Режимы автоклавирования в медицине: Автоклавирование в лабораториях и медицинских учреждениях

Автоклавирование как метод стерилизации | Apexlab

Автоклавирование применяется для обеззараживания спецодежды, инструментария и медицинских отходов в ЛПУ. Оно представляет собой обработку потенциально опасных предметов горячим паром в специальных аппаратах —автоклавах.

Они обеспечивают уничтожение абсолютно всей патогенной микрофлоры на обработанных поверхностях. При условии стерилизации в специальной упаковочной таре стерильность материалов сохраняется в течение нескольких дней.

На сегодняшний день стерилизация пересыщенным паром — самый эффективный метод, применяемый в медицине, пищевой промышленности и в химическом производстве.

Виды автоклавов

Размеры и конструкция автоклавов различаются в зависимости от назначения. Но общий принцип подразумевает наличие прочного корпуса, внутри которого смонтированы:

• рабочая камера для стерилизуемых предметов, в которую подается горячий пар под давлением;
• камера с водой;
• герметичной крышки, оснащенной манометром и клапаном.

В принцип работы заложена способность воды закипать при температурах выше 100°С в условиях повышенного давления. В медицине стерилизация проводится в двух основных режимах:

1. Температура +132°С, давление 2 атмосферы, время 20 минут.
2. Температура +120°С, давление 1,1 атмосферы, время 45 минут.

Первый режим считается жестким. Он применим для х/б тканей, стеклянной посуды, металлических инструментов. Второй режим более щадящий, используется для обеззараживания резины и других полимеров.

Для проверки работы автоклава в него периодически закладывают пробирки со спорами сапрофитов. Затем в лаборатории проводится исследование их жизнеспособности после процедуры.

Безопасность при работе с автоклавом

Работающий автоклав нельзя оставлять без присмотра. При достижении критических значений давления пара аппарат может взорваться. Для безопасной работы необходимо соблюдение следующих правил:

• монтаж автоклава производится представителем завода-изготовителя;
• установка аппарата разрешается только в проветриваемом помещении, дверь которого открывается наружу;
• обязательно отведение отработанного пара в канализацию;
• работать на аппарате разрешается только обученному персоналу, который назначается приказом главврача;
• на манометре должна быть пломба и метка с указанием предельно допустимого значения давления.

По окончании стерилизации следует отключить нагреватели, затем открыть кран и выпустить пар. Крышку можно открывать только при нулевых показателях манометра.

Оставлять материалы в автоклаве для остывания нельзя. Все содержимое необходимо немедленно вынуть, а камеру оставить открытой для просушки, слив оставшуюся воду.

16. Автоклавирование, устройство автоклава. Стерилизация горячим воздухом, устройство сухожарового шкафа. Режимы стерилизации.

Автоклав
— паровой стерилизатор. В его состав
входят термометр, манометр, источник
тепла, вводный и выпускной краны.

Действующим
агентом является горячий пар под
давлением. Материалы загружаются в
автоклав в биксах. Работа автоклава
контролируется показаниями манометра
и термометра.

Существует
три режима стерилизации:

• при
  давлении 1,1 атм — 60 мин;

• при
  давлении 1,5 атм — 45 мин;

• при
  давлении 2 атм — 30 мин.

Стерилизация
в сухожаровых шкафах проводится горячим
воздухом. Инструменты укладывают на
полки стерилизатора и сначала высушивают
30 мин при температуре 80 градусов с
приоткрытой дверцей. Стерилизация
осуществляется с закрытой дверцей в
течение 60 мин при температуре 180 градусов.

17. Методы
    стерилизации эндоскопических аппаратов.
    Профилактика СПИДа.

Для
очистки эндоскопов используют моющие
растворы. Для обработки применяют
раствор хлоргексидина, этанола,
глутарового альдегида, перекись водорода.
Отдельные части обрабатывают путем
погружения. Остатки антисептика удаляют
дистилированной водой, затем воздухом
удаляют жидкость из каналов. Эндоскопические
аппараты стерилизуют в специальном
газовом стерилизаторе ГПД-250. Предметы
помещают в герметичную камеру, которую
заполняют окисью этилена. Время экспозиции
— 16 ч при температуре 18 градусов. Также
можно проводить стерилизацию смесью
окиси этилена и бромида метилена при
температуре 55 градусов в течение 6 ч.

Профилактика
СПИДа предусматривает своевременное
выявление инфицированных больных.
Правила личной безопасности предусматривают
выполнение любой работы в перчатках,
во время операции необходимо применять
специальные маски и очки. При попадании
крови и других биологических жидкостей
на кожу необходима обработка антисептиками.
Инструменты после использования
замачивают в 3% растворе хлорамина на
30 мин или 6% перекиси водорода на 90 мин.

18. Профилактика имплантационной инфекции. Методы стерилизации шовного материала, дренажей, скобок и др. Лучевая (холодная) стерилизация.

К
материалам, имплантируемым в организм
человека, относят шовный материал,
скрепки, скобки, протезы сосудов,
суставов, ткани и органы, дренажи,
катетеры, шунты.

Шовный
материал стерилизуют гамма-излучением
в заводских условиях. Металлический
шовный материал стерилизуют в автоклаве
или кипячением. Капрон, лавсан, лен,
хлопок можно стерилизовать по методу
Кохера. Это вынужденный метод, он
предусматривает механическую очистку
шовного материала горячей водой с мылом.
Мотки моют в мыльной воде в течение 10
мин, дважды меняя воду, затем отмывают
от моющего раствора, высушивают и
наматывают на стеклянные катушки,
которые помещают в банки с притертой
пробкой и заливают диэтиловым эфиром
на 24 часа для обезжиривания, после чего
перекладывают в банки с 70% спиртом на
такой же срок. После этого шелк кипятят
в течение в течение 10-20 мин в растворе
дихлорида ртути 1:1000 и перекладывают в
герметичные банки с 96% спиртом. Через 2
сут проводят бак.контроль.

