Контроль стерильности перевязочного материала осуществляется путем: Контроль перевязочного и хирургического материала на стерильность.

РД 64-051-87 Инструкция. Контроль стерильности перевязочных материалов, РД от 01 июля 1988 года №64-051-87

РД 64-051-87

Дата введения 1988-07-01

1.
Общие положения

1.1. Настоящая инструкция
устанавливает требования к помещению, подготовке персонала и
инструментов к работе, отбору проб, методике посева и учету
результатов при контроле стерильности перевязочных материалов, а
также составу и качеству питательных сред.

Инструкция
распространяется на все производственные объединения и предприятия
химико-фармацевтической и других отраслей промышленности,
выпускающей стерилизованные перевязочные материалы.

1.2. Контроль
стерильности проводит бактериологическая лаборатория предприятия,
выпускающего перевязочные материалы.

2.
Мероприятия, обеспечивающие асептические условия при посевах

Контроль стерильности
простерилизованной продукции проводят в боксе при условиях,
исключающих возможность вторичной контаминации.

2.1. Требования к
помещению для посева на стерильность

2.1.1. Лаборатория, в
которой проводят контроль перевязочных материалов на стерильность,
должна быть изолирована от производственных помещений и оборудована
боксом.

2.1.2. Бокс должен иметь
предбоксник, отделенный от него перегородкой с дверью и
передаточным окном. Площадь бокса должна быть достаточной для
проведения в нем бактериологических исследований, но не менее 3
м. Высота потолков в боксе и предбокснике 2,5
м — для удобства ежедневной влажной обработки.

2.1.3. Стены боксов и
предбоксников должны быть окрашены масляной краской или выложены
кафельной плиткой и не иметь выступов, карнизов, щелей, трещин, пол
должен быть покрыт линолеумом или плиткой.

Потолок и оборудование
бокса с предбоксником (боковые поверхности и ножки столов,
стеллажи, стулья) должны быть выкрашены масляной краской. Рабочие
поверхности столов следует изготавливать из водонепроницаемого,
кислотно-щелочеустойчивого, несгораемого материала, не портящегося
от обработки кипятком и дезинфицирующими растворами (оцинкованная
жесть и др.).

2.1.4. Бокс должен быть
оборудован приточно-вытяжной вентиляцией с избыточным давлением (с
преобладанием притока над вытяжкой). Обмен воздуха в боксе должен
быть не менее десятикратного в час и подаваться стерильным.

2.1.5. В боксе и
предбокснике для обеззараживания воздуха устанавливают настенные и
потолочные бактерицидные облучатели на высоте не ниже 2 м от пола.
Мощность ламп не должна превышать 1 Вт потребляемой от сети
мощности на 1 м помещения при экранированном облучении и
2-3,5 Вт — при использовании неэкранированных ламп. Через 1000
часов работы бактерицидные лампы в облучателях следует
заменить.

2.1.6. В боксах,
предназначенных для проведения контроля стерильности перевязочных
материалов, работы с живыми культурами микроорганизмов не
допускаются.

2.2. Подготовка боксов,
инструментов и персонала к работе

2.2.1. Ежедневно перед
работой помещение бокса и предбоксника подвергают тщательной
влажной уборке. Потолок, стены, двери, мебель, поверхности
инвентаря протирают стерильной ветошью или губкой, обильно
смоченной 3% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства.
Этим же раствором моют пол. Расход дезинфицирующего средства: от
100 до 150 мл на 1 м помещения.

При отсутствии
вышеуказанного дезинфицирующего раствора производят обработку
свежеприготовленным 2% раствором хлорамина.

В
случае обнаружения в воздухе споровых форм микробов или грибов,
протирание или орошение из гидропульта проводят 6% раствором
перекиси водорода с 0,5% моющего средства из расчета от 150 до 200
мл на 1 м помещения при протирании и 500 мл на 1
м при орошении. Затем ветошью или губкой
удаляют излишнюю жидкость.

В
конце рабочего дня мебель, стены и пол в боксе и предбокснике
протирают стерильной тканью, смоченной 3% раствором перекиси
водорода с 0,5% моющего средства или 2% раствором хлорамина.

В
качестве моющих средств добавляют Астру, Лотос и другие,
разрешенные Минздравом СССР к применению в медицинской
практике.

2.2.2. Перед включением
бактерицидных ламп в боксе включают вентиляцию на время,
достаточное для полного обмена воздуха в нем.

2.2.3. Все необходимые
для работы материалы и инструменты вносят в бокс не ранее чем через
45 минут после его обработки. Контролируемые образцы перевязочных
материалов вносят в бокс последними.

Перед внесением образцов
перевязочных материалов в бокс в предбокснике протирают их наружную
оболочку салфеткой, смоченной свежеприготовленным 3% раствором
перекиси водорода с 0,5% моющего средства. Обработанные образцы
раскладывают на столе в боксе по порядку исследуемых номеров.

2.2.4. Перед началом
работы в предбокснике и боксе включают бактерицидные лампы на 1
час. Во время внесения образцов и их обработки лампы выключают.
Затем лампы вновь включают на 1 час. Работа в боксе может быть
начата через 30 минут после отключения ламп.

2.2.5. Для работы
используют инструменты, посуду и спецодежду, предварительно
простерилизованные в паровом стерилизаторе. Металлические,
стеклянные и тканевые изделия обрабатывают при следующем режиме:
температура (132±2) °С, время стерилизационной выдержки 20 минут
или температура (120+2) °С, время стерилизационной выдержки 45
минут. Для стерилизации изделий из резины следует использовать
второй из указанных режимов.

Во время работы в боксе
вспомогательный инструмент дополнительно обжигают в пламени
горелки. В процессе работы инструмент заменяют новым стерильным
комплектом 2-3 раза.

2.2.6. Перед посевом
сотрудники лаборатории тщательно моют руки теплой водой с мылом и
щеткой, вытирают их стерильным полотенцем. В предбокснике надевают
стерильные или обеззараженные дезинфицирующим раствором (протирание
наружной поверхности и подошвы) тапочки, стерильные халаты, шапочки
или косынки и марлевые маски. Руки протирают 70% этиловым спиртом
или надевают стерильные резиновые перчатки.

2.2.7. В боксе
воздерживаются от разговоров, хождения из бокса и обратно до
окончания посева.

2.2.8. В процессе посева
в боксе регулярно проверяют обсемененность воздуха. Для этого на
рабочем столе оставляют две открытые чашки Петри с мясопептонным
агаром (МПА) и агаризованной средой Сабуро в течение 15 минут.
Затем чашки с МПА выдерживают в термостате при (30-35) °С в течение
48 часов, со средой Сабуро — при температуре (20-25) °С в течение
72 часов. Допускается рост не более трех колоний неспорообразующих
бактерий. При обнаружении колоний спорообразующих бактерий и
плесневых грибов запрещается проведение дальнейших работ в боксе
без дополнительной его обработки.

Результаты проверки
обсемененности воздуха должны быть зарегистрированы в специальном
журнале.

2.2.9. Постоянно следует
вести контроль стерильности питательных сред, проверять надежность
стерилизации используемых для работы в боксе инструментов,
халатов.

3.
Отбор проб для контроля стерильности

3.1. Отбор проб проводит
представитель отдела технического контроля (ОТК).

3.2. Образцы перевязочных
материалов отбирают на контроль из разных мест стерилизатора с
учетом распределения температуры в стерилизационной камере при
паровом методе стерилизации и дозы облучения при радиационном
методе.

Отбор проб производят от
каждой серии и не менее двух раз в различное время суток от каждой
партии простерилизованной продукции по формуле , где — количество изделий в серии или
партии.

Серией называется число
изделий, простерилизованное паровым методом за один цикл в одном
стерилизаторе; партией называется число изделий, простерилизованных
радиационным методом за сутки.

При контроле стерильности
изделий, простерилизованных паровым методом, пробы отбирают в
количестве не менее 24 упаковок от каждой серии. На первичный посев
направляют 6 упаковок, для повторного контроля — 12 для
арбитражного хранения — 6 упаковок.

Максимальное количество
проб, отбираемых для первичного посева при радиационном методе
стерилизации, 40.

При отборе проб для
контроля стерильности перевязочных материалов, простерилизованных
радиационным методом, следует руководствоваться таблицей.

Таблица

Отбор проб для контроля перевязочных материалов, простерилизованных
радиационным методом

При отсутствии роста в
первичных посевах, дубликаты, предназначенные для повторного
контроля, подлежат реализации.

4.
Методика посева на стерильность

Контроль стерильности
перевязочных материалов проводит бактериолог при участии помощника,
используя стерильные инструменты: ножницы, пинцеты, иглы и др.

4.1. Посев ваты

Помощник разрезает
ножницами оболочку пакета по его длине и осторожно освобождает
ролик ваты от оболочки. Поддерживая за конец ватного ролика,
помощник осторожно отделяет наружный пласт ролика и начинает
медленно его разматывать, чтобы отворачиваемый слой ваты опускался
вниз. В процессе разматывания пласт ваты обращен внутренней
поверхностью к засевающему. Бактериолог производит посев при помощи
ножниц, пинцета, иглы и других инструментов, отрезая небольшой
кусочек ваты массой около 1 г из того места, от которого только что
отошел отворачиваемый пласт. Отрезанный кусочек ваты переносят с
соблюдением асептических условий в пробирку, колбу или флакон с
питательной средой. Перед взятием каждого следующего кусочка
отворачивают пласт. Размер кусочка должен соответствовать диаметру
пробирки, горловины колбы или флакона. Таким способом, постепенно
разматывая ролик ваты, можно выбрать пробы из любых мест пакета. Из
каждого пакета засевают 4 пробы: две из поверхностного слоя и две
из глубокого слоя.

На пробирках, колбах или
флаконах с посевами указывают наименование перевязочного материала,
номер серии или партии. Пробирки с посевами помещают в штативы или
металлические емкости, а колбы и флаконы — в лотки, на которых
указывается дата посева и дата окончания инкубации посевов.

4.2. Посев бинтов

При исследовании бинтов
помощник держит пакет за левый край и с помощью пинцета или ножниц
делает разрез пергаментной оболочки и снимает ее правую половину.
Бактериолог производит посев, отрезая кусочек бинта размером 2 см с
торцовой части от нескольких слоев. Отрезанный кусочек переносят, с
соблюдением правил асептики, в пробирку, колбу или флакон с
питательной средой. Помощник берет рукой использованную часть
бинта, с помощью пинцета снимает левую часть оболочки, а
бактериолог делает срез с торцовой части бинта от нескольких слоев
и также производит посев на питательную среду. Помощник пинцетом
вытягивает внутреннюю часть бинта длиной от 20 до 30 см, а
бактериолог производит срез и посев, затем помощник повторно
вытягивает внутреннюю часть бинта длиной от 20 до 30 см, от которой
бактериолог производит срез и посев.

4.3. Посев марлевых
салфеток

Марлевые салфетки
исследуют так же, как и бинты, с той лишь разницей, что после
взятия проб с торцов пакета помощник осторожно развертывает пакет
для взятия проб из глубинных его частей. В дальнейшем поступают так
же, как и при посеве ваты.

4.4. Посев ватно-марлевых
изделий

Держа пакет за левый
край, помощник пинцетом или ножницами делает разрез пергаментной
оболочки и снимает ее. Бактериолог вырезает кусочек бинта и
марлевых подушечек с торцовой стороны и тотчас их засевает.
Помощник берет за использованную часть пакета и снимает часть
оболочки. Бактериолог делает срез кусочка бинта и ватных подушечек
левой торцовой части пакета и засевают. Затем помощник осторожно
развертывает пакет для взятия проб из глубокой части ватно-марлевых
подушечек. В дальнейшем поступают так же, как при посеве
ваты.

Тест с ответами: «Инфекционная безопасность»

I вариант.

1. Ежедневная влажная уборка в палатах проводится:
а) 2 раза +
б) 4 раза
в) 1 раз

2. Для стерилизации инструментов применяется перекись водорода:
а) 4%
б) 6% +
в) 1%

3. Продолжительность дезинфекции медицинских термометров в 2% растворе хлорамина (в мин.):
а) 15
б) 20
в) 5 +

4. Дезинфекция ножниц, бритвенных приборов проводится:
а) погружением в спирт 70С на 15 мин. +
б) кипячением в течение 30 мин. в воде
в) протиранием спиртом

5. Режим обработки клеенок и клеенчатых фартуков после их использования:
а) двукратное протирание 3% хлорамином
б) двукратное влажное протирание
в) двукратное протирание 1% раствором хлорамина с интервалом в 15 мин. +

6. Для стерилизации одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения в промышленности используют:
а) стерилизацию текучим паром
б) гамма-излучение +
в) дробную стерилизацию

7. Раствор хлорамина, применяемый для дезинфекции многоразовых мединструментов у больных вирусным гепатитом:
а) 2%
б) 5%
в) 3% +

8. Режим дезинфекции предметов ухода из резины (грелки, пузыри для льда):
а) двукратное протирание 1% раствором хлорамина с интервалом в 15 мин. +
б) двукратное протирание 3% раствором хлорамина
в) кипячение в 2% растворе гидрокарбоната натрия

9. Экспозиция при дезинфекции шпателей в 3% растворе перекиси водорода (в мин.):
а) 25
б) 45
в) 30 +

10. В хирургии после освобождения суден и мочеприемников от содержимого их:
а) погружают в 1% раствор хлорамина на 60 мин.
б) погружают в 3% раствор хлорамина на 30 мин. +
в) погружают в 1% раствор хлорамина на 15 мин.

11. Экспозиция при дезинфекции в 3% растворе хлорамина предметов, с которыми соприкасался больной гепатитом или СПИДом (в мин.):
а) 60 +
б) 45
в) 30

12. Режим дезинфекции инструментов в воздушном стерилизаторе:
а) 160С – 120 мин.
б) 120С – 45 мин. +
в) 180С – 30 мин.

13. Спецодежду, обильно загрязненную кровью, необходимо:
а) снять и замочить в 3% растворе хлорамина на 1 час +
б) снять и место загрязнения застирать с мылом
в) обработать место загрязнения тампоном, смоченным в дез. растворе

14. В биксе с фильтром содержимое считается стерильным с момента стерилизации в течение:
а) 7 суток
б) 24 часов
в) 20 суток +

15. Концентрация перекиси водорода для приготовления моющего раствора составляет:
а) 10% +
б) 15%
в) 20%

16. Недостаточно обработанные руки медперсонала являются:
а) источником и фактором передачи инфекции
б) фактором передачи инфекции +
в) источником инфекции

17. Экспозиция при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке (в мин.):
а) 30
б) 25
в) 15 +

18. Режим кварцевания процедурного кабинета:
а) 2 раза в день
б) через 2 часа по 30 мин. +
в) 3 раза в день

19. Аппарат, применяемый для стерилизации перевязочного материала:
а) сухожаровой шкаф
б) термостат
в) автоклав +

20. Раствор, используемый для генеральной уборки процедурного кабинета:
а) 3% раствор хлорной извести
б) 6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства +
в) 1% раствор хлорамина

II вариант.

1. Рабочий раствор хлорамина годен в течение (в днях):
а) 1 +
б) 3
в) 5

2. Для контроля температуры в паровом стерилизаторе применяют:
а) янтарную кислоту
б) бензойную кислоту +
в) винную кислоту

3. Вид уборки процедурного кабинета, которая проводится в конце рабочего дня:
а) генеральная
б) текущая
в) заключительная +

4. Генеральную уборку процедурного кабинета проводят:
а) 1 раз в день
б) 1 раз в неделю +
в) 2 раза в месяц

5. Экспозиция при дезинфекции инструментов в 3% растворе хлорамина (в часах):
а) 3
б) 7
в) 1 +

6. Экспозиция при дезинфекции кипячением в дистиллированной воде составляет (в мин.):
а) 45
б) 30 +
в) 25

7. Концентрация раствора хлорамина при дезинфекции клизменных наконечников:
а) 3% +
б) 6%
в) 5%

8. Метод контроля стерильности:
а) фармакологический
б) визуальный
в) бактериологический +

9. Время дезинфекции шприцев и игл одноразового использования в 5% растворе хлорамина (в мин.):
а) 60 +
б) 15
в) 45

10. Использованный уборочный инвентарь подлежит:
а) уничтожению
б) дезинфекции +
в) проветриванию

11. Растворы, которые применяются для обработки полости рта при попадании на них биологической жидкости пациента:
а) 6 % перекиси водорода
б) 3 % перекиси водорода
в) 1 % перекиси водорода
г) 0,5 % перманганата калия, 70 град. спиртом+

12. Каким путем осуществляется контроль стерильности перевязочного материала?
а) использования химических индикаторов
б) использования физических индикаторов
в) использования биологических индикаторов+
г) посева на питательные среды

13. Вывоз отходов класса А, Б, В должен производится:
а) ежедневно+
б) 3 раза в неделю
в) 2 раза в неделю
г) 1 раз в неделю

14. После проведения предстерилизационной очистки для промывания мед.инструментария используется вода:
а) проточная+
б) кипяченая
в) дистиллированная
г) дважды дистиллированная

15. В какой промежуток применяется моющий раствор с использованием средства «Лотос»?
а) в течение суток до появления фиолетовой окраски
б) в течение 2 суток до появления фиолетовой окраски
в) течение суток до появления розовой окраски+
г) до появления розовой окраски

16. Экспозиция при стерилизации белья в автоклаве (в мин.):
а) 40
б) 30
в) 20+
г) 10

17. Длительность сохранения мед. инструментария в крафт – пакетах (в часах)?
а) 72
б) 48+
в) 24
г) 12

18. Длительность использования накрытого стерильного стола (в часах):
а) 24
б) 18
в) 12
г) 6+

19. Что используют при сборке шприца со стерильного стола?
а) край стерильного стола
б) стерильную салфетку
в) стерильный лоток+
г) лоток, обработанный дезинфицирующим средством

20. Чему равен рок использования маски процедурной, перевязочной медсестры (в часах):
а) 6
б) 4
в) 3+
г) 1

Стерилизация перевязочного материала, операционного белья

⇐ ПредыдущаяСтр 14 из 60Следующая ⇒

Этап I — предстерилизационная подготовка материала

К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Применяют их во время операции и перевязки с целью осушения раны, остановки кровотечения, дренирования или тампонады раны.

Перевязочный материал готовят из марли, предварительно разрезанной на кусочки. Марлю складывают, подвёртывая края внутрь, чтобы не было свободного края (из него могут осыпаться волокна ткани). Перевязочный материал, кроме бинтов, не загрязнённых кровью, после применения сжигают.

К операционному белью относятся халаты хирургические, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани — бязь, полотно. Операционное бельё многоразового пользования должно иметь специальную метку и сдаваться в стирку отдельно от другого белья, в специальных мешках. У халатов не должно быть карманов, поясов; простыни должны был подшиты. Халаты, простыни, пелёнки, полотенца для стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при использовании.

Этап II — укладка и подготовка материала к стерилизации.

Перевязочный материал и операционное бельё укладывают в биксы. При отсутствии биксов допускается стерилизация в полотняных мешках.

При универсальной укладке в бикс (мешок) помещают материал, предназначенный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомии, грыжесечения, флебэктомии и др.). При целенаправленной укладке в бикс (мешок) закладывают необходимый набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенного для конкретной операции (пневмонэктомии, резекции желудка и др.). При видовой укладке в бикс укладывают определённый вид перевязочного материала или белья (бикс с халатами, бикс с салфетками, бикс с шариками и т.д.).

Вначале проверяют исправность бикса, затем на его дно помещают развёрнутую простыню, концы которой находятся снаружи. Перевязочный материал укладывают вертикально по секторам пачками или пакетами. Материал укладывают неплотно, чтобы обеспечить доступ пара, внутрь помещают индикаторы режима стерилизации (максимальные термометры, плавящиеся вещества или пробирки с тест-микробом), края простыни заворачивают, бикс закрывают крышкой и защёлкивают замок. К крышке бикса прикрепляют бирку из клеёнки с указанием даты стерилизации и фамилии осуществлявшего её.

Этап III — стерилизация

Эксплуатация автоклава допускается только при наличии разрешения Инспекции котлонадзора с отметкой в паспорте аппарата. К работе с автоклавом допускаются лица, сдавшие технический минимум по эксплуатации автоклава и имеющие соответствующее разрешение. Работа с автоклавом требует точного соблюдения инструкции по эксплуатации аппарата. Необходимо соблюдать общие правила техники безопасности:

• обязательно заземлять паровой стерилизатор с электрическим подогревом;

• не приступать к работе на неисправном аппарате;

• во время работы не оставлять аппарат без присмотра;

• не доливать воду в воронку во время работы стерилизатора;

• по окончании стерилизации отключать нагреватель от сети и прикрывать вентиль впуска пара в стерилизационную камеру из парообразователя;

• открывать крышку стерилизационной камеры только после того, как стрелка манометра опустится до нуля.

Отсчёт времени стерилизации начинается с момента достижения заданного давления. Перевязочный материал и операционное бельё стерилизуют в течение 20 мин при давлении 2 атм (температура 132,9 С).

Этап IV — хранение стерильного материала

По окончании стерилизации и сушки белья стерилизационную камеру разгружают, биксы вынимают, сразу закрывают решётку и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Хранят биксы в шкафах под замком в специальной комнате. Допустимый срок хранения перевязочного материала и белья, если бикс не вскрывался, — 48 ч с момента окончания стерилизации. Материал и бельё, стерилизованные в мешках, хранят не более 24 ч.

Контроль стерильности

Контроль стерильности материала и режима стерилизации в автоклавах проводят прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ — бактериологический: посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажнённой изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.

Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определённой температуре. Пробирки вкладывают вглубь бикса, а по окончании стерилизации извлекают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Этот тест проводят 1 раз в 10 дней.

Непрямые способы контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определённой точкой плавления: бензойную кислоту (120 С), резорцин (119 С), антипирин (110 С). Эти вещества выпускаются в ампулах. Их применяют также в пробирках (по 0,5 г), закрытых марлевой пробкой. В бикс между слоями стерилизуемого материала закладывают 1-2 ампулы. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указывают на то, что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или превышала её. Для контроля режима стерилизации в сухожаровых стерилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плавления: аскорбиновую кислоту (187-192 С), янтарную кислоту (180-184 С), пилокарпина гидрохлорид (200 С), тиомочевину (180 С).

Более объективным из непрямых методов контроля режима стерилизации является термометрия. В каждый бикс между стерилизуемым материалом укладывают 1-2 термометра. Их показатели отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции (в течение какого периода эта температура поддерживалась в биксе), в связи с чем и этот метод не исключает прямого контроля стерильности с использованием бактериологических тестов.

Парентеральное питание

При тяжёлых состояниях организма, обусловленных шоком, кровопотерей, операцией и нарушением естественного приёма пищи, необходима трансфузионная терапия, которая наряду с восполнением дефицита ОЦК и восстановлением водно-электролитного баланса обеспечивает потребности организма в энергетических и пластических материалах, значительно возрастающие при стрессовых состояниях. Из-за недостатка пластических материалов снижаются репаративные способности тканей, что особенно важно в послеоперационном периоде. Недостаток энергетических материалов приводит к расходованию белков тканей и пластических материалов, введённых в виде гидролизатов и аминокислот. Все это определяет необходимость сбалансированного парентерального питания с учётом потребностей организма. Минимальная суточная энергетическая потребность организма составляет 25 ккал, белка — 1-1,5 г/кг, жира — 1-2 г/кг.



Стерилизация перевязочного, шовного материала и инструментов

Для стерилизации перевязочного материала и операционного белья используют биксы Шиммельбуша или двойные хлопчатобумажные мешки.

Применяют три вида укладки в бикс:

1. Универсальная укладка. В этой укладке есть все необходимое, чтобы провести одну операцию. В ней содержится перевязочный материал и хирургическое белье для всех участников бригады и больного. Укладка используется, как правило, в операционных с небольшим объемом работы.

2. Специализированная укладка применяется в операционных с большим объемом работы. В каждый бикс (двойной мешок) укладывается определенный вид перевязочного материала для белья (бикс с халатами, бикс с салфетками, мешок с простынями, мешок с пеленками).

3.Целенаправленная укладка обеспечивает выполнение больших конкретных операций (резекция желудка, холецистэктомия, пульмонэктомия).

Весь перевязочный материал и хирургическое белье стерилизуется в автоклаве паром под давлением. Существуют три типа автоклавов: горизонтальный, вертикальный и шкафной. Стерилизация включает в себя несколько этапов:

1. Загрузка стерилизационной камеры биксами и узлами, укладка в стерилизационную камеру теста стерилизации.

2. Замена воздуха в стерилизационной камере паром и поднятие давления в ней до величины давления режима стерилизации (2 атм).

3. Стерилизация при давлении 2 атм и температуре 132° в течение 20 -22 мин, при давлении 1,1 атм и температуре 120° равна 45-48 мин.

4. Выпуск пара и сушка белья.

5. Выгрузка биксов из автоклава.

Контроль за стерилизацией в автоклаве

Методы контроля стерильности делят на прямые и непрямые.

Прямой метод контроля стерильности — бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильному операционному белью, перевязочному материалу, после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость.

В повседневной клинической практике наиболее распространенынепрямые методы контроля стерильности. При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110-120 °С. Если вещество расплавилось, то материал можно считать стерильным. Для подобного метода используют также бензойную кислоту, резорцин, антипирин. Но наиболее часто в настоящее время применяют термоиндикаторы, которые изменяют цвет при температуре 130^о С, например, винар.

Обработка и стерилизация хирургического инструментария

включает три этапа:

· дезинфекция,

· предстерилизационная очистка,

· стерилизация.

Для дезинфекции используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.

Предстерилизационная очистка

Инструменты погружают в специальный моющий раствор. В его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50-60^оС, экспозиция 20 мин. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем промывают в проточной воде и ополаскивают в дистиллированной воде. Сушат инструменты естественным путём или в сухожаровом шкафу при температуре 80°С в течение 30 мин.

Стерилизация

Применяются три метода: воздушный, паровой и химический.

Воздушный метод применяется для стерилизации изделий из стекла, металла, силиконов и резины. Для этого используются воздушные стерилизаторы, обеспечивающие температуру 160-180°С соответственно в течение 150 и 60 минут.

Паровым методом рекомендуется стерилизовать изделия из коррозийно-стойкого металла, стекла, текстильных тканей, резины, латекса и отдельных полимерных материалов. Стерилизация осуществляется в автоклавах, обеспечивающих давление в стерилизационной камере до 2 атм; температуру — 132°С в течение 20-22 минут. Изделия из резины, латекса и отдельных полимерных материалов стерилизуются при 1,2 атм., температуре 120°С в течение 45 минут.

Химическим методом рекомендуется стерилизовать изделия из полимерных материалов, резины, стекла, коррозийно-стойких материалов. После чего изделия промываются стерильной водой двухкратно. емкости, выложенный стерильной простыней, равен Для химической стерилизации инструментария используются:

1) 6% раствор перекиси водорода при температуре его 18°С:

стерилизация продолжается 360 минут, а при 50°С раствора — 180минут;

2) дезоксон I — температура раствора 18°С — экспозиция 45 минут;

3) глютаминовый альдегид — температура раствора не менее 2°С, время стерилизации — 360 минут.



Стерилизация перевязочного материала, операционного белья

Этап 1 —подготовка материала.

Перевязочный материал должен легко стерилизоваться и не терять при этом своих свойств. Его готовят из марли и ваты, реже из вискозы и лигнина. Для работы из них готовят шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Марля должна складываться так, чтобы не было свободного края, из которого могут осыпаться волокна ткани. Материал заготавливают впрок, пополняя его по мере расходования. Перед стерилизацией его укладывают следующим образом: шарики – в марлевые мешочки по 50—100 штук, салфетки связывают по 10 штук.

В качестве операционного белья используют хирургические халаты, простыни, пелёнки, полотенца, шапочки, бахилы. Их изготавливают из хлопчатобумажной ткани. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складываются в виде рулонов, это позволяет легко развернуть их при использовании.

Перевязочный материал после его использования сжигается. Белье многократного применения стирается, но отдельно от других видов белья.

Этап 2 – укладка материала.

Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в биксах. Применяют три вида укладки бикса:

•        универсальная укладка

•        целенаправленная укладка

•        видовая укладка

Универсальная – укладывают материал и белье для одной небольшой, типичной операции. Этот вид укладки используют при работе в перевязочных и при малых операциях. Укладку производят по секторам. Бикс делят на секторы, которые заполняются определенным видом материала или белья: в один сектор помещаются салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д.

Целенаправленная – укладывают материал и белье для определенной операции. Например, для аппендэктомии, резекции желудка. В бикс укладывается набор перевязочного материала и белья, необходимый для осуществления операции.

Видовая – укладывают определенный вид материала или белья.

Этот вид укладки применяют в операционных, где выполняется большое количество различных операций. Укладка осуществляется следующим образом – в один бикс хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д.

Укладку бикса осуществляют следующим образом.

Проверяют исправность бикса. Протирают дно, стенки, крышку бикса вначале изнутри, а затем снаружи 0,5 % нашатырным спиртом. На боковой стенке бикса круговую пластинку (поясок герметичности), сдвигают так, чтобы открыть боковые отверстия. Бикс выстилается сложенной вдвое простыней, при этом концы её должны свисать наружу. На дно бикса кладут индикатор контроля стерильности. Перевязочный материал и белье укладывают в бикс рыхло, вертикально, по секторам или послойно. Каждый предмет кладут так, чтобы легко было достать, не нарушая укладку. В середину бикса кладут ещё индикатор контроля стерильности. Края простыни выстилающей бикс заворачивают один на другой. Сверху ближе к замку бикса кладут еще один контрольный индикатор. Закрывают крышку бикса на замок. К ручке бикса крепят бирку – паспорт.

Этап 3 – стерилизация. Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах.

Этап 4 – хранение стерильного материала. Боковые отверстия простерилизованного бикса должны быть закрыты. Биксы со стерильным материалом хранятся отдельно от биксов с нестерильным. После стерилизации хранить не вскрытый бикс можно 3 суток, после вскрытия 1 сутки. Неиспользованные биксы подвергаются повторной стерилизации.

ПРОВЕРКА КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ

Контроль за стерильностью может проводиться прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ – бактериологический, проводится посев со стерильных предметов. Его производят следующим образом: в операционной вскрывается бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего их опускают в пробирку. Взятый таким образом материал направляют на бактериологическое исследование. Бактериологический контроль проводят один раз в 10 дней. Он является самым надежным методом контроля стерильности.

Для непосредственного контроля стерильности материала применяются непрямые способы. Благодаря им можно оценить качество стерилизации каждого бикса. Непрямые методы основаны на закладывании в стерилизуемые биксы термоиндикаторов, которые показывают, прошел ли стерилизуемый материал определенный температурный режим. Для индикаторов используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), мочевина (132°С), тиомочевину (180°С). Их помещают в ампулы. Индикаторы закладывают вместе со стерилизуемыми предметами. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу свидетельствует, что температура стерилизации была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее.

ОБРАБОТКА РУК

Целью хирургической дезинфекции рук является надежное освобождение их от микроорганизмов на длительный срок. Подготовка рук хирурга и его помощников к операции сопряжена с большими трудностями, в связи с невозможностью использовать для этого высокую температуру и концентрированные растворы антисептиков. Особое затруднение вызывает обеззараживание рук от микробов, скапливающихся в выводных протоках сальных, потовых желез и в волосяных мешках. В связи с этим наряду со смыванием бактерий и уничтожением их на поверхности кожи антисептиками все методы включают как обязательный компонент дубление кожи, чтобы сузить поры и воспрепятствовать проникновению микробов на ее поверхность во время операции.

Принцип хирургической дезинфекции рук – сначала механическая очистка, а затем дезинфекция. Кисти и предплечья предварительно обрабатывают в течение 2-5 минут мылом и щеткой. Особое внимание уделяют обработке ногтевых лож и складок кожи, межпальце- вых промежутков. После этого руки споласкивают и вытирают стерильными салфетками. На заключительном этапе используют дезинфицирующие средства. Которые должны отвечать следующим требованиям:

• быстро убивать патогенную микрофлору.
• надежно убивать микробы в перчаточном соке, чтобы руки оставались обеззараженными в течение всей операции.
• обладать кумулятивным действием, чтобы руки хирурга оставались обедненными микроорганизмами и в промежутках между процедурами дезинфекции.
• не оказывать раздражающего действия на кожу.

Метод Спасокукоцкого – Кочергина.

Вначале руки моют под краном горячей водой, смывая “трамвайную грязь” (выражение акад. С. И. Спасокукоцкого). После мытья мылом и теплой водой руки моют в течение 6 минут, (2 раза по 3 минуты) в двух тазах в 0,5 % растворе аммиака, пользуясь как мочалкой, так и марлевой стерильной салфеткой. Тазы перед наливанием растворов обжигают спиртом. После такого мытья руки насухо вытирают стерильным полотенцем и протирают марлевым шариком или небольшой салфеткой, обильно смоченной 96 % этиловым спиртом. Затем многие хирурги смазывают ногтевые ложа с складки кожи на тыльной поверхности сгиба пальцев 5 % спиртовым раствором йода (йодоната). Хотя сами авторы метода этого не рекомендовали. Однако опыт показывает, что такое дополнение вреда не приносит, а создает больше уверенности в дублении кожи.

Метод Альфельда принадлежит к числу старейших методов, предложенных для обработки рук. Руки моют мылом и щетками под краном в течение 10 минут. Начинают с обычного мытья рук мылом и теплой водой, после чего берут корцангом стерильную щетку и, намылив ее, приступают к систематической обработке кистей и предплечий. Последовательно, начиная с 1 пальца, протирают щеткой пальцы, не пропуская ни одного миллиметра поверхности кожи, тщательно обрабатывают лодногтевые пространства, ногтевые валики и складки кожи кисти, переходят на предплечье. Обрабатывают вплоть до локтевого сгиба. Руки держат так, чтобы вода стекала от кистей к предплечьям. На каждую руку затрачивают по 2 минуты, после чего смывают мыло теплой проточной водой, и, взяв поданную медсестрой или санитаркой вторую стерильную щетку, повторяют процедуру последовательной обработки повторяют процедуру последовательной обработки пальцев, кистей и нижней трети предплечья, затрачивая на это еще 5 минут. Смывают мыло тепло проточной водой и вытирают руки стерильным полотенцем или салфеткой. Сухие руки протирают салфеткой, обильно смоченной 96 % спиртом, в течение 3 минут и смазывают ногтевые ложа спиртовым раствором йода.

Обработка рук раствором перекиси водорода и муравьиной кислоты. Рецепту ру “С-4” готовят в день операции из необходимого количества 30-33 % перекиси водорода (пергидроля) и 85-100 % муравьиной кислоты, которые смешивают в стерильном сосуде в соотношении 1:2.4 и хранят не более суток в посуде с герметической пробкой в прохладном месте. Для обработки рук используют 2,4 % раствор рецептуры “С-4”.

Перед обработкой рук раствором рецептуры “С-4” их моют водой с мылом (без щетки) в течение 1 минуты, вытирают насухо стерильной салфеткой, затем руки обрабатывают в течение 1 минуты рецептурой “С-4” в эмалированном тазу. Вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук хлоргексидин биглюконатом. Для обработки рук используют 0,5 % спиртовой раствор препарата (препарат разводят в 70 % спирте в соотношении 1:40). После предварительного мытья рук с мылом и последующего протирания стерильной марлевой салфеткой производят их обработку двумя ватными тампонами, смоченными в 0,5 % спиртовом растворе хлоргексидина в течение 2-3 минут.

Обработка рук дегмином и дегмицидом. Руки перед обработкой дегмином или дегмицидом моют теплой водой с мылом в течение 2-3 минут, тщательно ополаскивают их и протирают двумя тампонами, обильно смоченными 1 % раствором препарата, по 3 минуты каждым. После этого стерильными салфетками вытирают руки насухо и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук церигелем. Препарат содержит цетилпиридиний хлорид – катионный детергент, обладающий большой поверхностной активностью. Бесцветная, опалисцирующая жидкость церигеля, нанесенная на кожу, после испарения спирта образует тонкую асептическую полимерную пленку (воздействие поли винил бутираля).

После предварительной обработки рук мылом на сухую кожу наносят 3-4 г церигеля и в течение 8-10 с тщательно растирают так, чтобы препарат покрыл ладонные и тыльные поверхности, меж- пальцевые промежутки и дистальную треть предплечья. Руки высушивают на воздухе или под вентилятором в течение 2-3 минут, следя за тем, чтобы пальцы не соприкасались и были слегка согнуты. Способ обработки рук эффективен в экстренных ситуациях, во время работы в перевязочной, при первичной хирургической обработке ран и т. д., полимерная пленка смывается с рук после операции или манипуляции 95 % этиловым спиртом.

Обработка рук йодофором. Очень эффективным и быстрым способом является обработка йодофором (1 % йодопирон- поливинилпиролидон, повидон-йодин-бетадин) и гексахлорофеном в мыльном растворе (шампунь) в течение 3-5 минут. Одновременно достигается очистка и дезинфекция рук, после чего их высушивают салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук ультразвуком. Сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье и дезинфекция рук происходит в течение 1 минуты. Руки погружают в раствор антисептика (0,5 % водный раствор гибитана), через который пропускаются ультразвуковые волны, которые и обеспечивают дезинфекцию.

Обработка рук роккалом. Роккал – поверхностно-активное вещество, обладающее моющим и дезинфицирующим действием. Выпускается в баллонах разной вместимости в 10 % и 1 % растворе, прозрачная желтоватая жидкость.

Руки, предварительно вымытые с мылом, хорошо ополаскивают и погружают в таз с раствором роккала 1:1000 на 2 минуты. Для разведения роккала пользуются только дистиллированной водой.

Обработка рук йодопироном. Руки моют в проточной воде с мылом в течение 1 минуты и вытирают стерильной салфеткой, затем руки погружают в таз с 1 % раствором йодопирона и моют в течение 4 минут стерильной марлевой салфеткой.

Обработка рук хибискрабом. Руки смачивают водой до локтей и наносят 5 мл хибискраба, моют в течение 1 минуты. Затем руки тщательно смываются и повторно применяют 5 мл хибискраба и моют руки в течение 2 минут. Дезинфектор смывается стерильным физиологическим раствором.

Обработка рук препаратом СЕПТОЦИД Р ПЛЮС.

Моют руки водой с мылом, предпочтительно жидким (рН- нейтральный), без использования жестких щеток. Высушивают стерильной разовой салфеткой или полотенцем. Обрабатывают ногтевые ложа, околоногтевые валики одноразовыми стерильными деревянными палочками, смоченными антисептиком. Продолжительность не менее 1 мин. Наносят антисептик на кисти рук и предплечья порциями по 2,5-3 мл. Расход на одну обработку – 10 мл.

Втирают антисептик в кожу рук, не допуская высыхания. Продолжительность обработки 5 мин.

НАДЕВАНИЕ ОПЕРАЦИОННОЙ ОДЕЖДЫ

Медицинский персонал (хирург, ассистенты, операционные сестры) после хирургической дезинфекции рук надевают стерильные (свободные от микроорганизмов) халаты. Для операционных хататов не подходит рыхлый текстильный материал, многократно бывший в употреблении, т. к. он становится проницаемым для пота и бактерий, содержащихся на коже членов операционной бригады (появляются на халате уже через 30 минут работы). Лучше всего использовать белье и халаты из плотного импрегнированного хлопчатобумажного материала, Манжеты и завязки должны быть эластичными и не сдавливать запястья и кисти. Маска должна плотно закрывать рот и нос.

После хирургической дезинфекции рук микроорганизмы на коже отсутствуют. Однако, вскоре из протоков потовых желез, волосяных мешочков, микротрещин на поверхности кожи снова появляются микроорганизмы, поэтому с целью асептического проведения операции необходимо изолировать руки стерильными резиновыми перчатками.

При надевании перчаток нельзя притрагиваться к их наружной поверхности оголенной рукой.

Во время работы в перчатках руки становятся влажными, там скапливается так называемый перчаточный сок, который содержит концентрат вирулентной микрофлоры, поэтому и перед операцией и во время ее необходимо обращать пристальное внимание на целостность перчаток. Поврежденную перчатку необходимо тотчас же сменить. Если операция продолжительная, во время работы через каждые 45-60 минут перчатки обрабатывают 2,4 % первомура и протирают 96 % этиловом спиртом. Обработку перчаток необходимо проводить также после каждого этапа операции, предусматривающего вскрытие полого органа.

ОБРАБОТКА ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ

Подготовка операционного поля начинается в предоперационном периоде (гигиеническая ванна, очистка загрязнений эфиром или бензином, обработка кожи зеленым или калиевым мылом, бритье волос в области операционного поля). Накануне операции больной принимает ванну, ему меняют белье. Утром, в день операции, волосы в области операционного поля тщательно обривают. Для бритья следует применять острые бритвы, не вызывающие раздражения кожи. После бритья кожу протирают спиртом. Волосяной покров в области предстоящего оперативного вмешательства можно также удалять с помощью специального крема-депилятора. Это обеспечивает удобство при обработке кожи в зоне складок и уменьшает опасность микроповреждений, что наблюдается при обработке лезвием бритвы.

Классический метод обработки операционного поля по методу Гроссиха-Филончикова – смазывание 5 % спиртовым раствором йода сейчас не применяется. Для обработки кожи операционного поля в настоящее время чаще всего используют йодонат, йодопирон, 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглкжоната

Основные правила обработки операционного поля:

1. Производить обработку широко.
2. Обработку производить от центра к периферии.
3. Более загрязненные участки обрабатывать в последнюю очередь.
4. Обработка производится многократно.

Первый раз смазывают операционное поле перед наложением стерильного белья, второй – после наложения белья, третий – перед зашиванием кожи и четвертый раз – после наложения швов на кожу. Как показали многочисленные исследования, йод дубит кожу и, проникая в глубину складок и пор, дезинфицирует ее.

Для обработки операционного поля используются и другие антисептические вещества (1 % раствор дегмицида, 1 % раствор роккала или катамина А-Б, 2,4 % раствор первомура). Для дезинфекции слизистых их смазывают 1 % раствором бриллиантового зеленого, 3 % раствором перекиси водорода, 1 % раствором йодоната или йодопирона, а также 0,5 % спиртовым раствором гибитана.

Для изоляции кожи операционного поля можно применять специальную стерильную пленку (протектор).

ПРОФИЛАКТИКА ИМПЛАНТАЦИОННОЙ ИНФЕКЦИИ

Предупреждения им плантационного инфицирования достигается обеспечением строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного.

Особенностью имплантационного пути является то, что в 100 % случаев инфицирование приводит к развитию гнойновоспалительного процесса. Инородные тела оставляемые в тканях при этом длительно поддерживают воспалительный процесс. В некоторых случаях может происходить инкапсуляция инфицированных имплантантов, при этом микроорганизмы не погибают, и могут стать источником вспышки гнойного процесса в отдаленном послеоперационном периоде. Образуется источник дремлющей инфекции.

Источники имплантационной инфекции.

• шовный материал
•  эндопротезы
• металлические конструкции (скобки сшивающих аппаратов, винты, спицы, шурупы, пластинки для остеосинтеза),
• специальные приспособления (кавафильтры, спирали, стен- ты и пр.)
• трансплантированные органы и ткани.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ШОВНОГО МАТЕРИАЛА

Хирургический шовный материал должен быть стерильным, прочным на разрыв и хорошо переноситься тканями, а после выполнения своей фиксирующей функции по возможности рассасываться. В настоящее время имеется много видов шовного материала. Его принято разделять на материал естественного и искусственного происхождения. Шовный материал естественного происхождения: шелк, хлопчатобумажная нить и кетгут. Искусственный шовный материал изготавливается из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр.

Стерилизация шовного материала достигается разными способами: термическим, химическим, гамма-облучением.

Стерилизация шелка.

Метод Кохера. Мотки шелка моют в теплой воде с мылом, затем высушивают. Намотанный на катушку шелк спускают в эфир на 12-24 часа для обезжиривания. После извлечения стерильным инструментом из эфира шелк погружают на тот же срок в 70 % этанол. После извлечения из спирта шелк кипятят 10-20 минут в растворе сулемы 1:1000. Хранят стерильный шелк в герметических закрытых банках с 95 % этиловым спиртом. Через двое суток проводят бактериологический контроль. Если посев будет стерильным шелк можно применять. В герметических банках спирт меняется через каждые 7 дней.

Стерилизация кетгута. Кетгут является материалом органического происхождения. Изготавливают кетгут из подслизистого слоя тонких кишок крупного рогатого скога или свиней. Как гетерогенный белок, он может вызвать сильную реакцию тканей. Преимуществом кетгута является то, что через 6-12 дней он резорбцируется в организме. За счет хромирования (хромированный кетгут) резорбция кетгута в организме может быть продлена до 15-40 дней. Задубленный кетгут не токсичен. Хромированный кетгут выпускается в ампулах или в упаковке из алюминиевой фольги с консервирующим раствором (спирт ректификат 96 % – 89 мл, глицерин 6 мл, бензин авиационный 1 мл, вода дистиллированная 4 мл), его стерилизуют гамма-облучением

Сухой способ стерилизации нитей кетгута в парах йода (по Ситковскому). Кетгут опускают в эфир на 12-24 часа. Стандартную нить кетгута разрезают на три части и тщательно протирают марлевым тампоном, смоченным в растворе дихлорида ртути 1:1000. Нити, обработанные сулемой, опускают в 2 % водный раствор йодида калия. Это делает кетгут восприимчивым к парам йода. Экспозиция в этом растворе определяется толщиной нити (все нулевые номера – на 30 сек., а остальные – на число минут, соответствующее номеру нити). Кетгут сматывают в колечки, нанизывают на длинные нити и в два ряда подвешивают в стерильную стеклянную банку с притертой крышкой. Расстояние кетгута от дна банки – 60-70 мм. На дно банки предварительно насыпают кристаллический йод, обязательно учитывая величину банки и сохраняя необходимую концентрацию паров йода. Расчет 20 пакетов сухого кетгута: в банку емкостью 3 л – 40 г йода, в банку емкостью 5 л – 60 г йода. Пробку банки заливают парафином (поверх стерильной марлевой салфетки). Ежесуточно банку встряхивают для обеспечения свободного доступа паров йода во все промежутки между кетгутом. Кетгут тонкий (№ 0-1) готов через 3 суток, № 2,3, 4 – через 4 суток, № 5 и 6 – через 5 суток. По истечении срока стерилизации кетгут перекладывают в сухую стерильную банку, беря в это время посев на стерильность.

Способ стерилизации нитей кетгута спиртовым люголев- ским раствором (по Губареву). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают. Кетгут заливают на 8-10 суток спиртовым люголевским раствором (спирт 96 % – 1000 г, йодид калия – 10 г, чистый йод – 10 г). Кетгут повторно заливают свежим люголевским раствором еще на 8-10 суток. На 16-20 сутки от начала стерилизации кетгут подвергают бактериологической проверке и при благоприятных результатах разрешают им пользоваться. Хранят кетгут в люголевском растворе, меняя его каждые 7-10 суток.

Способ стерилизации нитей кетгута в водном люголевском растворе (по Гейнац-Клаудиусу). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают, и кетгут заливают на 8-10 суток водным люголевским раствором (дистиллированная вода – 1000 г, йодид калия – 20 г, чистый йод – 10 г). Через 8-10 суток водный люголевский раствор заменяют свежим и снова оставляют в нем кетгут на 8-10 суток. Через 16-20 суток от начата стерилизации раствор сливают и кетгут заливают 96 % этиловым спиртом на 4-6 суток, после чего берут посев на стерильность. Хранят кетгут в 96 % спирте, который меняют каждые 7-10 дней.

Каждую порцию кетгута подвергают обязательному бактериологическому контролю. Посев берут из каждой банки от разных нитей кетгута в 6 пробирок: 3 на бульон и 3 на среду Тароцци. Результаты лабораторных исследований бережно сохраняют. На банку с кетгутом, допущенную к употреблению, наклеивают этикетку с указанием номера кетгута, даты начала и конца стерилизации, даты и номера бактериологического анализа.

Стерилизация капрона. Капрон можно стерилизовать кипячением в течение 20 минут.

Стерилизация лавсана. Лавсановые нити могут стерилизоваться автоклавированием, кипячением, а также раствором диоцида (1:1000-1:5000).

Большинство видов современного шовного материала стерилизуется в заводских условиях гамма-облучением.

Контроль за стерильностью шовного материала осуществляется бактериологическим методом.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ КОНСТРУКЦИЙ, ПРОТЕЗОВ, ТРАНСПЛАНТАТОВ

Способ стерилизации различных конструкций и протезов зависит от вида материалов, из которого они изготовлены.

Металлические конструкции стерилизуются в автоклаве, сухожаровом шкафу или кипячением.

Тканевые протезы стерилизуют кипячением или в газовом стерилизаторе.

Протезы сложных конструкций стерилизуются химическими способами в газовом стерилизаторе или химическими антисептиками.

В настоящее время большинство протезов выпускается просте- рилизованными в заводских условиях гамма-облучением.

Произвести стерилизацию биологических трансплантатов невозможно, поэтому гарантией профилактики инфицирования является соблюдение правил асептики при заборе органов или тканей.

«ИНСТРУКЦИЯ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ПЕРЕВЯЗОЧНЫХ МАТЕРИАЛОВ. РД 64-051-87»

ИНСТРУКЦИЯ
КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ
ПЕРЕВЯЗОЧНЫХ МАТЕРИАЛОВ
РД 64-051-87
Дата введения 1 июля 1988 г.
1. Общие
положения
1.1. Настоящая инструкция
устанавливает требования к помещению,
подготовке персонала и инструментов к
работе, отбору проб, методике посева и учету
результатов при контроле стерильности
перевязочных материалов, а также составу и
качеству питательных сред.
Инструкция
распространяется на все производственные
объединения и предприятия химико —
фармацевтической и других отраслей
промышленности, выпускающей
стерилизованные перевязочные материалы.
1.2. Контроль стерильности проводит
бактериологическая лаборатория
предприятия, выпускающего перевязочные
материалы.
2. Мероприятия, обеспечивающие
асептические условия
при посевах
Контроль стерильности простерилизованной
продукции проводят в боксе при условиях,
исключающих возможность вторичной
контаминации.
2.1. Требования к помещению
для посева на стерильность.
2.1.1.
Лаборатория, в которой проводят контроль
перевязочных материалов на стерильность,
должна быть изолирована от
производственных помещений и оборудована
боксом.
2.1.2. Бокс должен иметь
предбоксник, отделенный от него
перегородкой с дверью и передаточным окном.
Площадь бокса должна быть достаточной для
проведения в нем бактериологических
исследований, но не менее 3 кв. м. Высота
потолков в боксе и предбокснике 2,5 м — для
удобства ежедневной влажной обработки.
2.1.3. Стены боксов и предбоксников должны
быть окрашены масляной краской или
выложены кафельной плиткой и не иметь
выступов, карнизов, щелей, трещин, пол
должен быть покрыт линолеумом или
плиткой.
Потолок и оборудование бокса с
предбоксником (боковые поверхности и ножки
столов, стеллажи, стулья) должны быть
выкрашены масляной краской. Рабочие
поверхности столов следует изготавливать
из водонепроницаемого,
кислотно-щелочеустойчивого, несгораемого
материала, не портящегося от обработки
кипятком и дезинфицирующими растворами
(оцинкованная жесть и др.).
2.1.4. Бокс
должен быть оборудован приточно-вытяжной
вентиляцией с избыточным давлением (с
преобладанием притока над вытяжкой). Обмен
воздуха в боксе должен быть не менее
десятикратного в час и подаваться
стерильным.
2.1.5. В боксе и предбокснике
для обеззараживания воздуха устанавливают
настенные и потолочные бактерицидные
облучатели на высоте не ниже 2 м от пола.
Мощность ламп не должна превышать 1 Вт
потребляемой от сети мощности на 1 куб. м
помещения при экранированном облучении и
2-3,5 Вт — при использовании неэкранированных
ламп. Через 1000 часов работы бактерицидные
лампы в облучателях следует заменить.
2.1.6. В боксах, предназначенных для
проведения контроля стерильности
перевязочных материалов, работы с живыми
культурами микроорганизмов не
допускаются.
2.2. Подготовка боксов,
инструментов и персонала к работе.
2.2.1.
Ежедневно перед работой помещение бокса и
предбоксника подвергают тщательной
влажной уборке. Потолок, стены, двери,
мебель, поверхности инвентаря протирают
стерильной ветошью или губкой, обильно
смоченной 3% раствором перекиси водорода с
0,5% моющего средства. Этим же раствором моют
пол. Расход дезинфицирующего средства: от 100
до 150 мл на 1 кв. м помещения.
при
отсутствии вышеуказанного
дезинфицирующего раствора производят
обработку свежеприготовленным 2% раствором
хлорамина.
В случае обнаружения в
воздухе споровых форм микробов или грибов,
протирание или орошение из гидропульта
проводят 6% раствором перекиси водорода с 0,5%
моющего средства из расчета от 150 до 200 мл на
1 кв. м помещения при протирании и 500 мл на 1
кв. м при орошении. Затем ветошью или губкой
удаляют излишнюю жидкость.
В конце
рабочего дня мебель, стены и пол в боксе и
предбокснике протирают стерильной тканью,
смоченной 3% раствором перекиси водорода с
0,5% моющего средства или 2% раствором
хлорамина.
В качестве моющих средств
добавляют Астру, Лотос и другие,
разрешенные Минздравом СССР к применению в
медицинской практике.
2.2.2. Перед
включением бактерицидных ламп в боксе
включают вентиляцию на время, достаточное
для полного обмена воздуха в нем.
2.2.3.
Все необходимые для работы материалы и
инструменты вносят в бокс не ранее, чем
через 45 минут после его обработки.
Контролируемые образцы перевязочных
материалов вносят в бокс последними.
Перед внесением образцов перевязочных
материалов в бокс в предбокснике протирают
их наружную оболочку салфеткой, смоченной
свежеприготовленным 3% раствором перекиси
водорода с 0,5% моющего средства.
Обработанные образцы раскладывают на столе
в боксе по порядку исследуемых номеров.
2.2.4. Перед началом работы в предбокснике и
боксе включают бактерицидные лампы на 1 час.
Во время внесения образцов и их обработки
лампы выключают. Затем лампы вновь включают
на 1 час. Работа в боксе может быть начата
через 30 минут после отключения ламп.
2.2.5. Для работы используют инструменты,
посуду и спецодежду, предварительно
простерилизованные в паровом
стерилизаторе. Металлические, стеклянные и
тканевые изделия обрабатывают при
следующем режиме: температура (132+/-2) град. С,
время стерилизационной выдержки 20 минут
или температура (120+2) град. С, время
стерилизационной выдержки 45 минут. Для
стерилизации изделий из резины следует
использовать второй из указанных режимов.
Во время работы в боксе вспомогательный
инструмент дополнительно обжигают в
пламени горелки. В процессе работы
инструмент заменяют новым стерильным
комплектом 2-3 раза.
2.2.6. Перед посевом
сотрудники лаборатории тщательно моют руки
теплой водой с мылом и щеткой, вытирают их
стерильным полотенцем. В предбокснике
надевают стерильные или обеззараженные
дезинфицирующим раствором (протирание
наружной поверхности и подошвы) тапочки,
стерильные халаты, шапочки или косынки и
марлевые маски. Руки протирают 70% этиловым
спиртом или надевают стерильные резиновые
перчатки.
2.2.7. В боксе воздерживаются от
разговоров, хождения из бокса и обратно до
окончания посева.
2.2.8. В процессе посева
в боксе регулярно проверяют обсемененность
воздуха. Для этого на рабочем столе
оставляют две открытые чашки Петри с
мясопептонным агаром (МПА) и агаризованной
средой Сабуро в течение 15 минут. Затем чашки
с МПА выдерживают в термостате при (30-35)
град. С в течение 48 часов, со средой Сабуро —
при температуре (20-25) град. С в течение 72
часов. Допускается рост не более трех
колоний неспорообразующих бактерий. При
обнаружении колоний спорообразующих
бактерий и плесневых грибов запрещается
проведение дальнейших работ в боксе без
дополнительной его обработки.
Результаты проверки обсемененности
воздуха должны быть зарегистрированы в
специальном журнале.
2.2.9. Постоянно
следует вести контроль стерильности
питательных сред, проверять надежность
стерилизации используемых для работы в
боксе инструментов, халатов.
3. Отбор проб
для контроля стерильности
3.1. Отбор проб
проводит представитель отдела
технического контроля (ОТК).
3.2. Образцы
перевязочных материалов отбирают на
контроль из разных мест стерилизатора с
учетом распределения температуры в
стерилизационной камере при паровом методе
стерилизации и дозы облучения при
радиационном методе.
Отбор проб
производят от каждой серии и не менее двух
раз в
различное время суток от
каждой партии простерилизованной
___
продукции по формуле 0,4 / n,
где n — количество изделий в серии
или
партии.
Серией называется число
изделий, простерилизованное паровым
методом за один цикл в одном стерилизаторе;
партией называется число изделий,
простерилизованных радиационным методом
за сутки.
При контроле стерильности
изделий, простерилизованных паровым
методом, пробы отбирают в количестве не
менее 24 упаковок от каждой серии. На
первичный посев направляют 6 упаковок, для
повторного контроля — 12 для арбитражного
хранения — 6 упаковок.
Максимальное
количество проб, отбираемых для первичного
посева при радиационном методе
стерилизации, 40.
При отборе проб для
контроля стерильности перевязочных
материалов, простерилизованных
радиационным методом, следует
руководствоваться таблицей.
Таблица
ОТБОР ПРОБ ДЛЯ КОНТРОЛЯ ПЕРЕВЯЗОЧНЫХ
МАТЕРИАЛОВ,
ПРОСТЕРИЛИЗОВАННЫХ
РАДИАЦИОННЫМ МЕТОДОМ
——————————T———————————-¬
¦Количество простерилизованных¦
Количество изделий (шт.) для ¦
¦
изделий (шт.) ¦ ¦
+—————T—————+———-T———-T————+
¦
в серии ¦ отбираемые
¦первичного¦вторичного¦арбитражного¦
¦ ¦ для ¦посева на¦посева на¦
хранения ¦
¦ ¦ контроля
¦стериль- ¦стериль- ¦ ¦
¦
¦ ¦ность ¦ность (ду-¦ ¦
¦
¦ ¦ ¦бликаты) ¦ ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦ 1 ¦ 2 ¦ 3 ¦ 4 ¦ 5 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
до 1000 ¦ 52 ¦ 13 ¦ 26 ¦ 13 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
2000 ¦ 72 ¦ 18 ¦ 36 ¦ 18 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
3000 ¦ 88 ¦ 22 ¦ 44 ¦ 22 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
4000 ¦ 100 ¦ 25 ¦ 50 ¦ 25 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
5000 ¦ 112 ¦ 28 ¦ 56 ¦ 28 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
6000 ¦ 124 ¦ 31 ¦ 62 ¦ 31 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
7000 ¦ 136 ¦ 34 ¦ 68 ¦ 34 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
8000 ¦ 144 ¦ 36 ¦ 72 ¦ 36 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦
9000 ¦ 152 ¦ 38 ¦ 76 ¦ 38 ¦
+—————+—————+———-+———-+————+
¦10000 и больше¦ 160 ¦ 40 ¦ 80 ¦ 40
¦
L—————+—————+———-+———-+————-
При отсутствии роста в первичных посевах,
дубликаты, предназначенные для повторного
контроля, подлежат реализации.
4.
Методика посева на стерильность
Контроль стерильности перевязочных
материалов проводит бактериолог при
участии помощника, используя стерильные
инструменты: ножницы, пинцеты, иглы и др.
4.1. Посев ваты.
Помощник разрезает
ножницами оболочку пакета по его длине и
осторожно освобождает ролик ваты от
оболочки. Поддерживая за конец ватного
ролика, помощник осторожно отделяет
наружный пласт ролика и начинает медленно
его разматывать, чтобы отворачиваемый слой
ваты опускался вниз. В процессе
разматывания пласт ваты обращен внутренней
поверхностью к засевающему. Бактериолог
производит посев при помощи ножниц,
пинцета, иглы и других инструментов,
отрезая небольшой кусочек ваты массой
около 1 г из того места, от которого только
что отошел отворачиваемый пласт.
Отрезанный кусочек ваты переносят с
соблюдением асептических условий в
пробирку, колбу или флакон с питательной
средой. Перед взятием каждого следующего
кусочка отворачивают пласт. Размер кусочка
должен соответствовать диаметру пробирки,
горловины колбы или флакона. Таким
способом, постепенно разматывая ролик ваты,
можно выбрать пробы из любых мест пакета. Из
каждого пакета засевают 4 пробы: две из
поверхностного слоя и две из глубокого
слоя.
На пробирках, колбах или флаконах
с посевами указывают наименование
перевязочного материала, номер серии или
партии. Пробирки с посевами помещают в
штативы или металлические емкости, а колбы
и флаконы — в лотки, на которых указывается
дата посева и дата окончания инкубации
посевов.
4.2. Посев бинтов.
При
исследовании бинтов помощник держит пакет
за левый край и с помощью пинцета или ножниц
делает разрез пергаментной оболочки и
снимает ее правую половину. Бактериолог
производит посев, отрезая кусочек бинта
размером 2 см с торцовой части от нескольких
слоев. Отрезанный кусочек переносят, с
соблюдением правил асептики, в пробирку,
колбу или флакон с питательной средой.
Помощник берет рукой использованную часть
бинта, с помощью пинцета снимает левую
часть оболочки, а бактериолог делает срез с
торцовой части бинта от нескольких слоев и
также производит посев на питательную
среду. Помощник пинцетом вытягивает
внутреннюю часть бинта длиной от 20 до 30 см, а
бактериолог производит срез и посев, затем
помощник повторно вытягивает внутреннюю
часть бинта длиной от 20 до 30 см, от которой
бактериолог производит срез и посев.
4.3.
Посев марлевых салфеток.
Марлевые
салфетки исследуют так же, как и бинты, с той
лишь разницей, что после взятия проб с
торцов пакета помощник осторожно
развертывает пакет для взятия проб из
глубинных его частей. В дальнейшем
поступают так же, как и при посеве ваты.
4.4. Посев ватно — марлевых изделий.
Держа пакет за левый край, помощник
пинцетом или ножницами делает разрез
пергаментной оболочки и снимает ее.
Бактериолог вырезает кусочек бинта и
марлевых подушечек с торцовой стороны и
тотчас их засевает. Помощник берет за
использованную часть пакета и снимает
часть оболочки. Бактериолог делает срез
кусочка бинта и ватных подушечек левой
торцовой части пакета и засевает. Затем
помощник осторожно развертывает пакет для
взятия проб из глубокой части ватно —
марлевых подушечек. В дальнейшем поступают
так же, как при посеве ваты.
4.5. Посев
мелких изделий.
Мелкие изделия
(турунды, тампоны и др.) при посеве в
пробирки, колбы или флаконы с питательными
средами погружают целиком.
4.6. Для
контроля стерильности перевязочных
материалов применяют универсальную
полужидкую тиогликолевую среду и жидкую
среду Сабуро. Одновременный посев проб
образцов на две среды обязателен.
Количество среды в пробирках, колбах или
флаконах должно быть достаточным для
полного погружения засеваемых проб
образцов.
4.7. Посевы на тиогликолевой
среде выдерживают в термостате при
температуре (30-35) град. С, на среде Сабуро —
при температуре (20-25) град. С. Посевы
инкубируют в термостате при
соответствующей температуре в течение 14
суток при контроле изделий,
простерилизованных радиационным методом.
Изделия,

ПРИКАЗ ГУЗМ ОТ 29.06.1988 n 428″ОБ УСИЛЕНИИ БОРЬБЫ С ГЕЛЬМИНТОЗАМИ В Г.МОСКВЕ»
 »

Медицинское законодательство »

Стерилизация перевязочного материала и операционного белья.

⇐ ПредыдущаяСтр 2 из 35Следующая ⇒

Перевязочный материал готовится из марли. Марля — это обезжиренная хлопчатобумажная ткань, обладает гигроскопичностью и выраженной ка­пиллярностью. Из марли готовят салфетки (большие и малые), шарики, турунды. Большие салфетки связывают по 10 штук для удобства их подсчета во время полостных операций. Операционное белье — это халаты, колпаки, простыни, полотенца, пеленки, изготовленные из хлопчатобумажной тка­ни. Во многих клиниках применяются комплекты операционного белья од­норазового использования, прошедшего стерилизацию в заводских услови­ях у-лучами. Для многократного применения белье после использования подвергается стирке.

Перевязочный материал после использования сжигается.

Перед стерилизацией перевязочный материал и операционное белье укладывают в биксы (рис. 5).

Рис.5 . Стерилизационные биксы Шиммельбуша.

а – бикс подготовлен к стерилизации

б – после стерилизации

Укладка может осуществляться одним из следующих способов.

• Универсальная укладка — бикс условно разделяют на сектора и каж­дый сектор заполняют определенным видом материала или белья.

• Целенаправленная укладка — в бикс укладывают все необходимое для выполнения малых операций и манипуляций (для трахеостомии и т.д.).

• Видовая укладка — используется в клиниках, где одновременно начи­нают работу несколько операционных. При этом способе укладки один бикс заполняется каким-то одним видом материала, другой — халатами, третий — простынями и т.д.

В центр биксов помещают тесты для контроля стерильности. Стерилизация производится в автоклавах паром под давлением. Биксы заполняют перевязочным материалом и операционным бельем, открывают боковые отверстия и загружают в предварительно подогретую стерилизационную камеру автоклава (рис. 6).

Рис.6 . Автоклавы для стерилизации паром под давлением

а – вертикальный б – горизонтальный в — с загрузкой

Автоклав состоит из двух металлических цилин­дров разного диаметра, входя­щих один в другой, свободное пространство между ними че­рез водомерное стекло запол­няется водой. Внутренний ци­линдр — стерилизационная ка­мера — заполняется стерилизу­емым материалом в биксах, в упаковках из хлопчатобумаж­ной ткани или крафт-бумаги. Водопаровая камера оборудо­вана термометром, маномет­ром и предохранительным ав­томатическим клапаном, кото­рый срабатывает при нараста­нии избыточного давления в стерилизационной камере.

Стерилизация перевязочного материала и операционного белья может проводиться в следующих режимах: при давлении 2 атм — 20 мин (температура 132,9^оС).

После окончания стерилизации биксы остаются некоторое время в го­рячем автоклаве для просушки их содержимого при приоткрытой дверце автоклава. Перед выгрузкой биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках бикса, отмечают дату стерилизации на бирке, прикрепленной к ручке бикса. В закрытом биксе перевязочный материал и операционное бе­лье сохраняют стерильность 72 ч.

В настоящее время в хирургических стационарах ЛПУ используют комплекты операционного белья одноразового назначения фирмы «Индикон — Н». В комплект хирургического белья входит: простыни, халаты, шапочки – колпаки, бахилы. Стерилизация обеспечена радиационным излучением со сроками годности 3 года с даты выпуска.

Использование хирургического белья одноразового назначения оказалось экономически значительно выгодным в сравнении с применением операционного белья многоразового пользования.

Студентам предлагают отработать друг на друге технику одевания хирургических халатов, шапочек, колпаков и масок, соблюдая «условно» стерильность (рис. 7).

Рис.7 . Одевание стерильного халата.

Профилактика операционного персонала от СПИДа (синдрома приобретенного иммунодефицита).

I. 1. Хирург работает в халате с длинными рукавами. На предплечья одевают клеенчатые или из спецматериала нарукавники.

2. На кисти одевают 2 пары перчаток.

3. Лицо прикрывают защитным экраном или одевают очки.

II. Если кровь попадает на тело хирурга, необходимо обработать место попадания ее 3% раствором хлорамина или 3% раствором пероксида водорода, или 70% спиртом.

III. При попадании капель крови в глаз его промывают 0,05% раствором перманганата калия, затем 30% раствором альбуцида, чтобы вызвать слезотечение и смыть кровь с вирусом.

IV. Инструменты, бывшие в контакте с ВИЧ-инфицированным лицом, обрабатываются 3% раствором хлорамина 1 час или 3-4% раствором пероксида водорода в течение 1,5 часа.

Приложение 2

СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИ

Задача 1.

В операционную доставлено в биксах операционное бельё. Операцион­ная медсестра обнаружила, что бельё влажное, бензойная кислота в ампуле в порош­кообразном состоянии, т.е. признаки того, что бельё оказалось нестерильным. Назо­вите возможные ошибки при автоклавировании белья, учитывая, что стерилизация проводилась в течение 20мин при давлении в 2 атм.(t 134°С).

Задача 2.

Операционная медсестра получила задание заложить в биксы перевя­зочный материал для аппендэктомии. Сестра уложила в биксе 8 простыней. Какой вид укладки бикса использовала медсестра? Правильно ли она выполнила задание?

Задача 3.

При ремонте операционной установили два вытяжных вентилятора выше уровня пола.

Правильно это или нет? Какая должна быть вентиляция в операционной?

Задача 4.

Хирург выполняет перевязку гнойной раны. При перевязке использует стерильные инструменты, но работает без перчаток. Рукава халата не закатил, но застегнул на уровне запястий. Надел марлевую маску, но не завязал нижние тесемки.

Какие ошибки допущены хирургом? Являются ли эти ошибки нарушением правил асептики или антисептики? К каким последствиям может привести каждая из допущенных ошибок?

Задача 5.

В операционной температура воздуха 16°С, влажность 45%. Можно ли выполнять операцию. Если нет, то почему?

Задача 6.

В бикс постелили пеленку и плотно уложили по секторам перевязочный материал. Отвернутыми концами пеленки прикрыли его сверху. По средине на пеленку положили ампулу с бензойной кислотой и бикс закрыли. На бирке указали необходимые данные, отверстия в биксе открыли и отправили его в автоклавную.

Укажите, какие ошибки были допущены при подготовке бикса с перевязочным материалом к стерилизации?

Задача 7.

Бикс с перевязочным материалом стерилизовали в автоклаве при 2 атм. в течение 20 мин. После извлечения бикса и его полного охлаждения отверстия в нем закрыли.

Укажите, были ли допущены ошибки в процессе стерилизации и после ее окончания?

Приложение 3

ТЕСТЫ

1. Укажите основоположника асептики
   1. Н.И.Пирогов, 2. Э.Бергман*. 3. Н.В.Склифософский . 4.И.В.Буяльский.
2. Дайте определение асептики
   1. Комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания инфекции в рану, ткани и организм больного. *
   2. Комплекс мероприятий, направленных на борьбу с инфекцией в организме человека.
3. Верна ли формулировка основного закона асептики: всё, что соприкасается с раной, должно быть стерильным
   1. Да *. 2. Нет
4. Асептика — это комплекс
   1. Профилактики хирургической инфекции *
   2. Лечения последствий хирургической инфекции
   3. Стерилизации
   4. Дезинфекции
5. Включает ли понятие асептики следующие положения:
   1. Профилактика воздушно-капельной инфекции *
   2.Профилактика контактной инфекции *
   3. Профилактика имплантационной инфекции *
   4.Создание гнотобиологической изоляции *
6. Укажите источники хирургической инфекции
   1. экзогенный * 2. имплантационный 3. контактный
   4. эндогенный * 5.воздушно- капельный
7. Кто предложил и научно обосновал асептику как метод предупреждения попадания инфекции в рану:
   1. Листер. 2. Пастер. 3. Бергман *. 4. Земмельвейс. 5. Шиммельбуш *.
8. Пути инфицирования ран экзогенной инфекцией:
   1. Воздушный *. 2. Лимфогенный. 3. Капельный *.
   4. Имплантационный *. 5. Контактный *.
9. Стерилизацией называется
   1. Полное уничтожение микроорганизмов. *
   2. Уничтожение микроорганизмов.
   3. Уничтожение патогенных микроорганизмов
   4. Обработка инструментов антисептиками.
   5. Обработка инструментов температурой.
10. Источником экзогенной инфекции может быть:
    1. Другой больной с гнойно-воспалительными заболеваниями. *
    2. Бациллоноситель. *
    3. Животные. *
    4. Хронический воспалительный процесс в организме больного (тонзиллит, кариес и др.)

ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ

«Ставропольский государственный медицинский университет»

Министерства здравоохранения Российской Федерации

Кафедра Общей хирургии

«Утверждаю»

заведующий кафедрой

______________________

« »_________________ 20__

МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА

к практическому занятию

для студентов

3 курса специальности 060101.65 Лечебное дело

по учебной дисциплине Общая хирургия

Тема №4. Асептика

Занятие № 6 Асептика

Обсуждена на заседании кафедры

« » _______________2013

Протокол №___

Методическая разработка составлена

Асс. Тотфалушиным А.А.

« » ____________________ 2013

г. Ставрополь, 2013

Тема №4Асептика

Занятие №6 Асептика

Учебные вопросы занятия:

1. Хирургические инструменты, стерилизация, уход за ними. Оптические приборы, перчатки.

2. Методы контроля стерильности.

3. Подготовка рук персонала к операции. Подготовка операционного поля.

Место проведения занятия:

— учебная комната, перевязочная, операционная;

Материально-лабораторное обеспечение:

— тематические больные, готовящиеся к операции;

— тематические больные, перенесшие операции;

— таблицы, набор хирургических инструментов, шовного материала, биксы с операционно- перевязочным материалом и мешки с операционным бельём, различные виды резиновых изделий и оптические инструменты (цистоскопы, стоматологиче­ское зеркало и др.).



IELTS Writing Task 2 Образец 393

IELTS Writing Task 2 Образец 393 — Научные исследования должны проводиться и контролироваться правительством

Подробности

Последнее обновление: четверг, 15 февраля 2018 г. 20:48

Автор: IELTS Mentor

Хиты: 60739

IELTS Writing Task 2 / IELTS Essay:

На это задание нужно потратить около 40 минут.

Многие люди считают, что научные исследования должны проводиться и контролироваться государством, а не частными компаниями.

Насколько вы согласны или не согласны с этим мнением?

Обоснуйте свой ответ и включите соответствующие примеры из собственных знаний и опыта.

Вы должны написать не менее 250 слов.

Образец ответа:
По мнению многих, важные научные исследования должны осуществляться не частными компаниями, а правительственными органами. Я лично считаю, что частным компаниям следует предоставить свободу проведения исследований, но при достаточном и надлежащем контроле со стороны государства.

С одной стороны, это правда, что научные исследования не должны проводиться только государством. Основная причина в том, что объем научных исследований разнообразен и широк, и частные компании могут скрывать некоторые исследования, которые не проводятся правительством. Многие частные учреждения или открытия отдельных лиц полезны для человечества, поскольку мы можем извлечь уроки из прошлого. Например, Томас Альва Эдисон был индивидуальным изобретателем, который внес большой вклад в мир своими изобретениями, такими как лампа накаливания, кинофильмы, фонограф и так далее.Мы должны заметить, что изобретение не было основным направлением правительственных исследований в то время, и благодаря Эдисону у нас есть электрический свет сегодня.

С другой стороны, хотя частным компаниям дано право проводить научные исследования, они должны находиться под строгим контролем правительства. Их необходимо контролировать, поскольку некоторые из них могут делать это ради своей денежной выгоды или ради разрушительного оружия. Например, некоторые компании могут сосредоточиться на разработке биохимического оружия, и это может угрожать миру во всем мире.Задача правительства — предотвращать и блокировать подобные исследования.

В заключение я не согласен с тем, что научные исследования должны проводиться только правительствами. Это факт, что объем научных исследований огромен. Поэтому частным компаниям должно быть разрешено проводить исследования. Тем не менее, я согласен с тем, что исследования, проводимые частными компаниями, должны анализироваться и контролироваться правительствами во избежание незаконного присвоения.

[Автор — Дарвин]

IELTS Essay Тема: Многие люди считают, что научные исследования должны проводиться и контролироваться государством, а не частными компаниями.

Насколько вы согласны или не согласны с этим мнением?

Модель Ответ 2:
Нельзя отрицать, что научное исследование является обязательным для развития страны в современном мире. Однако не менее важно иметь контроль над тем, кто может проводить такие исследования. В большей степени я согласен с тем, что правительство должно иметь преимущество, когда дело доходит до проведения научных исследований, поскольку они, как правило, больше ориентированы на людей.

Существуют различные причины, почему так важно иметь государственные исследовательские проекты.Начнем с того, что когда исследования проводятся правительством, мотивом всегда являются люди, а не деньги. В результате этот процесс становится более прозрачным, а необходимость инвестировать в качественные исследования, приносящие пользу широкой общественности, также возрастает.
Кроме того, правительство должно быть более ответственным и полностью подотчетным, когда дело доходит до инвестирования государственных денег в такие исследования.

Напротив, частные организации не ориентированы на людей и склонны вкладывать средства в более прибыльные исследовательские проекты.Кроме того, если финансирование поступает от одной и той же организации, результаты также могут быть смещенными, чтобы обеспечить благоприятный исход для финансирующего учреждения. Например, компании, производящие лекарственные препараты, по закону обязаны проходить строгие испытания, на завершение которых может уйти несколько лет. Поскольку частные компании вкладывают в такие исследования единовременную сумму денег, для них нецелесообразно ждать более длительного пребывания в должности для достижения ожидаемых результатов. Следовательно, существует более высокая вероятность того, что качество будет поставлено под угрозу, чтобы сделать исследование успешным.

В заключение, проведение и контроль научных исследований является спорным вопросом, поскольку прозрачность и открытость имеют решающее значение для качественного исследования. Несомненно, это возможно только в том случае, если это делается некоммерческой организацией, такой как правительство.

[Автор — Дипак]

.

Полицейский словарь | Английский для работы

На этой странице из раздела «Английский для полиции» перечислены языки, которые необходимы полиции в англоязычном контексте. Каждое слово показано с его контекстным значением и примером предложения.

.