Азопирамовая проба и амидопириновая: Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментов

Содержание

АМИДОПИРИНОВАЯ ПРОБА — Большая Медицинская Энциклопедия

Амидопириновая проба (синоним пирамидоновая проба) — дифференциально-диагностический тест при затяжной субфебрильной температуре невыясненной этиологии. Предложена Голло (J. Hollo) в 1917 году для оценки субфебрильной температуры у больных туберкулезом легких.

Детально изучена Б. А. Черногубовым, который расширил показания к ее применению. Затяжная нейро-вегетативная субфебрильная температура (по Черногубову) характеризуется устойчивостью к амидопирину, что отличает ее от гипертермии инфекционного генеза, при которой производные пиразолона (амидопирин и др.) оказывают выраженное противовоспалительное и жаропонижающее действие; механизм последнего не вполне ясен.

Амидопириновая проба проводится на протяжении 3 дней в условиях режима, соблюдавшегося больным до ее применения. Температура тела измеряется выверенным термометром с 6 до 18 часов ежечасно. В первый день проводится контрольное измерение температуры без приема амидопирина. На второй день измерение температуры проводится каждый час с одновременным приемом дробных доз амидопирина, назначаемого в суточной дозе по 1,5 г. Готовят 300 мл 0,5% раствора, то есть 15 доз по 20 мл. В 6 часов утра дают одномоментно 3 дозы (60 мл), каждый последующий час с 7 до 18 по 20 мл, то есть остающиеся 240 мл. На третий день повторяют контрольное ежечасное (с 6 до 18) измерение температуры. По окончании пробы сравнивают данные, полученные на протяжении 3 дней.

Нормализация температуры в день приема амидопирина наблюдается при субфебрильной температуре инфекционной природы. При лихорадке неинфекционной природы снижения температуры не отмечается.

Противопоказанием для проведения амидопириновой пробы является индивидуальная непереносимость производных пиразолона, выраженная лейкоцитопения.

Проводить амидопириновую пробу не рекомендуется женщинам в период менструации, когда возможны спонтанные колебания температуры.

Амидопириновая проба не имеет самостоятельного диагностического значения и может применяться лишь в комплексе с другими методами исследования.

Библиография: Калугина Л. Т. О «черногубовской» пирамидоновой пробе, в кн.: Вопр. ревм., под ред. М. Г. Малкина, с. 12, М., 1967; Holló J. Über eine neue Methode zur Beurteilung subfebriler Temperaturkurven im Verlaufe derLungentuberkulose, Beitr. Klin. Tuberk., Bd 36, S. 29, 1916—1917.

Азопирамовая проба. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

Нормативно-правовые медицинские кейсы---Азопирамовая проба. Нормативно-правовой медицинский кейс---Нормативно-правовые документы---Азопирамовая проба.Инструкция по применению набора реагентов для контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения "Азопирам Д"

Азопирамовая проба проводится для контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения.

Инструкция 
по применению набора реагентов для контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения «Азопирам Д»

Внимание! Инструкция производителя.

Набор Азопирам Д предназначен для контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения.
Набор используется для выявления скрытых следов крови, которые могут остаться на подготовленных к стерилизации медицинских изделиях в результате недостаточно тщательной предстерилизационной очистки.
Набор рассчитан на проведение 2000 определений при расходе 0,1 мл рабочего реагента.
Реагент №1 — анилин гидрохлорид, реагент №2 — амидопирин.

Приготовление исходного раствора

1.Реактивы №1 и №2 полностью высыпать в мерную посуду объемом не менее 100 мл.
2.Налить 50-60 мл 95-97% этилового спирта и мешать до полного растворения.
3.Долить до метки 100 мл 95-97% спиртом.
4.Полученный исходный раствор Азопирама Д хранится в закрытой посуде в холодильнике при температуре от +4 до +8°С не более 2 месяцев без снижения своих рабочих свойств.
Небольшое пожелтение исходного раствора в процессе хранения не имеет значения при постановке реакции на кровь.

Приготовление рабочего раствора

Перед проверкой качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения исходный раствор азопирама смешивают с равным количеством 3% перекиси водорода (1:1).

Проведение анализа

Проверка качества предстерилизационной очистки изделий не отличается от методики работы с известными бензидиновыми или амидопириновыми реактивами.
Рабочим раствором (азопирам с 3% перекисью водорода 1:1) обрабатывают исследуемые изделия: тампонами, смоченными реактивом, протирают различные поверхности, заполняют раствором шприцы, иглы, катетеры, другие полые предметы и т.д.
Допускается нанесение по 1-2 капле исходного раствора азопирама и 3% перекиси водорода разными пипетками.
При наличии следов крови немедленно или не позднее чем через 1,5 минуты, появляется окрашивание, вначале обычно фиолетово-синее, быстро переходящее в сиренево-пурпурное или буроватое.
Реактив выявляет наличие гемоглобина, пероксидаз растительного происхождения, сильных окислителей (хлорамина, хлорной извести, хромовой смеси для обработки посуды, стирального порошка с отбеливателем и др.), а также ржавчины и кислот.

Особенности реакции

Окрашивание, наступившее позднее чем через 2 минуты после обработки исследуемых предметов, не учитывается.
Исследуемые на качество предстерилизационной очистки изделия медицинского назначения должны иметь комнатную температуру.
Нельзя обрабатывать горячие предметы и держать раствор на ярком солнечном свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т.д.).
Рабочий раствор (азопирам с 3% перекисью водорода) должен использоваться в течение 40-60 минут.
Чувствительность: набор позволяет выявлять наличие следов крови при разведении 1:10 000.

Разработано на основании: «Инструкции по применению набора реагентов для контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения «Азопирам Д», утвержденной 10.01.2003 г. руководителем Департамента государственного контроля лекарственных средств и медицинской техники МЗ РФ В.Е.Акимочкиным

Организация уборки в медицинской организации. Нормативно-правовая база

Роспотребнадзор. Перечень документов для подготовки к проверке медицинской организации

С уважением, «Медицина&Практика».

Поделиться актуальной информацией и полезным материалом в профессиональных сообществах в социальных сетях!

АЗОПИРАМ ОЧИСТКА

КУПИТЬ
Составлена на базе извлечений из методических указаний МЗ СССР «Контроль качества предстерилизиционной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам», утвержденных начальником главного управления карантинных инфекций МЗ СССР М.Н. Наркевичем 26.05.1988 г. № 28-6,13.