Стерилизация
кетгута химическим способом предусматривает
предварительное обезжиривание, для
чего нити кетгута помещают в герметичные
банки с диэтиловым эфиром на 24 часа. При
стерилизации по Клаудиусу эфир из банки
сливают, кетгут заливают на 10 сут водным
раствором Люголя, затем заменяют на
свежий и оставляют еще на 10 сут. После
этого раствор Люголя заменяют 96% спиртом
и через 4-6 сут проводят контроль на
стерильность. Метод Губарева предусматривает
стерилизацию кетгута спиртовым раствором
Люголя в течение 20 сут.

Лучевая
стерилизация осуществляется гамма-лучами.
Используются изотопы кобальта и цезия.
Доза проникающей радиации должна быть
значительной.

19. Виды
    шовного материала. Стерилизация.

Существует
более 40 видов шовного материала. Применяют
рассасывающиеся и нерассасывающиеся
нити. Рассасывающимися являются нити
из кетгута, дексона, викрила.
Нерассасывающиеся нити — из шелка,
хлопка, конского волоса, льна, капрона,
лавсана, нейлона.

Шовный
материал должен удовлетворять следующим
требованиям:

• иметь
  гладкую, ровную поверхность, не вызывать
  при проколе дополнительного повреждения
  тканей.

• Обладать
  хорошими манипуляционными свойствами.

• Быть
  прочным в узле, не обладать гигроскопичными
  свойствами.

• Быть
  биологически совместимым с живыми
  тканями, не оказывать аллергического
  действия на организм.

• Разрушение
  нитей должно совпадать со сроками
  заживления раны.

Шовный
материал стерилизуют гамма-излучением
в заводских условиях. Металлический
шовный материал стерилизуют в автоклаве
или кипячением. Капрон, лавсан, лен,
хлопок можно стерилизовать по методу
Кохера. Это вынужденный метод, он
предусматривает механическую очистку
шовного материала горячей водой с мылом.
Мотки моют в мыльной воде в течение 10
мин, дважды меняя воду, затем отмывают
от моющего раствора, высушивают и
наматывают на стеклянные катушки,
которые помещают в банки с притертой
пробкой и заливают диэтиловым эфиром
на 24 часа для обезжиривания, после чего
перекладывают в банки с 70% спиртом на
такой же срок. После этого шелк кипятят
в течение в течение 10-20 мин в растворе
дихлорида ртути 1:1000 и перекладывают в
герметичные банки с 96% спиртом. Через 2
сут проводят бак.контроль.

Стерилизация
кетгута химическим способом предусматривает
предварительное обезжиривание, для
чего нити кетгута помещают в герметичные
банки с диэтиловым эфиром на 24 часа. При
стерилизации по Клаудиусу эфир из банки
сливают, кетгут заливают на 10 сут водным
раствором Люголя, затем заменяют на
свежий и оставляют еще на 10 сут. После
этого раствор Люголя заменяют 96% спиртом
и через 4-6 сут проводят контроль на
стерильность. Метод Губарева предусматривает
стерилизацию кетгута спиртовым раствором
Люголя в течение 20 сут.

20. Виды
    антисептики. Характеристика физической
    и механической антисептики: определение,
    задачи и методы.

Различают
механическую, физическую, химическую
и биологическую антисептику.

Механическая
антисептика.

Удаление
из инфицированной, гнойной раны, гнойного
очага нежизнеспособных тканей, гноя,
фибрина. Варианты механической антисептики
предусматривают ПХО раны, целью которой
является иссечение краев, стенок и дна
раны в пределах здоровых тканей. Вместе
с иссекаемыми тканями из раны удаляют
кровоизлияния, гематомы, сгустки крови,
инородные тела. Если в инфицированной
ране начала развиваться микробная
флора, или рана с самого начала носит
гнойный характер, применяют ВХО раны.
Иссечение при этом не производится, а
удаляются механическим путем —
скальпелем, ножницами, вакуумом,
промыванием струей жидкости под давлением
— некротизированные ткани, гной, фибрин.
Вскрывают гнойные карманы, эвакуируют
затеки. При этом также удаляется и
микробная флора. Туалет раны также носит
элементы механической антисептики.
Удаление пропитанных кровью, гноем
повязок, тампонов, промывание раны
струей жидкости просушивание раны
способствуют удалению из нее микробной
флоры.

Физическая
антисептика.

Методы
основаны на использовании законов
капиллярности, гигроскопичности,
диффузии, осмоса, принципа сифона,
воздействия лазера и ультразвука.

Дренирование
ран, гнойных очагов предусматривает
создание условий для оттока раневого
отделяемого во внешнюю среду. Его можно
производить с помощью марлевых тампонов,
тампона Микулича-Радецкого, резиновых
трубок разного размера. Используется
также проточно-промывной дренаж. Если
дренируемая полость герметична, применяют
активную аспирацию — вакуумное
дренирование.

Абактериальная
среда.

Лазерное
излучение малой мощности. На стенках и
дне раны под воздействием лазера
образуется тонкая коагуляционная
пленка, препятствующая проникновению
в ткани микроорганизмов.

Ультразвук
в жидкой среде проявляет физические и
химические свойства. В среде, подвергшейся
воздействию УЗ, создается эффект
кавитации, также происходит ионизация
воды, под влиянием чего в микробной
клетке прекращаются окислительно-восстановительные
процессы.

21. Химическая,
    биологическая и смешанная антисептика.
    Определение. Задачи и методы.

Химическая
антисептика.

