D.H., M.S.

Цели

Изучив эту главу, студент сможет делать следующее:

1. Опишите эффективный протокол инфекционного контроля при работе с оттисками и зубными протезами, которые передаются между следующими объектами:

а. Стоматологический кабинет и зуботехническая лаборатория в составе стоматологического кабинета

г. Стоматологический кабинет и внешняя коммерческая лаборатория

2. Обсудите и продемонстрируйте процедуру дезинфекции зубных слепков.

3. Объясните и продемонстрируйте процедуру дезинфекции зубных протезов и других стоматологических приспособлений после их обработки или корректировки.

4. Опишите и примените протокол инфекционного контроля, который необходимо соблюдать при шлифовании или полировке зубных протезов и других приспособлений.

5. Просмотрите предпочтительный метод (или методы) стерилизации или дезинфекции инструментов или предметов, используемых во время манипуляции с стоматологическими материалами и протезами.

Основная цель инфекционного контроля — предотвратить перекрестное заражение между пациентами и стоматологами. Поскольку оттиски или приборы, загрязненные слюной или кровью, часто переносятся в офисные или удаленные стоматологические лаборатории и из них, существует возможность перекрестного заражения. Следовательно, при обращении с этими предметами протокол инфекционного контроля должен быть четко передан и соблюден сотрудниками офиса, а также между офисом и любой удаленной зуботехнической лабораторией.Управление охраны труда и здоровья (OSHA) регулирует транспортировку зараженных предметов между стоматологическим кабинетом и зуботехнической лабораторией. Все предметы должны быть правильно упакованы и промаркированы.

Такой протокол инфекционного контроля должен включать инструкции по правильному обращению и дезинфекции или стерилизации оттисков, зубных протезов, приспособлений, а также оборудования или материалов, используемых во время обработки этих предметов. Следует также обратить внимание на средства индивидуальной защиты, которые используются при обращении с этими предметами, и на физическое расположение лаборатории (см. Главу 20 «Инфекционный контроль и безопасность в стоматологическом кабинете»).

Приемлемые дезинфицирующие средства включают глутаральдегиды, йодофоры, гипохлорит натрия, синтетические фенолы, двойные или синергетические четвертичные соединения, а также бромид натрия и хлор. Однако не все оттискные материалы совместимы со всеми дезинфицирующими средствами. Использование четвертичных соединений или бромида натрия и хлора для дезинфекции оттисков и протезов в литературе не встречается; однако, если вы выберете одно из этих химикатов для использования в стоматологическом кабинете или лаборатории, протестируйте его на образцах материалов, чтобы проверить совместимость.Кроме того, нельзя распылять глутаральдегиды, потому что они чрезвычайно токсичны в виде аэрозолей.

A. Средства индивидуальной защиты

Надевайте защитные очки, верхнюю одежду с длинными рукавами, маску и перчатки при работе с зараженным слепком, пока он не будет продезинфицирован.

B. Смойте оттиск

Сразу после снятия слепка в стоматологическом кабинете промойте его под проточной водой, чтобы удалить слюну или кровь ( Рис.21,1 ). Этот шаг необходим для оптимальной дезинфекции слепка.

РИСУНОК 21.1. Промывание оттиска проточной водой.

C. Методы дезинфекции

После ополаскивания и встряхивания оттиска для удаления излишков воды его необходимо продезинфицировать. Этого можно добиться, погрузив оттиск или обработав его подходящим дезинфицирующим средством (таблица 21.1). Всегда обращайтесь к методике дезинфекции, рекомендованной производителем для конкретного материала.

ТАБЛИЦА 21.1. Рекомендуемые дезинфицирующие средства для оттискных материалов a

По материалам Merchant VA. Инфекционный контроль в зуботехнической лаборатории. В: Молинари Дж. А., Харт Дж. А., ред. Практический инфекционный контроль в стоматологии. 3-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс; 2010: 251–258; Миллер CH, Паленик CJ. Инфекционный контроль и обращение с опасными материалами для стоматологической бригады. 4-е изд. Сент-Луис, Миссури: Мосби; 2010: 208–209.

1. Дезинфекция оттиска погружением

Дезинфекция погружением предпочтительнее дезинфекции распылением. Распыление может быть не таким эффективным, поскольку нельзя гарантировать постоянный контакт дезинфицирующего средства со всеми поверхностями оттиска.

