Контроль качества дезинфекции: Контроль дезинфекции в ЛПУ

ГЛАВА IV. Методы контроля качества дезинфекции,

⇐ ПредыдущаяСтр 4 из 6Следующая ⇒

Предстерилизационной очистки и стерилизации

Изделий медицинского назначения

Контроль качества дезинфекции

О качестве дезинфекции судят по отсутствию на изделиях медицинского назначения после ее проведения золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролю подлежит 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования (но не менее 3 единиц).

Контроль качества дезинфекции осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят с поверхности изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после нее. Взятие смывов производят стерильными марлевыми салфетками, смоченными в стерильной воде.

Смывы по 0,1 мл наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термосе при температуре 37°С. Результаты учитывают через 48 часов. При наличии роста микроорганизмов на агаре идентификацию выделенным микроорганизмом проводят в соответствии с действующими методическими документами. Дезинфекцию считают эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки проводится путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остатков крови и фенолфталеиновой на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства.

Фенолфталеиновая проба

Для постановки пробы используют 1%спиртовой р-р фенолфталеина, который состоит из 60 г спирта, 40 г дистиллированной воды и 1г фенолфталеина. Спиртовой раствор наносится пипеткой на вату, которой протираются обработанные инструменты.

При наличии синтетических моющих средств появляется розовoe окрашивание. При этом всю партию изделий подвергается снова ополаскиванию в проточной, а за тем дистиллированной воде.

Азопирамовая проба

Для приготовления 1 л р-ра азопирама берут 100,0 азопирама и 1,0-1,5 солянокислого анилина, вещества смешиваются и заливаются 96° этиловым спиртом до объема 1 литр. Азопирам хранится при температуре +18+23° не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива в течение этого времени, без выпадения осадка, качество не снижается.

Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы количества исходного раствора и 3% перекиси водорода. Наносятся на вату и протирают инструмент.

В присутствии следов крови не позднее, чем через 1 мин после контакта реактива с загрязненными инструментами появляется вначале фиолетовое окрашивание, переходящее в розово-сиреневое или буроватое (буроватое при наличии на инструментах ржавчины).

Проба с азопирамом по чувствительности превышает в 10 раз амидопириновую пробу.

Амидопириновая проба

Перед постановкой пробы в тигельке смешивают равные количества 5% спиртового р-ра амидопирина, 30% р-ра уксусной кислоты и 3% р-ра перекиси водорода. Появление сине-зеленого окрашивания при нанесении реактива на изделие свидетельствует о наличии остатков крови. Реактив про­веряют на скрытую кровь также как и в предыдущем случае.

При положительной реакции на скрытую кровь всю партию изделий снова подвергают повторной обработке.

Контролю ежедневно подвергают 3% от одновременно обработанных изделий одного назначения (партии), но не менее 3-5 проб.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Государственного санитарно-эпидемиологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра ЦС отделения.

Контроль качества стерилизации

Контроль работы предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценки ее эффективности. Контроль параметров режимов стерилизации проводят физическим (с помощью контрольно-измерительных приборов) и химическим (с использованием химических индикаторов) методами. Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований, проводимых при применении биотестов и контроле стерильности изделий, подвергнутых стерилизации.

Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения осуществляют проведением проверки температурного режима. Проверку температурного режима осуществляют с помощью термометров.

Для контроля температуры используют также химические индикаторы. Индикаторы представляют собой полоску бумаги с нанесенным на нее индикаторным слоем и предназначены для оперативного визуального контроля совокупности параметров (температура, время) режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

Медицинский персонал, использующий средства физического и химического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме № 257/у.

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов на основании гибели спор термоус­тойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры в упаковке, которая помещается в стерилизационную камеру.

Основанием для заключения об эффективной работе стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологиче­ских исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

ГЛАВА V. Методы и способы обработки инструментария и

Изделий медицинского назначения в стоматологии

Обработка стоматологического инструментария

Инструменты, входящие в терапевтический и ортопедический наборы (зеркала зубные, пинцеты, зонды, гладилки, штопферы, экскаваторы, шпатели) после проведения дезинфекции, предстерилизационной обработки по обычной методике, стерилизуют паровым (в автоклаве) и воздушным (в сухожаровом шкафу) способами.

Стекла для замешивания пломбировочного материала и цемента

После проведения дезинфекции и предстерилизационной обработки стерилизуются паровым методом (автоклавированием).

Скелетные карпульные металлические инъекторы

Инъекторы карпульные металлические дезинфицируются до и после использования путем протирания стерильным ватным тампоном, смоченным в 70° спирте. По окончании смены они подвергаются дезинфекции, предстерилизационной обработке, стерилизации.

Не до конца использованную карпулу с анестетиком применять повторно запрещено, даже если набирать раствор, другой иглой.

Наконечники к бормашинам и световоды

Светоотверждающих ламп

Наконечниками после каждого пациента снимают и тщательно протирают наружные поверхности и канал для бора стерильным тампоном двукратно через 15 мин, смоченным 3% р-ром хлорамина, или 70° спиртом.

Световоды светоотверждающих ламп тщательно протирают двукратно с интервалом 15 мин 70° спиртом.

Боры, эндодонтический инструментарий и абразивный

Материал

Мелкий инструментарий после проведения дезинфекции, предстерилизационной обработки по обычной методике, стерилизуют паровым (в автоклаве) и воздушным (в сухожаровом шкафу) способами, а так же в гласперленовых стерилизаторах.

Пульпоэкстракторы, каналонаполнители и разделительные матрицы повторно не используются, т. к. являются разовым инструментарием. Отработанные инструменты сбрасываются в плевательницу и обеззараживаются вместе с ее содержимым (см. п. 5.17.).

Новые инструменты используются только после проведения предстерилизационной обработки истерилизации.

Держатели

Держатели для щеточек, используемых для реставрации, и в работе с самотвердеющими пластмассами после каждого пациента тщательно протирают стерильным тампоном двукратно через 15 мин, смоченным 3% р-ром хлорамина, или 70° спиртом.

Щёточки одноразовые после дезинфекции утилизируются как одноразовый инструмент.



Контроль качества дезинфекции изделий медицинского назначения — Студопедия

Контроль качества дезинфекции возложен на сотрудников, отвечающих за противоэпидемический режим в отделении, проводится должен ежедневно. Сотрудники Центра Госсанэпиднадзора должны проводить контроль в хирургическом, инфекционном стационаре, детских и родовспомогательных учреждениях 1 раз в 3 месяца, в соматических отделениях 2 раза в год. Виды контроля качества дезинфекции:

1. визуальный контроль – выясняют санитарное состояние объекта, своевременность и полноту проведения дезинфекции, правильность выбора метода, качество обеззараживания поверхностей, отдельных вещей, условия хранения дез. средств

2. химический контроль проводят для определения содержания активнодействующего вещества (АДВ) в исходном растворе или сухом веществе, в рабочих растворах и на обработанных поверхностях.

Ø Определение содержания активнодействующего вещества в исходном веществе и рабочем растворе осуществляют с помощью лабораторных исследований и экспресс методом:

а) лабораторный метод — отбирают пробы сухого препарата или концентрированного раствора и пробы рабочего раствора и в условиях химической лаборатории определяют количество активного вещества и соответствия его норме.

б) экспресс-метод основан на использовании индикаторных бумаг для каждого химического вещества отдельно ( на хлорамин и хлорную известь «Хлор-тест», на перекись водорода «Пероксид – тест» и др.), которые выпускаются в виде тонких полосок. Индикаторную полоску опускают на 1 секунду в исследуемый раствор , изменение цвета сравнивают со шкалой цветности и определяют концентрацию АДВ. В настоящее время разработаны индикаторы не только на традиционные дезсредства, но и на современные средства септабик, лизоформин, аламинол и др.

Ø Для оценки остаточного количества хлорсодержащих дезсредств на обработанной поверхности используют пробу Вильковича. В состав реактива входят 4 % раствор крахмала и 6 % раствор йодида калия в равных количествах, срок хранения 1 месяц. На ватный тампон наносится данный реактив и этим тампоном протираются поверхности столов, кушеток, предметов ухода за больным и медицинский инструментарий. При положительной пробе (т.е. при наличии хлорсодержащих дезинфицирующих средств) появляется синее окрашивание.

3. бактериологический контроль – более точный и надежный . Контроль качества дезинфекции осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят с поверхностей изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после неё. Взятие смывов производят стерильными марлевыми салфетками размером 5 на 5 см, смоченными в стерильной воде и после протирания поверхности помещают их в стерильную пробирку. Из пробирок делают посевы на питательную среду и определяют микроорганизмы. Контролю подлежит 1 % продезинфицированных изделий одного наименования, но не меньше 3-5 шт. Дезинфекцию считают эффективной при отсутствии на изделиях медицинского назначения золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки.

Тема: Общие требования к дез. режиму ЛПУ.

Контроль качества дезинфекционных мероприятий — Студопедия

Для оценки качества дезинфекции как противоэпидемического мероприятия используются следующие критерии: а) своевременность проведения дезинфекции; б) полнота охвата дезинфекционными мероприятиями; в) соблюдение методики проведения дезинфекционных мероприятий; г) качество средств дезинфекции.

Качество заключительной дезинфекции оценивается по результатам контроля, который осуществляется соответствующими подразделениями центров дезинфекции и стерилизации и центров гигиены и эпидемиологии. При этом контроль должен быть внезапным, независимым и объективным [21].

В течение длительного времени дезинфекция оценивалась как своевременная, если она была проведена после эвакуации больного не позже 6 часов в городах и не позже 12 часов в сельской местности [5, 7, 18]. Однако дезинфекционная практика показала, что эти сроки, с одной стороны, трудно объективно учесть, а с другой стороны, они часто оказывались невыполнимыми (например, при госпитализации больного в вечернее время). Так, по данным Л.И.Карпенко с соавт. [12], в день изоляции заболевшего ребенка из детского дошкольного учреждения выполнено только 12,7% заключительных дезинфекций. На второй день и позже изоляции заключительная дезинфекция проведена в 87,3% детских дошкольных учреждений. Исследования В.Г.Катькалова с соавт. [15], показывают, что в первые 6 часов после получения заявки заключительная дезинфекция проводилась в 60% очагов острых кишечных инфекций.

С учетом этого организационно оправданным и эпидемиологически приемлемым является выполнение заключительной дезинфекции в эпидемических очагах в течение суток с момента госпитализации или изоляции больного из организованного коллектива. Разумеется, что эти сроки не могут быть оправданными при возникновении очагов карантинных и особо опасных инфекций, в которых заключительная дезинфекция должна проводиться тотчас же после госпитализации больного.

Полнота охвата заключительной дезинфекцией оценивается как удовлетворительная если дезинфекционные мероприятия проведены не менее, чем в 95% от числа эпидемических очагов, подлежащих обработке.

Соблюдение методики проведения дезинфекционных мероприятий оценивается визуально и с использованием лабораторных методов не менее, чем в 1% квартирных очагов и не менее, чем 10% организованных коллективах, в период от 1 до 3 часов после окончания дезинфекции. При этом в каждом очаге отбирают не менее 10 смывов для микробиологических исследований, 10 экспресс-проб на остаточное количество дезинфицирующих веществ.

Во многих руководствах [5, 7, 18] и инструктивно-методических документах прошлых лет указывается на неудовлетворительное качество заключительной дезинфекции, если санитарно-показательная микрофлора обнаруживается хотя бы в одном смыве. Исследования последних лет показывают, что требование полного уничтожения санитарно-показательной микрофлоры (кишечная палочка, золотистый стафилококк и др.) в окружении больного в эпидемическом очаге маловероятно и научно не обосновано [44].

В настоящее время заключительная дезинфекция оценивается как удовлетворительная при высеве санитарно-показательной микрофлоры не более, чем 0,5% смывов и неудовлетворительных экспресс-пробах на наличие остаточных количеств дезинфицирующих веществ не более, чем в 0,5% проб.

Для оценки качества средств дезинфекции в контролируемых очагах отбирают не менее 2 проб дезинфицирующих растворов и средств с целью определения процентного содержания в них активно действующего вещества. Применение дезинфицирующих растворов заниженной концентрации не допускается.

Если после проведения заключительной дезинфекции высевается патогенная микрофлора, то дезинфекция оценивается как неудовлетворительная. В этих случаях необходимо повторное проведение заключительной дезинфекции с последующим лабораторным контролем.

Качество текущей дезинфекции. Текущая дезинфекция считается своевременно организованной, если население начинает выполнять ее не позже, чем через 3 часа с момента выявления инфекционного больного.

Центр дезинфекции и стерилизации или территориальный центр гигиены и эпидемиологии осуществляет контроль качества текущей дезинфекции в очагах, с применением лабораторных методов не менее, чем в 1% очагов. Обязателен контроль текущей дезинфекции в очагах брюшного тифа, паратифов, дизентерии, туберкулеза, дифтерии, грибковых заболеваний. При остальных инфекционных заболеваниях контроль проводится по эпидемическим показаниям.

При контроле текущей дезинфекции в очаге инфекционного заболевания на дому проверяют правильность приготовления дезинфицирующих растворов и методов обеззараживания.

При осуществлении контроля минимальное количество взятых анализов в одном очаге составляет: бактериологические смывы — 10 смывов; дезинфицирующие средства — по одной пробе сухого препарата и рабочего раствора.

Качество текущей дезинфекции считается удовлетворительным если число неудовлетворительных смывов менее 3%, количество отрицательных экспресс-проб на наличие остаточного количества дезинфицирующего препарата не более 3%, а число неудовлетворительных анализов дезрастворов не более 5%.

Экспресс-метод определения хлорсодержащих дезинфектантов с помощью метоловой индикаторной бумаги. При взаимодействии метола с активным хлором индикаторная полоска быстро меняет цвет на сиренево-зеленую гамму оттенков в зависимости от концентрации активного хлора. Цвет полоски сравнивают со шкалой цветности, где каждой концентрации раствора соответствует определенный цвет бумаги.

Экспресс-методом можно определить наиболее часто используемые на практике растворы следующих концентраций: 0,5; 1,0; 3,0; 5,0; 10%. Окраска индикаторной бумаги и соответствующие ей концентрации растворов представлены в таблице 14.

Для приготовления индикаторных метоловых бумажек используют фильтровальную бумагу. Ее обильно смачивают 1% водным раствором метола и высушивают в темноте. Нарезают полоски 1 х 5 см — в темноте и

Таблица 14.

Цвет индикаторной бумаги и концентрация растворов дезинфектантов

их необходимо хранить в темных пакетах от фотобумаги или стеклянных оранжевых флаконах с притертой пробкой. Срок годности индикаторных бумажек — 1 месяц.

Качество камерной дезинфекции оценивается прежде всего по соблюдению предусмотренных инструкциями режимов, что отмечается в специальном журнале. Контроль температурного режима в камерах осуществляют путем закладывания в вещи максимальных термометров, которые помещаются на различных уровнях (примерно в 15 точках).

Вместо максимальных термометров могут быть использованы некоторые вещества с определенной температурой плавления, например нафталин (80°С), резорцин (110°С), сера (120°С). Вещества эти закладывают в стеклянные трубочки. Если по окончании экспозиции они оказываются расплавленными, то это является доказательством того, что в камере была достигнута нужная температура. Однако ни по показаниям максимальных термометров, ни по химическим веществам нельзя судить о том, сколько времени держалась достигнутая температура. Наиболее надежным методом контроля работы дезинфекционных камер является биологический метод.

Для контроля дезинфекции готовят тест-объекты: бумажки, пропитанные культурами определенных микробов, которые помещают в мешочки и закладывают в вещи в 15-20 точках камеры. По окончании экспозиции тест-объекты извлекают и засевают в мясо-пептонный бульон, который помещают в термостат. Если в течение суток роста в пробирках не наблюдается, то это свидетельствует о хорошем бактерицидном эффекте.

Методические указания по контролю качества дезинфекции объектов, подлежащих ветеринарному надзору /

Методические указания

по контролю качества дезинфекции объектов,

подлежащих ветеринарному надзору

(утв.
Главным управлением ветеринарии Госагропрома СССР

16 мая 1988 г. № 432-3)

1.1. Настоящие методические указания определяют порядок и методы
контроля качества профилактической и вынужденной (текущей и заключительной)
дезинфекции объектов, подлежащих ветеринарному надзору.

1.2. Методические указания предназначены для специалистов
ветеринарных лабораторий, а также лабораторий хозяйств, ДПС и предприятий по
производству и переработке мяса и сырья животного происхождения.

1.3. Контроль качества проводят в три этапа.

1.3.1. Контроль подготовки объектов к дезинфекции (проверяют
степень очистки поверхностей, их увлажненность, защиту электрооборудования и
приборов, герметизацию помещений) осуществляет ветеринарный специалист,
ответственный за проведение дезинфекции.

1.3.2. Контроль за соблюдением установленных режимов
дезинфекции (выбор препарата и метода дезинфекции, концентрация, температура
раствора, равномерность увлажнения поверхностей дезраствором, соблюдение
параметров производительности используемых машин и аппаратов, качество распыла
раствора) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за выполнение
дезинфекции.

1.3.3. Бактериологический контроль качества дезинфекции
осуществляют специалисты ветеринарных лабораторий периодически или в сроки,
установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства,
целей дезинфекции и других конкретных особенностей.

1.3.3.1. Бактериологический контроль качества дезинфекции
должен быть неожиданным, без предварительного уведомления работников,
ответственных за проведение дезинфекции, и исполнителей этих работ о времени и
месте отбора проб для исследования.

1.3.3.2. При бактериологическом контроле качества
дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов
жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы
кишечной палочки (Eschezichia, Citrobacter, Enterobacter), стафилококков (aureus, epidermatis, Saprophiticus), микобактерий или
спорообразующих аэробов рода Bacillus.

Качество обеззараживания спецодежды контролируют по
выделению тестмикроорганизмов из искусственно контаминированных кусочков
тканей, закладываемых в подлежащий обеззараживанию материал.

1.3.3.3. По наличию или отсутствию бактерий группы кишечной
палочки контролируют качество профилактической дезинфекции, вынужденной
(текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, колибактериозе,
лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе,
сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипанозомозах, токсоплазмозе,
инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого
скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии
овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии,
трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и
роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксоматозе кроликов,
микоплазмозе птиц, а также текущей дезинфекции при болезнях, указанных в п.
1.3.3.4. (кроме туберкулеза, споровых и экзотических инфекций).

1.3.3.4. По наличию или отсутствию стафилококков
контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых
спорообразующими микроорганизмами и экзотических инфекциях; заключительной
дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии,
орнитозе (пситтакозе), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе,
некробактериозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме всех видов животных,
злокачественной катаральной горячке, перипневмонии и паратуберкулезном энтерите
крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и
инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии,
инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангоите, сапе и мыте лошадей,
гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахетие,
болезни Марека, болезни Гамборо, инфекционном энцефаломиелите, Ньюкаслской болезни,
вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдомонозе и инфекционном гепатите
плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе
сельскохозяйственных животных и птиц, трихофитии, микроспории, других микозах
животных и птиц, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях,
вызываемых неклассифицированными вирусами.

Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют
также по выделению соответствующих возбудителей.

1.3.3.5. Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе
контролируют по выделению стафилококков и микобактерий, при сибирской язве,
эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых
инфекциях и экзотических инфекциях — по наличию или отсутствию спорообразующих
микроорганизмов рода Bacillus.

Контроль качества дезинфекции | Сестра

С детства все знают выражение « чистота – залог здоровья, а порядок, прежде всего». Но как проверить, насколько качественно выполнена дезинфекция помещений?
Контроль качества проведенной уборки и дезинфекции в любых помещениях можно провести тремя методами:

Визуальный метод контроля

Заключается в оценке: санитарное состояние помещения, кратность и своевременность выполнения дезинфекции, знание и соблюдение инструкции, правил и норм при приготовлении рабочих растворов и их применения персоналом, отвечающим за проведение генеральной уборки и дезинфекции.
Химический метод

Определяет насыщенность приготовленных растворов, которые используются при проведении дезинфекции и уборке. Данный метод контроля проводится:

• при помощи специальных полосок-тестов на бумажной основе с определенной цветовой гаммой, также их называют — экспресс (мгновенными) тестами;
• в специализированных лабораторных помещениях, делая химические анализы.

Анализ по определению насыщенности растворов, а потому и действительности проведенной дезинфекции, как правило, делают через установленные временные промежутки, которые зависят от вида дезинфектанта. Мгновенные тесты необходимо проводить ежедневно.
Результатом проведения дезинфекции раствором с концентрацией несоответствующей нормам, будет выявление в образцах инфекционного вещества. В случаи отсутствия лаборатории по исследованию достаточного содержания хлора в растворах и обработанных ими предметов применяют йодокрахмальный метод. Этот метод заключается в цветовой реакции крахмала с йодом: процессе реакции йод выделяется и изменяется в цвете с обычного на буро-синий.
Провести проверку можно таким образом: намотать на спичку (зубочистку) небольшое количество ваты, окунуть ее в смесь калия йода с 1% охлажденным крахмальным клейстером. Стоит только дотронуться этой ватной палочкой до капли раствора, появится разноцветное окрашивание. При контрольном обследовании качества дезинфекции по поверхности предмета проводят ватной палочкой, обработанной йодокрахмальной суспензией. При достаточном содержании хлора в растворе, которым он дезинфицировался, цвет ватного наконечника палочки изменится аналогично первому анализу. Таким методом нужно контролировать дезинфекцию всех окружающих предметов.

 Бактериологический контроль

В основном проводится в рамках проведения контроля качества обработки дезинфицирующими средствами предметов медицинского назначения. Но при необходимости может применяться на предприятиях различных структур.
Он заключается в обнаружении патогенной флоры помещений. Взятие смывов и соскобов проводится без предварительного ознакомления персонала, проводящего дезинфекцию. Стерильные ватные палочки окунают в раствор тиосульфата натрия, после чего проводят поочередно смывы с предметов обихода. Нормой для жилых помещений является 10 проб, в детских и лечебно-профилактических учреждений – не менее 30. Расчет палочек-тестов – 1 на 1 предмет. После взятия смывов, тест палочки помещают в пробирку, предварительно наполненную мясо-пептонным бульоном. Далее проводится поэтапное исследование полученного раствора на наличие и рост бактерий и патогенных кишечных палочек, отсутствие которого позволяет поставить удовлетворительную оценку уборки и дезинфекции помещений.

Контроль качества проведения дезинфекционно-

Стерилизационных мероприятий.

Контроль работы стерилизационной аппаратуры

Организация контроля качества проведения дезинфекционно-стерилизационных мероприятий является важным направлением деятельности администрации лечебных учреждений и органов санитарно-эпидемиологической службы.

Ответственность за организацию дезинфекционно-стерилизационных мероприятий в лечебных учреждениях, включая организацию самоконтроля работы стерилизационной аппаратуры, возлагается на главного врача.

Техническое обслуживание, гарантийный и текущий ремонт дезинфекционно-стерилизационной аппаратуры осуществляют специалисты «Медтехники» и сервисных служб фирм, торгующих стерилизаторами импортного производства. Вновь установленные стерилизаторы допускается использовать только после проверки специалистами Центра Государственного санитарно-эпидемиологического надзора. Специалисты санитарно-эпидемиологической службы осуществляют также плановый контроль качества работы стерилизаторов с помощью физических, химических и бактериологических методов.

Контроль качества предстерилизационной обработки стоматологического инструментария и изделий необходимо проводить методами, рекомендуемыми «Методическими указаниями по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения» № 28-6/13 от 8.06.82 г.

Персонал лечебно-профилактического учреждения проводит самоконтроль качества предстерилизационной очистки 1 раз в день, а главная медсестра — 1 раз в неделю. Контролю подвергают 1% изделий каждого наименования, обрабатываемых за смену, но не менее 3-5 изделий. Регистрацию результатов контроля качества предстерилизационной очистки от крови и поверхностно-активных веществ проводят в специальном журнале по форме № 366/у, утвержденной приказом МЗ СССР № 1030 от 4.10,1980 г.

Контроль качества дезинфекции проводится методом смывов с последующим посевом материала на кровяной, желточно-солевой агар и среду Эндо. Контролю подлежит 1% от одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц. Оценивается наличие или отсутствие роста золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки.Дезинфекция считается эффективной при отсутствии роста всех перечисленных микроорганизмов.

Контроль качества дезинфицирующих препаратов осуществляется методом экспресс-контроля дезинфектантов, позволяющего в течение нескольких минут определить концентрацию растворов с помощью индикаторных бумаг. При опускании специальной индикаторной полоски в исследуемый раствор она быстро меняет цвет в зависимости от концентрации активнодействующего вещества. Затем полоску сравнивают со шкалой цветности, где каждому цвету соответствует определенная концентрация раствора в процентах.

В качестве примера хотим привести программу фирмы «Винар» (Россия) по экспресс-контролю концентраций рабочих растворов дезинфицирующих и стерилизующих средств индикаторами серии «Дезиконт» (табл. 11).

Контроль качества предстерилизационной очистки

стоматологического инструментария предусматривает:

1. Самоконтроль в лечебно-профилактическом учреждении, который организует и контролирует старшая медицинская сестра центральной стерилизационной (ЦС). В центральной стерилизационной он проводится ежедневно, в отделениях — не реже одного раза в неделю. Кроме того, медицинский персонал, обрабатывающий инструментарий, должен самостоятельно контролировать каждую партию обработанных изделий перед стерилизацией.

2. Контроль качества предстерилизационной очистки, который проводят Центры Государственного санитароно-эпидемиологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Контроль качества предстерилизационной очистки стоматологического инструментария включает:

1. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения на наличие крови. Его проводят путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы*.

2. Определение остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства. Его проводят с помощью фенолфталеиновой пробы.

Методика постановки проб

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или 2-3 капли реактива с помощью пипетки наносят на изделие. Для контроля труднодоступных мест применяют ватные турунды, смоченные в реактиве.

Азопирамовая проба

Характеристика реактивов: для приготовления 1 литра раствора реактива отвешивают 100,0 амидопирина и 1,0-1,5 г анилина солянокислого. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спиртом до объема 1 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4 °С (в холодильнике) до двух месяцев; в темноте при комнатной температуре (+18 — +23 °С) — не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива без выпадения осадка в процессе хранения не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равнообъемные количества азопи-рама и 3% раствора перекиси водорода.

_____________________________________________________________________

* — с введением методических указаний «Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам», утвержденных МЗ СССР 26 мая 1988 года, № 28-6/13, были отменены применявшиеся ранее бензидиновая и ортотолидиновая пробы.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1 -2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25 °С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре. Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют, в случае необходимости, следующим образом: 2-3 капли раствора наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 минуту, появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневое, реактив пригоден к употреблению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

Интерпретация результатов азопирамовой пробы. При постановке азопирамовой пробы в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 минуту, появляется фиолетовое окрашивание реактива в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое.

Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной кислоты, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды), а также ржавчины (оксидов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и хлорсодержащих окислителей наблюдается буроватое окрашивание реактива, в остальных случаях — окрашивание розово-сиреневое.

Амидопириновая проба

Характеристика реактивов: 5% раствор амидопирина готовят на 95% этиловом спирте. Данный раствор может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение одного месяца. 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде. Непосредственно перед постановкой пробы смешивают равные объемные количества:

— 5% спиртового раствора амидопирина;

— 30% раствора уксусной кислоты;

— 3% раствора перекиси водорода.

Интерпретация результатов амидопириновой пробы. При постановке амидопириновой пробы о наличии на изделиях остаточного количества крови свидетельствует немедленное или не позже, чем через 1 минуту, появление сине-зеленого окрашивания реактива. Окрашивание, наступившее позже,чем через 1 минуту, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба

Характеристика реактива: в качестве реактива при постановке данной пробы используют 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Он может храниться в холодильнике во флаконе с притертой пробкой в течение одного месяца,

Интерпретация результатов фенолфталеиновой пробы. Появление при постановке пробы розового окрашивания реактива свидетельствует о наличии на изделии остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю партию контролируемых изделий, из которой проводилась выборка для контроля, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов (при положительных азопирамовой, амидопириновой пробах — предстерилизационной очистке, при фенолфталеиновой — повторному промыванию водой).

Контролю подлежат также стерилизаторы, используемые для стерилизации изделий медицинского назначения. Он позволяет выявить несоответствие параметров режимов стерилизации, вызванных техническими неисправностями аппаратов и нарушением технологии проведения стерилизации.

Самоконтроль работы аппаратов персонал, обслуживающий стерилизационное оборудование, проводит при каждой загрузке стерилизатора. При этом регистрируют этапы процесса стерилизации, стерилизуемые материалы и результаты физического и химического контроля. Перечисленные данные регистрируются в «Журнале учета работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава)» (форма 275/у, утверждена приказом № 1034 МЗ СССР от 4.10.89 г.) (табл. 12).

Контроль работы стерилизаторов осуществляют с помощью физического, химического и биологического (бактериологического) методов.

Физический метод предусматривает регистрацию температуры и давления в стерилизационной камере, а также времени проведения стерилизации.

Кроме того, ежедневно перед началом рабочей смены проводят контроль герметичности камеры автоклава с помощью вакуумного насоса. Для этого в рабочей камере создают максимально возможное разрежение. При выключенном вакуумном насосе давление в камере не должно изменяться в течение времени, предусмотренного инструкцией по эксплуатации для сушки материалов после стерилизации. Повышение давления в камере более 0,005 Мпа (0,05 кгс/см²) указывает на подсос воздуха.

Параметры режима работы стерилизатора следует контролировать в течение всего цикла стерилизации, проводимого в соответствии с паспортом на аппарат.

Химический метод контроля предназначен для оперативного отслеживания одного или нескольких параметров работы паровых, воздушных и газовых стерилизаторов с помощью химических тестов или термохимических индикаторов, которые вместе со стерилизуемыми инструментами и материалом помещаются в рабочую камеру стерилизатора.

Химический тест — это тонкостенная стеклянная трубка диаметром 4-5 мм, длиной 30-40 мм с запаянными концами.

Внутри нее находится определенное вещество, изменяющее^{свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенной температуры. Если заданная температура стерилизации не была достигнута, равномерного расплавления и изменения цвета теста не происходит.}

Термохимический индикатор представляет собой полоску бумаги, на которую нанесена термоиндикаторная краска. Термохимические индикаторы предназначены для оперативного контроля одного или нескольких параметров режима работы стерилизационной аппаратуры:

— для парового стерилизатора — температура, наличие остаточного воздуха, присутствие насыщенного водяного пара под избыточным давлением;

— для воздушного стерилизатора — температура и время стерилизации.

По окончании стерилизации визуально определяют изменение цвета термохимического индикатора и сравнивают с эталоном для данной партии индикаторов. При неудовлетворительном результате контроля изменения цвета термохимического индикатора до требуемого уровня не происходит, т.е. параметры режима стерилизации соблюдены не были.

Следует иметь в виду, что индикаторные ленты являются лишь индикаторами процесса и изменяют цвет при достижении необходимых параметров уже через 2-10 минут. Поэтому необратимое изменение цвета индикаторных полосок не является свидетельством стерильности изделий, находящихся в упаковке. Оно лишь подтверждает то, что режим стерилизации был достигнут. Кроме этого необходимо контролировать время стерилизационной выдержки.

Наиболее распространенные термохимические индикаторы представлены в таблице 13.

Индикаторные ленты «Комплайт» и «Индейр» компании «ЗМ» (США) изготовлены из крепированной бумаги, на одной стороне которой нанесен липкий слой, на другой (неклейкой) стороне — диагональные полосы из индикаторных красок, чувствительных к действию соответствующего стерилизующего агента (водяной насыщенный пар или горячий воздух) и необратимо изменяющих свой цвет при проведении стерилизации (табл. 14). Эти индикаторные ленты предназначены для наклеивания на упаковки или заклеивания упаковок с изделиями медицинского назначения. Благодаря эластичности, ленты хорошо фиксируются на всех видах упаковок, не отклеиваются и не сползают с них во время цикла стерилизации. При удалении ленты следов клея на упаковке не остается.

После проведения цикла стерилизации индикаторные ленты вклеиваются в соответствующую графу «Журнала учета работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава)».

Термохимические индикаторы или химические тесты размещают в рабочих точках при каждой закладке инструментов и материалов в стерилизаторе в соответствии с «Методическими рекомендациями по повышению надежности стерилизационных мероприятий в ЛПУ по системе «чистый инструмент», № 11-16/03-03, утвержденными МЗ РФ в 1994 г.

Персонал, обслуживающий стерилизатор, оценивает результаты контрольных тестов, помещенных в стерилизационную камеру вне упаковок, а персонал, использующий простерилизованные изделия, — в стерилизационных коробках (биксах) и внутри упаковок.

Биологический (бактериологический) контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов, оценивая гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры на носителе (или в нем), помещенном в упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. В качестве носителей используют флаконы из-под инсулина, чашечки из алюминиевой фольги (для паровых и воздушных стерилизаторов), а также диски из фильтровальной бумаги (для воздушных стерилизаторов). Упакованные биотесты помещают в те же контрольные точки стерилизационной камеры, что и средства физического и химического контроля.

Основанием для заключения об эффективной работе стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологических исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.



Контроль качества дезинфекционных мероприятий.

57

♦Новые полиэтиленовые пробки несколько раз промывают водопроводной водой (50–60оС). В случае загрязнения пробок в процессе хранения их предварительно моют с применением моющих средств. Затем пробки ополаскивают водой очищенной и стерилизуют погружением в свежий 6% раствор перекиси водорода на 6 часов, после чего промывают водой очищенной и сушат в воздушном стерилизаторе при 50–60оС. Высушенные пробки хранят в стерильных банках с притертыми пробками, биксах в течение 3-х суток в условиях, исключающих их загрязнение.

♦Новые пластмассовые навинчиваемые пробки несколько раз промывают водопроводной водой (50–60оС), а загрязненные – с применением моющих средств, затем сушат в воздушном стерилизаторе при 50–60оС. Высушенные пробки хранят в закрытых коробках, ящиках и т.п. в условиях, исключающих их загрязнение.

♦Вспомогательный материал укладывают для стерилизации в биксы (банки) в готовом к применению виде (пергаментную и фильтровальную бумагу, марлю режут на куски нужного размера; из ваты делают тампоны и т.д.). Стерилизуют в паровом стерилизаторе при 120оС в течение 45 минут. Хранят в закрытых биксах или банках в течение 3-х суток, после вскрытия материал используют в течение 24 часов.

Качество дезинфекционных мероприятий определяется контролем, проводимым визуально, химически и бактериологически.

При визуальном контроле выясняют санитарное состояние объекта, своевременность и полноту проведения дезинфекционных мероприятий, правильность выбора объектов и методов обеззараживания, качество обеззараживания поверхностей помещений, предметов и объектов.

Химический контроль используют для проверки содержания активно действующих веществ в препаратах и рабочих растворах, соответствия концентраций рабочих растворов концентрациям, предусмотренным действующими нормативными документами, правильности хранения дезсредств. Устанавливают наличие хлора на продезинфицированных поверхностях и предметах. Дезинфекция считается правильной и достаточной, если хлор обнаруживается на продезинфицированных предметах и поврехностях.

Йодно-крахмальный метод – ускоренный метод оценки качества дезинфекции. Ватный шарик смачивают вначале 10% раствором йодида калия,

58

а затем свежеприготовленным 1% раствором крахмала. Появление синего окрашивания при соприкосновении такого шарика с контролируемой поверхностью указывает на присутствие активного хлора, т.е. свидетельствует о надежности дезинфекции.

Бактериологический контроль дезинфекции проводят путем обнаружения микророганизмов (кишечной палочки). Пробы отбирают не позже 30–45 мин. по окончании дезинфекции. Пробы доставляют в лабораторию не позже 2 часов после взятия смывов. Смыв делают в нескольких квадратах размером 10 х 10 см. Общая площадь исследуемой поверхности должна быть не меньше 500 см2 двух или трех смежных участков проверяемого объекта. Марлевые салфетки погружают после смыва в колбы со стерильной водой (или 1% раствором тиосульфата натрия, если дезинфекция проводилась хлорсодержащими веществами) и направляют в лабораторию для исследования. Показателем эффективности проведенной дезинфекции является отсутствие в смывах с объектов кишечной палочки.

Методы отбора проб воздуха для оценки бактериальной обсемененности. Отбор проб воздуха для микробиологического контроля производят сотрудники ЦГСЭН.

Пробы воздуха для микробиологического контроля отбираются в следующих помещениях:

♦В асептическом блоке, стерилизационной;

♦В ассистентской, фасовочной, комнате дефектара и материальной;

♦В моечной;

♦В зале обслуживания.

Отбор проб воздуха проводят при следующих условиях: чистое, подготовленное к работе помещение; закрытые форточки и двери. Уровень высоты отбора проб воздуха соответствует высоте рабочего стола; не ранее чем за 30 мин. после влажной уборки помещения. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью приборов для бактериологического анализа воздуха. Скорость протягивания воздуха должна составлять 25 л/мин., количество пропущенного воздуха – 100 л для определения общего количества бактерий; 250 л – для определения золотистого стафилококка и 250 л – для определения плесневых и дрожжевых грибов.

Для определения общего содержания бактерий в 1 м3 воздуха отбор производят на 2% питательный агар, разлитый в чашки по 12–15 мл. Для

59

определения золотистого стафилококка используют желточно-солевой агар, для определения плесневых и дрожжевых грибов – среду Сабуро.

Методы отбора других проб для бактериологического контроля.

Пробы отбирают специалисты ЦГСЭН. Кратность обследования с отбором проб – не менее 1 раза в квартал. Кроме воздуха, объектами бактериологического контроля являются дистиллированная вода; инъекционные растворы до и после стерилизации; глазные капли после стерилизации; глазные капли, приготовленные в асептических условиях на стерильных основах; сухие лекарственные вещества, используемые для приготовления инъекционных растворов; аптечная посуда, пробки, прокладки, прочие вспомогательные материалы; инвентарь, оборудование, руки и санитарная одежда персонала.

Пробы дистиллированной воды, используемой для приготовления лекарственных средств (кроме лекарств для инъекций и глазных капель) отбирают в стерильные бутылки в количестве 300 см3 , с последующим закрытием ватными пробками и бумажными колпачками. Пробы отбирают из бюретки, конец которой предварительно обжигают ватой, смоченной спиртом. При неудовлетворительных результатах анализа отбор проб проводят из приемника. Оценка результатов бактериологического исследования проводится в соответствии с требованиями ГОСТ 2874–82 “Вода питьевая…”.

Пробы дистиллированной воды, используемой для приготовления инъекционных растворов и глазных капель, отбирают в стерильные флаконы в количестве 15–20 см3 непосредственно из емкостей, в которых осуществляется стерилизация.

Инъекционные растворы (до стерилизации) отбирают во время их приготовления, но не позднее полутора часов и доставляют в лабораторию в тех же флаконах, в которых они будут подвергнуты стерилизации. Инъекционные растворы, глазные капли после стерилизации и приготовления асептическим способом доставляют в аптечной упаковке.

Глазные капли из торгового зала аптек доставляют непосредственно во флаконах, отпускаемых населению. Целесообразно отбирать глазные капли 3–4 наименований как со стола ассистента, так и прилавка. Отбор сухих лекарственных веществ проводят стерильными ложками в стерильную посуду лаборатории в количестве 30–50 г. В случае, если вещество таблетированное, то отбирают фламбированным пинцетом в стерильную посуду лаборатории в количестве 30–50 г.

60

Аптечную посуду, подготовленную для разлива инъекционных растворов и глазных капель, отбирают в момент приготовления их, в количестве 3-х штук одинаковой емкости. Флаконы доставляют в лабораторию в укупоренном виде, используя при этом пробки и прокладки для отпуска лекарственных средств. Пробки (корковые, полиэтиленовые) и прокладки отбирают в момент приготовления инъекционных растворов и глазных капель пинцетом после фламбирования и помещают по 5 штук в широкогорлые стерильные банки с последующим закрытием стерильными ватномарлевыми пробками и бумажными колпачками. Фильтрованные воронки, пипетки, мерные колбы, цилиндры, используемые для приготовления инъекционных растворов, контролируют путем ополаскивания их в 10 см3 стерильной водопроводной воды. Используемые в аптеках пипетки прополаскивают несколько раз пробирке, содержащей10 см3 стерильной водопроводной воды, пробирки со смывной жидкостью доставляют в лабораторию для исследования.

Смывы с инвентаря, оборудования, рук и санитарной одежды персонала аптеки осуществляют с помощью ватных тампонов, помещенных в пробирки с 2 см3 0,85% раствора хлорида натрия или 0,1% пептонной воды.

Методы исследования воздуха на бактериальную загрязненность.

Доставленные чашки с посевами на питательном агаре и желточносолевом агаре инкубируют в термостате при 37оС в течение 24 часов, посевы на желточно-солевом агаре дополнительно выдерживают еще 24 часа при комнатной температуре. Посевы на среде Сабуро инкубируют при 22–28оС 4 суток.

Для определения общей бактериальной обсемененности через 48 часов посевы просматривают, подсчитывают количество выросших колоний и производят пересчет на 1 м3 воздуха.

Для определения количественного содержания золотистого стафилококка просматривают посевы на желточно-солевом агаре после 48 часов инкубации; колонии, подозрительные на стафилококк, подсчитывают и производят идентификацию. После идентификации производят пересчет полученных результатов на 1 м3 воздуха.

Для количественного определения плесневых и дрожжевых грибов после 96 часовой инкубации подсчитывают количество выросших колоний плесневых и дрожжевых грибов и производят пересчет на 1 м3 воздуха

(табл.14).

Революционные технологии дезинфекции

В индустрии уборки происходит революция.

Появление более эффективных и действенных технологий сделало возможным поддерживать более чистые и здоровые помещения, чем когда-либо прежде. Однако эта возможность также породила новые риски и ответственность.

Электростатическое напыление — одна из таких технологий, ведущих отрасль на этом пути. Промышленные электростатические системы распыления, широко используемые в производстве, обслуживании и сельском хозяйстве более 50 лет, зарекомендовали себя как один из самых быстрых и экономичных методов нанесения химикатов и поверхностных покрытий.

Развитие оборудования

До появления электростатической технологии у традиционного распылительного оборудования были проблемы с эффективностью переноса (мера того, сколько химического вещества достигает поверхности по сравнению с процентом, потерянным для пола и окружающей среды). При промышленной окраске это обычно означало, что около 25% краски прилипло к поверхности, а 75% было потеряно на других участках. Результат был медленным и дорогостоящим.

При опрыскивании сельскохозяйственных культур в сельском хозяйстве показатели были не намного лучше.При использовании традиционных методов распыления типичные отходы пестицидов составляют в среднем 50%, что создает риск загрязнения пестицидами общественных водных путей и окружающей среды из-за сноса ветром.

С появлением технологии электростатического напыления, которая создает магнитное притяжение между распыляемыми каплями и целевой поверхностью, эффективность переноса в некоторых отраслях резко возросла. Для сборочных конвейеров это означало, что окраска автомобилей могла быть выполнена на 80% быстрее, с более чем 50% -ной экономией на использовании краски, а для использования в сельском хозяйстве пестициды могли быть доставлены в целевые области.

Разрушая отраслевые традиции

Сектор очистки и профилактики инфекций — еще одна отрасль, в которой созрели для разрушения и улучшения, выходящие за рамки ограничений существующих инструментов. На протяжении многих лет промышленность преуспела в улучшении дезинфицирующих и дезинфицирующих средств. Однако нехватка времени, ресурсов и бюджетов, необходимых для того, чтобы опережать постоянно растущие угрозы общественному здоровью, по-прежнему создает проблемы.

Одной из главных проблем была невозможность достичь более полного покрытия поверхности в течение ограниченного периода времени.По оценкам Центров по контролю и профилактике заболеваний США (CDC), 50% поверхностей больничных палат остаются неочищенными. Вне здравоохранения процент еще выше.

Работа профессионала по уборке — непростая задача. Использование традиционных инструментов, таких как швабры, ведра или тряпки, может занять больше времени, чем другие методы, для эффективной очистки, дезинфекции или дезинфекции поверхностей и удаления скрытых патогенов. В то время, когда ставки выше, чем когда-либо прежде, решающее значение имеют устранение временных ограничений, охват большего количества мест и повышение соответствия требованиям, но с учетом того, что бюджеты на уборку продолжают сокращаться, наем дополнительного персонала — не выход.

Внедрение новых технологий

Учитывая проблемы, с которыми наша промышленность сталкивается каждый день, может показаться, что электростатика была бы принята для целей дезинфекции несколько десятилетий назад. Однако только в последние несколько лет технология электростатического распыления стала портативной, экономичной и достаточно простой в использовании, что сделало ее более разумным и практичным вариантом для рассмотрения менеджерами предприятий и подрядчиками по обслуживанию.

Теперь, вместо того, чтобы использовать традиционные подходы для реактивного сдерживания вспышек болезни после того, как население уже заболело, очистная промышленность может активно предотвращать вспышки инфекций с помощью усиленных мер дезинфекции.Новые электростатические технологии предлагают многообещающий потенциал с более быстрым временем дезинфекции и большим покрытием поверхности на унцию. Возможность применять дезинфицирующие средства в количестве до 10 раз больше, чем при использовании традиционных инструментов, является выигрышным предложением для большинства профессионалов в области уборки.

Ответственные процессы для более безопасного применения химикатов

С широким внедрением этой революционной технологии приходит ответственность за соблюдение правил правильного использования. Необходимо разработать процессы, обеспечивающие безопасное и эффективное применение химикатов таким образом, чтобы защитить общественное здоровье, а также здоровье бригад.

Без стандартизированных процессов для безопасного и согласованного использования преимущества электростатики могут быть перевешены возможностью безрассудного неправильного использования. Ответственность за то, чтобы спецификации опрыскивателя соответствовали химическому составу, лежит как на оборудовании, так и на производителях химикатов, поскольку итоговые протоколы должны соответствовать заявленным заявкам на химические вещества и нормативным требованиям по безопасности труда.

Хотя существуют химические вещества, которые хорошо подходят для электростатического применения, есть и другие, которые не связаны с потенциальной угрозой безопасности или несовместимостью материалов, и все стороны несут ответственность за то, чтобы эти соображения были приняты во внимание.При правильном использовании такие функции, как размер капель, форма распыления, мощность распылителя, механизм заряда и химическая эквивалентность, могут помочь оптимизировать процессы, чтобы обеспечить их практичность и доступность, а также безопасность, эффективность и масштабируемость.

Операторам важно помнить, что электростатика — это не просто способ завалить мир большим количеством химикатов, а скорее использовать эффективность технологии, чтобы делать больше с меньшими затратами.

Повышение соответствия требованиям

Соответствие требованиям — еще одна ключевая проблема, с которой постоянно сталкивается индустрия очистки.В нашей отрасли уровень соответствия прямо пропорционален успеху очистки. Соблюдение передовых отраслевых практик на высоком уровне ведет к качественным результатам, более здоровому населению, более безопасным и чистым помещениям. Низкие уровни не только приводят к плохим результатам, но и мешают менеджерам по уборке добиться согласованности между командами разного размера. В конечном итоге протоколы очистки, разработанные для электростатической технологии, должны соответствовать пяти критериям, чтобы действительно поддерживать соответствие: экономичный, доступный, практичный, безопасный и масштабируемый.

Стандартизация процессов очистки и электростатической дезинфекции будет иметь большое значение для решения многих проблем с соблюдением нормативных требований. Лучшие практики включают объединение (по возможности) вокруг универсального дезинфицирующего средства широкого спектра действия, обеспечивающего максимальную безопасность и эффективность. Меньшее химическое изменение приводит к более простым процессам. Внедрение протокола бесконтактной дезинфекции также позволяет командам делать более безопасный и экологически предпочтительный выбор чистящих средств, которые они используют для физического удаления загрязнений.

После того, как команды стандартизируют программы и осознают эффективность экономии времени, они должны увеличить частоту выполнения протоколов дезинфекции, чтобы улучшить их способность предотвращать вспышки, вместо того, чтобы дожидаться вспышки. Наконец, следует применять меры контроля качества и подотчетности для обеспечения надлежащего использования и получения результатов с течением времени.

В отраслях, где требуется простая проверка «годен / не годен» «чистых», достаточно будет измерителя АТФ. Для учреждений, которым требуются более подробные и поддающиеся измерению данные, теперь существуют быстрые и экономичные программы культивирования мазков, которые могут помочь лучше предсказать тенденции и обеспечить эффективность любого протокола электростатической дезинфекции.

Обучение и простые протоколы способствуют повышению эффективности

Чтобы успешно внедрить новую технологию для профессионалов в области уборки, процесс должен быть максимально понятным и оптимизированным. Но в клининговой отрасли, где преобладают многоязычный персонал и высокая текучесть кадров, тем более важно упростить программы и процессы обучения, чтобы их можно было воспроизвести и легко масштабировать. Вспомогательные технологии, такие как электростатика, имеют большое значение для устранения пробелов в уровне опыта сотрудников и обеспечения более стабильных результатов.

Текущие протоколы очистки требуют, чтобы персонал физически касался каждой поверхности, чтобы устранить патогены. Если спросить, большинство профессионалов в области уборки отреагируют на это требование двумя способами: во-первых, не хватает времени, чтобы коснуться каждой поверхности; Во-вторых, если поверхность выглядит чистой, то ничего делать не нужно. Именно здесь технология бесконтактной электростатической дезинфекции становится основополагающей для расширения возможностей пользователей по более эффективному уничтожению патогенов.

В конце концов, основное внимание уделяется устранению экземпляров на случай возможной поломки.Вместо того, чтобы ожидать от пользователей понимания нескольких руководств по использованию химикатов и времени ожидания, пользователи могут выбрать один химический состав, который подходит для каждой стадии процесса очистки. Один набор инструкций как для очистки, так и для дезинфекции повышает безопасность работников и устраняет химические опасности и воздействие, а также обеспечивает более высокий уровень соблюдения концентрации химических веществ и времени выдержки.

Инвестиции в будущее очистки

Выделение четко определенных мер предосторожности и четких инструкций перед широкомасштабным внедрением новой технологии дезинфекции является необходимой обязанностью как производителей оборудования, так и химической продукции.Но это небольшая плата за защиту здоровья и безопасности всех, кого это касается; кроме того, это обеспечит трансформирующий потенциал электростатических технологий, чтобы успешно смягчить растущий кризис общественного здравоохранения на многие годы вперед.

.

Дезинфекция концентраторов безыгольных соединителей: систематический обзор клинических данных

Предпосылки . Безыгольные соединители (NC) используются практически на всех внутрисосудистых устройствах, обеспечивая легкий доступ для подключения к инфузии. Колонизация NC считается причиной 50% инфекций, связанных с катетером после установки. Нарушения асептической техники из-за невозможности дезинфекции приводят к контаминации и последующему образованию биопленки внутри NC и катетеров, что увеличивает вероятность инфицирования центральных и периферических катетеров. Методы . В этом систематическом обзоре была проведена оценка 140 исследований и 34 рефератов по методам дезинфекции NC, влиянию контаминации на инфекцию, а также мерам по просвещению и соблюдению требований. Результаты . Наибольший риск заражения катетера после введения — это катетер, загрязненный на 33–45%, а соблюдение правил дезинфекции составляет всего 10%. Оптимальная техника или время дезинфекции не определены, хотя рекомендуется чистка 70% спиртом в течение 5–60 секунд.Исследования показали статистически значимые результаты в снижении инфицирования при использовании колпачков для пассивной дезинфекции спиртом (снижение на 48–86%). Клиническое значение . Для медицинских учреждений и клиницистов критически важно взять на себя ответственность за соблюдение основных принципов соблюдения асептики, вовлекать непосредственный персонал в стратегии, способствовать обучению, которое способствует пониманию последствий сбоя, и соблюдать стандарты ухода за дезинфекцией узлов. .

1. Предпосылки

Внутривенные катетеры и связанные с ними устройства, используемые для доступа к венам с целью введения лекарств или растворов, претерпели значительные изменения за последние три десятилетия. Одно из наиболее заметных изменений связано с доступом к внутривенным устройствам. Ранние опасения по поводу безопасности игл для медицинских работников привели к созданию продуктов, обеспечивающих доступ без игл. Хотя эти продукты действительно исключали риск случайного повреждения иглой для врача, некоторые безыгольные продукты поднимали новые проблемы для пациента; а именно, отмеченное увеличение случаев катетер-ассоциированных инфекций кровотока (CABSI) и инфекций, ассоциированных с центральной линией кровотока (CLABSI) [1–3].Факторы риска инфицирования включают плохое соблюдение асептических правил, вариации конструкции безыгольных соединителей (NC) и непоследовательное обучение и подготовку медицинского персонала [1–3]. NC используются практически на всех внутрисосудистых устройствах в США; они обеспечивают легкий доступ для насадки шприца или трубки и теперь стали центральной точкой доступа для всех подключений. Тем не менее, несмотря на обеспечение определенного уровня безопасности, существуют опасения по поводу инфекции, связанной с заражением NC. Конструкция поверхности, зазоры вокруг закрывающейся поверхности клапана, сегментированный путь прохождения жидкости с мертвым пространством, различные внутренние механизмы, четкая или скрытая видимость, переменный рефлюкс крови, последовательность зажимов и различные инструкции по промывке, в зависимости от типа NC, — все это играет роль в уровень риска, связанного с устройством.До появления NC клиницисты интуитивно понимали, что перед проникновением иглы в перегородку требуется дезинфекция. Современная дезинфекция поверхности NC не обязательно интуитивно понятна. Первоначально в безыгольных точках доступа к разделенной перегородке использовалась тупая канюля «игольчатого типа». В результате процесс дезинфекции остался интуитивно понятным. Устройства доступа к разделенной перегородке по-прежнему рекомендуются как вариант с меньшим риском для безыгольного соединения; однако они потеряли популярность, потому что для доступа к ним требуется несколько частей и частей, и они обеспечивают прямой доступ иглы через перегородку / диафрагму, что приводит к тому, что многие учреждения переходят на устройства доступа Люэра.С изменениями точки доступа, использующей прямое Люэровское соединение через ЧПУ, интуитивное чувство дезинфекции поверхности перед доступом теряется; многие клиницисты не осознают последствий этого тазового предлежания в асептических методах [4–6]. Колонизация узлов катетера и NC с последующим попаданием бактерий в просвет катетера считается причиной 50% инфекций, связанных с катетером после установки [3–7]. Дезинфекция открытой поверхности НК необходима для предотвращения загрязнения и последующего образования внутрипросветной биопленки и защиты пациентов от инфекции.

Значительные улучшения были сделаны в сокращении CLABSI, связанных с процедурами введения. Результаты новаторской инициативы Keystone продемонстрировали влияние пяти мер, известных как Central Line Bundle, на улучшение результатов при установке центральных венозных катетеров [64, 105]. Последовательное применение связки с подтверждением соответствия во время процедуры вставки (контрольный список) привело к снижению CLABSI, связанной с вставкой, более чем на 44% в США [52].Однако, несмотря на успехи внедрения пакета, полное соответствие более чем через семь лет все еще отсутствует, при этом, согласно отчетам, в одном учреждении уровень соблюдения режима варьируется от 0,0% в начале вмешательства до 37,1% (139/375). Jeong, с аналогичными результатами в других учреждениях [65, 66, 106, 107]. Даже в учреждениях, где существует полное соответствие пакета, CLABSI все еще происходят [108]. Дезинфекция участка доступа NC не была включена в связку центральной линии, относящуюся к установке.Целью любой эффективной программы профилактики инфекций является отсутствие CLABSI. Для достижения цели «ноль» необходимо учитывать патогенез катетер-связанных инфекций и исследовать существующие человеческие факторы катетерного управления, препятствующие достижению этой цели.

Хотя многие эксперты согласны с тем, что применение связки для вставки является одним из лучших способов предотвращения инфекции, связанной с введением, связка не решает проблемы NC, асептического доступа или каких-либо проблем с использованием катетера после вставки.В исследовании, проведенном в Пенсильвании, сообщается, что 71,7% (468/653) инфекций центральной линии произошли через пять или более дней после введения и могли быть напрямую связаны с использованием внутрисосудистых устройств и уходом за ними [60, 108–110]. Загрязнение катетера непосредственно через ступицу катетера подтверждено опубликованными исследованиями [12, 13, 111–113]. Эти исследования показали, что бактерии, идентифицированные на внешней поверхности ступицы, также присутствовали в биопленке, взятой из случайных мест внутри ненужного соединителя. Исследования, проведенные в одном учреждении, показали, что кожная флора пациентов ни в одном из их случаев не была источником катетерных инфекций кровотока; все инфекции в этом исследовании возникли из центра катетера [6, 113].Инфекции позже в жизни катетера развиваются из-за неправильных манипуляций с катетером, несоблюдения гигиены рук, недостаточного времени для очистки NC, недостаточной подготовки и плохого доступа и управления местом выхода [2, 67, 110, 112]. Дезинфекция ступицы катетера перед промывкой или перед введением лекарств требуется для любого асептического доступа, однако в исследовании Карчмера 31% врачей даже не пытались дезинфицировать, даже находясь под активным наблюдением [1, 64, 88 , 114]. В исследовании, проведенном Ли, соблюдение требований к дезинфекции клиницистами до доступа к NC составляло всего 10% [115].Этот общий прорыв в асептической технике создает основу для формирования биопленки внутри NC и катетеров и увеличивает вероятность отсроченного инфицирования как центральных, так и периферических катетеров [14, 60, 68, 112, 116]. Результаты Консультативного отчета по безопасности пациентов Пенсильвании и независимый отбор образцов биопленки NC предполагают, что необходимо уделять больше внимания асептическому доступу и методам обслуживания [109].

2. Что такое дезинфекция?

В соответствии с Руководством Epic3, основанным на фактических данных по предотвращению медицинских инфекций, дезинфекция определяется как использование химических или физических методов для уменьшения количества патогенных микроорганизмов на поверхностях до уровня, при котором они не могут причинить вред, но который обычно не разрушает споры [53].В этих рекомендациях далее говорится, что методы дезинфекции, используемые в сочетании с очисткой крови или другого мусора с поверхности в качестве дезинфицирующих средств, имеют ограниченную способность проникать в органический материал [8]. Ассоциация профессионалов инфекционного контроля (APIC) определяет дезинфекцию как процесс уничтожения микроорганизмов, осуществляемый с помощью жидких химикатов или пастеризации; Процесс работает лучше всего при наличии надлежащего времени контакта и разбавлении дезинфицирующего средства [117]. В рекомендациях Центров по контролю за заболеваниями [8], Агентства медицинских исследований и качества [9], Общества эпидемиологии здравоохранения Америки [10] и Общества медсестер по инфузии [11, 118] говорится, что NC следует последовательно и тщательно дезинфицировать с использованием механического трения 70% спиртом, спиртовым хлоргексидином или повидон-йодом перед каждым доступом к внутрисосудистому устройству и занесено в список доказательств как Категория 1A.

2.1. Цель

Цель этого обзора — оценить существующую литературу, относящуюся к дезинфекции NC, чтобы выработать рекомендации, которые способствуют асептическому доступу, уменьшая риск инфекции для пациента.

2.2. Методология поиска

Целью этого систематического обзора была оценка подтверждающих данных о методах дезинфекции NC, катетера, крана и боковых портов, которые снижают перенос микроорганизмов через внутрисосудистый доступ к устройствам.Этот отчет основан на электронном систематическом поиске литературы и обзоре опубликованных материалов из Pubmed, Medline, Scopus, Ovid, jStor, CINAHL, Cochrane, Athens и ScienceDirect с перекрестными ссылками на эти ключевые термины за период с 1977 г. по декабрь 2014 г. Высокий уровень данные рандомизированных контролируемых испытаний, в которых проверялись причинно-следственные связи между различными подходами к дезинфекции NC a

.

Обеззараживание и дезинфекция — EHS

Перейти к основному содержанию

• Обучение
• Команда
• Календарь событий
• Формы и СОП
• Войти
• 

• О компании
  • Программы соответствия и нормативных требований
  • Система управления EHS
  • Программа признания EHS
  • Управление в чрезвычайных ситуациях
  • Комитеты института
  • Политики
    • Политика работы в одиночку
  • Часто задаваемые вопросы по EHS COVID-19
• Биологические
  • Программа валидации автоклавов
  • Шкафы биобезопасности
  • Патогены, передающиеся через кровь
  • Дезактивация и дезинфекция
  • Регистрация биологических исследований
  • Выбор токсинов для агентов
• Химические вещества
  • Химическая гигиена
  • Химическая инвентаризация
  • Отчетность и безопасность химических веществ
  • Химические вещества
  • Безопасность баллонов со сжатым газом
  • Опасные и высокотоксичные химические вещества
  • Управляемые вещества DEA
• Радиологические
  • Безопасность ускорителя
  • Безопасность облучателя Gammacell
  • Лазерная безопасность
  • Магниты, УФ и радиочастоты
  • Безопасность радиоактивных материалов
  • Безопасность рентгеновских лучей
• Лаборатория и исследования
  • Записная книжка EHS
  • Безопасность полевых исследований
  • Вытяжные шкафы / вентиляция лабораторий
  • Доставка опасных материалов
  • Инспекции: уровень I и уровень II
  • Безопасность литий-ионных батарей
  • Очистка лаборатории
  • Набор для защиты от разливов
  • Мониторинг токсичных газов
• Регулируемые отходы
  • Биологические отходы
    • Форма приема биоотходов
  • Химические отходы
    • Форма сбора химических отходов
  • Предотвращение загрязнения
  • Радиоактивные отходы
    • Форма приема радиоотходов
  • Переработка и сокращение отходов
• Кампус и рабочее место
  • Дизайн и строительство кампуса
    • Вывод из эксплуатации и снос
    • Замкнутое пространство
    • Защита от падения
  • Безопасность мероприятий и выставок
    • Активный отдых и надувные предметы
    • Безопасность барбекю
    • Деталь пожарного
    • Освещение, пиротехника, фейерверки, лазеры и стробоскопы
  • Безопасность на рабочем месте
    • Основы работы с асбестом
    • Электробезопасность
    • Пожарная безопасность
    • Оповещение об опасности
    • Сохранение слуха
    • Нанять / принять несовершеннолетнего
    • Разрешение на горячие работы
    • Безопасность лазерного резака
    • Профилактическое оборудование
    • Охрана репродуктивного здоровья
  • Услуги в кампусе
    • Эргономика
    • Качество воздуха в помещении
    • Знаки и наклейки для заказа
    • Борьба с вредителями
    • Руководство по использованию обогревателей
    • Беспилотный самолет
    • Удаленная работа
• Календарь
• Календарь мероприятий
• СОП
• Вход

• О компании
  • Программы соответствия и нормативных требований
  • Система управления EHS
  • Программа признания EHS
  • Управление в чрезвычайных ситуациях
  • Комитеты института
  • Политики
    • Политика работы в одиночку
  • Часто задаваемые вопросы по EHS COVID-19
• Биологические
  • Программа валидации автоклавов
  • Шкафы биобезопасности
  • Патогены, передающиеся через кровь
  • Дезактивация и дезинфекция
  • Регистрация биологических исследований
  • Выбор токсинов для агентов
• Химические вещества
  • Химическая гигиена
  • Химическая инвентаризация
  • Отчетность и безопасность химических веществ
  • Химические вещества
  • Безопасность баллонов со сжатым газом
  • Опасные и высокотоксичные химические вещества
  • Управляемые вещества DEA
• Радиологические
  • Безопасность ускорителя
  • Безопасность облучателя Gammacell
  • Лазерная безопасность
  • Магниты, УФ и радиочастоты
  • Безопасность радиоактивных материалов
  • Безопасность рентгеновских лучей
• Лаборатория и исследования
  • Записная книжка EHS
  • Безопасность полевых исследований
  • Вытяжные шкафы / вентиляция лабораторий
  • Доставка опасных материалов
  • Инспекции: уровень I и уровень II
  • Безопасность литий-ионных батарей
  • Очистка лаборатории
  • Набор для защиты от разливов
  • Мониторинг токсичных газов
• Регулируемые отходы
  • Биологические отходы
    • Форма приема биоотходов
  • Химические отходы
    • Форма сбора химических отходов
  • Предотвращение загрязнения
  • Радиоактивные отходы
    • Форма приема радиоотходов
  • Переработка и сокращение отходов
• Кампус и рабочее место
  • Дизайн и строительство кампуса
    • Вывод из эксплуатации и снос
    • Замкнутое пространство
    • Защита от падения
  • Безопасность мероприятий и выставок
    • Активный отдых и надувные предметы
    • Безопасность барбекю
    • Деталь пожарного
    • Освещение, пиротехника, фейерверки, лазеры и стробоскопы
  • Безопасность на рабочем месте
    • Основы работы с асбестом
    • Электробезопасность
    • Пожарная безопасность
    • Оповещение об опасности
    • Сохранение слуха
    • Нанять / принять несовершеннолетнего
    • Разрешение на горячие работы
    • Безопасность лазерного резака
    • Профилактическое оборудование
    • Охрана репродуктивного здоровья
  • Услуги в кампусе
    • Эргономика
    • Качество воздуха в помещении
    • Знаки и наклейки для заказа
    • Борьба с вредителями
    • Руководство по использованию обогревателей
    • Беспилотный самолет
    • Удаленная работа
• Календарь
• Календарь мероприятий
• СОП
• Вход

.

Дезинфекционные услуги | Компания по дезинфекции (99% уничтожение вирусов)

Дома — Услуги по уборке — Компания по дезинфекции и дезинфекции дома и офиса

Коммерческие и жилые | Обслуживание в Нью-Йорке, Коннектикуте и Нью-Джерси

Можете ли вы представить себе, что ваш дом настолько чистый, что в нем нет бактерий, плесени, вирусов, плесени или запахов? Если у вас есть маленькие дети, малыши или младенцы, ползающие вокруг, вашей главной целью должно быть обеспечение их санитарно-гигиенической средой 24/7.К сожалению, простые бытовые чистящие средства не могут оправдать ваших ожиданий, независимо от того, как часто или регулярно они используются. Здесь на помощь приходят профессиональные услуги домашней дезинфекции и стерилизации. Наши услуги зарегистрированы EPA (Агентство по охране окружающей среды) и одобрены CDC (Центры контроля заболеваний)! Наша команда технических специалистов состоит из опытных уборщиков, работает только с самым безопасным, самым эффективным, современным паровым, стерилизационным и дезинфицирующим оборудованием и продуктами, которые на 100% являются экологически чистыми.

Мы полагаемся на некаустические и неагрессивные чистящие средства, которые полностью стерилизуют вашу собственность и избавят ее от аллергенов, плесени и микробов. Если вам нужна помощь с домом, офисом или другими коммерческими объектами, мы тепло приглашаем вас связаться с нами и сообщить нам, в чем конкретно заключаются ваши потребности. Команда NYC Steam Cleaning приедет, оценит ваше место и на месте выдаст смету, основываясь на наших знаниях и многолетнем опыте. Мы можем гарантировать, что вы будете приятно удивлены, обнаружив цены, которые значительно ниже, чем у наших конкурентов, и не имеющий себе равных в обслуживании.Дополнительную профилактику и защиту от коронавируса можно найти в Центрах по контролю и профилактике диэза (CDC)

Коронавирус COVID — 19 служб дезинфекции

• Убивает 99,9% бактерий и вирусов!
• Защитите свою семью или сотрудников!

Позвоните нам и закажите услугу дезинфекции уже сегодня! 1-888-245-1199

Мы используем только проверенные дезинфицирующие средства.

NOROXYCDIFF DISINFECTANT
Noroxycdiff ™ — это зарегистрированный EPA одноразовый препарат для больничного использования Спорицидное дезинфицирующее средство.Эффективен через 2 минуты против спор Cdiff.

• Допуск FDA согласно 40 CFR §180.940 для использования в качестве дезинфицирующего средства на поверхностях, контактирующих с пищевыми продуктами (отлично подходит для больниц и ресторанов)
• Микробное действие широкого спектра
• Бактерицидное дезинфицирующее средство для одноэтапного использования в больнице
• Дезинфицирующее средство без отбеливателя, дезинфицирующее средство и спорицид

SHOCKWAVE DISINFECTANT
ShockWave Concentrate No. 8310, No. 8311 являются проверенными дезинфицирующими средствами (смесь хлорида четвертичного аммония). , Virucide, Fungicide
Onslaught, техническая информация и информация по использованию

BENEFIT BOTANICAL DECON 30 ДЕЗИНФЕКТАНТ
Дезинфицирующее средство
Одноэтапное дезинфицирующее средство для больниц и первое дезинфицирующее и дезодорирующее средство для ковров ботанического происхождения , зарегистрированное в EPA.
Benefect Botanical Decon 30: техническая информация и информация об использовании

Эффективность

Наша служба дезинфекции эффективна против 147 вирусов и бактерий:

• Коронавирус COVID 19
• C.DIFF
• MARSA
• Бактерии с множественной лекарственной устойчивостью
• HIV
• Вирус гриппа A
• Бактериофаг T4 и T1
• Коронавирус собак, вирус чумы и герпеса
• Стафилококк (все типы)
• Стафилококк (все типы)
• Листерии
• Дезинфекция сальмонелл
• Дополнительные типы вирусов
• 2

Цена

• 0 руб.25 за квадратный фут — свыше 10 000 квадратных футов
• 0,17 доллара за кв. Ft. — более 100000 кв. Ft
• 0,07 $ за кв. Ft. — более 500000 кв. Ft

Метод нанесения

• Clorox Total 360 Электростатический распылитель
• SC-ET Электростатический распылитель
• ULV туманообразователи

Пожалуйста, позвоните нам, чтобы получить точную оценку цены 1-888-245-1199

Качество Гарантия — Тестирование АТФ (до и после)

Аденозинтрифосфат ( ATP ) — это энергетическая молекула, обнаруженная во всех живых существах, что делает его абсолютным индикатором, определяющим чистоту поверхности от микробов и бактерий.Тест на АТФ используется в основном в пищевой промышленности и здравоохранении.

В NYC Steam Cleaning мы предлагаем дополнительный тест на АТФ до и после нашей службы дезинфекции, так что успешные результаты доказаны.

Мы используем универсальный тест для отбора проб АТФ Hygina UltraSnap ™, используемый с люминометрами Hygina.

Услуги по дезинфекции и стерилизации, которые мы предлагаем:

• Дезинфекция от коронавируса
• Бытовые и коммерческие услуги опрыскивания
• Очистка паром ковров, ковровых покрытий и восточных ковров
• Очистка паром для обивки
• Паровая чистка ковров и драпировок
• Услуги по дезинфекции и стерилизации полов
• Дезинфекция плитки и раствора
• Услуги по распылению HVAC
• И многое другое

Услуги по дезинфекции и дезинфекции жилых помещений

Мы специализируемся на -art электростатические распылители и пароочистители, которые могут доставить самое безопасное и эффективное средство для дезинфекции щита на плитку, раствор, пол, ковровое покрытие, шторы, драпировки и обивку.Мы очень гордимся нашим дезинфицирующим средством для больниц, благодаря которому все поверхности остаются чистыми и тщательно продезинфицированными.

Все наши услуги по дезинфекции и стерилизации в домашних условиях не содержат отдушек, чтобы избежать возникновения аллергии, а также имеют сертификаты NSF, что делает их безопасными для использования на поверхностях, где можно разместить пищу. Наши паровые распылители для очистки и дезинфекции не вызывают раздражения кожи, глаз или легких, их также можно использовать на чувствительной кухонной технике и бытовой электронике, поскольку они не вызывают коррозии.Не оставляя видимых следов на поверхностях, которых они достигают, наши чистящие средства и оборудование отлично подходят для регулярного использования для достижения наилучших результатов.

Наши специалисты по уборке, сертифицированные IICRC, могут оставить любое жилое помещение клинически чистым, независимо от его размера. Мы гордимся нашими услугами по дезинфекции дома, которые избавят ваше место от запаха, а также от микробов и бактерий. Если плесень и грибок вызывают у вас аллергию, вы будете рады узнать, что почувствуете себя намного лучше, когда мы закончим дезинфекцию и санитарную обработку вашего дома.Наши профессиональные услуги по очистке ковров паром и распылению могут устранить вирус h2N1, а также кишечную палочку или опасный норовирус.

Услуги по уборке помещений и дезинфекции распылением

Все типы коммерческих зданий, начиная от офисов, учебных заведений, церквей, спортзалов и больниц, очень восприимчивы к различным бактериям и микробам, при этом регулярно сообщается о серьезных случаях заражения. основание. Паровая очистка NYC может точно убить и избавиться от стафилококка, сальмонеллы, легионеллы, листерий или E.Coli, если упомянуть лишь некоторые из микробов, с которыми мы зарегистрировали отличные результаты.

Мы полагаемся на некоррозионные спреи и мощные решения для очистки паром, которые позволяют нам выполнять наши задачи, не мешая нормальному функционированию офисной техники, компьютеров, розеток, микроволновых печей и этот список можно продолжить. Все предметы, к которым прикасаются сотрудники, клиенты или участники, будут тщательно продезинфицированы и дезодорированы в соответствии со стандартами, которые считаются клинически чистыми. Ополаскивание не требуется, и все продукты, с которыми мы работаем, зарегистрированы Epa, одобрены и сертифицированы CDC.Это означает, что их безопасно использовать на различных типах поверхностей, контактирующих с пищевыми продуктами.

Услуги паровой очистки ковров и обивки

• Чтобы избавиться от вызывающих аллергию загрязняющих веществ, NYC Steam Cleaning полагается на профессиональные методы чистки ковров и оборудование с глубокой вытяжкой.
• Мы внимательно следуем всем рекомендациям производителей, а также всем гарантийным требованиям, прежде чем приступить к работе нашей системы очистки ковров на грузовике.
• Мы уделяем особое внимание участкам с интенсивным пешеходным движением, где большая часть грязи, сажи, бактерий и микробов имеет тенденцию глубоко проникать в волокна ковра.
• Наши специалисты работают только с индивидуальными решениями для каждого ковра, особенно когда речь идет о более чувствительных и легко повреждаемых восточных коврах из шерсти, шелка и других подобных тканей. Мы также специализируемся на услугах по дезодорации, а также на ремонте и нанесении пятностойкого защитного покрытия, благодаря которому все ковры будут выглядеть и чувствовать себя свежими в течение длительного времени.
• Наши специализированные услуги паровой очистки ковров и обивки в основном включают в себя процедуру откачки горячей воды, которая на 100% удаляет даже самые сильные и глубокие загрязнения. Мы используем только мягкую воду и специальную формулу для наших чистящих средств, которая впрыскивается прямо в волокна ковра. С помощью мощного всасывания, которое может глубоко удалить грязь, мы также удаляем все следы аллергенов, а также около 95 процентов влаги.

.