Используются
вещества, позволяющие создать высокую
концентрацию антибактериального
препарата непосредственно в очаге
воспаления. Местное применение —
использование повязок с антисептическими
препаратами при лечении ран и ожогов,
мазей, присыпок. Введение растворов в
рану, закрытые полости с последующей
аспирацией через дренажи. Для санации
брюшной полости применяют препараты,
допустимые для внутривенного введения.
Общее применение включает прием
препаратов внутрь с целью местного
воздействия на микрофлору ЖКТ и общего
воздействия на организм после всасывания
в кровь. Внутривенное введение некоторых
препаратов.

Биологическая
антисептика.

Предусматривает
использование средств биологической
природы.

Антибиотики:

Протеолитические
ферменты. Лизируют некротизированные
ткани, фибрин, гной, оказывают противоотечное
действие и усиливают лечебное воздействие
антибиотиков. Животного происхождения
— трипсин, химотрипсин, рибонуклеаза,
коллагеназа. Бактериального происхождения
— террилитин, стрептокиназа, аспераза.
Растительного — папаин, бромелаин.
Применяют местно при лечении гнойных
ран, трофических язв в виде растворов
или порошков. Растворы ферментов
используют для внутриполостного введения
— в плевральную полость при гнойном
плеврите, полость сустава при гнойном
артрите, полость абсцесса. При лечении
воспалительных инфильтратов применяют
электрофорез ферментов. Как
противовоспалительные средства трипсин
и химотрипсиин вводят внутримышечно.

Бактериофаги.

Используют
антистафилококковый, антистрептококковый
бактериофаги, бактериофаг анти-коли.
Есть также поливалентные бактериофаги.
Используют для орошения ран, инфильтрации
окружающих рану тканей, введения в
гнойные полости, при сепсисе — внутривенно.

Анатоксины.

Применяют
для активной иммунизации. Стафилококковый
и столбнячный анатоксины.

Антистафилококковая,
антисинегнойная, антиколибациллярная
гипериммунные плазмы.

Антистафилококковый
и противостолбнячный гамма-глобулины.

Иммунностимулирующие
препараты — продигиозан, левамизол,
лизоцим, экстракт тимуса.

Смешанная
антисептика — сочетание разных видов
антисептики. Применяется для повышения
эффективности действия.

22. Биологическая
    антисептика. Классификация антибиотиков.
    Характеристика.

Основные
виды антибиотиков:

• пенициллины.
  Одни из наиболее эффективных. Природный
  пенициллин — бензилпенициллина натриевая
  или калиевая соли. Полусинтетические
  — ШСД(ампициллин, карбенициллин) ;
  пенициллиназоустойчивые — оксациллин.

• Цефалоспорины.
  Нарушают синтез клеточной стенки. ШСД.

• Стрептомицины.
  Подавляют функцию рибосом. ШСД.
  Ототоксичны, нефротоксичны, гепатотоксичны,
  угнетают гемопоэз.

• Тетрациклины.
  Подавляют
  функцию рибосом. ШСД. Гепатотоксичны.

• Макролиды.
  Нарушают синтез белка, гепатотоксичны,
  возможно нарушение функции ЖКТ.

• Аминогликозиды.
  Нарушают синтез клеточной стенки, ШСД.
  Ото- и нефротоксичны.

• Левомицетины.
  Нарушают синтез белка, ШСД. Угнетают
  гемопоэз.

• Фторхинолоны.
  Подавляют ДНК-гиразу. ШСД.

23. Антисептические
    средства. Механизм действия. Классификация.
    Характеристика.

Химические
антисептики:

• галоиды.
  Йод, спиртовый раствор. Для наружного
  применения. Йодинол, 1% раствор. Для
  наружного применения, полоскания.
  Йодонат и йодопирон. 1% растворы, для
  обработки операционного поля. Повидон-йод.
  Для обработки кожи и ран. Раствор Люголя
  — для стерилизации кетгута. Хлорамин
  Б, 1-3% раствор для дезинфекции.

• Соли
  тяжелых металлов. Сулема — 1:1000 для
  дезинфекции. Нитрат серебра — наружный
  антисептик. Протаргол, колларгол — для
  смазывания слизистых, промывания
  мочевого пузыря.

• Спирты.
  Этиловый спирт — для обработки рук,
  операционного поля.

• Альдегиды.
  Формалин — 0,5 — 5% растворы для дезинфекции.

• Фенолы.
  Карболовая кислота. Тройной раствор —
  формалин, карболовая кислота, сода и
  вода. Для дезинфекции.

• Красители.
  Бриллиантовый зеленый, метиленовый
  синий.

• Кислоты.
  Борная кислота, салициловая кислота.

• Щелочи.
  Аммиак.

• Окислители.
  Перманганат калия, перекись водорода.

• Детергенты.
  Хлоргексидин, дегмицид, церигель.

• Производные
  нитрофурана. Фурацилин, фурадонин.

Основные
виды антибиотиков:

• пенициллины.
  Одни из наиболее эффективных. Природный
  пенициллин — бензилпенициллина натриевая
  или калиевая соли. Полусинтетические
  — ШСД(ампициллин, карбенициллин) ;
  пенициллиназоустойчивые — оксациллин.

• Цефалоспорины.
  Нарушают синтез клеточной стенки. ШСД.

• Стрептомицины.
  Подавляют функцию рибосом. ШСД.
  Ототоксичны, нефротоксичны, гепатотоксичны,
  угнетают гемопоэз.

• Тетрациклины.
  Подавляют
  функцию рибосом. ШСД. Гепатотоксичны.

• Макролиды.
  Нарушают синтез белка, гепатотоксичны,
  возможно нарушение функции ЖКТ.

