Асептика и антисептика в стоматологиии
1. АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА В СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ КАБИНЕТАХ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ
2. САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ РАЗМЕЩЕНИЮ, УСТРОЙСТВУ, ОБОРУДОВАНИЮ И ОСНАЩЕНИЮ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО КАБИНЕТА (ОТДЕ
САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ
РАЗМЕЩЕНИЮ, УСТРОЙСТВУ, ОБОРУДОВАНИЮ И ОСНАЩЕНИЮ
ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО КАБИНЕТА (ОТДЕЛЕНИЯ)
Размещение стоматологических лечебно-профилактических учреждений
• в отдельно стоящих зданиях и в приспособленных помещениях
• встроенных или встроенно-пристроенных в здания жилого и
общественного назначения
• в цокольных этажах жилых зданий
• в подвальных помещениях, имеющих естественное или искусственное
освещение, допускается размещение санитарно-бытовых помещений
(гардеробные, душевые, складские и т.п.), вентиляционных камер,
компрессорных установок, стерилизационных — автоклавных
• стоматологические медицинские организации, расположенные в жилых
зданиях, должны иметь отдельный вход с улицы
• помещения, в которых размещаются стоматологические медицинские
организации, должны быть обеспечены системами хозяйственнопитьевого холодного и горячего водоснабжения, а также канализацией
3. Организация стоматологического приема детей
• выделяются отдельные кабинеты
• по возможности выделять отдельный вход, отсек с
ожидальней и санузлом
4. Нормативы площади стоматологических кабинетов
• площадь на основную стоматологическую
установку должна быть не менее 14 м2
• на дополнительную установку — 10 м2
• на стоматологическое кресло без бормашины
дополнительно выделяется 7 м2
5. Нормативы высоты стоматологических кабинетов
Высота потолка в стоматологическом кабинете
должна быть не менее 2,6 м
6. Минимальный набор помещений стоматологической медицинской организации
• туалет
• вестибюльная группа
• кладовая
• кабинет врача-стоматолога
• комната персонала
7. Материалы для внутренней отделки помещений стоматологической медицинской организации
Отделка стен в терапевтических
стоматологических кабинетах
• стены стоматологических кабинетов, углы и места
соединения стен, потолка и пола должны быть
гладкими, без щелей
• стены следует покрывать на высоту помещения
отделочными материалами, устойчивыми к
дезинфектантам и разрешенными для
использования в помещениях с влажным,
асептическим режимом: глазурованной плиткой
или, например, масляной краской
8. Цвет стен
нейтральные светлые тона, не мешающие
правильному цветоразличению (нейтральные
светло-серые или бледно-голубые оттенки)
9. Отделка потолков в терапевтических стоматологических кабинетах
• водоэмульсионные или другие краски
• подвесные потолки должны быть выполнены из
плит (панелей), имеющих гладкую
неперфорированную поверхность, устойчивую к
действию моющих веществ и дезинфектантов
10. Отделка пола в терапевтических стоматологических кабинетах
Покрытия пола должны:
быть из водонепроницаемых материалов
не иметь дефектов
должны быть гладкими
плотно пригнанными к основанию
11. Отделка пола в терапевтических стоматологических кабинетах
Покрытия пола должны
• быть устойчивыми к действию моющих и
дезинфицирующих средств
• края линолеума у стен должны быть
подведены под плинтусы, которые должны
быть плотно закреплены между стеной и
полом. Швы должны быть тщательно
пропаяны.
• нейтральных светлых тонов, не мешающих
правильному цветовосприятию
12. Окна
желательно ориентировать на север, северо-восток,
северо-запад
13. Двери и окна
должны быть окрашены в белый цвет, в
целях увеличения уровня общей
освещенности стоматологического кабинета
14. Параметры микроклимата в кабинетах терапевтической стоматологии
Холодный и переходный период (среднесуточная температура
воздуха +10°С и ниже)
• Температура 18-23 С
• Относительная влажность воздуха 60-40%
• Скорость движения воздуха 0,2м/с
Теплый период(среднесуточная температура наружного
воздуха +10°С и выше)
• Температура 21-25 С
• Относительная влажность воздуха, 60-40%
• Скорость движения воздуха,
0,2м/с
Примечание: оптимальная температура воздуха для
работы в комфортных условиях -+21 -23°С.
15. Вентиляция и проветривание помещений
Кратность воздухообмена
• 3 раза в час по вытяжке
• 2 раза в час по притоку
16. Освещение
• Световой коэффициент (отношение остекленной
поверхности к площади пола) в стоматологических
кабинетах должен составлять 1:4—1:5
• Коэффициент естественного освещения
(процентное отношение уровня естественной
освещенности на рабочем месте к одновременной
освещенности под открытым небом) на
постоянных рабочих местах в стоматологическом
кабинете должен быть не менее 1,5%
17. Освещение
• Уровень горизонтальной освещенности рабочих
поверхностей в стоматологическом кабинете,
создаваемый общим искусственным освещением,
должен быть равен 500 лк.
• Уровень освещенности, создаваемый местным
источником, не должен превышать уровень
общего освещения более чем в 10 раз
18. Размещение оборудования в терапевтических стоматологических кабинетах
• В кабинетах с односторонним естественным
освещением стоматологические кресла
устанавливаются в один ряд вдоль
светонесущей стены.
• При наличии нескольких стоматологических
кресел в кабинете они разделяются
непрозрачными перегородками высотой не
ниже 1,5 м.
19. Кабинет терапевтической стоматологии
должен быть оснащен:
стоматологической
• медицинский стол
установкой,
• шкаф с медикаментами
стульями для врача и
для оказания первой
помощника.
помощи при неотложных
рабочий стол для врача состояниях
• раковины
стол для хранения
• бактерицидные
отработанного
ультрафиолетовые
инструментария
облучатели
шкаф со стерильными
• контейнеры для сбора
инструментами и
отходов
материалами
20. Количество раковин в кабинете терапевтической стоматологии
• двухсекционные раковины: одна — для мытья
рук, вторая — для обработки инструментов
• отделку стен на высоту 1,6 м от пола и на
ширину не менее 20 см от края раковины с
каждой стороны.
21. Бактерицидные ультрафиолетовые облучатели
Ультрафиолетовое бактерицидное облучение
является санитарно-противоэпидемическим
(профилактическим) мероприятием,
направленным на снижение количества
микроорганизмов и профилактику инфекционных
заболеваний и способствующим соблюдению
санитарных норм и правил по устройству и
содержанию помещений
22. Бактерицидные ультрафиолетовые облучатели
электромагнитное излучение ультрафиолетового
диапазона длин волн в интервале от 205 до 315
нм с помощью
• открытых • комбинированных • закрытых
бактерицидных облучателей
23. Асептика
Система профилактических мероприятий,
направленных на предупреждение попадания
микроорганизмов в рану, органы и ткани
больного в процессе любых врачебных
мероприятий
24. Антисептика
Включает в себя мероприятия, направленные на
борьбу с микроорганизмами, находящимися и
развивающимися в тканях и органах больного
25. Цикл применения стоматологического инструментария
26. Дезинфекция
это комплекс мероприятий, направленных на
уничтожение патогенных и условнопатогенных микроорганизмов (вирусов,
бактерий, грибов) и разрушение токсинов на
объектах внешней среды, изделиях и
инструментах медицинского назначения
Des – уничтожение, удаление чего-либо (фр.)
Дезинфекция уменьшает количество
микроорганизмов до приемлемого уровня, но
полностью может их и не уничтожить
27. Режимы дезинфекции
1. Режим профилактики вирусных гепатитов,
ВИЧ-инфекций, аденовирусных и
ретровирусных инфекций
2. Режим профилактики гнойных заболеваний,
кишечных и капельных инфекций
бактериальной природы, острых
респираторных вирусных инфекций (грипп,
аденовирусные заболевания и др.)
3. Режим профилактики туберкулеза
4. Режим профилактики кандидоза
5. Режим профилактики дерматофитии
28. Условия
необходимые для достижения надежного эффекта
уничтожения микроорганизмов в процессе
дезинфекции
правильный выбор средств и методов проведения
дезинфекции;
нормы расхода дезинфицирующих средств;
требуемая концентрация дезинфицирующего
средства;
время экспозиции при проведении дезинфекции;
способ применения в соответствии с инструкцией и
методическими указаниями;
кратность обработки дезинфицируемых объектов.
29. Дезинфекция стоматологических изделий с дальнейшим использованием их без стерилизации
• фотополимеризационные лампы (за исключением
световодов, которые должны стерилизоваться)
• ультразвуковая аппаратура
• пистолеты вода/воздух
• столик для инструментов
• кнопки управления и клавиатура
• светильник стоматологической установки
• переходники от турбинного шланга к наконечникам
• микромотор к механическим наконечникам
• плевательница
• подголовник и подлокотники стоматологического
кресла и т.д.
30. Предстерилизационная очистка
Цель предстерилизационной очистки удаление с инструментария белковых,
жировых и механических загрязнений, а
также лекарственных препаратов
31. Предстерилизационная очистка механизированным способом
• «Серьга», «Sonorex», «Fluxa»
• позволяет совместить дезинфекцию и
предстерилизационную очистку в одном
этапе
32. Контроль качества предстерилизационной очистки
1. Амидопириновая проба
2. Фенолфталеиновая проба
33. Амидопириновая проба
Приготовление
• 5 % спиртового раствора амидопирина,
• 30 % уксусной кислоты
по 2 — 3 мл
• 3 % раствора перекиси водорода
Проверка качества реактивов на кровавом пятне
• Пригодный к употреблению реактив должен
вызывать позеленение пятна
Проведение пробы
34. Фенолфталеиновая проба
• 1 % спиртовой раствор фенолфталеина,
• 1 — 2 капли наносят на вымытое изделие
• При наличии остаточных количеств моющего
средства появляется розовое окрашивание.
35. Стерилизация
Уничтожение микроорганизмов всех видов, в
том числе устойчивых к внешним
воздействиям споровых форм, на
медицинских изделиях и инструментах
путем воздействия физических или
химических факторов
36. Методы стерилизации, разрешенные в настоящее время в ЛПУ Российской Федерации (Абрамова И.М., 2006)
37. Автоклавирование
38. Материалы и инструменты, переносящие автоклавирование:
• Хирургические и стоматологические инструменты из нержавеющей
стали
• Инструменты из углеродистой стали, алюминия и других металлов.
• Турбинные, угловые и прямые наконечники, наконечники
ультразвуковых скейлеров и т.д. (должны иметь маркировку)
• Предметы из стекла, в том числе световоды фотополимеризационных ламп
• Предметы из материалов на минеральной основе
• Предметы из термостойкой пластмассы
• Предметы из термостойкой резины
• Предметы из термостойкой ткани
• Расходные материалы (вата, ватные и хлопковые валики и т.д.)
• Другие автоклавируемые материалы, например, жидкости
39. Режимы стерилизации паровым методом (автоклавирование)
40. Воздушный (сухожаровой) метод стерилизации
41. Режимы стерилизации воздушным (сухожаровым) методом
Дополнительный режим 160º — 150 мин
42. Гласперленовый метод стерилизации
• Гласперленовый метод предусматривает
термическую обработку инструментов в среде
нагретых стеклянных шариков при температуре
190-250°С в гласперленовом стерилизаторе
• Предназначен для быстрой стерилизации
цельнометаллических инструментов, не имеющих
полостей, каналов и замковых частей
43. Гласперленовый метод
В стоматологической практике он
используется для экспресс-стерилизации
мелких изделий
44. Жидкостной метод
Химическая или холодная стерилизация,
стерилизующим агентом является раствор какоголибо химического средства, обладающего
сильным дезинфицирующим действием.
45. Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Классификация отходов лечебнопрофилактических учреждений
Класс А. Неопасные отходы
Отходы, не имеющие контакта с биологическими
жидкостями пациентов, инфекционными больными,
нетоксичные отходы
Пищевые отходы всех подразделений ЛПУ. кроме
инфекционных (в том числе кожновенерологических)
Мебель, инвентарь, неисправное диагностическое
оборудованиегчге содержащее токсичных элементов
Неинфицированная бумага, смет, строительный
мусор и т.д.
46. Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Классификация отходов лечебнопрофилактических учреждений
Класс Б. Опасные (рискованные) отходы
Потенциально инфицированные отходы
Материалы и инструменты, загрязненные
выделениями, в том числе кровью
Выделения пациентов. Патологоанатомические
отходы. Органические операционные отходы
(органы, ткани и т.п.)
Все отходы из инфекционных отделений (в том числе
пищевые)
Отходы из микробиологических лабораторий,
работающих с микроорганизмами 3-4-й группы
патогенности
Биологические отходы вивариев
47. Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Классификация отходов лечебнопрофилактических учреждений
Класс В. Чрезвычайно опасные отходы
Материалы, контактирующие с больными особо
опасными инфекциями.
Отходы из лабораторий, работающих с
микроорганизмами 1—4-й группы патогенности.
Отходы фтизиатрических, микологических
больниц.
Отходы пациентов с анаэробной инфекцией
48. Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Классификация отходов лечебнопрофилактических учреждений
Класс Г. Отходы, по составу близкие к промышленным
• Просроченные лекарственные средства, отходы от
лекарственных и диагностических препаратов,
дезередства, не подлежащие использованию, с
истекшим сроком годности
• Цитостатики и другие химпрепараты
• Ртутьсодержащие предметы, приборы и
оборудование
Класс Д. Радиоактивные отходы
• Все виды отходов, содержащие радиоактивные
компоненты
49. Спасибо за внимание!
2.2. ОСНОВНЫЕ ПРИНЦИПЫ АСЕПТИКИ В ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ СТОМАТОЛОГИИ
2.2. ОСНОВНЫЕ ПРИНЦИПЫ АСЕПТИКИ В ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ СТОМАТОЛОГИИ
• Асептика — система профилактических мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных манипуляций.
Асептика включает: стерилизацию инструментов, материалов, приборов и пр.; • специальную обработку рук врача-стоматолога; • соблюдение особых приемов во время лечебных мероприятий; • осуществление специальных гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении.
В терапевтической стоматологии следует руководствоваться указанными выше принципами. Кроме того, необходимо соблюдать принципы антисептики, так как, работая в полости рта, стоматолог всегда имеет дело с инфицированной раной. При этом контактно может осуществляться перенос инфекции, например инфицирование пульпы при случайном ее вскрытии. Более того, несоблюдение мер асептики может привести к передаче инфекции от одного пациента к другому. Так, доказана возможность передачи вируса возбудителя гепатита В и ВИЧ-инфекции через стоматологические инструменты. Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всех приборов и инструментов, с которыми соприкасается пациент. Важное значение имеет соблюдение правил обработки рук.
Уничтожение микроорганизмов и их спор (стерилизация) достигается путем применения физических факторов и химических веществ.
Из физических факторов могут применяться высокая температура, ультрафиолетовые лучи, ультразвук. Из химических веществ используют йод, спирт, хлорамин и др. Важным условием применения химических веществ является бактерицидность, отсутствие разрушающего действия на материал или инструмент. К физическим методам стерилизации относятся паровой, горячевоздушный (суховоздушный), методы инфракрасного облучения, фильтрования и радиационный.
Химические методы включают газовый метод (формальдегид) и стерилизацию растворами химических препаратов.
Выбор метода стерилизации определяется особенностью метода и свойствами стерилизуемого материала.
В стоматологии применяют следующие основные виды стерилизации: кипячением, паром под давлением, сухожаровая и холодная.
Кипячение применяют для стерилизации цельнометаллических инструментов. Для уменьшения образования накипи в стерилизатор наливают дистиллированную воду и добавляют натрия гидрокарбонат (питьевая сода) для получения 1–2 % раствора. Продолжительность стерилизации не менее 30 мин от начала кипячения.
Стеклянные шприцы многоразового использования также стерилизуют кипячением, однако кипятят их в дистиллированной воде во избежание выпадения осадка. Шприцы в разобранном виде погружают в стерилизатор с водой комнатной температуры и кипятят не менее 30 мин. Иглы для инъекций можно стерилизовать в содовом растворе, но необходимо вставить мандрен. Лицам, перенесшим эпидемический гепатит, инъекции проводят маркированными шприцами, которые затем подвергаются более интенсивной обработке.
Паром под давлением стерилизуют перевязочный материал, белье, ватные шарики, турунды в паровых или электрических автоклавах. Обычно материал до стерилизации упаковывают в биксы или мешки. Срок хранения материала после стерилизации не более 3 сут.
