Этапы стерилизации инструментов в хирургии: Методы стерилизации хирургических инструментов

Содержание

Методы стерилизации хирургических инструментов

Стерилизация проходит в три этапа: дезинфекция (или обеззараживание), предстерилизационная очистка и собственно стерилизация.

Методы стерилизации хирургических инструментов

Глобально все методы стерилизации можно разделить на три больших группы:

  1. Химические методы.
  2. Радиационный метод – самый дорогой и наиболее редко используемый, но в то же время и самый эффективный метод. Из-за своей дороговизны используется в коммерческих целях.
  3. Термические методы.

Наиболее популярна стерилизация при помощи высокой температуры. Чаще всего используется или автоклавирование, или стерилизация в сухожаровом шкафу.

При автоклавировании необходимый эффект достигается при помощи сочетания высокой температуры, влаги и давления, которое в несколько раз выше атмосферного. В таких условиях мироорганизмы погибают в срок до одного часа. Основной минус использования автоклава заключается в том, что далеко не всё можно обрабатывать этим методом, а лишь объекты, которым не повредят высокие давление и влажность.

Стерилизация воздушным методом – в сухожаровом шкафу – более универсальна с этой точки зрения. В сухожаре возможно обрабатывать не только хирургические инструменты, но и порошки, безводные масла и нефтепродукты.

Сухожар

Высокая температура воздуха в сухожаровом шкафу вызывает денатурацию белков в микроорганизмах, что приводит к их неминуемой гибели. Чем выше выставлена температура в сухожаре, тем меньше времени требуется для того, чтобы произошла полная стерилизация хирургического инструментария.

К неоспоримым плюсам стерилизации в сухожаровом шкафу относится возможность обработки инструментов в крафт-пакетах, устойчивых к высоким температурам. Такие бумажные пакеты позволяют хранить стерильные инструменты от трёх суток до трёх недель.

Современные крафт-пакеты оснащены индикатором, который меняет свой цвет, когда температура достигает определённого уровня. Этот индикатор служит маркёром качества стерилизации хирургических инструментов в сухожаровом шкафу.

Сухожаровые шкафы возможно использовать и в домашних условиях, например, для стерилизации инструментов ногтевого сервиса. Такие марки сухожаров обладают небольшими размерами, отличаются простотой и удобством использования.

Вернуться к списку публикаций

Стерилизация хирургических инструментов

Обработка всех инструментов включает в себя последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и непосредственно стерилизации.

Вид и объем предстерилизационной обработки определяется степенью инфицированности инструментов, а способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.


Предстерилизационная подготовка

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.

Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов.

Обеззараживание

Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих

средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обеззараживания инструменты промываются проточной водой.

Мытье

Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде.

Высушивание

Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

 

Собственно стерилизация

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы:

  • металлические (режущие и нережущие),
  • резиновые и пластмассовые,
  • оптические

Хирургические инструменты

К хирургическим инструментам относятся:

  • шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки, зоиды, пластинки, винты, стержни;
  • скальпели, ножницы, хирургические иглы, ампутационные ножи; 
  • катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм; 
  • лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп; 

Основные виды хирургических инструментов 

Стерилизация нережущих металлических инструментов

Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов
Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств.

Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков.

В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.

Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях.

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов

Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто- клавирование.

При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком метода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут.

Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации.

Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют.

Стерилизация оптических инструментов

Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация.

Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков.

 

Стерилизация в хирургии

    Стерилизация в хирургии — используется для обеззараживания операционного белья, перевязочного материала, инструментов и некоторых аппаратов, применяемых во время операций и перевязок.

Операционное белье (халаты, простыни, полотенца, маски) и перевязочный материал (марлевые тампоны, салфетки и вата) стерилизуются паром под давлением в автоклаве.

Как исключение (при отсутствии автоклава) прибегают к стерилизации текучим паром. При этом пар, нагретый до t° 100°, проходит через заложенные в аппарат биксы и выходит наружу. Такая стерилизация ненадежна, т. к. убивает не все бактерии (спороносные гибнут при t° выше 120°). Белье и перевязочный материал складывают в форме, наиболее облегчающей его употребление и предотвращающей излишние манипуляции с ним. Подготовку белья и материала производит медсестра, одетая в халат, шапочку или косынку. Люди с гнойничковыми заболеваниями не должны принимать в этом участия. Подготовленный материал и белье укладывают в металлические барабаны Шиммельбуша (биксы), причем в большие биксы укладывают халаты, простыни, полотенца, большие салфетки и тампоны, в маленькие — маски, маленькие салфетки, шарики и вату. Размещение белья и материала должно быть рыхлым. Простыни, халаты, салфетки и т. д. следует укладывать не горизонтальными, а вертикальными слоями. В крупных операционных укладку производят так, чтобы в каждом биксе находился один какой-либо вид белья или материала. В небольших операционных, а особенно для выездов на экстренную операцию, в один бикс закладывают все необходимое для производства одного вмешательства, притом так, чтобы любой предмет можно было извлечь, не касаясь всех остальных. Поверх всего содержимого помещают халат, шапочку, маску для операционной медсестры, которая первой проводит личную асептическую подготовку.

    При стерилизации в автоклаве используют водяной насыщенный пар t° 120— 132° под давлением 1,5—2 атм. Бактерицидные свойства пара усиливаются, если удалить из стерилизуемого материала воздух. Однако это затрудняется тем, что материал находится в биксах. В учреждениях, где имеются большие автоклавы, воздух удаляют при помощи вакуум-насосов. При отсутствии насоса воздух удаляют продувкой — в течение 10 мин. стерилизационная камера работает как текучепаровая установка, т. е. при открытом выходном кране, который затем закрывают. Время стерилизации зависит от давления и качества стерилизуемого материала. Отсчет времени начинают с момента установления требуемого давления и температуры. Одномоментно в автоклав следует закладывать биксы с однородным материалом. При стерилизации биксов с разнородным материалом время устанавливают по материалу, требующему большей продолжительности стерилизации. Перед закладкой в автоклав в биксе открывают все отверстия. Автоклав следует загружать из расчета 65—94 кг белья или материала на 1 м3 объема аппарата. Продолжительность стерилизации белья при давлении 2 am — 30 мин., 1,5 am — 45 мин.; для перевязочного материала — при 2 am — 20 мин., при 1,5 am — 30 мин. По окончании стерилизации автоклав открывают через 5—10 мин. после удаления пара (это необходимо для просушки материала). При выемке биксов отверстия в них тотчас закрывают.

    Контроль над стерильностью материала осуществляют при каждой стерилизации физическими и химическими методами. Наиболее надежен биологический контроль. Пользоваться им следует для периодического контроля стерилизации, например раз в месяц, а также в случаях появления нагноений после «чистых» операций.

    Стерилизация тазов для мытья рук производят обжиганием. В таз наливают 10— 15 мл денатурированного спирта и поджигают. Вращением таза в разных плоскостях обжигают всю его внутреннюю поверхность. Применение для этих целей эфира недопустимо из-за возможности взрыва.

    Катетеры, трубки, дренажи стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 минут. Новые резиновые изделия перед кипячением промывают теплой проточной водой для удаления талька. Хранить их можно в растворе, который применяют для стерилизации перчаток.

    Условия стерилизации резиновых изделий в автоклаве аналогичны условиям, принятым для стерилизации перчаток. Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1—2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды — стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов — 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа.

Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180— 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

    Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты — 3 части, едкого натра — 15 частей, формалина — 20 частей, дистиллированной воды — 1000 частей; формалина — 20 частей, фенола чистого жидкого — 1,5 части, карбоната натрия — 7,5 части, воды дистиллированной — 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом.

    Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45—50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация — суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами — в отдельной упаковке).

    Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6—8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) — 100 г, нашатырного спирта — 50 мл, воды — 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части — контрольные стекла и капельницы — промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно — проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30—40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, т. к. они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

    Стерилизация анестезиологических принадлежностей — интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок — осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида; водно-спиртовой раствор левомицетина 1 :1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5—2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15—30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части — переходные трубки, щипцы, зубные распорки — стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1 : 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением. Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30—40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

    Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов — производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке.

    Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде — 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150—160° — 1 час.
Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.
Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12—24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1 : 1000.
    Часто применяют модификации способа Кохера:

    1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.

    2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1 : 1000 (№ 0—4 в течение 15 мин., № 5—8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.

    3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

    Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в т. ч. и в сулеме.

    Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.
    Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала — кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12—24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1 : 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0—1 на 30 сек., № 2—5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6—7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке — 40 г, в 5-литровой банке — 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным № 0—1 — через 3 суток, № 2—4 — через 4 суток, № 5—6 — через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

    Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1 : 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7—10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8—10 суток после выдерживания его в течение 12—24 час. в эфире, а затем на 4— 6 суток — в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7—10 суток.

    Стерилизация инструментария, в т. ч. и режущего, возможна при помощи ультразвука. Преимущество этого метода в том, что ультразвук осуществляет и механическую очистку инструментов от крови и гноя, не повреждая их. Инструменты помещают в сосуды с дистиллированной водой, туда же опускают излучатель. Применяют ультразвук частотой 800 кгц, мощностью 20—30 вт/см. Через 10 мин. достигается полная механическая очистка и стерильность. Очень эффективна стерилизация белья, перевязочного материала инструментария, аппаратуры, растворов и т. п. гамма-излучением. Доза проникающей радиации должна быть не менее 2 000 000 — 2 500 000 рентген.

Предыдущая статья

Следующая статья

Стерилизация хирургических инструментов | Ветеринарный справочник

Стерилизация инструментов – первый шаг на операции. Инструменты можно стерилизовать, кипячением (основной способ), обжиганием (фламбирование) и антисептическими растворами (химическая стерилизация).
Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления.
Стерилизация кипячением. Для стерилизации инструментов пользуются простым  стерилизатором,  для подогрева которого используют любой источник тепла (примус, газовую плиту, электроплитку и т. д.), или электрическим. При отсутствии стерилизатора используют любую эмалированную посуду с крышкой.
Стерилизатор представляет собой продолговатую металлическую коробку с крышкой и вставной сеткой с ручками, за которые ее удерживают крючками при извлечении инструментов из кипящей воды.
При работе с электрическими стерилизаторами следят за исправностью проводов, штепсельной вилки и розетки, а также не допускают затекания воды в нагревательный элемент. Стерилизатор ставят на огнеупорный материал.
Для стерилизации инструментов кипячением в стерилизатор наливают необходимое количество воды  и добавляют 0,25% гидроокиси натрия или 2% карбоната натрия. Указанные растворы щелочей, осаждая углекислые соли кальция и магния, предохраняют инструменты от ржавчины. Раствор доводят до кипения и через 3 – 5 мин с момента его закипания в стерилизатор погружают сетку с предварительно разложенными на ней инструментами. В холодную воду инструмент класть нельзя, так как выделяющийся при нагревании ее кислород быстро окисляет металл.
Продолжительность стерилизации инструментов 15-20 мин; время отсчитывают от момента закипания раствора после погружения в него сетки с инструментами. По истечении указанного срока сетку извлекают из стерилизатора и, как только стечет с инструментов вода, их раскладывают на стерильном инструментальном столике, тазике или оставляют в стерилизаторе, предварительно вылив из него воду.
Инструменты после операции моют щеткой в проточной воде, кипятят в 2%-ном растворе бикарбоната натрия, вытирают, слегка смазывают (только замок) вазелиновым маслом и убирают в инструментальный шкаф. Продолжительность кипячения инструментов после асептических операций 15 мин, а после гнойных  – 45 мин. Инструменты, загрязненные анаэробными микробами (возбудители газовой гангрены, столбняка, некробациллеза и др.), кипятят с небольшими перерывами 2-3 раза по 30 мин.
Стеклянные приборы (шприцы, мензурки, пробирки и др.) стерилизуют отдельно от металлических инструментов в дистиллированной, дождевой или прокипяченной воде без добавления щелочей. Шприцы кипят обязательно в разобранном виде, так как они могут лопнуть вследствие разницы в коэффициенте расширения при нагревании стеклянного цилиндра и металлического поршня. Перед кипячением составные части шприца, и другие стеклянные предметы предварительно обвертывают марлей и опускают в еще не нагретую воду. Продолжительность стерилизации стеклянных предметов 15 мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать в автоклаве.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин пли в автоклаве.
Стерилизация обжиганием. Этим способом обычно стерилизуют крупные инструменты и эмалированную посуду. Другие инструменты стерилизуют обжиганием редко, преимущественно при неотложных операциях, когда нет времени для стерилизации кипячением. Инструменты кладут в эмалированный тазик или стерилизатор, обливают небольшим количеством (10 мл) спирта и равномерно обжигают. Стерилизация обжиганием недостаточно надежна. Кроме того, при обжигании сильно портятся инструменты, особенно режущие.
Химическая стерилизация. Для химической стерилизации инструменты погружают в один из следующих антисептических растворов: 1) жидкость Каретникова (формалин – 20 г, кислота карболовая – 3 г, натрия карбонат- 15 г, вода дистиллированная- 1000 мл) -на 30 мин; 2) 3 – 5%-ный раствор кислоты карболовой – на 30 или 60 мин; 3) раствор бактерицида 1:3000 – на 10 мин; 4) 1%-ный спиртовой раствор бриллиантового зеленого на 15 мин; 5) 0,5%-ный спиртовой раствор формалина; 6) раствор фурацилина 1:5000.
Химическая стерилизация инструментов применяется в случаях, когда по каким-либо причинам нет возможности прокипятить их или если они от кипячения портятся.
Оптические инструменты (цистоскопы, ларингоскопы и др.) стерилизуют погружением в спирт на 10 мин, а затем переносят г. раствор основной цианистой ртути (1:1000) на 15 мин. Окуляры в химические растворы погружать нельзя; их перед пользованием протирают спиртом.
Разрабатывается и испытывается методика стерилизации инструментов и перевязочных материалов ионизирующим излучением, которое обладает выраженным антимикробным действием.

Tags: инструмент, стерилизация, хирургия

Стерилизация колющих, режущих и оптических инструментов — Студопедия.Нет

Стерилизация хирургических инструментов.

Обработка всех инструментов включает последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и собственно стерилизации. Способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.

Предстерилизационная подготовка.

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергают все виды инструментов. Вид и объём предстерилизационной обработки в недавнем прошлом зависел от степени

инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и относимых к группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения ВИЧ-инфекции, правила предстерилизационной подготовке ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов,

предусматривающих безусловную гарантию уничтожения ВИЧ. Следует отметить, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение последних 5 лет гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции обрабатывают отдельно от других. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание (дезинфекция).

Непосредственно после использования инструменты погружают в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40–60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.


Мытьё.

Инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор, в его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50 – 60 “C, экспозиция 20 мин. После

26 замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем – в проточной воде.

Высушивание

можно осуществить естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80° C

в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Собственно стерилизация.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

Все хирургические инструменты можно условно разделить на три

группы:

Металлические

режущие: скальпель, ножницы, хирургические иглы и пр.,

нережущие: шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки и пр.

резиновые и пластмассовые: катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.

оптические: лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.

Проведение стерилизации режущих и колющих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств. Основным методом стерилизации режущих и колющих инструментов является химический способ с применением растворов антисептиков. Самым лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация (в озоново-воздушной камере) и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл.



Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все интсрументы для проведения лапароскопических и торакоспопических вмешательств. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков ( этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс). Наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации.

 

Стерилизация неколющих, нережущих инструментов, белья, перчаток, перевязочного материала.

Стерилизация нережущих инструментов(зажимы, пинцеты, зонды, пластинки, винты, стержни): основным методом является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. кипячение в 2% растворе соды в течение 30 минут. Инструменты, загрязненные гноем, кипятят 45 мину. Инструменты после операции по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не следует. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования могут стерилизоваться лучевым способом.

 

Стерилизация перчаток: автоклавирование. При многократной стерилизации резина теряет свою эластичность, трескается.(минус использования автоклава) Допустимо кипячение в течение 15 минут.