• Аминогликозиды.
  Нарушают синтез клеточной стенки, ШСД.
  Ото- и нефротоксичны.

• Левомицетины.
  Нарушают синтез белка, ШСД. Угнетают
  гемопоэз.

• Фторхинолоны.
  Подавляют ДНК-гиразу. ШСД.

Как выбрать медицинский стерилизатор — блог компании Auroramed

Какой медицинский стерилизатор вам нужен

Запросить КП
Консультация

Также с помощью стерилизаторов проводится деконтаминация шовных и перевязочных материалов, лабораторной посуды, технических емкостей.

Основной принцип действия классических стерилизаторов — термический. Он был изобретен ещё в древности — древнеримские врачи перед выполнением хирургических операций нагревали инструменты на огне. Есть сведения о том, что тепловое обеззараживание инструментов практиковали врачи в Китае и в доколумбовой Америке. В средние века об асептике забыли, что привело к небывалому распространению гнойных инфекций после врачевания. Так продолжалось до тех пор, пока в 1679 году француз Дени Папен не изобрёл автоклав.

Нагревание предметов и веществ до температуры от +50° до +200°C позволяет в разные сроки уничтожить на их поверхности и внутри всю микроскопическую фауну и флору:

• невидимых глазу иксодовых клещей;
• яйца и личинки паразитических червей и членистоногих;
• грибы и их споры;
• простейших, бактерии и их споры;
• вирусы и прионы (особые белковые образования, не содержащие нуклеиновые кислоты, но способные встраиваться в клетки организма и заставлять их продуцировать новые прионы).

Кроме того, в стерилизаторе при температуре выше +100°C происходит разрушение большинства сложных органических ядов.

Сухой и влажный методы

Термические стерилизаторы делятся на автоклавы и сухожаровые шкафы. В автоклавах стерилизующим агентом служит находящийся под давлением выше атмосферного нагретый водяной пар. В сухожаровых шкафах происходит просто воздействие горячим воздухом. Хотя в сухожарах температура может достигать +200°C, это не является достаточной гарантией полного уничтожения спор микроорганизмов и грибов, а также прионов. Кроме того, такую температуру не выдерживают многие чувствительные материалы и инструменты, особенно используемые в микрохирургии. Нельзя нагревать выше +120°C резиновые детали, входящие в состав многих медицинских приборов и инструментов. Всё это делает применение сухожаровых шкафов ограниченным. Их плюс по сравнению с автоклавом — нет необходимости иметь рядом источник воды.

Автоклав на службе медицины

Автоклавирование пока остается самым распространенным методом стерилизации, подходящим для большинства медицинских инструментов и материалов. В камере автоклава поддерживается давление пара от 0,5 до 4 атмосфер и температура от +120°C до +134°С. Стандартный режим автоклавирования предполагает нахождение инструмента при температуре +132°C и давлении 2 атмосферы в течение 3,5 минут. При необходимости гарантированно убить споры грибов и бактерий цикл длится 30 минут. Самой «горячей» является антиприонная обработка — исследования показали, что для гарантированного уничтожения этих ещё плохо изученных инфекционных агентов необходимо воздействие пара при 4 атмосферах и +134°C в течение 30 минут.

При всех безусловных плюсах автоклава, подтвержденных трехсотлетней практикой, у этих приборов есть недостатки:

1. Высокая энергоемкость — мощность даже небольшого автоклава с объемом камеры 10 литров начинается от 1 КВт, что предполагает приличный расход электричества (даже больший, чем у сухожара).
2. Достаточно высокая цена прибора, которая тем выше, чем больше объем камеры и режимов её работы.
3. Обязательное наличие источника воды.

Медицинская промышленность выпускает гибридные приборы, способные работать в сухом и паровом режиме.

Общий недостаток тепловых стерилизаторов в том, что в них нельзя обеззараживать материалы и инструменты, не выдерживающие сильного нагревания, например, сверхтонкие оптические эндоскопы.

УФ-лучи

Во второй половине XX века стали появляться методики холодной стерилизации. Все знакомы с кварцеванием — инструменты лежат в емкости, под лампой, излучающей ультрафиолетовый свет с длиной волны 253,7 нм, который совпадает с параметром поглощения света ДНК микроорганизмов. Однако ещё в 70-х годах прошлого века было установлено, что далеко не все вегетативные формы и особенно споры восприимчивы к ультрафиолету, на многие виды он вообще не действует. А вот сетчатку человеческого глаза он поражает без всяких исключений, вызывая также синтез в коже пигмента меланина, способного привести к возникновению злокачественных новообразований.

Радиация

В медицине также применялись промышленные стерилизаторы для обработки одноразовых инструментов жёстким гамма-излучением, однако этот метод оказался ещё более опасным, чем использование ультрафиолета. От него медицина уже давно отказалась.

На помощь приходит плазма

Самым инновационным и эффективным методом стерилизации инструментов, материалов и сред на сегодняшний день можно считать плазменную стерилизацию. В качестве агента выступает ионизированный газообразный пероксид водорода — всем знакомая с детства перекись. Она распыляется в камере аппарата и ионизируется с помощью мощного электромагнитного поля. Частицы плазмы проникают в самые микроскопические поры и отверстия обрабатываемых материалов, уничтожая там все известные науке формы жизни. В зависимости от объекта стерилизации цикл длится от 28 до 50 минут и полностью контролируется компьютерной программой.

Преимущества плазменной стерилизации:

1. Не требуются источники воды.
2. Компактность аппарата позволяет разместить его там, куда не влезет громоздкий автоклав.
3. Не наносит вреда самым деликатным инструментам и материалам.
4. Требует минимального расхода энергии.
5. Представляет собой инновационный продукт, наличие которого в медицинском учреждении продемонстрирует его устремленность в будущее.

В компании «Auroramed» можно приобрести автоклавы Getinge, BMT и Euronda, а также  плазменные стерилизаторы STERRAD Johnson & Johnson.

Преимущества и недостатки различных методов стерилизации

Все активнее на рынке используются низкотемпературные методы стерилизации. В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный.

1. Газовая стерилизация при помощи оксида этилена.
   Наиболее широко в мире применяется стерилизация с помощью этиленоксида. Для сравнения, в 1999г. в США 52,2% всех одноразовых медицинских изделий было простерилизовано с помощью этиленоксида, 45,5% — гамма-радиацией, 1,8% — паром и только 0,5% — другими методами. Этиленоксидная стерилизация прекрасно зарекомендовала себя в большинстве стран мира, оборудование для ее проведения выпускается большим количеством производителей в различных странах Европы и Америки.
   Этиленоксидный метод обеспечивает самый щадящий температурный режим стерилизации.
2. Газовая стерилизация при помощи формальдегида.
   Формальдегид нашел широкое применение в качестве средства для дезинфекции высокого уровня с использованием специальных камер. Для стерилизации же он не является самым удачным выбором. Низкая проникающая способность формальдегида приводит к тому, что данный метод требует применения рабочей температуры в пределах 65 – 80°С, и многие специалисты вообще не считают этот метод низкотемпературным. Для формальдегида имеются существенные ограничения в отношении стерилизации полых изделий, изделий с отверстиями и каналами. Весьма существенно, что для формальдегида не разработано нейтрализаторов и полного мониторинга процесса стерилизации.
3. Плазменный метод.
   Этот метод основан на действии плазмы перекиси водорода (Н₂О₂). Плазма — четвертое состояние вещества (в отличие от твердого, жидкого и газообразного). Она состоит из ионов, электронов, нейтральных атомов и молекул и образуется под действием внешних источников энергии, таких как температура, радиационное излучение, электрическое поле и др. При этом методе после впрыскивания раствора перекиси водорода в стерилизационную камеру включается источник электромагнитного излучения частотой 13,56 Мгц, под воздействием которого одновременно происходит деление одной части молекул Н2О2 на две группы (ОН-), а другой части — на одну гидропероксильную группу (ООН-) и один атом водорода, сопровождающееся выделением видимого и ультрафиолетового излучения. В результате создается биоцидная среда, состоящая из молекул перекиси водорода, свободных радикалов и ультрафиолетового излучения. При отключении электромагнитного поля свободные радикалы преобразуются в молекулы воды и кислорода, не оставляя никаких токсичных отходов.

Тест с ответами: “Стерилизация” | Образовательный портал

I вариант.

1. Перевязочный материал стерилизуют:
а) автоклавированием +
б) сухожаровым способом
в) кипячением

2. Методом кипячения стерилизуют шприцы, иглы, боры:
а) 20 минут
б) 30-40 минут +
в) 10 минут

3. Холодной стерилизации подвергаются:
а) боры
б) пинцеты
в) зеркала +

4. Стерилизация в сухожаровом шкафу при температуре 1800 С проводится в течении:
а) 60 минут +
б) 120 минут
в) 90 минут

5. Для дезинфекции стоматологического инструментария можно использовать растворы:
а) перекиси водорода 3%
б) гипохлорида кальция 4,5%
в) хлорамина 3% +

6. Целью предстерилизационной очистки медицинского инструментария является:
а) уничтожение только патогенных микробов
б) удаление различных загрязнений и остатков лекарственных средств +
в) обезвреживают источник инфекции

7. Предстерилизационной очистке инструментария предшествует:
а) пастерилизация
б) стерилизация
в) дезинфекция +

8. При проведении предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения:
а) удаляют различные загрязнения +
б) обезвреживают источник инфекции
в) уничтожают вегетативные формы микроорганизмов

9. Инструменты, поступающие в ЦСО, должны быть:
а) вымытыми под проточной водой после их использования
б) стерильными
в) продезинфицированными +

10. Детергенты – это:
а) дезинфекционные средства
б) моющие средства +
в) кожные антисептики

11. Концентрация перекиси водорода в составе моющего раствора (%):
а) 3 +
б) 5
в) 7

12. Состав 1л моющего раствора с использованием 27,5% пергидроля при предстерилизационной обработке:
а) 14 мл пергидроля + 2,5 г CMC + до 1 л воды
б) 17 мл пергидроля + 5 г CMC + до 1 л воды +
в) 33 мл пергидроля + 5 г CMC + до 1 л воды

13. Для приготовления 1 л моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл):
а) 160 +
б) 170
в) 130

14. Состав 1л моющего раствора с использованием 3% раствора перекиси водорода при предстерилизационной обработке:
а) 100 мл перекиси водорода + 10 г CMC и до 1 л воды
б) 220 мл перекиси водорода + 15 г CMC и до 1 л воды
в) 160 мл перекиси водорода + 5 г CMC и до 1 л воды +

15. Для приготовления 1 л моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять пергидроль 33% раствор (в мл):
а) 14 +
б) 18
в) 24

16. Виды дезинфекции:
а) однократная
б) очаговая и профилактическая +
в) влажная уборка

17. Стерилизация – это:
а) предупреждение попадания микроорганизмов в рану
б) удаление микроорганизмов с поверхности МИ
в) уничтожение вегетативных и спорообразующих микроорганизмов +

18. Режимы стерилизации паровым методом:
а) давление 1,1 атм. Темп. = 120 гр.С – 20 мин
б) давление 2 атм. Темп. = 132 гр. С – 20 мин +
в) давление 1,1 атм. Темп. = 120 гр.С – 60 мин

19. Основной режим стерилизации воздушным методом:
а) 120 гр. С – 40 мин
б) 180 гр. С – 60 мин
в) 180 гр. С -180 мин +

20. Время химической стерилизации МИ 6% раствором перекиси водорода:
а) Т – 20 гр. С – 40 мин
б) Т – 18 гр. С – 360 мин +
в) Т – 50 гр. С – 60 мин

II вариант.

1. Проба на качество предстерилизационной обработки:
а) азопирамовая +
б) никотинамидовая
в) бензойная

2. Гигиеническая обработка рук показана:
а) до и после снятия перчаток
б) после контакта с биожидкостями
в) перед инвазивными процедурами

3. Дезинфекция матраца, одеяла, подушки после выписки больного:
а) вытряхивание, выхлапывание
б) проветривание
в) обеззараживание в дезинфекционной камере +

4. Срок хранения стерильного материала в закрытом биксе:
а) 2 дня
б) 3 дня +
в) 3 месяца

5. Один из методов стерилизации:
а) капельный
б) переносной
в) воздушный +

6. Один из методов стерилизации:
а) жидкий
б) плазменный +
в) переносной

7. Один из методов стерилизации:
а) паровой +
б) газообразный
в) капельный

8. Обработка рук хирургов проводится:
а) после контакта с неповрежденной кожей пациента
б) до и после контакта с инфекционным больным
в) перед операционным вмешательством +

9. Выбор метода стерилизации зависит от:
а) конфигурации изделия
б) степени загрязненности изделия
в) особенностей стерилизуемого изделия +

10. Методами стерилизации являются:
а) сжигание, обжигание
б) химический +
в) кипячение в 2% растворе соды

11. Какие существуют виды дезинфекции?
а) местная
б) очаговая и профилактическая+
в) однократная
г) влажная уборка

12. Когда должна проводиться влажная уборка палат в ЛПУ?
а) не реже 2-х раз в день+
б) по просьбе пациентов
в) тогда, когда у санитарки есть время
г) частота влажных уборок не имеет значения

13. Отметьте способы и режимы стерилизации клизменных наконечников (пластмасса):
а) замачивание в 3% растворе хлорамина на 30 мин., высушить
б) паром под давлением при температуре 120о С, давление 1,1 атм. в течение 45 мин.+
в) паром под давлением при температуре 132о С, давление 2 атм. в течение 20 мин.
г) сухим жаром при температуре 180о С в течение 60 мин.

14. Какая должна быть укладка биксов для стерилизации?
а) рыхлой, чтобы проходил пар между слоями+
б) плотной, чтобы в бикс вместилось как можно больше стерилизуемого материала
в) плотность укладки бикса значения не имеет, самое главное – режим работы стерилизующей аппаратуры

15. Определите способы контроля работы стерилизующей аппаратуры при паровой стерилизации изделий из текстиля, стекла, металла:
а) мочевина, термоиндикаторная лента на 132о С+
б) бензойная кислота, сера, термоиндикаторная лента на 120о С
в) перекись водорода 4%
г) калия перманганат (кристаллы)

16. Выберите способы контроля работы стерилизующей аппаратуры при стерилизации изделий из латекса, резины, полимеров:
а) мочевина, термоиндикаторная лента на 132о С
б) бензойная кислота, сера, термоиндикаторная лента на 120о С+
в) фенолфталеин
г) азопирам

17. Отметьте самый точный способ контроля стерильности:
а) посев смывов на питательную среду (бактериологический анализ)+
б) термохимическая лента в зависимости от режима стерилизации
в) нет способов контроля стерильности

18. Что способствует распространению внутрибольничной инфекции?
а) Инвазивные процедуры;+
б) Осложненные заболевания;
в) Слабое материальное обеспечение лечебно-профилактического учреждения.

19. Как называется заболевание инфекционного характера, которым пациент заражается в процессе оказания медицинской помощи, а медицинский персонал в процессе оказания медицинских услуг?
а) Карантинным;
б) Внутрибольничным;+
в) Эндемичным.

20. Что такое артифициальный путь передачи?
а) Естественный через кровь;
б) Естественный контактно-бытовой;
в) Искусственный.+

Стерилизация автоклавированием — Справочник химика 21

    Глюкоза — 10,0 г Дистиллированная вода — до 1 л Вначале растворяют веронал и желатин примерно в 250 мл воды при 56 °С, затем добавляют остальные реактивы. После стерилизации автоклавированием в течение 10 мин при 1 атм доводят pH до нужного значения. [c.110]

    На практике чаще всего используют влажную и сухую стерилизацию жаром, а также стерилизацию фильтрованием. Примером влажной стерилизации может служить стерилизация посуды и сред автоклавированием. [c.57]

    Выбор режима автоклавирования. В микробиологической практике стерилизацию в автоклавах осуществляют при температуре в пределах 111—138°, т. е. 0,5 до 2,5 ати. Температура ниже 111° Не может считаться надежной температура выше 138°, как правило, не является необходимой, к тому же, чем выше давление пара, тем сложнее условия эксплуатации автоклава. При использовании автоклавов без вакуумных насосов наиболее надежными считаются следующие режимы стерилизации 15—45 мин при 121° (1 ати) и 10—30 мин при 128° (1,5 ати). Микробиологи чаще всего стерилизуют среды при 0,5 и 1 атг/. [c.33]

    Прп оценке возможности применения иолимерных. материалов в медицине необ.ходимо учитывать их устойчивость к воздействию 1)азличных видов стерилизации обработке водяным паром прп избыточном давлении 12() кп М-, или 1,2 кгс/см» (автоклавирование) прогреву до 120—130 С в течение 30. ИИ (т. наз. сухожарная стерилизация) обработке этиленоксидом или др. газами (газовая стерилизация) обработке р-рами гидроперекисей, хлорамина, четвертичных аммониевых оснований и др. облучеишо -луча ш, ускоренными элет тронами (радиационная стерилизация). Механизмы процессов, протекаюнщх ири стерилизации полимерных материалов, еще мало изучены. [c.183]

    Стандартные приемы стерилизации жидких сред описываются в гл. 23 этого руководства. Для предотвращения распада термолабильных компонентов среды используют стерилизацию фильтрованием. Небольшие объемы простых сред, используемых для культивирования бактерий, автоклавируют непосредственно перед их использованием, но для автоклавирования больших объемов [c.407]

    Для достижения температур выше точки кипения воды пользуются автоклавом. Температура насыщенного пара зависит от давления (рис. вЛ2). При доступе воздуха определенному давлению соответствует значительно более низкая температура. Поскольку гибель микроорганизмов под действием влажного жара зависит от температуры, а не от давления, необходимо закрывать автоклав лишь после того, как воздух будет из него вытеснен водяным паром. Воздух удаляется вместе с выходящим паром или в результате отсасывания. При автоклавировании следует измерять температуру, а не давление, хотя по соображениям простоты и безопасности обычно все еще измеряют давление. Продолжительность стерилизации, естественно, зависит от объема (теплоемкости) сосудов, в которых ее проводят (табл. 6.6). [c.208]

    При изучения химической и термической устойчивости смол испытание выдержала лишь смола КУ-2. Как уже указывалось, химическая и температурная устойчивость катионитов совершенно обязательны при работе с кровью, так как это обеспечивает неизменность состава крови и позволяет проводить ее заготовку в стерильных условиях. Следует подчеркнуть, что при каждой обработке крови катионит дважды подвергается стерилизации автоклавированием в течение 30 мин. при 120° и 1,2 атм. давления. Хотя катионит в течение 1,5 лет работы подвергался многочисленному автоклавированию и регенерации, каких-либо заметных изменений обменной емкости и других свойств установить не удалось. С увеличением числа регенераций смола только несколько светлеет. [c.189]

    Стерилизация насыщенным паром под давлением (автоклавирование) [c.29]

    Укупорку культуральных сосудов — пробки или завинчивающиеся крышки — подвергают такой же обработке, как и всю посуду 1) укупорку на этапе мытья с детергентом и последующим полосканием в горячей проточной воде можно подвергнуть кипячению 2) после мытья укупорку следует рассортировать по размерам и разложить в чашки Петри, затем завернуть чашки в бумагу или фольгу 3) стерилизовать (для этих изделий допустим только один способ стерилизации) автоклавированием в течение 30 мин при температуре 121 °С. [c.38]

    Культивирование гриба на жидких средах без автоклавирования, перемешивания и принудительной аэрации проводят без предварительной стерилизации среды, ее просто нагревают до кипения, разливают в деревянные каркасы, покрытые изнутри полиэтиленовой пленкой. Среду, охлажденную до 35—40°С, засевают сухими спорами. Сверху каркасы закрывают полиэтиленовой пленкой, которую после образования спороносной пленки гриба снимают. [c.77]

    Как добавлять субстрат Если микроорганизм не загрязнен и хорошо растет, то прибавлять к нему субстрат можно несколькими способами. В том случае, когда не требуется специального оборудования, следует открыть колбу, добавить в нее субстрат и снова закрыть колбу, естественно соблюдая все условия асептики. Правда, риск внести загрязнение в этом случае много меньше, чем в начале выращивания культуры, вследствие того что питание уже истощено, а сильно разросшаяся культура будет подавлять рост любого другого организма. Жидкие субстраты вносятся как таковые, а твердые субстраты, тщательно очищенные, иногда могут быть добавлены и сами по себе, но чаще всего используются их растворы. К счастью, обычно нет необходимости подвергать субстрат стерилизации, поскольку большинство органических соединений неустойчиво в условиях автоклавирования. Тем не менее для уменьшения риска внести загрязнение при применении водных растворов используют стерильную воду. [c.219]

    Стерилизация посуды производится в сушильном шкафу при 160 С в течение 1 часа или в автоклаве при 1 атм в течение 30 минут. При правильно произведенной стерилизации в сушильном шкафу бумага, в которую завертывается посуда, слегка буреет. После автоклавирования посуда вместе с оберточной бумагой просушивается. [c.184]

    Условия проведения микробиологических трансформаций стероидов являются общими для всех реакций с микроорганизмами. Необходимой предпосылкой работы с чистыми культурами является стерильность всех операций, позволяющая избежать заражений. Стерилизация, в зависимости от объекта, осуществляется автоклавированием при 110—120°, [c.46]

    В результате испытаний по режиму дезинфекция, мойка и стерилизация с использованием моющего раствора «Новость» с переки-. СЬЮ водорода, стерилизации — химической (6% раствор перекиси водорода), воздушной и паровой (автоклавирование) коррозионные потери не превышали 0,001 г/м без изменения поверхности. [c.47]

    Посуду можно стерилизовать и в автоклаве. Режим стерилизации в этом случае существенно зависит от объема сосудов и толщины стекла (см. табл. 4). Для автоклавирования посуду готовят, как и для сухожаровой стерилизации. Следует иметь в виду, что в автоклаве посуда увлажняется. [c.38]

    Трубки для переливания крови, бактериологические вакуумные и дренажные после трехкратной стерилизации не должны сплющиваться, слипаться и трескаться бактериологические вакуумные после десятикратного автоклавирования при температуре 135° не должны сплющиваться, слипаться и трескаться. [c.1202]

    Неомицин является химически стойким веществом. Он не инактивируется эксудатами, ферментами, секретами желудка. Растворы выдерживают стерилизацию кипячением и автоклавированием. [c.168]

