Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода: Для стерилизации инструментов применяют перекись водорода в концентрации

Для стерилизации инструментов применяют перекись водорода в концентрации

а) 6% в) 3%

б) 4% г) 1%

23. Время стерилизации инструментария в сухожаровом шкафу при температуре 180°С в минутах

а) 20 в) 40

б) 30 г) 60

Для химической стерилизации используют раствор

а) 0,05% анолита в) 3% перекиси водорода

б) 0,2% сульфохлорантина Д г) 70% этилового спирта

Срок стерильности мединструментария в невскрываемой стерилизационной коробке с фильтром (КФ), в сутках

а) 1 в) 5

б) 3 г) 20

Время стерилизации белья в паровом стерилизаторе, в минутах

а) 40 в) 20

б) 30 г) 10

Вид укладки, содержащей только халаты

а) видовая в) целенаправленная

б) универсальная г) смешанная

28. Укладка бикса, содержащая бельё и перевязочный материал

а) видовая в) смешанная

б) целенаправленная г) универсальная

Индикатор стерильности изделий из стекла и металла в паровоздушном стерилизаторе

а) ИС – 180 в) ИС – 132

б) ИС – 160 г) ИС – 120

Режим стерилизации изделий из стекла и металла при автоклавировании

а) 1,1 атм – 120°С – 45 минут в) 160°С – 150 минут

б) 2 атм — 132°С – 20 минут г) 180°С – 60 минут

Срок стерильности хирургического белья в невскрываемой стерилизационной коробке (КС) составляет

а) 6 часов в) 20 дней

б) 3 суток г) 1 месяц

Срок стерильности изделий в двухслойной хлопчатобумажной упаковке составляет

а) 6 часов в) 3 суток

б) 3 часа г) 1 сутки

Индикатор стерильности изделий из резины

а) ИС – 180 в) ИС – 132

б) ИС – 160 г) ИС – 120

Метод стерилизации для резиновых катетеров

а) воздушный в) химический

б) паровой г) радиационный

Хлопчатобумажную укладку используют при стерилизации

а) химической в) паровой

б) воздушной г) газовой

Стерилизацию шовного материала проводят

а) сухим горячим воздухом в) ультразвуком

б) паром под давлением г) окисью этилена

При положительной фенолфталеиновой пробе появляется окрашивание

а) сиренево – фиолетовое в) буро – коричневое

б) розово – малиновое г) зелёное

Вид стерилизации одноразовых капельных систем

а) сухой жар в) ультразвук

б) пар под давлением г) радиационный

На наличие крови при азопирамовой пробе указывает окрашивание

а) розово – сиреневое в) буроватое

б) сиренево – фиолетовое г) зеленоватое

Отходы класса Б собираются в одноразовые мешки

а) белого цвета в) жёлтого цвета

б) красного цвета г) цвет значения не имеет

Графический диктант

Правильный ответ (да), неправильный (нет)

1.Бактерицидность – свойство агентов вызывать гибель микроорганизмов (да).

2.Дезинфекция – комплекс мероприятий, направленный на уничтожение микроорганизмов (да)

3.Дезинсекция – комплекс мер, направленный на уничтожение грызунов (нет)

4.Патогенность – способность вызывать заболевание (да)

5.Кварцевание – механический метод дезинфекции (нет)

6.Влажная уборка – физический метод дезинфекции (нет)

7.Деконтаминация – процесс уничтожения микроорганизмов с целью обеззараживания и защиты (да)

8.После выздоровления пациента проводят заключительную дезинфекцию (да)

9.Инвазивные процедуры – манипуляции, при которых нарушается целостность тканей, сосудов, полостей (да)

10.Генеральную уборку процедурного кабинета проводят 1 раз

в 7 дней (да)

11.Клизменные наконечники обеззараживают способом погружения их в 3% р-р сульфохлорантина Д на 15 минут (нет)

12.Анолит – это хлорсодержащий препарат (да)

13.Для дезинфекции термометров используют 0,1% р-р

сульфохлорантина Д (да)

14.Медицинский инструмент с целью обеззараживания погружают в 0,05% раствор анолита на 30 минут (да)

15.Дезинфекцию грелок проводят 0,1% раствором сульфохлорантина Д однократным протиранием ветошью (нет)

Задача № 1

Вы – лаборант клинико – диагностической лаборатории.

Из лечебных отделений к Вам поступил биоматериал для выполнения анализов. На центрифуге произошло разбрызгивание крови.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 2.

Вы – м/с процедурного кабинета. После выполнения пациенту инъекции, Вы укололи палец.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 3.

Вы – м/с перевязочного кабинета. Во время перевязки Вам на кожу попала кровь пациента.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 4.

м/с перевязочного кабинета пришла на работу с явлениями ОРВИ: першение в горле, гиперемия глаз, чихание, общее недомогание. Послеоперационному больному сделала перевязку. Ночью у него поднялась температура тела до 38,5°С, появилась боль в горле, симптомы общей интоксикации.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 5

Вы — операционная м/с. Во время операции кровь пациента попала Вам на слизистую глаза.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 6.

Вы – м/с ЦСО.

При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с помощью азопирамовой пробы появилось окрашивание реактива в фиолетовый цвет, переходящий в бурый, в течение 1 минуты.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача №7

Вы – старшая м/с хирургического отделения.

При определении пригодности рабочего раствора азопирама нанесли 2 капли его на кровяное пятно. В течение 1 минуты цвет кровяного пятна не изменился.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств

Задача № 8

Вы – м/с процедурного кабинета.

При вскрытии стерилизационной коробки КФ с универсальной укладкой обнаружили, что индикаторная лента ИС – 132 не изменила свой цвет.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 9

Вы — м/с операционного блока.

При снятии использованных перчаток вы коснулись незащищёнными пальцами рабочей поверхности отработанной перчатки.

Ваши действия.

Задача № 10.

Вы – м/с процедурного кабинета.

При выполнении манипуляции кровь пациента попала Вам в рот.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 11.

Вы – палатная м/с.

При транспортировке крови Вы разбили пробирку.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Задача № 12

Вы – м/с ЦСО.

При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с помощью фенолфталеиновой пробы появилось окрашивание реактива в розово – малиновый цвет в течение 1 минуты.

Определите ситуацию.

Определите объём сестринских вмешательств.

Эталон ответов на тестовое задание «Дезинфекция. Стерилизация»

Вариант № 1

1. Г

2. В

3. В

4. Б

5. Г

6. А

7. В

8. Б

9. Б

10. Б

11. В

12. Б

13. А

14. Г

15. Б

16. В

17. В

18. Г

19. А

20. Г

21. В

22. Г

23. В

24. Б

25. Г

26. Г

27. Б

28. Б

29. В

30. В

31. Г

32. В

33. А

34. Б

35. В

36. Г

37. Г

38. Г

39. В

40. А

Эталон ответов на тестовое задание «Дезинфекция. Стерилизация»

Вариант № 2

1. Г

2. А

3. В

4. А

5. Г

6. Г

7. А

8. Г

9. Б

10. А

11. А

12. А

13. Б

14. Г

15. Б

16. В

17. Б

18. Б

19. Б

20. Б

21. Б

22. А

23. Г

24. А

25. Г

26. В

27. А

28. Г

29. В

30. Б

31. Б

32. В

33. Г

34. Б

35. В

36. Г

37. Б

38. Г

39. А

40. В

Договір — UA-2020-12-07-004365-b-b1 — Держзакупівлі.онлайн

САН.ЭПИДРЕЖИМ

САН.ЭПИДРЕЖИМ

#ПОЛНОЕ УНИЧТОЖЕНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ, СПОР И ВИРУСОВ НАЗЫВАЕТСЯ:

-дезинфекцией

+стерилизацией

-дезинсекцией

-дератизацией

#НЕ ЯВЛЯЕТСЯ УРОВНЕМ ОБРАБОТКИ РУК МЕДСЕСТРЫ:

-социальный

-гигиенический

-хирургический

+биологический

#ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ 1 ЛИТРА МОЮЩЕГО РАСТВОРА ПРИ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ

ОЧИСТКИ ИНСТРУМЕНТАРИЯ НЕОБХОДИМО ВЗЯТЬ ПЕРГИДРОЛЬ 27,5% (В МЛ):

-33

-30

+17

-14

#ЕЖЕДНЕВНАЯ ВЛАЖНАЯ УБОРКА В ПАЛАТАХ ПРОВОДИТСЯ НЕ РЕЖЕ:

-4 раз

-3 раз

+2 раз

-1 раза

#ДЛЯ ХИМИЧЕСКОЙ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИНСТРУМЕНТОВ ПРИМЕНЯЕТСЯ ПЕРЕКИСЬ ВОДОРОДА:

+6%

-4%

-3%

-1%

#ДЛИТЕЛЬНОСТЬ КИПЯЧЕНИЯ В 2% РАСТВОРЕ ГИДРОКАРБОНАТА НАТРИЯ ПРИ

ДЕЗИНФЕКЦИИ МЕДИНСТРУМЕНТАРИЯ МНОГОРАЗОВОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ:

-60 мин.

-45 мин.

+15 мин.

-30 мин.

#ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ОДНОРАЗОВЫХ ПЛАСТМАССОВЫХ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО

НАЗНАЧЕНИЯ В ПРОМЫШЛЕННОСТИ ИСПОЛЬЗУЮТ:

-УФ-излучение

-стерилизацию текучим паром

+гамма-излучение

-дробную стерилизацию

#РАСТВОР ХЛОРАМИНА, ПРИМЕНЯЕМЫЙ ДЛЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ МНОГОРАЗОВЫХ

МЕДИНСТРУМЕНТОВ У БОЛЬНЫХ ВИРУСНЫМ ГЕПАТИТОМ:

-10%

-6%

-5%

+3%

#РЕЖИМ СТЕРИЛИЗАЦИИ РЕЗИНОВЫХ ИЗДЕЛИЙ В АВТОКЛАВЕ:

-Т=132 град.С, давление 2 атм., 45 мин.

-Т=132 град.С, давление 2 атм., 10 мин.

+Т=120 град.С, давление 1,1 атм., 45 мин.

-Т=120 град.С, давление 0,5 атм., 20 мин.

#РЕЖИМ ДЕЗИНФЕКЦИИ ПРЕДМЕТОВ УХОДА ИЗ РЕЗИНЫ (ГРЕЛКИ, ПУЗЫРИ ДЛЯ ЛЬДА):

-двухкратное протирание моющим раствором

+двухкратное протирание раствором дезинфектанта с интервалом в 15 мин.

-погружение в раствор дезинфектанта

-погружение в моющий раствор

#ЭКСПОЗИЦИЯ ПРИ ДЕЗИНФЕКЦИИ ШПАТЕЛЕЙ В 4% РАСТВОРЕ ПЕРЕКИСИ

ВОДОРОДА (В МИН.):

-60

-45

+90

-15

#ПОСЛЕ ОСВОБОЖДЕНИЯ СУДЕН И МОЧЕПРИЁМНИКОВ ОТ СОДЕРЖИМОГО:

-погружают в 1% раствор хлорамина на 15 мин.

+погружают в 1% раствор хлорамина на 120 мин.

-погружают в 1% раствор хлорамина на 60 мин.

-дважды протирают 1% раствором хлорамина

#ЭКСПОЗИЦИЯ ПРИ ДЕЗИНФЕКЦИИ В 3% РАСТВОРЕ ХЛОРАМИНА ПРЕДМЕТОВ,

С КОТОРЫМИ СОПРИКАСАЛСЯ БОЛЬНОЙ ГЕПАТИТОМ ИЛИ СПИДом (В МИН.):

-90

-45

+60

-15

#ПОКАЗАНИЯМИ К СТЕРИЛИЗАЦИИ МЕДИНСТРУМЕНТАРИЯ ЯВЛЯЕТСЯ ВСЁ, КРОМЕ:

+контакта с кожными покровами

-контакта со слизистыми

-контакта с раневыми поверхностями

-контакта с кровью

#СПЕЦОДЕЖДУ, ЗАГРЯЗНЁННУЮ КРОВЬЮ, НЕОБХОДИМО:

+снять и замочить в растворе дезинфектанта

-отправить в прачечную

-обработать место загрязнения тампоном, смоченным в дезрастворе

-снять и место загрязнения застирать с мылом

#НЕДОСТАТОЧНО ОБРАБОТАННЫЕ РУКИ МЕДПЕРСОНАЛА ЯВЛЯЮТСЯ:

-источником инфекции

-восприимчивым организмом

+фактором передачи

-источником инфекции и фактором передачи

#ЭКСПОЗИЦИЯ ПРИ ЗАМАЧИВАНИИ МЕДИЦИНСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ В МОЮЩЕМ

РАСТВОРЕ ПРИ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКЕ (В МИН.):

-45

-30

+15

-10

#АППАРАТ, ПРИМЕНЯЕМЫЙ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ПЕРЕВЯЗОЧНОГО МАТЕРИАЛА:

-термостат

+автоклав

-сухожаровой шкаф

-стерилизатор

#ДЕЗИНФЕКЦИЯ ВАННЫ ПОСЛЕ ПАЦИЕНТА:

-протереть раствором дезинфектанта однократно

-обработать моющим раствором

-вымыть горячей водой с моющим порошком

+протереть 2 раза с интервалом 10-15 мин. р-ром дезинфектанта

#КОНЦЕНТРАЦИЯ РАСТВОРА ХЛОРАМИНА ПРИ ДЕЗИНФЕКЦИИ КЛИЗМЕННЫХ

НАКОНЕЧНИКОВ МНОГОРАЗОВОГО ПРИМЕНЕНИЯ:

-6%

-4%

+3%

-1%

#ОБРАБОТКА СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА МЕДСЕСТРЫ ПРИ ПОПАДАНИИ

КРОВИ ПАЦИЕНТА ПРОВОДИТСЯ:

-6% р-ром перекиси водорода

-4% р-ром перекиси водорода

-1% р-ром перекиси водорода, проточной водой

+0,05% р-ром перманганата калия, 70 град. спиртом

#УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ ХЛОРСОДЕРЖАЩИХ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ СРЕДСТВ:

-не имеют значения

-на свету

+в тёмном сухом помещении

-30 минут

#МЕТОД КОНТРОЛЯ СТЕРИЛЬНОСТИ:

-визуальный

+бактериологический

-физический

-фармакологический

#ВРЕМЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ ШПРИЦЕВ И ИГЛ ОДНОРАЗОВОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В 5%

РАСТВОРЕ ХЛОРАМИНА (В МИН.):

-120 мин.

+60 мин.

-45 мин.

-15 мин.

#ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ 10% ОСВЕТЛЁННОГО РАСТВОРА ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ 10л

НЕОБХОДИМО ВЗЯТЬ СУХОЙ ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ (В ГРАММАХ):

+1000

-500

-300

-100

#ЭКСПОЗИЦИЯ ПРИ ДЕЗИНФЕКЦИИ 6% РАСТВОРОМ ПЕРИКИСИ ВОДОРОДА С 0,5%

МОЮЩИХ СРЕДСТВ ПРЕДМЕТОВ, С КОТОРЫМИ СОПРИКАСАЛСЯ БОЛЬНОЙ ГЕПАТИТОМ

ИЛИ СПИДОМ (В МИН.):

+60

-45

-30

-15

#К ТЕРМИЧЕСКОМУ МЕТОДУ ДЕЗИНФЕКЦИИ ОТНОСИТСЯ:

+кипячение

-ультрафиолетовое облучение -УФО

-двухкратное протирание дезинфицирующим раствором

-погружение в моющий раствор

#ПРИ ХРАНЕНИИ ХЛОРСОДЕРЖАЩИХ ПРЕПАРАТОВ ИХ АКТИВНОСТЬ:

-увеличивается

-не изменяется

+уменьшается

-исчезает полностью

#ИСПОЛЬЗОВАННЫЙ УБОРОЧНЫЙ ИНВЕНТАРЬ ПОДЛЕЖИТ:

-уничтожению

-проветриванию

-промыванию

+дезинфекции

#К МЕТОДАМ ДЕЗИНФЕКЦИИ ОТНОСИТСЯ ВСЁ, КРОМЕ:

+рационального

-физического

-химического

-механического

#ЭКСПОЗИЦИЯ ПРИ ДЕЗИНФЕКЦИИ МЕДИЦИНСКОГО ИНСТРУМЕНТАРИЯ В 3%

РАСТВОРЕ ХЛОРАМИНА (В МИН.):

-90

+60

-30

-15

#ОБРАБОТКА КОЖИ ПРИ ПОПАДАНИИ НА НЕЁ ВИЧ-ИНФИЦИРОВАННОГО МАТЕРИАЛА

ПРОВОДИТСЯ:

-96 град. спиртом

+70 град. спиртом

-6% раствором перекиси водорода

-3% раствором хлорамина

#ДЕЗИНФЕКЦИЯ МЕДИЦИНСКИХ ТЕРМОМЕТРОВ ПРОВОДИТСЯ:

-путем погружения в моющий раствор

-путем протирания спиртосодержащим ватным тампоном

+путем погружения в дезинфектант (с учетом концентрации и экспозиции)

-путем прополаскивания проточной водой

#ДЛЯ ВЫСУШИВАНИЯ РУК ПОСЛЕ ГИГИЕНИЧЕСКОЙ ОБРАБОТКИ ИСПОЛЬЗУЕТСЯ:

+одноразовая салфетка

-многоразовая пеленка

-руки не высушиваются

-не имеет значения

#ДЛЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ ЖИДКИХ ВЫДЕЛЕНИЙ ПАЦИЕНТА ИСПОЛЬЗУЕТСЯ:

-40% раствор формалина

-5% раствор карболовой кислоты

-0,2% раствор хлорамина

+сухая хлорная известь

#УБОРКА СТОЛОВОЙ И БУФЕТА ДОЛЖНА ПРОВОДИТЬСЯ:

-2 раза в день

-3 раза в день

+после каждой раздачи пищи

-в конце рабочего дня

#МОЮЩИЙ КОМПЛЕКС В СЛУЧАЕ, ЕСЛИ В ПРОЦЕССЕ РАБОТЫ ОН

НЕ ИЗМЕНИЛ ЦВЕТ, МОЖНО ИСПОЛЬЗОВАТЬ:

-однократно

-2 раза

+до 6 раз

-3 раза

#ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ 1л 1% РАСТВОРА ХЛОРАМИНА НЕОБХОДИМО СУХОГО

ПОРОШКА (В ГРАММАХ):

-100

-50

-30

+10

#ЩАДЯЩИЙ РЕЖИМ СТЕРИЛИЗАЦИИ РЕЖУЩИХ МЕДИНСТРУМЕНТОВ В ВОЗДУШНОМ

СТЕРИЛИЗАТОРЕ:

+Т=160 град.С, время 150 мин.

-Т=132 град.С, время 60 мин.

-Т=180 град.С, время 60 мин.

-Т=180 град.С, время 45 мин.

#КЛИЗМЕННЫЕ НАКОНЕЧНИКИ СРАЗУ ЖЕ ПОСЛЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ПОДЛЕЖАТ:

-кипячению

-стерилизации

+дезинфекции

-споласкиванию под проточной водой

#КУШЕТКУ, КОТОРУЮ ИСПОЛЬЗУЮТ ДЛЯ ОСМОТРА ПАЦИЕНТА, НЕОБХОДИМО

ДЕЗИНФИЦИРОВАТЬ:

+после каждого пациента

-один раз в день

-в конце смены

-во время генеральной уборки

#МЕТОД ДЕЗИНФЕКЦИИ МЯГКОГО ИНВЕНТАРЯ ПОСЛЕ ВЫПИСКИ ПАЦИЕНТА:

-замачивание в 3% растворе хлорамина

-кипячение

+обеззараживание в дезинфекционной камере

-проветривание

#НАИБОЛЕЕ НАДЁЖНЫЙ МЕТОД КОНТРОЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ:

-механический

-химический

-физический

+биологический

#ПРИ ПОЛОЖИТЕЛЬНОЙ ФЕНОЛФТАЛЕИНОВОЙ ПРОБЕ ПОЯВЛЯЕТСЯ ОКРАШИВАНИЕ:

-сине-зелёное

-фиолетовое

+розовое

-коричневое

#ПОСЛЕ ПРОВЕДЕНИЯ ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ ДЛЯ ПРОМЫВАНИЯ

МЕДИНСТРУМЕНТОВ ИСПОЛЬЗУЕТСЯ ВОДА:

+проточная

-кипячёная

-дистиллированная

-дважды дистиллированная

#ФЕНОЛФТАЛЕИНОВАЯ ПРОБА ПРОВОДИТСЯ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОСТАТКОВ:

-масляного раствора

-крови

+моющего раствора

-лекарственного средства

#В СОСТАВ ЦСО ВХОДИТ:

+стерильный блок

-процедурный кабинет

-изолятор

-кабинет врача

#УПАКОВКА МАТЕРИАЛА ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ ПРОВОДИТСЯ В ЦСО:

-приёмной

-сортировочной

-моечной

+упаковочной

#ДЛЯ ДЕЗИНФЕКЦИИ ПОЛА ВО ВРЕМЯ ВЛАЖНОЙ УБОРКИ ПАЛАТ ИСПОЛЬЗУЕТСЯ:

+раствор дезинфектанта

-моющий раствор

-раствор дезинфектанта и СМС

-чистая вода

#ДЛИТЕЛЬНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ НАКРЫТОГО СТЕРИЛЬНОГО СТОЛА (В ЧАСАХ):

-24

-18

-12

+4-6

#ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЕ РУК ПРОЦЕДУРНОЙ МЕДСЕСТРЫ ПЕРЕД ИНЪЕКЦИЯМИ

ПРОВОДИТСЯ РАСТВОРОМ:

-40 град. спирта

+70 град. спирта

-96 град. спирта

-йода

#ПОМЕЩЕНИЕ ПОСЛЕ ОБРАБОТКИ ПЕДИКУЛЁЗНОГО ПАЦИЕНТА ДЕЗИНФИЦИРУЕТСЯ

РАСТВОРОМ:

-3% хлорной извести

-3% хлорамина

-1% хлорамина

+0,15% карбофоса

#КОНЦЕНТРАЦИЯ СПИРТА, ИСПОЛЬЗУЕМОГО ДЛЯ ОБРАБОТКИ КОЖИ ПАЦИЕНТА

ПЕРЕД ИНЪЕКЦИЕЙ (В ГРАД.):

-96

-80

+70

-60

#К ВИДАМ ДЕЗИНФЕКЦИИ ОТНОСИТСЯ ВСЁ, КРОМЕ:

-очаговоЙ,

-профилактическоЙ

+предварительноЙ

-заключительноЙ

#УНИВЕРСАЛЬНОЙ ПРОБОЙ ДЛЯ ПРОВЕРКИ МЕДИНСТРУМЕНТАРИЯ НА НАЛИЧИЕ

СКРЫТОЙ КРОВИ ЯВЛЯЕТСЯ:

-бензидиновая

-фенолфталеиновая

+азопирамовая

-бензойная

#ПРОБА НА НАЛИЧИЕ СКРЫТОЙ КРОВИ НА ИЗДЕЛИЯХ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ:

-фенолфталеиновая

+азопирамовая

-биологическая

-амидопириновая

#В СУХОЖАРОВОЙ ШКАФ ИНСТРУМЕНТЫ ЗАКЛАДЫВАЮТСЯ:

-в биксе

+в крафт-пакете

-в открытом виде

-в двухслойной бязи

#ВЕДУЩИМИ ФАКТОРАМИ ПЕРЕДАЧИ ПАРЕНТЕРАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ В ЛПУ ЯВЛЯЮТСЯ:

-вода и воздух

+кровь и инструменты

-руки персонала

-предметы ухода

#СТЕРИЛИЗАЦИЯ — ЭТО МЕТОД УНИЧТОЖЕНИЯ:

-патогенных форм

-всех микроорганизмов

+микроорганизмов и их спор

#МЕРЫ ПРОФИЛАКТИКИ ВНУТРИБОЛЬНИЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ ПРЕДУСМОТРЕНЫ

ИНСТРУКЦИЯМИ ПО:

+санитарно-противоэпидемическому режиму ЛПУ

-лечению нозологических форм болезни

-лечебно-охранительному режиму

-исследованиям пациента

#ИНФЕКЦИОННОЕ ЗАБОЛЕВАНИЕ, КОТОРЫМ ПАЦИЕНТ ЗАРАЖАЕТСЯ В РЕЗУЛЬТАТЕ

ПОЛУЧЕНИЯ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ, А ПЕРСОНАЛ В ПРОЦЕССЕ ПРОФЕССИОНАЛЬНОЙ

ДЕЯТЕЛЬНОСТИ, НАЗЫВАЕТСЯ:

+внутрибольничными

-карантинными

-особо-опасными

-конвекционными

#ВЕДУЩИЙ ПУТЬ ЗАРАЖЕНИЯ ГЕПАТИТОМ В И С И ВИЧ В МЕД УЧРЕЖДЕНИЯХ:

-контактно-бытовой

-фекально-оральный

+парэнтеральный

-вертикальный

#ПРИ ХРАНЕНИИ ХЛОРСОДЕРЖАЩИХ ПРЕПАРАТОВ ИХ АКТИВНОСТЬ:

-увеличивается

-не изменяется

+изменяется

-исчезает полностью

#МЕДИЦИНСКИЕ КЛЕЕНКИ ДЕЗИНФИЦИРУЮТСЯ МЕТОДИКОЙ:

-кипячение

+2-кратное протирание

-орошение

-заливание

#ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ 5% РАСТВОРА ХЛОРАМИНА В КОЛИЧЕСТВЕ 3 ЛИТРОВ

НЕОБХОДИМО:

-30 грамм хлорамина

-60 грамм хлорамина

-90 грамм хлорамина

+150 грамм хлорамина

#ПЕРВЫЙ ЭТАП ОБРАБОТКИ ИНСТРУМЕНТАРИЯ НАЗЫВАЕТСЯ:

+дезинфекция

-предстерилизационная очистка

-стерилизация

-очистка

#МАТОЧНЫЙ ОСВЕТЛЕННЫЙ РАСТВОР ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ МОЖНО ХРАНИТЬ:

-1 сутки

-3 суток

+7 суток

-20 суток

#РАБОЧИЕ РАСТВОРЫ ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ ГОТОВЯТ ИЗ:

-сухой хлорной извести

-5% раствора хлорной извести

+10% раствора хлорной извести

-хлорамина

#ВИД ОЧАГОВОЙ ДЕЗИНФЕКЦИИ:

-профилактическая

+текущая

-биологическая

-химическая

Дата добавления: 2015-12-08; просмотров: 333 | Нарушение авторских прав

mybiblioteka.su — 2015-2021 год. (0.143 сек.)

Перекиси водорода при предстерилизационной обработке состоит — КиберПедия

в) + 160 мл. перекиси водорода 5 гр. смс до 1 л. воды

=7. После использования резиновые перчатки подвергаются

а) + дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации

=8. Ежедневная влажная уборка в палатах проводится (раз)

в) + 2

9. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода (%)

а) + 6

10. Продолжительность дезинфекции медицинских термометров в 0,5 % растворе хлорамина составляет (мин.)

б) + 30

=11. Дезинфекция ножниц, бритвенных приборов проводится

а) + погружением в 70 гр. спирт на 30 мин.

=12. Обработку рук при проведении процедур и манипуляций медсестра проводит

в) + в начале и в конце процедуры

=13. Обработка клеенок и клеенчатых фартуков после их использования включает

1. двукратное протирание 3 % р-ром хлорамина

2. погружение на 60 мин. в 1 % раствор хлорамина

3. двукратное протирание 1 % раствором хлорамина с интервалом в 15 мин.

Двукратное влажное протирание

в) + 3

Для стерилизации одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения в промышленности используют

в) + гамма-излучение

=15. Для дезинфекции мед. инструментов у больных с вирусным гепатитом применяют раствор хлорамина (%)

г) + 3

=16. Стерилизацию перчаток в паровом стерилизаторе проводят при давлении

в) + 1,1 атм.

=17. Дезинфекция предметов ухода из резины (грелки, пузыри для льда) включает

1. двукратное протирание 3 % раствором хлорамина

2. двукратное протирание 1 % раствором хлорамина с интервалом в 15 мин.

Кипячение

4. погружение в 3 % раствор хлорамина на 60 мин.

б) + 2

Экспозиция дезинфекции 70 гр. спиртом проводится (мин.)

в) + 30

После освобождения суден и мочеприемников от содержимого их погружают в раствор хлорамина

г) + 1 % на 60 мин.

20. Экспозиция дезинфекции в 3% растворе формалина предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом составляет (мин.)

в) + 30

=21. Экспозиция дезинфекции в 5% растворе хлорамина предметов, с которыми соприкасался туберкулезный больной составляет (мин.)

а) + 240

22. Для дезинфекции мед. инструментов многоразового использования, с которыми контактировал туберкулезный больной, применяется раствор хлорамина (%)

а) + 5

Дезинфекция плевательницы после использования пациентом с туберкулезом легких проводится путем

а) + погружения в 5% раствор хлорамина на 60 мин.

=24. 1л моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментов состоит

1. 5г любого порошка, 200мл 3 % перекиси водорода довести до 1л водой

2. 5г порошка <Лотос>, 160мл 3 % перекиси водорода,довести до 1л водой

3. 5г порошка <Лотос> развести в 1л воды

Г любого порошка развести в 990мл воды

б) + 2

=25. Концентрация перекиси водорода в составе моющего раствора (%)

б) + 3

Дезинфекция ветошей проводится в течение

в) + 15 мин. от момента закипания в 2 % растворе соды

=27. Экспозиция замачивания медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке составляет (мин.)

в) + 15

Кварцевание процедурного кабинета проводят

г) + через 2 часа по 30 мин.

Для стерилизации перевязочного материала используют

б) + автоклав

Для генеральной уборки операционной используют раствор

а) + 6% перекиси водорода с 0,5% моющего средства

Для контроля температуры в паровом стерилизаторе щадящего режима применяют

б) + бензойную кислоту

=32. Вид уборки процедурного кабинета в конце рабочего дня — это

а) + заключительная

Номер приказа МЗ СССР, регламентирующий санэпидрежим ЛПУ по профилактике гепатита

в) + 408

=34. Генеральная уборка операционного блока и перевязочных проводится

в) + 1 раз в неделю

=35. Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание

г) + фиолетовое

36. Экспозиция дезинфекции инструментов в 3% растворе хлорамина составляет (час.)

г) + 1

=37. Экспозиция дезинфекции кипячением в дистиллированной воде предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом, составляет (мин.)

в) + 30

=38. Дезинфекция ванны после пациента проводят

1. протиранием 6% раствором перекиси водорода

2. обрабатыванием 3% раствором хлорамина

Мытьем горячей водой с моющим порошком

4. протиранием 2 раза с интервалом 15 мин. 1% раствором хлорамина

г) + 4

39. При дезинфекции клизменных наконечников используют раствор хлорамина (%)

в) + 3

При попадании биологических жидкостей на слизистые медсестры применяют раствор

г) + 0,05 % перманганата калия, 70 гр. спирт

Обработка рук медсестры, согласно Европейскому стандарту ЕN 1500, не включает

а) гигиеническое мытье;

б) гигиеническую антисептику;

в) хирургическую антисептику;

г) биологическую антисептику.

3. Уничтожение в окружающей среде патогенных микроорганизмов называется:

а) дератизацией;

б) дезинфекцией;

в) стерилизацией;

г) дезинсекцией.

4. Экспозиция при стерилизации инструментов в 6% растворе перекиси водорода комнатной температуры (в мин.):

а) 360;

б) 180;

в) 90;

г) 60.

5. Ежедневная влажная уборка в палатах проводится:

а) 4 раза;

б) 3 раза;

в) 2 раза;

г) 1 раз.

6. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода:

а) 6 %;

б) 4 %;

в) 3 %;

г) 1 %.

7. Длительность кипячения в 2% растворе гидрокарбоната натрия при дезинфекции мединструментария многоразового использования (в мин):

а) 60;

б) 45;

в) 15;

г) 30.

8. Режим стерилизации перчаток в автоклаве:

а) Т = 132 ⁰С, давление 2 атм., 45 мин.;

б) Т = 132 ⁰С, давление 2 атм., 10 мин.;

в) Т = 120 ⁰С, давление 1,1 атм., 45 мин.;

г) Т = 120 ⁰С, давление 0,5 атм., 20 мин.;

9. Режим дезинфекции предметов ухода из резины (грелки, пузыри для льда):

а) двукратное протирание 3 % раствором хлорамина;

б) двукратное протирание 1 % раствором хлорамина с интервалом в 15 мин.;

в) кипячение в 2 % растворе гидрокарбоната натрия;

г) погружение в 3 % раствор хлорамина на 60 мин.

10. Экспозиция при дезинфекции в 3% растворе хлорамина предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом (в мин.):

а) 90;

б) 45;

в) 60;

г) 15.

11. Режим дезинфекции инструментов в воздушном стерилизаторе:

а) 120⁰ – 45 мин.;

б)160⁰ – 120 мин.;

в) 132⁰ – 20 мин.;

г) 180⁰ – 30 мин.

12. Спецодежду, обильно загрязненную кровью, необходимо:

а) снять и замочить в 3 % растворе хлорамина на 1 час;

б) отправить в прачечную;

в) обработать место загрязнения тампоном, смоченным в дез. растворе;

г) снять и место загрязнения застирать с мылом.

13. В биксе с фильтром содержимое считается стерильным с момента стерилизации в течение:

а) 20 суток;

б) 7 суток;

в) 6 часов;

г) 24 часов.

14. Приготовление 1 л моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария:

а) 5 г любого порошка,160 мл 3 % перекиси водорода довести до 1 л водой;

б) 5 г порошка «Лотос», 200 мл 2 % перекиси водорода довести до 1 л водой;

в) 5 г порошка «Лотос» довести до 1 л водой;

г) 10 г любого порошка развести в 990 мл воды.

15. Рабочий раствор хлорамина годен в течение (в днях):

а) 45;

б) 30;

в) 14;

г) 1.

16. Для контроля температуры в паровом стерилизаторе применяют:

а) сахарозу, ИС–160;

б) бензойную кислоту, ИС–120;

в) янтарную кислоту, ИС–180;

г) стеритест-П, ИС–132.

17. После использования резиновые перчатки подвергаются:

а) дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации;

б) промыванию под проточной водой, стерилизации;

в) дезинфекции, стерилизации;

г) предстерилизационной очистке, стерилизации.

18. Экспозиция при дезинфекции инструментов в 3% растворе хлорамина (в час):

а) 24;

б) 4;

в) 2;

г) 1.

19. Экспозиция при дезинфекции кипячением в дистиллированной воде составляет (в мин.):

а) 90;

б) 60;

в) 30;

г) 15.

20. Номер приказа МЗ СССР, регламентирующий санэпидрежим ЛПУ по профилактике гепатита:

а) 770;

б) 720;

в) 408;

г) 288.

21. Приготовление моющего раствора для проведения предстерилизационной очистки:

а) 15 г порошка «Лотос» довести водой до 1 л;

б) 10 г порошка «Лотос» довести водой до 1 л;

в) 5 г порошка «Лотос» довести водой до 1 л;

г) 1,5 г порошка «Лотос» довести водой до 1 л.

22. Обработка слизистых оболочек медсестры при попадании на них крови пациента проводится:

а) 6 % раствором перекиси водорода;

б) 3 % раствором перекиси водорода;

в) 1 % раствором перекиси водорода, проточной водой;

г) 0,05 % раствором перманганата калия, 70 ⁰С спиртом.

23. Для контроля температуры в воздушном стерилизаторе применяют:

а) стеритест-В, ИС–180;

б) бензойную кислоту, ИС–120;

в) янтарную кислоту, ИС–180;

г) никотинамид, ИС–132.

24. Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание:

а) зеленое;

б) розовое;

в) красное;

г) фиолетовое (сине-фиолетовое).

25. Уборка столовой и буфета должна проводиться:

а) 2 раза в день;

б) 3 раза в день;

в) после каждой раздачи пищи;

г) в конце рабочего дня.

26. Срок использования моющего раствора с «Лотосом»:

а) 72 часа;

б) 48 часов;

в) 24 часа;

г) однократно.

27. Раствор хлорной извести, применяемый для дезинфекции подкладного судна, мочеприемника:

а) 10 %;

б) 5 %;

в) 3 %;

г) 1 %.

28. Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков:

а) масляного раствора;

б) крови;

в) моющего средства;

г) лекарственного средства.

29. В состав ЦСО входит:

а) стерильный блок;

б) процедурный кабинет;

в) изолятор;

г) кабинет врача.

30. При паровой стерилизации в качестве упаковочного материала применяется:

а) бумага обычная;

б) шелковая ткань;

в) марля;

г) бязь.

31. Для дезинфекции пола во время влажной уборки палат используется:

а) 10 % раствор хлорной извести;

б) 3 % раствор хлорамина;

в) 3 % раствор перекиси водорода;

г) 0,5 % раствор хлорной извести.

32. Длительность использования накрытого стерильного стола (в часах):

а) 24;

б) 18;

в) 12;

г) 4–6.

33. Обеззараживание рук процедурной медсестры перед инъекциями проводится раствором:

а) 40 ⁰ Сспирта;

б) 70 ⁰С^{спирта;}

в) 96 ⁰С спирта;

г) йода.

34. Одноразовые системы для переливания крови после использования необходимо:

а) подвергнуть дезинфекции и утилизации;

б) поместить в герметично закрытый контейнер;

в) сдать по счету старшей медсестре;

г) сдать по счету в ЦСО.

35. Для приготовления 1л 3% раствора хлорамина необходимо сухого порошка (в граммах):

а) 300;

б)100;

в) 30;

г) 10.

36. Экспозиция при стерилизации белья в автоклаве (в мин.):

а) 40;

б) 30;

в) 20;

г) 10.

37. Температура моющего раствора с «Лотосом»:

а) 40–45 ⁰С;

б) 25–30 ⁰С;

в) 50–55 ⁰С;

г) 60–65 ⁰С.

38. На крафт-пакете указывают:

а) дату стерилизации, отделение;

б) вместимость, отделение;

в) дату стерилизации, вместимость;

г) дату стерилизации.

39. Длительность сохранения мединструментария в мягкой бязевой упаковке в условиях стерильности (в часах):

а) 72;

б) 48;

в) 24;

г) 12.

40. ЦСО – это:

а) центральное специализированное отделение;

б) централизованное стерилизационное отделение;

в) централизованное специализированное отделение;

г) централизованное стерильное отделение.

ЛИТЕРАТУРА

1.Гигиенические требования к размещению, устройству, оборудованию и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров. Cанитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.3.1375–0.

2.Санитарно-эпидемиологические требования к организации и осуществлению дезинфекционной деятельности. Санитарно- эпидемиологические правила СП 3.5.1378–03.

3.Приказ МЗ СССР от 04.08.1983 г. № 916 «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц (отделений)».

4.ОСТ 42–21–2–85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения».

5.Приказ МЗ СССР от 12.06.1989 г. № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране».

6.Приказ МЗ РФ от 27 ноября 1997 г. № 345 «О совершенствовании мероприятий по профилактике ВБИ в акушерских стационарах».

7.Профилактика ВИЧ-инфекции и парентеральных вирусных гепатитов у медицинского персонала учреждений здравоохранения: Методические рекомендации. – Курган, областной центр по профилактике и борьбе со СПИДом. – 2000.

8.Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения. МЗ РФ, № МУ–287–113, 30.12.1998 г.

9.Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемиологическому надзору за вирусными гепатитами. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.958–99.

10.Организация и проведение производственного контроля за соблюдением санитарных правил и выполнением санитарно-противоэпидемических (профилактических) мероприятий. Санитарные правила СП 1.1.1058–01.

11.Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений. Санитарные нормы и правила СанПиН 2.1.7.728–99.

12.Инструкция № 154.021.1998г. ИП по применению «Индикаторов стерилизации одноразового применения ИС–120, ИС–132, ИС–160, ИС–180» для контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

13.Мухина С.А., Тарновская И.И. Практическое руководство к предмету «Основы сестринского дела», М.: Родник, 1998.

14.Журнал «Медицинская сестра», 2004.

Моисеева З.И.

Учебно-методическое пособие для студентов

по предмету: «Основы сестринского дела»

«Инфекционный контроль и профилактика

внутрибольничной инфекции»

Специальности: «Лечебное дело» (060101),

«Акушерское дело» (060102), «Сестринское дело (060109)

Усл. печ. л. 5,81

Тест с ответами на тему: “Инфекционная безопасность”

1. Дезинфекция ножниц, бритвенных приборов проводится таким образом:
а) погружением в спирт 70 С на 15 мин.+
б) погружением в 1% раствор хлорамина на 1 час
в) протиранием спиртом
г) кипячением в течение 30 мин. в воде

2. Выберите режим обработки клеенок и клеенчатых фартуков после их использования:
а) двукратное протирание 3% хлорамином
б) погружение на 60 мин. в 1% раствор хлорамина
в) двукратное протирание 1% раствором хлорамина с интервалом в 15 мин.+
г) двукратное влажное протирание

3. Определите продолжительность дезинфекции медицинских термометров в 2% растворе хлорамина (в минутах):
а) 15
б) 20
в) 5 +

4. Для стерилизации одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения в промышленности используют:
а) УФ-излучение
б) стерилизацию текучим паром
в) гамма-излучение+
г) дробную стерилизацию

5. Выберите раствор хлорамина, который применяется для дезинфекции многоразовых мединструментов у больных вирусным гепатитом:
а) 10%
б) 6%
в) 1%
г) 3%+

6. Отметьте режим стерилизации перчаток в автоклаве:
а) Т=132 С, давление 2 атм., 45 мин.
б) Т=132 С, давление 2 атм., 10 мин.
в) Т=120 С, давление1,1 атм., 45 мин.+
г) Т=120 С, давление 0,5 атм., 20 мин.

7. Определите режим дезинфекции предметов ухода из резины (грелки, пузыри для льда):
а) двукратное протирание 3% раствором хлорамина
б) двукратное протирание 1% раствором хлорамина с интервалом в 15 мин.+
в) кипячение в 2% растворе гидрокарбоната натрия
г) погружение в 3% раствор хлорамина на 60 мин.

8. Выберите экспозицию при дезинфекции шпателей в 3% растворе перекиси водорода (в минутах):
а) 60
б) 45
в) 30+
г) 15

9. В хирургии после освобождения суден и мочеприемников от содержимого их:
а) погружают в 1% раствор хлорамина на 15 мин.
б) погружают в 3% раствор хлорамина на 30 мин.+
в) погружают в 1% раствор хлорамина на 60 мин.
г) дважды протирают 1% раствором хлорамина

10. Выберите экспозицию при дезинфекции в 3% растворе хлорамина предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом (в минутах):
а) 90
б) 45
в) 60
г) 15

11. Выберите режим кварцевания процедурного кабинета:
а) 2 раза в день
б) через 2 часа по 30 мин. +
в) 3 раза в день

12. Отметьте экспозицию при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке (в минутах):
а) 30
б) 25
в) 15 +

13. Раствор, который используется для генеральной уборки процедурного кабинета:
а) 3% раствор хлорной извести
б) 6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства +
в) 1% раствор хлорамина

14. Дезинфекция ножниц, бритвенных приборов проводится таким образом:
а) погружением в спирт 70С на 15 мин. +
б) кипячением в течение 30 мин. в воде
в) протиранием спиртом

15. Выберите режим обработки клеенок и клеенчатых фартуков после их использования:
а) двукратное протирание 3% хлорамином
б) двукратное влажное протирание
в) двукратное протирание 1% раствором хлорамина с интервалом в 15 мин. +

16. Аппарат, который применяется для стерилизации перевязочного материала:
а) сухожаровой шкаф
б) термостат
в) автоклав +

17. Отметьте режим дезинфекции инструментов в воздушном стерилизаторе:
а) 1200 – 45 мин.+
б) 1600 – 120 мин.
в) 1320 – 20 мин.
г) 1800 – 30 мин.

18. Стерилизация в сухожаровом шкафу проводится при температуре (в С):
а) 180+
б) 150
в) 120
г) 90

19. Обеззараживание рук процедурной медсестры перед инъекциями проводится раствором ___ спирта.
а) 40%
б) 70% а+
в) 96%

20. Одноразовые системы для переливания крови после использования необходимо:
а) подвергнуть дезинфекции и утилизации+
б) поместить в герметично закрытый контейнер
в) сдать по счету старшей медсестре
г) сдать по счету в ЦСО

21. Определите срок хранения стерильных растворов, изготовленных в аптеке и закупоренных “под бумажную обвязку” (в сутках):
а) 10
б) 7
в) 5
г) 3+

22. Выберите срок хранения стерильных растворов, изготовленных в аптеке и закупоренных “под обкатку” (в сутках):
а) 30+
б) 10
в) 5
г) 3

23. Выберите, что применяется при паровой стерилизации в качестве упаковочного материала:
а) бумага обычная
б) шелковая ткань
в) марля
г) бязь+

24. Ежедневная влажная уборка в палатах проводится такое количество раз:
а) 2 раза +
б) 4 раза
в) 1 раз

25. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода:
а) 4%
б) 6% +
в) 1%

26. Концентрация спирта, которое используется для обработки кожи пациента перед инъекцией (в град.):
а) 96
б) 80
в) 70+
г) 60

27. В стерильном блоке ЦСО проводят следующее:
а) выгрузку стерильного материала+
б) предстерилизационную очистку
в) упаковку биксов
г) упаковку крафт-пакетов

28. Для дезинфекции пола во время влажной уборки палат используется __ раствор хлорной извести.
а) 10%
б) 0,5% +

29. Какова длительность использования накрытого стерильного стола (в часах)?
а) 24
б) 18
в) 12
г) 4-6+

30. Определите, чем являются недостаточно обработанные руки медперсонала:
а) источником и фактором передачи инфекции
б) фактором передачи инфекции +
в) источником инфекции

Стерилизация. Принципы работы ЦСО. — Студопедия.Нет

1. Полное уничтожение микроорганизмов, спор и вирусов:

а) дезинфекция

б) стерилизация

в) дезинсекция

г) дератизация

2. Проба для проверки медицинского инструментария на наличие скрытой крови:

а) бензидиновая

б) фенолфталеиновая

в) азопирамовая

г) бензойная

3. Экспозиция при стерилизации инструментов в 6% растворе перекиси водорода комнатной температуры (мин.):

а) 360

б) 180

в) 90

г) 6

4. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода (%):

а) 6

б) 4

в) 3

г) 1

5. Стерилизация одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения в промышленности:

а) УФ-излучение

б) текучим паром

в) гамма-излучение

г) кварцевание

6. Приготовление 1л моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария:

а) 5г любого порошка, 200 мл 3% перекиси водорода довести до 1 л водой

б) 5г порошка «Лотос»,160 мл 3% перекиси водорода, довести до 1 л водой

в) 5г порошка «Лотос» развести в 1 л воды

г) 10г любого порошка развести в 990 мл воды

7. Экспозиция при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке (мин.):

а) 45

б) 30

в) 15

г) 10

8. Аппарат, применяемый для стерилизации перевязочного материала:

а) термостат

б) автоклав

в) сухожаровой шкаф

г) стерилизатор

9. Цвет окрашивания положительной азопирамовой пробы на скрытую кровь:

а) зеленый

б) розовый

в) красный

г) фиолетовый

10. Режим стерилизации медицинского инструментария многоразового использования в автоклаве (время мин./tºC /давление атм.):

а) 120/100/1

б) 60/180/ 2

в) 45/ 140/ 1

г) 20/ 132/ 2

11. Место стерилизации стеклянной лабораторной посуды:

а) автоклав

б) термостат

в) стерилизатор

г) сухожаровой шкаф

12. Срок использования моющего раствора, если в процессе работы он не изменил цвета (час):

а) 72

б) 48

в) 24

г) 12

13. Контроль стерильности перевязочного материала осуществляется путем:

а) использования химических индикаторов

б) использования биологических индикаторов

в) посева на питательные среды

г) использования физических индикаторов

14. Время и температура при щадящем режиме стерилизации режущих медицинских инструментов в воздушном стерилизаторе (мин./° С):

а) 150 /160

б) 60 /132

в) 60 /180

г) 45 /180

15. Раствор входящий в состав моющего средства для дезинфекции, наиболее эффективный при анаэробной инфекции:

а) перекись водорода

б) хлоргексидин

в) поваренная сода

г) аналит

16. Важный момент в предстерилизационной очистке:

а) промывание

б) экспозиция

в) механическая очистка

г) ополаскивание

17. Наиболее надежный метод контроля стерилизации:

а) механический

б) химический

в) физический

г) биологический

18. При положительной фенолфталеиновой пробе появляется окрашивание:

а) зеленое

б) фиолетовое

в) розовое

г) коричневое

19. После проведения предстерилизационной очистки для промывания медицинских инструментов используется вода:

а) проточная

б) кипяченая

в) дистиллированная

г) отстоянная

20. Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков:

а) масляного раствора

б) биологических выделений

в) моющего средства

г) лекарственного средства

21. Моющий раствор с использованием средства «Лотос» применяется в течение суток до появления окраски (цвет):

а) фиолетовой

б) коричневой

в) розовой

г) сиреневой

22. При стерилизации водяным паром перевязочного материала используется давление (атм.):

а) 4

б) 3

в) 2

г) 1

23. Экспозиция при стерилизации белья в автоклаве (мин.):

а) 40

б) 30

в) 20

г) 10

24. Длительность сохранения медицинского инструментария в мягкой бязевой упаковке в условиях стерильности (час):

а) 72

б) 48

в) 24

г) 12

25. ЦСО:

а) центральное специализированное отделение

б) централизованное стерилизационное отделение

в) централизованное специализированное отделение

г) централизованное стерильное отделение

26. Стерилизация в сухожаровом шкафу проводится при температуре (º С):

а) 180

б) 150

в) 120

г) 90

27. В стерильном блоке ЦСО проводят:

а) выгрузку стерильного материала

б) предстерилизационную очистку

в) упаковку биксов

г) упаковку крафт пакетов

28. В состав ЦСО входит:

а) стерильный блок

б) процедурный кабинет

в) изолятор

г) кабинет врача

29. Упаковка материала для стерилизации проводится в ЦСО:

а) приемной

б) сортировочной

в) моечной

г) упаковочной

30. Срок хранения стерильных растворов, изготовленных в аптеке и закупоренных «под бумажную обвязку» (сутки):

а) 10

б) 7

в) 5

г) 3

31. Срок хранения стерильных растворов, изготовленных в аптеке и закупоренных «под обкатку» (сутки):

а) 30

б) 10

в) 5

г) 3

МДК 04.02. Безопасная среда для пациента и персонала

Раздел 4. Обеспечение безопасной больничной среды для пациентов и персонала.

4.1. Организация безопасной среды для пациента и персонала.

1. Соответствие вредных факторов рабочей среды названию воздействия:

а) физические                                                         1. вирусы

б) биологические                                                   2. дезинфектанты

в) химические                                                        3. излучение

                                                                                4. стрессы

2. Соответствие вредных факторов рабочей среды названию воздействия:

а) психологические                                             1. бактерии

б) биологические                                                2. моющие средства

в) химические                                                     3. излучение

                                                                              4. стрессы

3. Количество вариантов постановки каталки относительно кровати:

а) 1

б) 2

в) 3

г) 4

4. Заболевание медицинского персонала, связанное с физическими нагрузками:                                                                   

а) гипертоническая болезнь

б) инфаркт миокарда

в) остеохондроз

г) стресс

5. Режим индивидуальной двигательной активности пациента назначает:

а) заведующий отделением

б) медицинская сестра

в) врач

г) сестра-хозяйка

6. Средний медицинский персонал воздействию токсических химических веществ подвергается:

а) редко

б) часто

в) иногда

г) никогда

7. Частые проявления воздействия токсических веществ у                                        медицинского персонала:

а) периодические головные боли

б) кожные проявления

в) плаксивость

г) раздражительность

8.Отдаленные последствия токсических веществ на медицинский персонал:

а) головные боли, тошнота

б) кожные высыпания, одышка

в) выкидыши, бесплодие

г) поражение внутренних органов

9. Режим обработки поверхности каталки дезинфицирующим средством (мин):

а) однократно

б) двукратно с интервалом 15 

в) двукратно без интервала

г) двукратно с интервалом 10

10. Перчатки, вызывающие профессиональные дерматиты:

а) резиновые

б) силиконовые

в) из ПВХ

г) хлопчатобумажные

11. При работе с порошковыми химическими веществами медицинский персонал использует в своей работе перчатки:

а) резиновые

б) хлопчатобумажные

в) латексные

г) силиконовые

12.При работе с цитостатиками наиболее важно провести обучение по:

а) обращению

б) проведению процедур

в) использованию защитной одежды

г) хранению и транспортировки

13.При попадании дезинфектантов, и токсических веществ на кожу и слизистые необходимо промыть большим количеством:

а) холодной воды

б) этилового спирта

в) борной кислоты

г) марганцовокислого калия

14.Потенциальное воздействие отходов анестезирующих газов в организме медицинского персонала вызывает:

а) дерматит

б) поражение почек

в) подавление репродуктивной функции

г) увеличение лимфоузлов

15.Анестезирующие газы остаются в дыхании пациента после операции в течение (дней):

а) 1

б) 3

в) 5

г) 10

16. Фактор риска падения пациентов в стационаре:

а) перегревание

б) нарушение зрения

в) переохлаждение

г) зрелый возраст

17.Для профилактики токсического действия лекарств избыточный воздух из шприца необходимо удалить в:

а) ватку

б) пустую склянку

в) атмосферу

г) колпачок

18. Вопрос объёма санитарной обработки пациента решает:

а) старшая медицинская сестра отделения

б) дежурный врач

в) палатная медицинская сестра

 г) медицинская сестра приемного отделения

19.При попадании цитостатиков на слизистую глаз возникает:

а) воспаление

б) коньюктивит

в) раздражение

г) изъявление роговицы

20. Наблюдение за соблюдением режима двигательной активности пациентом — обязанность

а) врача

б) старшей медсестры

в) санитарки

г) медсестры

21.Защитная одежда при работе медицинского персонала с цитостатиками:

а) халат с длинными рукавами

б) халат и перчатки ПВХ

в) халат, перчатки защитные очки

г) халат, перчатки ПВХ, защитные очки и респиратор

22. Ответственность за нарушение техники безопасности на рабочем месте несёт:

а) зав. отделением

б) старшая медицинская сестра

в) работник

г) пациент

23.Использованные ампулы, шприцы и иглы после работы с цитостатиками необходимо:

а) залить дезинфектантом

б) собрать в емкость, запечатать и отправить в мусоросборник

в) собрать в контейнер, запечатать, промаркировать и отправить на сжигание

г) выбросить в мусорный бак

24.При попадании на кожу и слизистые оболочки цитостатика необходимо как можно скорее:

а) протереть влажной одноразовой салфеткой

б) промыть струей воды и зарегистрировать аварию

в) промыть перманганатом калия

г) промыть фурацилином

25. При беременности воздействие цитостатиков наиболее опасно:

а) до наступления

б) первые недели

в) весь период беременности

г) последний триместр

26.Источники облучения медперсонала в ЛПУ:

а) лекарственные препараты

б) дезинфицирующие средства

в) выделения пациентов

г) рентгеновские аппараты

27.Облучение медицинской сестры при уходе за радиоактивными пациентами:

а) возможно

б) невозможно

в) иногда

г) редко

28.Наилучшей защитой для персонала, от воздействия рентген облучения является:

а) расстояние

б) расстояние и укрытие

в) расстояние, укрытие и скорость процедуры

г) учет полученной дозы облучения

29. При работе с токсическими аэрозолями используют:

а) лицевые маски

б) респираторы

в) защитные щитки

г) очки

Плазма газа перекиси водорода

| Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств

В новой версии устройства повышена эффективность стерилизатора за счет использования двух циклов со стадией диффузии перекиси водорода и плазменной стадией на цикл стерилизации. Эта ревизия, которая достигается путем модификации программного обеспечения, сокращает общее время обработки с 73 до 52 минут. Производитель считает, что повышенная активность, полученная с помощью этой системы, отчасти объясняется изменениями давления, которые происходят во время фаз нагнетания и диффузии процесса, а также тем фактом, что процесс состоит из двух равных и последовательных полупериодов, каждый с отдельным впрыск перекиси водорода. ^{856, 884, 885} Эта система и ее уменьшенная версия ^{400, 882} получили разрешение FDA 510 [k] с ограниченным применением для стерилизации медицинских изделий (Таблица 6). Биологический индикатор, используемый с этой системой, — спор Bacillus atrophaeus . ⁸⁵¹ Новейшая версия устройства, в которой используется новая система испарения, которая удаляет большую часть воды из перекиси водорода, имеет время цикла от 28 до 38 минут (ограничения по размерам устройства см. В документации производителя).

Проникновение паров перекиси водорода в длинные или узкие просветы было решено за пределами США путем использования усилителя диффузии. Это небольшая бьющаяся стеклянная ампула концентрированной перекиси водорода (50%) с эластичным соединителем, которая вставляется в просвет устройства и раздавливается непосредственно перед стерилизацией. ^{470, 885} Было показано, что усилитель диффузии стерилизует бронхоскопы, зараженные Mycobacteria tuberculosis. ⁸⁸⁶ В настоящее время усилитель диффузии не одобрен FDA.

Другая система газовой плазмы, которая отличается от вышеупомянутой несколькими важными способами, включая использование паров перуксусной кислоты-уксусной кислоты-перекиси водорода, была удалена с рынка из-за сообщений о разрушении роговицы для пациентов при обработке инструментов для офтальмологической хирургии. в стерилизаторе. ^{887, 888} В этом исследовании воздействие плазменного газа на потенциально влажные офтальмологические хирургические инструменты с маленькими отверстиями и латунными деталями привело к разложению латуни на медь и цинк. ^{888, 889} Экспериментаторы показали, что при воздействии на глаза кролика промываний инструментов, стерилизованных газовой плазмой, была зафиксирована декомпенсация роговицы. Эта токсичность крайне маловероятна при плазменном процессе газообразного пероксида водорода, поскольку токсичная растворимая форма меди не образуется (Л.А. Фельдман, письменное сообщение, апрель 1998 г.).

Стерилизация паром перекиси водорода

1 августа 2015 г. (том 35, № 14)

с его уникальными преимуществами, H ₂ O ₂ Может лучше выдерживать высокие температуры, превосходя другие химические стерилизаторы

Помещения и оборудование для биопроизводства обеспечивают почти идеальную среду для поселения и роста зараженных организмов.Многочисленные сообщения о случаях заражения на крупных производственных объектах подчеркивают клише, согласно которому загрязнение — это не «если», а «когда».

Доступны различные методы дезактивации для стерилизации оборудования для культивирования клеток, сопутствующего оборудования и помещений. Один из этих методов, стерилизация парами перекиси водорода (HPV), завоевывает репутацию безопасного, экономичного и доступного.

HPV имеет хорошо известную запатентованную версию — VHP, что означает испаренную перекись водорода.VHP, зарегистрированная торговая марка Steris, обозначает технологию, которая включает осушение, кондиционирование, стерилизацию и аэрацию.

Газ VHP вырабатывается в производственной установке Steris, которая испаряет 35% жидкую перекись водорода под торговой маркой Vaprox. Кроме того, VHP поддерживается на постоянной концентрации, пока он каталитически преобразуется в кислород и воду в возвратном воздухе. Согласно Steris, процесс является «сухим», поскольку он предотвращает конденсацию паров перекиси / воды.

Перекись водорода, которая используется в качестве стерилизатора в термочувствительных устройствах, особенно выгодна из-за ее относительно короткого времени цикла. В качестве антимикробного пара он может обеззараживать замкнутые и герметичные зоны, такие как лабораторные рабочие станции и биотехнологические среды. [iStock / Savas Keskiner]

Очевидные преимущества

HPV работает с любым оборудованием, корпусом или помещением, которое может быть закрытым или герметичным, в зависимости от совместимости материалов, требований к эффективности и пределов воздействия.Помещения, подходящие для обеззараживания ВПЧ, делятся на три основные категории: зоны заполнения для асептических продуктов, помещения для прохода материалов, включая те, которые содержат материалы, используемые при биопереработке, и помещения, специально предназначенные для обеззараживания оборудования.

Многие устройства, используемые в биотехнологических и биотехнологических НИОКР, оснащены санитарно-техническими средствами. Резервуары из нержавеющей стали имеют возможность SIP / CIP, и все современные инкубаторы обладают той или иной функцией самоочистки.

Для инкубаторов высокотемпературная дезинфекция совершенно не требует труда и, следовательно, почти безошибочна.Обратной стороной является долгое время цикла. Это может длиться до 14 часов. Стерилизация от ВПЧ, напротив, занимает три часа. Газ, вводимый в камеру, быстро проникает в укромные уголки и щели, обеспечивая высокую очистку от бактерий и спор.

Panasonic опубликовал подробное сравнение HPV и тепла для стерилизации инкубаторов CO ₂ . Подводя итог:

• Цикл стерилизации ВПЧ длится всего 3 часа, тогда как цикл стерилизации от тепла длится 8–14 часов.
• Для пероксида не возникает особых проблем с материалами или конструкцией, тогда как инкубаторы, предназначенные для тепловой стерилизации компонентов, должны выдерживать высокие температуры.
• Компоненты инкубатора, включая датчик CO ₂ и компоненты HEPA, могут оставаться внутри во время стерилизации с помощью HPV — но не для тепла.

Четкие инструкции

ENV Services не только сертифицирует оборудование с контролируемой средой (такое как шкафы биологической безопасности, изоляторы, вытяжки с ламинарным потоком, фильтры HEPA и чистые помещения), но также предоставляет услуги по дезактивации этого оборудования. Хотя компания по-прежнему проводит дезинфекцию на основе формальдегида, многие клиенты теперь запрашивают стерилизацию от ВПЧ.«Воздействие формальдегида связано с раком», — говорит Тревор Льюис, специалист по технической поддержке ENV Services.

Пределы воздействия для ВПЧ в 10 раз выше, чем для газообразных форм формальдегида, оксида этилена, диоксида хлора и других дезинфицирующих средств. Концентрация до 1 ppm ВПЧ по-прежнему приемлема, по сравнению с 0,1 ppm для других.

Льюис признает, что не все материалы совместимы со стерилизацией HPV: «Пероксид — сильный коррозионный окислитель.Нейлон и другие пластмассы, контактирующие с газом, со временем станут хрупкими. Некоторые поверхностные покрытия, краски и анодирование тоже плохо держатся ».

Ведущие компании, оказывающие услуги по дезинфекции, проведут тестирование на совместимость материалов, прежде чем подвергать помещения или оборудование воздействию ВПЧ. ENV Services, которая в основном работает с инкубаторами, холодильниками и шкафами биобезопасности, ведет список конкретных продуктов, которые могут вызывать проблемы.

«Внутренности этих устройств обычно изготавливаются из нержавеющей стали, которая легко выдерживает воздействие перекиси водорода», — отмечает Льюис.«Проблемы возникают из-за внешних конструкций и поверхностей, особенно когда мы обеззараживаем всю комнату».

Компании, которые предоставляют услуги дезактивации, хорошо разбираются в протоколах дезинфекции, которые обеспечивают удаление патогенов с 6 логарифмическими данными. Если придерживаться установленных критериев количества граммов перекиси на кубический метр площади комнаты, дела идут хорошо. Но проблемы возникают, предупреждает Льюис, когда клиенты предлагают расширить эти границы или попробовать что-то новое.

Сохраняющиеся сомнения

Не все готовы вскочить на подножку ВПЧ.Директор Genzyme Марк Янг, доктор философии, и его коллеги недавно завершили исследование, в котором предостерегают от неполного удаления перекиси из изоляционных систем. Команда Genzyme продемонстрировала, что в ситуациях, когда лиофилизированный белок подвергается воздействию среды изолятора в течение значительных периодов времени, остаточный пероксид вызывает окисление белка в зависимости от дозы. Окисление, в свою очередь, вызвало небольшое увеличение агрегации белка.

Эффект был заметен даже при концентрации пероксида 0.04 ppm, что намного ниже того, что считается безопасной концентрацией. Главный урок здесь состоит в том, что изолятор должен пройти более обширную очистку перед тем, как вводить лиофилизированные продукты в открытые флаконы.

Аналогичным образом, в литературе Thermo Fisher Scientific предупреждается, что остаточный пероксид может негативно повлиять на процессы культивирования клеток, когда ВПЧ используется для стерилизации материалов, попадающих в чистые зоны, особенно через проходные изоляторы: «Остатки пероксида, возможно, оставленные … могут повлиять на чувствительные системы, в которых находятся материалы. используется в.Например, остаток перекиси, остающийся на материалах, используемых в культуре клеток, может отрицательно повлиять на рост клеток, выращенных на этих материалах ».

А согласно ChlorDiSys, компании, специализирующейся на дезактивации и стерилизации оборудования и услуг, эффективная дезактивация может быть обеспечена только в том случае, если стерилизующий агент достигает всех поверхностей, проникает во все области и остается на месте достаточно долго, чтобы уничтожить все контаминанты. Поскольку HPV представляет собой пар, а не газ, и поскольку пар считается «ленивым» в отношении проникновения, ChlorDiSys рекомендует диоксид хлора — настоящий газ — вместо HPV.Однако различные организации здравоохранения отмечают низкие допустимые уровни воздействия диоксида хлора.

Существует заблуждение, что заключительный этап обеззараживания ВПЧ включает применение ультрафиолетового света для преобразования пероксида в воду и кислород. Коммерческие генераторы HPV не требуют этого шага.

Например, в установках от Bioquell и Steris используются сушильные системы для удаления следов воды. Обе компании продают ряд автономных генераторов ВПЧ для дезинфекции оборудования, корпусов или целых помещений.Steris также производит стерилизационные камеры против ВПЧ, VHP LTS-V, для конечной низкотемпературной стерилизации упакованных одноразовых биофармацевтических препаратов, а также медицинских устройств и небольшого оборудования, которое не подходит для жесткой химической или высокотемпературной стерилизации.

Разъяснение технологии газовой плазмы на основе паров перекиси водорода

Мониторинг перекиси водорода

Мониторинг перекиси водорода в стерилизаторе STERRAD NX® и стерилизаторе STERRAD® 100NX обеспечивает
уровни концентрации перекиси водорода поддерживаются в течение периода воздействия для эффективного
микробицидная активность.Стерилизатор STERRAD NX® и стерилизатор STERRAD® 100NX имеют
система
с полностью интегрированным монитором пероксида водорода в качестве стандартного оборудования для прямого измерения
в
камерная стерилизующая концентрация. Монитор перекиси водорода предоставляет данные для процесса
контролер
который
использует эти данные и информацию о допустимых пределах цикла, определенных статистическим анализом
тестирование микробиологической эффективности для принятия решений относительно приемлемости каждого цикла и
гарантировать
а
минимальный уровень обеспечения стерильности (SAL) 10 ^-6 .

Встроенный в систему STERRAD® непрерывный монитор перекиси водорода состоит из источника ультрафиолетового излучения и
детектор
который определяет колебания взаимодействия паров перекиси водорода и ультрафиолетового излучения.
интенсивность.
Когда
концентрация перекиси водорода падает ниже определенного порога для эффективной стерилизации,
в
УФ
изменяется интенсивность света, сигнализирующая системе о прекращении цикла стерилизации.

Газовая плазма

Системы STERRAD®, также называемые газообразной перекисью водорода
Плазменная стерилизация, использовать
ан
эксклюзивная газоплазменная технология для непосредственного удаления остатков перекиси водорода из камеры и
инструменты. Как только перекись водорода диффундирует через камеру и окружает инструмент в
нагрузка,
низкотемпературная газовая плазма зажигается под действием электрического поля.Плазма вызывает водород
перекись
пар распадается на свободные радикалы. Когда энергия плазмы прекращается, свободные радикалы теряют
их
высокий
энергетическое состояние и рекомбинируют как кислород и водяной пар.

Системы

STERRAD® сводят к минимуму воздействие перекиси водорода на медицинских работников при открытии стерилизатора
дверь
после завершения цикла и выделяет значительно меньше перекиси водорода, чем STERIS®
ВПРО-Стерилизаторы.

В параллельном сравнительном исследовании ² , непрерывный мониторинг выбросов пероксида водорода STERRAD®
Системы
и стерилизаторы STERIS® V-PRO® привели к тому, что выбросы стерилизаторов V-PRO® зарегистрированы 67 раз
выше
чем
для систем STERRAD® при открытии дверцы стерилизатора после цикла. Результаты исследования
демонстрируют, что системы STERRAD®, которые используют фазу газовой плазмы для диссоциации перекиси водорода
в течение
в
цикл стерилизации, более эффективен в ограничении перекиси водорода, чем STERIS® V-PRO® maX,
который
пропускает только перекись водорода через каталитический нейтрализатор.

Система STERRAD® с технологией ALLClear®

Система STERRAD® с технологией ALLClear®, используемая в STERRAD NX®
Система и система STERRAD® 100NX
стерилизаторы — это автоматическая предцикловая диагностика системы и технология состояния загрузки, которая минимизирует
отмененные циклы. Система STERRAD® с технологией ALLClear® может обнаруживать такие проблемы с нагрузкой, как чрезмерная нагрузка.
влажность быстрее ³ и более интеллектуальна с регулированием нагрузки ⁴ , чем STERIS® V-PRO® maX
стерилизатор.

Согласно исследованию рынка ⁵ , 100% клиентов согласны с тем, что система STERRAD® с ALLClear®
Технологии
просты в использовании, и 80% клиентов согласны с тем, что системы сокращают ошибку оператора по сравнению с
наследие
Система STERRAD® 100NX и системы STERRAD NX®.

Технология ASP ACCESS®

ASP ACCESS® Technology — это интеллектуальная технология обмена информацией, которая
связывает устройства ASP с
больница
сети, включая системы слежения за приборами (ITS).Технологии ASP теперь могут работать вместе, чтобы помочь
уменьшать
человеческие ошибки. Пошаговые инструкции на экране с автоматическими контрольными точками помогают обеспечить соответствие
с участием
Инструкции по применению (IFU) и политика больницы.

ASP имеет богатую историю инноваций в области стерилизации, разработанных для обеспечения максимального внимания к нашим самым высоким требованиям.
приоритет:
обеспечение безопасности пациентов.

Чтобы узнать больше об эксклюзивных функциях безопасности системы STERRAD® или получить консультацию у одного из наших
эксперты, свяжитесь с ASP сегодня.

Ключи к успеху при стерилизации паром перекисью водорода

Скачать статью и тест

Цели обучения:

1. Обсудите, как работает стерилизация испарением перекиси водорода

2. Ознакомьтесь с ключами к успешным циклам стерилизации испарением перекиси водорода

3. Объясните рекомендуемый план контроля качества для процессов стерилизации испарением перекиси водорода

апрель 2020

CBSPD (Сертификационный совет по стерильной обработке и распространению) предварительно утвердил это обслуживание на один (1) контактный час в течение пяти (5) лет с даты первоначальной публикации.Успешное завершение урока и последующего тестирования должно быть задокументировано руководством учреждения, и эти записи должны храниться индивидуально до тех пор, пока не потребуется повторная сертификация.

НЕ ОТПРАВЛЯЙТЕ УРОК ИЛИ ТЕСТ В CBSPD.

Для получения дополнительной информации о сертификации обращайтесь в CBSPD — 148 Main Street, Suite C-1, Lebanon, NJ 08833

www.sterileprocessing.org.

IAHCSMM (Международная ассоциация управления материально-техническими средствами центральной службы здравоохранения) предварительно одобрила эту услугу для 1.0 кредитов на непрерывное образование в течение трех лет, до 3 марта 2023 г. Номер утверждения:
3M-HPN 200303. www.iahcsmm.org

Для получения дополнительной информации задавайте любые вопросы по телефону Healthcare Purchasing News (941) 259-0832.

Другие CEU от 3M Health Care

Низкотемпературные процессы стерилизации, такие как оксид этилена и испаренная перекись водорода, играют решающую роль в стерильных производственных цехах в Соединенных Штатах.Все больше и больше медицинских устройств многоразового использования изготавливается из современных материалов и компонентов, которые не выдерживают высоких температур и влажности, присутствующих в процессах паровой стерилизации. Испаренная перекись водорода (Vh3O2) — это наиболее распространенный метод низкотемпературной стерилизации, используемый сегодня. Хотя эта технология не нова (первые стерилизаторы Vh3O2 появились в больницах США в 1993 году), она очень сложна. Понимание этого процесса и всех требований для успешной стерилизации Vh3O2 имеет решающее значение для безопасности пациентов.

Перекись водорода (h3O2) — очень эффективный биоцидный агент, что означает, что он убивает все типы микроорганизмов при непосредственном контакте с ними. Перекись водорода является сильным окислителем и убивает микроорганизмы посредством этого механизма. Молекула перекиси водорода по своей природе нестабильна, так как она легко «распадется» или диссоциирует на субкомпоненты в условиях окружающей среды. Кроме того, в процессах стерилизации перекисью водорода используется испаренная форма перекиси водорода.Пар — это не то же самое, что настоящий газ, поскольку пар естественным образом конденсируется на поверхностях, как водяной пар в воздухе, конденсирующийся на внешней стороне холодного стекла. Газы, такие как окись этилена, не конденсируются. Они всегда находятся в газовой форме при температурах и давлениях, характерных для процессов стерилизации. Эти сведения об окислительных свойствах перекиси водорода, ее молекулярной стабильности и парообразных свойствах являются чрезвычайно важными атрибутами, которые оказывают значительное влияние на то, как работают процессы стерилизации Vh3O2, и почему определенные процедуры должны выполняться в отделении стерильной обработки, чтобы гарантировать, что процессы Vh3O2 работают. безопасно и эффективно.

Существует множество различных процессов стерилизации испарением перекиси водорода, используемых в различных коммерческих стерилизаторах, доступных сегодня, но все эти процессы следуют схожей схеме. Во-первых, обычно используется очень глубокий вакуум для удаления воздуха и влаги из камеры, которые могут помешать процессу. Затем пар перекиси водорода вводится в камеру, где он будет диффундировать в течение всего времени выдержки. За этим временем выдержки следует продувка воздухом, затем создается еще один глубокий вакуум для удаления остаточного воздуха и перекиси водорода.Этот процесс считается одним «импульсом». Эти процессы стерилизации будут использовать 2-4 импульса, в зависимости от стерилизатора и инструментов, которые будут обрабатываться в этом цикле. В конце процесса загрузка аэрируется (промывается воздухом) для удаления остаточного пероксида водорода, или, в некоторых системах, загрузка подвергается процессу газовой плазмы для удаления остатков. Пример четырехимпульсного процесса Vh3O2 представлен на рисунке 1.

Факторы, которые могут повлиять на процесс стерилизации Vh3O2

Химические и физические свойства перекиси водорода, обсуждавшиеся ранее (сильный окислитель, нестабильная молекула, пар вместо газа) могут приводят к ситуациям, когда процесс стерилизации Vh3O2 оказывается не таким эффективным, как ожидалось.Давайте подробнее рассмотрим, как эти свойства могут отрицательно повлиять на процесс стерилизации.

1. В процессе стерилизации Vh3O2 вводится фиксированное количество паров h3O2 для каждого типа цикла и для каждой загрузки, помещенной в камеру. Во время фазы воздействия стерилизующего средства подкрашивание или добавление стерилизующего средства не производится. Следовательно, небольшие и очень большие загрузки подвергаются воздействию одинакового количества стерилизатора во время фазы воздействия. Изменение нагрузки, плюс тот факт, что молекула перекиси водорода относительно нестабильна и легко истощается во время фазы воздействия с помощью нескольких различных химических механизмов ^2,3,4 , может привести к неожиданному изменению летальности любого заданного цикла.
2. Температура является критическим параметром процесса для стерилизации Vh3O2. Это включает температуру камеры стерилизатора, медицинских устройств, упаковки и контейнеров, когда они помещаются в камеру. Если загрузка слишком холодная, может произойти чрезмерная конденсация фиксированного количества паров перекиси водорода. ^5,6 Это может негативно повлиять на процесс.
3. Стерилизаторы Vh3O2 одобрены FDA США с ограничением максимального веса для отдельных загрузок для каждого типа цикла.Тестирование и валидация, подтверждающие эти зазоры, завершаются пониманием нестабильности молекулы h3O2 и поведения паров h3O2. Следовательно, превышение предельного веса груза может привести к неэффективным циклам.
4. «Совместимость материалов» обычно относится к воздействию стерилизатора на медицинские устройства. Это важно для стерилизации Vh3O2, поскольку перекись водорода является окисляющим химическим веществом, которое может повредить некоторые материалы. Однако фраза «совместимость материалов» имеет дополнительное значение, когда речь идет о процессах Vh3O2.В этом случае это может означать влияние материалов на эффективность процесса из-за взаимодействия между Vh3O2 и материалами. Мы отметили, что Vh3O2 — нестабильная молекула, которая имеет тенденцию распадаться на другие соединения. Некоторые материалы могут быстрее разрушать Vh3O2, что приводит к снижению эффективности процесса. Пользователь должен знать, что некоторые материалы (например, некоторые пластмассы и некоторые металлы) могут оказывать сильное влияние на доступный Vh3O2, поглощая, адсорбируя или разлагая Vh3O2 с более высокой скоростью ^2,3,4,7 .
5. Использование дополнительных (несущественных) материалов при стерилизации Vh3O2 — еще одна переменная, которая зависит от пользователя и может внести существенные изменения в процесс стерилизации Vh3O2. Например, вкладыши из пенопласта для лотков, вкладыши из полиэтиленового листа, вкладыши для нижнего защитного ограждения, вкладыши для лотков с пузырьковой пленкой и протекторы лотков, резиновые угловые протекторы, пенопластовые карманы для защиты инструментов, держатели индикаторов CI, транспортировочные лотки, одноразовая стерилизационная пленка увеличенного размера, одноразовая упаковка весом 600 и 650 кг. стерилизационная обертка и предварительно отформованные одноразовые обертки — все это примеры посторонних или несущественных материалов, используемых в медицинских учреждениях.Как описано выше, поскольку в циклах Vh3O2 используется фиксированное количество стерилизатора, передовой практикой было бы ограничить или исключить использование любых дополнительных материалов, которые могли бы поглотить фиксированное количество доступного стерилизующего средства Vh3O2.

Ключи к успеху

Эти факторы — фиксированное количество стерилизатора, относительно нестабильная молекула, колебания температуры, совместимость материалов и использование дополнительных несущественных материалов делают процессы Vh3O2 «технологически чувствительными», то есть изменчивостью, вносимой стерильными Группа обработки в отношении состава, веса и температуры загрузки может существенно повлиять на результат процесса стерилизации Vh3O2.Кроме того, в США доступно множество циклов стерилизатора Vh3O2, которые имеют разные показания для использования, разные пределы загрузки, разные концентрации Vh3O2 (мг / л) и разное время воздействия стерилизатора. Давайте рассмотрим некоторые ключевые передовые методы, которые могут помочь в решении этой сложной ситуации за счет уменьшения вариабельности и снижения вероятности сбоев процесса стерилизации Vh3O2.

Загрузка камеры — вес и расстояние

Хорошая практика загрузки камеры стерилизатора имеет решающее значение для эффективной стерилизации Vh3O2.Не перегружайте камеру. Знайте предельный вес вашего стерилизатора и цикл (ы) стерилизации, запрограммированный на вашем стерилизаторе. Стерилизаторы и циклы Vh3O2 одобрены FDA с ограничением веса за цикл (за исключением STERRAD 100S, где предел веса загрузки не определен) ⁸ . Хорошее практическое правило — следить за тем, чтобы между упаковками и предметами в камере оставалось как минимум расстояние в ладонь (примерно 1 дюйм между ними). Предметы не следует складывать друг на друга, они должны лежать на полках и не касаться стенок камеры или электродов (если применимо).Этот тип загрузки позволяет парам h3O2 легко получить доступ ко всем упаковкам и устройствам; воздержитесь от практики добавления «еще одного элемента».

Загрузка камеры — Совместимость материалов

Хорошая практика — «знать, что вы загружаете, и загружать только то, что вы знаете». Крайне важно, чтобы все операторы стерилизаторов Vh3O2 понимали состав каждой загрузки (устройств и упаковки), которые они помещают в стерилизационную камеру. Вот несколько основных вопросов для этой передовой практики:

• Маркируются ли устройства для их конкретной модели стерилизатора Vh3O2 и типа цикла?
• Находится ли общий вес груза ниже утвержденного и одобренного FDA предельного веса?
• Пригоден ли тип упаковки для использования в Vh3O2 и не превышает ли вес устройства предельных значений для данного типа упаковки?
• Можно ли пометить устройство для другого метода стерилизации, например паром?
• Есть ли ненужные посторонние предметы упаковки, которых можно было бы избежать?
• Каков общий материальный состав груза? Не перегружен ли груз предметами, которые более склонны истощать фиксированное количество Vh3O2?

Понимание этих основных переменных для каждой загрузки Vh3O2 поможет группе по обработке стерильных продуктов различить влияние этих факторов на процесс и, в конечном итоге, поможет обеспечить последовательные и успешные результаты процесса.

Жесткие контейнеры, пластиковые лотки и крышки

Жесткие контейнеры являются очень важным элементом стерилизации Vh3O2. У этих контейнеров есть преимущества и ограничения. Их использование может повысить стандартизацию процедур и сократить отходы, но они также могут внести неожиданные изменения во времени в процесс Vh3O2. На некоторых предприятиях было обнаружено, что жесткие поверхности и материалы контейнеров имеют другую конструкцию, например, некоторые из них анодированы, некоторые не анодированы, а внешний вид некоторых, как ожидается, со временем изменится при использовании в Vh3O2.Один производитель также предостерегает от использования мягкой воды для окончательного ополаскивания, поскольку последующая обработка в Vh3O2 может вызвать коррозию. Контейнеры, не прошедшие валидацию на содержание Vh3O2 или имеющие изношенную поверхность, могут вызвать проблемы совместимости материалов с процессами Vh3O2.

Пластиковые лотки и крышки представляют собой защитные устройства, требующие стерилизационной упаковки или пакета для сохранения стерильной целостности после стерилизации удерживающего устройства и его содержимого. Производители защитных устройств (включая пластиковые лотки и крышки) и упаковки / одноразовой обертки несут ответственность за подтверждение совместимости своей продукции со стерилизацией Vh3O2.Пластиковые лотки и крышки должны иметь письменные инструкции по применению, а производитель должен предоставить данные валидации по запросу для указанного метода стерилизации. Инструкции по применению (IFU) должны содержать рекомендуемый максимальный вес и распределение нагрузки для удерживающего устройства и его содержимого.

Стандарты и инструкции по применению

Процессы стерилизации паром перекисью водорода сложны и чувствительны к технике. Следовательно, понимание и тщательное соблюдение всех инструкций производителя стерилизатора, производителя медицинского оборудования и производителя упаковки имеют решающее значение для успеха.Кроме того, Ассоциация по развитию медицинского оборудования (AAMI) предоставляет дополнительное руководство по процессам Vh3O2 в AAMI ST58, « Химическая стерилизация и дезинфекция высокого уровня в медицинских учреждениях» . ⁹ Этот стандарт предусматривает следующие моменты, которые необходимо учитывать при эффективном использовании стерилизации Vh3O2:

1. Следуйте инструкциям производителей устройств и стерилизаторов
2. Нет продуктов на основе целлюлозы (полотенца, марля или бумага)
3. Размеры просвета очищены FDA (на основе модели + цикла)
4. Устройства должны быть тщательно очищены и высушены
5. Откидные инструменты должны быть открыты
6. Используйте только лотки и маты в соответствии с инструкциями по применению и одобренными Управлением по контролю за продуктами и лекарствами
7. Обеспечьте соответствующий стерилизующий контакт, следите за всей загрузкой рекомендации
8. Химические индикаторы и Geobacillus stearothermophilis биологические индикаторы, одобренные FDA для мониторинга стерилизаторов Vh3O2

Контроль качества

Для процессов Vh3O2 необходима надежная программа контроля качества.AAMI ST58 ⁹ рекомендует использовать физический мониторинг (распечатку цикла), химические индикаторы и биологические индикаторы внутри устройств контроля процесса (PCD), с информацией со всех трех мониторов, объединенной для принятия решения о качестве процесса и являются ли устройства безопасными и готовыми к использованию пациентом. Стандарт предоставляет следующие рекомендации по использованию химических индикаторов и биологических индикаторов в УКП:

«КИ следует использовать на внешней стороне каждой упаковки, если внутренний индикатор не виден» ⁹ .

«Внутренний КИ должен использоваться внутри каждой упаковки, лотка, удерживающего устройства (система жестких стерилизационных контейнеров, чемодан для инструментов, кассета или организационный лоток), подлежащих стерилизации» ⁹ .

«PCD с соответствующим BI также следует использовать, по крайней мере, ежедневно, но предпочтительно в каждом цикле стерилизации (см. 9.5.4.5). Каждую загрузку, содержащую имплантируемые устройства, следует контролировать и, по возможности, помещать в карантин до тех пор, пока не будут доступны результаты тестирования BI » ⁹

Стандарт признает, что для достижения наивысшего уровня гарантии процессов стерилизации Vh3O2 потребуется как последовательное соблюдение инструкций по применению а также использование строгой программы контроля качества:

«Большинство датчиков температуры показывают температуру в камере, а не в центре упаковки.Неправильная конфигурация загрузки или состав упаковки могут помешать откачке воздуха и проникновению стерилизующего вещества, условия, которые не будут обнаружены при регистрации температуры. Следовательно, физический мониторинг и другие показатели работы стерилизатора никогда не следует рассматривать как замену тщательного соблюдения предписанных процедур упаковки и загрузки ». ⁹

Заключительные примечания относительно биологических индикаторов для Vh3O2

В настоящее время не существует международного стандарта, который бы содержал требования к характеристикам биологических индикаторов для процессов стерилизации Vh3O2.Биологические индикаторы Vh3O2 от разных производителей могут быть разработаны и протестированы по-разному, и могут быть различия в характеристиках этих биологических индикаторов. Поскольку международного стандарта еще не существует, в мировой индустрии здравоохранения нет стандартизации требований к рабочим характеристикам для БИ, используемых в Vh3O2. В США FDA регулирует биологические индикаторы, используемые в медицинских учреждениях, и имеет набор требований к тестированию для очистки биологических индикаторов Vh3O2 в США.С. рынок. FDA является высшим органом в США (а не производителем стерилизаторов) при принятии окончательного решения о том, какие биологические индикаторы признаны совместимыми (безопасными и эффективными) для использования в стерилизаторах с испарением перекиси водорода для медицинских учреждений.

Кроме того, развитие технологии биологических индикаторов позволило сократить время инкубации биологических индикаторов, используемых для мониторинга процесса Vh3O2, до 30 минут или меньше. Такое короткое время считывания может позволить более частый мониторинг процессов Vh302, не влияя на время прохождения инструментов через стерильное технологическое отделение.

Заключение

Стерилизация паром перекисью водорода — сложный и чувствительный к технике процесс, который требует строгого соблюдения инструкций по применению от производителя стерилизатора, производителя инструмента и производителя упаковки, используемой в загрузке. Кроме того, требуется строгая программа контроля качества, основанная на использовании физических датчиков, химических индикаторов и биологических индикаторов внутри УКП.

Скачать статью и тест

Ссылки:

1.Технические данные Монография STERIS V-PRO maX Документ № 10037127 Ред. C (M3635EN)
2. Блокировка Сеймура, пероксидные соединения. Дезинфекция, стерилизация и консервация , Блок Сеймура, 5-е издание, 2001 г., глава 9.
3. Патент США 6,528,016 B1, 4 марта 2003 г. Kohler et al.
4. Патент США 6 875 399 B2 5 апреля 2005 г. McVey
5. FDA 510 (k) K042116 _ Стерилизатор STERRAD NX
6. Стерилизатор FDA 510 (k) K071385_ Стерилизатор STERRAD 100NX
7. Патент США 5 830 409 3 ноября 1998 г., Childers et al. al.
8. FDA 510 (k) K111377 _ Краткое содержание ASP STERRAD 100NX STERRAD DUO CYCLE
9. ANSI / AAMI ST58, Химическая стерилизация и дезинфекция высокого уровня в медицинских учреждениях. Ассоциация развития медицинского оборудования. 2013 (R2018).

Пары перекиси водорода — STERIS AST

Испаренная перекись водорода (VHP) — это процесс с глубоким вакуумом и низкотемпературным испарением, который традиционно использовался для стерилизации многоразовых медицинских устройств в учреждениях по уходу за пациентами.

STERIS AST предлагает обработку паром перекиси водорода с использованием низкотемпературного стерилизатора STERIS VHP® LTS-V , производимого STERIS Life Sciences, для окончательной стерилизации медицинских изделий.

Что такое перекись водорода в парах?

В технологии стерилизации VHP от STERIS используется стерилизующий агент на основе перекиси водорода Vaprox ^® для стерилизации поверхности продукта и упаковки, подтвержденный SAL 10 ^-6 в соответствии с ISO14937.Стерилизатор с перекисью водорода Vaprox — это специально разработанный стабилизированный 35% водный раствор перекиси водорода высокой чистоты.

Для чего используется испаренная перекись водорода?

VHP совместим с широким спектром полимерных материалов, что делает его эффективным методом стерилизации одноразовых медицинских продуктов, таких как:

• Имплантаты и аппараты с электроникой
• Фармацевтическая тара
• Системы парентеральной доставки лекарств, такие как предварительно заполненные шприцы
• Устройства комбинированные
• Аппараты моноблочные сборные сложные
• Комплектные узлы или устройства со незакрепленными компонентами (например,г. иглы)
• Термочувствительные устройства

Процесс стерилизации паром перекисью водорода

Процесс VHP включает три фазы: кондиционирование, стерилизующее воздействие и последующее кондиционирование, причем все этапы выполняются в одной камере. Процесс проводят в условиях глубокого вакуума, обычно 1-10 миллибар (0,03-0,3 дюйма ртутного столба), с температурным диапазоном обычно 28-40 ° C (82-104 ^o F).

Общее время цикла (от закрытия двери до открытия двери) обычно составляет восемь часов или меньше.Однако время цикла может варьироваться в зависимости от состава продукта, упаковочных материалов, температуры, а также размера и конфигурации загрузки.

Предложение паровой перекиси водорода STERIS

STERIS предоставляет решения для стерилизации VHP производителям медицинских товаров, независимо от того, требуются ли вам услуги по контракту или внутренние приложения.

STERIS AST предлагает контрактные услуги по стерилизации VHP на нашем предприятии в Талламоре, Ирландия. Предложение VHP включено в сферу действия сертификации ISO 13485, что позволяет STERIS предлагать нашим клиентам полную валидацию и стандартную стерилизацию VHP.

STERIS Life Sciences предлагает полный спектр оборудования для стерилизации и биодезинфекции VHP, стерилизатор перекисью водорода Vaprox® и продукты для обеспечения стерильности для внутреннего применения.

Испаренная перекись водорода — обзор

8.3.5 Альтернативные методы стерилизации: соображения для имплантируемых сенсорных систем

Другие, менее традиционные, менее часто используемые методы могут рассматриваться как подходящие альтернативы для имплантируемых сенсорных систем, поскольку эти системы имеют разные характеристики и риски приоритеты по сравнению с недорогими одноразовыми медицинскими устройствами большого объема.Когда защита рабочих характеристик имплантируемого сенсора имеет решающее значение, ни дополнительное время, ни затраты не помешают альтернативным процессам стерилизации стать предпочтительным методом.

Стерилизация паром перекисью водорода (VHP) — это низкотемпературный газовый метод стерилизации. По сравнению с газом EO, VHP обычно не может проникнуть в большую плотную упаковку, но он может предложить альтернативу, когда совместимость материалов с EO является проблемой. Поскольку перекись водорода распадается на воду и кислород, время аэрации значительно сокращается, и любые опасения по поводу токсичности сопряжены с очень низким риском.FDA предоставило разрешение 510 (k) на использование различных моделей систем паровой стерилизации для окончательной стерилизации медицинских изделий (K083097; ⁶ K071385 ⁷ ). Однако при использовании в промышленных условиях стерилизационное оборудование и вспомогательные системы должны пройти установку, операции и валидацию стерилизации, что может занять много времени и дорого. На сегодняшний день эти ограничения сдерживают широкое использование метода стерилизации VHP, но процесс и химия относительно более совместимы с материалами, что делает его подходящей альтернативой для имплантируемых сенсорных систем.

Многие другие системы химической стерилизации, которые создают проникающие пары, в настоящее время имеют ограниченную доступность или все еще находятся в стадии разработки и аттестации. Химические стерилизаторы, такие как озон, диоксид азота и сверхкритический диоксид углерода, могут столкнуться с ограничениями при проверке стерильности, поскольку коммерческие индикаторы стерилизации не так широко доступны, и меньшее количество лабораторий обучено их использованию (Lambert, 2010). Одна очень популярная система стерилизации перуксусной кислотой для эндоскопов и устройств, чувствительных к влаге и радиации, Steris 1, в настоящее время подлежит обязательному отзыву FDA (система стерилизации перуксусной кислотой Steris 1, отзыв ⁸ ).Такой крупномасштабный отзыв может заставить производителей нервничать по поводу внедрения новых технологий, даже если системы получили разрешение FDA на рынок.

Жидкие химические стерилизаторы (также известные как гермициды), такие как ортофталевый альдегид (OPA), в настоящее время используются в Европе и США, и было показано, что они обладают более высокой микобактерицидной активностью по сравнению с глутаровым альдегидом (новый метод дезинфекции и стерилизации: орто-фталальдегид : новый химический стерилизатор ⁹ ). Эти стерилизаторы не так сильно раздражают глаза и носовые ходы, как глутаровый альдегид.Хотя OPA имеет хорошую совместимость с материалами, он окрашивает белки в серый цвет. Изменение цвета материалов в результате стерилизации часто воспринимается как нежелательная характеристика, особенно если изменение цвета делает продукт грязным, даже если это не влияет на работу устройства. Чтобы скрыть изменение цвета, производители иногда добавляют пигменты, что еще больше усложняет квалификацию продукта с точки зрения биосовместимости. Кроме того, утилизация отработанного OPA требует особых мер предосторожности, которые могут увеличить стоимость обработки продукта.Любой производитель сенсоров, надеющийся использовать этот химический стерилизатор, конечно, должен будет провести обширные испытания имплантируемой сенсорной системы, чтобы исключить возможное влияние химического вещества на выходной сигнал сенсора. Без опыта работы с химическими веществами было бы трудно предвидеть различные режимы отказа.

Sterilox — это перекисленная вода, изготовленная из физиологического раствора и эффективная против широкого круга организмов (K071385 ¹⁰ ). Хотя описывается как не наносящий вред окружающей среде, наиболее активным компонентом является хлорноватистая кислота.Его совместимость со многими материалами медицинского оборудования еще не продемонстрирована. Система стерилизации может вызывать коррозию определенных материалов, но не токсична для биологических тканей.

Стандарты асептической обработки медицинских изделий разрабатываются, чтобы в конечном итоге обеспечить более широкое признание изделий, в которых процедуры обработки пытаются поддерживать стерильность изделия на протяжении всего производственного процесса до точки использования. Асептическое производство означает, что компоненты и материалы, из которых состоит устройство, предварительно стерилизуются надлежащим образом, а все материалы, оборудование и вспомогательные системы используются только после стерилизации.Все рабочие операции выполняются в чистых помещениях, чтобы избежать загрязнения. Для такой обработки должны постоянно поддерживаться только самые высокие стандарты чистоты и чистоты для производственного помещения, персонала, оборудования, а также подачи воздуха, воды, стерильных газов и материалов, используемых в рабочем процессе. Поддержание такого контроля обычно непомерно дорого для медицинских устройств.

Стерилизация сухим жаром доступна уже несколько десятилетий (Дармади и др., 1961), но имеет ограниченное коммерческое использование из-за влияния на материал высоких температур (170–180 ° C) и времени (циклы час или дольше).Интерес к этому оборудованию растет, поскольку стали доступны упаковочные материалы, которые могут выдерживать стерилизацию сухим жаром. Его пригодность для имплантируемых сенсоров из полимеров маловероятна из-за высокой температуры.

Доступно множество различных альтернативных методов стерилизации. Конструкция, материалы и ограниченный функциональный диапазон имплантируемых сенсорных систем, связанных с окружающей средой, могут потребовать использования этих альтернативных методов стерилизации, несмотря на их очевидные недостатки, если обычные методы стерилизации просто не работают.

Экономический анализ преимуществ стерилизации медицинских инструментов в низкотемпературных системах вместо пара

https://doi.org/10.1016/j.ajic.2017.02.026Получить права и контент

Основные моменты

•

Системы низкотемпературной стерилизации могут обеспечить высокую внутреннюю доходность.

•

Использование низкотемпературной стерилизации эндоскопов, стерилизуемых паром, позволит сократить расходы.

•

Повышенные затраты на стерилизацию перевешиваются экономией за счет меньшего количества ремонтов.

Предпосылки

Низкотемпературная стерилизация на основе перекиси водорода показала, что она меньше повреждает медицинские инструменты, чем паровые автоклавы. Однако эксплуатация низкотемпературных систем обходится дороже. Более высокие затраты необходимо сопоставить с экономией от снижения затрат на ремонт, чтобы определить соотношение цены и качества при выборе способа стерилизации определенных инструментов, которые можно обрабатывать в любой системе.

Методы

В этом анализе изучаются экономические эффекты использования систем низкотемпературной стерилизации для обработки жестких и полужестких эндоскопов, которые чувствительны к теплу и влаге, но все же могут быть стерилизованы паром.В нем исследуются изменения в стоимости и частоте ремонта, ожидаемые в течение 10 лет, в результате выбора стерилизации этих инструментов в низкотемпературной системе вместо пара.

Результаты

В целом результаты показали, что увеличенные затраты на стерилизацию перевешиваются экономией, связанной с менее частым ремонтом. За 10-летний период в крупных медицинских учреждениях вероятность достижения внутренней нормы прибыли не менее 6% составляет 0,81.

Выводы

Наша модель показывает, что для крупных медицинских учреждений, вероятно, будет хорошим решением инвестировать в системы низкотемпературной стерилизации.

Ключевые слова

Низкотемпературная стерилизация

Стерилизация паром

Экономический анализ

Эндоскопы

Рекомендуемые статьи Цитирующие статьи (0)

© 2017 Association for Professionals infection Control and Epidemiology, Inc.