ИНСТРУКЦИЯ

по использованию реактива азопирам

для контроля качества предстерилизационной очистки изделий

1.2 Проба с азопирамом по чувствительности не уступает бензидиновой и в 10 раз превышает амидопириновую.

1.3 С введением данных указаний бензидиновая и ортололудиновая пробы отменяются.

1.4 Реактив азопирам используется для выявления скрытых следов крови, которые могли остаться на подготовленных к стерилизации медицинских изделиях в результате недостаточно тщательной предстерилизационной очистки. Согласно ГОСТ 42-21-2-85 стерилизации должны подвергаться изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами и отдельные виды медицинских инструментов, которые, в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения (п. 3.1).

1.5 Контроль предстерилизационной очистки проводят санитарно-эпидимиологические и дезинфекционные станции 1 раз в квартал. Самоконтроль в лечебно-профилактических учреждениях проводиться не реже 1 раза в неделю, организуется и контролируется старшей медицинской сестрой (акушеркой) отделения.

ПРИГОТОВЛЕНИЕ ИСХОДНОГО РАСТВОРА

1. Сухие компоненты — порошок «А» (большая упаковка) и порошок «СА» (маленькая упаковка) смешивают в сухой посуде.

2. Смесь заливают 95% этиловым спиртом (растворять только в спирте ректификате) до объема 100 мл и тщательно размешивают стеклянной палочкой до полного растворения ингредиентов.

3. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4° С (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре (+18–23° С) не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАБОЧЕГО РАСТВОРА

Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества исходного раствора и 3% перекиси водорода. 

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяется в случае необходимости; 2–3 капли этого раствора наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневое, реактив пригоден к употреблению, если в течение 1 минуты окрашивание не появляется — реактивом пользоваться нельзя. 

МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РЕАКЦИИ

Рабочим раствором обрабатывают исследуемые изделия: протирают тампонами, смоченными реактивом или наносят несколько капель реактива на исследуемые изделия с помощью пипетки. В шприцы наливают 3–4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 0,5–1,0 минуты, после чего реактив вытесняют на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров или других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь полых изделий с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5–1,0 минуту, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

Контролю подвергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3–5 единиц. 

ИНДИКАЦИЯ ЗАГРЯЗНЕНИЯ

В присутствии крови немедленно или не позднее чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется окрашивание, вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд переходящее в розово-сиреневое или буроватое. Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 минуту после обработки исследуемых предметов, не учитывается. Азопирам выявляет наличие гемоглобина, перокидаз растительного происхождения, стиральных порошков с отбеливателем, хромовой смеси для обработки (растительных остатков, окислителей (хлорамина, хлорной извести, стиральных порошков с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и т.п.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины и хлорсодержащих окислителей. В остальных случаях окрашивание розово-сиреневое. 

ОСОБЕННОСТИ РЕАКЦИИ

Исследуемые изделия должны иметь комнатную температуру (желательно не выше +25° С). Нельзя подвергать проверке горячие изделия, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т.п.). Рабочий раствор должен быть использован в течение 1–2 часов. При длительном стоянии появляется спонтанное розовое окрашивание раствора. Такой раствор следует заменить свежим. При температуре выше +25° С рабочий раствор розовеет быстрее, его можно использовать 30–40 минут.

После проверки, независимо от ее результатов, следует удалить остатки азопирами с исследованных изделий, обмыв их водой или протерев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повторить предстерилизационную очистку этих изделий.

МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ

Реактивы, входящие в азопирам и его растворы, должны храниться в плотно закрывающихся емкостях отдельно от пищевых продуктов, лекарственных препаратов, дезинфицирующих средств, крепких кислот и щелочей. Приготовление раствора производится на лабораторном столе в хорошо вентилируемом помещении, желательно в вытяжном шкафу; следует избегать запыления реактивов. При приготовлении 3% перекиси водорода следует пользоваться резиновыми перчатками. При попадании на кожу азопирама или веществ, входящих в его состав, а также перекиси водорода их следует удалить чистой ватой или марлей и омыть место контакта водой.

При попадании на кожу азопирама или веществ, входящих в его состав, а также перекиси водорода их следует удалить чистой ватой или марлей и обмыть место контакта водой. При попадании реактивов на слизистые, после немедленного удаления веществ, необходимо место контакта обильно промыть большим количеством холодной воды. Рассыпанные или пролитые реактивы удаляют, а место, где они находились, промывают тампонами, смоченные водой или спиртом.

Азопирам горюч, т.к. в его состав входит спирт. Нельзя допускать контакт азопирама с открытым огнем и раскаленными поверхностями нагревательных приборов.

При приготовлении использовании азопирама следует руководствоваться правилами техники безопасности, изложенными в руководствах: Справочник по охране труда работников здравоохранения. Составитель Валяева К.Н., Медицина, 1975, с.124—144, 155–159, 165–170; Вредные вещества в промышленности. Ред. Н.В. Лазарев, Э.Н. Левина, изд. 7-е, «Химия», 1976, т.2, с.281—283. 

СУХИЕ КОМПОНЕНТЫ ПРОИЗВОДЯТСЯ ПОД КОНТРОЛЕМ АВТОРОВ АЗОПИРАМА (А.С., СССР, № 885881) И ОРГАНИЗАЦИЙ-РАЗРАБОТЧИКОВ МЕТОДИЧЕСКИХ УКАЗАНИЙ И СООТВЕТСТВУЮТ ТРЕБОВАНИЯМ МЕТОДИЧЕСКИХ УКАЗАНИЙ (ГОСТ 5822-78 и ГОС.ФАРМАКОПЕЕ СССР ДЛЯ ПРЕПАРАТОВ СТ.45).

СУХИЕ РЕАКТИВЫ ХРАНИТЬ В СУХОМ И ЗАЩИЩЕННОМ ОТ СВЕТА МЕСТЕ. 

СТАБИЛИЗАЦИЯ ЖИДКОГО РАСТВОРА

Для стабилизации спиртового раствора порошков «А» и «СА» в него добавляется стабилизатор —- раствор порошка «С» в 10 мл дистиллированной воды. Стабилизированный раствор хранится в 2 раза дольше нестабилизированного. Стабилизированный раствор используется также как и нестабилизированный (т.е. перед применением смешивается с 3% перекисью водорода). К концу первого часа рабочий раствор может приобрести слабое зеленоватое окрашивание, не меняющее чувствительности рабочего раствора.

По вопросам, касающимся приобретения наборов и их качества, просим обращаться по адресу: 105173, г. Москва, ул. Западная, д. 2, стр. 1, ООО «Агат—Мед». Телефон для справок: (495) 777-41-92.