а. Поместите промытый слепок в пластиковый пакет на молнии, содержащий соответствующее дезинфицирующее средство ( Рис. 21.2 ). Удалите воздух, чтобы обеспечить контакт всего оттиска с дезинфицирующим средством.Запечатайте мешок.

г. Время воздействия дезинфицирующего средства должно быть таким, которое рекомендовано производителем продукта. На полиэфирные и гидроколлоидные оттискные материалы дезинфицирующие средства могут оказывать неблагоприятное воздействие; поэтому ограничьте время их погружения не более 10 минутами.

г. Удалить оттиск дезинфицирующего средства.

г. Промойте оттиск проточной водой и встряхните, чтобы удалить излишки воды.

РИСУНОК 21.2. Оттиск погружен в дезинфицирующее средство в пластиковом пакете на молнии.

Только золотые участники могут продолжить чтение. Войдите или зарегистрируйтесь, чтобы продолжить

Связанные

.

11: Оттискные материалы | Карманная стоматология

Оттиски используются в стоматологической хирургии для получения точных (различной степени точности) отрицательных репродукций зубов пациента, окружающих тканей и зубных дуг. Слепки (позитивные репродукции) создаются из слепков зубов и используются для изготовления различных зубных протезов. Доступны различные типы оттискных материалов. Техника, точность, вкус, простота манипуляций, стоимость, стабильность размеров и предпочтения оператора будут определять выбор оттискных материалов (рис.11.1).

Рисунок 11.1 Классификация слепочного материала (упругие свойства).

Оттискные материалы загружаются в лотки в их исходной низкой вязкости (за исключением оттискного компаунда), а затем помещаются в рот пациента. Оттискный материал затвердеет химически или физически, и затем его можно будет удалить изо рта для дополнительного перорального использования.

Оттискные ложки используются для удержания оттискного материала, позволяя оператору поместить его в рот пациента.Они могут быть перфорированы для лучшего удержания оттискного материала. Ниже показаны и перечислены различные типы оттискных ложек с их отличительными характеристиками. Клеи могут быть указаны с использованием некоторых ложек для удержания оттискных материалов.

1. Беззубые металлические перфорированные оттискные ложки (рис. 11.2a)

  • Для беззубых пациентов
  • Автоклавируемый
  • Доступны разные размеры
  • Не легко адаптируется
  • Доступен в перфорированных и неперфорированных лотках
  • Может использоваться вместе с клеем

2.Беззубые пластиковые перфорированные оттискные ложки (рис. 11.2b)

  • Для беззубых пациентов
  • Одноразового использования
  • Доступны разные размеры
  • Легко адаптируется с использованием источника тепла и / или слепочного компаунда
  • Доступен в перфорированных и неперфорированных лотках
  • Может использоваться вместе с клеем.
  • Может иметь отдельную металлическую ручку, которую можно автоклавировать.
  • Для использования у пациентов с зубками
  • Автоклавируемый
  • Доступны разные размеры (размер обычно выгравирован на ручке подноса)
  • Не легко адаптируется
  • Доступен в перфорированных и неперфорированных лотках
  • Может использоваться вместе с клеем
  • Для использования у пациентов с зубками
  • Одноразового использования
  • Доступен в разных размерах (обычно обозначается цветом)
  • Легко адаптируется с использованием источника тепла и / или слепочного компаунда
  • Доступен в перфорированных и неперфорированных лотках
  • Может использоваться вместе с клеем
  • Для использования у пациентов с зубками
  • Используется для слепков определенных областей рта
  • Легко адаптируется, так как изготовлен из гибкого металла
  • Доступен в перфорированных и неперфорированных лотках
  • Может использоваться вместе с клеем
  • Изготовлен из гипсовой модели зубной или беззубой дуги пациента.
  • Изготовлен из акрилового материала.
  • Одноразового использования
  • Может использоваться вместе с клеем
  • Используется для получения слепка обеих арок одновременно
  • Изготовлен из комбинации пластика и гибкого материала лямок.
  • Доступны разные размеры
  • Одноразового использования
  • Может использоваться вместе с клеем

Рисунок 11.2 (a) Металлические оттискные ложки для беззубых зубов. (б) Беззубые пластиковые перфорированные слепочные ложки. (c) Перфорированные оттискные ложки из зубчатого металла. d, e) зубчатые пластиковые перфорированные «стандартные» лотки. (f) Универсальные секционные слепочные ложки. (g) Пользовательский / специальный лоток. (в – м) Triple tray®. (n, o) Установка для обратимого гидроколлоидного оттискного материала.

