Как правильно собрать мокроту: Анализ мокроты

Содержание

Посев на флору и чувствительность к антибиотикам (с микроскопией нативного препарата)

Исследуемый материал
Мокрота, промывные воды бронхов или трахеи

Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам – это исследование, которое позволяет выявить патогенные микроорганизмы, вызывающие инфекционные заболевания бронхолегочной системы.

Для исследования необходим бак посев мокроты на микрофлору. Мокрота (патологический секрет) выделяется из трахей и бронхов во время кашля. Ее появление свидетельствует о заболеваниях дыхательных путей.

По своему составу мокрота неоднородна. В ней может содержаться слизь, серозная жидкость, гной, фибрин, кровь.

При помощи посева мокроты определяется возбудитель соответствующего заболевания и его чувствительность к антибиотикам. Это дает возможность назначить правильное лечение, предотвратив переход болезни в хроническую форму.

Когда назначают исследование

В обязательном порядке врач назначает анализ мокроты

  • на туберкулез
  • на бк
  • при бронхите
  • при пневмонии
  • при бронхиальной астме
  • при новообразованиях органов дыхания
  • глистной, грибковой инвазии легких.

Также бактериологический анализ мокроты проводят при неясных процессах в грудной клетке по результатам рентгенологического обследования или аускультации.

В норме бак анализ мокроты может показывать наличие представителей нормальной микрофлоры. Однако, обнаружение лишь нормальной микрофлоры еще не означает отсутствие инфицирования.

Расшифровка и интерпретация результатов исследования проводится только лечащим врачом. Как правило, в мокроте присутствует микрофлора ротоглотки, поэтому результат посева интерпретируется с учетом общего стояния пациента и клинической картины.

Сбор мокроты

Чтобы результаты были более точными, нужно правильно собрать мокроту для анализа. Мокрота накапливается ночью, поэтому ее сбор проводиться утром до еды после полоскания рта кипяченой водой.

Следует учесть, что мокроты образуется больше, и она лучше отходит, если перед исследованием употребить больше жидкости. Чтобы сдача мокроты на анализ прошла более эффективно, пациент должен сделать три глубоких вдоха и энергично откашляться.

Материал собирается в разовый стерильный ударостойкий контейнер с плотно закрывающейся крышкой.

Общий анализ мокроты дает макроскопическую оценку секрета (консистенция, цвет, наличие, характер примесей), а также его микроскопию. Микроскопия мокроты оценивает клеточный состав, наличие кристаллов, волокон, микрофлоры. Этот анализ не диагностирует специфические заболевания, например, туберкулез.

Для чего необходимо исследование

Исследование мокроты используется:

  • при диагностике патологических процессов в дыхательных путях и легких;
  • для оценки характера патологий;
  • для наблюдения в динамике за состоянием пациента с хроническими заболеваниями;
  • для оценки эффективности проводимого лечения.

Лаборатория ИНВИТРА проведет необходимые исследования, включая анализ мокроты на микрофлору в короткие сроки на современном оборудовании, позволяющем делать самые точные выводы.

 

Литература

  1. Беркоу Р. (Ред.). Руководство по медицине, т. I М. «Мир», 1997. 1045 с.

  2. Приказ МЗ СССР от 22 апреля 1985 г. № 535 Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений.

  3. Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. Издательство «Лабинформ» — М. — 1997 — 942 с.

  4. Nightingale C. et al./ Antimicrobial Pharmacodynamics in Theory And Clinical Practice/2006/ M.Dekker inc./ 550 ps.

Оказание услуг по лабораторной диагностике туберкулеза

Диагноз за 2 часа


Диагноз за 2 часа — это реально!

Диагностика туберкулеза проводится в бактериологической лаборатории.

Для того, чтобы в лаборатории выполнили исследование, пациент должен сдать один или несколько образцов диагностического материала. Чаще всего туберкулез поражает легкие, поэтому основной материал для диагностики этого заболевания — мокрота. Результативность исследования зависит от качества мокроты, поэтому ее сбор должен проводиться после инструктажа пациента в специальном помещении под наблюдением медработника. Если у пациента не получается собрать мокроту самостоятельно, ему может быть назначена раздражающая ингаляция.

Микобактерии туберкулеза можно обнаружить разными методами, которые характеризуются разной диагностической чувствительностью и длительностью исследования.

Самый быстрый, простой и недорогой метод, позволяющий выявить самые заразные случаи туберкулезав течение одного рабочего дня – микроскопическое исследование мазка мокроты, окрашенного специальными красителями.

Бактериологическое исследование (посев на яичные питательные среды) служит «золотым стандартом» диагностики туберкулеза. Посев обнаруживает микобактерии туберкулеза в биологическом материале пациента, что позволяет установить диагноз и определить, какими противотуберкулезными лекарствами нужно лечить пациента. Этот метод очень чувствительный, однако исследование длительное, колонии микобактерий на питательной среде обычно вырастают не раньше, чем через 3 недели. Тестирование лекарственной чувствительности выросшей культуры микобактерий туберкулеза занимаетеще 28 дней. Результат исследования в случае отсутствия микобактерий в образце выдается через 8 недель.

Проведение исследования на автоматизированной системе ВАСTЕС MGIT 960 существенно быстрее  по сравнению с посевом. Рост микобактерий в пробирке с жидкой средой регистрируется в среднем уже через5-14 дней. Тестирование лекарственной чувствительности выросшей культуры микобактерий занимает еще 14 дней. Окончательный результат в случае отсутствия микобактерий в образце выдается через 42 дня.

Кроме бактериологических исследований, можно выполнить также молекулярно-генетические исследования на туберкулез, основанные на ПЦР (полимеразной цепной реакции). Это самые быстрые на сегодняшний день методы исследования.

Экспресс-метод Xpert MTB/RIF обнаруживает микобактерии туберкулеза в образце и определяет их устойчивость к рифампицину (1 из 2 основных противотуберкулезных лекарственных средств) за 2 часа.

Еще один быстрый молекулярно-генетический метод диагностики туберкулеза – Хайн-тест, названный по имени производителя. Этот метод позволяет обнаружить микобактерии туберкулеза в образце, а также определить  чувствительность  к основным  и к резервным противотуберкулезным лекарственным средствам за  2 дня.

Используемые в современных лабораториях методы диагностики туберкулеза позволяют быстро и эффективно проводить исследование диагностического материала, обнаруживать возбудитель туберкулеза и определять его лекарственную чувствительность, чтобы правильно и своевременно устанавить диагноз и назначить адекватное лечение пациентам с туберкулезом.

Туберкулез излечим, это не приговор, а диагноз. Необходимо вовремя выявить заболевание и начать лечение.

< Предыдущая   Следующая >

Пациентам

Для анализа мочи используют утреннюю среднюю порцию мочи. В случае необходимости можно использовать любую порцию мочи. Желательно избегать питья и еды в ночное время. Можно выпить 1 стакан воды с утра. Собирают мочу перед завтраком, как минимум по истечению 4 часов с момента предыдущего мочеиспускания.
Требования гигиены:
Тщательно помыть руки и внешние половые органы тёплой водой (без мыла и дезификантов).
Процедура сбора мочи:
• Открыть одноразовую ёмкость для сбора мочи (ёмкость можно получить у врача, в лаборатории или купить в аптеке).
• Первую порцию мочи следует выпустить в унитаз, а потом в ёмкость, заполнив при этом примерно 2/3 часим ёмкости.
Транспортировка мочи:
• Ёмкость с мочой следует доставить в лабораторию в течении 2 часов. 
• Если нет возможности доставить ёмкость с мочой в течении 2 часов в лабораторию, её следует перелить в специальную ёмкость (трубочкообразную) с консервантом (можно взять в лаборатории), хранить в таком виде можно до 24 часов при комнатной температуре и до 72 часов в холодильнике. 
Ёмкость содержит консервант (порошок), который ни в коем случае нельзя вытрясать!

 

Сбор мочи для 24 часового анализа: 
Чтобы результаты исследования были правильными, следует принимать пищу и пить в обычном режиме, только если врач не назначил иначе. 

Подготовка:
• Подготовьте ёмкость для сбора мочи, куда будет собрана моча (ёмкостью примерно 2-3 литра).
• Добавьте в ёмкость консервант, который можно получить в лаборатории.
Процедура:
Первую утреннюю порцию мочи не надо собирать. Опорожните мочевой пузырь в любое удобное Вам время, например в 7 00 утра.
• Отмечая время сбора мочи, укажите, пожалуйста: 
   дата _____________ время _________
• Все последующие порции мочи Вам необходимо собрать в одну ёмкость.
• Ёмкость с накопленной мочой следует держать закрытой, храня в холодильнике при температуре + 2 — + 8 o C (в тёмном месте).
• На следуещее утро опустошите мочевой пузырь последний раз ( например, в 7 00 утра) и присоедините мочу к предыдущим порциям.
   Отметьте время окончания сбора мочи. Укажите, пожалуйста:
   дата _______время _________ общая ёмкость накопленной мочи _____ мл.
• Перемешайте всю накопленую мочу и перелейте в меньший контейнер для сбора мочи (~200 мл).
• На ёмкости с мочой укажите: имя, фамилию, дату и суточное количество мочи. 
• Образец следует доставить в лабораторию в течении 4 часов.