Назад к списку инструкций

Методы проведения проб на скрытую кровь Амидопириновая проба

• Приготовление раствора. Смешивают
равные количества 5% спиртового раствора
амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3%
раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

• Техника проведения. На стерильную
вату наносят полученную смесь и протирают
поршень шприца, цилиндр с наружной
стороны, иглы, канюлю внутри. Затем
заливают реактивы в цилиндр шприца,
пропускают их через шприц на вату,
проверяя цилиндр. Надевают иглу и делают
то же самое, проверяя иглу. При наличии
крови на вате появляется сине-зеленое
окрашивание. Оно может появиться и при
реакции на тройной раствор, хлорамин,
лекарственные вещества.

Азопирамовая проба

• Техника проведения. Готовят 1,0-1,5%
раствор солянокислого анилина в 95%
растворе спирта этилового. Его хранят
в холодильнике до 2 месяцев, вне
холодильника — не более месяца. Перед
постановкой пробы смешивают равные
объемы азопирама и 3% раствора перекиси
водорода.

• Техника проведения. Смесь использовать
в течение 1-2 ч. Не проверять горячие
инструменты, не держать раствор возле
нагревательных приборов и на ярком
свету. При попадании реактива на кровь
в течение 1 мин появляется фиолетовое
окрашивание.

Инструменты, после операции у больных
с анаэробной инфекцией, дезинфицируют
в 6% растворе перекиси водорода в течение
60 мин, а затем они проходят стандартную
предстерилизационную подготовку, как
и другие инструменты.

Укладка и подготовка к стерилизации

Инструменты стерилизуют воздушным (в
сухожаровых шкафах), паровым
(автоклавирование) и химическим методами.
Для стерилизации в сухожаровых
стерилизаторах инструменты помещают
в металлические коробки (при снятых
крышках, крышки стерилизуют рядом) или
в упаковку из бумаги мешочной непропитанной
(закладывают уже высушенные инструменты),
или выкладывают их на специальные
решетки стерилизатора и производят
просушку инструментов при температуре
— 80-85 °С, при открытой дверце стерилизатора,
до полного испарения влаги с инструментов
(рис. 4-2, рис. 4-3). Для стерилизации паром
под давлением инструменты кладут в
металлические биксы (выстланные
двухслойной хлопчатобумажной простынкой
(рис. 4-4, рис. 4-5) или двойные полотняные
мешки (изготовленные из бязи).

Рис. 4-2. Общий вид сухожарового
стерилизатора

Рис. 4-3. Общий вид сухожарового
стерилизатора с хирургическими
инструментами на решетках стерилизатора
(с целью просушки)

Рис. 4-4. Общий вид загруженного
металлического бикса

Рис. 4-5. Общий вид загруженного
биксами парового стерилизатора

Перед химическим методом стерилизации
хирургические инструменты, после
предстерилизационной обработки,
выкладывают на чистые простыни и
производят просушку при комнатной
температуре до полного испарения влаги
с поверхностей инструментов.

Стерилизация хирургических инструментов

Инструментарии для медицинских
манипуляций по риску имеют следующие
различия.

• Критические — проникают в стерильные
ткани или сосуды: имплантаты, скальпели,
иглы, другие хирургические инструменты
и т.д. Стерилизация — спороцидные
химические вещества, длительный контакт.

• Полукритические — соприкасаются со
слизистыми оболочками (за исключением
стоматологических инструментов): гибкие
эндоскопы, ларингоскопы, эндотрахеальные
трубки, а также другие аналогичные
инструменты. Дезинфекция высокого
уровня — спороцидные химические вещества,
кратковременный контакт.

Термометры, ванны для гидротерапии.
Дезинфекция среднего уровня — больничные
дезинфицирующие средства с указанием
в маркировке о наличии туберкулоцидной
активности.

• Некритические — (соприкасаются с
неповрежденной кожей): стетоскопы,
настольные приборы, подкладные судна
и др. Дезинфекция низкого уровня —
больничные дезинфицирующие средства
без указания в маркировке о наличии
туберкулоцидной активности.

Стерилизация хирургических инструментов
осуществляется несколькими методами:
воздушным (сухожаровые шкафы), паровым
(автоклавирование) и химическим.

Воздушный — производится в воздушных
стерилизаторах, которые находятся в
стерилизационной комнате операционного
блока или перевязочных хирургических
отделений (рис. 4-6, рис. 4-7), по двум режимам:

• при 180 °С (+2 °С или -10 °С) в течение 60
мин;

• при 160 °С (+2 °С или -10 °С) в течение 150
мин.

Рис. 4-6. Общий вид воздушного
стерилизатора снаружи

Рис. 4-7. Общий вид воздушного
стерилизатора внутри

Оба режима рекомендуются для изделий
из металла, стекла и силиконовой резины.

Паровой — производится в паровых
стерилизаторах (рис. 4-8, рис. 4-9), которые
располагаются в специальном помещении
— автоклавной, по «основному» режиму
стерилизации:

• при 132 °С (±2 °С) под давлением 2 атм.
(0,2 МПа) в течение 20 мин.

Данный режим стерилизации рекомендуется
для изделий коррозийно-стойкого металла,
стекла, изделий из текстильных материалов.

Химический — проводится при полном
погружении в раствор в закрытых емкостях
из пластмассы или покрытых эмалью на
время стерилизационной выдержки, после
чего изделие должно быть промыто
стерильной водой.

Рис. 4-8. Общий вид парового
стерилизатора снаружи

Рис. 4-9. Общий вид парового
стерилизатора внутри

Амидопириновая проба

Цель:

-провести комплексный
контроль качества предстерилизационной
очистки инструментов медицинского
назначения от гемоглобина

-оценить эффективность
работы моечных машин в ЦСО

Показания:

-в ЦСО — ежедневно

-самоконтроль в
отделении – 1 раз в неделю

-центр санэпиднадзора
контролирует ЛПУ – 1 раз в квартал

Противопоказаний:

нет

Сестринские
вмешательства
:

-независимое

Безопасность
медицинской сестры на рабочем месте:

-использование
средств индивидуальной защиты: маски,
очков, латексных перчаток

-работа в помещении,
оснащённом вентиляцией

Оснащение:

-5%-ный спиртовый
раствор амидопирина

-3% перекись водорода

-30%-ный раствор
уксусной кислоты

-пипетки с
маркировкой:

«5%-ный спиртовый
раствор амидопирина»

«3%-ный раствор
перекиси водорода»

«30%-ный раствор
уксусной кислоты»

«рабочий раствор
амидопирина»

-емкость с
маркировкой «рабочий раствор амидопирина»

-лотки с сухим
холодным инструментарием, прошедшим
предстерилизационную очистку (1% изделий
одного наименования, но не менее 3-5 шт.)

-лотки с марлевыми
салфетками

-часы с секундной
стрелкой (или песочные), секундомер

-емкость для
хранения пипеток

-журнал учета
результатов контроля предстерилизационной
очистки

Порядок действий:

  1. Вымыть руки,
    надеть маску, очки, перчатки.

  2. Приготовить
    рабочий раствор амидопирина:

-открыть флакон
с 5%-ным спиртовым раствором амидопирина,
взять пипетку с маркировкой «5%-ный
спиртовый раствор амидопирина», набрать
определенное количество реактива в
пипетку, выпустить раствор из пипетки
в емкость с маркировкой «рабочий
раствор амидопирина»;

-поставить пипетку
в специальную емкость для хранения
пипеток. Закрыть флакон с 5%-ным спиртовым
раствором амидопирина;

-открыть флакон
с 3%-ным раствором перекиси водорода,
взять пипетку с маркировкой

«3%-ный раствор
перекиси водорода», набрать раствор в
том же количестве, как амидопириновый
реактив, выпустить раствор в емкость
с маркировкой «рабочий раствор
амидопирина»;

-открыть флакон
с 30%-ным раствором уксусной кислоты,
взять пипетку с маркировкой

«30%-ный раствор
уксусной кислоты», набрать раствор в
том же количестве, как амидопириновый
реактив, выпустить раствор в емкость
с маркировкой «рабочий раствор
амидопирина»;

-смешать ингредиенты
приготовленного рабочего раствора
амидопирина, закрыть раствор.

  1. Подготовить
    необходимые инструменты в разобранном
    виде для постановки пробы.

  2. Взять пипеткой
    с маркировкой «рабочий раствор
    амидопирина» небольшое количество
    раствора.

  3. Нанести его на
    предмет, в полости инструмента, резьбу
    зажима, в места соприкосновения с
    биологическими жидкостями.

Внимание! Инструменты
брать только холодные (не выше 25
градусовС).

  1. Держать предмет
    или инструментарий над салфеткой,
    наблюдая за цветом стекающего реактива.

  2. Оценить результат.

  3. Независимо от
    результата пробы (даже при отрицательной
    пробе) инструментарий, использованный
    для пробы, промыть водой или спиртом,
    затем провести предстерилизационную
    очистку.

  4. Результаты пробы
    записать в журнал учета.

Примечание:

Проба считается
положительной, если цвет реактива
изменился в течение первой минуты. Если
цвет изменился позже, чем через одну
минуту, то проба не засчитывается.

Если цвет реактива
изменился на сине
— фиолетовый
,
то это свидетельствует о наличие крови
на предметахПри положительной пробе
вся партия изделий одного наименования
подлежит повторной очистке.

Проба считается
отрицательной, если цвет реактива не
изменился.

Азопирамовая проба (ВИДЕО) | Обучение косметологов и специалистов бьюти индустрии



Что такое азопирамовая проба?


Это способ проверки качества предстерилизационной очистки (ПСО) инструментов. Проще говоря, мы проверяем, не остались ли на инструментах даже после ПСО следы крови и биологических жидкостей. В случае некачественной очистки инструмента рабочий раствор азопирама станет фиолетовым. Если ПСО проведена хорошо, раствор не поменяет цвет.


Кому это нужно знать?


Косметологам, мастерам маникюра и педикюра и, само собой, работникам медицинских учреждений. Всем, кто при работе с инструментами может повредить кожу клиента.

Как правильно провести пробу?


Шаг 1. Приготовление рабочего раствора.


Первый вариант — приготовление азопирамовой пробы из сухих реагентов.


Для этого нужно смешать все компоненты реактива в следующих пропорциях:

  • амидопирин – 100 г;
  • солянокислый аналин – 1-1,5 г,
  • до необходимого объема (около 1 л) добавить этиловый спирт 95% концентрации.
  • полученную жидкость соединить с 3%-м раствором перекиси водорода в одинаковых пропорциях.


Готовая жидкость называется рабочим раствором.Раствор готовят непосредственно перед проведением пробы и используют в течение двух часов после смешивания компонентов. В противном случае эффективность пробы будет нулевой. Если реактив хранится в помещении, где температура воздуха выше 25 градусов, он будет розоветь быстрее. Готовый раствор может пожелтеть, это допустимо, если нет осадка.


Такой вариант приготовления раствора подходит для учреждений, имеющих медицинскую лицензию и осуществляющих медицинскую деятельность. Согласно СанПиН 2631-10, на предприятиях коммунально-бытового обслуживания запрещено использование спирта, поэтому следует воспользоваться вторым вариантом.


Второй вариант – использование готового «Азопирам-Комплекта».


Такой набор значительно облегчит приготовление азопирамовой пробы. В наборе всего два пузырька с реактивами. Реактив из маленького пузырька нужно перелить в большой пузырек. Получается готовый раствор азопирама.


Шаг 2. Добавление перекиси водорода.


Для проведения азопирамовой пробы потребуется 3%-я перекись водорода.

На чистую салфетку с помощью пипетки наносим три капли готового рабочего раствора азопирамовой пробы и три капли перекиси водорода.


Шаг 3. Проведение пробы.


Протираем салфеткой режущие элементы инструмента или те его части, которые контактируют с биологическими жидкостями или кровью. В видео мы для примера взяли пинцет. Если инструмент имеет выемки или шероховатости (например, фрезы, а в нашем случае это ложка Уно), средство используется в виде капель. Для этого мы в равных долях смешаем Азопирам с 3%-й перекисью водорода и нанесем пипеткой 2-3 капли на инструмент. Это необходимо для того, чтобы раствор прошел по всем каналам и стыкам деталей инструмента.


После нанесения средства нужно подождать 1 минуту. В течение этого времени раствору дают возможность стечь на чистую белую салфетку (это условие одно из самых важных). Результаты пробы мы увидим на салфетке спустя минуту. Результат, полученный через более длительное время, диагностического значения не имеет.


Если ПСО проведена некачественно, и на инструментах остались следы крови или биологической жидкости, через минуту на салфетке появится фиолетовое пятно, через несколько секунд оно станет розовато-синим.


Если пятно на салфетке имеет бурый оттенок, значит, на инструментах есть ржавчина или хлорсодержащие окислители. Розовый цвет говорит о наличии моющих средств.