Сухожаровую стерилизацию применяют для обезвреживания цельнометаллических инструментов в течение 40 мин, из которых 25 мин необходимо для нагревания инструментов до заданной температуры и 15 мин — для обезвреживания. В настоящее время для стерилизации рабочей части стоматологического инструментария (корневые иглы, буравы, дрильборы и боры) применяют термическую обработку путем погружения этих инструментов в среду нагретых до высокой температуры стеклянных шариков. Время стерилизации в таком аппарате 5–6 с при температуре 240–270 °C.
Холодную стерилизацию применяют для обработки режущих инструментов и стоматологических зеркал. Их погружают в 96 % спирт на 2 ч. Хранят инструменты в тройном растворе:
Rp.: Formalini 20,0
Ac.carbolici 50,0
Natrii hydrocarbonatis 15,0
Aq. destill. 1000 ml
D.S. Для стоматологического кабинета
Для холодной стерилизации можно использовать 1 % раствор хлорамина, 6 % раствор пероксида (перекиси) водорода, 3 % раствор формалина, 1 % раствор хлоргексидина, 10 % раствор димексида и др.
Наибольшие затруднения возникают при дезинфекции стоматологических наконечников. Стерилизация их в сухожаровом шкафу, антисептическом растворе, так же как кипячение в воде, невозможны, так как это приводит к порче трущихся частей в результате испарения масляной смазки. Наилучший способ их стерилизации — кипячение в вазелиновом масле с последующим центрифугированием. Но этот способ стерилизации наконечников применяется в челюстно-лицевой хирургии.
В кабинетах терапевтической стоматологии дезинфекцию стоматологических наконечников проводят путем тщательного двукратного протирания наружных частей и канала для бора стерильным ватно-марлевым тампоном, смоченным 1 % раствором хлорамина, или 3 % раствором формальдегида, или тройным раствором для холодной стерилизации. Интервал между протираниями должен составлять 10–15 мин. Длительность холодной стерилизации при использовании растворов хлорамина и формальдегида 30 мин, а тройного раствора — 45 мин.
В настоящее время для химической стерилизации наконечников используют специальную установку, которая крепится к бормашине и называется «терминатор».
После стерилизации инструменты разбирают, сортируют и хранят на специальном столе, покрытом стерильным бельем, которое меняют ежедневно.
Перед стерилизацией использованное стоматологическое оборудование, инструментарий необходимо подвергать предстерилизационной очистке для удаления с них механических, белковых, жировых загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов. Предстерилизационную обработку осуществляют ручным или механизированным способом с помощью специального оборудования с применением моющих растворов, состоящих из смеси 0,5 % раствора пероксида водорода с 0,5 % раствором одного из моющих средств («Астра», «Лотос» и т. д.) в течение 15 мин. В случае применения моющего средства «Биолот» время обработки составляет 3 мин.
Успешная работа стоматологического кабинета во многом зависит от четкого выполнения своих обязанностей медицинской сестрой и санитаркой.
Медицинская сестра находится в подчинении главного врача, заместителя главного врача, заведующего отделением (кабинетом) и старшей сестры. Она отвечает за сохранность и состояние оборудования кабинета, техническую исправность аппаратуры, установок и кресел. Перед началом работы она стерилизует инструментарий и материалы, готовит рабочее место врача. В ее обязанности входит руководить поступлением больных в кабинет во время приема, подавать врачу необходимые инструменты и материалы. Медицинская сестра полностью отвечает за хранение медикаментов, в том числе групп А и Б, следит за санитарным состоянием кабинета.
Санитарка ежедневно производит влажную уборку помещения после завершения приема. Во время работы кабинета она производит тщательную механическую обработку и мытье лотков и инструментов, бывших в употреблении. Плевательницы стоматологических установок после смыва обрабатывают 1–2 % раствором хлорамина.
Асептика и антисептика в стоматологической практике
Часть I
Персонал стоматологических клиник постоянно подвергается риску инфицирования высоковирулентными вирусами, бактериями и грибками. Даже нормофлора ротовой полости здорового человека может представлять опасность для персонала клиники со сниженным иммунитетом, не говоря уже о высокопатогенных микроорганизмах больного со стоматитом, ВИЧ, туберкулёзом и другими распространёнными заболеваниями.
Учитывая эпидемиологическую ситуацию, можно утверждать, что большая часть из пациентов, являющимися носителями контагиозных заболеваний, сами не знают об их наличии. Кроме того – многие из тех, кто знает о своём недуге, никогда не сообщают об имеющейся инфекции персоналу лечебного учреждения.
С другой стороны – и сотрудники клиник нередко являются источником заражения, особенно, когда речь идёт о бессимптомном носительстве или компенсированном хроническом заболевании.
Основные пути распространения внутрибольничной инфекции (ВБИ)
- Прямой контактный путь передачи осуществляется при прямом контакте с инфекционным агентом: во время операции через руки, инструментарий, одежду пациента или сотрудника.
- Опосредованно инфекция передаётся через полотенца, вентили сантехники, дверные ручки и т.п..
- Имплантационный путь, как правило, связан с нарушением стерильности шовных материалов, остающихся в ране инородных тел.
- Воздушно-капельный путь инфицирования осуществляется при взаимодействии с носителем респираторного заболевания.
- Пылевой путь заражения. Основную роль играют патогенные микроорганизмы, находящиеся в пылевых частицах (туберкулёзная палочка, стафилококк).
Последствия ВБИ могут быть достаточно серьезными – от осложнений после манипуляции у нескольких пациентов, до инфицирования персонала ВИЧ или
гепатитом, закрытия клиники и продолжительных судебных процессов.
Oсновные принципы профилактики ВБИ
Асептика – система мероприятий, направленных на предупреждение инфицирования раны, полости или участка ткани пациента при осуществлении диагностических и лечебных манипуляций. Включает в себя дезинфекцию и стерилизацию.
- Дезинфекция – комплекс мер по уничтожению инфекционных агентов во внешней среде, т.е. на всей территории клиники.
- Стерилизация – полная ликвидация патогенных микроорганизмов, включая споры (цисты).
Антисептика – процесс обработки инфицированных участков тела пациента, в ходе которого возбудитель должен быть уничтожен.
Для предупреждения инфицирования пациентов и персонала, необходимо придерживаться правил асептики, дезинфекции и антисептики, принятых для стоматологических клиник… Читайте подробную инструкцию в нашей следующей статье!
Читать дальше
Асептика и антисептика в стоматологии, стерилизация и дезинфекция: принципы обработки и отличия
Обеззараживание инструментов в стоматологии нужно для предотвращения инфицирования пациентов при проведении лечебных манипуляций. Сегодня существует два способа очистки приспособлений от патогенных микроорганизмов – химический и термический. Каждый из них используется для определенного типа инструментов и позволяет максимально обезопасить человека от инфицирования раны или заражения опасными болезнями.
Виды стоматологических инструментов, которые подлежат обработке
Обработку проходят инструменты, которые при стоматологических манипуляциях контактируют со слюной или кровью пациента. При подготовке приборов для работы специалиста обеззараживанию подвергаются:
- комплекты для осмотра – зеркало, зонд, пинцет и лоток;
- приспособления, применяемые в процессе лечения зубов, – экскаватор, гладилки, насадки для бормашины, приборы для работы в каналах корней, штрипсы, полоски для подтачивания пломб;
- пародонтологический инструментарий – кюреты, насадки для скейлеров;
- инструменты, применяемые в ортопедии, – боры для препарирования единиц и снятия коронок, ложки для слепков, микрометры, шпатели;
- хирургические приспособления – шприцы для карпульных обезболивающих средств, щипцы для экстракции зубов, скальпели, элеваторы, иглодержатели и т. д.;
- посуда – колбы, мензурки и другие емкости, применяемые в условиях лаборатории.
Обеззараживанию также подвергаются любые резиновые изделия и материалы для перевязок. Поверхность, используемая для раскладывания рабочих инструментов, также нуждается в тщательной обработке.
Асептика и антисептика и их отличия
Люди, не имеющие медицинского образования, часто путают понятия асептики и антисептики, хотя они имеют совсем разные значения. Асептика – это комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания патогенных микроорганизмов в раны при перевязках, операциях и других манипуляциях.
В кабинете стоматолога регулярно проводится генеральная уборка, включающая мытье и дезинфицирование всех поверхностей. Придерживаясь санитарных правил и норм, специалисты обеспечивают в кабинете режим асептики, что делает стоматологическое лечение максимально безопасным и успешным.
Антисептикой называют комплекс мероприятий, которые направлены на уничтожение микробов в ране или организме. К таким мерам обеззараживания относят механическую чистку от гноя, очагов некроза, дренирование, использование ультрафиолетового облучения и лазера, применение антибиотиков и т. д.
Дезинфекция и ее разновидности
Целью дезинфекции является уничтожение болезнетворных и условно-патогенных бактерий, вирусов, грибов и их спор (возможно сохранение некоторых спор после процедуры). Обеззараживание инструментов проводится сразу после их эксплуатации. Ротационные инструменты погружают в дезинфицирующий раствор, толщина которого над приборами составляет минимум 1 см. Дезрастворы готовят из концентрированной химической жидкости и воды. В работе используют Деколекс, Вентолен, ИД-22 и др. Обработка приборов осуществляется на протяжении часа.
Принципы дезинфицирования отличаются в зависимости от инвентаря. Существует три уровня дезинфекции:
- Низкий. Для процедуры используются вещества на основе спирта, фенола или хлора. Они позволяют обеззаразить инструменты, находившиеся в контакте с неповрежденной кожей. Грибок и бактерии эти вещества не удаляют.
- Высокий. Для работы применяется смесь 6-процентной перекиси водорода, альдегида и хлора, а также препараты надуксусной кислоты. Ими обрабатываются инструменты, контактирующие с кровью и применяемые для создания инъекционных растворов. Вещества отлично справляются с большинством видов болезнетворных бактерий.
- Промежуточный. Дезинфицирующая процедура позволяет удалить крупные липидные бактерии и вирусы. Этого достаточно для обеззараживания инструментов, находившихся в контакте со слизистыми оболочками или использовавшихся при работе с рваными ранами.
Для чего необходима стерилизация, как она проводится?
Целью стерилизации является полное уничтожение патогенных микроорганизмов, в том числе и спор грибов, на инвентаре. Процедуре подвергается весь инструментарий, соприкасающийся с областью раны, слизистой оболочкой или кровью.
Метод обеззараживания | Материал приспособлений | Время обработки | Алгоритм процедуры |
Сухой жар с применением сухожарового шкафа | Металл и стекло | 1 час при температуре 180°С, 2,5 часа при 160°С. Инструменты используют сразу или накрывают стерильной салфеткой на время до 12 часов. | Прибор включают после загрузки всех объектов. При температуре 90°С двери шкафа закрывают, после процедуры дают ему остыть до 90°С и вынимают приспособления. |
Паровой метод с использованием автоклава | Стекло, металл, текстиль | 20 минут при 132°С | Приборы загружают в аппарат, который включается и воздействует на инструменты горячим паром под давлением. После процедуры их охлаждают и сушат. |
Латекс, резина | 45 минут при 120°С | ||
Химическая, или холодная стерилизация с применением жидкостей | Для изделий, не предназначенных для термообработки | Бианол 20% – 10 часов, Дезоксон-1 – 45 минут, глутаровый альдегид 2,5% – 6 часов | Объекты помещают в емкости с раствором, выдерживают, вынимают пинцетом и переносят в 3 сосуда с дистиллированной водой, где моют 5–15 минут. Высушенные инструменты хранятся в стерильном биксе до 3 суток. |
Существуют и современные методы обрабатывания приспособлений, например стерилизационное устройство швейцарской компании ЕMS «Терминатор». Оно осуществляет чистку, мойку и обеззараживание всего за несколько минут.
Поделитесь с друьями!
Основные принципы асептики в терапевтической стоматологии Инфекционный контроль
Основные принципы асептики в терапевтической стоматологии. Инфекционный контроль. Подготовили: Лободенко Е. В. Старкова А. С.
Асептика — система профилактических мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных манипуляций. Асептика включает: • стерилизацию инструментов, материалов, приборов и пр. ; • специальную обработку рук врачастоматолога; • соблюдение особых приемов во время лечебных мероприятий; • осуществление специальных гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении.
Уничтожение микроорганизмов и их спор (стерилизация) достигается путем применения физических факторов и химических веществ.
Из физических факторов могут применяться высокая температура, ультрафиолетовые лучи, ультразвук. Из химических веществ используют йод, спирт, хлорамин и др. Важным условием применения химических веществ является бактерицидность, отсутствие разрушающего действия на материал или инструмент. К физическим методам стерилизации относятся паровой, горячевоздушный (суховоздушный), методы инфракрасного облучения, фильтрования и радиационный. Химические методы включают газовый метод (формальдегид) и стерилизацию растворами химических препаратов.
Перед стерилизацией использованное стоматологическое оборудование, инструментарий необходимо подвергать предстерилизационной очистке для удаления с них механических, белковых, жировых загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов. Предстерилизационную обработку осуществляют ручным или механизированным способом с помощью специального оборудования с применением моющих растворов, состоящих из смеси 0, 5 % раствора пероксида водорода с 0, 5 % раствором одного из моющих средств ( «Астра» , «Лотос» и т. д. ) в течение 15 мин. В случае применения моющего средства «Биолот» время обработки составляет 3 мин.
Выбор метода стерилизации определяется особенностью метода и свойствами стерилизуемого материала. В стоматологии применяют следующие основные виды стерилизации: кипячением, паром под давлением, сухожаровая и холодная.
Кипячение применяют для стерилизации цельнометаллических инструментов. Для уменьшения образования накипи в стерилизатор наливают дистиллированную воду и добавляют натрия гидрокарбонат (питьевая сода) для получения 1– 2 % раствора. Продолжительность стерилизации не менее 30 мин от начала кипячения. Стеклянные шприцы многоразового использования также стерилизуют кипячением, однако кипятят их в дистиллированной воде во избежание выпадения осадка. Шприцы в разобранном виде погружают в стерилизатор с водой комнатной температуры и кипятят не менее 30 мин. Иглы для инъекций можно стерилизовать в содовом растворе, но необходимо вставить мандрен. Лицам, перенесшим эпидемический гепатит, инъекции проводят маркированными шприцами, которые затем подвергаются более интенсивной обработке.
Автоклавирование. Паром под давлением стерилизуют перевязочный материал, белье, ватные шарики, турунды в паровых или электрических автоклавах. Обычно материал до стерилизации упаковывают в биксы или мешки. Срок хранения материала после стерилизации не более 3 сут.
Сухожаровую стерилизацию применяют для обезвреживания цельнометаллических инструментов в течение 40 мин, из которых 25 мин необходимо для нагревания инструментов до заданной температуры и 15 мин — для обезвреживания. В настоящее время для стерилизации рабочей части стоматологического инструментария (корневые иглы, буравы, дрильборы и боры) применяют термическую обработку путем погружения этих инструментов в среду нагретых до высокой температуры стеклянных шариков. Время стерилизации в таком аппарате 5– 6 с при температуре 240– 270 °C.
Холодную стерилизацию применяют для обработки режущих инструментов и стоматологических зеркал. Их погружают в 96 % спирт на 2 ч. Хранят инструменты в тройном растворе: Rp. : Formalini 20, 0 Ac. carbolici 50, 0 Natrii hydrocarbonatis 15, 0 Aq. destill. 1000 ml D. S. Для стоматологического кабинета Для холодной стерилизации можно использовать 1 % раствор хлорамина, 6 % раствор пероксида (перекиси) водорода, 3 % раствор формалина, 1 % раствор хлоргексидина, 10 % раствор димексида и др.
В кабинетах терапевтической стоматологии дезинфекц ию стоматологических наконечников проводят путем тщательного двукратного протирания наружных частей и канала для бора стерильным ватно-марлевым тампоном, смоченным 1 % раствором хлорамина, или 3 % раствором формальдегида, или тройным раствором для холодной стерилизации. Интервал между протираниями должен составлять 10 – 15 мин. Длительность холодной стерилизации при использовании растворов хлорамина и формальдегида 30 мин, а тройного раствора — 45 мин. В настоящее время для химической стерилизации наконечников используют специальную установку, которая крепится к бормашине и называется «терминатор» .
После стерилизации инструменты разбирают, сортируют и хранят на специальном столе, покрытом стерильным бельем, которое меняют ежедневно. Успешная работа стоматологического кабинета во многом зависит от четкого выполнения своих обязанностей медицинской сестрой и санитаркой.
Инфекционный контроль — это система организационных, профилактических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения инфекционных заболеваний и стационаре, которая базируется на результатах эпидемиологиичеекой диагностики.
Целью инфекционного контроля является снижение заболеваемости, легальности и экономического ущерба от внутрибольничных инфекций (ВБИ). Для достижения этой цели разработаны конкретные комплексы мероприятий для ЛПУ разной специализации. Система инфекционного контроля включает восемь аспектов.
1. Структура управлении и распределение обязанностей по инфекционному контролю. Каждое ЛПУ должно иметь комитет инфекционного контроля, полномочия которого распространяются на все его подразделения и службы. В состав комитета входят председатель (заместитель главного врача по лечебной работе), врачэпидемиолог и/или помощник эпидемиолога, главная медицинская сестра и врачи-специалисты (хирург, терапевт, инфекционист и т. д. ). Состав комитета может быть расширен за счет привлечения других специалистов, исходя из профиля ЛПУ. Комитет инфекционного контроля решает вопросы распределения обязанностей и обеспечения мероприятий по инфекционному контролю, согласовывает проводимые мероприятия с администрацией ЛПУ и координирует их.
2. Система учета и регистрации ВБИ. Принципиальное положение этого направления — наличие в стационаре системы активного выявления госпитальных инфекций. Перечень ВБИ, подлежащих регистрации и учету, определен приказом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 26 ноября 1997 г. № 345 «О совершенствовании мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций в акушерских стационарах» , письмом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 24 марта 2003 г. № 2510/2921 -03 -24 «О профилактике внутрибольничных инфекций в Российской Федерации» и письмом Министерства здравоохранения СССР от 2 сентября 1987 г. № 28 -6/34 «Методические указания по эпидемиологическому надзору за внутрибольничными инфекциями» .
3. Микробиологическое обеспечение инфекционного контроля. Необходимые микробиологические исследования своевременно и полно выполняют на базе клинико-диагностической лаборатории учреждения или на договорных условиях с внешней лабораторией. Объем и качество микробиологических анализов должны соответствовать микроэкологическим условиям данного ЛПУ. По результатам исследований специалисты анализируют и оценивают чувствительность выделенных штаммов микроорганизмов к антибиотикам, дезинфектантам, антисептикам и физическим факторам воздействия. Создание базы данных штаммов, полученных в микробиологической лаборатории, обеспечивает проведение полноценного эпидемиологического анализа.
4. Эпидемиологический анализ ВБИ. Эпидемиологический анализ проводится в соответствии с четко сформулированными целями и задачами, исходя из потребностей и особенностей данного ЛПУ. Он невозможен без информационного обеспечения. Для этого используют стандартные и специально разработанные учетные формы, а также компьютерные базы данных. Обработка полученной информации проводится общепринятыми методами эпидемиологического анализа: • ретроспективным — на его основе формулируются гипотезы о ведущих факторах, причинах и условиях возникновения ВБИ в данном ЛПУ; • оперативным — диагностика фазового состояния эпидемического процесса ВБИ, слежение за формированием госпитальных штаммов и прогноз эпидемической ситуации. Результаты эпидемиологического анализа своевременно и регулярно сообщают администрации и комитету инфекционного контроля ЛПУ.
5. Профилактические и противоэпидемические мероприятия в системе инфекционного контроля. Реализация данного направления предполагает разработку инструкций, указаний, алгоритмов эпидемически безопасных диагностических и лечебных процедур, а также проведение эффективных процедур стерилизации, дезинфекции и обработки рук персонала. В ЛПУ должна быть разработана и применена адекватная технология использования антибиогиков, антисептиков и других средств лечения и профилактики ВБИ с учетом микробиологических данных о резистентности циркулирующих штаммов.
6. Обучение персонала. Приоритетным направлением данного аспекта является разработка дифференцированных программ для обучения специалистов разного профиля по проблемам инфекционного контроля с учетом специфических особенностей ЛПУ. Следует обязательно проводить обучение персонала в области инфекционного контроля приеме на работу и в дальнейшем регулярно продолжать его.
7. Охрана здоровья персонала. Основу этого направления составляют: • выявление и оценка профессиональных факторов риска в данном ЛПУ; • подготовка и анализ соответствующей информации; • разработка и внедрение программ профилактики профессиональной заболеваемости.
8. Охрана здоровья пациентов. Направление заключается в выполнении медицинской сестрой требований санитарно-противоэпидемического режима: • соблюдения чистоты самого пациента, белья, посуды, предметов личной гигиены, предметов ухода, помещения; • предотвращения распространения инфекции. Ухаживая за больным, медицинская сестра должна помнить, что при несоблюдении санитарно-противоэпидемического режима можно заразиться от него инфекционным заболеванием или заразить другого больного.
Спасибо за внимание!
Методы и этапы стерилизации и дезинфекции стоматологических инструментов
Стоматологическое лечение относится к тем сферам медицины, где врачу приходится тесно контактировать с пациентами. Каждый осмотр и любая стоматологическая манипуляция подразумевает взаимодействие со слизистыми тканями, зачастую пораженными инфекцией, поэтому соблюдение гигиены, дезинфекция и стерилизация в стоматологии – правило номер один.
Правила стерилизации стоматологических инструментов регулируются МОЗ Украины. Они прописаны с тем посылом, что каждый пациент является потенциальным носителем инфекции. Соответственно, для безопасности других пациентов и медицинского персонала необходимо соблюдать строгие санитарно-гигиенические требования в отношении очистки стоматологического инструмента и принадлежностей, используемых стоматологом.
По какому принципу выбирают методы стерилизации в стоматологии
Обработка стоматологического оборудования и рабочего инструмента стоматолога проводится с целью дезинфекции (обеззараживания) изделий. Выбор метода дезинфекции для каждого инструмента зависит от того, насколько велик риск инфицирования через него.
Например:
- Зубной элеватор, пародонтологические зонды, кюреты для удаления зубного камня, шпатель, боры, наконечники и другой пародонтический инструмент, которые контактируют непосредственно с открытыми ранами ротовой полости, вскрытыми кариозными полостями, относятся к категории высокого риска. Они требуют обязательной стерилизации.
- Зуботехническое зеркало и другие материалы, инструменты, которые соприкасаются со слизистой, при условии отсутствия на ней повреждений. В этом случае используется как стерилизация, так и химическая дезинфекция стоматологических инструментов.
- Предметы и материалы, которые контактируют только с кожными покровами пациента, а именно, мебель, стоматологическое кресло, одежда врача – это инструментарий низкого риска передачи инфекции. Для обеззараживания этих предметов подходит наименее интенсивная дезинфекция.
Самые распространенные методы стерилизации стоматологических инструментов
В настоящее время существуют такие виды стерилизации в стоматологии:
- механический;
- биологический;
- физический;
- химический;
- микроволновой;
- ультрафиолетовый.
К механическим способам обработки относятся влажная уборка, стирка медицинской одежды и других тканевых изделий многоразового использования, проветривание стоматологического кабинета. Механическая дезинфекция в стоматологии должна быть ежедневной.
Биологическая дезинфекция – это обработка твердых поверхностей стоматологических инструментов с применением природных противомикробных средств. Подходит не для всех изделий, так как является неэффективной в борьбе с некоторыми штаммами бактерий, например ВИЧ.
Физическая стерилизация инструментов в стоматологии – это не что иное, как обработка и обеззараживание изделий под действием высокой температуры. Термическая обработка считается наиболее надежным и безопасным методом дезинфекции, но она подходит для изделий, изготовленных из термоустойчивых материалов (стальных, твердосплавных).
Термо стерилизация стоматологического инструментария проводится двумя способами:
- сухим;
- паровым.
Химическая дезинфекция – обеззараживание инструментария стоматолога с помощью агрессивных химических средств. Эффективно устраняет все виды вирусов и бактерий, применяется, как правило, для обработки изделий группы высокого риска инфицирования, которые нельзя подвергать действию высоких температур. Холодная стерилизация проводится для обработки пластиковых, резиновых, стеклянных предметов.
Микроволновая дезинфекция актуальна, когда нужно обработать небольшое количество инструментов низкой и средней категории инфекционного риска. А стерилизация посредством воздействия на предметы ультрафиолетовых лучей предназначена для быстрого обеззараживания поверхностей инструментов, которые не контактируют с раневыми поверхностями.
Основные этапы стерилизации стоматологических инструментов
Полноценный цикл стерилизации состоит из следующих этапов:
- Дезинфекция.
Любые инструменты стоматолога (речь идет об изделиях многоразового использования) должны проходить эту стадию обработки. Процедура для пластиковых, керамических наконечников и, например, полностью металлических инструментов (ножей, элеваторов) будет отличаться только выбором антисептиков.
Дезинфекцию можно выполнять вручную или использовать для этой цели специальное оборудование. Принцип работы химического стерилизатора прост: необходимо сложить инструменты в специальный контейнер и опустить его в емкость, заполненную дезинфицирующим раствором. Время пребывания в растворе зависит от его концентрации и типа стоматологического инструмента.
- Предстерилизация.После обработки химическим антисептиком инструменты необходимо промыть в обычной воде (каждый отдельно) примерно по минуте, потом ополоснуть под проточной водой в течение нескольких минут. Затем инструменты промывают в дистиллированной воде (время обработки – 1 минута). Для предстерилизационной обработки цельнолитых, гладких изделий можно использовать щетки. Предметы с многочисленными насечками, с абразивной поверхностью лучше очищать в ультразвуковом стерилизаторе. УЗ стерилизация стоматологических боров с алмазным напылением – простой и быстрый способ предстерилизационной обработки. Инструментарий помещают в контейнер УЗ аппарата. Затем в аппарат заливают дезраствор и устанавливают время очистки. Всю работу оборудование делает за вас в автоматическом режиме. Обработанный инструмент просушивают в сушильном аппарате и упаковывают.
- Упаковка.
Этот этап актуален, если планируется паровая стерилизация стоматологических инструментов. Для упаковки потребуются специальные пакеты или упаковочная машина. Инструмент необходимо поместить в пакет, соответствующий ему по размеру и заклеить. Упаковочный аппарат упрощает процесс упаковки. Он комплектуется рулоном упаковочной пленки. При запечатывании инструментов можно регулировать длину и ширину упаковочного материала.
- Стерилизация.
Упакованные инструменты стерилизуют в автоклаве:
- их помещают на специальный поддон;
- пакеты должны лежать бумажным слоем вверх и не перекрывать друг друга;
- затем устанавливают нужную температуру, режим стерилизации;
- далее автоклавирование происходит автоматически.
Простерилизованный стоматологический инструмент хранят в упакованном виде в сухом месте.
Стерилизация и дезинфекция в стоматологии терапевтических инструментов
Все поверхности в стоматологическом кабинете обрабатывают в начале рабочего дня специальными средствами, содержащими поверхностно-активные вещества. В процессе работы врач производит аналогичную дезинфекцию стоматологического кресла и внешних поверхностей стоматологической установки после каждого пациента.
Все инструменты стоматолога – предметы индивидуального использования. В стандартный стоматологический набор входит лоток, гладилка, шпатель, элеватор, зубной зонд и пинцет. Все эти предметы сразу после приема пациента должны пройти полный цикл стерилизации (обеззараживание, предстерилизация и термическая обработка).
Стерилизация эндодонтических инструментов: особенности и последовательность
Большинство эндодонтических инструментов в современной стоматологии относятся к категории изделий одноразового использования.
Правила их применения следующие:
- сразу после использования нужно провести дезинфекцию инструмента;
- после дезинфекции изделие отправляют на утилизацию.
Инструментарий многоразового использования по завершению работы сразу погружают в раствор для дезинфекции, не допуская высыхания. Процедура стерилизации длится полчаса. Если в дальнейшем используется ультразвуковая чистка, то время химической обработки можно сократить в 2 раза.
После предстерилизационной обработки эндодонтический инструмент отправляют на стерилизацию в автоклаве или сухожаровом шкафу (в зависимости от типа инструмента).
Стерильные инструменты важно правильно хранить. В каждой современной клинике имеется для этой цели специальное оборудование.
Стерилизация стоматологических наконечников
Она отличается от дезинфекции других инструментов стоматолога. Наконечники нельзя погружать в агрессивный химический раствор и подвергать действию ультразвука. Дезинфекция стоматологических наконечников осуществляется с помощью специальных антибактериальных салфеток. При обработке изделий важно позаботиться о защите рук от попадания на кожу дезинфицирующего средства.
Порядок стерилизации:
- разборка наконечника;
- протирание поверхностей каждой детали;
- промывание игл, через которые подается физраствор;
- сборка;
- смазка (обязательная процедура перед упаковкой инструмента).
Упакованные наконечники отправляют на хранение в UV-аппарат, в котором ультрафиолетовые лучи обеспечат стерильность инструмента до следующего применения.
Стерилизация в стоматологии ортодонтических инструментов
В стоматологической ортопедии используются не только металлические инструменты, но и множество приспособлений из эластичных материалов:
- Инструментарий из стали, твердых сплавов проходят традиционный процесс стерилизации (от обеззараживания в дезрастворе до термической стерилизации).
- Точно также стерилизуют металлические абразивные диски, коронкосниматери и коронкорезы, металлические ложки.
- Пластиковые ортопедические ложки, каменные диски относятся к изделиям одноразового применения. Сразу после использования их необходимо продезинфицировать и отправить на утилизацию.
- Наковальня, ортопедический молоток очищают при помощи салфеток, пропитанных антисептиком. Для эффективности изделия обрабатывают дважды.
- Коронки и мосты, силиконовые или альгинантные файлы первоначально необходимо промыть в воде, а затем погрузить в раствор для быстрой дезинфекции. После химической обработки инструменты нужно тщательно промыть и оставить в емкости с водой на 5 минут.
Самая эффективная стерилизация боров в стоматологии: сухожаровой шкаф или автоклав?
Даже самые сильные дезинфицирующие средства и современные способы стерилизации медицинского инструмента не могут справиться с некоторыми наиболее опасными вирусами – ВИЧ, гепатит и др. Добиться 100% стерильности инструментария стоматолога можно только посредством воздействия на них высоких температур.
В стоматологии практикуют два способа термоочистки инструмента:
- Воздушный – прокаливание металлических и стеклянных стоматологических принадлежностей в сухожаровом шкафу. Процедура воздушной стерилизации проходит при температуре 180°С и длится от 30 минут до 2 часов. Прошедшие предстерилизационную обработку предметы выкладывают на поддон без упаковки и помещают в корпус сухожарового шкафа.
- Паровой – автоклавирование, обработка инструмента горячим паром, который поступает в стерилизационную камеру под большим давлением. Температура в автоклаве 120-130°, и ее вполне достаточно, чтобы уже в течение 5 минут – 1 часа нейтрализовать вредные бактерии.
Оборудование для сухой стерилизации стоит гораздо дешевле, однако стерилизацию в автоклаве стоматология практикует чаще всего.
Причина такого выбора – множество преимуществ, которые дает автоклавирование:
- Деликатное воздействие на материалы, из которых изготовлены инструменты. При сухой обработке боры и другие стоматологические принадлежности сильно накаливаются, что приводит к более быстрому износу изделий. Паровой метод самый безопасный для любых металлов и даже подходит для некоторых видов пластика.
- Экологичность, безопасность для персонала стоматологической клиники и для окружающей среды.
- Непродолжительная экспозиция (длительность сеанса стерилизации в автоклаве самая короткая – от 5 минут для некоторых видов стоматологического инструмента).
- Возможность длительного сохранения изделий стерильными. Медицинские инструменты проходят стерилизацию в автоклаве в упакованном виде. Вакуумная упаковка позволяет транспортировать и хранить стерильные предметы, защищает от загрязнений.
- Функциональность оборудования – наличие нескольких режимов работы.
- Отсутствие потребности в ополаскивании после стерилизации.
- Сушка входит в цикл стерилизации в автоклаве.
- Экономичный расход энергии на обработку инструментария.
Наиболее функциональное и эффективное оборудование для стоматологических кабинетов, клиник – это профессиональные медицинские автоклавы класса B, например автоклав стоматологический Dentsply Sirona DAC Professional, класс В – продукт одного из ведущих производителей стоматологического оборудования в мире.
Автоклавы – дорогостоящая аппаратура, однако качество стерилизации медицинского инструментария – это не та сфера, где можно экономить. Правильный выбор методов дезинфекции, выбор качественного оборудования и соблюдение правил стерилизации в стоматологии гарантирует безопасность и пациентов, и врачей, и всего персонала клиники.
Презентация на тему: АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА В СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ КАБИНЕТАХ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ
1
Первый слайд презентации: АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА В СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ КАБИНЕТАХ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ
Изображение слайда
2
Слайд 2: САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ РАЗМЕЩЕНИЮ, УСТРОЙСТВУ, ОБОРУДОВАНИЮ И ОСНАЩЕНИЮ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО КАБИНЕТА (ОТДЕЛЕНИЯ)
Размещение стоматологических лечебно-профилактических учреждений
в отдельно стоящих зданиях и в приспособленных помещениях
встроенных или встроенно-пристроенных в здания жилого и общественного назначения
в цокольных этажах жилых зданий
в подвальных помещениях, имеющих естественное или искусственное освещение, допускается размещение санитарно-бытовых помещений (гардеробные, душевые, складские и т.п.), вентиляционных камер, компрессорных установок, стерилизационных — автоклавных
стоматологические медицинские организации, расположенные в жилых зданиях, должны иметь отдельный вход с улицы
помещения, в которых размещаются стоматологические медицинские организации, должны быть обеспечены системами хозяйственно-питьевого холодного и горячего водоснабжения, а также канализацией
Изображение слайда
3
Слайд 3: Организация стоматологического приема детей
выделяются отдельные кабинеты
по возможности выделять отдельный вход, отсек с ожидальней и санузлом
Изображение слайда
4
Слайд 4: Нормативы площади стоматологических кабинетов
площадь на основную стоматологическую установку должна быть не менее 14 м 2
на дополнительную установку — 10 м 2
на стоматологическое кресло без бормашины дополнительно выделяется 7 м 2
Изображение слайда
5
Слайд 5: Нормативы высоты стоматологических кабинетов
Высота потолка в стоматологическом кабинете должна быть не менее 2,6 м
Изображение слайда
6
Слайд 6: Минимальный набор помещений стоматологической медицинской организации
вестибюльная группа
кабинет врача-стоматолога
комната персонала
туалет
кладовая
Изображение слайда
7
Слайд 7: Материалы для внутренней отделки помещений стоматологической медицинской организации
Отделка стен в терапевтических стоматологических кабинетах
стены стоматологических кабинетов, углы и места соединения стен, потолка и пола должны быть гладкими, без щелей
стены следует покрывать на высоту помещения отделочными материалами, устойчивыми к дезинфектантам и разрешенными для использования в помещениях с влажным, асептическим режимом: глазурованной плиткой или, например, масляной краской
Изображение слайда
8
Слайд 8: Цвет стен
нейтральные светлые тона, не мешающие правильному цветоразличению (нейтральные светло-серые или бледно-голубые оттенки)
Изображение слайда
9
Слайд 9: Отделка потолков в терапевтических стоматологических кабинетах
водоэмульсионные или другие краски
подвесные потолки должны быть выполнены из плит (панелей), имеющих гладкую неперфорированную поверхность, устойчивую к действию моющих веществ и дезинфектантов
Изображение слайда
10
Слайд 10: Отделка пола в терапевтических стоматологических кабинетах
Покрытия пола должны:
быть из водонепроницаемых материалов
не иметь дефектов
должны быть гладкими
плотно пригнанными к основанию
Изображение слайда
11
Слайд 11: Отделка пола в терапевтических стоматологических кабинетах
Покрытия пола должны
быть устойчивыми к действию моющих и дезинфицирующих средств
края линолеума у стен должны быть подведены под плинтусы, которые должны быть плотно закреплены между стеной и полом. Швы должны быть тщательно пропаяны.
нейтральных светлых тонов, не мешающих правильному цветовосприятию
Изображение слайда
12
Слайд 12: Окна
желательно ориентировать на север, северо-восток, северо-запад
Изображение слайда
13
Слайд 13: Двери и окна
должны быть окрашены в белый цвет, в целях увеличения уровня общей освещенности стоматологического кабинета
Изображение слайда
14
Слайд 14: Параметры микроклимата в кабинетах терапевтической стоматологии
Холодный и переходный период (среднесуточная температура воздуха +10°С и ниже)
Температура 18-23 С
Относительная влажность воздуха 60-40%
Скорость движения воздуха 0,2м/с
Теплый период(среднесуточная температура наружного воздуха +10°С и выше)
Температура 21-25 С
Относительная влажность воздуха, 60-40%
Скорость движения воздуха, 0,2м/с
Примечание: оптимальная температура воздуха для работы в комфортных условиях -+21 -23°С.
Изображение слайда
15
Слайд 15: Вентиляция и проветривание помещений
Кратность воздухообмена
3 раза в час по вытяжке
2 раза в час по притоку
Изображение слайда
16
Слайд 16: Освещение
Световой коэффициент (отношение остекленной поверхности к площади пола) в стоматологических кабинетах должен составлять 1:4—1:5
Коэффициент естественного освещения (процентное отношение уровня естественной освещенности на рабочем месте к одновременной освещенности под открытым небом) на постоянных рабочих местах в стоматологическом кабинете должен быть не менее 1,5%
Изображение слайда
17
Слайд 17: Освещение
Уровень горизонтальной освещенности рабочих поверхностей в стоматологическом кабинете, создаваемый общим искусственным освещением, должен быть равен 500 лк.
Уровень освещенности, создаваемый местным источником, не должен превышать уровень общего освещения более чем в 10 раз
Изображение слайда
18
Слайд 18: Размещение оборудования в терапевтических стоматологических кабинетах
В кабинетах с односторонним естественным освещением стоматологические кресла устанавливаются в один ряд вдоль светонесущей стены.
При наличии нескольких стоматологических кресел в кабинете они разделяются непрозрачными перегородками высотой не ниже 1,5 м.
Изображение слайда
19
Слайд 19: Кабинет терапевтической стоматологии
стоматологической установкой,
стульями для врача и помощника.
рабочий стол для врача
стол для хранения отработанного инструментария
шкаф со стерильными инструментами и материалами
медицинский стол
шкаф с медикаментами для оказания первой помощи при неотложных состояниях
раковины
бактерицидные ультрафиолетовые облучатели
контейнеры для сбора отходов
должен быть оснащен:
Изображение слайда
20
Слайд 20: Количество раковин в кабинете терапевтической стоматологии
двухсекционные раковины: одна — для мытья рук, вторая — для обработки инструментов
отделку стен на высоту 1,6 м от пола и на ширину не менее 20 см от края раковины с каждой стороны.
Изображение слайда
21
Слайд 21: Бактерицидные ультрафиолетовые облучатели
Ультрафиолетовое бактерицидное облучение является санитарно-противоэпидемическим (профилактическим) мероприятием, направленным на снижение количества микроорганизмов и профилактику инфекционных заболеваний и способствующим соблюдению санитарных норм и правил по устройству и содержанию помещений
Изображение слайда
22
Слайд 22: Бактерицидные ультрафиолетовые облучатели
электромагнитное излучение ультрафиолетового диапазона длин волн в интервале от 205 до 315 нм с помощью
открытых
комбинированных
закрытых
бактерицидных облучателей
Изображение слайда
23
Слайд 23: Асептика
Система профилактических мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных мероприятий
Изображение слайда
24
Слайд 24: Антисептика
Включает в себя мероприятия, направленные на борьбу с микроорганизмами, находящимися и развивающимися в тканях и органах больного
Изображение слайда
25
Слайд 25: Цикл применения стоматологического инструментария
Изображение слайда
26
Слайд 26: Дезинфекция
это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов (вирусов, бактерий, грибов) и разрушение токсинов на объектах внешней среды, изделиях и
инструментах медицинского назначения
Des – уничтожение, удаление чего-либо (фр.)
Дезинфекция уменьшает количество микроорганизмов до приемлемого уровня, но полностью может их и не уничтожить
Изображение слайда
27
Слайд 27: Режимы дезинфекции
1. Режим профилактики вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекций, аденовирусных и ретровирусных инфекций
2. Режим профилактики гнойных заболеваний, кишечных и капельных инфекций бактериальной природы, острых респираторных вирусных инфекций (грипп, аденовирусные заболевания и др.)
3. Режим профилактики туберкулеза
4. Режим профилактики кандидоза
5. Режим профилактики дерматофитии
Изображение слайда
28
Слайд 28: Условия
необходимые для достижения надежного эффекта уничтожения микроорганизмов в процессе дезинфекции
правильный выбор средств и методов проведения дезинфекции;
нормы расхода дезинфицирующих средств;
требуемая концентрация дезинфицирующего средства;
время экспозиции при проведении дезинфекции;
способ применения в соответствии с инструкцией и методическими указаниями;
кратность обработки дезинфицируемых объектов.
Изображение слайда
29
Слайд 29: Дезинфекция стоматологических изделий с дальнейшим использованием их без стерилизации
• фотополимеризационные лампы (за исключением световодов, которые должны стерилизоваться)
• ультразвуковая аппаратура
• пистолеты вода/воздух
• столик для инструментов
• кнопки управления и клавиатура
• светильник стоматологической установки
• переходники от турбинного шланга к наконечникам
• микромотор к механическим наконечникам
• плевательница
• подголовник и подлокотники стоматологического кресла и т.д.
Изображение слайда
30
Слайд 30: Предстерилизационная очистка
Цель предстерилизационной очистки — удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов
Изображение слайда
31
Слайд 31: Предстерилизационная очистка механизированным способом
«Серьга», «Sonorex», «Fluxa»
позволяет совместить дезинфекцию и предстерилизационную очистку в одном этапе
Изображение слайда
32
Слайд 32: Контроль качества предстерилизационной очистки
Амидопириновая проба
Фенолфталеиновая проба
Изображение слайда
33
Слайд 33: Амидопириновая проба
Приготовление
5 % спиртового раствора амидопирина,
30 % уксусной кислоты
3 % раствора перекиси водорода
Проверка качества реактивов на кровавом пятне
Пригодный к употреблению реактив должен вызывать позеленение пятна
Проведение пробы
по 2 — 3 мл
Изображение слайда
34
Слайд 34: Фенолфталеиновая проба
1 % спиртовой раствор фенолфталеина,
1 — 2 капли наносят на вымытое изделие
При наличии остаточных количеств моющего средства появляется розовое окрашивание.
Изображение слайда
35
Слайд 35: Стерилизация
Уничтожение микроорганизмов всех видов, в том числе устойчивых к внешним воздействиям споровых форм, на медицинских изделиях и инструментах путем воздействия физических или химических факторов
Изображение слайда
36
Слайд 36: Методы стерилизации, разрешенные в настоящее время в ЛПУ Российской Федерации (Абрамова И.М., 2006)
Изображение слайда
37
Слайд 37: Автоклавирование
Изображение слайда
38
Слайд 38: Материалы и инструменты, переносящие автоклавирование :
• Хирургические и стоматологические инструменты из нержавеющей стали
• Инструменты из углеродистой стали, алюминия и других металлов.
• Турбинные, угловые и прямые наконечники, наконечники ультразвуковых скейлеров и т.д. (должны иметь маркировку)
• Предметы из стекла, в том числе световоды фотополимеризаци-онных ламп
• Предметы из материалов на минеральной основе
• Предметы из термостойкой пластмассы
• Предметы из термостойкой резины
• Предметы из термостойкой ткани
• Расходные материалы (вата, ватные и хлопковые валики и т.д.)
• Другие автоклавируемые материалы, например, жидкости
Изображение слайда
39
Слайд 39: Режимы стерилизации паровым методом ( автоклавирование )
Изображение слайда
40
Слайд 40: Воздушный (сухожаровой) метод стерилизации
Изображение слайда
41
Слайд 41: Режимы стерилизации воздушным (сухожаровым) методом
Дополнительный режим 160 º — 150 мин
Изображение слайда
42
Слайд 42: Гласперленовый метод стерилизации
Гласперленовый метод предусматривает термическую обработку инструментов в среде нагретых стеклянных шариков при температуре 190-250°С в гласперленовом стерилизаторе
Предназначен для быстрой стерилизации цельнометаллических инструментов, не имеющих полостей, каналов и замковых частей
Изображение слайда
43
Слайд 43: Гласперленовый метод
В стоматологической практике он используется для экспресс-стерилизации мелких изделий
Изображение слайда
44
Слайд 44: Жидкостной метод
Химическая или холодная стерилизация, стерилизующим агентом является раствор какого-либо химического средства, обладающего сильным дезинфицирующим действием.
Изображение слайда
45
Слайд 45: Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Класс А. Неопасные отходы
Отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными, нетоксичные отходы
Пищевые отходы всех подразделений ЛПУ. кроме инфекционных (в том числе кожно-венерологических)
Мебель, инвентарь, неисправное диагностическое оборудованиегчге содержащее токсичных элементов
Неинфицированная бумага, смет, строительный мусор и т.д.
Изображение слайда
46
Слайд 46: Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Класс Б. Опасные (рискованные) отходы Потенциально инфицированные отходы
Материалы и инструменты, загрязненные выделениями, в том числе кровью
Выделения пациентов. Патологоанатомические отходы. Органические операционные отходы (органы, ткани и т.п.)
Все отходы из инфекционных отделений (в том числе пищевые)
Отходы из микробиологических лабораторий, работающих с микроорганизмами 3-4-й группы патогенности
Биологические отходы вивариев
Изображение слайда
47
Слайд 47: Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Класс В. Чрезвычайно опасные отходы
Материалы, контактирующие с больными особо опасными инфекциями.
Отходы из лабораторий, работающих с микроорганизмами 1—4-й группы патогенности.
Отходы фтизиатрических, микологических больниц.
Отходы пациентов с анаэробной инфекцией
Изображение слайда
48
Слайд 48: Классификация отходов лечебно-профилактических учреждений
Класс Г. Отходы, по составу близкие к промышленным
Просроченные лекарственные средства, отходы от лекарственных и диагностических препаратов, дезередства, не подлежащие использованию, с истекшим сроком годности
Цитостатики и другие химпрепараты
Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование
Класс Д. Радиоактивные отходы
Все виды отходов, содержащие радиоактивные компоненты
Изображение слайда
49
Последний слайд презентации: АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА В СТОМАТОЛОГИЧЕСКИХ КАБИНЕТАХ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ: Спасибо за внимание!
Изображение слайда
Asepsis — обзор | Темы ScienceDirect
11.6 Группа по безопасности воды: интегрированный или многомодальный подход
Линдси и Холи (2006) определили, что медицинские работники должны знать относительно образования, развития и контроля бактериальных биопленок в системах водоснабжения здравоохранения и загрязнения поверхностных резервуаров в клинические условия. Weber et al. (2010) и другие также указывают на важность интеграции понимания резервуаров патогенов, передающихся через воду, от пациента к пациенту (Anaissie et al. 2002; Reuter et al. 2002; Thuong et al. 2003; Алуш и др. 2006; Petignat et al. 2006; Weber et al. 2010) и медицинский работник / клиническая среда, к которой часто прикасаются медицинские работники и уязвимые места пациентов, заражение медицинских устройств (Boyce 2007; Carling and Bartley 2010; Dancer 2009; Dancer and Carling 2010; Wang et al. 2010).
Интеграция понимания контаминации окружающей среды пациента и эпидемиологии организма, а также моделей клинического риска и исходов инфекции имеет решающее значение в борьбе за микробную безопасность и для обеспечения эффективной оценки риска инфицирования, предотвращения и осуществления контроля риска.Это требует подходящей среды, подходящей для оказания специализированной помощи в отделении интенсивной терапии, внедрения передовых клинических практик и разработки эффективного управления водной системой, мониторинга качества воды, как описано в HTM 01-04 (DH, 2006) и DH (2012c, 2013a), а также руководства. соблюдать действующие требования «Гигиенического кодекса Великобритании» для программ профилактики инфекций (DH 2010a).
«Гигиена рук является краеугольным камнем профилактики инфекций и борьбы с ними», и недавний пересмотр руководства ВОЗ по гигиене рук (2011 г.) подчеркивает его важность с точки зрения правильной и последовательной передовой практики для персонала в ключевых пациентах и окружающей среде контакты.Документ ВОЗ также включает дополнительное рассмотрение качества воды, которое отвечает требованиям микробиологической безопасности для служебных целей. Например, при предоставлении дополнительных услуг по уходу, где для обеспечения безопасности пациента необходим высокий уровень микробной безопасности воды. Этот документ, поддерживаемый другими, также подчеркивает важность правильных ресурсов для персонала при мытье рук и использовании спиртосодержащих средств дезинфекции рук в нужном месте для легкого доступа персонала для обеспечения более строгого соблюдения гигиены рук (Hugonnet et al. 2004; Gould et al. 2008).
Неудобно расположенная раковина для мытья рук, неудобное управление на локтях, краны без рук и «дружественные для кожи» химические средства для мытья рук признаны одними из основных причин несоблюдения персоналом правил гигиены рук (Larson and Killien 1982; Pittet et al. 2000; ВОЗ 2009). Записка о медицинских учреждениях (HFN) 30 Инфекционный контроль в искусственной среде (DH 2002) сейчас приостановлен HBN 00-09 (DH 2013b, стр. 30), оба содержат рекомендацию о том, что отделения расширенной медицинской помощи должны иметь «в идеале одну клиническую руку». умывальник в передней части каждого спального места ».Интересно, что в настоящее время продолжаются дискуссии о том, что существует такая избыточная вместимость раковин для мытья рук, что некоторые из них действительно используются недостаточно, что само по себе может приводить к микробной колонизации и образованию биопленки и лечебным действиям с использованием аэраторной микрофильтрации. Один CWHB на пациента подтвержден в примечаниях к центрам для мытья рук и изоляторам (DH 2003a). Совсем недавно вопрос о дизайне, количестве и размещении CWHB был повторно рассмотрен после успеха кампаний «Спасение жизней» и «Очистите свои руки», в которых были представлены средства для чистки рук с использованием спирта (DH 2002).В документе HBN 00-09 (DH 2013b) 2013 года отмечается новая осведомленность об оценке риска с размещением CWHB в тех местах в отделениях интенсивной терапии, где они, возможно, используются недостаточно, или создают эффективную тупиковую зону, тем самым открывая рассмотрение местным лицам, принимающим решения, этого более широкого контекста. Точно так же возросла осведомленность о загрязнении водоснабжения в CWHB и конструкции выпускного отверстия или аэратора благодаря пониманию возможных опасностей конструктивных недостатков в трубопроводе и доступной площади поверхности кранов; и возможность для кранов удерживать остаточную воду (Merrer et al. 2005; Hota et al. 2009; Wang et al. 2009; DH 2010c, d, 2013a; Войска 2012). Кроме того, имеются доказательства преимуществ использования утопленного бассейна, что снижает опасность разбрызгивания крана и слива, конструкция и расположение термостатических смесительных клапанов (TMV), а также материалы гибких шлангов, которые не поддерживают рост микробов, как подчеркивается в предупреждении DH (DH 2010c, 2010e, 2013a). ) в результате отчета DH об обзоре доказательств, касающихся загрязнения водопроводных кранов для умывальников с дополнительными медицинскими приборами псевдомонад (DH 2012b).Качество водной системы, ее конструкция, техническое обслуживание и отбор проб воды, связанные с лабораторным надзором за клиническими образцами пациентов в лабораторных условиях, являются неотъемлемой частью микробиологически безопасного поддержания качества воды и способствуют раннему выявлению возможных вспышек передаваемых через воду инфекций. В настоящее время рутинный эпиднадзор за патогенными микроорганизмами, передающимися через воду, на базе лабораторных отделений не является обязательным, и практика варьируется в разных отделениях усиленной медицинской помощи в соответствии с местной оценкой риска профилактики инфекций (см. Также разделы 11.2, 11.4 и 11.5).
В клинической практике полностью интегрированная программа или «мультимодальный» подход требует обучения многопрофильного персонала по профилактике инфекций, чтобы он был проинформирован о риске патогенов, передающихся через воду, и повысил осведомленность о резервуарах медицинской помощи (как указано выше). Это напрямую связано с подходом нулевой терпимости к предотвратимым инфекциям, передающимся через воду; и соблюдение основных передовых методов, таких как правильная и постоянная гигиена рук, и внедрение высокоэффективных мероприятий по спасению жизней (HII), использование надлежащего пакета услуг (DH 2007).
Эти 12 инструментов HII поддерживают правильное соблюдение правил асептики, антисептики и гигиены пациента с правильным удалением воды, используемой для гигиены пациента, например не в CWHBs и безопасности пациентов в следующем отношении:
- •
оптимизированное размещение и управление использованием инвазивных медицинских устройств, а также постоянный уход с использованием соответствующих «пакетов услуг» и аудита приверженности;
- •
высокие стандарты экологической очистки и дезактивации оборудования; и
- •
использование изолированного ухода и правильно применяемые барьерные меры и все CWHB, должным образом расположенные и регулярное использование (для очистки кранов перед раковиной) (включая внимание к предотвращению загрязнения любой микрофильтрации аэратора, если она используется).
Интеграция личной гигиены пациента Непосредственное загрязнение окружающей среды сводит к минимуму перекрестное загрязнение от пациента к пациенту и от среды к пациенту. Там, где это также поддерживается высокочастотной очисткой с использованием мер по повышению эффективности очистки, вместе этот комплексный подход к профилактике инфекций и борьбе с ними, как было показано, снижает ИСМП, включая патогены, передающиеся через воду (Национальное агентство по безопасности пациентов, 2009; Weber и др. 2010; Dancer 2009 ; Танцовщица и Карлинг 2010).
Патогены, передающиеся через воду, и профилактика инфекций — сложная область безопасности пациентов, в которой появляется понимание в результате проспективных эпидемиологических исследований; доказательства клинической практики; руководство медицинской инженерией и междисциплинарная совместная работа демонстрируют потенциал воздействия на ИСМП, включая патогены, передающиеся через воду. Дальнейшие исследования методов микробиологического надзора, отбора проб и молекулярного типирования для выявления причинно-следственной связи между инфекцией пациента, приобретенной в результате перекрестного заражения через клиническую среду, оборудование, дизайн интенсивной терапии и систему водоснабжения, являются постоянной проблемой (Anaissie et al. 2002; Weber et al. 2010). Оптимизация встроенной конструкции для расширенного ухода, включая соответствующее количество CWHB, размещение и управление водной системой, является ключом к качеству воды и реализации всего разумного и практичного для оптимизации предотвращения предотвратимых инфекций, передаваемых через воду. Для обеспечения безопасности пациентов в этих важнейших сферах здравоохранения необходимо также учитывать более широкую картину экономической эффективности NHS и экологической устойчивости.
Асептика в стоматологическом кабинете лаборатория
Автор Мэри Говони , CDA, RDA, RDH, MBA
Лаборатория в стоматологическом кабинете — это область, которую часто упускают из виду из-за протоколов инфекционного контроля, но есть много возможностей для перекрестных действий. заражение и потенциальная передача болезней.В идеале лаборатория должна располагаться отдельно от зоны стерилизации инструментов. Но в некоторых помещениях ограниченное пространство требует, чтобы лаборатории и зоны стерилизации находились в одном помещении. В этом случае лабораторные функции не должны располагаться в том месте, где инструменты извлекаются из стерилизатора и помещаются на хранение.
Ключевыми проблемами перекрестного загрязнения в лаборатории являются: безопасное обращение с оттисками для заливки в офис или отправки в лабораторию; дезинфекция протезов, отправляемых во внешнюю лабораторию, таких как зубные протезы, частичные протезы, коронки и мосты; и предотвращение перекрестного загрязнения за счет использования полировальных (тряпичных) кругов и других приспособлений.
Во время процедур члены бригады обычно выносят оттиски и другие загрязненные предметы на место в зараженных перчатках. Члены группы должны быть осторожны, чтобы не прикасаться к поверхностям и не извлекать предметы из ящиков и шкафов, надев загрязненные перчатки. Оттиски необходимо промыть и продезинфицировать перед заливкой в офис или перед отправкой во внешнюю лабораторию. Этого легко добиться, обработав оттиск дезинфицирующим средством для поверхностей или погрузив его в дезинфицирующее средство, в зависимости от того, какое из этих средств наиболее совместимо с типом оттискного материала.
Самым хрупким материалом, конечно же, является альгинат, хотя сейчас существуют отличные виниловые оттискные материалы, которые могут заменить менее стабильные альгинаты. Эти продукты включают AlgiNot от Kerr, AlginX от Caulk / DENTSPLY и Position Penta от 3M ESPE. Хотя внешняя лаборатория будет дезинфицировать предметы по мере их получения, перед обработкой требуется, чтобы все предметы были продезинфицированы перед отправкой из офиса. Если вы не уверены, какие дезинфицирующие растворы или методы использовать для протезов, проконсультируйтесь со своим лаборантом о совместимости продуктов и материалов.
Предметы для отделки и полировки в лаборатории, предназначенные для использования с лабораторным токарным станком и пемзой, не следует использовать повторно для нескольких пациентов, поскольку они могут быть загрязнены слюной и, возможно, кровью. Выстелите противень фольгой или пластиком и выбросьте пемзу после использования, чтобы исключить возможность перекрестного загрязнения. Тряпичные колеса также не следует использовать для нескольких пациентов. Тряпку следует выбрасывать после каждого пациента или тщательно промыть и поместить в стерилизатор. Колеса Pure Buff Foam Wheels от Jordco являются отличной альтернативой тряпичным колесам и являются одноразовыми, чтобы предотвратить перекрестное загрязнение.
Ленточные оправки и полировальные круги следует утилизировать после использования, так как они не могут быть эффективно очищены и стерилизованы. Боры, такие как акриловые боры для обрезки, следует стерилизовать между использованием, поскольку они также могут быть загрязнены слюной или кровью из-за контакта с предметами, которые были во рту пациента. Некоторые лабораторные боры имеют стальные стержни и могут ржаветь при обработке в паровом стерилизаторе. Для этих вещей может быть более уместным сухой жар.
Также важно отметить, что OSHA требует наличия защитного экрана на лабораторном токарном станке для защиты членов бригады, использующих токарный станок.Это также предотвращает разбрызгивание потенциальных загрязнителей в лаборатории. Поверхностные дезинфицирующие средства следует использовать на поверхностях окружающей среды в лаборатории всякий раз, когда есть вероятность заражения от прикосновения к зараженным перчаткам или от контакта с зараженными предметами.
Всегда полезно пересматривать протоколы профилактики инфекций, чтобы убедиться, что все в команде используют соответствующие методы асептики. Эти ключевые области лаборатории важно проанализировать.
Мэри Говони, CDA, RDA, RDH, MBA , является владельцем консалтинговой компании Mary Govoni & Associates, расположенной в Мичигане.Она является членом Организации по безопасности, асептике и профилактике. С ней можно связаться по адресу [email protected] или www.marygovoni.com.
Другие статьи DE
Прошлый DE выпускает
Асептика поверхности окружающей среды: принципы, применение и проблемы | Том 5, выпуск 3
Inside Dentistry
Март 2009 г.
Том 5, Выпуск 3
Джон А. Молинари, доктор философии
Химические дезинфицирующие средства служат очень полезной цели в борьбе с инфекциями, потому что многие операционные поверхности обычно покрываются слюной, кровью, экссудатом и другим мусором, и эти поверхности требуют очистки с соответствующей дезинфекцией, когда это не так. возможно использование одноразовых чехлов.За прошедшие годы стал доступным ряд составов и технологий, и области экологической асептики по-прежнему уделяется особое внимание в рекомендациях Центров по контролю за заболеваниями (CDC) и Американской стоматологической ассоциации (ADA) по инфекционному контролю. 1-7
Стоматологические работники (DHCW) сталкиваются с выбором множества продуктов и, к сожалению, иногда сталкиваются с информацией, которая может сбивать с толку, что затрудняет принятие решения о покупке. Несмотря на обширную литературу по этой теме, многие из распространенных вопросов, которые задают врачи и их клинический персонал, сосредоточены вокруг того, какой тип и / или марку дезинфицирующего средства или одноразового покрытия покупать.В целях решения представительных проблем в нижеследующем обсуждении будет использоваться формат вопросов и ответов для рассмотрения, среди прочего, основных принципов экологической асептики, классификации и регулирования коммерчески доступных продуктов, а также использования продуктов и неправильного использования.
Вопрос № 1
Как поверхности окружающей среды и дезинфекция вписываются в схему классификации загрязненных предметов?
Стандартная система классификации химических стерилизующих и дезинфицирующих средств была первоначально предложена Сполдингом в 1972 году, 8 с последующей обновленной модификацией в 1991 году. 9 Предметы и оборудование для ухода за пациентами подразделяются на одну из трех категорий: критические, полукритические и некритические, как показано в таблице 1. 7 Поверхности окружающей среды включены в категорию некритических предметов и далее подразделяются на хозяйственные и клинические. -контактные поверхности (таблица 2) в соответствии с последней модификацией системы Spaulding для классификации дезинфицирующих средств. 10 Для каждой категории требуются разные уровни инфекционного контроля в зависимости от: (1) возможности контакта с пациентом; (2) частота контакта рук; и (3) возможное загрязнение поверхности веществами организма или патогенами.
Кроме того, классы использования химических гермицидов связаны с их возможностями стерилизации или дезинфекции. 7 Классы здесь включают эффективность против вегетативных бактерий, туберкулезных микобактерий, спор грибов, липидных и нелипидсодержащих вирусов и бактериальных эндоспор.
Вопрос № 2
Почему Агентство по охране окружающей среды (EPA) требует уничтожения Mycobacterium tuberculosis (т. Е. Туберкулоцидного препарата) в качестве эталона для дезинфицирующих средств среднего уровня?
M tuberculosis — это высокорезистентная вегетативная кислотоустойчивая палочка, которая используется в качестве стандарта устойчивости для дезинфицирующих средств из-за ее врожденной устойчивости к химическим гермицидам.Поэтому он используется как «маркерная» бактерия, а не из-за какого-либо риска заражения туберкулезом из-за зараженной столешницы или легкой ручки. Убийство M tuberculosis также уничтожает другие патогены профессионального значения, включая вирус гепатита B (HBV), вирус гепатита C (HCV), вирус иммунодефицита человека (ВИЧ), вирусы простого герпеса, вирусы гриппа и Staphylococcus aureus .
Вопрос № 3
Существуют ли критерии выбора и надлежащего использования средства для дезинфекции поверхностей?
Основная посылка, которую следует запомнить, — это следующая фраза: «Важно не то, какой продукт вы используете, а то, как вы его используете.Это утверждение следует объединить с основной аксиомой инфекционного контроля: сначала очистить. Эффективность рассматриваемых продуктов также следует сравнивать с опубликованными критериями для идеального агента (Таблица 3). 11 Не нужно много времени, чтобы понять, что ни один из доступных продуктов не соответствует всем критериям. Хотя не существует единственного лучшего дезинфицирующего средства, ряд спреев, пен и салфеток получили регистрацию EPA в качестве туберкулоцидных дезинфицирующих средств на уровне больниц.Выбор часто сводится к тому, будут ли люди в практике использовать продукт в соответствии с предписанными инструкциями на этикетке. Для достижения максимальной эффективности дезинфицирующего средства необходимо соблюдать основные концепции, такие как требования к очистке.
Вопрос № 4
Каковы наиболее частые случаи неправильного использования продуктов, используемых для асептики поверхности окружающей среды?
Вероятно, по этой теме могут быть продолжительные дебаты, независимо от того, какую группу людей спрашивают на форуме.Здесь недостаточно места для обсуждения всех возможностей, поэтому автор представит лишь некоторые из наиболее частых злоупотреблений дезинфицирующими средствами, с которыми он столкнулся.
- Забыть, что эффективная дезинфекция поверхностей требует первоначальной очистки загрязненных поверхностей для удаления бионагрузки. Первый этап процедуры «спрей-протирка-спрей» для жидкостей и процедуры «протереть-выбросить-протереть» при использовании одноразовых салфеток имеет решающее значение. Очистка — это удаление видимой почвы и органических остатков, что приводит к уменьшению количества микроорганизмов и удалению органических веществ.Очистка удаляет подавляющую часть биологического мусора, который содержит потенциальные патогены.
- Чрезмерная аэрозолизация спреев, вызывающая респираторные, глазные, аллергические и / или кожные раздражения.
- Увеличивает область применения одноразовых дезинфицирующих салфеток. Большинство производителей этого типа продуктов указывают на этикетках, что используют несколько салфеток, чтобы обработанные поверхности оставались влажными в течение необходимого периода времени. К сожалению, некоторые сотрудники могут использовать одну или две салфетки на большой площади поверхности, не осознавая, что противомикробный агент в салфетке больше не активен или находится в достаточной концентрации.Это может привести к простому распространению биоразлагаемого мусора на другие поверхности.
Резюме
Соблюдение нескольких основных принципов и указаний может помочь в выборе и безопасном использовании химических дезинфицирующих средств. К ним относятся: (1) на этикетке продукта должен быть указан номер EPA; (2) продукт должен использоваться в строгом соответствии с инструкциями, напечатанными на этикетке; и (3) для дезинфицирующих средств для поверхностей, используемых на загрязненных клинических контактных поверхностях, на этикетке продукта должно быть указано, что оно туберкулоцидное.Эти руководящие принципы остаются применимыми, даже если они были сформулированы до появления многих текущих продуктов.
Ссылки
1. Совет Американской стоматологической ассоциации по стоматологическим материалам и устройствам, Совет по стоматологической терапии. Инфекционный контроль в стоматологическом кабинете. Дж. Ам Дент Асс . 1978; 97: 673-677.
2. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Рекомендуемые методы инфекционного контроля для стоматологии. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 1986; 35 (RR-8): 1-12.
3. Советы Американской стоматологической ассоциации по стоматологическим материалам, инструментам и оборудованию, стоматологической практике и стоматологической терапии. Рекомендации по инфекционному контролю для стоматологического кабинета и зуботехнической лаборатории. Дж. Ам Дент Асс . 1988; 116: 241-248.
4. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Руководство по инфекционному контролю в стоматологии. MMWR Morb Mortal Wkly Rep . 1993; 42 (РР-8) 1-12.
5.Американская стоматологическая ассоциация. Рекомендации по инфекционному контролю для стоматологического кабинета и зуботехнической лаборатории. Дж. Ам Дент Асс . 1992; 123: 1-8.
6. Советы Американской стоматологической ассоциации по научным вопросам и стоматологической практике. Рекомендации по инфекционному контролю для стоматологического кабинета и зуботехнической лаборатории. Дж. Ам Дент Асс . 1996; 127: 672-680.
7. Центры по контролю и профилактике заболеваний. Руководство по инфекционному контролю в стоматологических учреждениях. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2003; 52 (RR-17) 1-66.
8. Сполдинг EH. Химическая дезинфекция и антисептика в больнице. J Hosp Res. 1972; 9: 5-31.
9. Фаверо М.С. и Бонд WW. Стерилизация, дезинфекция и антисептика в больнице. В: Руководство по клинической микробиологии . 5-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: Американское общество микробиологии; 1991; 183-200.
10. Фаверо М.С. и Бонд WW. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов.В: Блок СС. Дезинфекция, стерилизация и консервация . 5-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Липпинкотт Уильямс и Уилкинс; 2001; 881-917.
11. Молинари Дж. А., Кэмпбелл М. Д., Йорк Дж. Сведение к минимуму потенциальных инфекций в стоматологической практике. J Mich Dent Assoc. 1982; 64: 411-416.
Об авторе
Джон А. Молинари, доктор философии
Профессор и председатель
Департамент биомедицинских наук
Школа милосердия Университета Детройта
Детройт, Мичиган
Основные правила асептики и антисептики для начинающих
Основные правила асептики и антисептики в стоматологии
Как известно, сотни пациентов могут посещать один стоматологический кабинет каждый день.Однако такую процедуру, как установка дентальных имплантатов, следует проводить только в стерильных условиях. Если в процессе имплантации стоматолог заразит рану, это поставит под угрозу не только успех операции, но и здоровье пациента. По этой причине все стоматологи, устанавливающие зубные имплантаты, должны не только знать, но и соблюдать основные правила асептики и антисептики.
Правила асептики и антисептики — основные меры, которые могут предотвратить распространение различных инфекций в стоматологическом кабинете.
Асептика — один из способов предотвращения инфекции и заражения микроорганизмами раны или мягких тканей во время стоматологических процедур.
Антисептика — это способ борьбы с инфекцией, которая уже находится в тканях. Кроме того, антисептик — это еще и процедура устранения гнойных и анаэробных процессов.
Стоматолог должен соблюдать оба стандарта во время стоматологического лечения, потому что клиника — это место с высокой степенью заражения бактериальными, грибковыми, вирусными заболеваниями и даже вирусами ВИЧ.
Все инструменты и материалы в стоматологическом кабинете должны соответствовать определенным стерильным условиям. Необходимо запечатать все комплекты и подготовить операционный стол по правилам. Если стоматолог выявил пациента, инфицированного туберкулезом, СПИДом и гепатитом, посещение таких пациентов должно быть назначено позже, если это не является неотложным случаем.
О таком пациенте следует заранее сообщить персоналу клиники. В этом случае сотрудники стоматологической клиники должны внимательно следить за режимом личной безопасности.Все манипуляции необходимо проводить в плотных хирургических перчатках или в двух парах обычных перчаток. Кроме того, рекомендуется использовать маску и быть особенно осторожными с режущими или колющими инструментами.
Все инструменты одноразового использования, такие как лезвия скальпеля и иглы для инъекций, должны быть помещены в контейнер для защиты рук персонала от повреждений.
Для защиты одежды стоматологи могут использовать различные специальные материалы. Не только стоматологи, но и его или ее помощники должны использовать специальные антисептические средства и одежду, такую как защитные очки и медицинские колпачки.
В конце рабочего дня стоматологический кабинет должен быть очищен и облучен УФ-лампой.
Используя эти правила асептики и антисептики, вы защитите не только себя от инфекции, но и персонал стоматологического кабинета и пациентов.
Стерильное поле в стоматологической хирургии
Занимаясь стоматологической практикой, мы ежедневно подвергаемся воздействию огромного количества вирусов и бактерий, которые могут вызывать инфекции. Это еще более важная проблема во время хирургических операций (и дентальной имплантации) , которые включают разрезы тканей и более инвазивные действия.
Важно помнить, что все поверхности, которые нас окружают, покрыты микроорганизмами, которые могут инфицировать хирургическую рану во время операции, а вызывают инфекцию , что имеет негативные последствия как для успеха операции, так и для здоровья пациента. Эти микроорганизмы также могут вызывать различные перекрестные инфекции между пациентами и от пациента к врачу, и наоборот .
С изобретением и использованием зубных имплантатов асептические методы постепенно используются в области стоматологии.Сегодня, , благодаря исчерпывающему протоколу биобезопасности и созданию стерильного поля, можно управлять риском заражения и сводить его к минимуму.
Многие интра- и послеоперационные осложнения можно было бы избежать с помощью правильной асептической техники.
Организация пространств и инструментов, соблюдение правильной процедуры чистки рук, халата и перчаток и надлежащая подготовка операционного поля не только предотвратят инфицирование хирургической раны, но и защитят пациентов и операторов от перекрестной инфекции.
При проведении операции мы стараемся иметь как можно меньшее количество микроорганизмов в среде, окружающей пациента. При подготовке к операции разделим комнату на две зоны:
СТЕРИЛЬНАЯ ЗОНА: Здесь будут находиться стерильные материалы и медсестры. Также будет кресло для пациента и стерильные простыни. Там будет стол, накрытый еще одной стерильной салфеткой, куда мы положим хирургические инструменты и все необходимое для операции.Персонал, работающий в этой области, должен был провести хирургический скраб для рук. Несмотря на использование стерильных перчаток, важно мыть руки должным образом.
Обычно есть стерильный помощник по обслуживанию, хотя в более крупных клиниках может быть медсестра. Помощник по стерильной службе отвечает за размещение материала на хирургическом столе и укладку хирургических простыней. Медсестра должна хорошо разбираться в отношениях с хирургом, поскольку они предоставят хирургические инструменты в обычном порядке, а также стоматологические боры и другое оборудование, необходимое для операции.
НЕСТЕРИЛЬНАЯ ОБЛАСТЬ: эта область отделена воображаемой линией. В этой зоне будут находиться нестерильный персонал и медсестры. Роль нестерильного персонала — помочь стерильному персоналу вымыть руки и надеть хирургический халат. Они также отвечают за вскрытие материала в операционном поле и предоставление пациенту защитного колпачка и обуви для операционного поля, а также за предоставление хлоргексидина для жидкости для полоскания рта.
Кроме того, чтобы операция проводилась в наилучших условиях, для операции выбран кабинет:
- необходимо предварительно полностью очистить дезинфицирующим средством, а столешницы должны быть как можно более чистыми
- должен находиться как можно дальше от движения пациентов и нехирургического персонала
- должен иметь закрытые дверцы, чтобы предотвратить циркуляцию аэрозоля, который может загрязнить хирургическую рану
Перед входом в комнату персонал должен надеть чистящую шапочку, чистую обувь и маску.Маску следует плотно прилегать к переносице с защитными очками или защитной сеткой сверху.
Перед операцией очень важно, чтобы весь необходимый материал был уже подготовлен. Письменные протоколы помогут нам не забыть ничего. Помимо всего необходимого оборудования, хирургических инструментов и биоматериалов, нам необходимо иметь всех одноразовых материалов, которые будут использоваться для лечения.
Помимо стерильных простыней, защитных чехлов для шлангов, ирригационных трубок, халатов или колпачков, существуют также стерильные комплекты, которые в основном содержат все необходимое, чтобы вы ничего не забыли. Весь упакованный материал будет помещен в нестерильную зону.
Даже если мы будем использовать перчатки для предотвращения заражения, мы должны учитывать, что перчатки эффективны только в течение ограниченного периода времени. Перчатки, изготовленные из латекса или нитрила, являются лучшими с точки зрения качества и продолжительности использования, , в то время как виниловые перчатки имеют наибольшее количество дефектов из-за их структуры, поскольку именно они больше всего ломаются.
Существует четыре типа мытья рук:
1.Гигиеническая стирка
Это делается с нейтральным мылом и должно выполняться: — перед началом обследования — между одним пациентом и другим — после посещения туалета — перед тем, как надеть перчатки — после прикосновения к грязному или загрязненному материалу.
Вспеньте мыло и потрите все руки и пространство между пальцами, полностью удаляя грязь с ногтей и тщательно промывая. Высушив руки одноразовым бумажным полотенцем для сушки рук, закройте кран листом бумажного полотенца.
2. Антисептическая стирка
Антисептическая промывка состоит из двух этапов. На первом этапе мы выполняем гигиеническую стирку, как описано ранее, а на втором этапе мы используем дезинфицирующее средство на водной основе на спирте для удаления грязи, органических и микробных материалов, как временных, так и постоянных.
3. Промывка спиртовым раствором
Выполняется в местах, где нет водопроводного крана для стандартной ручной стирки.Энергично промойте раствором в течение 30 секунд. Если ваши руки высохнут до этого времени, добавьте еще раствора.
4. Хирургическая промывка
Выполняется перед операцией. Он включает удаление как временной, так и постоянной флоры. Для выполнения хирургической процедуры промывки вам понадобится кран, которым можно управлять с помощью локтя, колена или ступни, одноразовая губка, антисептический скраб на основе повидон-йода или хлоргексидина (исследования показывают, что хлоргексидин более эффективен) и два стерильные полотенца.Идеально было бы использовать одноразовые губки с пропиткой.
Вымыв руки, наденьте халат. Хирургические халаты складываются сзади, так что нестерильная часть (касающаяся тела) является первой частью, которую мы можем коснуться. Есть два способа надеть халат:
- Примеряем на себя: Двумя пальцами расстегните платье и просуньте руки в рукава. Завяжет на спине нестерильный помощник, так как эта область считается нестерильной.
- Заставить кого-нибудь помочь вам: Помощник по стерилизации, уже одетый, раскроет халат для другого человека, чтобы помочь ему его надеть. Помощник по циркуляции завяжет сзади галстук.
Войдите в операционную, держа руки вверх. Нестерильный ассистент откроет нам хирургическую простыню и стерильный халат. Хирургический халат предварительно сложен наружу, чтобы его было легче надеть на себя.
Проденьте руки в платье, не встряхивая его, и попросите помощника завязать сзади галстук.Область сзади считается нестерильной. Затем помощник откроет нам перчатки, оставив внутреннюю упаковку открытой. Мы откроем его, как книгу, а перчатки оставим открытыми. Большим и указательным пальцами одним быстрым движением сдвиньте руку, взявшись за край перчатки за сложенную манжету, и вставьте руку, оставляя манжету повернутой вниз на руку. Вставьте эту руку в складку другой перчатки, чтобы схватить ее, затем одним быстрым движением вставьте вторую руку в перчатку.
На этом этапе вы можете прикасаться только к стерильным вещам. Это очень важно. Вы не можете делать такие вещи, как поправлять маску или прикасаться к любым поверхностям, которые не были закрыты. Если вы это сделаете, вам нужно будет надеть новые перчатки.
Поместите стерильную салфетку на поверхность, с которой вы будете работать. Нестерильный помощник вскроет материал. Поместите материал в стерильное поле. Не прикасаясь к отсасывающему устройству, введите стерильную хирургическую канюлю.
Наденьте защитные крышки на шланги, не прикасаясь к нестерильным предметам. После этого вы не сможете вернуть его на обычный кронштейн, так как всасывающее устройство будет загрязнено. Заклейте верхнюю часть клеем, чтобы она не упала.
Чтобы покрыть области обычного использования, такие как легкие ручки и сверла для имплантатов, есть несколько прозрачных липких стерильных пленок, которые нам помогут.
Поместите стерильную ирригационную трубку в угловой наконечник, и нестерильный помощник подключит ее к физиологическому раствору и сверлу для имплантации.В случае использования внешней ирригационной трубки важно знать, что физиологический раствор будет загрязнен при первом введении шприца для впитывания физиологического раствора. Доступны дозаторы физиологического раствора, которые обеспечивают непрерывное орошение, не загрязняя физиологический раствор каждый раз, когда вы вводите его.
Пришло время вывести пациента в стерильное поле. Перед тем, как войти в комнату, нестерильный ассистент предоставит пациенту чистую обувь, халат и чистящую шапочку. При входе пациент уже должен быть одет.
В комнате пациенту дадут ополаскиватель для рта с 0,12% хлоргексидином для полоскания в течение 60 секунд. Затем периоральная область будет очищена хлоргексидином или повидон-йодом. Для этого нанести раствор на марлю и выполнять внешние движения от губ к периферической зоне.
Сегодня, благодаря новым продуктам, доступным на рынке, пациентов можно задрапировать более безопасно и с помощью нескольких простых движений. Традиционные процедуры были заменены одноразовыми стерильными простынями . Доступны простыни с оконными проемами с клеем , , которые плотно прилегают к месту, где вы собираетесь работать. Идеальным решением было бы использовать стерильную стерильную салфетку с U-образным вырезом и закрепить ее другой салфеткой поверх головы пациента.
Также доступны хирургические простыни с окном , которые имеют прозрачное окошко над глазами. Это позволяет пациентам видеть, что происходит вокруг них, не позволяя им нервничать.
Во время операции очень важно не прикасаться к чему-либо, что не покрыто стерильным материалом. Двери должны быть закрыты, и лучше не допускать проникновения персонала извне. Весь персонал в комнате должен носить чистую обувь, маску и чистящую шапочку.
После завершения операции все загрязненные простыни и халаты должны быть сняты. Скальпели и острые предметы следует помещать в соответствующие контейнеры. Маска должна быть последним элементом, который вы удаляете. Сначала развяжите нижнюю завязку, затем верхнюю.Если сделать наоборот, маска упадет назад и загрязненная часть коснется шеи.
Все автоклавируемые материалы проходят тщательную дезинфекцию, промывку и стерилизацию. Помещение проветривается, а мебель и всасывающие трубки тщательно очищаются.
Все эти действия упростят выполнение операции надлежащим и правильным образом. , предотвращают загрязнение используемых биоматериалов. перед попаданием в организм, что приведет к неудаче операции.
Кроме того, мы защищаем пациента от любого потенциального загрязнения хирургической раны . Бактерии, которых нет в ротовой полости в нормальных условиях, могут заразить хирургическую рану и вызвать серьезные послеоперационные осложнения, которые могут привести к серьезным проблемам.
Помимо защиты пациента, , мы также защищаем себя, , нося соответствующую одежду и покрывая большую часть поверхностей в комнате, мы защищаем всех других пациентов, которые позже будут сидеть в кресле.
Роль асептики в эндодонтии | Внутренняя стоматологическая помощь | Ноябрь / декабрь 2010 г.
Медицинские словари описывают асептику как процесс удаления патогенных организмов или защиты от заражения такими организмами. Таким образом, асептические методы представляют собой особые стандарты, разработанные для снижения возможности заражения микроорганизмами во время инвазивных медицинских процедур. Современная история асептики хирургического поля восходит к Джозефу Листеру. 1 Ознакомившись с работой Луи Пастера о роли микроорганизмов в ферментации, Листер разработал методы промывания ран карболовой кислотой (фенолом) и наблюдал резкое снижение заболеваемости гангреной в послеоперационном периоде. Его знаменательная статья 1867 года под названием «Антисептические принципы хирургической практики» заложила основы асептических методов в современной хирургии, включая очистку хирургических инструментов фенолом и даже ношение перчаток. Однако двумя десятилетиями ранее венгерский врач Игнак Земмельвейс, которого называли «спасителем матерей», независимо обнаружил, что простое действие хирурга, моющего руки раствором хлорированной извести перед операцией, снижает частоту послеродовой лихорадки в акушерских клиниках. 2 Это открытие было особенно впечатляющим, потому что оно предшествовало постулату Роберта Коха и зародышевой теории болезней. 3 Слишком рано для своего времени, Земмельвейс подвергся насмешкам со стороны своих современников за его, казалось бы, странный дооперационный ритуал. Однако со временем роль микроорганизмов в патогенезе заболевания и заживлении ран стала ясна, и асептические методы, относящиеся ко всем этапам хирургии и заживления, стали неотъемлемой частью хирургического протокола и клинической медицины.
Со временем в различных областях медицины была обнаружена роль инфекционных микроорганизмов в патогенезе соответствующих им тканей и систем органов. В эндодонтии, хотя бактериальная инфекция пульпы постулировалась как одна из причин пульпы и периапикального заболевания, 4 только в исторической статье Какехаши и Стэнли в 1965 году говорилось об исключительной роли микроорганизмов в патогенезе пульпы. стало ясно. 5 Это исследование доказало, что в отсутствие бактерий механическое обнажение пульпы зуба всегда приводит к образованию и восстановлению дентинного мостика вместо некроза пульпы.Более того, более поздние исследования показали, что неэффективность традиционной эндодонтической терапии также связана с возобновлением роста бактерий в корневых каналах после эндодонтического лечения. 6,7
В результате знаменательного исследования Какехаши эндодонтическая триада чистки, придания формы и обтурации теперь может быть рассмотрена в другом свете. Триаду можно свести к тем наборам методов, которые связаны с процессом дезактивации корневых каналов (процедуры очистки и формирования), и к тем, которые имеют дело с предотвращением повторного заражения (обтурация и коронковая пломба).
Почему не работают важные дела?
Как только стала ясна роль бактерий в эндодонтических инфекциях и неудачах традиционной эндодонтической терапии, возник логичный вопрос. Если бактерии были причиной неудач в случаях неудачного традиционного эндодонтического лечения, почему бывают случайные неудачи в лечении в полностью жизненно важных эндодонтических случаях — например, после предпротезной эндодонтической терапии? Очевидно, что такие случаи лишены бактериального содержимого на момент лечения. Итак, откуда берутся бактерии, вызывающие отказ в таких случаях? Коронковая утечка может быть механизмом неудачи при длительном повторном заражении корневых каналов, но для тех жизненно важных случаев, которые не удается вскоре после лечения со стойкими послеоперационными симптомами, должно быть другое объяснение.Если историческое исследование Kakehashi верно, можно сделать вывод, что эндодонтический отказ в жизненно важных случаях, который приводит к периапикальной инфекции, вызван бактериальным заражением операционного поля во время процедуры корневого канала, что приводит к проникновению микробов в ранее стерильную систему корневых каналов. В противном случае, если терапия корневого канала проводилась в полностью асептической среде, как у беспроблемных крыс Какехаши, теоретически не должно быть никаких вредных последствий для жизненно важного покрытия пульпы, пульпотомии или даже отсутствия целого канала, такого как второй мезиальный канал. буккальный канал полностью жизнеспособного (стерильного) зуба, подвергающегося терапии корневого канала.
Хотя создание полностью стерильного поля клинически невозможно, снижение микробной нагрузки и минимизация загрязнения поля во время обычных эндодонтических случаев являются обязательными для повышения вероятности успеха. В этой статье делается попытка рассмотреть некоторые потенциальные источники загрязнения и перекрестного заражения во время традиционной безоперационной терапии корневых каналов. Стоматологи и ассистенты, соблюдающие строжайший протокол асептики, должны логически улучшить исход болезни, уменьшив контаминацию каналов во время терапии корневых каналов.
Загрязнение и перекрестное заражение
Для целей этой статьи контаминация определяется как попадание бактерий изо рта пациента в стерильное операционное поле, а перекрестное заражение — это попадание бактерий из другого источника, кроме пациента в операционное поле. Поскольку все биологические поверхности, включая кожу, слизистую оболочку, слизистую оболочку дыхательных и пищеварительных трактов, а также многие биологические выделения, такие как слюна и трещинная жидкость, полны собственной бактериальной флорой человека, заражение операционного поля или перекрестное загрязнение могут легко возникают в результате контакта с такими поверхностями и жидкостями на различных этапах хирургической процедуры.
Предотвращение перекрестного заражения
Первый шаг к пониманию того, как вести себя стоматологически Требуемый протокол предотвращения перекрестного заражения в стоматологическом кабинете адекватно объяснен посредством практики универсальных мер предосторожности и соблюдения стандартных рекомендованных методов стерилизации и инфекционного контроля Центром по контролю за заболеваниями (CDC), Американской стоматологической ассоциацией (ADA) и Управлением по охране труда (OSHA). 8-10 Однако важно понимать, что уровень асептики, необходимый для предотвращения уровня перекрестного заражения, который может вызвать неэффективность эндодонтического лечения, несколько выше, чем уровень, применяемый для предотвращения передачи инфекционного системного заболевания.В первом случае даже нормальная микробная флора на коже оператора или стоматологической медсестры или физиологических жидкостях, которые в противном случае были бы совершенно безвредными для системного здоровья пациента, потенциально может стать источником антигенной активности внутри корневых каналов пациента. Если такие нормальные компоненты кожной флоры попадают в корневой канал, они потенциально могут вызвать периапикальную инфекцию, если найдут доступ к этим тканям. Это даже наблюдалось по наличию Candida albicans и плесени внутри зубов, не прошедших лечение корневых каналов. 11
Следовательно, соблюдение полной асептики во время хирургической установки и недопущение контакта голой кожи с любой из поверхностей, которые позже будут контактировать с операционным полем — прямо или косвенно через руки в перчатках или ручки инструментов — является очень важно избегать потенциального источника перекрестного заражения (и). Даже вытаскивание перчаток из перчаточного ящика голыми немытыми руками сразу же приведет к заражению перчаток кожными бактериями.Перчатки следует носить предварительно вымытыми руками и только захватывая их за часть манжеты рукава, избегая при этом контакта с остальной частью перчаток (). В качестве альтернативы рекомендуется дезинфекция перчаток спиртом сразу после их ношения, поскольку стандартные смотровые перчатки не являются стерильными (). Практика дезинфекции перчаток на протяжении всей процедуры корневого канала как врачом, так и ассистентом, особенно непосредственно перед обтурацией корневого канала, гарантирует, что эти поверхности остаются чистыми.Это лишь некоторые из множества возможных способов перекрестного заражения. Бригада стоматологов должна активно подумать о других возможных средствах перекрестного заражения в рабочем процессе и найти средства для устранения их возникновения.
Предотвращение заражения
Поскольку собственные бактерии пациента находятся ближе всего к операционному полю, заражение обычно является наиболее распространенным методом инфицирования корневых каналов во время лечения корневых каналов. Следовательно, такие потенциальные пути заражения и способы их предотвращения должны быть главной заботой проницательных практиков.Наиболее значимым методом снижения частоты заражения является соблюдение полной изоляции операционного поля с помощью резиновой перемычки и применение методов, снижающих воздействие собственной трещинной жидкости пациента, слюны, дыхания и кожной флоры.
Изоляция резиновой перемычки является стандартом ухода, и выполнение эндодонтического лечения без перемычки считается небрежностью. 12,13 Важно понимать, что основная функция резиновой перемычки в эндодонтической терапии заключается не в предотвращении вдыхания эндодонтических файлов или упрощении доступа к полю; а скорее предоставить оператору полностью асептическое поле, лишенное микробного содержимого слюны, трещинной жидкости и даже собственного дыхания пациента.В результате изоляционные заменители, которые удерживают язык пациента подальше, такие как хлопок или марля, могут обеспечить, казалось бы, доступное поле, но не являются достаточно асептическими для устранения всех потенциальных эндодонтических патогенов из поля. Прикосновение к соседним зубам за точку опоры загрязняет перчатки, что косвенно загрязняет файлы во время предварительного сгибания файла и манипуляций с другими инструментами во время процедуры.
В идеале, после того, как резиновая дамба установлена и будет получена первичная изоляция, все потенциальные области просачивания слюны вокруг дамбы должны быть заделаны уплотняющим материалом. 14,15 Утечка жидкости из трещин в поле также является потенциальным источником загрязнения. Было показано, что внутриканальный бактериальный состав при инфекциях корневых каналов имитирует состав бактерий, обнаруживаемых в жидкости расщелины. 16 В результате любой доступ к жидкостям из этой области должен быть заблокирован. В идеале резиновая дамба должна быть перевернута, чтобы уменьшить просачивание. На этом этапе рекомендуется дезинфекция поверхности зуба гипохлоритом натрия, так как это повышает общую эффективность и очищает инструментарий корневого канала. 17-20
Важно понимать, что прикосновение к лицу и коже пациента для изменения их положения для рентгена или лучшей визуализации немедленно загрязняет перчатки ассистента стоматолога. Рекомендуется надевать двойные перчатки во время рентгенографии и прикасаться к лицу пациента или менять перчатки после таких инцидентов.
После удаления кариеса и непосредственно перед этапом обнажения пульпы при лечении корневых каналов следует выполнить окончательную изоляцию поля. В это время должна быть установлена хорошо перевернутая резиновая дамба без каких-либо разрывов, а все микроскопические области просачивания между зажимом резиновой дамбы и зубом должны быть заделаны герметиком ().После этого хирургическое поле и зуб могут быть залиты гипохлоритом натрия, и пациент не должен ощущать привкуса отбеливателя. Этот простой тест гарантирует, что вокруг зуба имеется герметичное уплотнение и достигнута окончательная изоляция. На этом этапе можно выполнить пульпэктомию, зная, что присутствует асептическое поле. Проверка этой пломбы на протяжении всей процедуры путем заливки зуба гипохлоритом имеет как преимущества, так и дезинфекцию всех внутренних и внешних поверхностей зуба при одновременной проверке этого важного герметичного уплотнения (и).Если уплотнение повреждено, сначала следует попытаться отремонтировать или заменить перемычку, прежде чем продолжить процедуру корневого канала.
Полное удаление кариеса и герметизация области стержнем или герметиком во время лечения корневых каналов всегда должны быть приоритетом перед началом процедуры пульпэктомии. Ни при каких обстоятельствах в зубе не должно быть кариеса до обработки пульпы. Сначала необходимо удалить все следы кариеса, в том числе дефектные реставрации с потенциальным кариесом под ними, а эти области должны быть обеззаражены и, возможно, восстановлены перед процедурой пульпэктомии.В противном случае существует риск занести полевые бактерии глубоко в корневой канал. В идеале следует использовать раствор, указывающий на кариес, чтобы подтвердить полное удаление кариеса. Проведение терапии корневых каналов при кариесе противоречит всем принципам эндодонтии и противоречит концепции асептики.
Три этапа полевой дезинфекции
Поскольку вероятность заражения полей и перекрестного заражения с негативными последствиями для исхода безоперационной терапии корневых каналов является реальной возможностью, автор классифицировал три отдельных этапа полевой дезинфекции с соответствующими методами для асептического контроля, который может помочь снизить бактериальную нагрузку в операционной и потенциально повысить эффективность.Эти три фазы предшествуют трем клиническим этапам эндодонтии: доступу к пульпе, инструментарию и обтурации, что является клиническим термином для пломбирования и пломбирования. Важно понимать, что если эндодонтическое лечение должно проводиться перед протезированием жизнеспособной пульпы, максимальная асептика требуется на всех трех этапах, так как такие случаи, как правило, стерильны, а присущая им стерильность должна сохраняться на протяжении всей процедуры. Однако, если присутствует кариес или если лечение корневых каналов проводится в нежизнеспособной / некротизированной пульпе, к концу процедуры требуются постепенно более высокие уровни асептики, поскольку дезактивация канала потенциально повторно загрязняет хирургическое поле на протяжении всего процесса очистки и формирования. .
Первым этапом асептического контроля являются методы, используемые непосредственно перед обнажением пульпы и перед инструментальной обработкой корневых каналов. На этом этапе стандартные асептические методы состоят из использования резиновой дамбы и стерильных инструментов. Однако, поскольку анестезия является предварительной и правильная ориентация для доступа к пульпе может потребовать периодического удаления резиновой перегородки в разное время, и поскольку удаление старых пломб и кариеса постоянно загрязняет операционное поле, эта фаза асептики менее важна, чем более поздняя. фазы, которые начинаются после обнажения пульпы.
Поскольку весь кариес должен быть удален во время подготовки доступа, полученное поле снова загрязняется после удаления кариеса высокоскоростным или низкоскоростным наконечником в конце первой фазы асептического контроля. Второй этап асептического контроля отмечен повторной дезинфекцией поля и инструментов (включая ручное зеркало) перед процедурой пульпэктомии. Такого рода дезинфекцию поверхностей лучше всего проводить путем протирания рабочих поверхностей (как зуба, так и резиновой дамбы) раствором гипохлорита или йода.Стоматологическое зеркало, руки врача и ассистента в перчатках и другие инструменты для обследования, которые контактируют со слизистой оболочкой пациента во время обследования и анестезии перед установкой резиновой дамбы и во время удаления кариеса, также загрязнены слюной и кариозным дентином. Эти предметы следует либо снова протереть, либо, в идеале, использовать другой набор инструментов и перчаток (приспособление для доступа) перед обнажением пульпы, а не после ().
Работа с инструментами начинается только после выполнения второго этапа дезинфекции.На протяжении всего этапа инструментария используется обильный объем ирригации для дезинфекции и обеззараживания корневого канала. Поскольку многие зубы, подвергшиеся эндодонтическому лечению, некротизированы, устранение некротических остатков является важным фактором в борьбе с бактериями. Пропитанный спиртом кусок марли можно использовать для удаления грубых загрязнений с канавок эндодонтического файла. Использование стерилизаторов шариков для дезинфекции файлов во время лечения корневых каналов перестало быть популярным; тем не менее, протирание канавок файла часто очищает пространство для стружки инструмента, что, следовательно, улучшает его режущую способность и позволяет избежать повторного введения удаленного инфицированного дентина обратно в корневой канал.Эта вторая фаза асептики начинается со смены перчаток и дезинфекции поверхности операционного поля и поддерживается частым протиранием канавок файла и использованием большого количества гипохлорита натрия для промывания корневых каналов.
Третья фаза асептики является наиболее важной фазой, и ее начало отмечается окончанием инструментария и подготовкой к обтурации канала. Здесь автор рекомендует окончательную дезактивацию поверхности операционного поля гипохлоритом, йодом или спиртом в сочетании с окончательной сменой перчаток и использованием стерильных инструментов для обтурации и чистого пломбировочного материала.Прежде всего, следует заново оценить целостность резинового уплотнения. Если какая-либо утечка присутствует вокруг борозды из-за потери герметичности во время манипуляций с областью во время инструментальной фазы лечения, утечка должна быть тщательно устранена, а область снова запечатана и заделана. Наличие непроницаемого для жидкости уплотнения необходимо подтвердить во время третьей фазы асептического контроля и перед обтурацией. Вытекание слюны в корневой канал во время фазы обтурации — это полный отказ от асептической техники, необходимой для правильной терапии корневого канала.
После того, как уплотнение резиновой плотины будет подтверждено, перед обтурацией потребуется окончательное промывание всех каналов гипохлоритом или дезинфицирующим ирригационным раствором. Использование стерильных или незагрязненных бумажных штифтов и гуттаперчевых штифтов имеет решающее значение. Работа с гуттаперчевыми или бумажными штифтами в загрязненных перчатках — один из наиболее вероятных способов инокуляции корневого канала непосредственно перед обтурацией в хорошо запечатанном, изолированном от каучука поле. №
Автор рекомендует перед использованием погрузить собранные мастер-шишки в раствор гипохлорита натрия полной концентрации на 30 секунд.Эта дезинфекция поверхностей непосредственно перед их введением в каналы помогает избежать присутствия бактерий или плесени на их поверхностях. Автор также рекомендует использовать стерильные бумажные штифты для сушки корневых каналов. Несвежие, старые бумажные штифты и гуттаперча могут выглядеть чистыми, но они легко могут быть заражены бактериями или плесенью, которые потенциально могут вызвать повреждение корневого канала. Некоторые марки бумажных штифтов все еще можно использовать после автоклавирования. Это может быть рассмотрено перед процедурой корневого канала, или следует использовать стерильные одноразовые пакеты бумажных штифтов.
После полной дезинфекции рабочих поверхностей, зуба и всех корневых каналов при наличии водонепроницаемой пломбы, и когда чистые гуттаперчевые и бумажные штифты объединяются с использованием чистых перчаток и инструментов, последний кусок Загадка заключается в использовании противомикробного герметика для снижения вероятности того, что некоторое загрязнение или перекрестное загрязнение все еще присутствует, и что, несмотря на все усилия, небольшое количество бактерий все еще остается в корневом канале. Здесь дантисты и ассистенты стоматолога должны выбирать из длинного списка потенциальных силеров, в котором их антимикробные свойства учитываются в контексте их безопасности, эффективности и клинической простоты использования.
Наконец, дезактивация корневых каналов не заканчивается на этапе обтурации лечения корневых каналов. Предотвращение коронарной микропротекания после лечения корневых каналов является важным фактором долгосрочного успеха и исхода болезни и может считаться четвертой фазой асептики. Этот этап охватывает период от размещения временной временной реставрации с хорошей герметизацией в полости доступа до целостности коронковой пломбы окончательной реставрации. Проницательные клиницисты должны знать, что эта последняя фаза асептики является непрерывной, и ее конечный успех зависит от качества и целостности реставрационной работы и приверженности пациента к предотвращению повторного заражения корневого канала из-за коронарной утечки.
Заключение
Эндодонтическая терапия — это область, которая больше всего напоминает микробиологию. Поскольку полное удаление и дезактивация системы корневых каналов — единственный рецепт успешного результата, все потенциальные источники загрязнения и перекрестного заражения операционного поля должны рассматриваться с таким же приоритетом, как и механические и технические навыки для уже проведенной дезактивации. -инфицированные зубы. Наивысшие показатели успеха не достигаются простым удалением бактерий из инфицированных корневых каналов; но также, долгосрочный успех зависит от способности предотвратить повторное инфицирование корневого канала не только во время лечения, но и даже после него, благодаря наличию хорошо герметизирующей реставрации.Небольшие шаги в инфекционном контроле и асептике могут значительно снизить вероятность отказа корневого канала в жизненно важных эндодонтических случаях. Проницательные стоматологи и ассистенты стоматолога сосредоточатся на концепции асептики на всех этапах эндодонтического лечения. Соблюдение хорошего асептического протокола не только повысит вероятность успеха эндодонтического лечения, но также может привести к успешным результатам во всех аспектах эндодонтического лечения, включая терапию витальной пульпы.
Список литературы
1.Рода Т., Джозеф Листер — отец современной хирургии . Нью-Йорк: Боббс Меррилл; 1996.
2. Ханнинен О., Фараго М., Монос Э. Игнац Филипп Земмельвейс, пророк бактериологии. Инфекционный контроль. 1983; 4 (5): 367-370.
3. Мэдиган М., Мартинко Дж. Брок Биология микроорганизмов. 11-е изд. Нью-Йорк: Прентис-Холл; 2005.
4. Миллер В. Введение в изучение бактериопатологии пульпы зуба. Дент Космос. 1894; 36: 505.
5. Какехаши С., Стэнли Х.Р., Фицджеральд Р.Дж. Эффекты хирургического воздействия пульпы зуба на стерильных и обычных лабораторных крысах. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 1965; 20: 340.
6. Nair PNR, Sjogren U, Krey G, et al. Внутрикорневые бактерии и грибки в корневых бессимптомных человеческих зубах с терапевтически устойчивыми периапикальными поражениями: долгосрочное контрольное исследование с помощью световой и электронной микроскопии. Дж Эндодон . 1990; 16: 580.
7.Sjogren U, Figdo D, Persson S, Sundqvist G. Влияние инфекции во время пломбирования корня на исход эндодонтического лечения зубов с апикальным периодонтитом. Инт Эндодон Дж. 1997; 30: 297.
8. Американская стоматологическая ассоциация: OSHA: что вы должны знать. Чикаго, Иллинойс: 1992.
9. Центры по контролю и профилактике заболеваний: Руководство по контролю за инфекциями в стоматологических учреждениях — 2003. MMWR. 2003; 52: 1.
10. Центры по контролю и профилактике заболеваний.Рекомендации по профилактике передачи ВИЧ в медицинских учреждениях. MMWR . 1987; 36 (Дополнение 2S): 1.
11. Баумгартнер Дж. С., Хемалелкул С., Ся Т. Распространение Candida albicans при инфекциях эндодонтического происхождения. Дж Эндодон. 2000; 26: 695.
12. Кокран М.А., Миллер С.Х., Шедрейк М.А. Эффективность резиновой дамбы как барьера для распространения микроорганизмов во время стоматологического лечения. J Am Dent Assoc. 1989; 119: 141.
13.Коэн С, Швартс СФ. Эндодонтические осложнения и закон. Дж Эндодон. 1987; 13: 191.
14. Брамвелл Дж. Д., Хикс М. Л.. Решение проблем изоляции с помощью клеев на резиновой основе. Дж Эндодон. 1986; 12: 363.
15. Грин Р. Р., Сикора Ф. А., Дом JE. Нанесение резиновой перемычки на безоронки и конусообразные зубы. Дж Эндодон. 1984; 10: 82.
16. Кобаяси Т., Хаяси А., Йошикава Р. и др. Микробная флора формирует корневые каналы и пародонтальные карманы нежизнеспособных зубов, связанных с запущенным пародонтитом. Инт Эндодон Дж. 1990; 23: 100.
17. Bystrom A, Sundqvist G. Антибактериальное действие гипохлорита натрия и EDT A в 60 случаях эндодонтической терапии. Инт Эндодон J . 1985; 18: 35.
18. Bystrom A, Sundqvist G. Бактериологическая оценка эффекта 0,5% гипохлорита натрия в эндодонтической терапии. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 1983; 55: 307.
19. Bystrom A, Sundqvist G. Бактериологическая оценка эффективности механической обработки корневых каналов в эндодонтической терапии. Scand J Dent Res. 1981; 89: 321.
20. Гольдман Л.Б., Гольдман М, Кронман Дж. Х., Лин П.С. Эффективность нескольких ирригационных растворов для конца.
Знания, отношение и восприятие ассистентов стоматолога в отношении асептики и стерилизации зубов на рабочем месте стоматолога
Цели и задачи .Это исследование направлено на оценку знаний, отношения и восприятия асептики и стерилизации зубов среди ассистентов стоматолога в Пакистане. Материалы и методы . Было проведено поперечное исследование. Был разработан и введен в режиме онлайн закрытый вопросник, состоящий из 27 пунктов, для сбора данных об асептике, стерилизации, обращении с инструментами, дезинфекции, правилах гигиены рук, стоматологической практике, возрасте, образовании и уровне опыта с марта 2020 года по июнь. 2020. Результатов . Из 70 ассистентов стоматолога большинство были в возрасте от 21 до 29 лет (44,30%), более двух третей (85,41%) ассистентов стоматолога работали в больнице, а 14,29% работали в частных клиниках, только 7,1 % имели диплом по программе ассистента стоматолога, а 74% имели опыт практики более 2 лет. Ассистенты стоматолога, работающие в частной практике (76,30), имели более высокие средние оценки знаний по сравнению с теми, кто работал в больнице (74,25), а те, у кого опыт работы менее 2 лет (75.61) имели более высокие баллы по сравнению с людьми со стажем работы 2–5 лет (73,96). Заключение . Все ассистенты стоматолога должны лучше соблюдать рекомендованные методы инфекционного контроля и обращения с отходами. Непрерывные образовательные программы, нацеленные на такую осведомленность, имеют жизненно важное значение для улучшения практики обращения с опасными отходами среди помощников стоматолога.
1. Введение
Стоматологи подвергаются нескольким профессиональным опасностям из-за характера своей работы и близости к своим пациентам.Эти факторы риска включают воздействие микробных и химических опасностей [1]. Риск профессионального заражения инфекционными заболеваниями в стоматологической практике увеличивается из-за недостатка знаний о протоколах инфекционного контроля и плохой практики инфекционного контроля [2]. Бригада стоматологов подвергается очень высокому риску заражения инфекциями, вызываемыми патогенами, передающимися с кровью, такими как вирус гепатита B (HBV), вирус иммунодефицита человека (ВИЧ) и вирус гепатита C (HCV) [1]. Сотрудники стоматологов также очень восприимчивы к другим патогенам, таким как стрептококки, и многим другим заболеваниям вирусного и бактериального происхождения, которые колонизируют ротовую полость и дыхательные пути [3, 4].В стоматологическом кабинете существует множество путей передачи инфекции, включая кровь, физиологические жидкости, капли, укол иглой, источники загрязненной воды из стоматологических установок и аэрозоли, а также косвенная передача, которая происходит при контакте с загрязненными поверхностями и инструментами [ 5–7]. Это привело к усилению опасений относительно инфекционного контроля и практики перекрестного заражения в стоматологических учреждениях, что было исследовано во многих странах, включая Северную Америку и Европу [8–12].
Правильное применение протоколов инфекционного контроля и мер предосторожности может значительно снизить риск перекрестной инфекции в стоматологических учреждениях [1]. Соблюдение руководящих принципов инфекционного контроля имеет первостепенное значение для разрыва цепи инфицирования инфекционных заболеваний и безопасного оказания стоматологической помощи [13]. Центр по контролю и профилактике заболеваний (CDC) опубликовал руководство по инфекционному контролю в стоматологических учреждениях в 1993 году, и большинство международных рекомендаций основано на этих рекомендациях, но со временем они изменились и эволюционировали [14].Эти протоколы профилактического инфекционного контроля были заложены в первую очередь в ответ на вспышку эпидемии вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) в 1980-х годах, поскольку эти протоколы регулярно обновлялись и пересматривались после их адаптации на протяжении многих лет [14]. После принятия во всем мире они были названы универсальными мерами предосторожности и применялись во всем мире для предотвращения передачи болезней, передающихся через кровь, таких как HBV, HBC и ВИЧ [15]. Управление по безопасности и гигиене труда (OSHA), которое является регулирующим органом в США, также основало свои стандарты контроля за переносимыми через кровь патогенными микроорганизмами на универсальных мерах предосторожности после их принятия [15].Эти руководящие принципы были дополнительно расширены рекомендациями о том, что все рабочие поверхности, инструменты и оборудование должны быть очищены и дезинфицированы после контакта с кровью, слюной и другими инфекционными материалами [16]. Рабочие поверхности следует продезинфицировать перед прибытием нового пациента и после завершения процедуры у каждого пациента [16]. Вакцинация стоматологического персонала была сделана обязательной там, где это было возможно, поскольку некоторые формы воздействия неизбежны, поскольку они обеспечивают защиту от болезней, которые можно предотвратить с помощью вакцин [17].Повторное использование шприцев, физиологического раствора и флаконов между пациентами привело к множественным вспышкам гепатита В и гепатита С и, следовательно, было полностью запрещено [17]. Все эти рекомендации в конечном итоге повысили приверженность асептическим методам приема парентеральных препаратов [18–20].
Многие исследования показали плохое соблюдение протоколов инфекционного контроля, несмотря на выпуск столь всеобъемлющих руководств по инфекционному контролю [21]. Более того, этот вопрос вызывает большую озабоченность в развивающихся странах, где такие руководящие принципы и протоколы не были должным образом задокументированы и внедрены [22].Во многих больницах отсутствуют программы обучения инфекционному контролю, а некоторые сообщают об отсутствии осведомленности среди смежного медицинского персонала [22, 23]. Это исследование сосредоточено на знаниях инфекционного контроля ассистентов стоматолога, особенно ассистентов стоматологов, работающих в частных клиниках и больницах. Ассистенты стоматолога играют ключевую роль в предотвращении перекрестной инфекции, и большинство ассистентов стоматологов, ответственных за выполнение таких задач, не имеют сертификатов в развивающихся странах. Мы провели это исследование, чтобы оценить знания, отношение и восприятие асептики и стерилизации зубов среди ассистентов стоматолога, работающих в Карачи, Пакистан.
2. Методология
Исследование было одобрено Советом по этике Медицинского и стоматологического колледжа Джинна, Карачи, Пакистан, после одобрения участвующих учреждений. Чтобы защитить частную жизнь и конфиденциальность участников, опрос был анонимным и не содержал идентифицирующей информации. Участие в исследовании было добровольным, без компенсации, и все участники получили информацию о целях и целях исследования до своего участия.
Для взятия выборки из доступной совокупности использовалась небезопасная удобная выборка.Анкета, созданная для этого исследования, включала вопросы о процедурах асептики и стерилизации. Мы разделили анкету на подкатегории в соответствии с применяемой процедурой. Первая группа вопросов касалась предстерилизации; группа 2 — проверка биологических процессов, задействованных в циклах стерилизации; группа 3, использование автоклава. Вопросы категории 4 касались документации процесса стерилизации. Двадцать семь вопросов были составлены в основном с учетом стандартных мер предосторожности, которые поддерживаются руководящими стандартами здравоохранения Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) и рекомендованными руководящими принципами для практикующих стоматологов в местном отделении дезинфекции и деконтаминации (LDU) HSE, 2012 (пересмотренное издание 2014 г.), в котором есть адаптирован многими развитыми странами [24].
Анкета была проверена с помощью удобной выборки из небольшого числа стажеров ассистентов стоматолога ( n = 24). Достоверность содержания была оценена на основе заключения экспертов, и был проведен дальнейший анализ. Этический комитет также предложил несколько небольших изменений в анкете. Итоговая анкета показала среднюю внутреннюю согласованность (альфа Кронбаха 0,68), на заполнение у участников в среднем уходило 9,3 (± 2,4) минуты.
Результаты анкеты пилотного исследования не были включены в основной отчет.Главный исследователь написал в несколько стоматологических ассоциаций с просьбой помочь ассистентам стоматолога заполнить анкету исследования. Анкета заполнялась на английском языке, который считается официальным языком в Пакистане. Анкета заполнялась лично и по направлениям, онлайн-ссылки перенаправлялись в различные стоматологические учреждения в Карачи. В течение этого периода исследовательская группа получила в общей сложности 70 ответов от 105 обращенных ассистентов стоматолога.Процент ответивших составил 66,6%.
Было 3 вопроса, связанных с демографическими переменными, и зависимая переменная знаний была измерена как непрерывный составной балл с использованием 24 закрытых вопросов по шкале Лайкерта (1 = совсем нет / никогда, 2 = очень мало / редко, 3 = / Иногда, 4 = в значительной степени / всегда), что составляет 24 минимальных и 96 максимальных баллов. Было четыре независимых категориальных переменных: возраст на четырех уровнях, принадлежность к системе здравоохранения с двумя уровнями (частная практика или больница), наличие диплома по программе ассистента стоматолога как дихотомия (да или нет) и годы практического опыта на трех уровнях. .
2.1. Статистический анализ
Данные были проанализированы с использованием IBM SPSS версии 24.0 с 95% доверительным интервалом и 5% погрешностью. Наблюдаемый размер выборки составил 70. Все переменные были закодированы и введены в SPSS (описательная статистика, включающая частоту и проценты для оценки ответов). Факторный дисперсионный анализ (ANOVA) использовался для выявления значимых различий в оценках знаний различных демографических групп, при этом значение «<0,05» считалось значимым.
3. Результаты
Большинство участников были в возрасте от 21 до 29 лет (44,30%). Более двух третей (85,41%) ассистентов стоматолога работали в условиях больницы. Только 7,14% имели диплом по программе ассистента стоматолога, хотя 74% имели опыт практики более 2 лет (Таблица 1).
|
Среди вопросов, основанных на знаниях, 58% ассистентов стоматолога поняли, как правильно их использовать. спиртовых средств для рук; однако лишь немногие (17,1%) указали, что подали заявку в правильное время. Примерно 33% ассистентов стоматолога указали, что они прошли обучение безопасным методам обращения с острыми предметами, в то время как 24.3% убедились, что все инструменты вымыты и продезинфицированы в соответствии с протоколом практики. В целом, 91,4% периодически поддерживали и обновляли свою осведомленность о профилактике инфекций и стратегиях профилактики. Что касается практического значения, то только 5% из них регулярно должным образом чистили и сушили предметы многократного использования. 92,9% ассистентов стоматолога указали, что они обеспечили надлежащую аттестацию персонала и ежегодную переаттестацию для каждого стерилизатора; но только 11.4% всегда обеспечивали маркировку важнейших инструментов идентификационной информацией о партии перед стерилизацией (Таблица 2).
|
ANOVA для параметрического и факторного тестирования. Для выявления статистически значимых различий в оценке знаний между независимыми группами (возраст, тип практики, наличие диплома и годы практики) использовался критерий нормальности Шапиро-Уилка, который оказался незначительным ().Также было определено, что среднее значение (74,54), медиана (75,00) и мода (75,00) были равны, что дополнительно подтвердило предположение об использовании параметрического теста. Гистограмма представила нормальное распределение оценки знаний (рисунок 1). Ассистенты стоматолога, работающие в частной практике (76,30), имели более высокий балл знаний по сравнению с теми, кто работал в больнице. Наблюдалась значительная разница в оценке знаний, основанная на уровне практического опыта, у лиц со стажем менее 2 лет (75.61%) имели более высокий средний балл по знаниям по сравнению с людьми со стажем 2–5 лет (таблица 3). Коробчатая диаграмма показала, что ассистенты стоматолога, работающие в частных клиниках со стажем менее 2 лет, имели наивысший балл знаний и наименьшую вариабельность. Ассистенты стоматолога, работающие в больницах со стажем 2–5 лет, имели самый низкий балл знаний, но вариативность для этой группы была самой высокой (рис. 2).
|