Сбор мочи для микробиологических исследований: 
• Можно использовать только стерильную ёмкость для мочи. 
• При сборе материала для микробиологического исследования не следует прикасаться к внутренней стороне ёмкости и крышки.
• Ёмкость с мочой следует доставить в лабораторию в течении 2 часов. В случае длительного хранения — хранить в холодильнике при температуре + 2 — + 8 o C (ни в коем случае не в морозильнике).
• Образец доставить в лабораторию в течении 24 часов.
 Не прикасаться к внутренней поверхности стерильной ёмкости и крышки!

 

Сбор мочи для установлений сексуально — трансмиссивных инфекций:
Для исследований используют утреннюю первую порцию мочи, не производя обмывание внешних половых органов, желательно не мочиться за 2 часа до сбора мочи. Можно использовать только одноразовую стерильную ёмкость (её можно получить у врача, в лаборатории или купить в аптеке). Ёмкость с мочой следует доставить в лабораторию в течении 2 часов. В случае длительного хранения — хранить в холодильнике при температуре + 2 — + 8 o C (ни в коем случае не в морозильнике). Образец доставить в лабораторию в течении 24 часов.

ИНСТРУКЦИИ ПЦР

ИНСТРУКЦИИ ПЦР

Инструкция-памятка по сбору мочи для исследования на наличие возбудителей  урогенитальных инфекций методом ПЦР:

  1. Утром перед сдачей мочи необходимо провести туалет наружных половых органов по направлению спереди назад слабым мыльным раствором без применения антисептиков.
  2. После гигиенических процедур начать мочеиспускание в чистую сухую емкость для мочи (в специальную стерильную емкость для сбора мочи без консервирующего раствора).
  3. Собирается первая порция мочи сразу после сна в количестве 10-50 мл. Мочу не охлаждать и не замораживать! Образец должен быть доставлен в лабораторию как можно быстрее.
  4. Анализ не назначается на дни менструации.
  5. Передать собранную мочу с заполненным направлением постовой медсестре (в лабораторию).
  6. Для контроля излеченности обследование рекомендуется проводить не ранее чем через 5-6 недель после окончания лечения.
  7. Мокроту необходимо собирать утром до приема пищи.
  8. Перед сбором мокроты необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.
  9. Недопустимо попадание в мокроту слюны и носовой слизи. Мокрота собирается в стерильный контейнер в количестве не менее 0,5 мл. Рекомендуется держать контейнер как можно ближе к губам и сразу же сплевывать в него мокроту по мере ее откашливания. Следует собирать только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании.
  10. Передать собранную в стерильный контейнер мокроту с заполненным направлением

 

Инструкция-памятка по сбору мокроты на наличие возбудителей  инфекций методом ПЦР:

постовой медсестре (в лабораторию).

 

Инструкция-памятка по сбору плевральной жидкости на наличие возбудителей  инфекций методом ПЦР:

  1. Взятие плевральной жидкости осуществляется врачом в условиях стационара (в условиях лаборатории эта процедура не выполняется), в стерильную пластиковую емкость в количестве 5 мл.
  2. Срок доставки материала в лабораторию при комнатной температуре в течение 6 часов, при

температуре 2-8°С — в течение 1 суток.

 

Инструкция-памятка по сбору Спинномозговой жидкости на наличие возбудителей  инфекций методом ПЦР:

  1. Взятие спинномозговой жидкости (ликвор) осуществляется врачом в условиях стационара (в условиях лаборатории эта процедура не выполняется) в стерильную одноразовую пробирку типа «Эппендорф» на 1,5 мл, в количестве 0,5-1мл.
  2. Срок доставки материала в лабораторию при комнатной температуре в течение 6 часов, при температуре 2-8°С — в течение 1 суток.

 

Инструкция-памятка по взятию материала из урогенитального тракта на наличие возбудителей  урогенитальных инфекций методом ПЦР:

  1. воздержаться от половых отношений в течение трех суток до исследования;
  2. накануне обследования исключить гигиенические процедуры с использованием антисептических средств, местное лечение;
  3. женщинам нужно проходить обследование перед менструацией или через 1-2 дня после ее окончания, не спринцеваться; прекратить введение любых вагинальных свечей.

В день исследования:

  1. провести туалет наружных половых органов по направлению спереди назад слабым мыльным раствором без применения антисептиков;
  2. перед взятием материала рекомендуется не мочиться в течение 2 часов.
  3. Целесообразно проходить  обследование в период обострения инфекции; по истечении не менее трех недель после незащищённого  полового контакта.
  4. Для контроля излеченности обследование рекомендуется проводить не ранее чем через 5-6 недель после окончания лечения.

 

 Инструкция-памятка по подготовке к лабораторному исследованию на наличие аллергических реакций на лекарственные препараты методами ртмл (реакция торможения миграции лейкоцитов) и лизиса лейкоцитов:

1. Необходима предварительная запись на исследование по телефону 351-16-68.
2. Кровь следует брать натощак (после примерно 12 ч голодания и воздержания от приема алкоголя и курения), сразу после пробуждения обследуемого (между 7-ю и 9-ю часами утра), при минимальной физической активности непосредственно перед взятием (в течение 20-30 мин.), в положении пациента лежа или сидя.
3. Кровь в кратчайший срок должна быть доставлена в лабораторию.

Сдать анализ мокроты в Киеве

При специфических симптомах врач может назначить анализ мокроты, что помогает точно определить диагноз заболевания и подобрать эффективную терапию. Во взятом образце могут содержаться различные вещества: слизь, клетки крови, серозная жидкость и даже гельминты с их яйцами. Чтобы результат исследований получился максимально точным, следует правильно подготовиться, собрать и вовремя сдать анализ.

В каких случаях может назначаться анализ мокроты

Отхаркивание – это тревожный симптом, требующий лабораторного исследования. Если вы или близкий вам человек страдает от постоянного мокрого кашля, рекомендуется сразу же обратиться к врачу и сдать анализ мокроты в Киеве. Только квалифицированный специалист сможет быстро найти причину недуга и назначить необходимое лечение. Чаще всего вызывают влажный кашель:

  • болезнь верхних и нижних дыхательных путей;
  • развитие гнойного воспаления в легких или бронхах;
  • внутреннее кровотечение, при котором нужна срочная госпитализация.

Анализ можно сдать не только по назначению лечащего врача. Это также доступно сделать и по собственному желанию, если вас беспокоят подозрительные симптомы.

Подготовка к забору анализа

Мокрота на общий анализ собирается в специальные одноразовые контейнеры. Их можно приобрести самому или сразу получить в клинике. Важно понимать, что для правильного забора материала необходима именно мокрота – без содержания слюны и слизи из носоглотки. Мокроту следует собирать утром натощак. В случае, когда возникают трудности с забором материала, пациенту назначают обильное теплое питье на ночь или за несколько часов до сбора. Также могут назначаться соответствующие ингаляции или отхаркивающие медикаменты.

Сдача анализов в медицинском центре «Медиан»

Сеть медицинских центров «Медиан» ценит своих пациентов. Мы стремимся сделать наши услуги максимально удобными для вас. Наши лаборанты произведут развернутый анализ образца, изучат его под микроскопом и проведут посев материала на питательную среду. Результаты будут готовы через несколько часов, их внесут в базу и отправят пациенту на почту. После можно обращаться за консультацией к врачу, так как только он способен оценить полученные сведенья и вынести верное заключение о заболевании. Результаты наших исследований точнейшие, если вы хотите сдать мокроту на анализ, стоимость на этот вид услуг будет неизменно минимальной.

Подготовка к лабораторному исследованию и сдаче анализов


В связи с высокой загруженностью телефонной линии, значительно увеличилось время ожидания ответа оператора.

Рейтинг статьи: 






3,97 (425)


Как правильно сдавать медицинские анализы (скачать памятку)

Максимально достоверный результат медицинского анализа зависит как от уровня лаборатории, так и от правильной подготовки перед сдачей анализа самих пациентов.

При наблюдении лабораторных показателей в динамике рекомендуется проводить исследование в одинаковых условиях – в одной лаборатории, сдавать материал на исследование в одно и то же время.


Основные факторы, влияющие на результат исследования


  • Прием пищи


    Накануне сдачи анализов необходимо воздержаться от пищевых перегрузок.


    Ряд исследований необходимо сдавать строго натощак, при этом между последним приемом пищи и взятием крови должно пройти не менее 10-12 часов. Сок, чай, кофе – тоже еда. Перед сдачей можно пить лишь негазированную воду.


    В случае, когда  специальной подготовки не требуется, сдавать биоматериал на исследование можно уже через 2-3 часа после последнего приема пищи.


  • Прием лекарственных препаратов


    Прием лекарств может исказить результаты анализов. Поэтому, если Вы принимаете лекарственные препараты, то обязательно предупредите об этом лечащего врача и процедурную медицинскую сестру.