Для перчаток основной метод автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм., в течение 30-40 минут или при 1,5 атм. – 15-20 минут.

В экстренных случаях хирург надевает перчатки и в течение 5 минут обрабатывает их шариком, смоченным 96% этиловым спиртом.

После надевания уже стерильных перчаток обычно их обрабатывают шариком со спиртом для снятия с поверхности талька.

Стерилизация перчаток осуществляется в паровом стерилизаторе, кипячением в дистиллированной воде или погружением в антисептический раствор. Перед стерилизацией для проверки целости перчатки надувают воздухом и погружают в воду. Выход пузырьков воздуха свидетельствует о наличии в перчатках отверстий. Такие перчатки подлежат замене.

Перед началом стерилизации перчатки пересыпают снаружи и изнутри тальком. В каждый палец вводят полоску марли. Перчатку перекладывают и завертывают марлей.

Стерилизация в автоклаве приводит к быстрой порче перчаток, потере ими эластичности. Поэтому целесообразнее перчатки кипятить в стерилизаторе в дистиллированной воде в течение 40 мин. Дно стерилизатора покрывают марлей, на которой перчатки должны лежать без перегибов. Для работы в перевязочной можно стерилизовать перчатки в растворе Синицына (борная кислота — 5 г, натрия карбонат — 75 г, формалин — 100 г, фенол — 16,5 г, дистиллированная вода — 5000 г) в течение 3 ч или в 2%-ном растворе хлорамина в течение 30 мин. Чтобы перчатки не всплывали, в них вкладывают груз.

Простерилизованные перчатки извлекают из раствора стерильным корнцангом, с обеих сторон протирают стерильным полотенцем, пересыпают стерильным тальком и хранят в стерильном биксе завернутыми в стерильную салфетку (полотенце). После операции, не снимая перчаток, их моют теплой проточной водой с мылом. Затем подвергают предстерилизационной очистке, дезинфекции и стерилизации в соответствии с требованиями стандарта и инструкции

Стерилизация белья и перевязочного материала:

Операционное белье – хирургические халаты, простыни, полотенца, подкладные. (Хлопчатобумажные ткани) После использования проходят стирку отдельно от других видов белья.

Перевязочный материал – готовят перед стерилизацией. Повторно не используется, сжигается.

Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией их укладывают в биксы. Существует три вида укладки в биксы:

 

1) Универсальная укладка: бикс условно разделается на секторы, и каждый из них заполняется определенным видом перевязочного материала и белья. Обычно используется при работе в перевязочной и при малых операциях.

 

2) Целенаправленная: в бикс укладываются все инструменты, первязочный материал и белье, необходимые для осуществления процедуры. Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций.

 

3) Видовая: в один бикс укладывают только один вид перевязочного материала или белья. Обычно используют в операционных, где требуется большое количество стерильного материала.

Добавлено!!!!

Этап 1 —подготовка материала. Перевязочный материал должен легко стерилизоваться и не терять при этом своих свойств. Его готовят из марли и ваты, реже из вискозы и лигнина. Для работы из них готовят шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Марля должна складываться так, чтобы не было свободного края, из которого могут осыпаться волокна ткани. Материал заготавливают впрок, пополняя его по мере расходования. Перед стерилизацией его укладывают следующим образом: шарики – в марлевые мешочки по 50—100 штук, салфетки связывают по 10 штук. В качестве операционного белья используют хирургические халаты, простыни, пелёнки, полотенца, шапочки, бахилы. Их изготавливают из хлопчатобумажной ткани. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складываются в виде рулонов, это позволяет легко развернуть их при использовании. Перевязочный материал после его использования сжигается. Белье многократного применения стирается, но отдельно от других видов белья. Этап 2 – укладка материала. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в биксах. Применяют три вида укладки бикса: • универсальная укладка • целенаправленная укладка • видовая укладка Универсальная – укладывают материал и белье для одной небольшой, типичной операции. Этот вид укладки используют при работе в перевязочных и при малых операциях. Укладку производят по секторам. Бикс делят на секторы, которые заполняются определенным видом материала или белья: в один сектор помещаются салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д. Целенаправленная – укладывают материал и белье для определенной операции. Например, для аппендэктомии, резекции желудка. В бикс укладывается набор перевязочного материала и белья, необходимый для осуществления операции. Видовая – укладывают определенный вид материала или белья. Этот вид укладки применяют в операционных, где выполняется большое количество различных операций. Укладка осуществляется следующим образом – в один бикс хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д. Укладку бикса осуществляют следующим образом. Проверяют исправность бикса. Протирают дно, стенки, крышку бикса вначале изнутри, а затем снаружи 0,5 % нашатырным спиртом. На боковой стенке бикса круговую пластинку (поясок герметичности), сдвигают так, чтобы открыть боковые отверстия. Бикс выстилается сложенной вдвое простыней, при этом концы её должны свисать наружу. На дно бикса кладут индикатор контроля стерильности. Перевязочный материал и белье укладывают в бикс рыхло, вертикально, по секторам или послойно. Каждый предмет кладут так, чтобы легко было достать, не нарушая укладку. В середину бикса кладут ещё индикатор контроля стерильности. Края простыни выстилающей бикс заворачивают один на другой. Сверху ближе к замку бикса кладут еще один контрольный индикатор. Закрывают крышку бикса на замок. К ручке бикса крепят бирку – паспорт. Этап 3 – стерилизация. Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Этап 4 – хранение стерильного материала. Боковые отверстия простерилизованного бикса должны быть закрыты. Биксы со стерильным материалом хранятся отдельно от биксов с нестерильным. После стерилизации хранить не вскрытый бикс можно 3 суток, после вскрытия 1 сутки. Неиспользованные биксы подвергаются повторной стерилизации. ПРОВЕРКА КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ Контроль за стерильностью может проводиться прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ – бактериологический, проводится посев со стерильных предметов. Его производят следующим образом: в операционной вскрывается бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего их опускают в пробирку. Взятый таким образом материал направляют на бактериологическое исследование. Бактериологический контроль проводят один раз в 10 дней. Он является самым надежным методом контроля стерильности. Для непосредственного контроля стерильности материала применяются непрямые способы. Благодаря им можно оценить качество стерилизации каждого бикса. Непрямые методы основаны на закладывании в стерилизуемые биксы термоиндикаторов, которые показывают, прошел ли стерилизуемый материал определенный температурный режим. Для индикаторов используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), мочевина (132°С), тиомочевину (180°С). Их помещают в ампулы. Индикаторы закладывают вместе со стерилизуемыми предметами. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу свидетельствует, что температура стерилизации была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее.

 

Стерилизация инструментов — Студопедия

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые,

оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Стерилизация режущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1—2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде.

Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180— 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным. Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды. Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде.



Стерилизация хирургических инструментов

Обработка
всех инструментов включает в себя
последовательное выполнение двух
этапов: предстерилизационной обработки
и непосредственно стерилизации. Вид и
объем предстерилизационной обработки
определяется степенью инфицированности
инструментов, а способ стерилизации
прежде всего зависит от вида инструментов.

Предстерилизационная
подготовка складывается из обеззараживания,
мытья и высушивания. Раньше существенно
отличалась обработка инструментов
после чистых операций (перевязок),
гнойных операций, операций у больных,
перенесших гепатит и в группе риска по
СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая
высокую опасность распространения
СПИДа, правила предстерилизационной
подготовки ужесточены и приравнены к
способам обработки инструментов,
предусматривающим безусловную гарантию
уничтожения вируса иммунодефицита
человека. Следует отметить только, что
инструменты после гнойных операций,
операций у больных, пе­ренесших в
течение
5 последних
лет гепатит, а также при риске
СПИДа обрабатываются
отдельно от других.

Обеззараживание

Непосредственно
после использования инструменты
погружаются в емкость с дезинфицирующими
средствами (накопитель). В качестве
дезинфицирующих средств используется
3% раствор
хлорамина (экспозиция
40-60 минуту
или
6% раствор
перекиси водорода (экспозиция
90 минут).
После обез­зараживания инструменты
промываются проточной водой.

Мытье

Инструменты
погружаются в специальный моющий
(щелочной) ра­створ, в состав которого
входит моющее средство (стиральный
порошок), перекись водорода и вода.
Температура раствора 50-60°С, экспозиция
20
минут. После этого инструменты моют
щетками в том же растворе, а затем в
проточной воде.

Высушивание

Высушивание
может осуществляться естественным
путем или в сухожаровом шкафу при 80°С
в течение
30 минут.

Все
хирургические инструменты по особенностям
использованных материалов и других
качеств можно условно разделить на три
группы:

• металлические
(режущие и нережущие),

• резиновые
и пластмассовые,

• оптические

Стерилизация
нережущих металлических инструментов
— горячим воздухом в сухожаровом шкафу
или в автоклаве при стандартных ре­жимах.
Возможно также использование кипячения.
Однако инструмен­ты после операций
по поводу анаэробной инфекции и в группе
риска по гепатиту кипятить не рекомендуется.

Стерилизация
режущих металлических инструментов
с
помощью термических методов приводит
к их затуплению и потере необходимых
для хирурга свойств.
Основным
методом стерилизации режущих инструментов
является холодный химический способ с
применением растворов антисептиков.

В
последнее время в перевязочных режущие
инструменты, как и не­режущие,
стерилизуются в сухожаровом шкафу, что
приводит к некоторому снижению их
остроты, но обеспечивает абсолютную
стерильность.

Самыми
лучшими способами стерилизации являются
газовая стерилизация и особенно лучевая
стерилизация в заводских условиях.

Стерилизация
резиновых и пластмассовых инструментов

Основным
методом стерилизации резиновых изделий
является
автоклавирование.
Допустимо также кипячение резиновых
изделий в течение
15 минут.

В
последнее время наиболее часто
используются одноразовые перчатки,
подвергшиеся лучевой заводской
стерилизации.

Стерилизация
оптических инструментов

Основным
методом является газовая стерилизация.
Обрабатываются все инструменты для
проведения лапароскопических и
торакоскопических вмешательств.

Следует
особо отметить, что наилучшим способом
профилактики контактной инфекции
является использование одноразового
инструментария, подвергшегося лучевой
заводской стерилизации!

Руководство по очистке и стерилизации интраокулярных хирургических инструментов — 2018

Настоящее руководство предназначено для оказания помощи центрам амбулаторной хирургии (ASC) в их усилиях по внедрению надлежащих методов очистки и стерилизации интраокулярных хирургических инструментов. Они предназначены только для научных, образовательных и информационных целей. Они не предназначены для установления единственно приемлемых или подходящих стандартов, методов или практик очистки и стерилизации таких инструментов.Соблюдение этих руководящих принципов не гарантирует соблюдение каких-либо правовых или нормативных стандартов, включая, помимо прочего, критерии лицензирования или сертификации ASC, возмещения расходов по программе Medicare или другим сторонним плательщикам. Кроме того, любые обсуждения или рекомендации в этом руководстве относительно использования лекарств или устройств, которые не соответствуют утвержденным Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (FDA), использование таких продуктов (т. и предназначены только для образовательных целей и должны подпадать под исключение FDA для «медицинской практики» для использования не по назначению.Отдельные врачи должны выносить независимые суждения о том, является ли использование определенного лекарства или устройства не по назначению уместным и в интересах пациента, основываясь на фактах и ​​обстоятельствах конкретного случая.

Введение

Послеоперационный инфекционный эндофтальмит и синдром токсического переднего сегмента (TASS) — редкие, но потенциально опасные для зрения осложнения катаракты и других внутриглазных операций. Небольшой объем глаза и его чувствительность к незначительным количествам химических или микробных загрязнителей означает, что неправильная очистка или стерилизация инструментов могут представлять значительный риск для пациентов.Целевая группа по очистке и стерилизации офтальмологических инструментов (OICS) состоит из представителей Американского общества катарактальной и рефракционной хирургии (ASCRS), Американской академии офтальмологии (AAO) и Общества амбулаторной офтальмохирургии (OOSS). Эти профессиональные сообщества представляют офтальмологов и клинический персонал офтальмологических центров амбулаторной хирургии, включая хирургов, медсестер и техников. В состав рабочей группы OICS входят эксперты по ТАСС и эндофтальмиту, и они написали этот документ, чтобы предоставить специализированные, основанные на фактах рекомендации по очистке и стерилизации интраокулярных хирургических инструментов.Этот документ представляет собой обновленную версию оригинальных рекомендованных практик очистки и стерилизации интраокулярных хирургических инструментов, опубликованных в 2007 году. 1

Большинство рекомендуемых практик основано на существующих основанных на фактических данных рекомендациях по очистке и стерилизации всех хирургических инструментов в целом, 2–4 из опубликованных анализов вспышек заболеваний TASS, 5–12 и инструкциях производителей по применению хирургические инструменты и оборудование. Кроме того, члены целевой группы сотрудничали в проведении нового исследования, которое поддерживает определенные рекомендации, упомянутые в этом документе.

Этот специализированный документ направлен на определение минимальных стандартов для очистки и стерилизации внутриглазных инструментов на основе консенсуса экспертов, представляющих 3 спонсирующих общества. Хотя рекомендации в этом документе разработаны специально для хирургии катаракты, они также актуальны для инструментов, используемых в других внутриглазных хирургических процедурах. Он не является исчерпывающим списком всех требований к стерилизации и обеспечению качества процесса стерилизации.Отдельные центры могут принять решение о включении дополнительных мер, помимо того, что описано в этом документе.

Следует также принять во внимание рекомендации других соответствующих организаций. 2–4,13 Однако многие рекомендации из этих опубликованных руководств сделаны в отношении всех хирургических процедур и не относятся к офтальмологическим инструментам и хирургии. Поэтому в этих рекомендациях часто не учитываются уникальные условия внутриглазной хирургии и особые требования к чистке и стерилизации офтальмологических инструментов.В результате всеобъемлющие, широкие рекомендации, пытающиеся охватить операцию с головы до ног, иногда могут включать несоответствующие или даже рискованные методы лечения офтальмологических случаев. Например, операции по удалению катаракты короче, чем многие общие хирургические процедуры, и часто выполняются с большим ежедневным объемом. Внутриглазные хирургические инструменты — одни из самых маленьких по размеру и, как правило, не сильно загрязняются тканями или бактериальными загрязнениями. С другой стороны, незначительные количества детергента или химических загрязнителей, которые хорошо переносятся другими полостями тела, могут вызвать серьезное внутриглазное воспаление (ТАСС) при попадании в глаз. 14,15 Эти характеристики могут отличать оптимальные процедуры очистки и стерилизации при хирургии катаракты от процедур, требуемых для многих других видов хирургии.

Синдром токсического переднего сегмента (ТАСС)

Синдром токсического переднего сегмента — это острая тяжелая воспалительная реакция на токсический контаминант, попавший в переднюю камеру глаза во время внутриглазной операции. Помимо тяжелых клеток передней камеры и обострения, это может быть связано с фибрином, гипопионом, диффузным отеком роговицы от лимба к лимбу, атоническим зрачком, вторичной глаукомой и в некоторых случаях с клетками стекловидного тела. 16 Из-за этих признаков ТАСС может быть неправильно диагностирован и неправильно обработан как инфекционный эндофтальмит. Даже если ТАСС разрешится лечением и без постоянных последствий, пациент часто страдает эмоциональной травмой, полагая, что у него может быть потенциально ослепляющая инфекция.

Крупная вспышка ТАСС в 2006 г. привела к формированию Целевой группы ASCRS ТАСС, опросы и посещения которой неизменно показывают, что неправильная очистка и стерилизация инструментов является наиболее часто выявляемой причиной ТАСС. 17,18 Целевая группа ТАСС отдельно проанализировала и сравнила причины появления ТАСС за 2 периода: 2007–2009 и 2009–2012 гг. 17,18 Данные 130 анкет и 71 посещения пораженных центров амбулаторной хирургии (ASC) были включены в окончательный анализ 1454 случаев TASS в результате примерно 69 000 сопутствующих операций по удалению катаракты. Наиболее частыми факторами риска ТАСС были неправильная промывка и полоскание наконечников, использование ферментных моющих средств и использование ультразвуковых ванн. 18

Офтальмологический обзор практики стерилизации ASC, 2014 г.

В 2014 г. опрос, разработанный Целевой группой OICS, был разослан ASC-членам OOSS в отношении очистки и стерилизации интраокулярных инструментов. Опрос был проведен 232 центрами-респондентами, представляющими различные амбулаторные хирургические учреждения, включая специализированные офтальмологические и многопрофильные центры. Модели собственности включали 100% принадлежность врачей, аффилированные с корпорациями, филиалы больниц и амбулаторные отделения больниц (HOPD).В целях анализа практики очистки и стерилизации, в частности, для офтальмологической хирургии, были исключены мультиспециализированные ASC, связанные с больницей ASC и HOPD. Всего было проанализировано 182 полных ответа на этот руководящий документ OICS. В течение предшествующих 12 месяцев респонденты-респонденты одного профиля сообщили о проведении в общей сложности 608 117 глазных хирургических вмешательств. Общий уровень инфицирования составил 0,02%: в 116 учреждениях не было зарегистрировано ни одного случая заболевания, а в 66 учреждениях — 104 случая эндофтальмита.Общий показатель ТАСС составил 0,01%, при этом 161 учреждение сообщило о нулевых случаях заболевания и 21 учреждение сообщило в общей сложности о 50 случаях. Большинство объектов (97,3%) были проверены регулирующим органом в течение предыдущего трехлетнего периода. В результате проверки 16,9% предприятий сообщили, что их просили изменить протоколы очистки или стерилизации.

Общие административные принципы

Все помещения должны иметь письменные протоколы очистки и стерилизации инструментов.Эти «политики и процедуры» должны быть основаны на отраслевых стандартах и ​​рекомендациях с участием медсестер и медицинского персонала. Они должны быть одобрены руководящим органом учреждения и быть доступными для операционной и персонала, занимающегося обработкой инструментов. Кроме того, эти политики и процедуры следует пересматривать ежегодно и при приобретении нового инструментария или стерилизационного оборудования. 2,3 Мы признаем большое разнообразие офтальмологических хирургических учреждений, а также используемых хирургических продуктов и инструментов.Врачам и руководителям медперсонала должна быть предоставлена ​​некоторая свобода усмотрения в разработке и пересмотре письменных политик и процедур их учреждения по очистке и стерилизации инструментов на основе наилучших имеющихся клинических данных. Затем они должны быть одобрены руководящим органом предприятия.

Привлекаемый персонал должен быть надлежащим образом обучен обращению, чистке и стерилизации внутриглазных хирургических инструментов и подлежит периодическому контролю. 2,3,13 Помимо общих принципов асептики, это обучение также должно включать очистку, осмотр, подготовку, упаковку, стерилизацию, хранение и распространение интраокулярных хирургических инструментов.Соответствующий персонал также должен быть обучен смежным задачам, таким как эксплуатация оборудования и профилактическое обслуживание. Они должны пройти проверку компетентности путем непосредственного наблюдения за работой. 2,3 Обучение, подготовка и проверка компетентности персонала должны обновляться и документироваться не реже одного раза в год и одновременно с внедрением нового хирургического оборудования, медицинских устройств или систем упаковки. 2,3

И инфекционный эндофтальмит, и ТАСС являются редкими событиями, и их частота должна отслеживаться как средство подтверждения безопасности и эффективности письменных протоколов учреждения.Персонал операционной должен быть осведомлен о причинах эндофтальмита и ТАСС. Следует внедрить систему эпиднадзора для отчетности и документирования инфекционного эндофтальмита и ТАСС. Любое увеличение частоты инфекционного эндофтальмита или ТАСС должно побуждать к тщательному анализу и документированному анализу процедур и протоколов учреждения по очистке и стерилизации инструментов. 17 Записи об использовании инструментов, лекарственных препаратов и процедур стерилизации должны вестись в соответствии с политикой учреждения. 2–4,16 Такие записи могут помочь в расследовании любых вспышек ТАСС или инфекционного эндофтальмита. 2–4,16

Очистка интраокулярных хирургических инструментов

Очистка и дезинфекция, включая тщательное ополаскивание и промывку, должны предшествовать дезинфекции или стерилизации. Рекомендуется чистить офтальмологические инструменты отдельно от неофтальмологических хирургических инструментов. Загрязненные и загрязненные инструменты также следует очищать в помещении, отдельном от места упаковки и стерилизации.

Во время обеззараживания и очистки весь мусор, включая офтальмологическое вискохирургическое устройство (OVD), следует удалить с инструментов. 7,16,19 Может быть полезно поддерживать инструменты во влажном состоянии до начала процесса очистки, чтобы избежать высыхания мусора и OVD. 2,3,16,20 Для чистки инструментов следует использовать смоченную ткань без ворса или мягкую щетку в соответствии с инструкциями производителя. 3,4 Могут потребоваться дополнительные или повторяющиеся шаги по очистке и промывке для каждого инструмента для обеспечения удаления всего мусора и OVD. 21

Объем и тип воды для очистки и ополаскивания инструментов должны соответствовать инструкциям производителя IFU .2,3,22 IFU для многих внутриглазных инструментов рекомендуют или требуют критически важной воды (стерильной дистиллированной, обратноосмотической или деионизированной) для большинства этапов очистки и для финального полоскания

.

Список основных хирургических инструментов и их использования

Сегодня используется так много хирургических инструментов, что хочется знать об их конкретных задачах. В следующей статье представлена ​​информация об основных хирургических инструментах и ​​их использовании.

Знаете ли вы?

Для предотвращения любого вида инфекции во время операции стерилизация инструментов была впервые предложена Луи Пастером, французским химиком в 1878 году.

Важность хирургических инструментов

Операцию нельзя проводить без медицинских тестов и инструментов.Существует множество хирургических инструментов, каждый из которых предназначен для определенной цели. Некоторые используются для надрезов, а другие предназначены для удержания тканей. Правильное их использование необходимо для предотвращения необратимых повреждений внутренних органов тела.

Основные хирургические инструменты и их применение

  • Скальпель
  • Скобы хирургические
  • Нить хирургическая
  • Кровоостанавливающий
  • Расширитель
  • Ножницы
  • Кюретка
  • Щипцы
  • Втягивающие устройства
  • Хирургический лифт
  • Зонд
  • Иглодержатель

Хотите написать для нас? Что ж, мы ищем хороших писателей, которые хотят распространять информацию.Свяжитесь с нами, и мы поговорим …

Давайте работать вместе!

Информация о наиболее часто используемых хирургических инструментах с их изображениями представлена ​​ниже:

Скальпель

Это хирургический нож с острым лезвием из нержавеющей стали. Независимо от того, является ли это незначительной или серьезной операцией, правильный хирургический разрез является обязательным, что невозможно без скальпеля. Каждая операция имеет свои специфические потребности.Например, небольшая операция потребует небольшого разреза, тогда как серьезная операция может потребовать разреза глубоко в тканях кожи. Принимая это во внимание, скальпели производятся самых разных размеров. Лезвия скальпеля съемные, и во многих случаях этот инструмент предназначен только для одноразового использования.

Скобы хирургические

Говоря о перечне хирургических инструментов, нельзя не упомянуть хирургические скобки.Как правило, разрез или открытая рана, образовавшаяся во время операции, нельзя оставлять открытыми, поскольку это может вызвать внутреннее кровотечение. Распространенной практикой является закрытие этих разрезов швом, но в настоящее время хирурги предпочитают использовать хирургические скобки вместо швов. Основным преимуществом является то, что вероятность протекания крови из раны, закрытой хирургической скобой, минимальна. Помимо закрытия разреза, хирургические скобки также полезны для повторного прикрепления и удаления частей определенных органов. Например, операция на кишечнике может потребовать разрезания определенных частей кишечника и повторного соединения оставшейся части кишечника.Это можно сделать эффективно и точно с помощью хирургических скоб.

Нить хирургическая

Как мы все знаем, во время операции делаются надрезы для проведения процедуры. Хирургические швы, которые представляют собой не что иное, как швы, обычно используются для повторного соединения тканей, чтобы закрыть разрез после завершения хирургической процедуры. Швы также помогают соединить края раны после травмы. Это закрытие раны помогает облегчить заживление травмы. Современные швы изготавливаются из синтетического материала, который может быть рассасывающимся или нерассасывающимся.

Рассасывающиеся нити

Рассасывающиеся швы со временем рассасываются организмом. Продолжительность рассасывания варьируется в зависимости от типа шовного материала, но длится от 10 дней до 2 месяцев. Когда шов наложен глубоко внутри тела или пациент не может снова посетить больницу для снятия швов, используются рассасывающиеся швы. Рассасывающиеся нити в основном состоят из синтетических материалов, таких как полимолочная кислота, полигликолевая кислота и капролактон.

Нерассасывающиеся нити

Нерассасывающиеся нити не подлежат биологическому разложению; следовательно, организм не может расщепить и усвоить. Материал, используемый для изготовления нерассасывающихся швов, обычно представляет собой полипропилен, нейлон или полиэстер. Проволока из нержавеющей стали, обладающая высокой прочностью на разрыв, часто предпочтительна для закрытия грудины после операции на сердце. В целом, нерассасывающиеся нити имеют преимущество перед своими аналогами, поскольку они вызывают минимальное рубцевание. Обычно эти швы снимаются через определенное время, но в некоторых случаях им разрешается оставаться на месте.

Кровоостанавливающий

Во время любой хирургической процедуры обязательно должно быть кровотечение. Небольшой разрез здесь и там с последующим кровотечением. Чтобы предотвратить серьезные осложнения, хирург часто использует кровоостанавливающий зажим. Это хирургический инструмент в виде зажима, который используется для сужения кровеносного сосуда, что помогает минимизировать или остановить кровоток во время любой хирургической процедуры.

Расширитель

Хирургические процедуры, затрагивающие пищевод, уретру или шейку матки, часто требуют от хирурга увеличения отверстия этих трубчатых структур.Это можно сделать с помощью расширителей, инструментов, которые расширяют проход, тем самым позволяя хирургу получить доступ к органу и правильно выполнить операцию. Эти инструменты вызывают расширение для открытия трубки, протока или полости для хирургических целей.

Ножницы

Хотите написать для нас? Что ж, мы ищем хороших писателей, которые хотят распространять информацию. Свяжитесь с нами, и мы поговорим …

Давайте работать вместе!

Этот хирургический инструмент в основном используется для разрезания тканей тела.Ножницы, используемые в хирургии, бывают двух основных типов: ножницы Мейо и Метценбаума. Когда дело доходит до рассечения или рассечения мягких нежных тканей, хирурги предпочитают ножницы Метценбаума. Ножницы Mayo используются для резки твердых тканей, например суставов. Толстые ткани, расположенные в груди и мышцах, также можно разрезать ножницами Мейо. Обычно эти ножницы изготавливаются из нержавеющей стали и изготавливаются разной длины.

Иглодержатель

Как мы все знаем, сшивание тканей тела, разрезанных во время операции, является очень важной задачей.Даже небольшая ошибка при сшивании ткани может причинить пациенту дискомфорт через несколько дней после завершения операции. Неправильно сшитая кожная ткань может быть причиной сильной боли и может потребовать повторной операции для ее исправления. Чтобы избежать всех этих осложнений и точно выполнить зашивание тканей, хирурги часто используют иглодержатели. Эти инструменты позволяют хирургу прочно удерживать иглу при сшивании необходимой ткани.

Иглодержатель по форме похож на ножницы, состоит из прямых гладких губок, шарниров и ручек.Он поставляется со вставками из карбида вольфрама, которые прикреплены к концам обеих губок. Они гарантируют, что игла не будет двигаться во время шитья тканей. Проще говоря, эти инструменты предназначены для надежного захвата иглы, что существенно снижает вероятность ошибки на этом этапе операции.

Пинцет

Щипцы

похожи на кухонные щипцы, которые позволяют хирургу прочно захватывать и удерживать ткани кожи. На эти щипцы всегда можно положиться, будь то удерживание части кишечника или пережатие артерий во время операции.Этот хирургический инструмент бывает разных размеров, поэтому хирург может выбрать один в зависимости от своих конкретных потребностей. Щипцы, которые предназначены для удержания головы ребенка, довольно большие, и их основная цель — безопасно удалить ребенка из родовых путей во время кесарева сечения.

Кюретка

Этот хирургический инструмент, напоминающий ложку, используется для удаления нежелательных тканей из внутренних полостей тела. Используя инструмент, хирург просто соскабливает патологическую ткань. Процедура очистки, такая как удаление опухоли, может потребовать использования кюретки.

Ретракторы

Когда делается разрез, он должен оставаться открытым во время операции. Эта работа по сохранению широко открытого разреза выполняется ретракторами. Эти инструменты используются для вытягивания тканей назад, чтобы хирург мог легко получить доступ к месту операции и провести операцию без каких-либо препятствий. Иногда даже органы приходится удерживать ретракторами, чтобы обнажить место операции до желаемого уровня. Доступны ретракторы разных размеров и форм.Кроме того, существуют разные типы ретракторов, каждый из которых предназначен для втягивания определенного органа. Например, легочные ретракторы можно использовать, чтобы осторожно отодвинуть легкие, чтобы получить беспрепятственный обзор операционного поля. Так что, будь то операция на желчном пузыре или операция по уменьшению груди, без ретракторов не обойтись.

Хирургический лифт

Когда дело доходит до хирургического вмешательства в полости рта, например, удаления зуба, это невозможно без хирургического подъемника. Этот инструмент обычно используется в стоматологии для удаления пораженных зубов из лунок.Он также используется для отделения костей от тканей.

Зонд

Зонд — это длинный гибкий хирургический инструмент с тупым концом, который используется для исследования раны и полостей тела, например пазухи. Инструмент помогает оценить рану, например, ее глубину. С помощью этого инструмента также можно оценить направление раны. Когда инструмент вставляется в рану или полость, чрезмерное использование может вызвать боль и вызвать боль у пациентов.

Это некоторые из основных хирургических инструментов и способы их использования.Имейте в виду, что важно выбрать хирургический инструмент, подходящий для процедуры. Выбор неправильных инструментов может не только травмировать пациента, но и помешать хирургу выполнять свою работу наилучшим образом.

.

насадок для стерилизации хирургических инструментов Millennium

Занять активную позицию по профилактике инфекций! Зарегистрируйтесь и загрузите плакат в формате PDF размером 8,5 x 11 дюймов с инструкциями по обработке хирургических инструментов!

Millennium Surgical стала партнером медсестры-консультанта и в 2008-2010 годах избрала членом правления AORN Роуз Сиви, RN, BS, MBA, CNOR, CRCST, CSPDT, чтобы помочь медицинским учреждениям повысить безопасность пациентов. Плакат освещает основные этапы очистки и стерилизации хирургических инструментов, намеченные основными агентствами по аккредитации.

Загрузите распечатанный плакат с инструкциями по повторной обработке инструментов

Практика надлежащей стерилизации и обеззараживания инструментов

Мгновенная стерилизация была разработана для немедленной стерилизации единственного в своем роде устройства, которое упало или было заражено в операционной. Однако в настоящее время мгновенная стерилизация чаще используется для быстрой стерилизации инструментов из-за недостаточного количества инструментов и увеличения объема процедур.Особенно это актуально для случаев ортопедии и офтальмологии.

Совет №1: Используйте мгновенную стерилизацию надлежащим образом

Мгновенную стерилизацию следует использовать только в том случае, если недостаточно времени для обработки с использованием предпочтительного метода упаковки или контейнера. Мгновенную стерилизацию не следует использовать вместо недостаточного инвентаря инструментов.

Совет № 2: сопоставьте стоимость инструментов с безопасностью пациента

Хотя комплекты инструментов могут быть значительными расходами для медицинских учреждений, их стоимость бледнеет по сравнению с ущербом, связанным со снижением безопасности пациентов и загрязнением.Это ставит под угрозу не только пациента, но и репутацию учреждения, риск судебных исков и аккредитацию JCAHO.

Совет № 3: Установите руководящие принципы

Определите правила мгновенной стерилизации на вашем предприятии и установите соответствующие инструкции, которым должны следовать все. Необходимо использовать журнал мгновенной стерилизации.

Совет №4: Если вам нужно мигать, делайте это правильно

Использовали закрытые стерилизационные контейнеры или запатентованную систему Flash-Guard, чтобы инструменты были защищены от загрязнения от автоклава до места использования.Система Flash-Guard проста в использовании, стерилизация полностью проверена, а инструменты можно безопасно транспортировать в соответствии с инструкциями через нестерильные зоны.

Совет № 5: Создавайте более эффективные наборы инструментов

Проведите инвентаризацию инструментов и определите, какие из них используются наиболее часто. Оптимизированные наборы инструментов должны быть построены так, чтобы включать только эти инструменты. Чем меньше инструментов в наборе, тем меньше времени потребуется на обработку набора. Благодаря оптимизированным наборам деньги не тратятся на инструменты, которые используются редко.Найдите поставщика инструментов, который поможет вам сэкономить деньги и время при создании эффективного набора инструментов.

Совет № 6: Посвятите кого-нибудь для обработки инструментов

Обеспечьте стерилизацию всех инструментов путем повторной обработки, назначив кого-либо для выполнения этой обязанности. Безопасность пациентов — важная мера для всех учреждений, а обработка инструментов — ключевой элемент обеспечения стерильной и безопасной среды.

Совет № 7: обратитесь за внешней поддержкой

Если ваш бюджет или системы не справляются с требованиями

.

PPT — Текущие вопросы, касающиеся дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов, загрязненных прионами Презентация в формате PowerPoint

  • Текущие проблемы, касающиеся дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов, загрязненных прионами Jeannie Druckenmiller Wisconsin Division of Public Health 2011

  • Пациент с быстро прогрессирующим слабоумием • Обнаружена опухоль, bx сделано — незлокачественная; отсутствие гистологии, указывающей на прионную болезнь • Психическое состояние пациента продолжает быстро ухудшаться • БКЯ обнаружена при полном вскрытии мозга • Инструменты Bx использовались у> 50 других пациентов

  • Инцидент: 2009, продолжение. • В соответствии с политикой больницы биопсия опухоли считалась нейрохирургической операцией на «объемном поражении», поэтому о профилактике инфекций не сообщалось заранее.

  • Руководство SHEA по дезинфекции и стерилизации приона, 2010 г. -Загрязненные медицинские инструменты • Rutala WA, Weber DJ. Руководство по дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов, загрязненных прионами. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2010; 31: 107-117. • http://www.unc.edu/depts/spice/dis/ICHE-2010-Feb-p107.pdf • Письмо CDC, Belay et al, декабрь 2010 г. • Ответ от Rutala на письмо Belay

  • 2010 SHEA Guideline cont.Background • Ятрогенная передача CJD у людей описана только в 3 случаях: • Внутричерепные электроды / нейрохирургия • Терапия трупным гормоном роста • Загрязненные трансплантаты из тканей человека (твердой мозговой оболочки> 190 случаев), обработанные до 1987 года, и роговицы (2 случая) Rutala and Weber, 2010

  • 2010 SHEA Guideline cont.Предпосылки • Резюме: Все известные случаи были результатом контакта с инфицированным мозгом, гипофизом или тканями заднего отдела глаза. Rutala and Weber, 2010

  • 2010 Руководство SHEA, продолжение. Справочная информация • Случаев передачи зараженных медицинских инструментов за последние несколько десятилетий (> 30 лет) не известно • Передача инфекции неэффективна, а современные методы очистки и дезинфекции «хотя и неоптимальные могут предотвращать болезни ».

  • Руководство SHEA 2010, продолжениеПредпосылки • В исследованиях ятрогенно-ассоциированной CJD в 1952-1976 гг. Отсутствуют важные детали, касающиеся методологии переработки. • Нет известных случаев, связанных с повторным использованием устройств или связанных с переливанием продуктов крови.

  • Руководство SHEA 2010, продолжение Предпосылки • Прионы демонстрируют исключительную устойчивость к обычным методам дезинфекции / стерилизации • Прошлые исследования НЕ детализировали процедуры обработки • 1) не включали этап очистки • Может снизить микробную нагрузку на 4-6 log10 • Многие исследования показали эффективность этих продуктов для устранения заразности прионов

  • Руководство SHEA 2010, продолжение.Предпосылки • 2) исследования были проведены с использованием гомогенатов тканей (комков ткани). Ткань защищает прион и может быть причиной того, что прион так трудно уничтожить. • 3) В исследованиях использовались разные методологии

  • Руководство SHEA 2010, продолжение. Что мы знаем: • Хлор и NaOH обеспечивают наиболее стабильные результаты инактивации, но вызывают коррозию инструментов и стерилизаторов и вредны для рабочих • Некоторые ферментные очистители и щелочные моющие средства инактивируют прионы • Оксид этилена не работает

  • 2010 SHEA Продолжение руководства Что мы действительно знаем: • Передача при контакте инструмента с инфицированным пациентом должна сохранять свою инфекционность, а прилипшая ткань после дезинфекции / стерилизации должна вступать в контакт с восприимчивой тканью (пациентом).

  • Руководство SHEA 2010, продолжение • Рекомендации данного руководства предназначены для разрыва цепи передачи и • основаны на эпидемиологических (основанных на доказательствах) исследованиях. Другие исследования были основаны на исследованиях инактивации с использованием комков ткани.

  • Руководство SHEA 2010, продолжение Обзор : 3 параметра, которые следует учитывать: • Риск пациента иметь прионную болезнь • Сравнительная инфекционность ткани (тканей) тела • Предполагаемое использование медицинского устройства

  • Руководство SHEA 2010, продолжение. Пациент из группы риска: • Быстро прогрессирующая деменция • Атаксия (двигательное расстройство) • Положительный результат CSF 14-3-3 / тау-белок / NSE • МРТ и / или ЭЭГ, соответствующие CJD • Известный риск — трансплантация твердой мозговой оболочки или гормона роста в анамнезе • Нет другого диагноза, подтверждающего S&S No.3 — 6 могут отсутствовать

  • Руководство SHEA 2010, продолжение. Ткани, подверженные риску • Высокий риск = головной, спинной мозг, задний глаз (включая сетчатку, роговицу и зрительный нерв), гипофиз • Низкий риск = спинномозговая жидкость, печень, лимфа, почки, легкие, селезенка, плацента, обонятельный эпителий

  • Руководство SHEA 2010, продолжение. • Нет риска = кровь / продукты / компоненты крови, костный мозг, периферические нервы, кишечник, сердце, скелетные мышцы, жировая ткань, десны, простата, слезы, слюна, мокрота, моча, кал, пот, грудное молоко, вагинальные выделения, щитовидная железа Rutala and Weber, 2010

  • Руководство SHEA 2010, продолжение.Обзор : Принципы Сполдинга • Критическое устройство: проникает в стерильные ткани или сосудистую систему • Полукритическое: контакт с поврежденной кожей или слизистыми оболочками. Для этих устройств необходима специальная обработка, если они потенциально загрязнены прионами

  • 2010 SHEA Guideline cont. Рекомендации • Держите инструменты влажными до тех пор, пока не произойдет дезинфекция • Погрузите в воду или прионцидное моющее средство (ссылки включены) • Не позволяйте им высохнуть • Дезактивация (очистка) в автоматической моечно-дезинфекционной машине как можно скорее после использования для удаления тканей

  • 2010 Руководство SHEA, продолжение Рекомендации • Варианты после очистки: • 134 ° C для 18 минут предварительного вакуумирования • 132 ° C для 1 часа гравитационного вытеснения • 1 N NaOH в течение 1 часа; промыть водой, автоклавировать в открытом поддоне (121 или 134˚C) • 1N NaOH в течение 1 часа, нагреть под действием силы тяжести при 121˚C 30 мин, затем очистить и простерилизовать Rutala and Weber, 2010

  • 2010 SHEA Продолжение руководства Рекомендации • Выбрасывайте устройства, которые невозможно очистить • Не используйте мгновенную стерилизацию • Отзовите зараженные предметы от пациентов, у которых позже диагностировали прионную болезнь, и повторно обработайте их, используя протокол руководства по прионам • Установите правила для всех пациентов, подвергшихся биопсии головного мозга

  • 2010 SHEA Guideline cont. Рекомендации • Нет рекомендаций по переработке прионов для критических или полукритических устройств, загрязненных тканями с низким риском от пациента с высоким риском. • Поверхности аутопсии и исследовательских лабораторий, загрязненные тканями высокого риска, должны быть обеззаражены отбеливателем 1: 5, время контакта: 15 мин. Rutala and Weber, 2010

  • 2010 SHEA Guideline cont. Рекомендации Цитата авторов: «… мы включили только те варианты, для которых научные исследования лучше всего продемонстрировали как безопасность (для оборудования и оператора), так и эффективность.”Рутала и Вебер, 2010

  • 2010 Руководство SHEA, продолжение. Рекомендации • Поверхности окружающей среды, загрязненные тканями без риска от пациентов из группы высокого риска, требуют стандартной / стандартной дезинфекции. Rutala and Weber, 2010

  • 2010 Руководство SHEA, продолжение. Рекомендации • Рассмотрите возможность использования этих рекомендаций для неспецифической биопсии головного мозга, сделанной всем пациентам с поражением, не занимающим пространство, или • Используйте одноразовые инструменты, или • Регулярно помещайте инструменты в карантин

  • Руководство SHEA 2010, продолжение.Рекомендации • Если прионное заболевание обнаружено постфактум, отозвать и переработать инструменты с использованием специальных процессов, описанных ранее, или • Выбросить инструменты • Для этого вам понадобится подробная система отслеживания

  • 2010 SHEA Guideline cont. Общие меры IP-защиты при прионных заболеваниях • Стандартные меры предосторожности • Отсутствуют особые меры предосторожности при очистке продуктов питания, посуды или окружающей среды, утилизации крови или биологических жидкостей • Нет доказательств профессиональной передачи • Нет необходимости выбрасывать дорогие лабораторные или центральные инструменты

  • Руководство SHEA 2010 (продолжение) Этот документ был одобрен: • SHEA • APIC • AORN • AAMI • Это руководство будет обновляться по мере необходимости, если / когда появятся научно доказанные новые технологии. Rutala and Weber, 2010

  • Ответ Белэя и др., CDC на Rutala и Weber — декабрь 2010 ICHE / SHEA Journal • Рекомендации противоречат рекомендациям, одобренным другими признанными экспертами в данной области • Вопреки руководящим принципам ВОЗ 1999 г. • Отсутствие зарегистрированных случаев ятрогенной передачи может быть не столь обнадеживающим, как утверждают Рутала и Вебер • CDC, FDA, NIH продолжают поддерживать протокол ВОЗ 1999 г.

  • Ответ Рутала и Вебер на Belay et al. 1) Документ ВОЗ не руководству, основанному на фактических данных, и в нем не перечислены научные исследования, использованные для его подтверждения 2) Согласитесь, что идеального типа исследования с системой тестирования не существует, но считают, что эффективность протоколов должна придавать большее значение исследованиям, характерным для современной стандартной обработки инструментов 3) Рутала / Вебер уделяет больше внимания отсутствию зарегистрированных ятрогенных случаев 4) Тщательный обзор исследований показывает противоречивые результаты, вероятно, из-за использования другой методологии 9 0006

  • Ответ Рутала и Вебера на Belay et al. 5) Не согласен с Belay et al относительно определения средней инфекционности, вероятно присутствующей в человеческом мозге 6) Согласитесь, что инструменты должны оставаться влажными до тех пор, пока они не будут очищены 7) Протоколы в Руководстве SHEA согласованы с SHEA, APIC, AORN, AAMI

  • Противоречие продолжается… • Какой документ вам следует использовать? • А как насчет хирургии катаракты? • А как насчет автоматизированных дорогих лабораторных инструментов?

  • Противоречие продолжается… • Какой документ вам следует использовать? • ВОЗ против Rutala & Weber • ??

  • Противоречие продолжается… • А как насчет хирургии катаракты? • Риск передачи при плановой операции по удалению катаракты неизвестен.CDC не знает, что это когда-либо происходило. • Любые операции на глазах у подозреваемых или известных пациентов с БКЯ должны проводиться с использованием одноразовых инструментов, или инструменты должны быть обработаны в соответствии с прионным протоколом. Веб-сайт CDC.

  • Противоречие продолжается… • А как насчет автоматизированных дорогих лабораторных инструментов? • В спинномозговой жидкости ткани не высокого риска. Нет необходимости дезактивировать или выбрасывать автоматизированные лабораторные анализаторы • Rutala and Weber, 2010

  • Установление политики и процедур больницы

  • Политика больниц и процедуры нейрохирургии • Повышение уровня осведомленности о прионной болезни в целом хирургические случаи, связанные с тканями высокого риска • Обеспечьте высокий уровень взаимодействия между операционной и IP • Обеспечьте актуальность политик и процедур

  • Политика больницы и процедуры нейрохирургии • Политика должна включать: • Если после операции есть подозрение на прионную болезнь , задействованные инструменты будут отозваны и должным образом обработаны.• Инструменты, которые не могут выдержать репроцессинг прионов, будут выброшены. • Назначенная координация ответных мер воздействия, при необходимости.

  • Политика больницы и процедуры нейрохирургии • Политика должна включать: • Все пациенты, перенесшие операции на головном, спинном мозге или глазах, должны быть скрининг на S&S, указывающий на прионную болезнь • Уведомление о том, что пациент с возможным прионным заболеванием должен быть доставлен определенной группе людей (например, IP, больничный эпидемиолог, OR) • Операция на таких пациентах будет проводиться с использованием одноразовых инструментов

  • Политика больницы и процедуры нейрохирургии • Политика должна включать: • Требования к обучению • Вопросы безопасности (OSHA) • Необходимые формы (e.g., скрининг пациента) • Ссылки • Ответственность за координацию политики • Процесс рассмотрения с затронутыми отделениями

  • Политика больницы и процедуры для нейрохирургии • Процедура должна включать: • Прионную болезнь следует рассматривать у любого пациента с быстро прогрессирующей деменцией и / или двигательные расстройства • Скрининг Pt на прионную болезнь должен проводиться для всех пациентов, которым назначена операция на головном, спинном мозге, глазах • Назначьте, кто будет проводить скрининг • Параметры для скрининга

  • Политика больницы и процедуры нейрохирургии • Процедура должна включать: • В случае возможного или подтвержденного случая • Уведомление лиц, ответственных за координацию реагирования • Будьте конкретны (e.g., IP, OR, CS, патология, лаборатория, Env. Услуги и т. Д.) • Определите обязанности этих лиц

  • Политика больницы и процедуры нейрохирургии • Процедура должна включать: • Обозначение точных мер предосторожности, которые следует использовать во время операции • Одноразовые инструменты, если возможно быть изолированным, содержаться во влажном состоянии и т. д. • Подробные сведения о карантине инструментов • Удаление ненужного оборудования перед процедурой • Записаться на последний случай дня

  • Политика больницы и процедуры для нейрохирургии • Процедура должна включать: • Усиленную очистку зараженной операционной или лабораторных поверхностей (концентрация, время контакта) • Улучшенная обработка инструментов — включите подробный контрольный список • Одноразовые • Те, которые могут выдерживать повторную обработку прионами • Параметры карантина для других • Маркировка контейнеров / инструментов

  • Политика и процедуры больницы для нейрохирургии • Процедура должна включать : • Re: инструменты, помещенные в карантин • Что делать, если прионная болезнь окончательно исключена • Что делать, если прионная болезнь подтверждена • Любые особые проблемы с обращением

  • Вопросы / комментарии

  • 2010 SHEA Guideline cont. • Передача 2 пациентам через мозговые электроды является подтвержденной передачей только через медицинское устройство: • Имплантируется известным пациентам с CJD • Затем очищается и «стерилизуется» бензолом и 70% спиртом + парами формальдегида • 2 года спустя — извлекается и имплантируется шимпанзе который в итоге развил болезнь

  • .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *