Подготовка и стерилизация инструментария: Стерилизация инструментов и перевязочного материала

Содержание

Стерилизация хирургических инструментов — презентация онлайн

1. Стерилизация хирургических инструментов

СТЕРИЛИЗАЦИЯ
ХИРУРГИЧЕСКИХ
ИНСТРУМЕНТОВ

2. Методы стерилизации хирургических инструментов

МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ
Стерилизация – это процесс устранения всех
форм жизни, в том числе и инфекционных
агентов (грибы, бактерии, споры, вирусы),
которые
присутствуют
на
поверхностях,
содержатся в жидкостях.

3. Методы стерилизации хирургических инструментов

МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ
Подвергаться обязательной стерилизации
должны:
— предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран,
имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами
— диагностическая аппаратура, которая соприкасается со
слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

4. Методы стерилизации хирургических инструментов

МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ
Стерилизация инструментов – первый шаг на операции
Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них
вазелин, и проверяют их исправность.
Инъекционные иглы после удаления смазки промывают
эфиром или спиртом.
Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели,
гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или
в разобранном виде.
Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для
предохранения от затупления.

5. Алгоритм стерилизации хирургического инструментария

АЛГОРИТМ
СТЕРИЛИЗАЦИИ ХИРУРГИЧЕСКОГО ИНСТРУМЕНТАРИЯ
І этап — подготовительный. Цель — подготовка
инструментов к стерилизации.
ІІ этап — основной. Цель — собственно стерилизация.
Проводят замачивание инструментария в моющем растворе, мытье в
моющем растворе с помощью щеток, тщательное промывание проточной
водой, ополаскивание дистиллированной водой, высушивание;
Стерилизация инструмента осуществляется горячими и холодными
методами.
ІІІ этап — заключительный. Цель — контроль
качества стерилизации.
Проводят с помощью химических индикаторов, которые отображают
уровень необходимой для стерилизации температуры, которые
закладываются в шкаф вместе с инструментом, или бактериологическим
методом — проводят посев из инструментов на питательную среду.

6. Методы, средства и режимы стерилизации

МЕТОДЫ, СРЕДСТВА И РЕЖИМЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ
Выбор того или иного метода стерилизации
конкретных изделий зависит от особенностей изделия
и самого метода – его достоинств и недостатков.
Самые распространенные методы – паровой и
воздушный.

7. Горячие методы стерилизации

ГОРЯЧИЕ МЕТОДЫ
СТЕРИЛИЗАЦИИ

8. Паровой метод стерилизации

ПАРОВОЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Стерилизующий агент – горячий пар под
давлением. Для этого метода используют
автоклав.
Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумагаламинат, бязь.
Материалы: полимеры, стекло, латекс,
ткань, коррозийностойкие металлы.
Достоинства: высокая проницаемость
пара, большой выбор упаковки, дольше
сохраняется стерильность, дешевый и
простой в использовании метод.
Недостатки:
увлажнение
изделий,
вызывает коррозию металлов.

9. Паровой метод стерилизации

ПАРОВОЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Работа автоклава контролируется показателями
манометра и термометра.
Существует три основных режима стерилизации:
при давлении 1,1 атмосферы — 1 час,
при давлении 1,5 атмосферы — 45 минут,
при давлении 2 атмосферы — 30 минут.

10. Воздушный метод стерилизации

ВОЗДУШНЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Стерилизация осуществляется в специальных
аппаратах — сухожаровых шкафахстерилизаторах.
Стерилизующий агент – сухой горячий
воздух (160-200oС).
Упаковки: крафт-пакеты, бязь.
Материалы: металл, текстильные изделия.
Достоинства: дешевый, простой метод, не
вызывает коррозии металла, не происходит
увлажнения упаковки и изделий.
Недостатки: ограниченный выбор упаковки,
медленное и неравномерное прогревание
изделий, необходимость использования более
высоких
температур,
невозможность
использовать материалы из резины, полимеров.

11. Воздушный метод стерилизации

ВОЗДУШНЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Инструменты укладывают на полки шкафастерилизатора и вначале высушивают в течение 30
минут при температуре 80°С с приоткрытой дверцей.
Стерилизация осуществляется при закрытой дверце в
течение 1 часа при температуре 180°С.
После этого при остывании шкафа-стерилизатора до 5070°С дверцу приоткрывают и при окончательном
остывании разгружают камеру со стерильным
инструментарием.

12. Обжигание и кипячение

ОБЖИГАНИЕ И КИПЯЧЕНИЕ
Обжигание в настоящее время в хирургической
клинике для стерилизации инструментов не
используется.
Обжигание металлических инструментов
проводится открытым пламенем.
Кипячение долгое время было основным способом
стерилизации инструментов, но в последнее время
применяется редко, так как при этом методе
достигается температура лишь в 100°С, что
недостаточно для уничтожения спороносных
бактерий.

13. Обжигание и кипячение

ОБЖИГАНИЕ И КИПЯЧЕНИЕ
Инструменты кипятят в специальных электрических
стерилизаторах различной емкости.
Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде)
укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно
добавление гидрокарбоната натрия — до 2% раствора).
Обычное время стерилизации — 30 минут с момента
закипания.
После окончания стерилизации сетку с инструментами достают
с помощью специальных стерильных ручек.

14. Холодные методы стерилизации

ХОЛОДНЫЕ МЕТОДЫ
СТЕРИЛИЗАЦИИ

15. Газовый метод стерилизации

ГАЗОВЫЙ
МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Для этого метода используют газовые
стерилизаторы.
Стерилизующий агент – формальдегид или
этилен-оксид.
Упаковки:
бумага-ламинат,
пергамент,
крафт-бумага.
Материалы: полимеры, стекло, металл.
Достоинства:
невысокая
температура,
использование любых материалов.
Недостатки: токсичность для персонала и
взрывоопасность при несоблюдении техники
безопасности,
продолжительный
цикл
стерилизации.

16. Газовый метод стерилизации

ГАЗОВЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
Отличительной чертой метода является его минимальное
отрицательное влияние на качество инструментария, в
связи с чем способ используют прежде всего для
стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих
инструментов.

17. Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация)

РАДИАЦИОННЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
(ЛУЧЕВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ)
Радиационный метод необходим
для стерилизации изделий из
термолабильных материалов.
Стерилизующий агент – ионизирующие γ и
β излучения.
Упаковки: помимо бумажных используют
пакеты из полиэтилена.
Достоинства:
надолго
сохраняется
стерильность в упаковке.
Недостатки: дороговизна метода.
Радиационный
–
основной
метод
промышленной стерилизации. Используется
предприятиями, выпускающими стерильные
изделия однократного применения.

18. Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация)

РАДИАЦИОННЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ
(ЛУЧЕВАЯ СТЕРИЛИЗАЦИЯ)
Используются изотопы Со60 и Cs137.
Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной —
до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер
безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в
специальных помещениях и является заводским методом
стерилизации (непосредственно в стационарах она не
производится).
Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в
герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется
до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и
использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку).

19. Стерилизация растворами антисептиков

СТЕРИЛИЗАЦИЯ РАСТВОРАМИ АНТИСЕПТИКОВ
Стерилизация растворами химических антисептиков не
приводит к затуплению инструментов, в связи с чем
применяется для обработки прежде всего режущих
хирургических инструментов.
Для стерилизации в основном используют три раствора:
тройной раствор*,
70° этиловый,
6% перекись водорода.
В последнее время для холодной стерилизации оптических
инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина,
первомур и другие.
Тройной раствор:
карболовая кислота — 3 г,
формалин — 20 г,
сода — 15 г,
вода — 1000 мл.

20. Стерилизация растворами антисептиков

СТЕРИЛИЗАЦИЯ РАСТВОРАМИ АНТИСЕПТИКОВ
Для холодной стерилизации инструменты полностью
погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из
указанных растворов.
При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты
считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода
— через 6 часов.
Считаю этот метод самым оптимальным для использования
«в поле».

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ — Med24info.com

Обработка всех инструментов включает в себя последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и непосредственно стерилизации. Вид и объем предстерилизационной обработки определяется степенью инфицированности инструментов, а способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.

а) Предстерилизационная подготовка

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.

Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и в группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения СПИДа, правила предстерилизационной подготовки ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения вируса иммунодефицита человека. Следует отметить только, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других.

Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняются в перчатках!

Обеззараживание

Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих

средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обеззараживания инструменты промываются проточной водой.

Мытье

Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде.

Высушивание

Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

б) Собственно стерилизация

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы:

металлические (режущие и нережущие),

резиновые и пластмассовые,

оптические (рис. 2.7).

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ

т

шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки, зоиды, пластинки, винты, стержни и пр.

скальпели, ножницы, хирургические иглы, ампутационные ножи и пр.

катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.

лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.

Рис. 2.7

Основные виды хирургических инструментов

Стерилизация нережущих металлических инструментов

Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов

Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств.

Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков.

В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.

Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов

Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто- клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком метода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут.

Пластмассовые изделия разового использования, а т^кже катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации.

Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при

5 атм. — 15-20 минут.

В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следующий прием: хирург надевает перчатки и в течение 5 минут обрабатывает их тампоном, смоченным 96° этиловым спиртом.

После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают шариком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины.
Стерилизация оптических инструментов

Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноско- пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс — двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).

Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

Стерилизация различных видов хирургических инструментов

Хирургические инструменты изготавливаются из прочной стали, которая не поддается деформации и коррозии со временем. По видам инструменты делятся не категории:

гинекологический;
гейрохирургический;
офтальмологический;
оториноларингологический;
патологоанатомический;
травмотологический;
реаниматологический;
микрохирургический;
стоматологический;
транспотологический;
урологический.

По конструкции хирургические приборы могут быть ручными и механизированными. А по функциональности разделяются: колющие, оттесняющие, расширяющие, режущие, зажимные, зондирующий и бужирующие.

Изготавливают хирургический инструмент из инструментальной углеродистой стали, покрытой хромом или никелем, нержавеющей стали, титана и латуни.

Этапы стерилизация инструментов

Используя специальное медицинское оборудование, проводится стерилизация хирургических инструментов. Процесс занимает несколько этапов:

Предстерилизация. Инструмент очищается механическим путем, с него убираются все загрязнения, удаляются пирогенные вещества, уничтожается вирус гепатита. По сути, данный этап состоит из обеззараживания, мытья, высушивания и дезинфекции. Бывшие в применении инструменты погружают в емкость с дезинфицирующей жидкостью (хлорамин, перекись водорода, аналит, полидез, инкрасепт, дезавит). В зависимости от выбранной дезинфицирующей жидкости процесс может занимать от 30 до 60 минут.
После этого проводится промывка инструмента с использованием специального раствора, в который входит вода, перекись и моющее средство. Раствор нагревают до 60 градусов и кладут в него приборы на 20 минут, затем тщательно вымывают щетками и промывают в проточной воде.
После всех манипуляций инструменты высушивают естественным способом либо кладут в сухожаровой шкаф на полчаса, установив температуру 80 градусов. После очистки инструмента, его тщательно проверяют на повреждения и деформацию, а также на остатки загрязнений. Проверка на остатки загрязнений проводится с помощью азопирановой пробы, для которой в равных частях смешивают перекись водорода и азопират. При попадании раствора на инструменты он меняет цвет:
Если обнаружена кровь, то раствор приобретает фиолетовый цвет, постепенно переходящий в сиренево-розовый оттенок.
При остатках моющего средства или ржавчины – окрашивается в бурый цвет.

Те инструменты, на которых были обнаружены загрязнения, относят повторно на предстерилизацию. Остальные приборы отправляются на стерилизацию, вид которой зависит от вида инструмента.

Главным правилом для стерилизации является полное уничтожение патогенных микроорганизмов, а также недопущение порчи инструмента.

Во время процедуры, хирургические приборы разделяются на группы:

металлические;
резиновые;
пластиковые;
оптические.

Для стерилизации металлических инструментов применяют стерилизаторы суховоздушные или автоклаву. Дезинфекция проводится под воздействием высоких температур на протяжении длительного времени.

Для металлических режущих инструментов может применяться химическая стерилизация с использованием антисептических растворов либо газовая обработка, так как под высокой температурой приборы могут затупляться и быстро приходить в негодность.

Пластмассовые и резиновые инструменты, включая перчатки, отправляют в автоклав. Зонды и катетеры на лучевую обработку, но чаще всего их используют одноразово.

Оптические инструменты, используемые в операционных очень дорогие и сложные приборы, поэтому с ними при обработке обращаются очень осторожно. Наилучшим способом для их очистки является газовая обработка либо холодный метод стерилизации, с применением антисептиков химического происхождения (хлоргексидин, формалин, хлорамин и спирт этиловый).

В зависимости от вида стерилизации осуществляется подготовка инструментов. Во время обработки приборов в сухожаровом шкафу, их помещают в коробки стерилизационные либо раскладывают одним слоем на металлической сетке. Шприцы обязательно заматываются плотной бумагой.

При стерилизации в автоклаве приборы заворачивают в ткань и размещают в металлических коробах. Шприцы обязательно разбирают на цилиндры и поршни и после обертывания тканью улаживают в бикс. Перчатки резиновые перед обработкой пересыпают тальком внутри и снаружи, чтобы предотвратить их слипание, складывают парами и кладут в бикс.

Во время проведения стерилизации четко придерживаются температурного режима. После обработки все инструменты хранят в специально оборудованном помещении на протяжении 48 часов в специальных биксах. Если в течение этого времени приборы не были использованы либо бикс был вскрыт, то их отправляют на повторную стерилизацию.

Для быстрой обработки инструментов во многих медицинских учреждениях применяют кипятильники электрические, которые имеют компактный размер, но вмещают в себя достаточное количество приборов. При использовании данного оборудования, следует обязательно провести его заземление.

основные методы. Основные этапы стерилизации

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые,

оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов

Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Стерилизация режущих металлических инструментов

Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180- 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным. Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды. Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде.

Стерилизация хирургических инструментов

хирургический автоклавирование антисептический

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды — стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов — 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180 — 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты — 3 части, едкого натра — 15 частей, формалина — 20 частей, дистиллированной воды — 1000 частей; формалина — 20 частей, фенола чистого жидкого — 1,5 части, карбоната натрия — 7,5 части, воды дистиллированной — 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация — суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами — в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6-8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) — 100 г., нашатырного спирта — 50 мл, воды — 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части — контрольные стекла и капельницы — промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно — проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30-40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, так как они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей — интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок — осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида, водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5-2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15-30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части — переходные трубки, щипцы, зубные распорки — стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением.

Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30-40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов — производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке. Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде — 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150-160° — 1 час. Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.

Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12-24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.

Часто применяют модификации способа Кохера.

1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№0-4 в течение 15 мин., №5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.

Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала — кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№0-1 на 30 сек., №2-5 на 1 мин., №6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке — 40 г., в 5-литровой банке — 60 г.). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным №0-1 — через 3 суток, №2-4 — через 4 суток, №5-6 — через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г. чистого йода и 10 г. калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.

Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г. йода и 10 г. калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г. калия йодида и 10 г. чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток — в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

Этап 1 — предстерилизационная подготовка
. Ее цель — тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты тщательно моют про точной водой щетками в отдельной раковине в течение 5 мин (инструменты, загрязненные кровью, моют сразу, не допуская высыхания крови) и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 50вС. Шприцы обрабатывают в разобранном виде.
Состав моющих растворов: раствор А — пергидроля 20 г, стирального порошка (типа «Новость», «Прогресс», «Астра» и др.) 5 г, воды 975 мл; раствор Б — 2,5% раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка «Новость» 5 г, воды 795 мл.
После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щетками (особенно тщательно обрабатывают замки, зубчики, насечки), затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 85 °С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.
Инструменты и шприцы, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно помешают в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике.
Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего средства (стиральный порошок), затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через 1 сут (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).
Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца теплой водой, а затем 1 % раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой.

После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8-12 ч — повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши. Иглы, загрязненные гноем, тщательно моют, просвет их промывают проточной водой; затем помешают на 1 ч в 5% раствор лизола, дополнительно промывая лизолом канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязненные гноем иглы.
Системы для трансфузии лекарственных веществ или крови требуют тщательной обработки для предупреждения посттрансфузионных реакций и осложнений. В современных условиях используют разовые системы для трансфузии, стерилизованные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают — разъединяют стеклянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку (для лучшего удаления остатков крови). Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60 °С специальный раствор, содержащий 1 % раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор нашатырного спирта. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно кипятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упаковывают для стерилизации.
Этап 2 — укладка и подготовка к стерилизации.
Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помешают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводских условиях.
Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных типичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для операций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заворачивают в простыню в виде пакета.
Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и заворачивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стерилизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (централизованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопчатобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, радом — иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заворачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.
Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладывают марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от дельный бикс.
Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2-3 колец, не допуская перегиба резиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем — в вафельное полотенце и укладывают в биксы.
Этап III — стерилизация.
Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 вС), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стерилизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80-85 °С и в течение 30 мин просушивают — удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), поддерживая ее автоматичес ки, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже ния температуры до 70-50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15-20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.
При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопасности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует открывать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70-50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.
Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки уложены в биксы, то их решетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что бы пар распределялся равномерно.
Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (температура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением применяется в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют стационарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стерилизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.
В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеганный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.
Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают кипятильник крышкой. Время стерилизации — 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операционном столе.
Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (кипячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний кипятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.
Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.
Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной температуре на 12-24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипячением в течение 1 ч (дробная стерилизация).

В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов
ни одним из указанных способов, используют метод обжигания В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрывоопасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар ной безопасности.
Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия обертывают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия в течение 10 мин, затем помешают в 96% этиловый спирт на 30 мин.
Этап IV — хранение стерильного материала.
Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Бели материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

ü 1 этап.
Дезинфекция.

Цель:
Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап.
Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель:
Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап.
Стерилизация.

Цель:
Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий:
Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.

ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85:
1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата:
можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает
есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с.
Этот метод используется для контроля СЭР
в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов.
Меняют цвет. При закладке светлые
– 120 0 С слегка песочного цвета
– 132 0 С светло-коричневые
– 180 0 С тёмно-коричневые
(почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ.
Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота
при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина
при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота
при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов.
Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120
– в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132
– в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180
– сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя.
М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача.
М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. — Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя.
М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают
не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так
, чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача.
М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. — Латексные.

ü Опудренные. — Неопудренные.

ü Диагностические. — Хирургические.

ü Стерильные. — Нестерильные.

Все перчатки д.б.
прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000.
Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции
1,5, 0,75, 2%, для стерилизации
8%.

ü Бланизол.
Для ПСО
ИМН, эндоскопов 1%
раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ.
Для дезинфекции
ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол.
Кожный антисептик
.

ü Хлорапин.
Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин.
Кожный антисептик
. Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение:
Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой
в направлении от себя
.

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню
. Развернуть в 1 слой
. Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола
, но не касалась пола.

ü 2 простынь
в 2 слоя
. Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см
.

ü 3 простынь
в 2 слоя
. Так, чтобы свисала с края стола на 10 см
.

ü 4 простынь
так же как 3
.

ü 5 простынь
в 1 слой
. Так, чтобы перекрыла край 2 простыни
.

ü Корнцанги
наложить на края 5 простыни
на уровне углов стола.

ü Поднимаем
простынь за корнцанги и складываем гармошкой
на дальнем конце стола в направлении от себя к себе
. Последнее направление на себя.Кладём
корнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3
. Складываем
гармошкой поверх корнцангов. Цапки
кладём кольцами друг к другу
.

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки
и перекрываем
. Берём корнцанги
иперекрываем
.

средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обеззараживания инструменты промываются проточной водой.

Мытье

Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде.

Высушивание

Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

б) Собственно стерилизация

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы:

металлические (режущие и нережущие),
резиновые и пластмассовые,
оптические (рис. 2.7).

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ

т

шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки, зоиды, пластинки, винты, стержни и пр.

скальпели, ножницы, хирургические иглы, ампутационные ножи и пр.

катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.

лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.

Рис. 2.7

Основные виды хирургических инструментов

Стерилизация нережущих металлических инструментов

Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов

Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хирурга свойств.

Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков.

В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.кже катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации.

Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наиболее часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным методом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при

5 атм. — 15-20 минут.

Стерилизация оптических инструментов

Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноско- пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс — двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).

Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

Подготовка и стерилизация инструментов и материалов, применяемых в искусственном осеменении сельскохозяйственных животных

КАБИНЕТ МИНИСТРОВ УКРАИНЫ

ЮЖНЫЙ ФИЛИАЛ «КРЫМСКИЙ АГРОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ» НАУУ

Кафедра хирургии и акушерства

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

для изучения темы:

„Подготовка и стерилизация инструментов и материалов, применяемых в искусственном осеменении сельскохозяйственных животных»

(для самостоятельной работы студентов факультета ветеринарной медицины, специальность 7.130.501. – «Ветеринарная медицина»)

Симферополь — 2006

Введение

В большинстве хозяйств пункты искусственного осеменения животных строят по типовым индивидуальным проектам. Они должны соответствовать основным ветеринарно-санитарным и зоотехническим требованиям. Типовой проект пункта имеет манеж, лабораторию, моечную комнату, помещение для хранения инвентаря и содержания животных после осеменения.

Пункт искусственного осеменения оборудуют электрическим освещением, паровым или водным отоплением, канализацией, обеспечивают теплой водой.

Помещение пункта должно быть сухим, светлым и теплым. Его периодически дезинфицируют горячим раствором щелочи или свежегашеной извести с последующим проветриванием. В лаборатории, стерилизационной и моечной комнатах устраивают бактерицидные лампы.

В своей работе техник искусственного осеменения животных руководствуется рекомендациями и инструкциями по осеменению животных, выполняет указания руководителей и специалистов хозяйства, племпредприятия.

Подготовка и стерилизация посуды и инструментов.

Инструменты, посуда и материалы для искусственного осеменения животных должны всегда быть чистыми, сухими и стерильными. Это важно для предотвращения загрязнения, инфицирования и гибели спермиев, а также профилактики инфекционных и инвазионных болезней.

Новую стеклянную посуду вначале моют водопроводной водой с мылом или специальными моющими средствами с помощью ерша, щетки, куском марли, навернутым на корнцанг (пинцет), куском поролона или движущимся ершом от электромотора. Затем ее погружают в раствор соляной кислоты (1 столовая ложка на 3 л дистиллированной воды) и выдерживают 24 ч. После этого посуду тщательно отмывают от раствора соляной кислоты проточной водой, а затем многократно дистиллированной водой и высушивают на доске с колышками.

Бывшую в употреблении стеклянную посуду (кроме цилиндров для отмеривания жидкостей) сразу же после использования моют в горячем 2-3%-ном растворе гидрокарбоната натрия, обильно ополаскивают чистой, а затем дистиллированной водой и высушивают.

Посуду, загрязненную желтком, синтетической средой с желтком или спермой, выдерживают 24 ч в хромовой смеси, затем многократно промывают с помощью ерша в проточной воде и несколько раз ополаскивают дистиллированной водой и сушат. Предметные и покровные стекла тщательно моют в теплой воде и насухо протирают марлевыми салфетками. Металлические инструменты моют теплым 2-3%-ным раствором двууглекислой соды, обмывают прокипяченной теплой водой и насухо вытирают чистым полотенцем или марлевой салфеткой.

Посуду, приборы и инструменты стерилизуют автоклавированием, кипячением, сухим жаром, фламбированием и спиртом.

Стерилизация в автоклаве.

В автоклаве стерилизуют чистые искусственные вагины, металлические инструменты и посуду. Халаты, полотенца, марлевые салфетки стерилизуют или гладят горячим утюгом перед употреблением. Стерилизацию вагин в автоклаве проводят в течение 20 мин нагретым паром под давлением 0,3 – 0,5 атм при температуре 1050С в течение 15-20 мин. Металлические инструменты, посуду и материалы автоклавируют под давлением 1,5 атм в течение 30-45 мин.

Стерилизация кипячением.

Этим способом стерилизуют стеклянную посуду, шприцы-катетеры и металлические инструменты. Шприцы-катетеры перед стерилизацией разбирают (вынимают поршень). Цилиндр обертывают марлей и прикрепляют к нему поршень. Каждый поршень шприца индивидуально притерт к цилиндру, и менять поршни нельзя. Склянки, банки и спермоприемники обертывают слоем ваты или марли. На дно стерилизатора (кастрюли) кладут слой ваты или марли, помещают на него шприцы, склянки, банки, спермоприемники, наливают воды на 2/3 объема стерилизатора, закрывают крышкой и кипятят 15-20 мин.

После остывания снимают крышку, стерильным пинцетом вынимают из стерилизатора инструменты и посуду и встряхивают. После остывания шприцы собирают и удаляют из них воду. Оставшиеся капли воды снимают стерильными марлевыми салфетками или удаляют промыванием 1 %-ным раствором гидрокарбоната натрия или 0,9 %-ным раствором натрия хлорида. Шприцы завертывают в стерильную бумагу или салфетку (проглаженные горячим утюгом), склянки закрывают стерильными бумажными колпачками, банки и спермоприемники – крышками.

Металлические инструменты (влагалищные зеркала, подставки для инструментов, пинцеты, ножницы и др.) следует класть в кипящую воду, в противном случае они быстро покрываются ржавчиной. Стерилизуют их 15-20 мин. Вынутые из кипящей воды горячие металлические инструменты быстро просыхают. Оставшиеся капли воды с инструментов удаляют стерильными марлевыми салфетками.

Стерилизация сухим жаром.

Стерилизация сухим жаром производится в электрическом сушильном шкафу при температуре 160 – 1800С или духовом шкафу газовой плиты. Сухим жаром стерилизуют чистую стеклянную посуду, шприцы-катетеры в разобранном виде и спермоприемники. Перед стерилизацией колбы, мензурки, мерные цилиндры закрывают бумажными колпаками, шприцы-катетеры завертывают в бумагу, с банок снимают притертые крышки.

Подготовленную посуду ставят в сушильный или духовой шкаф, нагревают до нужной температуры и стерилизуют в течение 45 мин. Затем шкаф отключают, дают ему остыть и вынимают посуду. Если шкаф не остудить, то при открывании дверцы на стеклянной посуде могут появляться трещины от резкого изменения температуры.

Стерилизация фламбированием (обжиганием).

Фламбированием стерилизуют (непосредственно перед употреблением) на пунктах искусственного осеменения чисто вымытые и сухие влагалищные зеркала, стеклянные спермоприемники, 100-граммовые широкогорлые банки, стеклянные палочки, ножницы, пинцеты, подставки для инструментов.

Для стерилизации фламбированием посуду и инструменты несколько раз проводят над некоптящим пламенем паяльной лампы, спиртовой или газовой горелки, примуса с двумя горелками или горящего спиртового тампона (смоченного 96 %-ным спиртом). Чтобы стеклянная посуда не давала трещин, ее обжигают осторожно, вначале нагревают над пламенем огня на расстоянии 15-20 см, а затем приближают к нему и равномерно обрабатывают со всех сторон. Чтобы огонь не обжигал руки, можно легкие стеклянные приборы и инструменты удерживать над пламенем с помощью пинцета.

Обеззараживание спиртом.

Для обеззараживания шприцев-катетеров и спермоприемников можно применять 70 %-ный спирт-ректификат с последующим удалением его остатков промыванием 5-6 раз 1 %-ным раствором натрия гидрокарбоната, 2,9 %-ным раствором цитрата натрия или 0,9 %-ным раствором натрия хлорида. Пинцеты, стеклянные палочки, термометры обеззараживают тампонами, пропитанными 96 %-ным спиртом.

Ультрафиолетовое облучение.

Применяют для обеззараживания полиэтиленовых перчаток, пипеток и других инструментов из полиэтилена.

Стерилизация вазелина.

Для смазывания резиновой камеры искусственной вагины используют стерильный белый или желтый вазелин. Для стерилизации вазелин накладывают в банку объемом 100-150 мл, неплотно закрывают крышкой, ставят в стерилизатор (кастрюлю) на слой ваты или марли (3-4 слоя), который заполняют холодной или теплой водой до уровня вазелина в банке. Воду нагревают до кипения и вазелин стерилизуют в течение 30 мин. После остывания банку с вазелином плотно закрывают стерильной крышкой. Вазелин стерилизуют ежедневно перед получением спермы.

Приготовление ватных тампонов.

Тампоны готовят из белой гигроскопической ваты круглыми, диаметром 6-7 см для жеребца, 5-6 см для быка и хряка и 3-4 см для барана. Чтобы тампон не разрывался и был прочным и тонким, берут небольшой участок ваты, делят на тонкие слои, оттягивают от краев тоненькие участки и не отрывая завертывают их концы за середину на противоположную сторону тампона так, чтобы нити ваты пересекались под прямым углом. Каждый тампон сдавливают между ладонями рук и складывают в крышку тампоницы, а затем увлажняют спиртом-ректификатом. Затем их отжимают с помощью пинцета или между чистыми ладонями и перекладывают в тампоницу (банку с притертой крышкой). Вместо спирта можно использовать 0,02 %-ный раствор фурацилина.

Тампоны, увлажненные спиртом, используют для обеззараживания рук, искусственных вагин, подставок для инструментов, внешней поверхности спермоприемников, инструментов для введения спермы, влагалищных зеркал, пинцетов, стеклянных палочек, термометров, скорлупы яиц, а также для обеззараживания металлических инструментов фламбированием.

Часто сухие ватные тампоны складывают в бумажные пакеты или стерильные стеклянные банки с бумажными колпаками и стерилизуют в сушильном шкафу при температуре 1300С полтора часа. Сухими стерильными тампонами снимают с инструментов остатки физиологического раствора, спирта, вазелина и т. д.

Приготовление марлевых салфеток.

Чистую марлю или белую ткань разрезают на участки размером 20х20, 30х30 или 40х40 см, подшивают края белыми нитями, стирают, складывают в четыре раза и помещают в обеззараженную банку с притертой крышкой. Салфетки можно стерилизовать сухим жаром.

Стерильные салфетки используют для прикрывания и завертывания стерильных инструментов (особенно при осеменении в летних лагерях), протирания оптики микроскопа, предметных и покровных стекол, высушивания искусственных вагин, снятия капель воды с приборов, инструментов и др.

Загрязненные салфетки стирают с мылом или в растворе моющего порошка, хорошо ополаскивают, сушат и гладят горячим утюгом.

Приготовление фильтров.

Фильтры готовят из чистой, стерильной фильтровальной бумаги. Стерильными ножницами разрезают бумагу на четырехугольные листы в соответствии с размером имеющейся воронки. Каждый лист перегибают и сближают два противоположных угла. В полученном большом треугольнике разглаживают основание по прямой. Затем сближают углы основания треугольника и разглаживают сторону малого треугольника. Раздвигают один слой бумаги малого треугольника и вкладывают фильтр в стеклянную воронку. После этого концы фильтра отрезают так, чтобы при вкладывании в воронку края его были на 0,5 см ниже края воронки. Воронку с фильтром помещают в горло колбы и осторожно выливают на фильтр раствор или воду. При фильтровании не следует допускать переливания жидкости выше краев фильтра. После фильтрования жидкость становится более прозрачной и свободной от различных механических примесей.

Физиологические растворы

Приготовление 2,9 %-ного раствора натрия лимонно-кислого (натрия цитрата).

На 100 мл прокипяченной и охлажденной до 800С дистиллированной воды берут 2,9 г натрия лимонно-кислого (натрия цитрата) трехзамещенного пятиводного химически чистого или чистого для анализа и разводят в колбе круговыми движениями до полного растворения.

Стерилизируют раствор натрия цитрата в кипящей водяной бане на протяжении 5-10 мин или подогревают до 90-950С. Готовят раствор ежедневно.

Часто станции искусственного осеменения готовят раствор цитрата натрия в ампулах или флаконах и отпускают хозяйствам вместе с замороженной спермой. Такой раствор стерилизуют автоклавированием в течении 30 мин при температуре 1080С и давлении 0,4 атм.

Цитрат натрия имеет слабощелочную реакцию и буферные свойства, он не токсичен для спермиев, нейтрализует молочную кислоту, которая накапливается в спермиях. Поэтому 2,9 %-ный раствор натрия цитрата используется при оценке качества спермы, ее размораживании, споласкивании спермоприемников, промывании инструментов для введения спермы и др.

Приготовление 1 %-ного раствора бикарбоната натрия.

Раствор готовят из расчета 1 г химически чистого натрия гидрокарбоната (натрия бикарбоната или пищевой соды – NаНСО3) на 100 мл прокипяченной и охлажденной до 40-450С дистиллированной воды. При температуре воды выше 600 натрий бикарбонат распадается, переходит в Nа2НСО3 и становится токсичным для спермиев. Водопроводная вода не пригодна для работы со спермой.

1 %-ный раствор натрия бикарбоната используют при оценке качества спермы, для увлажнения влагалищного зеркала, полиэтиленовых перчаток, промывания спермоприемников, инструментов для введения спермы и др. Готовят его ежедневно.

Приготовление 0,9 – 1 %-ного раствора натрия хлорида.

Раствор готовят из расчета 1 г химически чистого натрия хлорида (не йодированной соли) – NаСL на 100 мл прокипяченной дистиллированной воды. Можно брать таблетки натрия хлорида по 0,9 г каждая. После растворения соли раствор ставят на огонь и доводят до кипения.

Раствор натрия хлорида готовят ежедневно и используют, как исключение, при отсутствии натрия цитрата или бикарбоната натрия для увлажнения и промывания инструментов, посуды после стерилизации ее в кипяченной воде, удаляют остатки спирта из инструментов и спермоприемника, увлажняют влагалищное зеркало. Известно, что ионы хлора негативно влияют на спермии.

Растворы для обеззараживания

Приготовление 70 %-ного спирта.

70 %-ный этиловый спирт готовят из 950-ного или 960 этилового спирта-ректификата. Известно, что 70 %-ный спирт менее коагулирует белки и поэтому глубже проникает в протоплазму микробов и этим влечет их гибель. Для приготовления 100 мл 70 %-ного спирта необходимо в стерильный цилиндр налить 73 мл 960 этилового спирта-ректификата и долить 27 мл прокипяченной дистиллированной воды до метки 100 мл и перемешать стерильной стеклянной палочкой. Расчет на приготовление 100 мл 70 %-ного спирта проводят по такой пропорции:

96 % —— 100 мл

70 % —— х мл

где

70 х 100

х = ——————— = 72,8 мл

Крепость спирта может проверяться с помощью спиртометра. Его протирают спиртовым тампоном и аккуратно опускают в узкий цилиндр со спиртом, где он должен свободно плавать, не касаясь дна. Если же крепость спирта будет выше, тогда доливают необходимо количество воды.

70 %-ный этиловый спирт готовят на 2-3 дня, хранят в банке с притертой пробкой и используют для обеззараживания инструментов для введения спермы, спермоприемников, баночек, инструментов и приборов, особенно при роботе в летних лагерях. После обеззараживания инструментов и приборов остатки спирта убирают промыванием физиологическим раствором 5-6 раз.

Приготовление 0,02 %-ного (1:5000) раствора и 0,01 %-ного раствора фуразолидона.

Эти растворы готовят на 0,9-1 %-ном растворе натрия хлорида, дистиллированной или кипяченной воде из расчета 0,2 г фурацилина или 0,1 г фуразолидона на 1 л воды или раствора натрия хлорида.

Указанные растворы используют для промывания и обмывания препуция у самцов, обмывания наружных половых органов самок перед осеменением, мытья искусственных вагин, а также рук перед и после осеменения животных.

Растворы для мытья инструментов, посуды

Приготовление 2-3 %-ного раствора натрия бикарбоната или 1-1,5 %-ного раствора кальцинированной соды.

Эти растворы готовят в чистой эмалированной посуде из расчета 2-3 г натрия бикарбоната (двууглекислой соды, натрия гидрокарбоната, NаНСО3) или 1-1,5 г кальцинированной соды (натрий карбоната, двууглекислой соды, Nа2НСО3) на 100 мл горячей воды. Эти растворы используют для мытья искусственных вагин, влагалищных зеркал, посуды, инструментов, термосов, сосуда Дьюара, а также для обмывания кожи препуция у самцов и вульвы у самок перед осеменением.

Вымытые в горячем растворе соды инструменты, посуда и другие предметы обязательно споласкивают чистой горячей водой 5-6 раз, вытирают чистой салфеткой и обеззараживают.

Контрольные вопросы для проверки знаний

1. Какие санитарно-гигиенические требования необходимо выполнять при подготовке к работе материалов, растворов, инструментов и др?

2. Как приготовить ватные тампоны и для чего они используются?

3. Как приготовить 2,9 %-ный раствор натрия цитрата и для чего он используется?

4. Как приготовить 1 %-ный раствор натрия хлорида и для чего он используется?

5. Как приготовить 70 %-ный спирт этиловый и для чего он используется?

6. Как приготовить 2-3 %-ный раствор бикарбоната натрия и для чего он используется?

7. Какие растворы являются физиологическими для спермиев?

8. Какой концентрации готовят раствор фурацилина и фуразолидона и для чего они используются?

9. Как стерилизуют вазелин и для чего он используется?

10. Как подготовить предметные и покровные стекла для исследований спермы?

11. Как очистить загрязненную посуду, инструменты и подготовить их к работе для искусственного осеменения сельскохозяйственных животных?

12. Как проводят стерилизацию посуды, инструментов и других материалов кипячением?

13. Как проводят стерилизацию посуды, инструментов и других материалов в сушильном шкафу?

Литература

1. Валюшкин К. Д., Медведев Г. Ф. Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных.- Минск: Урожай, 1997 – 718с.

2. Звєрєва Г. В., Чухрай Б. М.. Довідник техніка по штучному осіменінню тварин.– К.: Урожай, 1987.

3. Смирнов І. В.. Штучне осіменіння сільськогосподарських тварин.– К.: Вища школа, 1982.

4. Смирнов І. В, Вінничук Д. Т., Денисенко М. Т., Шарапа Г. С.. Довідник по штучному осіменінню сільськогосподарських тварин.- К.: Урожай, 1980.

5. Шипилов В. С., Зверева Г. В., Родин И. И., Никитин В. Я.. Практикум по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению сельскохозяйственных животных.- М.: МО Агропромиздат, 1988.- 335с.

6. Яблонский В. А. Практичне акушерство, гінекологія та біотехнологія відтворення тварин з основами андрології.- К.: Мета, 2002.- 319с.

Подписано к печати «21» октября 2006г.

Формат 60х90 1/16. Бумага офсетная. Условн. печ. л. 1,5

__________________________________________________________________

Методические рекомендации подготовлены доцентом кафедры хирургии и акушерства, к. в.н. Саенко Н. В.

Рецензент, доцент кафедры эпизоотологии, паразитологии и ветсанэкспертизы ЮФ «КАТУ» НАУ, к. б.н. Полищук С. В.

Рекомендованы и одобрены на заседании кафедры хирургии и акушерства Южного филиала «КАТУ» НАУУ, протокол № 1, от «6» сентября 2006г.

Одобрены методической комиссией факультета ветеринарной медицины, протокол № 9, от «29» сентября 2006г.

Ответственный за выпуск: зав. кафедрой хирургии и акушерства Южного филиала «КАТУ» НАУУ, к. в.н., доцент Бамбуляк Н. Ф.

Стерилизация в хирургии

Стерилизация в хирургии — используется для обеззараживания операционного белья, перевязочного материала, инструментов и некоторых аппаратов, применяемых во время операций и перевязок.

Операционное белье (халаты, простыни, полотенца, маски) и перевязочный материал (марлевые тампоны, салфетки и вата) стерилизуются паром под давлением в автоклаве.

Как исключение (при отсутствии автоклава) прибегают к стерилизации текучим паром. При этом пар, нагретый до t° 100°, проходит через заложенные в аппарат биксы и выходит наружу. Такая стерилизация ненадежна, т. к. убивает не все бактерии (спороносные гибнут при t° выше 120°). Белье и перевязочный материал складывают в форме, наиболее облегчающей его употребление и предотвращающей излишние манипуляции с ним. Подготовку белья и материала производит медсестра, одетая в халат, шапочку или косынку. Люди с гнойничковыми заболеваниями не должны принимать в этом участия. Подготовленный материал и белье укладывают в металлические барабаны Шиммельбуша (биксы), причем в большие биксы укладывают халаты, простыни, полотенца, большие салфетки и тампоны, в маленькие — маски, маленькие салфетки, шарики и вату. Размещение белья и материала должно быть рыхлым. Простыни, халаты, салфетки и т. д. следует укладывать не горизонтальными, а вертикальными слоями. В крупных операционных укладку производят так, чтобы в каждом биксе находился один какой-либо вид белья или материала. В небольших операционных, а особенно для выездов на экстренную операцию, в один бикс закладывают все необходимое для производства одного вмешательства, притом так, чтобы любой предмет можно было извлечь, не касаясь всех остальных. Поверх всего содержимого помещают халат, шапочку, маску для операционной медсестры, которая первой проводит личную асептическую подготовку.

При стерилизации в автоклаве используют водяной насыщенный пар t° 120— 132° под давлением 1,5—2 атм. Бактерицидные свойства пара усиливаются, если удалить из стерилизуемого материала воздух. Однако это затрудняется тем, что материал находится в биксах. В учреждениях, где имеются большие автоклавы, воздух удаляют при помощи вакуум-насосов. При отсутствии насоса воздух удаляют продувкой — в течение 10 мин. стерилизационная камера работает как текучепаровая установка, т. е. при открытом выходном кране, который затем закрывают. Время стерилизации зависит от давления и качества стерилизуемого материала. Отсчет времени начинают с момента установления требуемого давления и температуры. Одномоментно в автоклав следует закладывать биксы с однородным материалом. При стерилизации биксов с разнородным материалом время устанавливают по материалу, требующему большей продолжительности стерилизации. Перед закладкой в автоклав в биксе открывают все отверстия. Автоклав следует загружать из расчета 65—94 кг белья или материала на 1 м3 объема аппарата. Продолжительность стерилизации белья при давлении 2 am — 30 мин., 1,5 am — 45 мин.; для перевязочного материала — при 2 am — 20 мин., при 1,5 am — 30 мин. По окончании стерилизации автоклав открывают через 5—10 мин. после удаления пара (это необходимо для просушки материала). При выемке биксов отверстия в них тотчас закрывают.

Контроль над стерильностью материала осуществляют при каждой стерилизации физическими и химическими методами. Наиболее надежен биологический контроль. Пользоваться им следует для периодического контроля стерилизации, например раз в месяц, а также в случаях появления нагноений после «чистых» операций.

Стерилизация тазов для мытья рук производят обжиганием. В таз наливают 10— 15 мл денатурированного спирта и поджигают. Вращением таза в разных плоскостях обжигают всю его внутреннюю поверхность. Применение для этих целей эфира недопустимо из-за возможности взрыва.

Катетеры, трубки, дренажи стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 минут. Новые резиновые изделия перед кипячением промывают теплой проточной водой для удаления талька. Хранить их можно в растворе, который применяют для стерилизации перчаток.

Условия стерилизации резиновых изделий в автоклаве аналогичны условиям, принятым для стерилизации перчаток. Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1—2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды — стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов — 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа.

Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180— 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты — 3 части, едкого натра — 15 частей, формалина — 20 частей, дистиллированной воды — 1000 частей; формалина — 20 частей, фенола чистого жидкого — 1,5 части, карбоната натрия — 7,5 части, воды дистиллированной — 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом.

Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45—50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация — суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами — в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6—8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) — 100 г, нашатырного спирта — 50 мл, воды — 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части — контрольные стекла и капельницы — промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно — проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30—40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, т. к. они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей — интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок — осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида; водно-спиртовой раствор левомицетина 1 :1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5—2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15—30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части — переходные трубки, щипцы, зубные распорки — стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1 : 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением. Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30—40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов — производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке.

Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде — 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150—160° — 1 час.
Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.
Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12—24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1 : 1000.
Часто применяют модификации способа Кохера:

1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.

2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1 : 1000 (№ 0—4 в течение 15 мин., № 5—8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.

3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в т. ч. и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.
Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала — кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12—24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1 : 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0—1 на 30 сек., № 2—5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6—7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке — 40 г, в 5-литровой банке — 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным № 0—1 — через 3 суток, № 2—4 — через 4 суток, № 5—6 — через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1 : 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7—10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8—10 суток после выдерживания его в течение 12—24 час. в эфире, а затем на 4— 6 суток — в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7—10 суток.

Стерилизация инструментария, в т. ч. и режущего, возможна при помощи ультразвука. Преимущество этого метода в том, что ультразвук осуществляет и механическую очистку инструментов от крови и гноя, не повреждая их. Инструменты помещают в сосуды с дистиллированной водой, туда же опускают излучатель. Применяют ультразвук частотой 800 кгц, мощностью 20—30 вт/см. Через 10 мин. достигается полная механическая очистка и стерильность. Очень эффективна стерилизация белья, перевязочного материала инструментария, аппаратуры, растворов и т. п. гамма-излучением. Доза проникающей радиации должна быть не менее 2 000 000 — 2 500 000 рентген.

АВТОКЛАВ: ОЧИСТКА И ПОДГОТОВКА ИНСТРУМЕНТОВ К АВТОКЛАВУ *

Дата вступления в силу:

Сб, 01.04.2006

Отзывов:

Ср, 16.06.2021

Пересмотрено:

Ср, 16.06.2021

ТЕМА: ОЧИСТКА И ПОДГОТОВКА ИНСТРУМЕНТОВ ДЛЯ АВТОКЛАВИРОВКИ

ПЕРСОНАЛ: RN, MA

ОБОРУДОВАНИЕ:

ОДОБРЕННОЕ МОЮЩЕЕ СРЕДСТВО
ОДОБРЕННЫЙ ДЕЗИНФЕКТИВНЫЙ РАСТВОР
ОДОБРЕННОЕ МОЛОКО ДЛЯ ИНСТРУМЕНТОВ
АВТОКЛАВ
СООТВЕТСТВУЮЩИЕ БАРЬЕРНЫЕ ЗАЩИТЫ, ТАКИЕ КАК ПЕРЧАТКИ, ПЛАТЬЯ, МАСКИ ИЛИ ПОКРЫТИЯ ДЛЯ ГЛАЗ.

НАЗНАЧЕНИЕ: Исключить возможность передачи микроорганизмов. Стерилизация уничтожает все микроорганизмы на поверхности изделия или в жидкости, чтобы предотвратить передачу заболеваний, связанных с использованием этого предмета. Основной принцип паровой стерилизации, выполняемой в автоклаве, заключается в том, чтобы подвергнуть каждый предмет прямому контакту с паром при требуемой температуре и давлении в течение определенного времени, таким образом стерилизуя предмет.

ПРОЦЕДУРА:

Сотрудник должен носить соответствующие СИЗ для работы с загрязненными инструментами.
Промойте инструменты теплой водой и скрабом, чтобы удалить всю кровь, биологические жидкости и ткани.
Погрузите инструменты в одобренные растворы моющих и дезинфицирующих средств с надлежащим разбавлением и на соответствующее время в соответствии с указаниями производителя. Промойте инструменты водой.
Шарнирные хирургические инструменты следует поместить на тридцать — сорок пять секунд в инструментальное молоко для смазки и защиты от коррозии, ржавчины и пятен. Следуйте инструкциям производителя по смешиванию, разбавлению и использованию одобренного инструментального молока.
Инструменты для воздушной сушки
Проверить инструменты на правильность работы и состояние.
Оберните инструменты для автоклавирования по отдельности или в наборах и пометьте упаковку инициалами сотрудника.
Одноразовые пластиковые пакеты или нетканая бумага для инструментов с двойной оберткой могут использоваться для обработки паром.
Вставьте индикаторную полоску пара в каждый пакет или упаковку.
Перед упаковкой убедитесь, что петли инструмента открыты.
При использовании пластиковых пакетов заклейте их, отогнув открытый край самозаклеивающейся лентой, скрепив края клееной бумажной упаковки и край пластикового пакета.
При использовании двух листов нетканой бумаги упаковка закрепляется автоклавной термочувствительной лентой.
Перед загрузкой автоклава на заклеенный конец пакета или на ленту автоклава инструментов, обернутых бумагой, сотрудник пишет дату автоклавирования.
Автоклав в соответствии со спецификациями производителя и записать нагрузку в журнал автоклава.
Если полоска индикатора пара, маркировка упаковки или внутренняя полоска индикатора пара не меняют цвет после обработки, инструменты переупаковываются и обрабатываются.
Инструменты стерильны в течение одного года со дня обработки. В случаях, когда упаковка нарушается, инструменты подвергаются повторной обработке.
См. «Операции в автоклаве» для получения подробной информации об использовании автоклава.

ОБЩАЯ ИНФОРМАЦИЯ:

Смочите металлические инструменты в одобренном моющем средстве для инструментов перед дезинфекцией и стерилизацией в соответствии с инструкциями производителя. Ежедневно меняйте моющий раствор в подсобных помещениях.
Заменяйте утвержденный дезинфицирующий раствор для инструментов в подсобных помещениях каждые четырнадцать дней или чаще, если необходимо.
Заменяйте приборный молочный раствор каждые четырнадцать дней или чаще, если необходимо.

Подготовка инструмента для хирургии выживания

Руководство по асептической хирургии выживания на грызунах

Подготовка инструмента

Перед использованием все инструменты необходимо очистить и стерилизовать. Во-первых, очистите инструменты от мусора вручную или с помощью механической моечной машины / стерилизатора. Выбор метода может зависеть от процедуры или хрупкости хирургических инструментов или используемых устройств.

Гладкие твердосплавные инструменты, полиэтиленовые трубки и катетеры.

Тепловая стерилизация

Паровой автоклав

Инструменты должны быть помещены в специально предназначенную упаковку или стерильно завернуты в простыни или салфетки. Это должно быть закреплено термочувствительной лентой. Использование такой ленты дает некоторое представление о том, что процедура автоклавирования была эффективной. Инструменты следует автоклавировать в течение 4 минут при 132 ° C (270 ° F) и сушить в течение 3 минут в вакуумном автоклаве.Для гравитационных автоклавов требуется разное время. После автоклавирования упаковки или завернутые инструменты следует хранить в закрытых шкафах. Пакеты в двойной упаковке можно считать стерильными в течение шести недель. Хранение на открытых полках сокращает это число до трех недель. Одноразовые упаковки сохраняют стерильность в течение 3 недель. Обратите внимание, что пар не подходит для пластика с низкой температурой плавления, порошков или безводных растворов.
Вспышка пара

Используется для стерилизации изделий, предназначенных для немедленного использования.Температура должна достигать 132 градусов по Цельсию в течение трех-пяти минут.
Стерилизатор для стерильных шариков

Это удобные аксессуары, которые стерилизуют металлический инструмент за 10 секунд. Однако инструменты необходимо очищать от мусора, а шарики следует очищать или заменять ежемесячно. Инструменты также должны быть подходящего размера для установки. Этот тип стерилизации идеально подходит для операций с несколькими животными. ПРИМЕЧАНИЕ. Большинство стерильных стерилизаторов для шариков нагреваются за тридцать минут.

Холодная (химическая) стерилизация

Эффективное и правильное использование химической стерилизации зависит от многих факторов, включая использование химикатов, классифицируемых как стерилизующие (не дезинфицирующие средства), физических свойств стерилизуемых предметов (т. Е. Гладкость, непроницаемость для влаги, чистота) и уверенность в том, что правильная экспозиция. Химические стерилизаторы имеют ограниченный срок хранения и должны использоваться, в зависимости от агента, в течение одной-четырех недель.Кроме того, растворы должны быть защищены от загрязнения. Эффективная холодная стерилизация требует тщательной очистки инструментов перед обработкой, поскольку кровь и органический мусор могут инактивировать химические гермициды и / или защитить микроорганизмы от процесса стерилизации. Для процедур холодной стерилизации и хранения инструментов рекомендуется использовать чистые контейнеры типа посуды с надежными крышками или лотки и крышки для инструментов из нержавеющей стали. Для ополаскивания инструментов, имплантатов и трубок (внутри и снаружи) перед использованием следует использовать стерильную воду или физиологический раствор, чтобы избежать повреждения тканей животных.Допускаются следующие химические стерилизаторы:

Alcide®
Действующее вещество: диоксид хлора 1,37%. Время выдержки должно превышать 6 часов. Срок годности 14 суток.
Спирт
70-90%; требует времени контакта 16 часов; может ржаветь или разъедать инструменты; алкоголь не является фунгицидным, вирулицидным или спороцидным. Спорная ценность.
Цетилцид-G
Действующее вещество: 3.2% денатурированный глутаральдегид. Время воздействия 20 минут убивает все, кроме спор бактерий. Для полной стерилизации требуется 10 часов. Срок годности 28 суток.
Cidex®
Действующее вещество: 2% глутарового альдегида. Для стерилизации время выдержки должно превышать 10 часов. Срок годности 14 или 28 дней в зависимости от продукта.
Endospore®
Действующее вещество: стабилизированная перекись водорода 6%. Неприемлемо для металлических предметов.
Спорицидин®
Действующее вещество (активатор + буфер): фенол 7,05%, глутаровый альдегид 2%, фенолат натрия 1,2%. Для стерилизации время выдержки должно превышать 6,75 часа. Срок годности 28 суток.

Газ оксида этилена

Это должно использоваться только с инструментами, которые будут повреждены нагреванием или стерилизацией паром. Этот процесс токсичен, дорог и регулируется федеральным законом. Договоритесь о поставках стерильных материалов в больницу Университета Эмори.Катетеры тонкого калибра можно стерилизовать газообразным оксидом этилена во время цикла охлаждения.

Летучая перекись водорода (VHP)

Безопасно и идеально подходит для большинства приложений. Требуется дорогой генератор.

W&H — Цикл подготовки стоматологического инструмента

Помимо чисто нормативных требований и аспектов безопасности, многие стоматологи сделали зону стерилизации ключевым активом своей деятельности. Удобное расположение на видном месте позволяет пациентам сразу понимать, что их здоровье и безопасность важны для них.Персонал без колебаний разделяет эту страсть к гигиене с пациентами и с радостью ответит на любые их вопросы. Польщенный таким вниманием, пациент чувствует себя уверенно и защищенно.

Создание новых участков переработки или улучшение существующих не является «непреодолимой» задачей. Для этого просто требуются некоторые основные принципы, которые будут изложены в этой статье.

Размер участка переработки

Существенное значение имеет место, отведенное под зону обработки.В большинстве случаев он низкорослый. Помещение должно быть функциональным, хорошо освещенным и соответствовать размеру стоматологической практики и количеству инструментов, подлежащих обработке. Интеграция устройств для очистки и стерилизации с соответствующими принадлежностями и обеспечение достаточного пространства на столе для хранения инструментов между этапами протокола, то есть до / после очистки; до / после упаковки и стерилизации.

Первый фундаментальный принцип — предусмотреть две (виртуальные) области в комнате; грязная и чистая зона.Рационально инструменты будут двигаться в одном направлении от грязной зоны к чистой. Вследствие этого одностороннего потока обработанные (чистые) инструменты не должны попадать в грязную зону; следовательно, зона обработки в идеале должна быть прямоугольной, что-то вроде проходного коридора с двумя дверями (IN & OUT). Обе зоны требуют вентиляции, и воздушный поток должен течь из чистой зоны в грязную, чтобы предотвратить циркуляцию потенциально загрязненного воздуха из грязной зоны в чистой зоне.Этого можно достичь, создав давление в чистой зоне или опустошив грязную зону.

У входа должна быть умывальник для рук, оборудованный станцией для промывания глаз, что необходимо в случае случайного разбрызгивания дезинфицирующего средства или какой-либо вредной жидкости. Дозаторы мыла и водно-спиртового геля должны иметь автоматическое дозирование, чтобы избежать загрязнения кранов или бутылок грязными руками. Сухие руки рекомендуется промокнуть бумажными салфетками.

Участок переработки

Конфигурация каждого рабочего пространства и устройства будет соответствовать шагам повторной обработки i.е. предварительная дезинфекция, ополаскивание, чистка, ополаскивание, сушка, упаковка и стерилизация . Эта комната не может быть использована ни для каких других целей. Полы и рабочие поверхности должны быть гладкими, без острых углов и краев, легко очищаться и дезинфицироваться.

Отходы

Отходы следует сбрасывать в мешки или контейнеры через отверстия в скамейке. Острые предметы и режущие предметы необходимо безопасно утилизировать в специальных пластиковых контейнерах для защиты персонала, собирать и обрабатывать специализированные компании по переработке загрязненных отходов.Крайне важно следовать вашим местным национальным правилам, поскольку они могут отличаться от страны к стране.

Предварительная дезинфекция — замачивание

Чтобы предотвратить высыхание крови, слюны и мусора, все использованные и неиспользованные инструменты должны быть пропитаны как можно скорее после процедуры, используя один или несколько дезинфицирующих контейнеров в зависимости от количества, типа и размера инструментов, т. Е. маленький для боров и файлов, большой (-ые) для большого количества предметов, наборов или кассет и т. д.Обратите внимание на инструкции производителя НЕ погружать инструменты для передачи сигналов в растворы! Необходимо строго соблюдать рекомендации производителя по концентрации и времени контакта химикатов.

Температура раствора не должна превышать 40-45 ° C, что предотвращает свертывание белков крови, что затрудняет очистку. Еще одним преимуществом этого решающего первого шага является сокращение микробной популяции, что снижает риск заражения во время обработки и очистки.Таз позволяет ополаскивать инструменты водопроводной водой с целью удаления любых остаточных химикатов, особенно в полых и откидных предметах. Остатки химикатов могут привести к необратимому окрашиванию и повреждению инструментов, если пропустить этап тщательной промывки.

Очистка

Этап очистки имеет первостепенное значение. Механическая очистка с помощью ультразвукового очистителя обеспечивает хороший уровень производительности.

Примечание: Ручная очистка — наименее эффективный метод очистки, особенно для сложных или полых инструментов и грубых поверхностей.Степень чистоты зависит от опыта и признательности оператора, а также повышает риск травм и инфекций персонала.
Для удаления химикатов все инструменты необходимо промыть водопроводной водой во второй емкости. В идеале после этого следует второе ополаскивание деминерализованной водой для удаления остатков и солей, присутствующих в водопроводной воде, которые могут привести к появлению беловатых пятен на стерилизованных инструментах.

Стиральные или моечно-дезинфекционные машины предлагают предпочтительный метод очистки благодаря более высокой производительности цикла очистки, утвержденному производителем в соответствии со строгими применимыми стандартами (т.е. ISO-EN15833-1 / -5). Процесс цикла включает в себя предварительную стирку, ополаскивание, стирку и сушку, что позволяет освободить место на столе, сэкономив емкость / емкости для замачивания и одну раковину. Целесообразно оставить второй таз.

Пространство буферного стола после очистки

Рядом с моечной станцией отведено место для проверки сухости и целостности всех инструментов. Сжатый воздух поможет сушить навесные инструменты (ножницы, щипцы и т. Д.).), которые также могут потребовать периодической смазки. Инструменты передачи будут храниться на прежнем месте. Внутренняя и внешняя очистка, а также смазка должны осуществляться механически с помощью автоматизированного процесса, утвержденного производителем. Выполнить внутреннюю очистку вручную практически невозможно.

Упаковка — стерилизация

Следует предусмотреть место для устройства запечатывания пакетов, а также место для временного хранения упаковок перед обработкой в настольном стерилизаторе.Для обеспечения безопасной и эффективной стерилизации крайне важно проверить совместимость загрузки и типа цикла. Выбор цикла, который не разработан и не утвержден для данного типа загрузки (инструментов), приведет к получению нестерильных продуктов. Дополнительное пространство рядом со стерилизатором предназначено для охлаждения и маркировки упаковок, выданных оператором для хранения и использования. Особое внимание следует уделить этой последней проверке, убедившись, что пакеты герметично закрыты и полностью высохли.Несушенные инструменты / упаковки не считаются стерильными.

В случае длительного хранения упакованные предметы следует хранить вне зоны обработки и хирургической (операционной) в чистых и сухих ящиках или шкафах. При этом предметы в одной упаковке можно хранить в течение 3 месяцев, что является наиболее распространенным сроком хранения. Он может отличаться в зависимости от местного законодательства.

Заключение

Я хотел бы, чтобы все читатели задумались над этими двумя определениями:

Повторная обработка:
«Все действия, необходимые для обеспечения безопасности использованного медицинского устройства для повторного использования» (Руководство ADA по контролю за инфекциями — 2012).«

Стерилизация:
« »утвержденный процесс, используемый для освобождения продукта от жизнеспособных микроорганизмов».
«… наличие жизнеспособного микроорганизма на любом отдельном предмете может быть выражено с точки зрения вероятности. Эта вероятность может быть уменьшена до очень низкого числа; он никогда не может быть уменьшен до нуля »(ISO / TS 11139: 2006).

Операции по выживанию: Крупные животные

Введение

Предоперационное планирование

Расположение хирургического отделения

Подготовка инструмента

Подготовка хирурга

Подготовка животных

000

, обычно используемые сравнительными лекарствами Операция по выживанию будет выполняться с использованием асептических методов, включая хирургические перчатки, маски, стерильные инструменты и асептические методы.Положения Закона о защите животных.

Надлежащее внимание к предоперационному планированию, обучению персонала, асептическим и хирургическим методам, благополучию животных и физиологическому статусу на всех этапах протокола улучшит исход операции. Руководство по уходу и использованию лабораторных животных.

Перед началом хирургической операции необходимо провести собрание бригады хирургов для разработки плана операции. В зависимости от сложности процедуры хирургическая бригада должна состоять как минимум из следующего: хирург, анестезиолог, ветеринар, хирургические техники, персонал по уходу за животными и исследователь.Для очень сложных процедур может быть более одного хирурга и стерильных и нестерильных ассистентов.

Независимо от характера операции, в плане хирургического вмешательства должны быть указаны: задействованный персонал, его роли и подготовка, тип оперативной процедуры, необходимое оборудование и материалы, определение местоположения операционной, предоперационная оценка состояния здоровья, интраоперационный мониторинг, оперативный техника, послеоперационный уход, потребность в антибиотиках и механизм ведения всех необходимых записей.

В зависимости от своих ролей персонал должен иметь соответствующую подготовку по соответствующей хирургической технике, включая, помимо прочего, асептику, бережное обращение с тканями, минимальное рассечение ткани, надлежащее использование инструментов, эффективный гемостаз, правильное использование шовных материалов и моделей.

Операционные определения

Стерилизация убивает все микроорганизмы (жизни), достигаемые физическими или химическими средствами
Дезинфекция уничтожает вегетативные бактерии
Антисептик предотвращает или задерживает рост микроорганизмов путем разрушения или ингибирования на коже или слизистых оболочках
Асептика — это избавление от инфекции или предотвращение контакта с микроорганизмами

Для крупных животных требуется специальное хирургическое помещение e.грамм. приматы, собаки, кошки, кролики. Независимо от местоположения, когда область используется для хирургии, никакая другая деятельность не должна выполняться. Как правило, в хирургическом помещении должны быть следующие компоненты: а) помещение для подготовки животных, б) помещение для подготовки инструментов, в) помещение для подготовки хирурга, г) помещение для хранения и восстановления и д) операционная.

Освещение в операционной должно быть ярким, сфокусированным и не слепящим. Освещение должно быть достаточным для выполнения процедур, но не должно нагревать рабочую зону.

Препараты для животных, например, стрижку волос, скрабирование и введение анестезии следует проводить не в операционной, а в помещении для подготовки животных. Поверхности в помещении, включая пол, стены и потолок, должны быть непористыми, герметичными, прочными и поддающимися дезинфекции. Зона должна содержаться в чистоте, в ней не должно быть беспорядка, а доступ к ней должен быть ограничен людьми, участвующими в выполняемых процедурах. График уборки и дезинфекции комнат должен соблюдаться и соблюдаться.Помещения следует убирать «ежедневно», т. Е. По окончании процедур в этот день, путем протирки влажной пыли на плоских поверхностях, светильниках и мебели для операционных. После каждой операции очищайте весь органический мусор с мылом и дезинфицируйте. Пылесосите влажную уборку или вытирайте пол в конце дня. Швабры следует выстирать после использования или смочить в бактерицидном растворе. Очистите раковины и дозаторы мыла, а также опорожните ведра для мусора. Более тщательную очистку следует проводить «еженедельно», включая протирание стен, потолков, шкафов и оборудования бактерицидным чистящим раствором после удаления органических остатков и загрязнений.

Примеры распространенных дезинфицирующих средств для твердых поверхностей для шкафов, операционных столов, светильников и т.д .:

Спирты (70% этиловый спирт, 85% изопропиловый спирт) в течение 15 минут при отсутствии органических веществ или сильного загрязнения.
Соединения четвертичного аммония (например, Roccal®, Quatricide®) быстро инактивируются органическими веществами и могут поддерживать рост грамотрицательных бактерий.
Альдегиды напр. глутаральдегид (например, Cidex®, Cide Wipes®, Cetylcide-G®) быстро дезинфицирует поверхности.Токсично. Соблюдайте пределы воздействия OSHA.
Фенолы (например, Lysol®, TBQ®) меньше подвержены воздействию органических материалов, чем другие дезинфицирующие средства.
Гипохлорит натрия (например, 10% раствор Clorox) вызывает коррозию, активность снижена за счет органических веществ.
Двуокись хлора (например, Clidox®, Alcide®) убивает вегетативные организмы в течение 3 минут, вызывает коррозию, активность снижается за счет органических веществ, должна быть свежей.
Хлоргексидин (например, Novalsan®, Hibiclens®) быстро бактерицидный и стойкий, также эффективен против многих вирусов, активен в присутствии крови.
Всегда следуйте рекомендациям производителя.

Вернуться к началу

Очистите все инструменты и материалы перед стерилизацией. Грязь, кровь и крупные загрязнения должны быть полностью удалены, поскольку они затрудняют стерилизацию. Всегда замачивайте инструменты в воде с моющим средством сразу после операции, чтобы удалить кровь и мусор, а также облегчить очистку. Инструменты можно мыть вручную щеткой или в стиральном стерилизаторе. В некоторых случаях может потребоваться ультразвуковая очистка «трудных для очистки» инструментов.

Тщательно промойте инструменты после мытья, чтобы удалить остатки чистящих средств. После очистки высушите и надежно храните инструменты.

Сухие инструменты и расходные материалы должны быть неплотно упакованы в стандартные или специальные упаковки в порядке использования. Будьте особенно осторожны, чтобы не повредить хрупкие инструменты. Пакеты должны быть датированы. Индикаторы стерилизации, например всегда должны быть включены автоклавные ленты или тест-культуры. Обратите внимание, что автоклавные ленты показывают только то, что поверхность достигла требуемой температуры.

После стерилизации упаковки следует хранить надлежащим образом. Упакованные и стерилизованные упаковки при правильном хранении годны в течение 6 месяцев. Хранение упаковок в закрытых пластиковых пакетах продлевает срок их хранения.

Вернуться к началу

Очень важно, чтобы вы начинали операцию со стерильными инструментами. Инструменты можно стерилизовать физическими или химическими способами. Стерилизация паром в автоклаве (121 ° C в течение 15 минут или 131 ° C в течение 3 минут) чрезвычайно эффективна. Автоклавы не следует использовать для приборов, чувствительных к температуре.Может возникнуть некоторая коррозия, а острые инструменты затупятся. Пакеты не следует вынимать из автоклава, пока они полностью не высохнут. Если во время работы автоклава не будет удален остаточный воздух, может произойти сбой стерилизации. Сухой жар в камере — хорошая альтернатива паровому автоклаву. Он не вызывает коррозии и проникает в большинство материалов и закрытые контейнеры. Сухой жар не притупляет инструменты, но достигнутые высокие температуры могут повредить некоторые материалы. Перед контактом с тканями инструменты необходимо охладить.Другие физические средства стерилизации включают гамма-облучение, главным образом, для чувствительных к теплу или влажности предметов, таких как шприцы, шовный материал, лезвия скальпеля и медицинские устройства.

Сбой стерилизации

Слишком плотные упаковки
Неправильно загруженный автоклав
Неисправный автоклав
Недостаточная температура и давление
Слишком короткое время воздействия

Стерилизация завершена жизнь, которая может быть достигнута с помощью физического (e.грамм. тепло, излучение) или химическими средствами.
Стерилизаторы по сути такие же, как и спороциды. Они убивают все микроорганизмы, включая бактериальные эндоспоры. Спороцидный продукт убивает все микроорганизмы, включая бактериальные эндоспоры.
Дезинфицирующие средства, с другой стороны, убивают 100% вегетирующих (активно растущих) бактерий (определенных видов) в условиях, определенных Агентством по охране окружающей среды, но не эффективны против грибков, вирусов, Mycobacterium tuberculosis или бактериальных спор.Эти агенты эффективны только при использовании в соответствии с инструкциями производителя и могут быть инактивированы органическими веществами, такими как кровь, биологические жидкости или ткани.

Вернуться к началу

Для стерилизации термочувствительных материалов можно использовать различные химические вещества. Все химические вещества необходимо промыть с инструментов стерильным физиологическим раствором или стерильной водой, чтобы избежать повреждения тканей. Часто для стерилизации требуется длительное время контакта. Органические материалы могут снизить эффективность этих химикатов.Все поверхности должны быть открыты, а трубки должны быть заполнены раствором. Эффективность зависит от адекватного времени контакта с инструментами, правильного перемешивания, возраста раствора и отсутствия органических материалов в инструментах. Большинство химических стерилизаторов необходимо «активировать», чтобы они были эффективными. Следуйте инструкциям производителя и избегайте смешивания несовместимых компонентов и помните, что большинство этих химикатов являются опасными агентами. Дезинфицирующие средства не следует использовать в качестве стерилизующих. Перед использованием инструментов необходимо смыть остатки химикатов.

Примеры обычных химических стерилизаторов включают:

2% глутаральдегид в течение 10 часов (Cidex®, Abcocide®). Срок годности 14-28 дней после активации в зависимости от вида.
8% формальдегид плюс 70% спирт 18 часов.
7% стабилизированная перекись водорода 8 часов (Accelerated Hydrogen Peroxide®, Virox STF®, Sporox®). Срок годности 21 день.
7,35% перекиси водорода и 0,23% перуксусной кислоты 3 часа (EndoSpor® plus). Срок годности 14 суток.
Раствор диоксида хлора 1: 5 6 часов.Необходимо смешивать ежедневно (Clidox®).
1,37% Гипохлорит натрия 6 часов. Срок годности 14 дней после активации (Alcide®).
Всегда следуйте рекомендациям производителя.

Этиленоксидный газ стерилизует инструменты за 3-7 часов при температуре 21-60 ° C и относительной влажности 40-60% с использованием специального оборудования. Оксид этилена легко воспламеняется, взрывоопасен, токсичен и очень раздражает ткани. Все инструменты необходимо проветрить в течение 8-12 часов при 50-60 ° C или 1-7 дней при комнатной температуре.

Физические методы — термопары, помещенные с грузом
Химические методы — упакованные в загрузку или ленту автоклава
Биологические методы — споры бактерий, используемые один раз в неделю
Bacillus stearothermophilus для паровых автоклавов
Bacillus subtilis для оксида этилена
Micrococcus radiodurans для гамма-излучения

Вернуться к началу

Перед тем, как мыть руки, хирург должен надеть хирургический колпачок, лицевые маски, хирургические скрабы и соответствующую обувь.Снимите украшения и убедитесь, что ногти коротко подстрижены. Очистка должна быть тщательной, начиная с кончиков пальцев до локтей, используя хирургический скраб, содержащий бактерицид, например хлоргексидин. Энергия и время воздействия имеют решающее значение, 3-15 минут или 5-20 мазков на поверхность, по крайней мере, с двумя тщательными очистками и полосканиями. В конце скраба вытрите руки стерильным полотенцем, начиная от кончиков пальцев до локтя. Переверните полотенце и повторите процедуру с другой стороны. Высушив руки, наденьте стерильный халат. Поднимите платье, разверните его от стола и просуньте руки в рукава. Ассистент закрывает заднюю часть халата, а хирург затягивает пояс на талии.

Откройте бумажное покрытие (внешнее покрытие должно было быть открыто ранее) на перчатках.Вставьте перчатки, как показано, не касаясь нестерильных поверхностей. Если вы случайно дотронетесь до нестерильной поверхности халатом или перчатками, выбросьте их и при необходимости повторно наденьте халат и / или перчатку.

Всегда поддерживайте перед собой зону стерильности. Сложите руки перед собой, убедившись, что они находятся над столом, выше талии и не выше плеч.

Вернуться к началу

Перед операцией важно правильно идентифицировать пациентов.Узнайте вес, возраст, пол, историю колоний и состояние здоровья. Определите, были ли животные акклиматизированы в учреждении, обычно 3-5 дней отдыха после прибытия от продавца должно быть достаточно. В некоторых случаях этот период может составлять до двух недель.

Проведите физический осмотр, чтобы определить, здорово ли животное. По возможности сделайте общий анализ крови, биохимический анализ крови и анализ мочи.

Если показано, искупайте животное за день до операции.Воздержитесь от еды за 6-12 часов до операции. Нанесите глазную мазь на глаза после индукции анестезии, чтобы предотвратить высыхание роговицы. Обеспечьте поддержку дыхательных путей, доступ к сосудам и упреждающую анальгезию, как указано.

Подготовка кожи

Всегда готовьте область, которая примерно в два раза больше хирургической области, которая вам понадобится. Подготовка должна проходить в помещении для подготовки животных. Волосы следует удалить с места операции с помощью машинки для стрижки с лезвием № 40 или крема для депиляции (кремы для депиляции могут вызвать раздражение кожи, поэтому тщательно промойте область после использования крема), а затем нанесите хирургический скраб с чередованием дезинфицирующих средств (например.грамм. йодофоры или хлоргексидин) и спирт. Йодофоры (например, Betadine®, Prepodyne®, Wescodyne®) инактивируют широкий спектр микробов, но их активность снижается в присутствии органического вещества. Хлоргексидин (например, Novalsan®, Hibiclens®) обладает быстрым бактерицидным действием, стойкостью и активен против многих вирусов. Они активны даже при наличии крови.

Для чистки можно использовать марлевую губку. Во время скраба процесс должен начинаться вдоль линии разреза и распространяться наружу, а не снаружи (грязный) к центру (чистый).Не наносите тот же скраб на место разреза.

В конце скраба нанесите слой бактерицида. Повторно нанесите бактерицид в операционной.

Вернуться к началу

Драпировка

Решение о драпировке зависит от характера выполняемой процедуры. Обширные процедуры необходимо накрыть полотенцем, трикотажем или полиэтиленовой пленкой. Простыни помогают поддерживать стерильное поле и сохранять тепло тела. Хотя простыни играют важную роль в снижении загрязнения операционного поля, неправильная техника может увеличить загрязнение.Шторы должны закрывать животное и стол.

Потеря тепла

Анестезия изменяет терморегуляцию и снижает метаболизм. Потеря тепла также происходит из-за открытой полости тела и испарения жидкостей организма. Потеря тепла может значительно продлить срок действия анестетика, что, в свою очередь, увеличивает риск осложнений. Животных всегда следует согревать одеялом с горячей водой.

Потеря жидкости

Животные могут испытывать значительную потерю жидкости во время операции.Потеря жидкости происходит в основном в результате испарения из полостей тела и из-за потери крови. Уменьшите интраоперационную потерю жидкости за счет орошения операционного поля подогретым стерильным физиологическим раствором и парентерального введения теплых стерильных изотонических жидкостей во время операции. Контролируйте кровопотерю во время операции путем прижигания или лигирования потенциальных кровотечений. Контролируйте потребление воды и пищи, состояние тела и вес животного после операции.

Правила поведения в операционной

Снижение загрязнения окружающей среды
Бережное обращение с тканями
Минимальное обращение с тканями
Эффективный гемостаз
Правильный шовный материал и методы
Соответствующее использование инструментов
Надлежащий мониторинг животное

Вернуться к началу

За животными следует наблюдать каждые 15 минут, чтобы убедиться, что животное живо и чувствует себя хорошо.Очень важно, чтобы оценка не полностью полагалась на приборы для наблюдения за животными. Проверьте цвет слизистых оболочек, реакцию на рефлексы, работу сердца и легких. Инструменты могут использоваться для контроля уровня оксигенации, выдыхаемого углекислого газа, электрокардиограммы, электроэнцефалограммы и температуры.

Выберите подходящие хирургические инструменты для выполняемой процедуры. С хирургическими инструментами следует обращаться так, чтобы свести к минимуму загрязнение, например, помещая их на стерильную салфетку, сегрегация по функциям помогает обеспечить стерильность, например, инструменты, используемые на коже, не должны использоваться в брюшной полости.

С тканями следует обращаться осторожно, избегая ненужных травм или высыхания. Следует проводить только минимальное рассечение соответствующими инструментами. Кровеносные сосуды, которые могут кровоточить, следует перевязать. Избегайте загрязнения мест разрезов.

Раны должны быть закрыты с помощью подходящего шовного материала и техники с использованием подходящих игл. Неразрезные (атравматические) конические или круглые иглы не имеют режущих кромок и должны использоваться для мягких тканей, таких как брюшина, кишечник, почки и т. Д.Режущие или обратные режущие иглы обеспечивают режущую кромку через плотные, трудно проникающие ткани, такие как кожа.

Как правило, для мягких тканей следует использовать рассасывающиеся нити (например, кошачий кишечник, викрил®, дексон®). Кровеносные сосуды следует перевязать медленно рассасывающимися (например, vicryl®, dexon®, PDS®, maxon®) или нерассасывающимися швами (например, нейлоном, шелком). Для кожи следует использовать нерассасывающиеся нити (например, этилон®, пролен®, дермалон®), хирургический клей или зажимы для ран и скобы из нержавеющей стали.Хорошие хирургические методы предотвратят послеоперационные осложнения, такие как инфекция, кровотечение или даже смерть. Следует вести надлежащие хирургические и послеоперационные записи.

Нерассасывающиеся нити, используемые для закрытия кожных ран, следует удалять сразу после заживления раны (7–10 дней) или в течение двух недель, в зависимости от того, что наступит раньше.

Вернуться наверх

Дайте животным подогретые стерильные изотонические жидкости и держите животных в тепле, используя одеяла с горячей водой, бутылку с горячей водой или нагревательную лампу (избегайте ожогов).Животных следует часто проверять, предпочтительно каждые 10-15 минут, и переворачивать из стороны в сторону, пока они не выздоровеют. Внимательно следите за выздоровлением после анестезии и будьте готовы оказать респираторную поддержку. На этапе предоперационного планирования вы должны обсудить с ветеринаром ожидаемые результаты, например, сколько времени потребуется животному, чтобы оправиться от анестезии после операции, чего ожидать и чего не ожидать. Есть ли кровотечение из места разреза? Цвет слизистых оболочек животного розовый (хорошо) или голубоватый (плохо)? Ожидаете ли вы хромоты? E.грамм. после ортопедической операции или нет?

Контролировать потребление пищи и воды после выхода из наркоза и обеспечивать нутритивную поддержку. Место разреза опухло? Есть ли слив с сайта? Припухлость, выделения и изменение цвета места разреза сигнализируют о необходимости обращения к ветеринару. У животного лихорадка? Если у животного поднялась температура, проконсультируйтесь с ветеринаром, чтобы составить план лечения. Примите обезболивающее и проверьте, нет ли признаков дискомфорта или боли. Главный исследователь несет ответственность за обеспечение постпроцедурного ухода, как описано в утвержденном протоколе использования животных.План постпроцедурного мониторинга и ухода должен быть разработан после консультации с ветеринарным персоналом. В план операции следует указать, когда ожидается, что животное вернется к нормальному поведению. Если есть какие-либо вопросы относительно здоровья животного, немедленно обратитесь к ветеринару.

Вернуться к началу

Samuel Perkins Co. Inc., 497 Beale Street, Quincy, MA. [email protected]
Barber Vet Supply, 1-800-552-5698
AJ Buck & Sons, 1-800-638-8672
Penn Vet Supply, 1-800-548-4490
Hospital Pharmacy, 410-955- 6591
Clinical Engineering Services, 114 Brady Building 410-955-5639

Анестезия и обезболивание лабораторных животных.Кон Д.Ф., Уиксон С.К., Уайт В.Дж., Бенсон Г.Дж. (ред.) Academic Press. Сан Диего. 1997
Анестезия лабораторных животных. Flecknell PF. Академическая пресса. Лондон. 1996.
Формуляр для лабораторных животных. 2-е издание. Ястреб CT, Лири SL. Издательство государственного университета Айовы, Эймс. 1999.
Ветеринарная анестезия Lumb & Jones ’. Турмон Дж. К., Транкуилли В. Дж., Бенсон Дж. Дж. (Ред.). Уильямс и Уилкинс, Балтимор. 1996.
Управление болью у животных. Флекнелл П. и Уотерман-Пирсон А. (ред.). W.B. Сондерс, Лондон. 2000.
Принципы хирургической техники. Искусство хирургии. 2-е издание. Ветер Г.Г. и Рич Н.М. Урбан и Шварценберг, Балтимор-Мюнхен. 1987.
Психологическая хирургия животных. Lang C.M. Спрингер-Верлаг, Нью-Йорк. 1976.
Основные методы в ветеринарной хирургии. Knetch C.D. Сондерс, Филадельфия. 1987.
Учебник хирургии мелких животных. 2-й. Версия. Слэттер Д. Х. У. Б. Сондерс. 1993.

Вернуться к началу

Автоклав: стерилизация оборудования и материалов

Последнее обновление: 13 октября 2020 г., 14:45:55 PDT

Следуйте этим инструкциям по автоклавированию при стерилизации оборудования и исследовательских материалов.

Все инфекционные материалы и все зараженное оборудование или аппаратура должны быть обеззаражены перед тем, как их мыть, хранить или выбрасывать. Автоклавирование — предпочтительный метод.

Для эффективной теплопередачи пар должен вымывать воздух из камеры автоклава.Если сливной экран забит мусором, на дне автоклава может образоваться слой воздуха, который помешает нормальной работе.

Перед использованием автоклава проверьте дренажный фильтр в нижней части камеры. Удалите мусор.

Посуда:
- Неплотно закрывайте бутылки из пирекса — пустые или заполненные — для предотвращения взрыва из-за расширения.
- Накройте бутылки, которые не сделаны из безопасного стекла (например, не Pyrex), алюминиевой фольгой.
Жидкости: Заполняйте емкости только наполовину.
Комбинированные загрузки: Не смешивайте сильно окисляющие вещества (например, сухие гипохлориты) с органическими материалами (такими как бумага, ткань или масло).

Ванны из полипропилена или нержавеющей стали обычно используются для вторичной изоляции.
Убедитесь, что ваш пластиковый контейнер пригоден для автоклавирования. Не все пластмассы можно обрабатывать в автоклаве. Типы пластика можно определить по инициалам, нанесенным на дно контейнера.
- Использование:
  - Полипропилен (ПП, рецикл # 5)
  - Поликарбонат (ПК, номер переработки не назначен)
- Не использовать:
  - Полиэтилен (ПЭ, рецикл # 1)
  - Полиэтилен высокой плотности (HDPE, рецикл №2)
- Если вы не уверены насчет нового контейнера, поместите его в первый раз в контейнер, пригодный для автоклавирования.
Выберите для автоклава емкость с самыми низкими сторонами и максимально широким диаметром.
Оставляйте пространство между предметами для циркуляции пара.

Перед выбором цикла убедитесь, что дверца закрыта.

Для жидкостей всегда выбирайте жидкостной цикл или цикл «медленного отвода».
Спросите своего руководителя лаборатории, какой цикл рекомендуется для стерилизации сухих товаров или оборудования.
Описание двух основных циклов автоклава см. В разделе «Обзор автоклава».

Настоящее руководство содержит рекомендуемое время стерилизации. Всегда следуйте письменным рабочим процедурам вашей лаборатории.

Неопасные сухие товары: 30 минут стерилизации плюс 20 минут сушки.Возможно, потребуется увеличить время высыхания закрытых предметов, например наконечников для пипеток или бутылочек с крышками.
Жидкости (добавьте 10–20 минут для переполненных предметов):
- Менее 500 миллилитров (мл): 30 минут
- 500 мл — 1 литр: 40 минут
- 2–4 литра: 55 минут
- Более 4 литров: 60 минут
Дайте жидкости постоять не менее 10 минут после завершения цикла, прежде чем открывать дверцу.
Примечание: Автоклавирование новой стеклянной посуды в течение 90 минут частично закаляет ее, повышая ее прочность.

Нажмите кнопку «Пуск» на панели управления, чтобы запустить цикл.

Каждая машина должна иметь журнал автоклава (PDF) (Word), в котором оператор записывает дату и другие данные.

Заполните журнал , пока автоклав «заряжается» или запускается.

Использовать средства индивидуальной защиты:
- Лабораторный халат
- Защита глаз
- Туфли с закрытым носком
- Термостойкие перчатки для снятия предметов, особенно горячей стеклянной посуды
Подождите, пока манометр не упадет до нуля, и оставшееся время нулевое, прежде чем открывать дверцу.
Никогда не открывайте автоклав для «медленного выпуска» до завершения цикла.Перегретые жидкости могут выкипеть и повредить автоклав и оператора.
Осторожно открыть дверь. Встаньте за дверь и медленно откройте ее. Прежде чем попасть внутрь, дайте стечь всему пару.
Дайте жидкостям постоять еще 10–20 минут после открытия автоклава, чтобы избежать любых движений, которые могут вызвать их кипение. Осторожно снимайте предметы.

За дополнительной информацией обращайтесь в EH&S Biosafety.
Если автоклав не работает должным образом, свяжитесь с отделом эксплуатации по телефону (858) 534-2930.

Предоперационная подготовка | Передвижные хирурги-специалисты первой линии

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА

FRMSS выполняет операции во многих больницах, находящихся на переднем плане. Чтобы свести к минимуму переменные и обеспечить высочайший контроль качества операционной среды, мы используем собственное оборудование и расходные материалы.Сюда входят стерильные одноразовые халаты, перчатки, простыни, аспирационные трубки и швы. Хирургические пакеты тщательно очищаются и стерилизуются после каждой хирургической процедуры с помощью стерилизации паром или газом (оксидом этилена). Все упаковки включают индикаторы стерилизации, которые подтверждают правильность стерилизации. Мы также проводим периодические биологические тесты на споры на нашем стерилизационном оборудовании, чтобы обеспечить высочайший уровень контроля качества.

ПРЕДОПЕРАЦИОННАЯ ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

Наши хирурги требуют, чтобы каждый из их пациентов был обследован ими перед анестезией.Это служит «сдержкой и противовесом» для подтверждения предыдущего ветеринарного осмотра и подтверждения плана операции. Они требуют, чтобы биохимический анализ крови и общий анализ крови были выполнены перед операцией или любой другой подходящей диагностикой, основанной на предварительных обсуждениях с вашим ветеринаром. Затем пациента готовят к анестезии и затем вводят анестезию. Наши хирурги возлагают бескомпромиссные надежды на обезболивание. Они просят, чтобы все их пациенты проходили соответствующие методы обезболивания до, во время и после операции.Узнайте больше о наших протоколах обезболивания.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

Хирургическая бригада приносит свои машинки для стрижки волос, а также стерилизованное (индивидуальное для данного пациента) лезвие для стрижки, которое используется для подготовки операционного поля. Стрижка волос выполняется хирургической бригадой FRMSS. Затем пациента переводят в операционную (O.R.). Однажды в O.R. Место хирургического вмешательства пациента подвергается асептической подготовке хирургическим скрабом с использованием стерильных перчаток и губок и выполняется хирургической бригадой FRMSS.Место операции закрывается стерильной техникой с использованием одноразовых хирургических простыней при подготовке к операции. Нашим хирургам во время операции помогает их технический специалист.

ПОДГОТОВКА ХИРУРГА

Наши хирурги будут носить соответствующую хирургическую одежду, включая хирургический колпачок и одноразовые одноразовые высококачественные хирургические халаты, перчатки и маски. Остальная часть хирургической бригады также должна следовать тем же стандартам. Никто не может находиться в операционной без хирургической шапочки и маски, пока хирурги проводят операции.Настоятельно не рекомендуется ходить в операционные.

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ОБОРУДОВАНИЕ

Как упоминалось в разделе о контроле качества, FRMSS предоставляет все инструменты, имплантаты, шовный материал и другие расходные материалы для обеспечения высочайшего контроля качества и сведения к минимуму факторов, которые могут повысить уровень инфицирования.

МОНИТОРИНГ

FRMSS внимательно следит за пациентами с назначенным ветеринарным техником. Всем пациентам установлен внутривенный катетер, и они получают соответствующую инфузионную терапию во время операции.Катетер также позволяет анестезиологу вводить дополнительные поддерживающие жидкости и лекарства по мере необходимости на протяжении всей операции. Пациенту вводят анестезию ингаляционным газом, обычно изофлураном или севофлураном, оба из которых принимаются ветеринарными анестезиологами. Они размещены на современном оборудовании для мониторинга, включая: пульсоксиметрию кислорода, ЭКГ, непрямое кровяное давление (систолическое, диастолическое, среднее), уровни CO2 в дыхательных путях, частоту сердечных сокращений, частоту дыхания и температуру.Чтобы поддерживать внутреннюю температуру тела каждого пациента, мы при необходимости предоставляем аппарат принудительного подогрева воздуха (для наружного тела).

ПОСЛЕ УХОДА ЗА ПАЦИЕНТОМ

Хирургическая бригада FRMSS будет наблюдать за послеоперационными рентгенограммами, если они показаны, и начать выздоровление, чтобы обеспечить плавный переход к члену (ам) вашего ветеринара, который возьмет на себя дальнейшее выздоровление и последующий уход.

Асептическая хирургия

Цель асептической техники — снизить вероятность микробного заражения до минимального практического уровня.Ни один метод, методика, бактерицид или оборудование не помогут достичь этой цели. Скорее, правильная асептическая техника зависит от многочисленных практик, требующих участия и сотрудничества всего персонала в операционной зоне. Составляющие успешной асептической техники включают:

Выбор и подготовка операционного поля

Хирургия должна проводиться в специально отведенном для процедуры на животных помещении (т. Е. В процедурном или лабораторном помещении, свободном от беспорядка, способствующего асептике во время операции).В период операции необходимо выделить место для операции, чтобы обеспечить чистоту и свести к минимуму загрязнение. См. Руководство по хирургическим областям для получения дополнительной информации.

Твердые поверхности, такие как столешницы и другое оборудование (например, стереотаксические средства), следует продезинфицировать перед операцией — см. Таблицу 1. Рекомендуемые дезинфицирующие средства для твердых поверхностей.
Примечание: Основные хирургические операции по выживанию крупных животных (не грызунов) должны выполняться в специализированном хирургическом учреждении для крупных животных.

Стерилизация инструментов и принадлежностей

Все инструменты и принадлежности, которые соприкасаются с местом хирургического вмешательства (разреза), должны быть стерильными в начале операции и сохраняться стерильными на всем протяжении. При проведении операций на грызунах можно использовать стерилизатор с горячими шариками между животными, если они проводят более одного. Существует несколько вариантов стерилизации хирургического оборудования и принадлежностей:

Автоклав — использует пар под давлением, чрезвычайно надежен и экономичен.Однако инструменты должны быть прочными (например, из нержавеющей стали), а процесс относительно медленным, от 15 до 60 минут. Инструменты обычно упаковываются или запечатываются в пакеты, которые открываются по мере необходимости в день операции
Оксид этилена — газообразный стерилизатор, для которого требуется специальное защитное оборудование. Это хороший метод стерилизации материалов, которые не переносят высокую температуру, таких как пластмассы и катетеры. Это дороже, чем автоклавирование, и обычно выполняется в течение ночи.
Растворы для холодной стерилизации (гипохлорит, глутаральдегид и т. Д.) — Обычно холодные стерилизаторы должны иметь более продолжительное время контакта (15-60 минут) для стерилизации хирургического оборудования. Кроме того, инструменты необходимо полностью промыть стерильным раствором, например физиологическим раствором, чтобы предотвратить раздражение тканей.
Стерилизатор горячих гранул — Это устройство представляет собой небольшой настольный блок размером примерно 6 x 6 x 8 дюймов. Устройство нагревает небольшой контейнер с шариками из пирекса примерно до 250 C и может стерилизовать кончики металлических хирургических инструментов за 10-20 секунд.Это очень полезно для стерилизации инструментов между грызунами при проведении операций на нескольких животных.
Предварительно стерилизованные предметы — Многие инструменты и расходные материалы можно приобрести в стерилизованной упаковке. Такие предметы необходимо использовать до истечения срока годности этикетки.
Имплантированные элементы — Особое внимание следует уделять элементам, которые будут имплантированы (т.е. оставлены в животном после завершения операции). Многие из этих предметов являются «чувствительными и / или хрупкими», и их трудно стерилизовать.Возможности включают использование сверхкороткого цикла автоклава, оксида этилена или использования холодного стерилизатора. Примечание. Использование одного алкоголя не является стерилизующим.

См. Таблицу 2. Рекомендуемые стерилизаторы.

Подготовка к хирургу

Хирург по грызунам
- Чистое покрытие, такое как одноразовый халат или лабораторный халат, надетый поверх рабочей одежды
- Маска
- Покрытие для волос
- Перчатки — хирурги должны вымыть и высушить руки перед тем, как надеть перчатки.
  - Использование стерильных хирургических перчаток позволяет прикасаться ко всем областям стерильного операционного поля и хирургическим инструментам рукой в перчатке.
  - Использование чистых смотровых перчаток и техники «только подсказки» ограничивает использование только стерильных рабочих концов хирургических инструментов для манипулирования операционным полем. Рука в перчатке, но не стерильная, ни в коем случае не должна касаться рабочего конца инструментов, нити, шовной иглы или любой части операционного поля.

Хирург для крупных животных
- Чистый скраб
- Маска
- Покрытие для волос
- Бахилы
- Перчатки и платье
  - Хирург должен вымыть руки и предплечья дезинфицирующим мылом в течение минимум трех (3) минут, а затем высушить их стерильным полотенцем перед операцией по выживанию у всех видов животных.
  - После стирки стерильный хирургический халат и стерильные хирургические перчатки необходимо надеть в асептических условиях.

Препараты для животных

Волосы следует удалять с места операции, желательно с помощью электрической машинки для стрижки (лезвие № 40) или средства для удаления волос, а не бритвы. Если используется депилятор, тщательно смойте химическое вещество с кожи животного или нанесите нейтрализующий агент.
Затем кожу необходимо очистить и продезинфицировать тремя чередующимися скрабами с использованием дезинфицирующего средства на основе хлоргексидина или повидона и йода с последующим ополаскиванием спиртом.См. Конкретные рекомендации в таблице 2 ниже. Очистите участок, начав с его центра и двигаясь круговыми движениями наружу.
При использовании стереотаксической рамки животное должно быть помещено в рамку до того, как будет применено дезинфицирующее средство для кожи.
Подготовленная хирургическая область должна быть примерно вдвое больше, чем необходимо для разреза, на случай, если может потребоваться больший разрез, чем планировалось.
По возможности следует использовать стерильную хирургическую салфетку, чтобы изолировать продезинфицированную область от окружающих тканей и волос, а также поддерживать стерильность инструментов и принадлежностей, таких как шовный материал.Чтобы драпировка была эффективной, она должна быть непроницаемой для влаги.

Методы поддержания стерильности поля

Стерильные перчатки, инструменты, шовный материал, шовная игла и т. Д. Никогда не должны касаться нестерильных полей.
При самостоятельной работе и манипулировании нестерильными объектами (например, наркозными аппаратами, микроскопами, освещением и т. Д.) Может оказаться полезным использование стерильной алюминиевой фольги или стерильных пластиковых крышек для манипулирования объектами.
При использовании техники «только наконечники» стерильность наконечников инструментов должна сохраняться на протяжении всей процедуры. Руки при использовании нестерильных перчаток не должны касаться хирургической области. Рекомендуется использовать стерильное полотенце или простыню, чтобы опустить кончики инструментов, когда они не используются.

Таблица 1. Рекомендуемые дезинфицирующие средства для твердых поверхностей

АГЕНТ	ПРИМЕРЫ	ПРИМЕЧАНИЯ
Спирты	70% этиловый спирт 85% изопропиловый спирт	Требуемое время контакта — 15 минут.Дезинфекция загрязненных поверхностей требует больше времени. Перед использованием удалите сильные загрязнения.
Четвертичный аммоний	Roccal®, Quatricide®	Быстро инактивируется органическими веществами. Соединения могут поддерживать рост грамотрицательных бактерий.
Хлор	Гипохлорит натрия (10% раствор Clorox®) Хлор	Коррозийный. Присутствие органических веществ снижает активность. Диоксид хлора должен быть свежим; убивает вегетативные организмы в течение 3 минут после контакта.
Глутаральдегиды	Глутаральдегиды (Cidex® Cetylcide®, Cide Wipes®)	Быстро дезинфицирует поверхности.
Фенолы	Лизол®, TBQ®	Менее подвержен воздействию органических материалов, чем другие дезинфицирующие средства.
Хлоргексидин	Nolvasan®, Hibiclens®	Наличие крови не мешает деятельности. Быстро бактерицидный и стойкий. Эффективен против многих вирусов.
Перекись водорода Перуксусная кислота Уксусная кислота	Spor Klenz, Virkon®	Время контакта 10 минут.

Таблица 2. Рекомендуемые стерилизаторы для хирургических инструментов и оборудования

АГЕНТ	ПРИМЕРЫ	ПРИМЕЧАНИЯ
Стерилизация паром (влажным теплом)	Автоклав	Эффективность зависит от температуры, давления и времени, e.грамм. 121 ° C в течение 15 минут и 131 ° C в течение 3 минут. Для обеспечения стерильности следует использовать соответствующие индикаторы стерилизации.
Сухой жар	Сухая камера стерилизатора с горячими шариками	Fast Instruments необходимо охладить перед контактом с тканями. Горячими шариками стерилизуются только кончики инструментов.
Газовая стерилизация	Оксид этилена	Для эффективности против спор требуется относительная влажность 30% или выше. Газ раздражает ткани; все материалы требуют безопасного времени проветривания.Для обеспечения стерильности следует использовать соответствующие индикаторы стерилизации.
Хлор	Стерилизующие уровни диоксида хлора (Clidox®, Alcide®) Гипохлорит натрия (10% раствор Clorox®)	Разъедает инструменты. Предметы должны быть чистыми и не содержать органических материалов. Перед использованием инструменты необходимо промыть стерильным физиологическим раствором или стерильной водой.
Глутаральдегиды	Глутаральдегид (Cidex®, Cetylcide®, Metricide®)	Для стерилизации требуется несколько часов.Едкий и раздражающий. Перед использованием инструменты необходимо промыть стерильным физиологическим раствором или стерильной водой. Срок годности продукта должен соблюдаться в соответствии с инструкциями производителя.
Перекись водорода Уксусная кислота	Actril®, Spor-Klenz®	Для стерилизации требуется несколько часов. Едкий и раздражающий. Перед использованием инструменты необходимо промыть стерильным физиологическим раствором или стерильной водой.
Спирт	Этанол или изопропанол	Спирт не является ни стерилизующим, ни дезинфицирующим средством высокого уровня.

Таблица 3. Средства для дезинфекции кожи

АГЕНТ	ПРИМЕРЫ	ПРИМЕЧАНИЯ
Йодофоры	Betadine®, Prepodyne®, Wescodyne®	Пониженная активность в присутствии органических веществ. Широкий спектр микробицидного действия. Лучше всего работает при pH 6-7.
Хлоргексидин	Nolvasan®, Hibiclens®	Наличие крови не мешает деятельности.Быстро бактерицидный и стойкий. Эффективен против многих вирусов. Отлично подходит для использования на коже.

Таблица 4. Выбор закрытия раны

МАТЕРИАЛ	ХАРАКТЕРИСТИКИ И ЧАСТОТА ИСПОЛЬЗОВАНИЯ
Полиглактин 910 (Vicryl®), полигликолевая кислота (Dexon®)	Мультифиламент, рассасывается за 60-90 дней; Потеря прочности на разрыв 25-50% за 14-21 день.Перевязать или зашить подкожные ткани там, где желателен рассасывающийся шов. Обычно не рекомендуется для закрытия кожных покровов из-за высокой капиллярности.
Полидиаксанон (PDS®) или полигликонат (Maxon®)	Мононить, рассасывается за 6 месяцев; Потеря прочности на разрыв 40% за 30-42 дня. Перевяжите или наложите шовные ткани, особенно там, где желательны рассасывающиеся нити и расширенная поддержка раны.
Полипропилен (Prolene®)	Мононить, нерассасывающаяся.Инертный.
Нейлон (Ethilon®)	Мононить, нерассасывающаяся. Инертный. Общее закрытие.
Шелк	Мультифиламент, нерассасывающийся. (Осторожно: ткань реактивна и может переносить микроорганизмы в рану, поэтому шелк не рекомендуется для закрытия кожи). Отличная управляемость. Предпочтительно для сердечно-сосудистых процедур.
Шовный материал из нержавеющей стали / зажимы для ран / скобы для ран	Нерассасывающийся. Требуется инструмент для удаления.
Цианоакрилат (Vetbond®, Nexaband®, Tissue Mend®)	Кожный клей. Для ран, не подверженных растяжению.

Список литературы

Стерилизация хирургических инструментов — презентация онлайн

1. Стерилизация хирургических инструментов

2. Методы стерилизации хирургических инструментов

3. Методы стерилизации хирургических инструментов

4. Методы стерилизации хирургических инструментов

5. Алгоритм стерилизации хирургического инструментария

6. Методы, средства и режимы стерилизации

7. Горячие методы стерилизации

8. Паровой метод стерилизации

9. Паровой метод стерилизации

10. Воздушный метод стерилизации

11. Воздушный метод стерилизации

12. Обжигание и кипячение

13. Обжигание и кипячение

14. Холодные методы стерилизации

15. Газовый метод стерилизации

16. Газовый метод стерилизации

17. Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация)

18. Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация)

19. Стерилизация растворами антисептиков

20. Стерилизация растворами антисептиков

Рекомендации по уходу и стерилизации хирургических инструментов.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ — Med24info.com

Стерилизация различных видов хирургических инструментов

Этапы стерилизация инструментов

основные методы. Основные этапы стерилизации

Подготовка и стерилизация инструментов и материалов, применяемых в искусственном осеменении сельскохозяйственных животных

Стерилизация в хирургии

АВТОКЛАВ: ОЧИСТКА И ПОДГОТОВКА ИНСТРУМЕНТОВ К АВТОКЛАВУ *

Подготовка инструмента для хирургии выживания

Руководство по асептической хирургии выживания на грызунах

Подготовка инструмента

Тепловая стерилизация

Холодная (химическая) стерилизация

Газ оксида этилена

Летучая перекись водорода (VHP)

W&H — Цикл подготовки стоматологического инструмента

Размер участка переработки

Участок переработки

Отходы

Предварительная дезинфекция — замачивание

Очистка

Пространство буферного стола после очистки

Упаковка — стерилизация

Заключение

Операции по выживанию: Крупные животные

Автоклав: стерилизация оборудования и материалов

Предоперационная подготовка | Передвижные хирурги-специалисты первой линии

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА

ПРЕДОПЕРАЦИОННАЯ ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

ПОДГОТОВКА ХИРУРГА

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ОБОРУДОВАНИЕ

МОНИТОРИНГ

ПОСЛЕ УХОДА ЗА ПАЦИЕНТОМ

Асептическая хирургия

Добавить комментарий Отменить ответ