В нашем случае реактив не дал положительных результатов, поэтому считаем, что инструмент прошел ПСО, и повторно ее осуществлять не нужно. Для оценки качества ПСО берется не менее 1% инструмента, прошедшего одновременную процедуру очистки. В индустрии красоты для более простого подсчета берут не менее трех инструментов из одной партии.


Как проверить пригодность раствора?


При длительном хранении препарата следует проверить его пригодность перед использованием. Перед тем, как делать азопирамовую пробу на поверхности, 2-3 капли раствора наносят на кровяное пятно. Если в течение 60 секунд оно окрашивается в фиолетовый цвет, то реактив пригоден к использованию. Если окрашивания не происходит, то пользоваться таким раствором нельзя.


Несколько важных правил проведения азопирамовой пробы:

  • Окрашивание, наступившее позже одной минуты после обработки, не учитывается при анализе результатов;
  • Температура инструментов, которые проходят исследование, должна быть комнатной. Не допускается проведение пробы горячих предметов;
  • Запрещается держать рабочий раствор (с перекисью водорода) на ярком свету или в комнате с высокой температурой;
  • Рабочий раствор «Азопирама» необходимо использовать в течение двух часов, подготовительный раствор допускается хранить при комнатной температуре один месяц, в холодильнике – два месяца.
  • Емкость с раствором должна быть герметично закрыта, а стекло — темным.
  • После проведения пробы остатки раствора необходимо удалить с инструмента независимо от результата. Для этого предметы нужно сполоснуть водой или протереть тампоном, смоченным водой или спиртом. После этого при необходимости повторяют предстерилизационную обработку или проводят стерилизацию.
  • Результаты всех проведенных проб фиксируются в специальном журнале учета качества ПСО. Если исследование показало наличие загрязнений, вся партия инструментов должна пройти повторную обработку.

Персональный сайт — Контроль качества предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки оценивается по отсутствию положительных проб:

1. На кровь — азопирамовая проба.

2. На моющие средства — фенолфталеиновая проба (в случаях применения дезинфекционных средств, рабочие растворы которые имеют pH более 8,5) в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.

3. На масляные препараты — проба с суданом III. Эта проба ставится с  изделиями, испачканными масляными препаратами.

       Медицинская сестра самоконтроль осуществляет после каждой  обработанной партии, старшая медсестра — один раз в неделю, главная  медицинская сестра- один раз в месяц .

 

                        Условия проведения контроля:

1. Контролю подлежит  на рабочих местах 1 % от обработанной партии, но не менее 3-5 единиц, в ЦСО 1% от каждого наименования изделия.. 

2. Реакция читается в течение одной минуты.

3. Инструмент должен быть холодным(комнатной температуры) и сухим.

4. Рабочий раствор готовится перед применением.

​5. Срок хранения маточного раствора азопирама: в холодильнике хранится 2 месяца, а вне холодильника — 1 месяц. 

    При несоблюдении этих условий может быть ложно-положительная реакция.

                                                     Азопирамовая проба

 

         Рабочий раствор азопирама готовится из равных объемов маточного  раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода перед применением. Срок годности рабочего раствора азопирама 40 минут, лучше рабочий раствор азопирама готовить перед применением.

     Рабочий раствор азопирама проверяется на пригодность не реже одного раза в неделю: на предметное стекло с мазком крови капается 2-3 капли рабочего раствора азопирама, если в течение одной минуты появилось сине­ фиолетовое окрашивание, раствор годен к применению.

                                           

Техника проведения пробы.

 

     Лоток выстилается белой салфеткой, на которую выкладывается инструмент. Инструменты должны быть разной конфигурации. Раствор капается на рабочие поверхности, трудно отмываемые части инструмента.

      В инструменты, имеющие полости или каналы раствор набирается, а на плоские — капается из пипетки 2-3 капли раствора и сразу засекается время.

      Если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание ­ реакция на кровь положительная,  бурое окрашивание — реакция положительная на  хлор и ржавчину, розовое — на моющие средства.

Результаты азопирамовой пробы заносятся в соответствующий журнал.

 

Журнал учета качества предстерилизационной обработки

 

Начат «____ »__________ 20__г.         Окончен « __ » _____________20__ г.

 

Результаты выборочного химического контроля обработанных изделии

Дата

Способ обработки

Применяемое средство

Наменование изделий

Количество штук

Из них загрязненных

Фамилия лица, проводившего  

                контроль  

 

 

 

 

 

 

кровью

моющими средствами

 

1

2

3

4

5

6

7

8      

 

В случае положительной пробы на кровь, моющие средства, всю группу контролируемых изделий подвергают повторной  предстерилизациооной обработке.

​Азопирамовая проба проводится на остатки крови.

 

Фенолфталеиновая проба

       Фенофталеиновая проба проводится на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.

 Рабочий раствор — 1 % спиртовый раствор фенолфталеина. В холодильнике хранится один месяц, вне холодильника — 15 дней.

​Техника постановки пробы так же, как и азопирамовой пробы.

​Если появилось окрашивание в течение одной минуты розовое окрашивание, реакция на моющие средства положительная.

 

Проба с суданом-III.

 

       Проба ставится только на инструменты, испачканные масляными препаратами.

        Рабочий раствор — судан-III. В холодильнике хранится 6 месяцев, вне холодильника ~ 3 месяца.

 

Техника постановки пробы.

 

         Инструмент протирается салфеткой, смоченной  суданом-III. Далее инструмент ополаскивается проточной водой, обильной струей. Если на инструменте появились желтые пятна или подтеки, реакция на масляные препараты положительная. При отрицательных пробах растворы не меняют свою окраску.

         При положительных пробах вся партия инструментов проходит повторную предстерилизационную обработку.

          Инструменты, использованные для контроля, при положительных и отрицательных пробах подвергаются повторной обработке.

​Предстерилизационной обработке придается большое значение, т.к. эффективность стерилизации зависит от чистоты объекта. Наличие загрязнений органического и неорганического характера создают вокруг микроорганизмов защитную оболочку, что резко снижает действенность термической и химической стерилизации.

Тест

PYR — принцип, применение, процедура и интерпретация результатов

Тест PYR (пирролидониламинопептидаза) используется для определения активности пирролидонилариламидазы (также называемой пирролидониламинопептидазой) в Streptococcus group Streptococcus pyogenes Streptococcus pyogenes 9 spp., Некоторые коагулазонегативные стафилококки и некоторые Enterobacteriaceae . Он также известен как PYR (L-пирролидонил-β-нафтиламид), который служит субстратом для обнаружения пирролидонилпептидазы.