Необходимо обеззараживать оттиски для предотвращения перекрестного загрязнения. После снятия слепка изо рта пациента необходимо выполнить следующую процедуру:

Использование средств индивидуальной защиты:

  • Проверьте зубной слепок на наличие крови и / или посторонних частиц.Вымойте в специальной раковине, чтобы удалить то же самое.
  • Процесс дезинфекции будет затруднен без надлежащего удаления крови и / или мусора.
  • Следуйте инструкциям производителя в отношении погружения слепка в дезинфицирующий раствор для обеспечения совместимости материалов и продолжительности погружения.
  • После обеззараживания оттиска промыть оттиск в специальной раковине.
  • Важно, чтобы во время обеззараживания оттиска соблюдались надлежащие методы контроля перекрестной инфекции; Избегайте загрязнения погружной ванны и раковины.В случае заражения продезинфицируйте
  • Дезинфицированные оттиски следует подготовить для лаборатории, поместив их в герметичный пакет, стараясь не заразить его перекрестно. Запечатать сумку
  • Полный рецепт лаборатории, обеспечивающий регистрацию даты, времени и раствора дезинфицирующего средства
  • Прикрепите лабораторный рецепт к запечатанному пакету над печатью, стараясь не проколоть пакет.
  • Транспорт в зуботехническую лабораторию

При получении лабораторных работ продезинфицируйте и прополощите перед введением в рот пациента.

( адаптировано из Политики контроля перекрестных инфекций, Dublin Dental Hospital, 2010. )

A. Обратимый гидроколлоидный слепочный материал (агар)

Оттискные материалы Agar были в значительной степени заменены резиновыми оттискными материалами.

Составляющие материала / состав

Поставляется в виде геля в тубе

  • Агар
  • Боракс
  • Сульфат калия
  • Алкилбензоат
  • Цвета
  • Ароматизаторы
  • Вода

Недвижимость

  • Материал имеет две формы: золь (жидкость) и гель (более вязкий).
  • гидрофильный
  • После перехода в гелеобразное состояние при правильной температуре он может быть переведен в жидкое (золь) состояние

Преимущества

  • Точный
  • Высокое разрешение
  • Легко манипулировать
  • Используется для оттисков твердых и мягких тканей
  • Экономичный
  • Нетоксичный
  • Не оставляет пятен
  • гидрофильный

Недостатки

  • Более длительное время подготовки
  • Слезы легко
  • Длительное время схватывания
  • Необходимо немедленно залить
  • Изначально дорого покупать спецтехнику
  • Размерно нестабильный
  • Заявлено, что можно использовать повторно, но из-за проблем с инфекционным контролем это неприемлемо

Показания и противопоказания к применению

Показания

  • Оттиски полной дуги
  • Оттиск квадранта
  • Оттиски частичных протезов

Противопоказания

  • Подносы очень громоздкие, и некоторые пациенты могут их не переносить

Торговые наименования

Гидроколлоидный агар синий VanR

Манипуляции

Для оттискных материалов с агара не требуется никаких манипуляций, кроме специальной водяной бани с тремя отделениями (Рисунок 11.1n) необходим для облегчения использования этого оттискного материала. Необходимо следить за тем, чтобы водяная баня не загрязнялась во время использования (Рисунки 11.2n – 11.2o).

Время перемешивания

  • Смешивание не требуется

Время схватывания

Инструменты и материалы, использованные при установке

  • Желаемый оттискный материал
  • Шприц, игла
  • Оттискная ложка
  • НКТ
  • Ткань и ополаскиватель для пациента
  • Сумка лабораторная
  • Лабораторный рецепт
  • Баня водяная специальная с тремя отделениями

Б.Необратимый гидроколлоидный слепочный материал (альгинат)

Альгинат — один из наиболее часто используемых оттискных материалов в стоматологической хирургии с широким спектром применения. Его смешивают с водой, чтобы получить желаемую смесь.

Составляющие материала / состав

Выпускается в банках, бестарной упаковке и предварительно отмеренных упаковках. Мерная лопатка и мерная емкость для воды входят в комплект альгинатных материалов.

  • Соль альгиновой кислоты
  • Тринатрийфосфат
  • Наполнители (диатомитовая земля)
  • Цвета
  • Ароматизаторы
  • Дегидрат сульфата кальция
  • Сульфат калия

Недвижимость

  • Доступны в обычной и быстрой формах
  • Беспыльный порошок
  • Время работы и время схватывания можно регулировать, увеличивая или уменьшая температуру воды (увеличение температуры, уменьшение рабочего времени и времени схватывания, а уменьшение температуры увеличивает время работы и время схватывания)
  • Оптимальная температура воды 21 º C
  • Доступны некоторые материалы, меняющие цвет при изменении состояния; это помогает обеспечить полное затвердение материалов перед извлечением изо рта

Преимущества

  • Легко манипулировать
  • Дешево
  • Быстрая установка
  • Эластичные свойства делают его подходящим материалом для снятия оттисков с поднутрений.
  • гидрофильный

Недостатки

  • Плохая стабильность размеров
  • Модели необходимо заливать в течение одного часа и поддерживать во влажном состоянии до заливки.
  • Не так точен, как вторичные оттискные материалы
  • Комнатная температура и влажность могут влиять на работу и время схватывания альгината

Показания и противопоказания к применению

Показания

Показов за:

  • Учебные модели
  • Частичные съемные протезы
  • Изготовление временных / временных коронок и мостовидных протезов
  • Изготовление индивидуальных / специальных лотков
  • Ортодонтические приспособления
  • Подносы для отбеливания
  • Каппы

Противопоказания

  • Не так точны, как другие продукты, поэтому они не подходят для оттисков коронок и мостовидных протезов
  • Следует соблюдать осторожность при съемке слепков у пациентов с сильным рвотным рефлексом

Торговые наименования

Чертеж Cremex Дентсплай
Hydrogum® (Рисунок 11.3а) Жермак
Интегра TM Керр
Jeltrate® Карсон Дентал
Kromopan® 100 Кромопан
Xantalgin® Select (Рисунок 11.3b) Heraeus

Рисунок 11.3 (a) Hydrogum® — Ahermack. (б) Xantalgin® Select — Heraeus.

Использование средств индивидуальной защиты:

Шаг 1

  • Перед снятием альгинатных оттисков в полости рта пациента не должно быть мусора.

Шаг 2

  • Пропустите оператору оттискную ложку (верхнюю или нижнюю) для примерки (при необходимости добавьте слепочный состав, чтобы изменить или удлинить оттискную ложку)

Шаг 3

  • Во избежание перекрестного загрязнения флакона используйте одноразовую кисточку для аппликатора, чтобы нанести клей для ложки на слепочную ложку, если это указано (лучше всего нанести немного клея, а затем использовать одноразовую кисть для нанесения на слепочную ложку, чтобы избежать загрязнения )
  • Убедитесь, что клей для ложки нанесен на край оттискной ложки, а также на корпус.

Шаг 4

  • Взбейте альгинат в банке и распределите альгинатный порошок с помощью мерной ложки, предоставленной производителем (заполните мерную ложку из банки и выровняйте с помощью одноразового депрессора для языка или стерилизованного шпателя с рыбьим хвостом)
  • Размер выбранной оттискной ложки будет определять количество выдаваемого материала

Шаг 5

  • С помощью мерной емкости, поставляемой производителем, отмерьте необходимое количество воды (это соответствует количеству выданного порошка)
  • Идеальная температура воды 21 ° C

Шаг 6

  • Сообщите стоматологу, когда должно начаться смешивание, и добавьте порошок и воду
  • Смешайте порошок и воду, помешивая, кончиком шпателя.
  • Переверните чашу на бок в ладони и вращайте чашу, продолжая перемешивать материал широкой частью лезвия шпателя до получения однородной смеси.

Шаг 7

  • Соберите альгинат в чашу и с помощью лезвия шпателя возьмите материал для загрузки слепочной ложки

Шаг 8

  • Загрузите оттискную ложку с помощью шпателя
  • Лоток для нижней челюсти загружается с языка с использованием техники перекрытия, чтобы обеспечить полное заполнение лотка
  • Верхнечелюстная ложка заполняется из задней части, и материал непрерывно добавляется под давлением до тех пор, пока лоток не заполнится
  • Оператор может вручную ввести дополнительный оттискный материал в случае, если у пациента высокое нёбо
  • Оставьте немного лишнего материала на тыльной стороне руки в перчатке — это используется, чтобы проверить, застыл ли материал после помещения в полость рта

Шаг 9

  • Когда оттискная ложка будет заполнена, передайте ее оператору, вытягивая сначала ручку ложки

Шаг 10

  • Удалите излишки материала со шпателя и гибкой миксерной чаши и выбросьте в контейнер для загрязненных отходов

Рисунок 11.4 (a) Установка необратимого гидроколлоидного слепочного материала. (b) Шаг 3 — Нанесите клей на оттискную ложку перед использованием. (c – e) Этап 4 — дозирование порошка. (f) Этап 5 — Измерение воды />

Только золотые участники могут продолжить чтение. Войдите или зарегистрируйтесь, чтобы продолжить

Связанные

.

Эффективность альтернативных методов дезинфекции зубных щеток: исследование in vitro

Цель. Это исследование было направлено на оценку эффективности альтернативных методов дезинфекции зубных щеток. Методы. В исследование было включено двести восемьдесят зубных щеток. Зубные щетки были разделены на 7 групп и заражены стандартизированными суспензиями Lactobacillus rhamnosus (L. rhamnosus), Streptococcus mutans (S. mutans), Staphylococcus aureus (S.aureus), и Escherichia coli (E. coli ). Были протестированы следующие дезинфицирующие средства: 1% гипохлорит натрия (NaOCl), 100% и 50% белый уксус, микроволновая (MW) печь, ультрафиолетовое (УФ) дезинфицирующее средство и прополис, содержащий ополаскиватель для рта (MCP). Данные были проанализированы с помощью тестов Краскела Уоллиса и Данна. Результаты. Статистически значимые различия были обнаружены между различными методами и контрольной группой для всех протестированных бактерий. Между всеми тестируемыми группами для всех микроорганизмов были статистически значимые различия.MW был наиболее эффективным для L. rhamnosus , а 100% белый уксус был наиболее эффективным методом для S. mutans и S. aureus . NaOCl оказался наиболее эффективным в отношении E. coli . Заключение. Это исследование показало, что 100% -ный белый уксус считается эффективным в отношении тестируемых микроорганизмов. Точно так же 1% NaOCl экономичен, легко доступен и сравнительно эффективен для дезинфекции зубных щеток. Поскольку эти агенты нетоксичны, рентабельны и легко доступны, они могут быть подходящими для домашнего использования.

1. Введение

Зубные щетки необходимы для ежедневной гигиены полости рта, но остатки, оставшиеся на их щетине, могут ускорить рост нескольких микроорганизмов [1]. В полости рта присутствуют более 700 видов бактерий, а также грибки, вирусы и временные микроорганизмы, которые могут вызывать или не вызывать различные заболевания [2].

Еще в 1920 году Кобб сообщил, что зубная щетка является причиной повторяющихся инфекций во рту [3]. Многие бактерии обнаруживаются в зубных щетках после чистки зубов [4], и микроорганизмы сохраняют свою жизнеспособность от одного дня до одной недели [5].Кроме того, зубные щетки часто хранятся в ванной комнате или рядом с туалетом и раковиной, и они могут подвергаться воздействию кишечных бактерий, рассеянных аэрозолями [6]. Даже небольшие капли из унитаза вызывают выброс в атмосферу миллионов бактерий [7]. Загрязнение в основном увеличивается, когда зубные щетки используются совместно или хранятся вместе. Несколько факторов, включая длительное время выживания микроорганизмов, условия хранения и расположение зубной щетки, вызывают повторное внедрение потенциальных патогенов и перекрестную инфекцию в полость рта [7].

Загрязненные зубные щетки могут играть важную роль при многих заболеваниях полости рта и системных заболеваниях, включая сепсис, желудочно-кишечные, сердечно-сосудистые, респираторные и почечные заболевания [8]. В некоторых исследованиях высказывалась мысль о необходимости дезинфекции зубных щеток для предотвращения различных заболеваний разными методами [9, 10]. Это состояние особенно важно для детей, пожилых людей и пациентов из группы высокого риска, включая людей с ослабленным иммунитетом или тех, кто подвергается трансплантации органов или химиотерапии [8].

Несмотря на то, что в литературе исследовались различные методы дезинфекции зубных щеток, многие исследователи уделяли этому вопросу мало внимания, поскольку большинство клиницистов по-прежнему рассматривают зубные щетки только как средства контроля кариеса и налета [7].

Это исследование было направлено на оценку эффективности 1% раствора гипохлорита натрия (NaOCl), микроволновой печи (MW), УФ (УФ) дезинфицирующего средства, прополиса, содержащего ополаскиватель для полости рта (MCP), 50% белого уксуса и 100% белого уксуса. для дезинфекции зубных щеток.

2. Методы

Staphylococcus aureus (S. aureus) ATCC № 25923, Streptococcus mutans (S. mutans) ATCC № 25175, Escherichia coli (E. coli) ATCC № 25922, и Lactobacillus rhamnosus (L. rhamnosus) ) ATCC # 9595 В исследовании использовались штамма. S. aureus и E. coli культивировали в бульоне для инфузии мозга и сердца (BHI, Merck, Германия) при 37 ° C в течение 24 часов в аэробных условиях. S. mutans культивировали в триптиказо-соевом бульоне (TYC) (Merck, Германия). L. rhamnosus культивировали в бульоне MRS (Merck, Германия) при 37 ° C в течение 48–72 часов в атмосфере 5% CO. 2 . После инкубации бактериальный инокулят доводили до колониеобразующих единиц / мл (КОЕ / мл) в соответствии со стандартом теста Макфарланда 0,5.

Было включено двести восемьдесят зубных щеток со стандартными размерами, щетиной и товарными знаками (Colgate Palmolive Corp., Стамбул, Турция), и в исследовании использовались 6 различных методов. После стерилизации в автоклаве зубные щетки были разделены на 7 групп (6 тестовых групп и 1 контрольная группа) в соответствии с микроорганизмами и методом (таблица 1).


Группа Методы Время (минуты)

Группа 1 Зубные щетки были погружены в 1% NaOCl 10

Группа 2 Зубные щетки были помещены в микроволновую печь на высокой мощности (650 Вт) 3

Группа 3 Зубные щетки были помещены в УФ-дезинфицирующее средство на высокой мощности 20

Группа 4 Зубные щетки были погружены в МКП 10

Группа 5 Зубные щетки были погружены в 50% белый уксус 10

Группа 6 Зубные щетки были погружены в 100% белую виноградную лозу gar 10

Группа 7
(контроль)
Промыли зубные щетки водопроводной водой 1

Были скорректированы стандартизированные суспензии выбранных микроорганизмов к колониеобразующей единице на мл (КОЕ / мл) при определенной плотности, подтвержденной спектрофотометрическим измерением их оптической плотности (OD) с использованием ридера ELISA (OD: 0.600–0,625) (Biotek ELx800, США). Каждую зубную щетку погружали в пробирки, содержащие 10 мл BHI для S. aureus и E. coli , TYC для S. mutans и MRS для L. rhamnosus . Затем их инфицировали 100 мкл л каждого бактериального инокулята, как упоминалось ранее. Зубные щетки, инфицированные S. mutans и L. rhamnosus , помещали в инкубатор при 37 ° C с 5% CO 2 на 24–48 часов, а S.aureus — и Пробирки, инфицированные E. coli , помещали в аэробный инкубатор при 37 ° C на 24 часа. После инкубации зубные щетки осторожно извлекали из пробирок и трижды промывали 5 мл физиологического раствора с фосфатным буфером (PBS) (pH 7,2). Затем их по отдельности помещали в пробирки, содержащие 10 мл 1% NaOCl, 50% или 100% белого уксуса в стерилизованной деионизированной воде или готовый к использованию MCP (Fresh-up Cosmetics, Варна, Болгария) на 10 мин. Затем зубные щетки вынимали из пробирок, помещали в другие стерилизованные пробирки с дистиллированной водой, осторожно промывали 3 раза и помещали в другие пробирки с 10 мл стерилизованной дистиллированной воды.В другой группе зубные щетки помещали в УФ-дезинфицирующее средство (Dental Total Status) на 20 минут для обеих сторон щеток. В другой группе зубные щетки были помещены в микроволновую печь при мощности 650 Вт на 3 минуты для обеих сторон щеток. Затем зубные щетки помещали в пробирки с 10 мл стерилизованной дистиллированной воды. В контрольной группе инфицированные зубные щетки помещали в 10 мл стерилизованной дистиллированной воды. После тщательного встряхивания в течение 1 минуты все пробирки разводили до 10 -2 и 10 -3 , и 25 аликвот мкл л образцов высевали на агар BHI (Merck, Германия) на S.aureus и E. coli , на агаре TYC (Merck, Германия) для S. mutans, и на агар MRS (Merck, Германия) для L. rhamnosus . После инкубации, как упомянуто ранее, выросшие колонии подсчитывали, и количество колоний рассчитывали в соответствии с коэффициентом разбавления и определяли как КОЕ / мл.

2.1. Анализ данных

Средние значения, стандартные отклонения и медианы для данных для каждого микроорганизма после дезинфекции различными методами были рассчитаны с использованием описательной статистики.Данные были проанализированы с использованием непараметрических тестов Краскела Уоллиса и Данна с 95% доверительными интервалами для множественных сравнений.

3. Результаты

Статистически значимые различия () были обнаружены между различными методами (группы 1, 2, 3, 4, 5 и 6) и контрольной группой (группа 7) для всех протестированных бактерий. Были статистически значимые различия () между группами (группы 1, 2, 3, 4, 5 и 6) всех протестированных методов для всех микроорганизмов.MW был наиболее эффективным для L. rhamnosus , за которым следовали 100% белый уксус, 1% NaOCl, 50% белый уксус, УФ и MCP (таблица 2). Кроме того, 100% белый уксус оказался наиболее эффективным методом для S. mutans , за которым следуют 1% NaOCl, 50% белый уксус, УФ, MW и MCP (таблица 3). Кроме того, 100% белый уксус оказался наиболее эффективным для S. aureus , за которым следуют 1% NaOCl, MW, УФ, 50% белый уксус и MCP (таблица 4). Для E. coli наиболее эффективным был 1% NaOCl, за которым следовали 100% белый уксус, 50% белый уксус, MW, УФ и MCP (таблица 5).Хотя между MCP и контрольной группой были обнаружены статистически значимые различия (), этот метод оказался менее эффективным для дезинфекции зубных щеток.



Бактерии Метод Среднее значение Стандартное отклонение Минимум Максимум Медиана Тест Краскала Уоллиса значение Статистически значимая разница
л.rhamnosus 1% NaOCl
50% белый уксус
100% белый уксус
MW
UV
MCP
Control

.

Основное руководство по профилактике и контролю инфекций в стоматологии

Перейти к основному содержанию

Wiley

Корзина0

  • КТО МЫ СЛУЖИМ

    • Ученики

      • Аренда учебников

    • Инструкторы

    • Авторы книг

    • Профессионалов

    • Исследователи

    • Учреждения

    • Библиотекарей

    • Корпорации

    • Общества

    • Редакторы журналов

    • Книжные магазины

    • Правительство

  • ПРЕДМЕТЫ

    • Бухгалтерский учет

    • сельское хозяйство

      • сельское хозяйство

      • Аквакультура

    • Искусство и архитектура

      • Архитектура

      • Искусство и прикладное искусство

      • Графический дизайн

    • Управление бизнесом

      • Бухгалтерский учет

      • Реклама

      • Управление бизнесом

      • Бизнес и общество

      • Деловая этика

      • Самопомощь в бизнесе

      • Бизнес-статистика и математика

      • Бизнес-технологии

      • Развитие карьеры

      • Консультации

      • Экономика

      • Финансы и инвестиции

      • Интеллектуальная собственность и лицензирование

      • Управление

      • Маркетинговые продажи

      • Некоммерческая организация

      • Производственные операции

      • Управление проектом

      • Недвижимость и недвижимость

      • Государственное управление

      • Управление качеством

      • Малый бизнес

      • Специальные темы

      • Технологии

      • Обучение и развитие персонала

    • Химия

      • Союзная химия здравоохранения

      • Аналитическая химия

      • Аккумуляторы и топливные элементы

      • Биохимия

      • Катализ

.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.