  • Физиологические фазы


    Для ряда гормональных исследований важна фаза менструального цикла у женщин. Поэтому перед исследованием необходимо уточнить условия сдачи у врача.


  • Диагностические, лечебные, физиотерапевтические процедуры


    Могут временно искажать результаты некоторых исследований. Поэтому не следует сдавать анализы непосредственно сразу после проведения указанных процедур.


  • Время суток (циркадные ритмы)


    Суточные ритмы активности оказывают влияние на колебания многих гормональных и биохимических показателей. Референсные значения лабораторных значений рассчитаны для стандартных условий, при взятии крови в утренние часы.


  • Алкоголь


    Алкоголь искажает результаты некоторых показателей. Потому перед сдачей анализов необходимо воздержать от приема спиртных напитков в течение 1-2 суток.


  • Курение


    Курение вызывает множество острых и хронических изменений показателей крови.


    Для уменьшения влияния на показатели перед исследованием необходимо воздержаться от курения в течение 1-2 часов.


  • Физическое и эмоциональное напряжение


    Вызывают биохимические и гормональные изменения. Чтобы снизить негативное влияние этих факторов необходимо перед сдачей анализов отдохнуть в течение 15-20 минут.


Требования по подготовке к исследованиям мочи


Материал собирается самостоятельно на дому. Перед сбором  необходимо получить в любом процедурном кабинете лаборатории «Инструкцию по сбору» и контейнеры для транспортировки биоматериала (выдаются бесплатно).


Для получения объективных результатов анализов необходимо подготовится к исследованию: накануне воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя; не рекомендуется употреблять овощи и фрукты, которые могут изменить цвет мочи (свекла и пр.), не принимать диуретики. Нельзя собирать мочу во время менструации. После проведения цистоскопии анализ мочи можно проводить не ранее чем через 5-7 дней.


Правила сбора утренней порции мочи (инструкция)


Необходимо собрать первую утреннюю порцию мочи. Перед сбором мочи провести тщательный туалет наружных половых органов, промыв их под душем с мылом, чтобы в   мочу не попали выделения из них.

После подготовки необходимо собрать среднюю порцию мочи (исключить первую и последнюю порции) в стерильный стаканчик или заранее подготовленную чистую, сухую емкость.

Емкость закрыть крышкой.


Правила сбора суточной мочи (инструкция)


Мочу необходимо собрать в течении суток. Первая утренняя порция мочи исключается.

Все последующие порции мочи, выделенные в течение дня, ночи и утренняя порция следующего дня необходимо собрать в емкость, которая хранится в холодильнике (+2 — +8) в течение всего времени сбора.

По окончании сбора измерить объем выделенной за сутки мочи (диурез) с точностью до 5 мл. Обязательно перемешать.

Сразу же отлить в другую емкость небольшое количество (около 10 мл) мочи. Именно эту емкость доставить в лабораторию.


Правила сбора кала (инструкция)


Материал собирается самостоятельно на дому. Перед сбором  необходимо получить в любом процедурном кабинете лаборатории «Инструкцию по сбору» и контейнеры для транспортировки биоматериала (выдаются бесплатно).


За 7 дней до анализа прекратить приём слабительных, ваго- и симпатикотропных средств, каолина, сульфата бария, препараты висмута, железа, активированный уголь, ректальные свечи на жировой основе, ферменты и другие препараты, влияющие на процессы переваривания и всасывания. За два дня — исключить алкоголь, отменить прием препаратов, которые могут стать причиной желудочных и кишечных кровотечение (аспирин, индометацин, кортикостероиды, резерпин и пр.). Накануне исключить клизмы. После рентгенологического исследования желудка и кишечника проведение анализа показано не ранее, чем через двое суток. Исключить примесь мочи и отделяемого половых органов.

 

Особенности сбора ДЛЯ НЕКОТОРЫХ видов исследований.

Кал на дисбактериоз забрать до начала или через 2 недели после окончания антибактериальной терапии. При сдаче кала необходимо за 1-3 дня до взятия пробы находиться на диете, исключающей прием продуктов, усиливающих процесс брожения в кишечнике и молочно-кислые продукты, а также алкоголь и препараты, содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки.

Кал для пцр-исследований. Нельзя сдавать при воспалительных процессах кишечника, исключить в кале наличие слизи и крови. Прием лекарственных препаратов может ингибировать ПЦР.

Кал на копрограмму и скрытую кровь. При наличии в кале слизи и крови – эти участки являются наиболее ценными при проведении исследования.

 

Кал принимается исключительно в универсальном стерильном контейнере, ранее полученном в процедурном кабинете лаборатории или приобретенном в аптеке.

 

Кал собрать путем естественной дефекации в чистую сухую посуду (горшок, судно). Нельзя собирать кал из унитаза. Следует избегать примеси к калу мочи и отделяемого половых органов.

 

Кал забрать ложечкой – шпателем преимущественно из средней порции в стерильный контейнер с герметичной крышкой в количестве 1-3 г (1 чайная ложка).


Правила сбора грудного молока (инструкция)


Материал собирается самостоятельно на дому. Перед сбором  необходимо получить в любом процедурном кабинете лаборатории «Инструкцию по сбору» и контейнеры для транспортировки биоматериала (выдаются бесплатно).

Перед сцеживанием молока тщательно помыть руки и молочные железы с мылом, обработать соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).

Сцедить первые 5-10 мл в отдельную посуду т.к. эта порция молока не пригодна для исследования, последующие 4-5 мл сцедить в стерильный контейнер, старайтесь при этом не касаться краев контейнера телом.

Молоко из каждой железы собирать в отдельный контейнер.

На контейнере указать дату и время сбора биоматериала, обозначить «правая молочная железа» или «левая молочная железа».


Правила сбора спермы (инструкция)


Материал собирается самостоятельно на дому. Перед сбором  необходимо получить в любом процедурном кабинете лаборатории «Инструкцию по сбору» и контейнеры для транспортировки биоматериала (выдаются бесплатно).

Перед сбором материала тщательно вымыть руки с мылом, а затем провести туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушить стерильной салфеткой.

Подготовить контейнер, крышку контейнера снять, не дотрагиваясь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.

Материал получить путем мастурбации и собрать в стерильный контейнер. Запрещено использовать презерватив для сбора спермы (вещества, используемые при производстве презервативов, могут повлиять на результат).


Правила сбора слезы (инструкция)

Для сбора биоматериала можно получить стерильную микропробирку в любом процедурном кабинете нашей лаборатории.
Для сбора слезного отделяемого провоцируется слезоотделение (понюхать разрезанную луковицу).
Слезу отобрать стерильным шприцом без иглы из уголка глаза. Минимальное количество – 0,5 мл.


Правила сбора мокроты (инструкция)


Исследованию подлежит утренняя мокрота, выделяющаяся во время приступа кашля.

Перед откашливанием необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости.

Необходимо следить за тем, чтобы в контейнер не попала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке)!

При плохом отделении мокроты, накануне исследования применить отхаркивающее средство.

Выделившуюся мокроту собрать в стерильный контейнер.


Требования по подготовке к исследованиям крови

Используя сайт www.gemohelp.ru, вы соглашаетесь с использованием файлов cookie

Контрольная работа на тему «Лабораторные методы исследования»

Вариант 1

Задание № 1. Дополните предложение

  1. Если пациент, собирающий мокроту на общий анализ, страдает кровоточивостью десен , он не должен __________________________________________.

  2. К банке с мокротой прикрепляют направление с указанием отделения и палаты, название лаборатории, Ф.И.О. пациента _________________, дата и подпись медицинской сестры.

  3. Полученные из лаборатории результаты исследования мокроты медицинская сестра подклеивает в __________________________________________.

  4. Для исследования мокроты на чувствительность к антибиотикам посуду следует взять из ____________________ лаборатории.

  5. Для исследование мокроты на ВК она доставляется в ________________________________ лабораторию.

  6. Для общего клинического анализа пациент должен собрать _________мл. утренней мочи.

  7. На посуду с помощью аптечной резинки крепится направление с указанием фамилии, имени, отчества пациента, номера палаты и отделения, ___________, даты и подписи медсестры.

  8. Моча доставляется в лабораторию не позднее, чем через ___________ после сбора.

  9. По методу Зимницкого собирают мочу в течение ________.

  10. Для исследования по Нечипоренко достаточно _________ мл мочи.

  11. Мочу по Нечипоренко доставляют в ______________ лабораторию.

Задание № 2 Решите тест

1.Исследование кала для определения переваривающей способности различных отделов пищеварительного тракта носит название _____________.

2.Исследование кала, выявляющее наличие малых кровотечений из желудочно-кишечного тракта, носит название ___________________.

3. Лабораторная посуда для сбора кала на простейшие:

а) стерильная широкогорлая банка с крышкой

б) лоток

в) спичечная коробка

г) чистая сухая банка с крышкой

4.Для исследования кала на скрытую кровь пациента готовят:

а) один день

б) два дня

в) три дня

г) пять дней

5.При заборе кала на скрытую кровь из рациона пациента исключают все перечисленные продукты, за одним исключением:

а) яичные блюда

б) молочные продукты

в) мясо, рыба

г) гречневая каша

6. Лаборатория, исследующая кал на яйца гельминтов:

а) биохимическая

б) бактериологическая

в) клиническая

г) цитологическая

Задание № 3 Решите ситуационные задачи

Задача 1. У пациента вязкая, плохо отхаркивающаяся мокрота, в связи, с чем он не может собрать ее на исследование. Участковая медсестра порекомендовала пациенту для лучшего отхождения мокроты прием щелочи (щепотку гидрокарбоната натрия на 1 стакан теплого молока, пить небольшими глотками с интервалом 5-10 минут), настой термопсиса или девясила, горчичники и банки, самомассаж грудной клетки. Согласны ли Вы с действиями медсестры? Почему?

Задача 2. Собирая мокроту для общего анализа, пациент заметил примесь крови и сообщил об этом медсестре. Тактика медсестры?

Задача 3. Медсестра проинструктировала пациента о порядке сбора мокроты на общий анализ следующим образом: утром до еды после чистки зубов собирается 30-50 мл мокроты и банка оставляется в специальном ящике на полу в санитарной комнате. Какая допущена ошибка?

Задача 4. Медсестра, доставляя в баклабораторию собранную мокроту, обнаружила, что две банки не имеют крышек. Тактика медсестры.

Задача 5. Пациенту назначено исследование мочи по Зимницкому. Медсестра разбудила пациента в 7 часов утра, и он помочился в первый флакон (6.00-9.00). В чем ошибка?

Задача 6. Пациент, собрав мочу для анализа, увидел, что моча необычного цвета (красно-бурого). Разволновался, спрашивает у медсестры, почему у него такая моча? Как должна поступить медсестра?

Задача 7. Для исследования мочи на сахар пациент в 8 часов утра помочился в 3-х литровую банку, в которую потом сутки собирал остальную мочу. О чём медсестра забыла предупредить пациента?

Задача 8. Пациенту назначено исследование кала на копрологическое исследование. Родственники принесли передачу — 1 кг яблок, свежие булочки. Тактика медсестры?

Вариант 2

Задание № 1. Дополните предложение

  1. Для определения суточного количества мокроты пациенту следует выделить _____________________.

  2. Если мокроты мало и пациент ее собирает в течение 3- х суток, мокроту необходимо хранить в ___________________ месте.

  3. Патологический секрет, выделяющийся из дыхательных путей при кашле и отхаркивании, называется __________________________.

  4. У здорового человека мокрота _______________________________.

  5. Для исследование мокроты достаточно собрать ______________ мл.

  6. Суточный диурез должен составлять не менее ____________ от всей потребляемой за _______________________.

  7. Для исследования мочи на диастазу собирают в ___________ посуду, желательно «__________ порцию» мочи.

  8. Для исследования на сахар мочу собирают в течение _____________.

  9. При исследовании функции почек по Зимницкому пациент, оставаясь на обычной диете, собирает мочу отдельными порциями через каждые _________ часа в течение ___________.

  10. На этикетке каждого флакона указывается фамилия, имя, отчество пациента, отделение, ___________, промежуток времени, за который собрана моча. Например, на третьем флаконе указывается время с __________ до ___________ час.

  11. Соотношение между потребляемой за сутки жидкостью и _______________ носит название _____________________.

Задание № 2 Решите тест

1. Для сохранения кала в течение 10-12 часов его необходимо поместить в _____________ место.

2.Можно ли взять кал для копрологичесого исследования, если накануне пациенту было проведено рентгенологическое исследование желудка с бариевой взвесью:

а) да

б) нет

3.При взятии кала для копрологичесого исследования диета назначается на ________ дней.

4.Кал на простейшие направляют в лабораторию:

а) в течение часа

б) теплым

в) не позднее 24-х часов

г) в пределах 10-12 ч.

5.Кал на яйца гельминтов необходимо взять:

а) из одного места

б) из 2-х мест

в) из 3-х

г) всю порцию кала без примеси воды и мочи

6.Кал на копрологическое исследование нельзя направлять в лабораторию во всех перечисленных случаях, кроме одного:

а) после клизм и слабительных

б) если кал содержит патологические примеси (гной, слизь, кровь)

в) после приема препаратов железа

г) после рентгенологического исследования желудка с бариевой взвесью

Задание № 3 Решите ситуационные задачи

Задача 1. Молодая женщина собрала мокроту для общего анализа. На следующий день из лаборатории был получен ответ, что собранный материал для исследования непригоден, так как в ней преобладают слона и слизь из носоглотки. Научите пациентку правильно собирать мокроту.

Задача 2. Пациенту назначено исследование мокроты на общий анализ. Медсестра выдала пациенту чистую карманную плевательницу темного стекла и объяснила, что он должен собрать мокроту утром до еды, предварительно вычистив зубы и тщательно прополоскав рот. Согласны ли Вы с действиями медсестры?

Задача 3. В направлении, приложенном к банке с мокротой, указана фамилия, имя, отчество, отделение, палата и дата. Все ли необходимые сведения указаны?

Задача 4. Больной отказался собирать мокроту для исследования на БК, мотивируя отказ тем, что её выделяется слишком мало. Тактика медсестры?

Задача 5. Пациенту назначено исследование мочи по Нечипоренко. Медсестра объяснила пациенту, что он должен утром собрать «среднюю порцию» струи мочи в чистую пробирку и отнести в лабораторию. Согласны ли Вы с действиями медсестры?

Задача 6. Пациентка принесла суточную мочу для исследования на сахар, при этом накануне утром мочевой пузырь не опорожнила. Как поступить?

Задача 7. У пациента, страдающего сахарным диабетом, несмотря на высокое содержание сахара в крови, сахар в моче практически не обнаруживается. В беседе с медсестрой врач выяснил, что при сборе мочи медсестра допускала одну и ту же ошибку. Какую ошибку допустила медсестра?

Задача 8. Пациенту назначено копрологическое исследование кала. Вечером того же дня медсестра предупредила пациента и объяснила как правильно собрать кал. Что упущено медсестрой?

Эталон ответа

Вариант 1

Задание 1

  1. Если пациент, собирающий мокроту на общий анализ, страдает кровоточивостью десен, он не должен чистить зубы.

  2. К банке с мокротой прикрепляют направление с указанием отделения и палаты, название лаборатории, Ф.И.О. пациента, название исследования, дата и подпись медицинской сестры.

  3. Полученные из лаборатории результаты исследования мокроты медицинская сестра подклеивает в карту стационарного пациента.

  4. Для исследования мокроты на чувствительность к антибиотикам посуду следует взять из бактериологической лаборатории.

  5. Для исследования мокроты на ВК она доставляется в клиническую лабораторию.

  6. Для общего клинического анализа пациент должен собрать 100 – 150 мл утренней мочи.

  7. На посуду с помощью аптечной резинки крепится направление с указанием фамилии, имени, отчества пациента, номера палаты и отделения, цель исследования, даты и подписи медсестры.

  8. Моча доставляется в лабораторию не позднее, чем через два часа после сбора.

  9. По методу Зимницкого собирают мочу в течение суток.

  10. Для исследования по Нечипоренко достаточно 50 мл мочи.

  11. Мочу по Нечипоренко доставляют в клиническую лабораторию.

Задание 2

1 — копрологическое

2 — на скрытую кровь

3 — г

4 — в

5 — б

6 — в

Задание 3

1. Постановку горчичников и банок, самомассаж грудной клетки медсестра может рекомендовать только по назначению врача, так как имеются противопоказания.

2. Медсестра должна успокоить пациента и сообщить о кровохарканье врачу.

3. Необходимо поинтересоваться, не кровоточат ли десны у пациента. В этом случае зубы чистить не следует, только тщательно прополоскать рот раствором соды. достаточно 3-5 мл.

4. Исследование следует повторить.

5.Медсестра должна была разбудить пациента в 6 часов утра и предложить помочиться в унитаз.

6. Следует успокоить пациента, объяснив, что изменение цвета мочи может быть вызвано приемом амидопирина, употреблением в пищу свеклы и др., после чего поставить в известность врача.

7. В 8 часов утра следовало опорожнить мочевой пузырь в унитаз.

8. Только молоко с булочкой.

Вариант 2

Задание 1

  1. Для определения суточного количества мокроты пациенту следует выделить чистую, сухую градуированную плевательницу.

  2. Если мокроты мало и пациент ее собирает в течение 3- х суток, мокроту необходимо хранить в прохладном месте.

  3. Патологический секрет, выделяющийся из дыхательных путей при кашле и отхаркивании, называется мокрота.

  4. У здорового человека мокрота не выделяется.

  5. Для исследования мокроты достаточно собрать 3 — 5 мл.

  6. Суточный диурез должен составлять не менее 70 – 80 % от всей потребляемой за сутки жидкости.

  7. Для исследования мочи на диастазу собирают в чистую и сухую посуду, желательно «среднюю порцию» мочи.

  8. Для исследования на сахар мочу собирают в течение суток.

  9. При исследовании функции почек по Зимницкому пациент, оставаясь на обычной диете, собирает мочу отдельными порциями через каждые три часа в течение суток.

  10. На этикетке каждого флакона указывается фамилия, имя, отчество пациента, отделение, номер порции, промежуток времени, за который собрана моча. Например, на третьем флаконе указывается время с 12 до 15 час.

  11. Соотношение между потребляемой за сутки жидкостью и суточным диурезом носит название водного баланса.

Задание 2

1 — прохладное место

2 — б

3 — 3,4 дня

4 — б

5 — г

6 — нет правильного ответа

Задание № 3

1. До еды следует почистить зубы, тщательно прополоскать рот, сделать несколько глубоких вдохов и откашлять 3-5 мл мокроты в банку.

2.Следует использовать посуду светлого стекла.

3.Отсутствует указание на характер лаборатории, цель исследования, подпись медсестры.

4. Допустимо собирать в течение 3-х дней, сохраняя на средней полке дверцы холодильника.

5. Медсестра не предупредила пациента о необходимости тщательного подмывания перед взятием мочи на исследование: собранный биологический материал в лабораторию должна доставлять медсестра (или младший медперсонал).

6. Исследование необходимо повторить.

7. Возможно, медсестра не размешивала мочу перед тем, как отлить часть ее на исследование

8.Пациента следует готовить в течение 3х дней.

Муковисцидоз (CF) Респираторный анализ: мокрота (для родителей)

Что это такое

Дети с муковисцидозом (МВ) часто болеют респираторными инфекциями, иногда вызванными бактериями или грибками. Скрининг или посев мокроты (слизи) из дыхательных путей при МВ помогает врачам обнаруживать и идентифицировать эти бактерии или грибки, чтобы они могли назначить наиболее эффективные антибиотики для борьбы с конкретной инфекцией.

Почему это сделано

Посев мокроты может помочь выявить конкретные причины инфекций легких и дыхательных путей.Такие инфекции могут привести к кашлю с выделением желтой, зеленоватой или кровянистой мокроты, а также к лихорадке и затрудненному дыханию.

Препарат

Перед обследованием обязательно сообщите врачу, принимал ли ваш ребенок в последнее время антибиотики. Лучшее время для тестирования обычно утром, прежде чем ваш ребенок что-нибудь поел или выпил. Кроме того, убедитесь, что ваш ребенок не использует жидкость для полоскания рта перед тестом, поскольку она может содержать антибактериальные ингредиенты, которые могут повлиять на результаты.

п.

Процедура

Вашему ребенку будет предложено прополоскать рот водой, затем глубоко вдохнуть и глубоко кашлять для выделения мокроты из дыхательных путей.

Вам или медицинскому работнику, помогающему вашему ребенку, возможно, потребуется осторожно постучать по груди ребенка, чтобы разжижить мокроту в легких. Если ваш ребенок не может собрать образец, лаборанту может потребоваться использовать депрессор для языка, чтобы стимулировать кашель, или вашему ребенку может потребоваться вдохнуть раствор тумана, чтобы вызвать кашель.

Если вашему ребенку назначена бронхоскопия (тест, проводимый с помощью небольшого телескопа для оценки верхних дыхательных путей и бронхов), скорее всего, в это время будет проведен анализ мокроты.

стр. 2

Чего ожидать

Ваш ребенок может чувствовать легкий дискомфорт при глубоком вдохе или кашле. Если ваш ребенок вдохнет раствор тумана, позыв к кашлю может быть сильным. Для выделения количества мокроты, необходимого для анализа, может потребоваться несколько попыток кашля.

Получение результатов

Образец мокроты собирается в стерильный контейнер и отправляется в лабораторию. Затем образец помещается на специальную пластину, которая способствует росту определенных бактерий и грибков при наличии инфекции.

Если у вашего ребенка бактериальная инфекция, для роста организмов может потребоваться 48 часов. Грибкам нужна неделя или дольше. Эти организмы можно будет увидеть под микроскопом или с помощью химических тестов. Если анализы выявляют инфекцию, может потребоваться еще 1-2 дня, чтобы выбрать лучший антибиотик для ее лечения.

Риски

Кашель для получения образца мокроты может вызывать легкий дискомфорт, но эта процедура не связана с риском.

Помощь вашему ребенку

Объяснение теста языком, понятным вашему ребенку, может помочь развеять любой страх. Также убедите ребенка, что процедура не повредит.

Если у вас есть вопросы

Если у вас есть вопросы по поводу респираторного анализа мокроты, поговорите со своим врачом.

Время между сбором и хранением существенно влияет на состав бактериальных последовательностей в образцах мокроты при муковисцидозе респираторных инфекций болезни (см., д.г., ссылки с 1 по 4). Эти анализы показали, что микробные сообщества в легких при МВ являются более сложными и разнообразными, чем считалось ранее. Важно отметить, что они также обнаружили множество видов бактерий, о которых нельзя было бы сообщить с помощью стандартных методов диагностической микробиологии (см., Например, ссылки 5 и 6), а также выявили взаимосвязь между характеристиками микробиоты и возрастом хозяина, функцией легких и прогрессированием заболевания (7 –9). В большинстве случаев в этих исследованиях использовалась спонтанно отхаркиваемая мокрота как средство отбора бактериальных сообществ в нижних дыхательных путях.Предпочтение отдается мокроте из-за простоты ее сбора и того факта, что при микробиологических исследованиях на основе посевов взрослых пациентов образцы мокроты традиционно использовались в качестве основы для микробиологического анализа. Несмотря на то, что существуют руководящие принципы работы с респираторными образцами для диагностической микробиологии на основе посевов (10), нет единого мнения о том, как следует обращаться с такими образцами, чтобы гарантировать, что независимые от посева анализы дают результаты, отражающие микробы в них. В связи с растущим движением к включению методов, не зависящих от культуры, в диагностическую микробиологию (11) становится все более важным выявить и минимизировать области потенциальной систематической ошибки.

Транспортировка и хранение образцов после сбора представляют собой периоды, в течение которых могут происходить изменения в бактериальных сообществах клинических образцов, приводящие к аналитической систематической ошибке, например, из-за пролиферации бактерий, гибели клеток или деградации нуклеиновых кислот. Чтобы свести к минимуму эти ошибки, образцы мокроты, собранные для независимого от посева анализов, обычно хранят при -80 ° C. Однако во многих клинических центрах, включая те, которые лечат пациентов с муковисцидозом (CF), нет доступа к морозильникам со сверхнизкой температурой, стандартным признанным средствам поддержания целостности образцов и биобанков.В результате образцы мокроты могут оставаться при комнатной температуре в течение длительных периодов времени, что влияет как на традиционные, так и независимые от посевов анализы.

В предыдущем исследовании использовалось пиросеквенирование гена 16S рРНК для одного образца для оценки влияния длительных периодов инкубации при комнатной температуре на профили бактериального сообщества, но не было обнаружено значительного расхождения в составе сообществ за период исследования (12). Напротив, в более раннем исследовании с использованием рибосомных транскриптов для изучения области V3 гена 16S рРНК с помощью количественной ПЦР и денатурирующего градиентного гель-электрофореза (DGGE) наблюдались значительные расхождения в количественном анализе бактерий и профилировании сообщества (13).Подходы на основе РНК имеют то преимущество, что анализ ограничивается активными клетками. Однако связанное с этим исключение нежизнеспособных клеток и внеклеточной ДНК может быть достигнуто в анализе на основе ДНК путем обработки образцов моноазидом пропидия (PMA), как мы продемонстрировали в предыдущих анализах мокроты CF (14–16).

Мы предположили, что период времени между сбором образцов и стабилизацией замораживанием в значительной степени связан с результирующим составом бактериального сообщества, как определено пиросеквенированием гена 16S рРНК в сочетании с обработкой ФМА.Исходя из этого, нашей общей целью было определить подходящее окно времени от сбора образцов до хранения при -80 ° C, что позволило бы провести надежный микробиологический анализ образцов мокроты, не зависящий от культуры.

ОБСУЖДЕНИЕ

Обработка и хранение респираторных образцов может существенно повлиять на результаты микробиологических анализов. Целью настоящего исследования было определение приемлемого периода времени между сбором образца мокроты и хранением до использования секвенирования следующего поколения для характеристики микробиоты нижних дыхательных путей при МВ.Предыдущие исследования, основанные на диагностической бактериальной культуре, предполагают, что от сбора образца до замораживания или обработки может пройти 48 часов, и при этом можно получить сопоставимые результаты (10). Однако по мере того, как все чаще используются независимые от посевов подходы к диагностической микробиологии (11), жизненно важно выявлять и смягчать все потенциальные систематические ошибки, относящиеся к этим более чувствительным, независимым от посевов методикам. Температуру для различных интервалов перед замораживанием оценивали в образцах от каждого пациента.Мы обнаружили, что разнообразие сильно варьировалось среди пациентов при t = 0 (рис. 1) и внутри пациентов в течение времени хранения после сбора (см. Рис. S1 в дополнительном материале). Эта изменчивость может быть объяснена различиями в доминировании внутри выборочных сообществ. Было обнаружено, что в свежесобранных ( t = 0) пробах с низким видовым разнообразием в значительной степени преобладают признанные патогены МВ; и наоборот, в образцах с более разнообразным сообществом не преобладали определенные виды бактерий.Более того, сообщества, в которых преобладает меньшее количество видов, меняются меньше с увеличением времени пребывания при комнатной температуре, чем сообщества с более высоким разнообразием. Учитывая различия в разнообразии между образцами пациентов и внутри них, обычно используемые меры разнообразия, например, видовое богатство, индекс разнообразия Шеннона-Винера и индекс разнообразия Симпсона, не подходили в качестве показателей изменения бактериальных сообществ во время хранения. По индексу сходства Кертиса мы оценили, как состав сообщества изменился по сравнению с исходной ( t = 0) выборкой.Поскольку предыдущие исследования показали, что бактериальные сообщества в легких с МВ не распределены однородно (30), это может привести к вариациям в разных частях одного образца (12). Чтобы учесть дисперсию внутри образца, восемь образцов мокроты CF секвенировали в трех повторностях, используя разные аликвоты образцов для каждой повторности, и рассчитывали сходство между повторностями. Затем мы проанализировали все образцы для всех субъектов и обнаружили, что самый короткий период хранения образцов, в течение которого наблюдалось изменение сходства, сверх ожидаемого для вариаций внутри образца, составлял 1 час после сбора мокроты (рис.2). Кроме того, там, где в сообществе преобладали несколько или один вид, различия в сходстве сообществ были значительно ниже, чем в более разнообразных сообществах. Однако, поскольку сложно угадать микробное разнообразие в образце мокроты априори , наши результаты предполагают, что образцы мокроты следует заморозить в течение 1 часа после сбора, чтобы получить наилучшее возможное представление об истинном сообществе, когда культура не зависит от культуры. Предыдущие исследования продемонстрировали ценность разделения бактериальных сообществ при респираторных инфекциях на группы распространенных и редких видов (9).Категоризация составляющих видов дает полезную информацию о сообществах, которыми можно было бы пренебречь без такого различия (3, 9). Когда в текущем исследовании образцы были разделены на обычные и редкие виды, более высокий уровень стабильности сообщества с разницей в хранении был связан с видами, определенными как общие, чем с видами, определенными как редкие, что позволяет предположить, что характеристика последней группы будет больше всего зависеть от задержка замораживания образца. Этот эффект объясняет большее изменение сходства, наблюдаемое в более разнообразных сообществах, в которых присутствует широкий спектр редких видов в сообществе (рис.2). Мы предположили, что продолжительное воздействие атмосферного кислорода приведет к снижению относительной численности жизнеспособных, строго анаэробных видов в образцах мокроты. Несмотря на высокую вариабельность относительной численности анаэробов между образцами, была обнаружена статистически значимая полиномиальная зависимость второго порядка между продолжительностью хранения при комнатной температуре и численностью анаэробов, при этом последняя снижалась до 48 ч, а затем увеличивалась (рис. 4).Возможное объяснение этой взаимосвязи — снижение напряжения кислорода в результате роста аэробных и аэротолерантных видов в герметичных контейнерах Bijou. Кроме того, было обнаружено, что снижение численности анаэробов, которое представляет собой серьезный сдвиг в сообществе, значительно отличается от такового для t = 0 образцов через 12 часов (рис. 4). Этот эффект может потенциально привести к недооценке или переоценке значения анаэробных видов в развитии болезни, в зависимости от периода, прошедшего между хранением и замораживанием.

Образцы мокроты — один из наиболее широко используемых способов отбора проб инфекций нижних дыхательных путей. В настоящее время исследователи переходят к внедрению методов, не зависящих от посева, для анализа микробной детерминанты этих состояний и принятия осознанного выбора лечения. В текущем исследовании мы обнаружили, что оптимальное окно для хранения образцов при комнатной температуре перед замораживанием при -80 ° C — в пределах 1 часа после сбора. На практике может оказаться невозможным хранить образец в течение 1 часа после сбора.В этом случае наши результаты указывают на приемлемое окно продолжительностью до 12 часов без значительных расхождений в составе сообщества. Хотя эта работа была сосредоточена на инфекциях дыхательных путей при МВ, эти результаты важны для анализа микробиоты из образцов пациентов с другими респираторными заболеваниями.

Устройство для предварительной обработки закрытого типа для анализа мокроты в месте оказания медицинской помощи

Изготовление и эксплуатация устройства

Устройство для предварительной обработки закрытого типа было разработано с использованием программного обеспечения для автоматизированного проектирования.Коллектор образцов, камера для химических реагентов и части этого устройства для механического растворения были изготовлены с помощью 3D-печати с использованием поликарбоната в качестве прозрачного материала, а вращающиеся части двигателя, включая магнит, были изготовлены методом резки с использованием ацеталя. Для вращения лопасти был установлен небольшой круглый магнит. Использовались небольшой двигатель на 9 В и батарея на 9 В. Образец помещается в сборник образцов устройства, крышка закрывается, и двигатель включается и включается нажатием переключателя.

Сбор образцов мокроты

Мокрота, использованная в эксперименте, была собрана у здоровых людей старше 18 лет, которые не были инфицированы патогенами и не проявляли никаких аномальных симптомов. Мы полностью объяснили это исследование участникам, получили их информированное согласие на участие в исследовании и собрали мокроту. Собранные образцы мокроты использовались анонимно. Мы провели эксперименты по сбору и предварительной обработке мокроты в соответствии с рекомендациями Медицинского центра Самсунг после получения одобрения протокола эксперимента от Институционального наблюдательного совета Медицинского центра Самсунг.Мокроту собирали в коническую пробирку на 50 мл (Falcon, Thermo Fisher Scientific, Северная Каролина, США) и хранили при -80 ° C до использования. Образцы мокроты аналогичного объема и состояния были выбраны для следующих экспериментов.

Разжижение мокроты

Стандартный метод разжижения мокроты следующий. Образец мокроты равномерно смешивают с равным объемом 0,1% дитиотреитола (DTT) с помощью вихревой мешалки в течение 30 с и инкубируют при комнатной температуре в течение 15 мин. 11 . В настоящем исследовании образец мокроты и 0.1% раствор DTT перемешивали и встряхивали в течение 30 с без инкубации в течение 15 мин. Эффективность разжижения мокроты с помощью устройства предварительной обработки закрытого типа исследовали путем сравнения со стандартным методом. Дистиллированную воду (1 мл), содержащую 0,1% дитиотреитола (DTT, Sigma Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США), добавляли в камеру для химических реагентов, которая отделена от сборщика мокроты резиновой мембраной. Образец мокроты помещали в сборник мокроты, крышку закрывали и нажимали переключатель для вращения лезвия в течение 30 с.DTT позволяет разжижать белок мокроты 21,22 . Для сравнения степени разжижения мокроты образцы помещали в пробирки на 15 мл и фотографировали с помощью обычной камеры. Из каждого образца было взято 100 мкл для помещения в лунку 96-луночного планшета. Эти образцы наблюдались под микроскопом. Вязкость разжиженной мокроты измеряли с использованием парадигмы Mems & New для управления потоком (Rheosense, Inc., Сан-Рамон, Калифорния, США) (в среднем n = 3-4 независимых эксперимента на группу).После каждого измерения образца устройство очищалось более 2 раз в режиме промывки для предотвращения загрязнения образца. Данные анализировали с помощью программы Micro-ViSC. Оптическую плотность каждого образца измеряли при 600 нм с использованием кинетического биоспектрометра Eppendorf (Eppendorf, Гамбург, Германия) ( n = 5–6 независимых экспериментов на группу). Если значение было выше максимального значения 3, которое может отображаться на машине из-за высокой абсорбции, оно записывалось как 3.

Жизнеспособность клеток

Исследовали эффект механического растворения с использованием устройства для предварительной обработки.Клетки PC 12, клеточная линия, полученная из феохромоцитомы мозгового вещества надпочечников крысы (Медицинский центр Samsung, Сеул, Корея), были диспергированы в 1 мл фосфатно-солевого буфера (PBS, pH 7,4) до 2,5 × 10 5 / мл и 1 мл 0,1% раствора DTT и обрабатывают таким же образом, как и для разжижения мокроты, описанного выше. Время разжижения было установлено 30, 60 и 120 с. Затем аликвоту по 100 мкл каждого предварительно обработанного образца помещали в одну лунку 96-луночного планшета, в которую добавляли 100 мкл среды RPMI 1640 (GIBCO, Waltham, MA, USA).Добавляли реагент CellTiter 96 AQueous One Solution Cell Proliferation Assay (20 мкл) (MTS, Promega Corporation, США) и измеряли оптическую плотность при 490 нм после 3 ч инкубации. Жизнеспособность клеток рассчитывали с использованием необработанных клеток в качестве контроля.

Экстракция геномной ДНК

В образец мокроты добавляли 20 мкл 5 × 10 6 клеток PC 12 / мл примерно в 1 мл образца мокроты, и сравнивали количество экстрагированной ДНК. Один миллилитр лизисного буфера (буфер 1, MagListo Kit, Bioneer, Daejeon, Korea) был предварительно загружен в камеру для химических реагентов.После добавления образца мокроты с добавлением клеток крышку закрывали, и устройству давали поработать в течение 30 с. Для сравнения к образцу мокроты добавляли 1 мл буфера для лизиса и перемешивали вихревым смесителем в течение 30 с. После растворения ДНК экстрагировали согласно протоколу MagListo Kit (Bioneer). Конечный объем буфера для элюции составлял 50 мкл. Количество экстрагированной ДНК измеряли с помощью Nano drop (ND-2000, Thermo Scientific, Waltham, MA, USA).

Эксперименты по выделению

ДНК были выполнены с использованием M.fortuitum (Медицинский центр Самсунг), нетуберкулезная микобактерия. До 500 мкл M . К суспензии fortuitum (OD600 = 0,185) добавляли 500 мкл лизирующего буфера (Qiagen, Hilden, Германия) с последующим перемешиванием в устройстве для предварительной обработки в течение 30, 60 или 120 с. Вихревое перемешивание также проводили в течение 30, 60 или 120 с. За исключением условий лизиса, геномную ДНК экстрагировали с использованием набора DNeasy Blood & Tissue (Qiagen) в соответствии с протоколом набора, а затем элюировали 200 мкл элюирующего буфера набора.

Количественная ПЦР

Количественная ПЦР (кПЦР) была проведена для сравнения количеств ДНК, экстрагированных из M . fortuitum . Прямой и обратный праймеры, используемые для кПЦР, были синтезированы как 5′-TCACCTGATCTGCACATAATGT-3 ‘и 5′-AGCACCTCATGCGACTT-3’ соответственно (Bioneer, Корея) 23 . В стерилизованные пробирки для ПЦР добавляли 10 мкл геномной ДНК, экстрагированной из M . fortuitum стандартным методом и устройством для предварительной обработки, как указано выше, праймеры (конечная концентрация, 0.5 мкМ) и мастер-смесь SYBR Green Realtime PCR Master Mix (общий реакционный объем 20 мкл) (QPK-201, Toyobo, Япония). ПЦР в реальном времени выполняли с использованием системы ПЦР в реальном времени QuantStudio 6 Flex (Life Technologies, Карлсбад, Калифорния, США) в сочетании с программным обеспечением для ПЦР в реальном времени QuantStudio v1.1. Условия амплификации ПЦР были следующими: этап предварительной денатурации 95 ° C в течение 1 мин, этап денатурации 15 с при 95 ° C и 40-этапное удлинение при 60 ° C в течение 40 с. Амплифицированные продукты ПЦР идентифицировали электрофорезом с использованием 2% агарозного геля.

что нужно знать медсестре

Ребекка Мятт Медсестра, ведущая дела (торакальная хирургия), Госпиталь Гая, Фонд здравоохранения Гая и Св. Томаса, Лондон, Англия

Обоснование и ключевые моменты

Мокрота — это термин, используемый для описания отхаркиваемой слизи.Он состоит из секретов и других веществ, отхаркиваемых из легких и крупных дыхательных путей. Эта статья информирует медсестер о том, как и почему проводится сбор и анализ мокроты.

Мокрота всегда считается ненормальной, потому что здоровые люди проглатывают бронхиальный секрет.

Анализ мокроты важен, потому что он позволяет диагностировать такие состояния, как пневмония, туберкулез, абсцесс легкого и рак легких.

Медсестра должна записать цвет, количество и консистенцию собранной мокроты.Им следует незамедлительно отправить образец в лабораторию для анализа, чтобы получить точные результаты.

Стандарт сестринского дела .
31, 27, 40-43.
DOI: 10.7748 / ns.2017.e10228

Переписка

Ребекка[email protected]

Экспертная оценка

Эта статья прошла внешнюю двойную слепую рецензию и проверена на плагиат с помощью автоматизированного программного обеспечения.

Конфликт интересов

Не задекларировано

Поступила: 19.07.2015

Принято к печати: 11 мая 2016 г.

Хотите узнать больше?

Уже подписаны? Войти

ИЛИ

Разблокируйте полный доступ к RCNi Plus сегодня

Сэкономьте более 50% в первые 3 месяца

В ваш пакет подписки входит:

  • Неограниченный онлайн-доступ ко всем 10 журналам RCNi и их архивам
  • Настраиваемая панель управления с более чем 200 темами
  • RCNi Learning, включающий 180+ учебных модулей, аккредитованных RCN
  • Портфель RCNi для сбора доказательств для повторной валидации
  • Персонализированные информационные бюллетени с учетом ваших интересов

Подписаться

Студент RCN? Студент стандартного медсестринского дела

Кроме того, вы можете приобрести доступ к этой статье на следующие семь дней.Купить сейчас

или

Мокрота — обзор | Темы ScienceDirect

Индуцированная мокрота

Выделение мокроты является частой жалобой у пациентов с воспалительными заболеваниями дыхательных путей, такими как астма, муковисцидоз и хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ). Клинически сбор мокроты для оценки легочных инфекций широко используется. Обычное использование мокроты для анализа воспалительных маркеров ограничено из-за разнообразия методов сбора и обработки образцов.Индукция мокроты осуществляется путем распыления нормального или гипертонического раствора. Пациентов обычно лечат бета-агонистами короткого действия перед индукцией мокроты, чтобы снизить вероятность бронхоспазма. Также рекомендуется мониторинг легочных функций во время отведения мокроты с помощью периодической спирометрии или измерения пиковой скорости потока. Если оксигенация пациента невысока до начала протокола, следует также рассмотреть возможность непрерывного мониторинга с помощью пульсоксиметрии.

Отхождение мокроты требует сотрудничества между лицом, получившим образец, и субъектом. Обычно пациента просят голодать в течение 4 часов перед отхождением мокроты, чтобы уменьшить беспокойство по поводу тошноты и рвоты; чистить зубы непосредственно перед забором, чтобы уменьшить загрязнение ротоглотки; и прополоскать рот водой непосредственно перед сбором и высушить слизистые оболочки ротовой полости тканями. 9

Преобладающими воспалительными клетками, присутствующими в мокроте, являются нейтрофилы.Повышенная эозинофилия мокроты наблюдается у астматиков по сравнению со здоровыми людьми (рис. 16-3). Эозинофилия мокроты у лиц, не принимавших стероиды, астматиков, как правило, указывает на стероид-зависимый процесс, и после лечения кортикостероидами обычно наблюдается заметное снижение количества эозинофилов. Некоторые исследования нацелены на уровни эозинофилов в мокроте для корректировки дозы ингаляционных кортикостероидов со значительным сокращением обострений астмы и улучшением функций легких.В этих исследованиях пациенты без эозинофилии смогли снизить дозу ингаляционных стероидов без ухудшения функции легких. 10,11

Вторая группа пациентов, страдающих астмой, испытавших или не получавших кортикостероидную терапию, имеет значительно более высокие уровни нейтрофилов в мокроте. Эти субъекты менее чувствительны к терапии кортикостероидами по сравнению с пациентами с преобладанием эозинофилов. Для пациентов без эозинофилии может потребоваться рассмотреть альтернативные методы лечения.При астме и других заболеваниях дыхательных путей, таких как ХОБЛ и хронический кашель, анализ индуцированной мокроты может оказаться полезным клиническим инструментом для оценки основного воспаления как части процесса заболевания и мониторинга терапевтических реакций. 12

Анализ мокроты обеспечивает более высокий уровень выявления COVID-19 — ScienceDaily

Раннее и точное обнаружение имеет решающее значение для предотвращения распространения COVID-19 и оказания надлежащей помощи пациентам. Носоглоточные (NP) мазки, которые требуют введения длинного стержня в носовую полость для сбора образца из задней части носа и горла, в настоящее время являются золотым стандартом для сбора образца для диагностики.Но процедура технически сложна, часто неудобна для пациентов и требует средств индивидуальной защиты, которых может не хватать. Другие подходы к сбору образцов, в том числе из мазка из ротоглотки и мокроты, были протестированы в небольших исследованиях, но нет уверенности в том, какой метод лучше всего подходит для обнаружения вируса.

В новом исследовании, опубликованном в EBioMedicine , исследователи из Brigham and Women’s Hospital провели систематический обзор и метаанализ, проанализировав данные более чем 3000 образцов для сравнения трех подходов.Команда обнаружила, что анализ мокроты выявляет РНК вируса, вызывающего COVID-19, значительно чаще, в то время как анализ мазка из ротоглотки имеет более низкие показатели. Независимо от метода сбора, чем раньше были взяты образцы после появления симптомов, тем выше уровень обнаружения.

«Точный диагноз COVID-19 имеет значение для здравоохранения, возвращения к работе, инфекционного контроля и общественного здравоохранения», — сказал автор-корреспондент Джонатан Ли, доктор медицины, преподаватель Отделения инфекционных заболеваний в Бригаме.«Наш золотой стандарт в больнице и за ее пределами — мазок из носоглотки, но существует большая путаница в отношении того, какой метод отбора образцов является лучшим и наиболее чувствительным. Наше исследование показывает, что анализ мокроты привел к значительно более высоким показателям выявления SARS-CoV-2 и поддерживает использование этого типа тестирования в качестве ценного метода диагностики и наблюдения за пациентами с COVID-19 ».

Ли и его коллеги просмотрели литературу — как препринты, так и опубликованные статьи — в поисках исследований, в которых оценивали как минимум два респираторных образца взятия проб с помощью мазка NP, ротоглоточного мазка или мокроты.Из более чем 1000 исследований они определили 11, которые соответствовали их критериям. Эти исследования включали результаты 3442 образцов из дыхательных путей.

Группа исследовала, как часто каждый метод сбора дает положительный результат. Для мазков NP этот показатель составил 54 процента; мазки из ротоглотки — 43%; на мокроту — 71 процент. Скорость выявления вирусов в мокроте была значительно выше, чем у мазков из ротоглотки или NP. Показатели выявления были самыми высокими в течение одной недели с момента появления симптомов для всех трех тестов.

«Когда дело доходит до тестирования, чем раньше, тем лучше, поскольку точность диагностики повышается раньше после появления симптомов, независимо от места взятия пробы», — сказал Ли. «В отличие от тестирования на антитела, очень редко бывает ложноположительный результат qPCR при диагностике COVID-19 на ранней стадии заболевания с использованием этих методов».

Мазки из носоглотки собирают через носовую полость; мазки из ротоглотки собираются путем введения стержня через рот; и образцы мокроты обычно собираются при глубоком кашле пациента, чтобы произвести и удалить мокроту.Не все пациенты могут сдать образец мокроты; для таких пациентов лучшим методом взятия мазка может быть назофарингеальный мазок. В метаанализ включены только исследования, проведенные на госпитализированных лицах — дополнительные исследования потребуются для пациентов с бессимптомными симптомами или с легкими симптомами. В текущем исследовании не оценивались альтернативные методы тестирования, такие как слюна или мазки из носа (взятые из передней части носа). Ли и его коллеги из Brigham в настоящее время работают над проектом, финансируемым Массачусетским консорциумом по готовности к патогенам, по сбору и обработке нескольких видов образцов от пациентов с COVID-19 для создания ресурса для исследователей.

«Святой Грааль будет заключаться в том, чтобы найти тест, который будет легко приемлем для пациентов, легко собирать и очень чувствителен», — сказал Ли.

Это исследование частично финансировалось Национальными институтами здравоохранения (U01AI106701) и Гарвардским университетом по исследованию СПИДа (NIAID 5P30AI060354). Ли сообщает о личных гонорарах от Abbvie и Jan Biotech, помимо представленных работ. Соавтор сообщает о личных гонорарах Гарвардской школы общественного здравоохранения Т.Х. Чана во время проведения исследования, а также о грантах от NIH / NIAID, помимо представленных работ.

История Источник:

Материалы предоставлены Бригамом и женской больницей . Примечание. Содержимое можно редактировать по стилю и длине.

Эмпиема — NHS

Эмпиема — это медицинский термин, обозначающий карманы гноя, скопившиеся в полости тела.

Они могут образоваться, если не лечить бактериальную инфекцию или если она не поддается лечению в полной мере.

Термин эмпиема чаще всего используется для обозначения заполненных гноем карманов, которые развиваются в плевральной полости.

Это узкое пространство между внешней стороной легких и внутренней частью грудной клетки.

Эмпиема — серьезное заболевание, требующее лечения. Это может вызвать жар, боли в груди, одышку и откашливание слизи.

Хотя иногда это может быть опасно для жизни, это не распространенное заболевание, так как большинство бактериальных инфекций эффективно лечатся антибиотиками, прежде чем они достигнут этой стадии.

Что вызывает эмпиему?

Легкие и внутренняя часть грудной клетки покрыты гладким слоем, называемым плеврой.

Эти слои почти соприкасаются, но разделены тонким пространством (плевральной полостью), заполненным небольшим количеством смазки, называемой плевральной жидкостью.

Иногда плевральная жидкость может накапливаться и инфицироваться, образуя скопление гноя.

Это может привести к утолщению и слипанию участков плевры, создавая карманы гноя.

Эмпиема может ухудшиться, превратившись в множество гноя с толстыми отложениями, покрывающими внешний слой легких.

Эти отложения препятствуют правильному расширению легких.

Пневмония и другие возможные причины

Самая частая причина эмпиемы — пневмония, вызванная бактериальной инфекцией легких.

Эмпиема может образоваться, когда пневмония полностью не поддается лечению прямым путем.

Другие возможные причины:

  • бронхоэктазия — хроническое заболевание, при котором дыхательные пути легких ненормально расширяются, что приводит к скоплению слизи, которая может сделать легкие более уязвимыми для инфекции
  • сгусток крови или другая закупорка — это может препятствовать притоку крови к легким, вызывая отмирание части легочной ткани (известный как инфаркт легкого)
  • операция на груди — эмпиема — редкое осложнение
  • эндоскопия — эмпиема — редкое осложнение
  • тяжелая травма груди
  • инфекция в другом месте тела, которая распространяется через кровоток
  • инфекция, вызванная вдыханием пищи, если у вас проблемы с глотанием — это редко
  • туберкулез — это редкость в Великобритании

Вы больше подвержены риску развития эмпиемы, если:

  • больны сахарным диабетом
  • имеют ослабленную иммунную систему
  • имеют кислотный рефлюкс
  • употребляет слишком много алкоголя или принимает много рекреационных наркотиков

Пострадать могут как взрослые, так и дети.

Какие симптомы?

Эмпиема может вызывать беспокойство и дискомфорт.

Это может вызвать:

  • лихорадка и ночная потливость
  • недостаток энергии
  • затрудненное дыхание
  • потеря веса
  • боль в груди
  • Кашель и отхаркивающая слизь, содержащая гной

Как диагностируется?

Эмпиему обычно подозревают, когда у человека с тяжелой пневмонией не проходит лечение и у него начинают проявляться некоторые из перечисленных выше симптомов.

Если пациент откашливает слизь, следует взять ее образец для исследования под микроскопом.

Тип бактерий, вызывающих инфекцию, определяется, поэтому можно назначить наиболее эффективные антибиотики.

Также будет взят образец крови для подсчета количества лейкоцитов и других маркеров инфекции.

Рентгеновское или ультразвуковое сканирование покажет, есть ли скопление жидкости вокруг легких и сколько его.

Часто компьютерная томография также может использоваться для более подробной оценки.

Как лечится?

Антибиотики

Некоторым пациентам просто необходимо вводить антибиотики непосредственно в вену капельно (внутривенно).

Но, возможно, им придется оставаться в больнице надолго.

Сундук сливной

Некоторым пациентам могут потребоваться и антибиотики, и дренаж из грудной клетки.

Грудной дренаж — это гибкая пластиковая трубка, которая вводится через стенку грудной клетки в пораженный участок для слива жидкости.

Область, в которую вводится трубка, онемела, и пациенту также можно дать легкое успокаивающее средство перед введением дренажа.

Обезболивающие вводятся для облегчения любой боли во время дренажа грудной клетки.

Пневматическая дренажная трубка обычно остается на месте до тех пор, пока рентгеновское или ультразвуковое исследование не покажет, что вся жидкость вытекла из грудной клетки, а легкие полностью не расширились.

Иногда инъекции могут быть сделаны через дренаж грудной клетки, чтобы помочь очистить инфицированные карманы от гноя.

Пациенту, возможно, придется оставаться в больнице до тех пор, пока трубка не будет удалена.

Некоторые пациенты могут пойти домой с установленной плевральной трубкой, и в этом случае медсестра-специалист предложит поддержку и посоветует, как это сделать дома.

Медсестра покажет, как размещать, опорожнять и менять сумку до тех пор, пока семья или пациент не почувствуют уверенность, что они могут сделать это сами.

Для получения дополнительной информации прочтите информационный бюллетень NHS по дренажам из грудной клетки (PDF, 60 КБ).

Операция по удалению слизистой оболочки легкого

Если состояние не улучшится, может потребоваться операция.

Это включает в себя разрез в груди для доступа к легким и удаление толстого слоя, покрывающего легкие, чтобы они снова могли правильно расшириться.

Выполняется только в том случае, если другие методы лечения не помогли.

Ваш хирург или специалист объяснит преимущества и риски процедуры.

Узнайте больше об операции на легких

Стома

Сливной дренаж подходит не для всех пациентов.Некоторые вместо этого предпочтут сделать отверстие в груди, известное как стома.

Над стомой помещается специальный мешок для сбора жидкости, вытекающей из эмпиемы.

Его можно носить на теле, он может быть более незаметным и меньше мешать вашему образу жизни, чем дренаж груди.

Но при современных методах лечения образование стомы — редкость.

Последняя проверка страницы: 22 ноября 2018 г.
Срок следующей проверки: 22 ноября 2021 г.

.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.