Facklam, Thacker, Fox и Eriquez сообщили, что 98% стрептококков группы A и 96% энтерококков группы D гидролизуют PYR. Хотя виды Aerococcus редко выделяются в клинической лаборатории, ожидается, что эти организмы также будут гидролизовать PYR.

Facklam et al. далее сообщили, что 98% стрептококков группы B, 100% стрептококков не групп A, B и D, 100% неэнтерококков группы D и 82% стрептококков viridans дали отрицательные результаты теста PYR.

Принцип теста PYR

PYR — это быстрый метод предполагаемой идентификации бактерий на основе фермента пирролидонилариламидазы.Фермент L- пирролидонилариламидаза гидролизует субстрат L-пирролидонил-β-нафтиламид с образованием β-нафтиламина. Β-нафтиламин может быть обнаружен в присутствии реагента N, N-метиламиноциннамальдегид по образованию ярко-красного осадка.

После гидролиза субстрата пептидазой полученный бета-нафтиламид приобретает красный цвет при добавлении 0,01% коричного альдегида. Когда видимый посевной материал микроорганизма втирается в небольшую область диска, пропитанного субстратом, гидролиз происходит в течение 2 минут, после чего добавляется коричный альдегид для обнаружения реакции по изменению цвета на пурпурный.

Использование теста PYR

  1. Он используется для предположительной идентификации стрептококков группы А ( Streptococcus pyogenes ).
  2. Используется для быстрой дифференциации энтерококков от ß-гемолитических стрептококков группы D.
  3. Он также позволяет дифференцировать некоторые стафилококки (положительный результат haemolyticus и отрицательный результат S. auricularis ).
  4. Он используется для идентификации E. coli , отделяя его от других индолположительных, лактозоположительных и грамотрицательных палочек.

Процедура теста PYR

Метод с использованием бульона

  1. Засейте бульон PYR 3-5 колониями из 18-24-часовой чистой культуры.
  2. Инкубируйте пробирку в аэробных условиях при 35–37 ° C в течение 4 часов.
  3. Добавьте 2-3 капли реагента PYR и наблюдайте за изменением цвета.
  4. Наблюдать за появлением красного цвета в течение 1-2 минут.

Дисковый метод (быстрый)

  1. Смочите тестовый диск PYR на полоске 10 мкл стерильной дистиллированной воды или деионизированной воды.

Примечание: Не переполняйте диск.

  1. Поместите 5-10 колоний тестируемого штамма из 18-24-часовой культуры на поверхность диска с помощью петли и слегка намажьте ими.
  2. Инкубируйте диск 1-2 минуты при комнатной температуре.
  3. После инкубации добавьте 1 каплю N, N-диметиламиноциннамальдегида.
  4. Наблюдать за появлением красного цвета в течение 1-2 минут.

Интерпретация результатов теста PYR

Result Interpretation of PYR Test Result Interpretation of PYR Test

Положительный результат: Ярко-розовый или вишнево-красный цвет в течение 1-2 минут.

Примеры: Стрептококки группы A ( Streptococcus pyogenes ), энтерококки группы D ( Enterococcus faecalis и Enterococcus faecium ), коагулазонегативные виды стафилококков, такие как S. hemolyticensi, S. lugdunleticensi, S. lugdunleticensi. Enterobacter, Citrobacter, Klebsiella, Yersinia и Serratia, Aerococcus, Gamella, Lactococcus , большинство Corynebacterium (Arcanobacterium) hemolyticum.

Отрицательный: Нет изменения цвета или синего цвета из-за положительной реакции на индол.

Примеры: Streptococci группы B ( Streptococcus agalactiae ), Streptococcus mitis, S. bovis, S. equinus, S. milleri.

Примечание: бледно-розовая реакция (слабая) считается отрицательной.

Контроль качества для теста PYR

Положительный контроль: Enterococcus faecalis (ATCC29212), Streptococcus pyogenes (ATCC19615)

Отрицательный контроль: Streptococcus Тестирование бактерий Streptococcus

  1. PYR можно использовать для предполагаемого отделения стрептококков группы A и энтерококков группы D от других стрептококков.Для полной идентификации рекомендуется дополнительное тестирование с использованием чистой культуры.
  2. Результатом может быть ложноотрицательный результат, если диск или фильтровальная бумага слишком влажные.
  3. Ложноотрицательные результаты тестов могут быть получены при использовании селективной среды или пробирочного биохимического агара для посева.
  4. Escherichia coli и индолположительный Proteus , полученные из сред с высоким содержанием триптофана, могут давать проявление сине-зеленой окраски. Это отрицательный результат.
  5. Некоторые реже встречающиеся изоляты лактококков и аэрококков могут быть положительными на PYRase.
  6. Могут возникнуть неспецифические цветовые реакции, если результаты будут считаны через 20 секунд.

Ссылки

  1. PYR TEST. ITEST PRO. S.R.O. Код: SO 341.
  2. Тестовый комплект PYR от Hardy Diagnostics. Medline Industries, Inc.
  3. Тестовый набор PYR. Ключ диагностики. Кошка. нет. HDZ75 / HDZ175
  4. PYR (L-пирролидонил-b-нафтиламид) Тест. Глава 3.17.41.Справочник по процедурам клинической микробиологии. Том 1. Второе издание, обновление (2007 г.).
  5. Тест L-пирролидонилариламидазы (PYR). Процедура 13-36. Диагностическая микробиология Бейли и Скотта.
  6. Моника Чизбро. Окружная лабораторная практика в тропических странах. Второе издание. Часть 2. Глава 7 Микробиологический тест. 7.18.2 Streptococcus pyogenes . pp-160.
  7. Patrick R Murray. Руководство по клинической микробиологии. 8 th PRY Test. стр-409-410.
  8. PYR Диск.Ремел.
  9. Тестовый набор PYR и реагент PYR. Харди Диагностика.
  10. PYR Test. Руководство по процедурам Медицинские лаборатории Торонто / Отделение микробиологии больницы Mount Sinai.
  11. Тестовый набор PYR и реагент PYR. CONDA Lab.
  12. Тестовый набор Prospot ™ PYR. Pro-Lab Диагностика.
  13. Мехди Аслани и Реза Гарагозлоо. 1995. Быстрая идентификация стрептококков группы A гидролизом пирролидонил-B-нафтиламида. Медицинский журнал Исламской Республики Иран. 9 (3): 243-245.
  14. Facklam RR, Thacker LG, Fox B и Eriquez L. 1982. Предполагаемая идентификация стрептококков с помощью новой тестовой системы. J. Clin. Microbiol. 15: 987-990.
  15. Оберхофер TR. 1986. Значение теста на гидролиз L-пирролидонил-b-нафтиламида для идентификации отобранных грамположительных кокков. Диаг. Microbiol. Заразить. Дис. 4: 43-47.
  16. Ruoff KL. 2003. Aerococcus, Abiotrophia и другие редко выделяемые аэробные каталазонегативные грамположительные кокки. В Мюррее П.Р., Э.Дж. Барон, Дж. Йоргенсен, М.А.Пфаллер и Р.Х.Йолкен (ред.), Руководство по клинической микробиологии, 8-е изд., Т. 1. Американское общество микробиологов, Вашингтон, округ Колумбия

.

Аминопирин / амидопирин Cas 58-15-1 — Купите продукт аминопирин, амидопирин, пирамидон на Alibaba.com

Аминопирин / амидопирин CAS 58-15-1

Английское название: пирамидон, амидозон, аминофеназон, аминопирин
Химическое название: аминопирин
CAS RN: 58-15-1
EINECS: 200-365-8
Молекулярная формула: C13h27N3O
Молекулярный вес: 231,29
Стандарт качества: CP2010 / USP32
Внешний вид: белый или почти белый кристаллический порошок, без запаха, слегка горький вкус, легкий случай порчи; щелочная реакция в водной среде.
Применение: другие API, жаропонижающие анальгетики при лихорадке, головной боли, боли в суставах, невралгии, ревматизме и т. Д., Дисменореи и других событиях
Плотность: 1,17 г / см3
Точка плавления: 105-110 Цельсия
Точка кипения: 319,7 Цельсия при 760 мм рт. Ст.
Температура вспышки: 125,9 ° C
Влага не более 0,5%
Тяжелые металлы не более 15 частей на миллион
Остаток не более 0,1%
Содержание: 99,5%

Функция:

Аминофеназон (или аминофеназон ) представляет собой пиразолон с анальгетическими, противовоспалительными и жаропонижающими свойствами, но имеет риск агранулоцитоза.Дыхательный тест с меченным 13C аминопирином использовался в качестве неинвазивного измерения метаболической активности цитохрома P-450 в тестах функции печени.

Puya chen

Генеральный менеджер

Ph .: 008618956049971

Whatsapp: 008618956049971

Wechat ID: puya_chen или 008618956049971

Применение:

анальгетик, противовоспалительное средство, противовоспалительное средство, антипирен, анальгетик, анальгетик, антипирен, анальгетик, анальгетик, анальгетик, анальгетик перед нейронами гипоталамуса и выпуском, чтобы восстановить нормальную реакцию терморегулирующего центра, ощущая нейроны и противолихорадочный эффект; Амидопирин также подавляет воспаление в локальной ткани синтеза и высвобождения простагландинов, стабилизирует лизосомальную мембрану, влияет на фагоцитоз фагоцитарных клеток и оказывает противовоспалительное действие.

Спецификация:

Точка плавления

107-109 ° C

Характеристика

Белый кристаллический порошок

Идентификация

0

Сульфатная зола

0,1% макс.

Легкосмеси

Соответствует

Хлорид

20PPM max 10PPM (высокий класс) max

Антипирин и аминоантипирин

соответствует

Тяжелые металлы

15PPM (соответствует) max 10PPM (высокий класс) max

Прозрачность в спиртовом растворе

Соответствует

Оттенок в спиртовом растворе

2.5 мл (соответствует) макс. 1,0 мл (высококлассный) макс.

Цветное пятно

3 (соответствует) макс. 1 (выс. Класс) макс.

Анализ

99,0- 100,55% (соответствует) 99,5-100,5% (высокий класс)

.

Амидопирин / аминопирин / Cas: 58-15-1 — Купить амидопирин, аминопирин, 58-15-1 на Alibaba.com

Аминофеназон (или аминопирин) представляет собой пиразолон с анальгезирующими, противовоспалительными и жаропонижающими свойствами, но имеет риск агранулоцитоза. Дыхательный тест с 13C-меченным аминопирином использовался в качестве неинвазивного измерения метаболической активности цитохрома P-450 в функциональных тестах печени.

Пожалуйста, свяжитесь с нами для получения дополнительной информации …

Характеристика

Белый кристаллический порошок

Идентификация

положительный

Точка плавления

107-109 ° C

900 Сульфатная зола

0.1% макс.

Легкокарозные вещества

Соответствует

Хлорид

20PPM (соответствует) макс. 10PPM (высокий класс) макс. Антипирин и аминоантипирин

соответствует

Тяжелые металлы

15 ppm (соответствует) max 10 ppm (высокий класс) max

Прозрачность в спиртовом растворе

900

Соответствует

Оттенок в спиртовом растворе

2.5 мл (соответствует) макс. 1,0 мл (высокий класс) макс.

Цветное пятно

3 (соответствует) макс. 1 (высший класс) макс.

Анализ

99,0-100,55% (соответствует) 99,5-100,5% (высокий класс)

.

Амидопирин — Большая химическая энциклопедия

Соединения 106 и 107 обладают выраженным противовоспалительным действием. Дозы 100 мг / кг этих соединений подавляют развитие отеков на 69 и 45% соответственно. Соединение 108, активность которого в 4 раза выше, чем у амидопирина, имеет более сильный эффект (87MI2). [Стр.84]

Необратимая реакция [18] йода с ацетилсалициловой кислотой, этаверином, амидопирином, аскорбиновой кислотой, бензокаином, хинином, дигидрокодеином, флуоресцеином, глицином, ацетатом гидрокортизона, изони-азидом, метамизолом, парацетамином , фенол-фталеин, пиперазин, резорцин, салициловая кислота, салициламид, сульфагуанидин, тимол, триэтаноламин, обнаружение трис-буфера с помощью реакционной хроматографии… [Стр.148]

Rao et al. [45] определили примахин фосфат в фармацевтических лекарственных формах с помощью колориметрического метода. Порошкообразные таблетки, содержащие эквивалент 100 мг примахина фосфата, нагревали с 25 мл воды в течение 10 минут, раствор охлаждали и фильтровали, а 10 мл фильтрата разбавляли водой в 10 раз. Порцию этого раствора объемом 5 мл смешивали с 5 мл буферного раствора с pH 5, 1 мл 0,08%. раствор амидопирина в 95% водном спирте и 2 мл водного раствора 0.1% периодат натрия. Через 10 мин добавляли 0,5 мл водного раствора метабисульфита натрия и измеряли оптическую плотность при 580 нм. Согласно закону Бера, примахин фосфат составлял от 4 до 43 пг / мл. Возвраты были количественными. [Стр.181]

Циклоприсоединения в общем являются эффективным способом построения циклобутановых колец. Таким образом димеризуется широкий спектр гетероциклических систем. 1,3-Диацетилиндол, например, дает димер 242 с головы до хвоста при облучении в этаноле.185 Этил 2-этокси-1,2-дигидрохинолин-1-карбоксилат аналогичным образом превращается в диэтиловом эфире в транс-голову -димер.186 Среди множества аналогичных фотодимеризаций следует отметить те, что описаны в 1,4-дигидропиридинах, 187 — в фуро [3,2-b] пиридин-2 (4 //) — онах, 188 — в 8-метил-s-триазоло [4,3 -a] пиридин, 189 и в 2H-2-бензазепин-1,3-дионах.190 [2 + 2] димеризация амидопирина является первым описанным примером фотоциклоприсоединения в 4-пиразолин-3-он.191. .. [Pg.278]

Феназон (182) оказался более фотостабильным, чем амидопирин или сульфирин [116], однако в нескольких публикациях описан ряд продуктов фотодеградации.После облучения в метаноле ртутной лампой среднего давления в течение 70 ч Эге выделил карбамат (183,20%), имидазолон … [Стр.82]

Rao et al. сообщили о методе высокоэффективной жидкостной хроматографии для определения дилоксанида фуроата и метронидазола в единичных и комбинированных лекарственных формах [41]. 30 мг эквивалента фуроата дилоксанида и 25 мг метронидазола (либо в виде нерасфасованного лекарственного вещества, либо в виде порошкообразных таблеток) растворяли в метаноле, добавляли амидопирин в качестве внутреннего стандарта и смесь анализировали с помощью ВЭЖХ при комнатной температуре.Аналитическая колонка (30 см х 3,9 мм) состояла из p-Bondapak Cig с 9 9 1 л воды в метаноле 0,05 M Kh3PO4 0,05 M Nah3P04 в качестве подвижной фазы. Скорость потока составляла 1 мл / мин), детектирование проводили при 254 нм. [Pg.278]

Quinn GP, ​​Axelrod J, Brodie BB, et al. Виды, штаммы и половые различия в метаболизме гексобарбитона, амидопирина, антипирина и анилина. Biochem Pharmac 1958 1152-159. [Pg.188]

Клиническое применение Метамизол — водорастворимый сульфонат натрия амидопирина.После перорального приема он быстро гидролизуется до активного 4-метиламиноантипирина и метаболизируется до различных метаболитов (Levy et al., 1995, схема 47). Метамизол обладает сильным обезболивающим, спазмолитическим и жаропонижающим действием, но не обладает противовоспалительными свойствами. Точный механизм действия неизвестен, но может включать ингибирование синтеза простагландинов. Было продемонстрировано ингибирование обоих изоферментов ЦОГ, хотя и только в чрезвычайно высоких концентрациях, что ставит под сомнение актуальность этой активности.[Стр.80]

Райш Дж., Фитцек А. Фото и радиохимические исследования. V. Разложение водных растворов амидопирина под действием света и γ-лучей. Deut Apoth-Ztg 1967 107 1358-1359. [Pg.323]

Тебаин был выделен из опия в 1835 году Пеллетье (439). Терапевтическая применимость тебаина была изучена Balint et al. (440). Было обнаружено, что он более токсичен, чем морфин. Это более эффективный наркотик, но более слабый анальгетик, чем морфин. Обезболивающий эффект тебаина в дозах 0.01 г / кг больше, чем у амидопирина, этот эффект сохраняется, однако, только в течение 30 минут. Дигидротебаин несколько более эффективен, но более токсичен (441). Число и расположение двойных связей в кольце D морфинанового скелета имеют значение для обезболивающего эффекта. Teraoko … [Pg.229]

Rapaport и Solyanik (168) разработали экспресс-метод рефрактометрического определения 23 смесей, содержащих анестезин, барбамил, бромкамфору, бромисовал, камфору, антипирин, амидопирин, ацетальсалициловую кислоту, барбитал, кодеин, салол, терпин гидрат, гексаметилентетрамин и фенобарбитал.Описанный метод подходит для анализа фармацевтических смесей, содержащих соединения, не растворимые в воде и растворимые в этаноле. Смесь 2 фармацевтических препаратов (0,1 г) растворяют в 1 мл. этанол и np этого раствора. Одним из компонентов является … [Pg.73]

Объемный амидопирин HPLC Silica MeOH-OO LVNh5OH, GC (2) TLC [1.337] [5] … [Pg.148]

Амидопирин Амидопирин является потенциальным канцерогеном, особенно для пациентов, которые являются заядлыми курильщиками33 … [Стр.339]

Амидофеназон Амидопирин Аминопирин) се- анальгетик, жаропонижающее, анти -… [Стр.92]

Амидопирин, салициламид (после гидролиза), салициловая кислота … [Стр.133]

Аметокаин (100 ° ), амидопирин (100 °), бендрофлуазид, бензонатат (100 °), хромонар (100 °, 3 мин), кломипрамин, дипирон (100 °), имипрамин, мефенамовая кислота, мефрузид, оксипертин, падимат (100 °), прокарбазин ( 100 °, 15 с), пропифеназон (100 °) (красный от воды), йохимбин, амифеназол (100 °) … [Стр.136]

Синонимы. Амидазофен Амидопирин-пирамидон Аминофеназон Аминопирин Диметиламиноантипирин Диметиламинофеназон. [Стр.337]

Был использован ряд солей амидопирина, включая аскорбат, гентизат, гидроксиизофталат и салицилат. [Pg.337]

Жидкостная хроматография высокого давления. В пределах обнаружения в моче 120 нг для амидопирина, 25 нг для 4-ацетамидофеназона и 50 нг для 4-аминофеназона, УФ-обнаружение — K. Shimada и Y. Nagase, Chromat., 1980, 181 Biomed.Appl., 7, 51-57. [Pg.338]

Токсичность. Использование амидопирина не рекомендуется из-за риска смертельного агранулоцитоза. Расчетная минимальная смертельная доза составляет 5 г. [Pg.338]

Доза. Раньше амидопирин вводили в дозах до 1,5 г за 24 часа. [Pg.338]


См. Также в источнике #XX — [

Стр.339

]

См. Также в источнике #XX — [

Стр.83

,

Стр.86

,

Стр.117

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.288

,

Стр.289

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.79

,

Стр.148

,

Стр.202

,

Стр.277

,

Стр.285

,

Стр.291

,

Стр.292

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.161

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.128

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.105

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.203

]

См. Также в источнике №XX — [

Стр.83

,

Стр.86

,

Стр.117

]


.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *