Методы и способы стерилизации: Стерилизация. Методы стерилизации инструментов и медицинских изделий

Методы стерилизации — Особенности

Как проводится стерилизация?

Стерилизации подлежат все инструменты многократного использования, которые контактируют с кожей и слизистыми оболочками клиента и могут их травмировать, а также изделия, непосредственно контактирующие с кровью.

Исходя из этого утверждения, стерилизационной обработке подлежат:

• Хирургический инструментарий;
• Стоматологический инструментарий;
• Маникюрный инструментарий;
• Инструменты для тату, перманентного макияжа и пирсинга;
• Косметологические инструменты.

Кроме того, в медицинских учреждениях обработке подвергаются белье, перевязочные материалы, медицинские тапочки и перчатки, дренажные трубки, зонды и пр.

Добиться полной стерильности инструментов можно лишь путем проведения последовательной обработки, включающей дезинфекцию, предстерилизационную очистку (ПСО) и стерилизацию. Каждый из этих этапов выполняет свою функцию. Нельзя приступать сразу же к стерилизации, игнорируя предварительное проведение дезинфекции и ПСО. Такой подход лишь помешает качественному проведению обеззараживания инструментов. А это чревато заражением инфекциями, как клиентов, так и сотрудников.

Методы стерилизации

Существует несколько методов. При выборе метода необходимо учитывать материал, из которого изготовлено изделие/инструмент, количество обрабатываемых изделий, финансовые возможности учреждения и прочие факторы.

Различают такие методы стерилизации изделий и инструментов:

• Физический;
• Химический;
• Газовый.

Каждый из методов обладает своими преимуществами и недостатками.

Особенности физических методов стерилизации

Физические методы, по сути, представляют собой обработку инструментов высокой температурой. К этой категории относят паровую, воздушную и гласперленовую стерилизацию. Проведение физической стерилизации требует использования определенного оборудования. В целом, это наиболее часто используемый метод обработки, который помогает добиться качественного обеззараживания инструментов.

Суть паровой стерилизации заключается в обработке инструментария водяным паром, подаваемым под высоким давлением. Для этого используют паровые стерилизаторы — автоклавы. Это достаточно громоздкое и дорогое оборудование, которое могут себе позволить большие учреждения, например, больницы. Температурный режим в автоклавах варьирует в пределах 110-135°С, время обработки — всего лишь 5-20 минут. Это самый эффективный и быстрый метод стерилизации.

Воздушный метод обработки это не что иное, как обработка инструментов сухим горячим воздухом. Стоит отметить, что воздушные стерилизаторы (они же сухожаровые шкафы) меньше в размере и дешевле автоклавов. Поэтому большинство салонов красоты и студий ногтевого сервиса практикуют этот вид дезинфекции. Впрочем, у воздушного метода есть и свои относительные недостатки. Так, для стерилизации сухим воздухом требуются еще большие значения температуры — 160-180°С, а время стерилизации увеличивается до 30-150 минут.

Особенность проведения гласперленовой стерилизации заключается в использовании аппарата, заполненного кварцевыми шариками. При включении аппарата шарики нагреваются до 180-240°С, благодаря чему происходит оббезараживание. Гласперленовые стерилизаторы имеют небольшие размеры, а поэтому подходят для обеззараживания только мелких инструментов. Этот метод обладает существенными недостатками. Во-первых, в аппарат невозможно погрузить большой инструмент целиком, а значит, его обработка будет неполной. Во-вторых, не существует методов контроля работы гласперленовых стерилизаторов. Учитывая эти нюансы, контролирующие органы не рекомендуют использовать этот вид стерилизации в профессиональной деятельности.

Особенности химического метода стерилизации

Химический метод — обеззараживание инструментов и изделий различными химическими средствами. Этот метод особенно ценен для обработки изделий, изготовленных из термолабильных материалов (к примеру, из стекла, пластмасс или резины). В частности его применяют для стерилизации эндоскопов. Еще одним преимуществом метода можно назвать его дешевизну. Однако химический метод стерилизации достаточно трудоемкий, что можно расценивать как недостаток.

Для проведения стерилизации используют контейнер, который наполняют раствором химического средства. В наполненную емкость полностью погружают использованные инструменты, при этом они не должны лежать плотно друг к другу. Время экспозиции зависит от используемого химического средства и может составлять от 60 до 600 минут. По завершению обработки инструменты вынимают стерильными пинцетами и промывают в стерильной воде. Обработанные изделия хранят в стерильных контейнерах не более трех дней.

Особенности газового метода

Газовый метод в РФ нельзя назвать популярным. Обработка в газовых стерилизаторах производится при температурах до 80°С и с использованием газов: оксида этилена, озона, паров раствора формальдегида. Одной из причин непопулярности газовой стерилизации можно назвать дороговизну самого стерилизационного оборудования.

Газовую стерилизацию, главным образом, проводят для обработки термолабильных изделий из резины и пластмассы, инструментов с зеркальной поверхностью, оптических эндоскопов, кардиостимуляторов. Но стоит отметить и тот факт, что обработка газом требует значительного времени экспозиции. Так, время стерилизационной выдержки при обработке парами формальдегида составляет 120-180 минут, озоном — 240-960 минут. Еще одним недостатком метода является токсичность газов.

Контроль качества стерилизации

От соблюдения методики проведения стерилизации и исправности оборудования зависит качество обеззараживания инструментов. Оценить качество проведения позволяют методы контроля.

Проведение физического метода контроля невозможно без использования приборов, фиксирующих показатели температуры, давления и времени. Например, соответствие температурного режима нормам оценивают с помощью максимальных термометров, которые помещают в стерилизатор вместе с обрабатываемыми инструментами.

Химический метод контроля базируется на использовании специально разработанных химических полосок с индикаторами. Тест-полоски укладывают в стерилизаторе в определенных точках. После проведения стерилизационной обработки осматривают тест-полоски, которые при правильном проведении стерилизации меняют цвет. Если же тест-полоски не изменили цвет — значит, инструменты остались нестерильными.

Биологический метод контроля представляет собой использование биотестов. Это флаконы, обсемененные тест-микроорганизмами, которые во время проверки размещают в стерилизаторе. Далее биотесты подвергаются бактериологическому исследованию. Если на исследуемых образцах отсутствует рост культур — это говорит в пользу эффективного проведения стерилизации.

Контроль качества — это один из основных моментов, на который обращают внимание контролирующие органы. Стоит отметить, что руководителям медицинских учреждений и салонов красоты стоит внедрить эти методы контроля в свою будничную практику. Это позволит выявить и устранить возможные ошибки при проведении стерилизации, а также гарантировать клиентам стопроцентную стерильность используемых инструментов.

Вернуться к списку публикаций

Методы стерилизации

Различают
термические
методы —
физический: паро­вой, воздушный,
гласперленовый (в среде нагретых
шари­ков),
а также ультрафиолетовое облучение
воздуха поме­щений:
перевязочных, процедурных, операционных.
В кли­нической
практике чаще всего применяются
термические методы
стерилизации, которые заключаются в
воздействии пара
под избыточным давлением и температуры
стерили­зации (автоклавирование) и
воздействии сухого горячего воздуха,
достигающего температуры стерилизации
(исполь­зуются
сухожаровые шкафы разной модификации).

Химические
методы стерилизации
осуществляются ра­створами
дезинфицирующих средств или газами
изделий из полиэтилена, аппаратуры для
искусственной вентиля­ции легких
(ИВЛ), различных эндоскопов с волоконной
оптикой.
К химическому методу относится газовая
стери­лизация
оксидом этилена, окисью пропилена,
броми­стым
метилом и их смесью, а также
пароформальдегид-ный
метод.

Ультразвуковой
метод стерилизации.

Стерилизация
инфракрасным излучением.

Радиационный
метод в
(установке с источником излу­чения
для промышленной стерилизации изделий
однократ­ного
применения).

Выбор
метода зависит от многих факторов,
основными из
которых являются:

324

Метод
стерилизации

Критические
параметры

Паровая

Время,
температура, насыщенный пар

Воздушная
(сухим теплом)

Время
и температура

Оксидом
этилена (ЭО)

Время,
температура, влажность и
концентрация
ЭО

Радиационная

Полная
поглощенная доза

Пароформальдегидная

Время,
температура, влажность иконцентрация
паров формальдегида

Централизованное
стерилизационное
отделение
(ЦСО)

Стерилизация
изделий медицинского назначения
осу­ществляется
в централизованных стерилизационных
от­делениях
ЛПУ. В лечебно-профилактических
учреждени­ях
России действует технология стерилизации
«Чистый инструмент».
Такие системы предусматривают
организа­цию
потоков «грязных» и стерильных изделий,
что пол­ностью
исключает возможность использования
нестериль­ных изделий и обеспечивает
полный контроль каждой еди­ницы
в пределах больницы. Главное место в
организации и работе этих потоков
занимают ЦСО, которые позволя­ют
значительно улучшить качество
обеззараживания и стерилизации
медицинского инструментария.

ЦСО
имеет три зоны: «грязную», «чистую» и
«стериль­ную».
Все зоны отделены стенами. Поступление
материа­лов,
изделий осуществляется через шлюзы в
одном на­правлении
по принципу «от грязного к чистому,
стериль­ному»
.

В
«грязную» зону ЦСО поступает использованный
ма­териал,
в том числе и прошедший этап дезинфекции
на рабочих
местах согласно требованиям нормативных
доку­ментов.
Тележки, на которых доставляется этот
материал,

325

моются
и дезинфицируются в специальной комнате
ЦСО. Весь
загрязненный материал принимается и
сортируется, затем перемещается в
комнаты для подготовки специаль­ных
инструментов, мойки, дезинфекции и
предстерилиза-ционной
очистки. Проводится контроль каждого
этапа обработки изделий медицинского
назначения, и изделия передаются в
«чистую» зону. Хирургические перчатки
после сортировки стираются и упаковываются
вместе с тест-индикаторами
процесса стерилизации. Все инстру­менты
в «чистой» зоне проходят технический
контроль изделий
и упаковку в: биксы (стерилизационные
короб­ки),
бязевые упаковки, современные упаковочные
матери­алы
(см. далее) с размещением в контрольные
точки тер­мовременных
индикаторов процесса стерилизации 4-го
класса (см. далее). Укладка белья, склад
чистых изделий проводится
в «чистой» зоне. Пройдя технический
конт­роль,
упакованное белье и изделия автоклавируются
и пе­ремещаются
через шлюз на стерильный склад, откуда
про­изводится
выдача готовой стерильной продукции
или ее складирование
в пределах сроков стерилизации.

Невостребованные
стерильные материалы возвращают­ся
на склад чистых изделий.

Условия,
обеспечивающие стерильность медицинских
изделий в ЦСО

Основными
условиями, обеспечивающими стерильность
медицинских
изделий в ЦСО, являются:

1. Зонирование
   технологического процесса и
   наличие
   разграничительных стен в
   отделении.

2. Транспортные
   потоки не пересекаются, исключается
   риск
   повторной контаминации стерильных
   медицин­
   ских
   изделии.

3. Использование
   технических средств на
   операциях
   предстерилизационной
   (с применением современного
   моечного
   и дезинфекционного оборудования, в
   том
   числе
   оборудования проходного типа) и
   стерилиза­
   ции (использование
   проходных форвакуумных па­
   ровых
   стерилизаторов с автоматическим
   микропро­
   цессорным
   управлением, наличием свободно програм-

326

мируемых
режимов стерилизации и т.п.), обеспечи­вает
100% стерильность.

4. Стерилизационная
   камера и основные узлы изготов­
   лены
   из высоколегированной нержавеющей во
   избе­
   жание
   коррозии в процессе эксплуатации стали.
   Сте­
   рилизаторы
   должны отвечать требованиям ГОСТ
   Р
   51935-2002.

5. Профессиональная
   подготовка обслуживающего пер­
   сонала
   должна соответствовать требованиям к
   эксп­
   луатации используемого
   оборудования.

6. Использование
   современных средств контроля каче­
   ства
   каждого этапа обработки и процесса
   стерили­
   зации.

7. Обеспечение
   соответствующего санитарного режима
   на
   выполняемых технологических операциях
   и в со­
   ответствующих
   зонах ЦСО.

Стерилизационные
упаковки

Эффективность
стерилизации зависит от упаковки.
Ос­новная
функция упаковки — защита стерильного
матери­ала
от повторного обсеменения микроорганизмами
(рекон-таминации).
Стерильный материал и стерильная
упаков­ка
не должны рассматриваться отдельно
друг от друга. Без
соответствующей упаковки стерильный
материал бес­полезен,
так как нестерилен. Изделия,
простерилизован-ные
без упаковки, должны быть использованы
непосред­ственно
после стерилизации. Стерилизация сухим
теплом или
влажным материалом в упаковке позволяет
сохра­нить
стерильность изделий. Стерилизационные
упаковоч­ные материалы должны быть
легко проницаемы для соот­ветствующих
стерилизующих агентов, в закрытом виде
непроницаемы
для микроорганизмов и сохранять
целост­ность
после стерилизации соответствующим
методом.

Для
упаковки используются многоразовые
стерилиза­ционные
коробки (биксы), различные крафт-пакеты,
со­временные
упаковочные материалы.

Стерилизации
подвергаются сухие изделия в упаков­ках
из бумаги (крафт-пакеты) мешочной
непропитанной,

327

бумаги
мешочной влагопрочной. Существуют
упаковки из
двуслойной х.-б. ткани, соответствующей
ОСТу 42-21-2-85.
Сроки сохранения стерильности зависят
от упаков­ки.
Биксы без фильтра хранятся трое суток,
с фильтром — 20
суток. Упаковки из двуслойной х.-б. ткани
или крафт-пакеты
хранятся до трех суток в стерильных
условиях. Все упаковки маркируют.

В
зависимости от химического индикатора
с 1994 года пакеты
изготавливаются трех разновидностей:

• с
  химическим индикатором паровой
  стерилизации
  ИСПС;

• с
  химическим индикатором воздушной
  стерилизации
  ИСВС;

• с
  химическим индикатором паровой и
  воздушной сте­
  рилизации
  ИЭ «ВИНАР».

С
1998 года Минздравом РФ разрешены к
применению импортные
бумажные пакеты, соответствующие
требова­ниям
международного стандарта. Срок хранения
таких пакетов
20 дней. Сегодня применяются самоклеящиеся
пакеты
из влагопрочной бумаги для паровой и
воздушной стерилизации.
На внешней стороне пакета нанесен
хими­ческий
индикатор 1 класса с указанием
соответствующего метода
стерилизации и описанием конечного
цвета инди­катора,
приобретаемого после стерилизации.
Пакеты гер­метично
закрывают с помощью самоклеящейся
ленты, нанесенной
на клапан пакета, без использования
допол­нительного
оборудования.

В
ВНИМАНИЕ!
Изменение
цвета
индикатора
1 класса
не
позволяет
судить
о
соблюдении
параметров
стерилизации
и
достижении
условий,
достаточных
для
надежной
стери­лизации
изделий.
Для
этой
цели
необходимо
использо­вать
химические
индикаторы
4—6
классов
и
другие
мето­ды
контроля,
разрешенные
к
применению.

Применение
пакетов для стерилизации

1.
Перед применением пакеты осматривают,
проверяя их
целостность и срок годности по маркировке
тары. Нельзя пользоваться
поврежденными пакетами и с истекшим
сро­ком
годности!

зга

2. Размер
   пакета выбирают с учетом габаритов
   стери­
   лизуемого
   медицинского изделия. Во избежание
   разрыва
   швов
   пакетов в процессе стерилизации пакеты
   не следует
   заполнять
   более чем на 2/3 объема или длины пакета.

3. Медицинские
   изделия размещают рабочими частями
   к
   закрытой стороне пакета.

4. Для
   предотвращения повреждения пакетов
   колющи­
   ми
   и режущими инструментами могут быть
   использованы
   следующие
   приемы: упаковывание изделий
   последователь­
   но
   в два пакета или обертывание рабочих
   частей таких
   изделий
   чистыми марлевыми или бумажными
   салфетками.

5. Укомплектованный
   изделием пакет закрывают сле­
   дующим
   образом:

• снимают
антиадгезивное покрытие с липкого
слоя
клапана;

• перегибают
по линии сгиба клапан и прижимают его

к
лицевой стороне пакета, проглаживая
рукой от центра
к краям пакета. Перед закрытием пакета
из него
следует удалить воздух путем проглаживания
в сторону
открытого конца.

6. Пакеты
   с упакованными изделиями укладывают
   в
   корзины
   для стерилизации.

7. Стерилизацию
   изделий, упакованных в пакеты,
   осу­
   ществляют
   в стерилизаторах, разрешенных в
   установлен­
   ном
   порядке к применению в Российской
   Федерации, со­
   блюдая
   требования инструкции по эксплуатации
   стерили­
   заторов
   и правила загрузки стерилизационной
   камеры.

8. Изделия,
   оставшиеся влажными после
   стерилизации
   паровым
   методом, подсушивают непосредственно
   при сте­
   рилизации.

9. При
   стерилизационной обработке происходит
   визу­
   ально
   различимое изменение цвета химического
   индикато­
   ра
   на лицевой стороне пакета: индикатор
   ИСПС — для
   паровой
   стерилизации, меняет свой цвет с желтого
   на ко­
   ричневый;

• индикатор
  ИСВС — для воздушной стерилизации
  ме­
  няет
  свой цвет с фиолетового на коричневый;

• индикатор
  ИЭ «ВИНАР» — для паровой и
  воздушной
  стерилизации,
  меняет исходный цвет после воздей-

329

ствия
водяного насыщенного пара на темно-розовый,
а
в сухом горячем воздухе — на коричневый.

10. Срок
    хранения медицинских изделий после
    стери­
    лизации
    в пакетах составляет 20 дней.

11. Запрещается
    использовать изделия из пакетов если:

• нарушена
  целостность пакета;

• химический
  индикатор не изменил свой цвет;

• пакет
  находится во влажном состоянии.

12. При
    отсутствии нарушений пакет вскрывают
    при
    помощи
    ножниц со стороны клапана с соблюдением
    мер
    асептики.
    Изделие выкладывают на «стерильный
    стол»
    или
    сразу используют по назначению.

13. Хранятся
    пакеты в защищенном от света месте.

14. После
    использования пакеты подлежат
    утилизации
    как
    бытовые отходы.

Современные
прозрачные упаковочные материалы
ком­пании
«Медтест» предназначены для сохранения
стериль­ности
медицинских изделий в течение длительного
време­ни
после стерилизации. Они выполнены из
специальной стерилизационной
бумаги с фильтрующим эффектом, от­вечающей
требованиям международного стандарта.
Вов­нутрь
прозрачной упаковки закладывается
индикатор сте­рильности,
но и на внешней стороне пакета имеется
ин­дикатор
процесса, обеспечивающий двойной
контроль.

Понятие
об
автоклавировании

Автоклав
(от греч. ауто
—
сам и лат. клавис
—
ключ) — означает
«самозапирание». Автоклавирование, или
сте­рилизация
в паровом стерилизаторе, применяется
для про­цесса
стерилизации инструмента, любых ИМН из
метал­ла,
стекла, резины и текстиля, растворов,
лигатурного шовного
материала. Стерилизаторы паровые имеют
раз­личные
габариты с различной степенью
автоматизации. Объем
рабочей камеры составляет 10, 25, 75, 120 л.

В
паровых стерилизаторах создается
высокая темпера­тура
(до 138 °С) и высокое давление (до 2,5 атм.),
благо-

330

даря
которым обеспечиваются условия для
вытеснения воз­духа
из всей стерилизационной камеры, а,
следовательно, и оптимальное насыщение
паром. Простейший паровой стерилизатор
состоит из котла с двойной стенкой и
герме­тически
закрывающейся крышки, позволяющей
поднять давление
пара до определенного предела. Устройство
со­временных паровых стерилизаторов
соответствуют требо­ваниям нового
стандарта 2002 года, который можно срав­нить
с международным стандартом EN285-96.
В них су­ществует
высокоэффективная система вакуумной
сушки, возможность
выбора режимов стерилизации (3 режима,
а
не 2), имеется короткий режим стерилизации
при пол­ной
автоматизации процесса стерилизации,
которые обес­печивают
высокое качество стерилизации. Выполняются
тестовые (контрольные) автоматические
режимы. Для до­кументирования параметров
процесса стерилизации име­ется
принтер и самописец (регистратор),
фиксирующий ре­зультаты
стерилизации каждой конкретной партии.

Режимы
стерилизации

1-й
режим — температура
132 °С, давление 2 атм., вре­мя
20 мин.

Первый
режим (основной) предназначен для
стерилиза­ции
изделий из бязи, марли (перевязочного
материала, бе­лья и т.д.), стекла, включая
шприцы с пометкой «200 «С», изделий
из коррозийностойкого металла.

2-й
режим — температура
120 °С, давление 1,1 атм., время
45 мин.

Второй
режим (щадящий) рекомендуется для изделий
из
тонкой резины, латекса (хирургические
перчатки и т.д.) и
отдельных видов полимеров (полиэтилен
высокой плот­ности).

3-й
режим —
температура 134 «С — 5 мин, 2 атм.

Условия
проведения стерилизации: все
изделия, стери­лизуемые
паром под давлением, предварительно
помеща­ют
в упаковку — стерилизационные коробки
(биксы или контейнеры) с фильтром или
без фильтров, крафт-пакеты и другую
упаковку, предназначенную для паровой
стери­лизации.

331

Соблюдаются
требования ведения журнала контроля
работы
парового стерилизатора (форма работы
стерили­заторов
— 257/у).

Воздушный
метод
стерилизации

Проводится
в воздушном стерилизаторе сухим горячим
воздухом.
Рекомендуется для стерилизации любых
ИМН из металла, стекла, силиконовой
резины. Воздушные сте­рилизаторы
(сухожаровые шкафы) имеют различные
га­бариты
с различной степенью автоматизации и
объемом рабочей камеры, как с односторонней
загрузкой, так и проходного типа. В
стерилизационной камере создается
однородная
рабочая температура от 160 °С до 180 °С с
предельными
отклонениями от —10 до +5 °С, благодаря
принудительной
циркуляции воздуха и автоматическому
поддержанию
температуры. Современные воздушные
сте­рилизаторы имеют высокоэффективную
систему охлажде­ния
и эффективную теплоизоляцию.

Режимы
стерилизации

1-й
режим —
температура 180
«С,
время 60 мин.

Первый
режим (основной) предназначен для
стерили­зации
изделий из стекла, включая шприцы с
пометкой «200
«С», изделий из металла: хирургические,
стоматоло­гические,
гинекологические инструменты, в том
числе кор-розийнонестойких
металлов.

2-й
режим —
температура 160 ‘С, время 150
мин.
Вто­рой
режим (щадящий) предназначен для
стерилизации изделий
из силиконовой резины, а также деталей
некото­рых
аппаратов и приборов.

Условия
проведения стерилизации: изделия
стерили­зуются
без упаковки на сетках или упакованными
в бума­гу
упаковочную, соответствующую требованиям
действую­щего
Отраслевого стандарта, а также в
разрешенные за­рубежные
упаковочные материалы.

Соблюдаются
требования ведения журнала контроля
работы
воздушного стерилизатора (форма 257/у).

332

Порядок
работы на воздушных стерилизаторах
(сухожаровые шкафы)

1. Загрузка
   производится в холодный стерилизатор.

2. Нагревание.

3. Стерилизация:
   отсчет времени стерилизации начи­
   нать
   от достижения нужной температуры
   стерилизации
   (180
   °С) до истечения срока экспозиции (60
   минут).

4. Охлаждение:
   до 40-50 °С.

5. Разгрузка.
Последовательность
действий:

1. Разложить
   на металлические сетки
   хирургический
   инструментарий
   так, чтобы часть отверстий была
   от­
   крыта
   для циркуляции нагретого воздуха.

2. Поместить
   в пяти точках индикаторы стерильности
   (см.
   таблицу 23).

3. Закрыть
   дверцу шкафа, включить рубильник.

4. Прогреть
   стерилизационную камеру в течение
   5—
   10
   минут.

5. Открыть
   дверцу сухожарового шкафа, установить
   сетки
   с хирургическими инструментами на
   полки шкафа.

6. Закрыть
   дверцу сухожарового шкафа.

7. Установить
   ручку реле времени на требуемую
   дли­
   тельность
   стерилизации.

Примечание.
По
достижении
заданной
температуры
в
стери­лизаторе
на
пульте
управления
загорится
сигнальная
лампа,
указывающая
начало
стерилизации.

При
автоматической стерилизации
электронагреватели по
окончании заданного цикла автоматически
отключа­ются и сигнальная лампа
гаснет.

При
полуавтоматическом режиме работы шкафа
меди­цинская
сестра по окончании стерилизации
отключает его от
сети, выключив рубильник или выключатель.

Стерилизация
растворами
химических
веществ

Перекись
водорода обладает
выраженным обеззаражи­вающим
свойством. Для стерилизации используется
6%

333

раствор
перекиси водорода — экспозиция 180 мин,
темпе­ратура
50 °С; при полном погружении для стерилизации
изделий
из полимеров, резины, стекла и
коррозийно-нестойких
металлов экспозиция — 360 мин при
темпера­туре
18 °С.

По
окончании срока экспозиции изделия
промывают двукратно
стерильной водой и переносят в стерильные
кон­тейнеры,
например, стерилизационные коробки,
выстлан­ные
стерильной простыней (полотенцем), и
плотно закры­вают (срок стерильности
— трое суток) или выкладывают на
стерильный инструментальный стол для
использования.

Примечание:
6%
раствор
перекиси
водорода
может
исполь­зоваться
в
течение
7 суток
со
дня
приготовления
при
усло­вии
хранения
его
в
закрытой
таре
в
темном
месте.
Использо­вать
в
дальнейшем
можно
только
при
условиях
контроля
со­держания
активно
действующих
веществ.

«Дезоксон-1»
— бесцветная жидкость с характерным
запахом
уксусной кислоты, хорошо растворима в
воде, спирте.
Выпускается во флаконах из темного
стекла и при температуре
10 °С сохраняет активность в течение
года.

Для
стерилизации используются рабочие
растворы 1% (по
надуксусной кислоте), для чего разводят
200 мл пре­парата
в 800 мл водопроводной воды. Используется
толь­ко
один раз.

Условия
проведения стерилизации: при
полном по­гружении
на время стерилизационной выдержки 45
мин при
температуре 18 °С. Затем стерильные
изделия промы­вают
в стерильной воде, погружая на 5 мин, с
троекрат­ной
сменой воды, а затем помещают в стерильную
стери-лизационную коробку на стерильную
простыню. Срок со­хранения
изделия стерильным — 3 суток.

«Дезоксон-1*
обладает выраженным коррозийным
дей­ствием,
а поэтому не всегда годен для стерилизации
инст­рументов.
Работают, соблюдая меры предосторожности.

Новости

Методы стерилизации медицинских инструментов

Научно-техническая революция не могла обойти стороной такую отрасль, как медицина. Однако в медицине изменилось не только само оборудование. Для лучшего качества проводимых процедур в медицине начались использоваться новые и современные методы для дезинфекции инструментов, чтобы достигнуть максимальной стерильности. Наряду с новыми методами продолжают использовать старые и проверенные способы дезинфекции, которые доказали свою эффективность столетиями употребления во врачебной практике.

Само понятие стерилизация подразумевает полное уничтожение на инструментах микроорганизмов, вирусов и других возбудителей заболеваний, чтобы врачи, используя инструменты, не смогли занести инфекцию в организм больного. Именно поэтому стерилизация медицинских инструментов — это необходимость с самого возникновения такой науки, как медицина.

Все методы стерилизации можно разделить на термические и холодные. Они отличаются между собой по принципу действия.

Термическая обработка.

К стандартным методам стерилизации, которые имеют большую историческую основу, можно отнести термическую обработку инструментов. Однако даже она потерпела довольно сильные изменения. Раньше в медицине стерилизовать медицинские инструменты можно было только двумя способами: кипячением и обработкой на открытом огне. Оба эти варианта, несмотря на множественные достоинства, имели и некоторые недостатки. Во-первых, не все бактерии и вирусы умирают при температуре кипения воды. Во-вторых, при стерилизации на открытом огне на инструментах образуется копоть. Поэтому для современной стерилизации медицинских инструментов путем термической обработки используются специальные камеры. В них температура намного выше, чем при кипении, а также инструменты стерилизуются без образования побочных налетов на поверхностях.

Современный подход к стерилизации старается достигнуть максимального эффекта. Так как по сравнению с тем же восемнадцатым столетием болезней, которые могут передаваться вместе с медицинскими инструментами, стало намного больше, а вот иммунитет среднестатистического человека значительно снизился. Поэтому в процессе стерилизации нужно применять методы, которые бы максимально обезопасили пациентов от заражения. В разных отраслях медицины, используются разные методы термической стерилизации, в зависимости от того, какой уровень безопасности минимально необходим для пациента.

Для обработки инструментов в современной медицине используются два метода термической стерилизации — паровой и воздушный. Они тоже немного отличаются между собой. Воздушный способ стерилизации подразумевает нагревание воздуха в камере до температуры, при которой умирают все болезнетворные бактерии. Паровой способ стерилизации подразумевает дополнительную обработку инструментов паром, благодаря чему, кроме того, что бактерии умирают от воздействия высокой температуры, они дополнительно смываются с инструментов потоком пара. Поэтому паровой способ термической обработки применяется там, где необходим очень высокий уровень стерильности.

Холодные методы стерилизации.

Если в начале восемнадцатого столетия единственным методом химической стерилизации медицинских инструментов была простая обработка их спиртом, то на сегодняшний день, данная сфера медицины, шагнула значительно дальше. Сейчас наряду с обыкновенным медицинским спиртом используется множество специальных растворов.

Достоинством таких растворов является то, что с их помощью можно быстро стерилизовать инструмент. При этом каждый раствор специально составляется для определенного типа бактерий, если врач работает только с одной группой пациентов. Например, есть специальные растворы, которые быстро убивают вирусы гриппа или же возбудителей кожных заболеваний. Поэтому после одного пациента врач может в самые короткие сроки простерилизовать инструмент и принять другого больного.

Чаще всего такие растворы используют в полевых условиях, когда нет возможности термической обработки инструментов, так как установки для термической обработки требуют наличие питания, кроме того, они достаточно объемны, поэтому постоянно транспортировать их с собой невозможно. А вот специальные химические составы для холодной стерилизации всегда можно иметь даже в походной аптечке.

К новым методам стерилизации, которые не имеют аналогов в истории, можно отнести такой способ холодной стерилизации, как обработка инструмента кварцем. В основе данного метода лежит облучение инструментов светом от кварцевой лампы. Несмотря на кажущуюся неэффективность, данный метод стерилизации, позволяет в короткие сроки получить стерильные инструменты. Поэтому он часто используется в медицине как альтернатива термической обработке, хотя к полевым условиям его довольно сложно применить.

К современным методам стерилизации можно также отнести радиационный метод стерилизации. Однако в широкой практике он пока что не применяется, так как оборудование для него объемное, дорогое и требует затрат энергии. Данный метод состоит в том, что инструменты облучаются радиационным излучением, которое убивает все возбудители болезней без исключения. Данный метод часто используют на производстве для того, чтобы стерилизовать инструменты перед упаковкой, так как он дает стопроцентную гарантию стерильности.

Современная медицина значительно прогрессировала за последние несколько столетий. Мы забыли об эпидемиях и в большей части, благодаря тому, что на сегодняшний день все медицинские инструменты являются стерильными. Современные методы термической и холодной стерилизации шагнули далеко вперед, чтобы пациенты и врачи всегда могли оставаться спокойными. Не исключено, что в ближайшем будущем появятся и новые более надежные методы для стерилизации инструментов, которые смогут полностью решить данную проблему.

Вернуться к статьям

Методы и способы стерилизации — презентация онлайн

1. Методы и способы стерилизации

Выполнила:
Студентка ПФ группы № 2404
ГБОУ ВПО СибГМУ
Минздрава России
Суворина А. С.

2. Стерилизация

• — полное освобождение вещества или предмета от микроорганизмов
путем воздействия на него физического или химического агентов
• Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с
раневой поверхностью, контактирующие с кровью или
инъекционными препаратами или отдельные виды медицинских
инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со
слизистыми оболочками и могут вызвать ее повреждение.
• К физическим методам стерилизации
относятся:
Обработка сухим горячим воздухом;
Паром под давлением;
Инфракрасным излучением;
Фильтрование
Кипячение не относятся к методу стерилизации.
• Наиболее распространенным способом стерилизации предметов,
допускающих применение высокой температуры, является
стерилизация огнем, горячим воздухом и насыщенным водяным
паром под давлением.
• Нельзя стерилизовать сухим жаром питательные среди,
изотонический раствор, предметы из резины и синтетических
материалов, так как жидкости вскипают и выливаются, а резина и
синтетические материалы плавятся.
• Стерилизация насыщенным паром под давлением – это наиболее
надежный и чаще всего примеряемый способ стерилизации
перевязочного материала, воды, некоторых лекарственных средств,
питательных сред, мягкого инвентаря, инструментов, а также для
обеззараживания отработанного зараженного материала.
• В хирургической практике перевязочный материал, халаты хирургов,
белье для оперируемого обеззараживают при помощи пара в
автоклавах. Стерилизация паром под давлением осуществляется в
специальных аппаратах – автоклавах.
• С помощью высокой температуры можно уничтожить самые стойкие
формы патогенных микроорганизмов (включая и спорообразующие)
не только на поверхности обеззараживаемых объектов, но и глубине
их. В этом и заключается большое преимущество высокой
температуры, как надежного средства стерилизации. Однако,
некоторые предметы портятся под действием высокой температуры и
в этих случаях приходится прибегать к другим способам и средствам
обеззараживания.
• К химическим методам стерилизации
относятся:
• Газовый (окись этилена, бромистый метил и пары)
• 40% р-ра формальдегида в этиловом спирте
• Погружение в растворы химических стерилизующих агентов.
• При химической стерилизации используют газы и средства из
различных химических групп (перекисные, фенольные,
галоидосодержащие, альдегиды, щелочи и кислоты, поверхностно –
активные вещества и др.). Для использования в быту выпускаются
моющие, чистящие, отбеливающие и другие препараты,
оказывающие антимикробное действие за счет введения В их состав
различных химических веществ. Эти препараты используются для
очистки и обеззараживания санитарно – технического оборудования,
посуды, белья и пр.
• При стерилизации каким – либо химическим способом регламент
обработки того или иного объекта зависит от особенностей
обеззараживаемого объекта, резистентности микробов, особенностей
свойств химического препарата, температуры окружающей среды,
влажности и других факторов. Так, стерильность металлических
инструментов достигается за пять часов выдерживания в герметичной
камере с парофомом при температуре не ниже 20 градусов и
относительной влажности 95 – 98%, при температуре 15 градусов
полная стерильность этих объектов достигается только через 16 часов.
• Стерилизацию химическим методом применяют несколько
ограничено. Чаще всего этот метод используют для предупреждения
бактериального загрязнения питательных сред и
иммунобиологических препаратов (вакцин и сывороток). К
питательным средам чаще всего добавляют такие вещества, как
хлороформ, толуол, эфир. При необходимости освободить среду от
этих консервантов ее нагревают на водяной бане при 56 градусах и
консерванты испаряются.

14. Механический метод стерилизации

Механические способы стерилизации позволяют удалить микробы с
поверхности предметов. К ним относятся обмывание, вытряхивание,
подметание, влажное протирание, проветривание, вентиляция,
обработка пылесосом, стирка.

15. Биологический метод стерилизации

Биологическая стерилизация основывается на применении
антибиотиков. Этот метод широко используется при культивировании
вирусов.

Стерилизация собак — основные методы, все за и против операции

Нередко владельцы испытывают сомнения, нужно ли столь радикальное вмешательство как стерилизация собак? Это связано с отсутствием в обществе объективной информации и ошибочным расцениванием стерилизации, как прихоти человека без учета интересов животного.

Действительно, такое решение — нужна ли стерилизация собак, требует обоснованного подхода. Во внимание принимаются пол, возраст, порода, условия содержания и медицинские показания. На основании обследования собаки, взвешивания эффекта стерилизации и возможных рисков предпринимаются дальнейшие действия.

Общее понятие «стерилизация собак» подразумевает временное или необратимое предотвращение размножения суки и кобеля.

Способы стерилизации собак

Временная обратимая стерилизация собак осуществляется инъекцией гормональных и химических препаратов. Также это может быть подкожная фиксация импланта-контрацептива для постепенного поступления вещества в кровь. Это вещество обеспечивает угнетение репродуктивной функции.

В пользу временной стерилизации собак можно привести неоспоримые аргументы. Во-первых это возможность через некоторое время иметь потомство. Во-вторых это отсутствие наркоза и послеоперационного восстановительного периода. Однако не стоит исключать и частые риски для здоровья животного. Например гиперплазию и опухоль молочных желез. Диабет и функциональное угнетение надпочечников. Кистозную гиперплазию эндометрия и увеличение выработки гормона роста.

Необратимая стерилизация собак возможна как безоперационным методом, так и с помощью хирургического вмешательства у обоих полов.

Безоперационная стерилизация сук происходит путем разрушения соединения матки и яичников. Вследствие этого абсолютно исключается возможность беременности. Серьезным недостатком этого метода является изолированность половых органов. Позже это может привести к серьезным патологиям — опухоли или абсцессу яичников. Для их устранения приходится полностью удалять матку и яичники. Этот факт заставляет задуматься о целесообразности безоперационной стерилизации.

Лапароскопическая стерилизация собак

Операционная стерилизация или кастрация собак — это удаление семенников у кобелей, матки и яичников — у сук. Сейчас проводится стерилизация лапароскопическим методом. Он имеет гораздо меньше последствий для здоровья собаки.

Для проведения данной операции имеют значение субъективные и объективные причины. Например:

• Нежелание владельцев иметь потомство от данной собаки
• Проблемы, сопровождающие течку у суки
• Явная агрессивность и другие негативные поведенческие факторы у кобеля половозрелого возраста
• Необходимость корректирования поведения собаки, склонной к побегам и поиску полового партнёра
• Желание продлить жизнь питомцу
• Медицинские показания (гормональные и воспалительные патологии матки, кисты и опухоли яичников гормонального происхождения, гиперплазии молочных желез, ложные щенности, кровянистые течки, тяжёлые роды)

Если присутствует хотя бы один из этих факторов, владелец должен обдумать вариант хирургической стерилизации собаки. Нужно учесть, что эта операция подходит не всем животным. Некоторые собаки могут не перенести оперативное вмешательство. Это собаки с серьёзными патологиями сердечно-сосудистой системы или почечной недостаточностью. Также есть риск для собак старше 10 лет.

Решение об операции принимается только после медицинского обследования собаки.

Стерилизация собак — за и против

Плюсы стерилизации кобелей:

• Полное устранение риска приобретения рака яичника
• Снижение риска появления анального фурункулеза
• Снижение риска развития заболеваний простаты нераковой этиологии

Плюсы стерилизации сук:

• Полное избавление от риска развития раковых заболеваний матки, шейки и яичников, гнойного эндометрита
• Снижение риска возникновения опухолей молочной железы, а также параанальных желёз

Минусы стерилизации для обоих полов:

• Увеличение риска гормонозависимого ожирения (нужна коррекция питания, увеличение физической нагрузки)
• Редко гормонозависимое недержание мочи
• Редко развитие гипотиреоза (недостатка гормонов щитовидной железы)
• Возрастание риска ортопедических нарушений

В каком возрасте нужна стерилизация собак?

Вопрос, когда стерилизовать собаку, подразумевает самый безопасный для операции возраст. Проводить её ранее 8-месячного возраста не рекомендуется. Это может привести к задержке роста и развития организма. Стерилизация собак эффективна в период от 8 месяцев до 1 года. Тогда она сводит к минимуму все негативные последствия.

Из всех методов, лапароскопическая стерилизация собак считается достаточно простой операцией. Она очень хорошо переносится животными.

Большое значение имеет послеоперационный уход. Он включает обработку швов, медикаментозную терапию, щадящую диету.

Стерилизация собак — это решение, которое принимает её владелец. Важно, чтобы оно учитывало сохранение здоровья и увеличение продолжительности жизни питомца.

Стерилизация — что это такое, методы и виды стерилизации

Обновлено 20 июля 2021

1. Что такое стерилизация
2. Виды
3. Методы стерилизации
4. Контроль качества обработки

Здравствуйте, уважаемые читатели блога KtoNaNovenkogo.ru. Что подразумевают под словом «стерилизация» в микробиологии?

Звучит заумно, но в жизни все достаточно просто! Давайте разберемся, что к чему!

Что такое стерилизация

Стерилизация – это устранение всех микроорганизмов и их спор на поверхности и внутри предметов, а также в воздухе и жидкостях.

Обеззараживание проходят все предметы, которые контактируют с кожей, со слизистой оболочкой, имеют контакт с ранами или с кровью.

Например, маникюрный и косметический набор, машинки для татуировок и пирсинга, стоматологические и хирургические инструменты. Даже банки стерилизуют, в которые потом огурцы закатывают.

В больницах обеззараживанию подвергают и постельное бельё, вату, бинты, марли, перчатки и т.д.

Для эффективного обеззараживания приборов необходимо соблюдать все этапы обработки: дезинфекцию, предстерилизационная очистку и стерилизацию.

Виды стерилизации

В лечебно-профилактических учреждениях применяется несколько видов организации обеззараживания.

1. Децентрализованная. Весь материал дезинфицируют, проводят предстерилизационную очистку, а затем организуют стерилизацию на месте (например, в маникюрном салоне).

   Недостаток этого вида – плохое качество предстерилизационной обработки, вдобавок затруднен контроль над соблюдением технологий проведения стерилизации.

2. Централизованная. Весь материал для обеззараживания после дезинфекции поступает в центральное стерилизационное отделение, где и проводят предстерилизационную очистку и стерилизацию обученным персоналом.

Методы стерилизации

Существует несколько различных способов обеззараживания инструментов и изделий. Главное – это знать обо всех плюсах и минусах каждого из них.

1. термические методы (паровая, ультразвуковая, гласперленовая и воздушная стерилизации). Они самые популярные: эффективно обеззараживают инструменты и изделия. Заключаются в воздействии высоких температур при обработке.
2. паровые стерилизаторы (автоклавы) обрабатывают увлажненным паром при повышенном давлении. Автоклавы имеют большие габариты и дорого стоят. Этот метод подходит для обеззараживания белья, бинтов, повязок, стеклянных изделий и хирургических инструментов. Температура в паровых стерилизаторах от 120-140 °С, время обработки — 20-60 минут.

   Это самый качественный и быстрый по времени метод, он также безопасен для окружающей среды и работников;

3. воздушные методы (сухожаровые шкафы). Обеззараживающим средством выступает сухой горячий воздух. Устранение микробов происходит за счет окисления и сжигания белка в клетках. Сухожаровые шкафы небольшие в размерах и дешевле, чем автоклавы, поэтому их можно использовать в небольших помещениях, например, салонах красоты.

   Также метод безопасен для окружающей среды, подходит для обеззараживания металлических изделий, стекла и резины.

   Температурный режим — 150-180 °С, а время обработки — 45-160 минут;

4. стерилизация в растворах химических средств. Суть способа в обеззараживании инструментов и изделий в растворах химических средств. Как только завершится процесс стерилизации, инструменты необходимо промыть в дистиллированной воде.

   Способ подходит для предметов из стекла, металла, резины и пластика.

   Время обеззараживания может колебаться от 60 до 600 минут и изменяется в зависимости от химических препаратов, в которых выдерживают изделия;

5. газовый метод. Этот способ не самый популярный, так как очень дорогостоящий, выделяет токсичные газы и пожаро- и взрывоопасный. Обеззараживание проходит при температуре 80 °С и с применением газов, время обработки составляет от 120-960 минут. Продолжительность изменяется в зависимости от используемого газа. Подходит для обработки инструментов из пластика, резины.

Контроль качества обработки

Качество обеззараживания предметов зависит от исправности оборудования и следования правилам при обработке.

Существуют физические и химические методы для оценки качества.

1. Физический метод проводят с помощью приборов, которые измеряют температуру, время и давление. Любое отклонение от стандартов сигнализирует о сбое.
2. При химическом методе контроля используют химические тесты (тест-полоски), которые помещают в стерилизатор. Если обеззараживание было проведено правильно и приборы стерильны, то индикатор поменяет цвет.

Стерильные инструменты и предметы должны быть защищены от влаги, пыли и насекомых. Срок годности обработки зависит от используемого метода – для каждого он свой.

Контроль качества — это важный момент в работе. Обязательно спрашивайте в салонах или маникюрных кабинетах о стерильности их инструментов, ведь от этого зависит ваше здоровье.

Автор статьи: Кристина Чехова

Удачи вам! До скорых встреч на страницах блога KtoNaNovenkogo.ru

Теги (метки статьи):

Некоторые из различных методов стерилизации и их преимущества

Дерек Принс
26 апреля 2018 г.

[mkd_button size = «large» type = «solid» text = «Свяжитесь с нами» custom_class = «» icon_pack = «font_awesome» fa_icon = «» link = «/ contact» target = «_ self» color = «» hover_color = » ”Background_color =” ”hover_background_color =” ”border_color =” ”hover_border_color =” ”font_size =” 15 ″ font_weight = ”700 ″ margin =” ”]

В наших отраслевых компаниях важно иметь множество методов стерилизации, чтобы можно было использовать широкий спектр продуктов и оборудования, включая различные устройства, среды, медицинские инструменты и продукты.

В медицине и здравоохранении нет ничего более важного, чем правильная стерилизация. Существует подходящий способ стерилизации для каждого элемента фармацевтической промышленности и здравоохранения. Это верно в отношении медицинского оборудования, медицинских устройств и фармацевтических препаратов, имплантатов и инъекционных вакцинаций.

На самом деле, если он находится в медицинском или фармацевтическом учреждении и находится где-то рядом с пациентом, скорее всего, он проходит какую-то стерилизацию.Для этих целей используется несколько различных типов стерилизации.

Чаще всего для стерилизации этих продуктов используется тепло, чтобы достичь SAL 10 ^-6 . Существует два различных типа тепловой стерилизации: стерилизация влажным теплом и стерилизация сухим теплом.

Стерилизация влажным теплом — Этот тип стерилизации использует влажность, водяной пар или пар при высоких температурах. Стерилизация паром влажным теплом достигается в автоклаве , а — закрытом устройстве, которое стерилизует продукты паром под давлением.Обычно автоклавы являются предпочтительным методом стерилизации влажным теплом.

Преимущества — Проникающая природа пара и высокая летальность благодаря его эффективным свойствам теплопередачи делают его отличным решением для уничтожения белков любого микроорганизма через определенное время. Он экологически безопасен, не содержит токсичных побочных продуктов. Он имеет долгую и подтвержденную репутацию успеха и безопасности.

Стерилизация сухим жаром — Стерилизация сухим жаром обычно достигается с помощью таких методов, как использование печи с горячим воздухом.Наиболее распространенный метод стерилизации сухим жаром в медицинской и фармацевтической промышленности — это метод горячего воздуха в печи.

Преимущества — Стерилизация сухим жаром предпочтительна для термостойких продуктов, чувствительных к влаге. Депирогенизация, форма стерилизации сухим жаром, является предпочтительным методом сертификации важнейших производственных компонентов (например, стеклянной посуды) как свободных от эндотоксинов. Это полезная альтернатива термостойким материалам, когда иначе нельзя использовать воду или пар.

Жидкая химическая стерилизация — Эта форма стерилизации обычно используется для устройств, инструментов и инструментов, которые чувствительны к нагреванию, но не чувствительны к жидкости. Объект, нуждающийся в стерилизации, погружается в стерилизующую жидкость на заданное время, а затем проходит валидацию стерилизации, чтобы оценить, был ли он полностью стерилизован. Для этого процесса используются надуксусная кислота, глутаральдегид или комбинированные продукты. Необходимо тщательно удалить эти химические вещества.

Преимущества — Жидкая химическая стерилизация чрезвычайно эффективна при уничтожении вегетативных организмов и спор.

Заключение

Это всего лишь несколько типов потенциальных процедур стерилизации, которые могут использоваться компаниями, производящими фармацевтическую продукцию или медицинское оборудование. Есть несколько других популярных методов, включая газовую и радиационную стерилизацию. Давно доказано, что эти формы стерилизации неадекватно уничтожают живые организмы, но также могут быть довольно опасными для людей и окружающей среды.

Выберите Prince Sterilization Services для стерилизации паром влажным теплом

В Prince Sterilization Services у нас есть полное и всестороннее понимание соответствующих процедур стерилизации, включая стерилизацию влажным теплом, стерилизацию сухим теплом и депирогенизацию.

Положитесь на Prince Sterilization Services, чтобы узнать, какой тип стерилизации подходит для каждого продукта. Свяжитесь с нами сегодня по телефону 877.315.5847, чтобы узнать, чем вы можете воспользоваться нашими услугами по стерилизации и многим другим.

[mkd_button size = ”large” type = ”solid” text = ”Поговорите с экспертом или запросите цитату” custom_class = ”” icon_pack = ”font_awesome” fa_icon = ”” link = ”/ contact” target = ”_ self” color = ”” Hover_color = ”” background_color = ”” hover_background_color = ”” border_color = ”” hover_border_color = ”” font_size = ”15 ″ font_weight =” 700 ″ margin = ””]

СТЕРИЛИЗАЦИЯ … От А до Я

НАПИСАНО МНОГИЕ СТАТЬИ, ОПИСЫВАЮЩИЕ множество глубинных процессов стерилизации. Эта статья предназначена для предоставления широкого обзора распространенных технологий стерилизации и основных элементов обеспечения стерильности, а также рекомендаций по выбору процесса стерилизации.Краткая история микробиологии предназначена для напоминания читателям о том, как недавно было обнаружено, что бесплодие является критическим фактором в медицинских процедурах.

Ранние открытия в микробиологии

До изобретения составного микроскопа, в котором вторая линза дополнительно увеличивает изображение первой линзы, отдельные микроорганизмы не наблюдались. Простые линзы не были достаточно мощными, чтобы обеспечить необходимое увеличение. Типичные микроорганизмы имеют размер от половины до нескольких микрон.Микрон — это одна тысячная миллиметра. Человеческий глаз может обнаруживать объекты размером до одной десятой миллиметра. Голландский исследователь Антон фон Левенгук (1632-1723), специалист в области выдувания стекла и тонкой обработки металлов, был первым, кто идентифицировал мир микроорганизмов с помощью построенного им сложного микроскопа. В последующие годы многие исследователи пытались определить, возникла ли жизнь из неживой материи и воздуха (спонтанное зарождение или абиогенез) или живые организмы были перенесены в пыль и другие материалы.Таким образом, связь этой формы жизни с человеческим заболеванием не проводилась еще много лет. Луи Пастер (1822-1895), исследуя ферментацию вина и пива, в значительной степени опроверг теорию абиогенеза. Он использовал колбы с длинными изогнутыми горлышками, чтобы продемонстрировать, что бульон, сваренный в такой колбе, не испортится даже на воздухе, пока колба не опрокинется, заставляя бульон соприкасаться с пылью, скопившейся в горлышке колбы. Во время таких ранних исследований тепло использовалось для предотвращения развития роста.Недостаточный нагрев или зависимость от кипячения часто приводили к запутанным результатам из-за неизвестного существования термостойких спор. Джон Тиндалл (1820-1893) опроверг абиогенез в 1876 году, продемонстрировав существование термостойкой формы жизни. Он вскипятил бульон, дал ему развиться, затем снова вскипятил и продемонстрировал, что никакого дальнейшего роста не произойдет. В этом процессе, который стал известен как тиндаллизация, термостойкие споры дали прорасти, а затем растущие микроорганизмы кипятили, прежде чем они снова смогли образовать споры.Роберт Кох (1843-1910) известен разработкой методов выделения и чистых культур, а также демонстрацией связи между конкретными микроорганизмами и болезнями человека (постулаты Коха). Доказательство связи между микроорганизмами и болезнью или инфекцией привело к развитию асептической хирургии Джозефом Листером (1827-1912). Разбавленные растворы карболовой кислоты (фенола) использовались для очистки ран и хирургических участков, и была осознана важность стерилизации хирургических инструментов.

Мытье рук и предоперационная хирургическая чистка стали частью системы асептической хирургии, введенной в 1882 году Тренделенбургом, фон Бергманном и Шиммельбушем в Германии и Хальстадом в США, когда было продемонстрировано, что бактерии, присутствующие на коже, могут вызывать инфекцию раны. До этого не было ничего необычного в том, что пациент выжил после операции и вскоре после этого скончался от инфекции. Еще недавно, во время Гражданской войны в США (1861-1865), среди военных было больше смертей из-за инфекции, чем из-за самих ран.Как всегда, беспокоит стерильность медицинских изделий, чтобы снизить риск инфицирования пациента. Таким образом, основной причиной стерилизации медицинских изделий является устранение патогенов человека — организмов, которые, как известно, вызывают заболевания человека. Поскольку пациенты часто ослаблены или имеют ослабленную или подавленную иммунную систему из-за болезни или лекарственной терапии, также важно уничтожить организмы, которые обычно не считаются патогенами. Сочетание стерильных устройств, асептических хирургических процедур (попытка исключить микроорганизмы) и антибиотиков сделало возможным широкий спектр инвазивных медицинских процедур, используемых сегодня.

Определения

Стерилизация означает освобождение объекта или вещества от всех форм жизни. Стерилизацию следует отличать от дезинфекции , что означает уничтожение или удаление организмов, способных вызвать инфекцию, которая не обязательно может привести к стерилизации. Обычные дезинфицирующие средства включают фенол, формальдегид, хлор и йод. Санитарная обработка — это форма дезинфекции, обычно применяемая к неодушевленным предметам. Антисептики похожи на дезинфицирующие средства, но обычно считаются веществами, которые убивают или подавляют микроорганизмы при контакте с телом, не вызывая обширного повреждения плоти. Asepsis или асептический метод означает исключение микроорганизмов из окружающей среды или процедуры.

Измерение стерильности

Хотя существует множество вариантов процедур стерильности и микробиологического подсчета, здесь кратко описаны два наиболее распространенных метода.Живые организмы на устройстве чаще всего обнаруживаются, помещая устройство в питательный раствор или промывая его питательным раствором, инкубируя раствор в течение определенного периода времени при определенной температуре, а затем ища рост организмов по образованию мутности. . Это называется испытанием на стерильность . Тест на стерильность просто демонстрирует наличие или отсутствие микроорганизмов. В качестве альтернативы промывочный раствор можно отфильтровать через субмикронный фильтр перед инкубацией с последующим помещением фильтра на питательный агар (гель) или питательную подушку и инкубацию в течение определенного периода времени при заданной температуре.Каждый организм, пойманный на фильтре, дает начало колонии, и количество колоний можно подсчитать. Это обычно называется тестом на бионагрузку , который демонстрирует общее количество или нагрузку микроорганизмов на устройстве. Точность подсчета микроорганизмов таким способом зависит от того, насколько эффективно процедура полоскания удаляет микроорганизмы с устройства.

На надежность методов подсчета и стерильности также влияют используемые условия роста, поскольку некоторые организмы растут только в очень специфических условиях.Некоторые из наиболее распространенных вариаций условий роста — это тип питательного вещества, время инкубации, температура инкубации, а также наличие или отсутствие кислорода. Очевидно, было бы очень легко не обнаружить организмы, если какое-либо из этих условий не подходит для роста организмов, присутствующих на устройстве. Хотя это ограничение следует признать, в большинстве случаев используется только одно или небольшое количество условий, которые позволят выявить большинство типов вызывающих озабоченность микроорганизмов.

Предполагается, что присутствие большого количества микроорганизмов, которые не могут расти в этих общих условиях, крайне маловероятно.

Однако были некоторые примечательные исключения, и справедливость этого предположения всегда следует учитывать при работе с новыми или необычными материалами устройства. Для повторно обработанных устройств необходимо учитывать окружающую среду и условия, в которых устройство подвергалось воздействию, при выборе условий роста для испытания на стерильность.

Как обеспечивается стерильность

Есть несколько факторов, которые влияют на обеспечение стерильности медицинского изделия. Они включают: количество организмов на устройстве до стерилизации, устойчивость этих организмов к процессу стерилизации, характеристики процесса стерилизации и продолжительность воздействия условий стерилизации.

Стерильность, особенно при работе с большим количеством устройств, трудно доказать по трем причинам.Во-первых, можно ввести жизнеспособные организмы в процессе тестирования на их наличие. Даже в хорошо контролируемых условиях уровень загрязнения 0,1% — это лучший результат, которого можно ожидать без особых усилий. Во-вторых, проверка на стерильность, как правило, деструктивна, поскольку все отдельное устройство можно протестировать только в одном наборе условий роста. Наконец, абсолютное бесплодие не может быть доказано, оно выражается математической вероятностью выживания.

Например, популяция жизнеспособных организмов постепенно сокращается в численности с течением времени при заданном наборе условий стерилизации до тех пор, пока вероятность выживания не станет меньше одного.Существует логарифмическая зависимость между количеством жизнеспособных микроорганизмов в популяции и временем при заданном наборе условий стерилизации. Другими словами, количество жизнеспособных организмов сокращается на 90% за определенный период времени. Воздействие на другой равный период времени снова снижает популяцию на 90% и так далее. Обычно это выражается в показателях D. Например, для организма с величиной D, равной четырем минутам, популяция будет уменьшена на 90% за четыре минуты при заданном наборе условий стерилизации.Для большинства типов устройств производители должны снижать вероятность выживания микроорганизмов до уровня менее одного на миллион. Обычно это выражается как уровень гарантии стерильности (SAL) 10 ^-6 . Уровень SAL в размере 10 ^-6 означает, что по статистике менее одного из миллиона устройств являются носителями жизнеспособных организмов. Важность этого можно оценить, когда в год производятся десятки тысяч медицинских устройств данного типа. Очевидно, что нецелесообразно тестировать достаточное количество устройств, чтобы продемонстрировать этот уровень гарантии только путем тестирования на стерильность, а возможность контаминации во время тестирования на стерильность несет в себе риск ошибочного заключения о том, что стерильный продукт не является стерильным.Кроме того, хотя среднее количество микроорганизмов на устройстве данного типа можно определить, любой продукт несет неизвестный уровень загрязнения, и устойчивость этих организмов к процессу стерилизации определить трудно. Поэтому простой тест на стерильность естественно загрязненного продукта не может использоваться для установления требуемого уровня SAL.

Для решения этих проблем используется известное количество стандартных организмов с известным уровнем устойчивости к процессу стерилизации для заражения продукта.Выбранный организм имеет высокую устойчивость к оцениваемому процессу стерилизации. Путем демонстрации стерильности продукта, зараженного 10 ⁶ этих организмов, а затем подвергнутого стерилизации, демонстрируется снижение на 10 ⁶ (шесть логарифмов). Удвоив время выдержки в условиях стерилизации, можно достичь SAL 10 ^-6 (в данном случае сокращение на 12 log).

Другой компонент обеспечения стерильности связан с популяцией жизнеспособных организмов, присутствующих на изделии до стерилизации.Например, если бионагрузка обычно контролируется до менее 1000, время воздействия может быть сокращено, чтобы обеспечить сокращение на девять логарифмов и при этом достичь SAL 10 ^-6 (10 ³ — 10 ⁹ = 10 ^-6 ).

Методы стерилизации медицинских изделий

Общие методы стерилизации включают физические и химические методы. Физические методы включают сухое тепло, пар, излучение и плазму. Излучение включает в себя множество типов, включая гамма-излучение, электронный луч, рентгеновское, ультрафиолетовое, микроволновое и белый (широкий спектр) свет.Химические методы включают, например, оксид этилена, оксид пропилена, диоксид хлора, газообразный озон и различные химические вещества в жидкой и парообразной форме, такие как глутаральдегид, перекись водорода и надуксусная кислота.

Обработка медицинских изделий

В последние годы в системе здравоохранения мало тем, которые вызывают больше споров, чем переработка медицинских изделий. Очистка — один из наиболее важных аспектов повторной обработки, поскольку биологические вещества, такие как ткани и кровь, могут значительно защитить микроорганизмы от воздействия стерилизующих агентов.Очистка обычно включает механическое и химическое удаление мусора, а также химическую дезинфекцию. Исторически медицинские устройства часто делались из металла, и повторная обработка была практичной и ожидаемой частью использования этих устройств. Простые устройства было относительно легко чистить, и их можно было легко стерилизовать без потери функциональности.

По мере усложнения устройств повторная обработка становилась все труднее. Демонтаж и повторная сборка устройства часто становились необходимыми для обеспечения чистоты.Достижения в области технологий привели к появлению более мелких и сложных устройств с полостями, которые было трудно чистить. Стали доступны материалы с превосходными эксплуатационными характеристиками, такие как полимеры, клеи и покрытия. Многие из этих материалов не выдерживают некоторых стандартных процессов очистки и стерилизации или многократного воздействия этих процессов. Денежное давление на систему здравоохранения вынудило производителей медицинского оборудования разрабатывать устройства для повторной обработки. В зависимости от устройства и желаемых рабочих характеристик это не всегда возможно.Надлежащий баланс между производительностью и переработкой продолжает вызывать споры. Что нельзя ставить под угрозу, так это безопасность пациента.

Выбор процесса стерилизации

Производители медицинских изделий чаще всего используют оксид этилена и облучение. Steam также продолжает играть значительную роль. Частично это связано с наличием оборудования для крупномасштабной обработки и гибкостью применения этих процессов для широкого спектра продуктов и упаковки.Альтернативные методы более распространены в больницах, поскольку они могут быть экономически эффективными в меньшем масштабе и, как правило, вызывают меньше проблем с эксплуатационной безопасностью. Такие альтернативы также изучаются для использования в конце производственных линий, а не в центральной среде пакетной обработки.

При выборе процесса стерилизации необходимо учитывать его влияние на функции продукта и целостность упаковки, а также его эффективность для каждого конкретного продукта. В первую очередь следует учитывать характеристики стерилизуемого устройства.Основные характеристики устройства — это материалы, конструкция и габариты. Эти характеристики будут определять термическую стабильность (размягчение, плавление, коробление, усадку, принятие заданной формы и т. Д.), Поглощение влаги (набухание, липкость и т. Д.), Радиационную стойкость (пожелтение, растрескивание, растрескивание, охрупчивание и т. Д.) ), реакция с химическими стерилизаторами, способность выдерживать давление и вакуум, а также способность проникновения стерилизующего вещества (проницаемость, плотность, длинные узкие просветы, небольшие полости и т. д.). Также необходимо учитывать упаковку, особенно термостабильность, проницаемость и прочность уплотнения; однако упаковка часто может быть адаптирована к потребностям процесса стерилизации.

Другие факторы, которые следует учитывать при выборе процесса стерилизации:

• Объем обрабатываемого продукта

• Капитальные затраты на оборудование

• Затраты на оборудование и требования

• Безопасность / токсичность / экологические аспекты

• Простота эксплуатации и калибровки

Кроме этого, трудно сделать общие выводы о различных методах стерилизации, поскольку эти факторы могут сильно различаться в зависимости от размера и расположения стерилизатора, а также от методы, используемые для выпуска продукта.Например, необходимое время воздействия гамма-излучения может составлять всего несколько часов. Однако время воздействия и доза контролируются скоростью носителя продукта на движущейся дорожке, которая несколько раз проходит мимо источника гамма-излучения. Продукты обычно группируются по их минимальным и максимальным допустимым дозам, поэтому для фактической обработки продукта на большом предприятии может потребоваться несколько дней. Точно так же цикл этиленоксида в стерилизаторе может занять менее 12 часов, но поддоны с продуктом часто необходимо предварительно кондиционировать (позволять нагревать и увлажнять), а затем аэрировать их для удаления остатков этиленоксида, в результате чего общее время обработки составляет от двух до четыре дня.Использование биологических индикаторов для выпуска может добавить к процессу еще от двух до семи дней. Все эти проблемы повлияют на выбор процесса стерилизации и эффективность его работы.

Дуг Харбрехт — старший научный сотрудник по системам стерилизации в Boston Scientific Corporation. Он получил степени бакалавра и магистра микробиологии в Университете Висконсина в Мэдисоне, работает в AAMI и ASTM и имеет 20-летний опыт стерилизации и исследований в области медицинских устройств и биофармацевтической промышленности.

Для получения полного списка ссылок и таблиц посетите сайт www.infectioncontroltoday.com

Для получения полного списка ссылок щелкните здесь

3 метода стерилизации для вашей лаборатории
— Революционная наука

В нынешних условиях пандемии чистота вашего окружения никогда не была так важна. Хотя ваша лаборатория всегда должна соответствовать определенным стандартам безопасности и чистоты, сейчас, более чем когда-либо, ваше рабочее место должно быть очищено и стерилизовано до безупречной степени.

Если вы все еще не знаете, как поднять планку стерилизации в лаборатории, ознакомьтесь с некоторыми из этих техник и методов. Когда вы постоянно уделяете должное внимание чистоте, вы можете быть уверены, что ваша лаборатория находится в первозданном виде, а ваша важная работа продолжается беспрепятственно.

1. Стерилизация паром

Пар под давлением был надежным методом стерилизации на протяжении десятилетий. Центр по контролю за заболеваниями (CDC) заявляет, что пар нетоксичен, недорог, обладает быстрым микробицидным и спороцидным действием, а также может быстро нагревать и проникать в ткани.Помните о естественных эффектах пара, таких как возможность коррозии или увеличенное время затвердевания некоторых материалов, и вы обнаружите, что пар является отличным средством для использования.

Автоклав — один из наиболее эффективных способов использования пара в процессе стерилизации. Вы настроите автоклав, чтобы все ваши инструменты подвергались воздействию высоких температур и давления в течение предписанного времени. Сочетание давления, температуры и продолжительности легко уничтожает микроорганизмы и обеспечивает безопасность использования посуды.

2. Стерилизация сухим жаром

Использование печи или другого источника сухого тепла для стерилизации лабораторного оборудования также эффективно, но только для определенных материалов. Вы можете использовать сухой жар для любого материала, который реагирует на тепло, но не для того, который действует как изоляция или который может разрушить тепло. Тем не менее, сухой жар может успешно стерилизовать многие инструменты и оборудование в вашей лаборатории, а также полезен для очистки после завершения работы.

Если вам нужно быстро стерилизовать иглу или стеклянную посуду в середине эксперимента, вы можете просто подержать рассматриваемый объект над открытым пламенем или внутри него.Чтобы стерилизовать большие куски сухим жаром или для более тщательной обработки, используйте духовку с температурой 160–170 C (320–338 F) и оставьте детали внутри на два-четыре часа.

3. Химическая стерилизация

Химические чистящие средства обычно не используются в лабораториях, так как химические вещества могут испортить ваши результаты, и большинство вещей можно очистить либо паром, либо сухим теплом. Однако для материалов, которые плохо выдерживают нагрев, вам нужно будет использовать другие методы, чтобы ваша лаборатория была настолько чистой, насколько это возможно.

Одним из химических веществ, используемых для термочувствительных материалов, является оксид этилена (ETO), который представляет собой газ, стерилизующий поверхность всего, что он подвергается воздействию. Однако эффективность этого газа зависит от концентрации газа, температуры, времени воздействия и относительной влажности, которые могут колебаться. Тем не менее, при правильном окружении, средствах и уходе вы можете стерилизовать свои чувствительные инструменты таким газом.

ETO часто используется вместе с другими стабилизирующими газами, такими как углекислый газ, для снижения некоторых экологических рисков, которые он может представлять, если в вашей лаборатории он широко используется.

Как бы вы ни выбрали стерилизацию своего оборудования, убедитесь, что вы делаете это часто и с большой осторожностью. Ваша лаборатория может сыграть важную роль в формировании будущего вашей страны, и для этого она должна оставаться открытой. Если вы используете надлежащие методы стерилизации и оборудование, у вас не должно возникнуть проблем с поддержанием вашей лаборатории в соответствии с отраслевыми стандартами.

Вам нужно оборудование для стерилизации или работы вашей лаборатории? Революционная наука здесь, чтобы помочь. У нас есть стерилизационное оборудование, необходимое для того, чтобы все было в безопасности и чистоте.Ознакомьтесь с нашими продуктами сегодня для всего, что вам нужно.

[Влияние различных методов стерилизации на механические свойства зубных фиссур, влияние различных методов стерилизации на механические свойства бора зубных фиссур]

Задача:

Цель состояла в том, чтобы проанализировать влияние трех методов стерилизации (стерилизация сухим жаром, стерилизация паром и химическая стерилизация) на коррозию бора фиссур.

Методы:

200 боров для зубных фиссур были распределены на 10 групп. Прочность на изгиб, модуль упругости и прочность на скручивание измерялись с помощью инструмента для изгиба и кручения и рассчитывались с помощью специально разработанного программного обеспечения. Среди трех методов стерилизации группа стерилизации паром показала наиболее очевидную.

Результаты:

Коррозия была наиболее серьезной в группе паровой стерилизации, за которой следовала химическая стерилизация, стерилизация сухим жаром.С увеличением времени стерилизации прочность на изгиб, модуль упругости и прочность на скручивание соответственно уменьшались. Из трех методов стерилизации механические свойства были наиболее заметно снижены при стерилизации паром, за которой следовали химическая стерилизация и стерилизация сухим жаром.

Вывод:

Доказано, что прочность на изгиб, модуль упругости и прочность на скручивание тесно связаны с коррозией боров для фиссур.Коррозия была наиболее серьезной в группе паровой стерилизации, за которой следовала химическая стерилизация, стерилизация сухим жаром. Что касается коррозионного воздействия, стерилизация сухим жаром может быть лучшим способом стерилизовать боры фиссур.

4 основных метода стерилизации | Организмы

Среди различных методов контроля микробной активности лучшим на сегодняшний день является стерилизация, поскольку она уничтожает все микробы. Стерилизация осуществляется следующими методами: 1.Физические методы 2. Радиационные методы 3. Ультразвуковые методы 4. Химические методы.

1. Физические методы:

Физические методы стерилизации включают уничтожение микробов путем применения влажного тепла, например, пропаривания, или сухого тепла, как в духовке с горячим воздухом, или различными методами фильтрации для освобождения среды от микробов. Мы изучим каждый из них.

и. Физический контроль с помощью тепла :

Цитадель по роману А.Дж.Кронин, который следует за жизнью молодого британского врача, начиная с 1920-х годов. В начале рассказа врач Эндрю Мэнсон начинает свою практику в небольшом шахтерском городке в Уэльсе. Практически сразу он сталкивается с эпидемией брюшного тифа.

Когда его первый пациент умирает от болезни, Мэнсон ужасно обезумел. Однако он понимает, что эпидемию можно остановить, и в следующей сцене бросает все простыни, одежду и личные вещи пациента в огромный костер.

Убивающее воздействие тепла на микроорганизмы известно давно. Тепло работает быстро, надежно и относительно недорого, и оно не вводит химические вещества в вещество, как это иногда делают дезинфицирующие средства. Выше максимальных температур роста биохимические изменения в органических молекулах клетки приводят к ее гибели.

Эти изменения возникают в результате изменений в молекулах ферментов или химического разрушения структурных молекул, особенно в клеточных мембранах. Тепло также отталкивает воду, и, поскольку все организмы зависят от воды, эта потеря может быть смертельной.

Скорость уничтожения тепла может быть выражена как функция времени и температуры. Например, туберкулезные палочки уничтожаются за 30 минут при 58 ° C, но всего за 2 минуты при 65 ° C и за несколько секунд при 72 ° C. Каждый вид микробов имеет время термической смерти (TDT), время, необходимое для его уничтожения при заданной температуре. У каждого вида также есть точка термической смерти (TDT), температура, при которой он умирает в заданное время.

В этом методе поддерживается постоянная температура и определяется время, необходимое для уничтожения клеток.Термин «точка термической смерти» больше не используется. Поскольку определенная температура не может быть смертельной всегда и для всех видов микроорганизмов.

В последнее время тепловая чувствительность определяется с помощью термина D-значение. Значение D — это время воздействия при данной температуре, необходимое для уменьшения количества жизнеспособных организмов на 90%. Математически он равен обратной величине наклона кривой выживаемости или кривой выживаемости для прохождения одного логарифмического цикла. Значения D можно использовать для определения относительной тепловой чувствительности микроорганизмов к разным температурам расчетным путем.

Значение z — это изменение температуры, необходимое для уменьшения значения D на один логарифмический цикл, когда log D отображается в зависимости от температуры. Значение F — это значение D при 250 ° F. Эти измерения особенно важны в пищевой промышленности, где тепло используется для консервирования.

При определении времени и температуры для уничтожения микробов с помощью тепла необходимо учитывать некоторые факторы. Один из факторов — это тип убиваемого организма. Например, если материалы подлежат стерилизации, физический метод должен быть направлен на споры бактерий.Однако молоко не обязательно должно быть стерильным для употребления, поэтому нагревание направлено на наиболее устойчивые вегетативные клетки патогенов.

Другой фактор — это тип обрабатываемого материала. Порошок подвергается воздействию сухого тепла, а не влажного тепла, потому что влажное тепло сделает его сырым. Солевые растворы, напротив, можно стерилизовать влажным теплом, но их нелегко обработать сухим теплом.

Другими факторами являются наличие органических веществ и кислотная или основная природа материала.Органические вещества могут препятствовать проникновению тепла в микроорганизмы, в то время как кислотность или щелочность могут способствовать летальному исходу тепла.

ii. Прямое пламя :

Возможно, самый быстрый метод стерилизации — метод прямого пламени, используемый в процессе сжигания. Пламя горелки Бунзена используется для стерилизации бактериологической петли перед извлечением образца из культуральной пробирки и после приготовления мазка. Обжигание наконечника трубки также уничтожает организмы, которые случайно соприкасаются с наконечником, сжигая при этом ворсинки и пыль.

Как правило, предметы должны быть одноразовыми, если для стерилизации используется пламя. Одноразовые больничные халаты и некоторые пластиковые устройства являются примерами материалов, которые можно сжигать. В прошлые века тела жертв болезней сжигали, чтобы предотвратить распространение эпидемии.

По-прежнему обычной практикой является сжигание трупов крупного рогатого скота, умерших от сибирской язвы, и поджигание зараженного поля, поскольку споры сибирской язвы не могут быть адекватно уничтожены другими способами.Британский закон даже предусматривает, что зараженных сибирской язвой животных нельзя вскрывать перед сжиганием.

iii. Стерилизатор горячим воздухом :

В стерилизаторе горячего воздуха для стерилизации используется излучение сухого тепла. Ее еще называют духовкой с горячим воздухом. Он состоит из трех стен и двух воздушных пространств. Наружные стены покрыты толстым асбестом, чтобы уменьшить тепловое излучение. Коллектор горелки проходит по обеим сторонам и сзади между внешней и промежуточной стенками.Конвекционные токи проходят полный контур через пространство стены и внутреннее пространство печи, а продукты сгорания выходят через отверстие в верхней части.

Стерилизатор горячего воздуха работает при температуре от 160 до 180 ° C. (От 320 до 356 ° F) в течение 1,5 часов. Если температура поднимется выше 180 ° C, существует опасность обугливания ватных пробок. Поэтому сначала необходимо внимательно следить за термометром, пока стерилизатор не будет отрегулирован на желаемую температуру.Необходимости наблюдения за стерилизатором можно избежать, если снабдить духовку регулятором температуры.

Воздействие сухого тепла на микроорганизмы эквивалентно действию выпечки. Тепло изменяет микробные белки в результате реакций окисления и создает засушливую внутреннюю среду, тем самым медленно сжигая микроорганизмы. Важно, чтобы с материалов были удалены органические вещества, такие как масляные или жировые пленки, поскольку органические вещества изолируют от сухого тепла. Кроме того, время, необходимое для достижения температурой стерилизации, варьируется в зависимости от материала.Таким образом, этот фактор необходимо учитывать при определении общего времени воздействия.

Стерилизатор горячим воздухом используется для стерилизации всех видов лабораторной посуды, например, пробирок, пипеток, чашек Петри и колб. Кроме того, его можно использовать для стерилизации других лабораторных материалов и оборудования, которые не сгорают из-за высокой температуры стерилизатора. Ни при каких условиях нельзя использовать стерилизатор с горячим воздухом для стерилизации питательных сред, так как жидкости могут выкипеть досуха.

iv.Стерилизатор Arnold (кипящая вода) :

Погружение в кипящую воду — это первый из нескольких методов влажного тепла, которые мы рассмотрим. Влажное тепло проникает в материалы намного быстрее, чем сухое тепло, поскольку молекулы воды проводят тепло лучше, чем воздух. Следовательно, требуются более низкие температуры и меньшее время воздействия, чем при сухом нагреве.

Arnold использует струю пара в качестве стерилизующего агента. Стерилизатор построен с основанием для быстрого пропаривания, в которое автоматически подается вода из открытого резервуара.Вода проходит из открытого резервуара через небольшие отверстия в паровую подставку, к которой подводится тепло. Поскольку основание содержит лишь тонкий слой воды, пар вырабатывается очень быстро. Пар поднимается через воронку в центре аппарата и проходит в стерилизационную камеру.

Влажное тепло убивает микроорганизмы, денатурируя их белки. Денатурация включает изменения химических или физических свойств белков. Он включает структурные изменения из-за разрушения химических связей, удерживающих белки в трехмерной форме.

Когда белки возвращаются к двумерной структуре, они коагулируют (денатурируют) и становятся нефункциональными. Яичный белок претерпевает аналогичную трансформацию при варке. Вы можете найти обзор химической структуры белков, который поможет вам понять этот процесс. Коагуляция и денатурация белков требует меньше энергии, чем окисление, и поэтому требуется меньше тепла.

Стерилизация осуществляется потоком пара с температурой около 100 ° C.(212 ° F) в течение 20 минут или дольше в течение трех дней подряд. Продолжительность периода нагрева будет зависеть от природы обрабатываемых материалов и размера контейнера. Например, агар необходимо сначала полностью растопить, прежде чем регистрировать начало периода нагрева.

Необходимо помнить, что температура 100 ° C. на 20 мин. недостаточно для уничтожения спор. Для полной стерилизации за одну операцию в течение относительно короткого периода воздействия требуется гораздо более высокая температура.

Принцип, лежащий в основе этого метода, заключается в том, что первый период нагрева убивает все присутствующие вегетативные клетки. По прошествии 24 часов. в благоприятной среде и при теплой температуре споры, если они есть, прорастут в вегетативные клетки. Второй нагрев снова уничтожит все вегетативные клетки.

Бывает, что до второго отопительного периода не все споры переходят в вегетативные формы. Таким образом, дополнительные 24 ч. дается время истечь, чтобы убедиться, что все споры проросли в вегетативные клетки.Можно видеть, что до тех пор, пока споры не прорастут, метод не сможет стерилизовать.

v. Фракционная стерилизация:

В годы, предшествовавшие разработке автоклава, жидкости и другие предметы стерилизовали воздействием свободно протекающего пара при 100 ° C в течение 30 минут в каждый из трех последовательных дней. Этот метод был назван фракционной стерилизацией, потому что фракция выполнялась каждый день. Ее также называли тиндаллизацией в честь ее разработчика Джона Тиндаля и периодической стерилизацией, потому что это была операция с остановкой и запуском.

Стерилизация дробным методом достигается интересной серией мероприятий. В течение первого дня воздействия пар убивает практически все организмы, кроме спор бактерий, и стимулирует их прорастание в вегетативные клетки. Во время инкубации в течение ночи клетки размножаются и погибают на второй день.

Опять же, материал охлаждают, и несколько оставшихся спор прорастают, чтобы погибнуть только на третий день. Хотя этот метод обычно приводит к стерилизации, возникают случаи, когда несколько спор не прорастают.Этот метод также требует, чтобы споры находились в подходящей среде для прорастания, такой как бульон.

Фракционная стерилизация приобрела важное значение в современной микробиологии с развитием высокотехнологичного оборудования и новых химических веществ. Часто эти материалы нельзя стерилизовать при температурах автоклава, длительных периодах кипячения или запекания или с помощью химикатов. В этих случаях используется инструмент, генерирующий свободный пар, такой как стерилизатор Arnold.

vi. Пастеризация :

Пастеризация — это не то же самое, что стерилизация. Его цель — уменьшить бактериальную популяцию жидкости, такой как молоко, и уничтожить организмы, которые могут вызвать порчу и болезни человека. Пастеризация не влияет на споры.

Один из методов пастеризации молока, называемый методом выдержки, включает нагревание при 62,9 ° C в течение 30 минут. Хотя термофильные бактерии процветают при этой температуре, они не имеют большого значения, поскольку не могут расти при температуре тела.

На протяжении десятилетий пастеризация была направлена ​​на уничтожение Mycobacterium tuberculosis, долгое время считавшейся самой термостойкой бактерией. Однако в последнее время внимание переключилось на уничтожение Coxiella burnetii, возбудителя ку-лихорадки, поскольку этот организм имеет более высокую устойчивость к теплу.

Два других метода пастеризации — это метод быстрой пастеризации при 71,6 ° C в течение 15 секунд и метод ультрапастеризации при 82 ° C в течение 3 секунд.

vii.Осушение :

Помимо замораживания, многие продукты консервируются сушкой. Вода необходима для роста микробов. Хотя недостаток доступной воды предотвращает рост микробов, это не обязательно увеличивает уровень смертности микроорганизмов. Поэтому некоторые микроорганизмы можно сохранить путем сушки.

Можно легко купить активные сухие дрожжи для выпечки, и после добавления воды дрожжи начинают осуществлять активный обмен веществ.Сублимационная сушка или лиофилизация — распространенные способы удаления воды, которые можно использовать для сохранения микробных культур. Во время сублимационной сушки вода удаляется сублимацией. Этот процесс обычно исключает повреждение микробных клеток из-за расширения кристаллов льда.

В то время как некоторые микроорганизмы относительно устойчивы к высыханию, другие микроорганизмы не могут выжить в условиях высыхания даже в течение короткого периода времени. Например, Treponema pallidum, бактерия, вызывающая сифилис, чрезвычайно чувствительна к высыханию и почти мгновенно умирает на воздухе или на сухой поверхности.

Тот факт, что микроорганизмы не могут расти при низкой активности воды, может быть использован для сохранения многих продуктов. Соление было одним из первых способов консервирования продуктов и используется до сих пор. За счет добавления соли в высоких концентрациях A _w значительно понижается, чтобы предотвратить рост большинства микроорганизмов.

Холст и другие текстильные изделия сохраняются в зонах умеренного климата из-за недостатка воды в воздухе, но в тропических зонах эти же материалы подвержены биологическому разложению, поскольку влажность достаточно высока для роста микробов.Открытые деревянные поверхности часто окрашивают, чтобы древесина оставалась достаточно сухой, чтобы предотвратить рост микробов. Многие пищевые продукты также сохраняются путем сушки.

Этот метод консервации зависит от содержания продукта в сухом состоянии, а воздействие высокой влажности может свести на нет фактор, ограничивающий рост микробов, и способствовать микробной порче пищевых продуктов, хранящихся таким образом. Если пищевые продукты можно поддерживать при значении A _w , равном 0,65 или меньше, вероятность порчи в течение нескольких лет маловероятна.Продукты, консервированные путем сушки, включают фрукты, овощи, яйца, крупы, зерно, мясо и молоко.

Физический контроль другими методами:

Фильтрация :

Тепло — ценный физический агент для борьбы с микроорганизмами, но иногда его важно использовать. Например, никто не предложит удалить микробную популяцию со столешницы с помощью горелки Бунзена, а термочувствительные растворы нельзя подвергать автоклаву.В таких случаях, как этот и многие другие, необходимо использовать метод без нагрева. В этом разделе описаны некоторые примеры.

Фильтры стали широко использоваться в микробиологии, когда в 1890-х годах возрос интерес к вирусам. Раньше фильтры использовались для улавливания переносимых по воздуху организмов и стерилизации бактериологических сред, но теперь они стали неотъемлемой частью фильтрующей технологии Чарльз Чемберленд, сотрудник Пастера. Его фарфоровый фильтр был важен для ранних исследований вирусов. Другим пионером был Юлиус Петри (изобретатель чашки Петри), который разработал песочный фильтр для отделения бактерий от воздуха.

Фильтр — это механическое устройство для удаления микроорганизмов из раствора. Когда жидкость проходит через фильтр, организмы попадают в поры фильтрующего материала. Раствор, капающий в приемную емкость, обеззараживают или, в некоторых случаях, стерилизуют. Фильтры используются для очистки таких вещей, как растворы для внутривенного введения, бактериологические среды, многие фармацевтические препараты и напитки.

Для использования в микробиологической лаборатории доступны несколько типов фильтров.

и. Фарфоровые или камерные фильтры :

Фарфоровые фильтры представляют собой полые неглазурованные цилиндры, закрытые с одного конца. Они состоят из водного силиката алюминия или каолина с добавлением кварцевого песка и нагреваются до достаточно низкой температуры, чтобы избежать спекания. Эти фильтры изготавливаются с градуированной степенью пористости от LI до LI3.

Цилиндры с самыми большими порами имеют маркировку LI; те, которые имеют самые маленькие поры, обозначаются LI3.Чем мельче поры, тем медленнее будет скорость фильтрации. Цилиндры LI и L2 — это фильтры предварительной очистки, предназначенные для удаления крупных частиц и крупных бактерий. Фильтр L3, вероятно, подходит для всех типов бактериальной фильтрации.

ii. Фильтры Berkefeld :

Кизельгур представляет собой отложение тонкого, обычно белого кремнистого порошка, состоящего в основном или полностью из остатков диатомовых водорослей. Его еще называют кизельгуром и инфузорной землей.

Фильтры Berkefeld производятся в Германии. Их получают путем смешивания тщательно очищенной диатомовой земли с асбестом и органическими веществами, прессования в цилиндрическую форму и сушки. Высушенные цилиндры нагревают в печи до температуры около 2000 ° C. чтобы связать материалы вместе. Затем обожженным цилиндрам придают желаемую форму и размер.

Цилиндры подразделяются на W (плотные), N (нормальные) и V (крупные), в зависимости от размера пор.Градация зависит от скорости потока чистой фильтрованной воды при определенном постоянном давлении.

iii. Фильтры Mandler :

Эти фильтры аналогичны фильтрам типа Berkefeld, но производятся в этой стране. Они состоят из 60-80% диатомовой земли, 10-30% асбеста и 10-15% гипса. Пропорции меняются в зависимости от размера желаемых пор. Ингредиенты смешивают с водой, подвергают воздействию высокого давления, а затем запекают в духовке при температуре от 980 до 1650 ° C.чтобы связать материалы вместе.

Готовые цилиндры испытывают путем подсоединения трубки к штуцеру фильтра, погружения в воду и пропускания сжатого воздуха внутрь. Манометр регистрирует давление, когда пузырьки воздуха впервые появляются на внешней стороне цилиндра в воде. На каждом баллоне указано давление воздуха, полученное в ходе реальных испытаний.

Удобное расположение аппарата для фильтрации жидкостей через фильтр Мандлера или Беркфельда показано на рис.3.10. Пониженное давление отображается манометром. Отфильтровываемая жидкость выливается в мантию, а фильтрат собирается в градуированный сосуд, из которого он может быть извлечен в асептических условиях. Фильтрацию можно прервать в любой момент, остановив вакуумный насос и открыв запорный кран на баллоне-ловушке для выравнивания давления.

iv. Стеклянные фильтры :

Фильтры этого типа получают путем спекания мелко измельченного стекла в диск в подходящей форме.Измельченное стекло нагревается до температуры, достаточно высокой, чтобы частицы превратились в сплошную твердую массу без полного плавления и оставления диска пористым.

Затем диск аккуратно плавится в стеклянную воронку и собирается в фильтровальную колбу с помощью резиновой пробки. Другой вариант — соединение фильтра с колбой через соединение из матового стекла, что исключает необходимость использования резиновой пробки.

Фильтры продаются с пятью степенями пористости: EC (очень грубая), C (грубая), M (средняя), F (тонкая) и UF (сверхтонкая).

Бактериологические фильтры обычно используются в условиях пониженного давления; Буш (1946) рекомендовал фильтрацию через стеклянные фильтры с использованием положительного давления. Положительное давление не только снижает или устраняет испарение фильтрата, но и значительно облегчает замену приемников, что особенно важно при бактериологической фильтрации, с которой необходимо обращаться с соблюдением правил асептики.

Удобное расположение показано на рис. 3.13. Основной корпус фильтра B содержит диск из фриттованного стекла.Щиток А защищает ресивер от пыли, а на напорном элементе находится запорный кран. Альтернативное давление позволяет удерживать напор. C ’содержит встроенный ртутный манометр. Запорный кран на C (C ’) позволяет сохранять давление после отсоединения устройства от источника сжатого воздуха.

Обычный резиновый баллон высокого давления подходит для создания давления до 450 мм. Меркурий. Если стыки матового стекла хорошо смазаны и детали удерживаются вместе прочными резиновыми лентами или пружинами, аппарат должен удерживать это давление в течение нескольких дней.

v. Асбестовые фильтры :

Самый известный фильтр, в котором в качестве фильтрующего материала используется асбест, — это фильтр Зейтца. Асбест спрессовывается в тонкие диски и плотно зажимается между двумя гладкими металлическими ободами с помощью трех винтовых зажимов. Жидкость, подлежащая фильтрации, наливается в металлический аппарат, в котором зажимается асбестовый диск, и раствор, всасываемый вакуумом, фильтрующие диски способны эффективно задерживать бактерии и другие твердые частицы.

По окончании операции асбестовый диск удаляется, вставляется новый и стерилизуется собранный фильтр. Эта особенность делает фильтр Зейтца очень удобным в использовании, поскольку не требует предварительной очистки.

Модификация фильтра Зейтца, использующая центробежную силу вместо всасывания или давления, была предложена Бёрнером. Фильтр состоит из цилиндра и воронкообразной части со штоком, который удерживает фильтрующую прокладку, опирающуюся на диск из проволочной сетки.Цилиндр ввинчивается в воронку с зажатым между ними фильтрующим диском.

Собранный фильтр плотно помещается в верхнюю часть 15 мл. металлическая пробирка для центрифуги с рифленым воротником воронки, опирающимся на верхнюю часть металлической пробирки. Фильтрат собирается в стеклянной трубке внутри чашки. Фильтр также можно использовать для вакуумной фильтрации обычным способом, вставив шток через резиновую пробку, установленную на колбе фильтра.

vi. Фильтр Jenkins :

Этот фильтр состоит из металлического кожуха, удерживающего мягкую резиновую втулку, и фарфорового фильтрующего блока.Фарфоровый блок удерживается в резиновой гильзе и становится водонепроницаемым путем скручивания двух металлических частей. Блок фильтра не хрупкий. Его моют после каждого использования, сушат и надевают на мантию. Мантия снабжена резиновой пробкой, завернута в бумагу и стерилизована в автоклаве.

Фильтр предназначен для стерилизации небольших количеств жидкостей.

vii. Ультрафильтр :

Ультрафильтрация обычно означает отделение коллоидных частиц от их растворителей и кристаллоидов с помощью желейных фильтров, известных как ультрафильтры.

Ранние желейные фильтры состояли из желатина и кремниевой кислоты, но они были заменены коллодием в форме мембраны или мешочка, или коллодием, нанесенным на пористую несущую структуру. Поддерживающей структурой может быть фильтровальная бумага в виде листа и наперстка, неглазурованные фарфоровые чашки и тигли, воронки Бюхнера, цилиндры фильтров и т. Д.

viii. Мембранный фильтр :

Мембранный фильтр — это третий тип фильтров, получивший широкое распространение.Он состоит из прокладки из органических соединений, таких как ацетат целлюлозы или поликарбоната, установленной в удерживающем устройстве. Этот фильтр особенно ценен, потому что бактерии размножаются и образуют колонии на фильтрующей подушке, когда подушку помещают на чашку с питательной средой.

Затем микробиологи могут подсчитать колонии, чтобы определить количество изначально присутствующих бактерий. Например, если образец жидкости объемом 100 мл был профильтрован и после инкубации на подушке появилось 59 колоний, можно было предположить, что в образце присутствовало 59 бактерий.

ix. Очистка фильтров :

Некоторые фильтры выбрасываются после каждого использования и устанавливаются новые; другие предназначены для очистки после каждой фильтрации и при надлежащем уходе могут использоваться повторно. Коллодиевые мембраны легко приготовить, а асбестовые диски Seitz относительно невысоки. Эти фильтры предназначены для однократного использования, а затем выбрасываются. С другой стороны, фильтры из фарфора, диатомита и фриттованного стекла слишком дороги, чтобы их можно было использовать только один раз, но их легко чистить.

Фарфоровые фильтры очищают, помещая их в муфельную печь и нагревая до красного каления. Это сжигает органические вещества в порах и восстанавливает фильтры до их первоначального состояния.

Фильтры типа Berkefeld и Mandler очищаются путем помещения цилиндров в специальный металлический держатель, соединенный с краном. Поток воды меняется на противоположный, проходя через цилиндр изнутри наружу. Так следует продолжать до тех пор, пока все посторонние предметы не будут вымыты из пор фильтра.

Белковые или аналогичные материалы, оставшиеся в порах фильтров, вероятно, коагулируют под воздействием тепла в процессе стерилизации, в результате чего фильтры забиваются. Фильтры в таком состоянии бесполезны для дальнейшей работы.

Засоренные фильтры можно очищать различными способами, но, вероятно, наиболее удобно путем непрерывного всасывания полноценного Clorox или аналогичного раствора в течение 5–15 мин. Эта обработка быстро растворяет коагулированный материал и восстанавливает работоспособность фильтра.Для удаления последних следов окисляющего раствора необходима тщательная промывка.

Фильтры из фриттованного стекла можно очищать обработкой концентрированной серной кислотой, содержащей нитрат натрия. Сильная кислота быстро окисляет и растворяет органические вещества. Для удаления последних следов кислоты необходима тщательная промывка.

2. Радиационный метод:

и. Стерилизация ультрафиолетовым светом :

Видимый свет — это вид лучистой энергии, обнаруживаемой чувствительными клетками глаза.Длина волны этой энергии составляет от 400 до 800 нанометров (нм). Другие типы излучения имеют длину волны длиннее или короче, чем у видимого света, и поэтому они не могут быть обнаружены человеческим глазом.

Один из видов лучистой энергии, ультрафиолетовый свет, полезен для борьбы с микроорганизмами. Ультрафиолетовый свет имеет длину волны от 100 до 400 нм, а энергия около 265 нм наиболее разрушительна для бактерий. Когда микроорганизмы подвергаются воздействию ультрафиолета, клеточная ДНК поглощает энергию, а соседние молекулы тимина соединяются вместе.

Связанные молекулы тимина не могут позиционировать аденин на молекулах информационной РНК в процессе синтеза белка. Более того, репликация хромосомы при бинарном делении нарушена. Поврежденный организм больше не может производить критически важные белки или воспроизводиться, и он быстро умирает.

Ультрафиолетовый свет эффективно сокращает микробную популяцию там, где имеет место прямое воздействие. Он используется для ограничения воздушного или поверхностного загрязнения в больничной палате, морге, аптеке, туалете или в сфере общественного питания.Примечательно, что ультрафиолетовый свет солнца может быть важным фактором в борьбе с микроорганизмами в воздухе и верхних слоях почвы, но не может быть эффективным против всех спор бактерий. Ультрафиолетовый свет не проникает в жидкости или твердые тела и может вызвать повреждение клеток кожи человека.

ii. Ионизирующее излучение :

Высокоэнергетическое коротковолновое излучение разрушает молекулы ДНК, а воздействие коротковолнового излучения может вызвать мутации, многие из которых смертельны.Воздействие гамма-излучения (короткие волны 10 ^-3 -10 ^-1 нм), рентгеновского излучения (длины волн 10 ^-3 -10 ² нм) и ультрафиолетового излучения (ультрафиолетовое излучение с длинами волн 100 -400 нанометров) увеличивает смертность микроорганизмов и используется в различных процедурах стерилизации для уничтожения микроорганизмов. Вирусы, как и другие микроорганизмы, инактивируются под воздействием ионизирующего излучения.

Чувствительность к ионизирующему излучению разная.Устойчивость к ионизирующему излучению основана на биохимических составляющих данного микроорганизма. Невоспроизводящиеся (спящие) стадии микроорганизмов, как правило, более устойчивы к радиации, чем растущие организмы. Например, эндоспоры более устойчивы, чем вегетативные клетки многих видов бактерий.

Воздействие 0,3-0,4 Мрад (миллион единиц радиации) необходимо, чтобы вызвать десятикратное уменьшение количества жизнеспособных бактериальных эндоспор. Исключение составляет бактерия Micrococcus radiodurans, которая особенно устойчива к воздействию ионизирующего излучения.

Вегетативные клетки M. radiodurans переносят до 1 Мрад воздействия ионизирующего излучения без снижения количества жизнеспособных клеток. Похоже, что эффективные механизмы репарации ДНК ответственны за высокую степень устойчивости этой бактерии к радиации.

Ионизирующее излучение используется для пастеризации или стерилизации некоторых продуктов. Некоторые коммерчески производимые пластиковые чашки Петри стерилизуются воздействием гамма-излучения. В большинстве процедур стерилизации, связанных с облучением, используется гамма-излучение кобальта-60 или цезия-137.

Бекон, например, можно стерилизовать с помощью радаппертизации, процесса стерилизации пищевых продуктов воздействием радиации с использованием доз облучения 4,5-5,6 Мрад. Гадуризация, функционально эквивалентная пастеризации, используется для уничтожения неспорообразующих патогенов человека, которые могут присутствовать в пище. Радуризацию можно использовать для увеличения срока хранения морепродуктов, овощей и фруктов.

В отличие от гамма-излучения, ультрафиолетовый свет не обладает высокой проникающей способностью и полезен для уничтожения микроорганизмов только на поверхности прозрачных растворов или рядом с ними.Самая сильная бактерицидная длина волны 260 нанометров совпадает с максимумами поглощения ДНК, что позволяет предположить, что главный механизм, с помощью которого ультрафиолетовый свет оказывает свое смертельное действие, заключается в разрушении ДНК. Фактически, ультрафиолетовый свет вызывает образование ковалентно связанных димеров тимина в ДНК вместо обычных пар оснований с водородными связями тимина-аденина.

У микроорганизмов есть ферменты, которые могут восстанавливать изменения в ДНК, вызванные воздействием ультрафиолета.Ферменты фотореактивации требуют воздействия света в видимой области спектра. Воздействие ультрафиолетового света иногда используется для поддержания стерильности некоторых поверхностей. В некоторых больницах рабочие столы очищаются от бактерий, когда они не используются, с помощью ультрафиолетовой лампы.

Опасности, связанные с воздействием на человека избыточного ультрафиолетового излучения, включая слепоту при прямом просмотре ультрафиолетового света, привели к использованию альтернативных методов поддержания стерильности таких участков.

Подобно ультрафиолетовому излучению, длинноволновое инфракрасное излучение (103-105 нанометров) и микроволновое излучение (длины волн более 106 нанометров) имеют низкую проникающую способность. Инфракрасное и микроволновое излучение не убивают микроорганизмы напрямую. Однако поглощение такого длинноволнового излучения приводит к повышению температуры.

Таким образом, воздействие инфракрасного или микроволнового излучения может косвенно убить микроорганизмы, подвергая их воздействию температур, превышающих их максимальные температуры роста.Поскольку микроволны, как правило, не убивают микроорганизмы напрямую, в пищевой промышленности существует некоторая озабоченность по поводу того, что приготовление пищи в микроволновых печах может не убить в достаточной мере микроорганизмы, загрязняющие пищевые продукты.

3. Ультразвуковой метод:

Ультразвуковые колебания :

Ультразвуковые колебания — это высокочастотные звуковые волны, выходящие за пределы диапазона человеческого уха. Направленные на поверхности окружающей среды, они не имеют большого значения, потому что частицы воздуха отклоняют и рассеивают колебания.Однако при распространении в жидкости ультразвуковые колебания вызывают образование микроскопических пузырьков или полостей, и вода кажется кипящей. Некоторые обозреватели называют это «холодным кипячением».

Полости быстро разрушаются и излучают ударные волны. Микроорганизмы в жидкости быстро разрушаются под воздействием внешнего давления. Образование и сжатие полостей известно как кавитация.

Ультразвуковые колебания ценны в исследованиях для разрушения открытых клеток тканей и получения их частей для изучения.Устройство, называемое кавитроном, используется стоматологами для чистки зубов, а ультразвуковые аппараты доступны для чистки зубных пластин, украшений и монет. Крупная компания по производству бытовой техники также экспериментировала с ультразвуковой стиральной машиной.

В качестве стерилизующего агента ультразвуковым колебаниям уделялось минимальное внимание, поскольку требуется жидкость, а другие методы более эффективны. Однако многие исследовательские лаборатории используют ультразвуковые датчики для разрушения клеток, а больницы используют ультразвуковые устройства для очистки своих инструментов.При использовании с эффективным бактерицидным средством ультразвуковое устройство может обеспечить стерилизацию, но современная тенденция заключается в использовании ультразвуковых колебаний в качестве чистящего средства и последующей стерилизации в автоклаве.

4. Химический метод:

и. Способы консервации :

На протяжении многих веков развивались различные физические методы борьбы с микроорганизмами в пищевых продуктах. Хотя эти процедуры полезны для предотвращения распространения инфекционных агентов, они используются в основном для предотвращения порчи и продления срока хранения пищевых продуктов, а не для стерилизации.

Сушка используется для консервирования различных металлов, рыбы, злаков и других продуктов. Поскольку вода является необходимым условием для жизни, отсюда следует, что там, где нет воды, практически нет жизни. Многие продукты в кухонной кладовой олицетворяют этот принцип. Один пример обсуждается в MicroFocus.

Консервация солением основана на принципе осмотического давления. Когда пища солится, вода диффундирует из микроорганизмов с более высокой концентрацией соли и более низкой концентрацией воды в окружающей среде.Этот поток воды, называемый осмосом, заставляет микроорганизмы сморщиваться и умирать.

То же явление наблюдается в продуктах с высоким содержанием сахара, таких как сиропы, джемы и желе. Однако грибковое заражение может оставаться на поверхности, потому что аэробные плесени переносят высокие концентрации сахара.

Низкие температуры холодильника и морозильника замедляют порчу продуктов за счет снижения скорости метаболизма микроорганизмов и, как следствие, уменьшения скорости их роста. Однако порча холодных продуктов не устраняется полностью, и многие микроорганизмы остаются живыми даже при температурах морозильной камеры.Эти организмы быстро размножаются при оттаивании пищи, поэтому рекомендуется быстрое приготовление.

Обратите внимание, что в этих примерах есть существенные различия между уничтожением микроорганизмов, сдерживанием их и уменьшением их численности. Методы консервации называются бактериостатическими, поскольку они предотвращают дальнейшее размножение бактерий.

ii. Газовая стерилизация :

Тепловая стерилизация в основном нестабильна для термолабильных твердых лекарств и термолабильного оборудования, включая изделия из пластмасс, хрупкие резиновые изделия.Из-за высоких капитальных затрат и применения сложных мер предосторожности радиационный метод, который является одним из методов стерилизации, стал непопулярным.

Таким образом, стерилизация таких материалов химическим веществом в газообразном состоянии находит большее применение. Раньше формальдегид широко использовался, но в настоящее время оксид этилена является единственным соединением, имеющим выдающееся значение в фармацевтической и медицинской областях.

Самый распространенный метод стерилизации паром

Ключевые моменты

Три основных условия, по словам Хармера, должны быть выполнены, прежде чем предмет может считаться стерильным:

Среди различных доступных методов пар является самым старым, самым надежным и самым старым. По словам Хармера, используемый и наименее дорогой метод, используемый медицинскими организациями в Соединенных Штатах.Один из способов стерилизации инструментов паром — разбавление воздуха в настольных стерилизаторах. Такие устройства генерируют собственный пар за счет добавления дистиллированной или деионизированной воды.

Посещения объектов показали, что многие медицинские работники, использующие настольные стерилизаторы, не знают, что сам прибор должен очищаться в соответствии с инструкциями производителя. Осадок и растворенные твердые частицы могут остаться в резервуаре устройства, если он не был очищен должным образом.

Гравитационное вытеснение и вакуум — это другие типы стерилизации паром.Установки гравитационного вытеснения основаны на нагнетании тепла и пара под давлением в автоклав; холодный воздух нагнетается в нижнюю часть и через вентиляционное отверстие в атмосферу. Вакуумные паровые стерилизаторы откачивают весь воздух внутри камеры перед подачей пара. Эти устройства обычно быстрее, чем стерилизаторы с гравитационным вытеснением.

Мгновенное паровое автоклавирование — это метод высокоскоростной стерилизации, обычно используемый, когда не хватает времени для предпочтительных подходов к упаковке. Стерилизация происходит при температуре 270 ° F или выше в течение более коротких периодов времени, необходимых для упакованных инструментов.

«Нет срока годности при хранении с прошивкой», — сказал Хармер. «Это должно быть использовано немедленно».

Дополнительные опции

Стерилизация газообразным этиленоксидом — это старый метод, который медленнее и сложнее, чем новые подходы. Он смертельно опасен для спор бактерий, плесени, дрожжей, грибков и вирусов, которые можно убить только при прямом контакте. В этом методе эффективная стерилизация зависит от комбинации концентрации газа, относительной влажности, температуры и времени воздействия.

Окись этилена очень токсична и требует циклов аэрации. По словам Хармера, установки все еще доступны, несмотря на появление новых методов стерилизации, и теперь они разработаны с улучшенными механизмами аэрации. Этиленоксидный газ в основном используется для стерилизации предметов, которые не выдерживают высоких температур, используемых в паровых системах.

Газовая плазменная стерилизация парами перекиси водорода — один из новейших методов. В США доступно только одно устройство газовой плазмы, одобренное FDA.Он работает при низкой температуре, не содержит токсинов и не вызывает коррозии и не требует цикла аэрации. Его побочные продукты — кислород и вода — безвредны. Однако устройство не будет работать со всеми размерами просвета. Он не эффективен для металлических или неметаллических инструментов с просветом менее 6 мм или более 310 мм или с просветом из нержавеющей стали менее 3 мм или более 400 мм.

Холодная стерилизация — это альтернативный подход к очистке инструментов. Глутаральдегид является наиболее часто используемым стерилизующим средством в холодных системах, хотя это химическое вещество более широко используется в качестве дезинфицирующего средства высокого уровня.

«Его также можно считать стерилизующим, если на самом деле он используется при комнатной температуре, обычно от 10 до 12 часов», — сказал Хармер. «Вы можете сократить это время, если используете автоматизированную систему с повышенными температурами; это обычно занимает около 8 часов.

» Глутаральдегид способен убивать высокорезистентные бактериальные споры, но как только вы его используете, он начинает терять свою эффективность — сказала она. — На нем должен быть указан срок годности, и вам нужно будет проверить его эффективность.»

Глутаралдагид быстро испаряется, имеет сильный запах и может раздражать глаза, нос, носовые ходы, горло и дыхательные пути. При работе с этим химическим веществом сотрудники должны использовать средства защиты глаз, и его необходимо тщательно смыть с инструментов. .Любой остаточный раствор может быть чрезвычайно токсичным для внутриглазных или экстраокулярных тканей. По словам Хармера, это не рекомендуемый метод стерилизации офтальмологических инструментов.

Жидкая химическая стерилизация редко используется в медицинских учреждениях.Исключение составляет перуксусная кислота, химическое вещество с нейтральным pH и дополнительным атомом кислорода; это сильный окислитель с антикоррозийной добавкой. Этот метод низкотемпературной стерилизации подходит для термочувствительных хирургических предметов, которые можно погружать в воду. Эффективность зависит от концентрации активного химического вещества и продолжительности воздействия. Перуксусная кислота не требует аэрации или специального контроля, имеет относительно короткий цикл, не оставляет следов при правильном ополаскивании и не является канцерогенным или мутагенным.

Стерилизация сухим жаром уничтожает организмы путем окисления. Для этого требуются высокие температуры и длительное время воздействия, но вероятность затупления и коррозии инструмента меньше. Однако при сильном нагреве покрытие из нержавеющей стали может быть удалено.

Стерилизация (очистка) — обзор

4.1 Введение в стерилизацию

Стерилизация подобна волшебной палочке, которая уничтожает и удаляет все микробы и биологические организмы из медицинских материалов и медицинских устройств.Он инактивирует споры чрезвычайно устойчивых бактерий, которые, возможно, выжили и восстановились через тысячи лет со времен пирамид.

Стерилизация используется для создания среды и продуктов, свободных от микробов, что снижает риск микробных инфекций для максимального укрепления или сохранения здоровья. Стерилизация — это основа обработки и производства стерильных медицинских материалов и медицинских изделий.

«Унция профилактики стоит фунта лечения». Без стерилизации инфекционные заболевания существовали бы повсюду в больницах или медицинских учреждениях, и остается спорным, что антибиотики когда-либо могли бы контролировать распространение инфекций повсюду.Следовательно, стерилизация имеет огромное значение для медицинской хирургии и медицинских учреждений. Стерилизация обычно выполняется сухим жаром, оксидом этилена (ЭО) и перекисью водорода с плазмой и без нее, облучением и озоном. Существует немного методов стерилизации, которые эффективны и действенны без неблагоприятных воздействий на медицинские материалы и устройства, таких как разложение полимера, плавление и окисление некоторых металлов.

Влияние стерилизации на медицинские материалы и устройства может служить причиной того, почему один метод стерилизации применяется, используется, а другой нет, и почему в конечном итоге метод стерилизации доступен и подходит для вашего медицинского материала и устройства.

Тепловая стерилизация (сухая и влажная) — традиционные методы, но многие материалы изменяют, вызывают коррозию, деформируют или плавят. Влажное тепло, например пар, может увлажнять, деформировать, смягчать, расширять и влиять на функциональность продукта. Сухой жар может плавиться и не может стерилизовать материалы, подвергающиеся воздействию воды. Некоторые порошки можно стерилизовать при помощи сухого тепла. Пар и сухое тепло имеют много общего, в том числе их легко контролировать и контролировать, они недороги и не содержат токсичных остатков или отходов, которые могут иметь ЭО и гамма-излучение.Окись этилена — это стандартный метод, с помощью которого можно стерилизовать многие материалы, но не жидкости, и разрушать некоторые материалы, оставляя токсичные остатки и побочные продукты. Облучение — еще один стандартный метод, но он может изменять молекулярную структуру (сшивание или ножницы), вызывать запахи, изменять pH, обесцвечивать, становиться хрупкими, придавать жесткость и разлагать некоторые материалы или влиять на прочность связи и вызывать изменения в течение срока хранения.