    Использование мелкопористых мембранных фильтров со средним размером пор 0,45 0,04 мкм в принципе позволяет быстро и эффективно фильтровать бактериальные культуры, но не обеспечивает стерильности фильтрата. Сами мембранные фильтры и аппарат для стерилизации фильтрованием должны стерилизоваться автоклавированием или каким-либо другим способом. Собирать бактериальные клетки и готовить стерильные растворы путем фильтрования лучше всего под давлением азота. Такая фильтрация значительно снижает или полностью препятствует окислению фильтруемого вещества благодаря положительному давлению инертного газа в фильтрующем устройстве. Если необходимо собирать клетки в стерильных условиях, то азот следует предварительно простерилизовать фильтрованием. Все консультации по вопросам рабочего давления и размера используемого оборудования следует получить у фирмы-изготовителя. [c.428]

    Существуют следующие методы стерилизации горячий воздух, автоклавирование, фильтрование, облучение (например, у-облу-чение кобальтом 60 используется фирмами для пластиковой посуды одноразового пользования), обработка этиленоксидом. [c.46]

    Непрерывное культивирование требует довольно больших объемов среды и приводит к образованию соответствующих больших объемов культуральной жидкости с конечным продуктом. В табл. 10.4 представлены объемы свежей среды, необходимые для 20-часового непрерывного культивирования при различных скоростях разбавления. Для удобства там же приведено соответствующее время удвоения биомассы. Чтобы иметь возможность варьировать скорость подачи среды в случае 20-часового культивирования, рекомендуется готовить достаточное количество среды. Поскольку в большинстве лабораторных операций стерилизацию проводят путем автоклавирования, предпочтительнее готовить требуемые объемы среды в бутылях соответствующего размера. [c.404]

    Среды необходимо довольно длительное время. Так, в зависимости от состава среды сосуды, содержащие около 10 л жидкости, следует автоклавировать от 30 до 90 мин при 121 °С. Для полной стерилизации 10-литровых объемов среды, содержащей такие компоненты, как кукурузная или соевая мука, требуется до 90 мин, тогда как среды, содержащие только растворимые компоненты, можно стерилизовать в течение 30 мин при 121 С. Во время автоклавирования все сосуды следует соединить друг с другом для уравновешивания давления. [c.408]

    При стерилизации сеточек, применяемых для фильтрования трипсинизированной суспензии при получении первичных культур, сеточки следует поместить в фильтровальные воронки и завернуть воронки в алюминиевую фольгу так, чтобы при разворачивании эта система не нарушилась. Завернутые воронки стерилизуются автоклавированием. [c.47]

    Автоклавирование. Отдельные операции процесса стерилизации в автоклавах разных типов могут быть несколько различными. Соответственно немного различается и техника работы с ними. Однако общий принцип проведения стерилизации в разных автоклавах один и тот же. [c.31]

    Учесть результаты опытов, поставленных с бактериальными тест-объектами для контроля эффективности стерилизации, проведенной путем кипячения и автоклавирования. Сделать заключение. [c.41]

    Различают термическую и холодную стерилизацию. В микробиологии находят применение следующие способы термической стерилизации прокаливание в пламени и обжигание, сухожаровая стерилизация (горячим воздухом), стерилизация насыщенным паром под давлением (автоклавирование), дробная стерилизация (тиндализация), кипячение. Из методов холодной стерилизации микробиологи используют стерилизацию фильтрованием, газообразными средствами, ультрафиолетовыми лучами и другими видами излучений. [c.29]

    Режим автоклавирования в значительной степени зависит от объема стерилизуемого субстрата. Чем больше объем, тем больше Бремени при одной и той же температуре (давлении) требуется для обеспечения надежности стерилизации. Имеет значение толщина стенок и форма емкостей (табл. 4). Это нужно учитывать в практической работе. Например, не следует стерилизовать термочувствительный субстрат одновременно в пробирках и больших [c.34]

    Когда воздух вытеснен, закрывают пароотводный кран, и давление пара доводят до показания, соответствующего режиму стерилизации. Режим автоклавирования часто выражают в единицах избыточного давления, указывая при этом продолжительность его поддержания. Например стерилизация при 1 ати в течение 20 мин. На манометре автоклава обозначается именно то дополнительное давление, которое создается в автоклаве сверх нормального. Нередко режим автоклавирования характеризуют температурой и временем. Как только стрелка манометра дойдет до указателя определенного дополнительного давления и, следовательно, температура пара достигнет соответствующего значения, поддерживают давление на этом уровне необходимое время путем ручного нли автоматического регулирования подачи пара. В автоклавах с огневым обогревом подачу пара регулируют интенсивностью горения, в автоматических автоклавах — электроконтакт- ым манометром. [c.32]

    Что касается больниц, то там применяются самые разнообразные дезинфекционные средства. Помимо стерилизации, осуществляемой кипячением в воде и автоклавированием, применяют все описанные выше дезинфекционные средства, причем предпочтение отдается мыльным, содержащим хлорксиленол. [c.260]

    Температура и длительность автоклавирования питательные сред определяются прежде всего их составом, термоустойчивостью или термолабильностью компонентов. Такие легко разрушающиеся субстраты, как молоко или желатиновые среды, а также субстраты, содержащие сахара, витамины (пивное сусло, соки, дрожжевой автолизат и др.) обычно стерилизуют при 0,5 ати в течение 15—30 мин. Мясопептонные среды можно стерилизовать при 1,0 ати 20 мин. Среды, содержащие агар, стерилизуются труднее, потому что стерилизация начинается фактически после того, как агар расплавится. Но и расплавленный агар требует для стерилизации вдвое больше времени, чем тот же объем воды. С трудом поддаются стерилизации в автоклаве различные порошки (например, тальк) и вязкие жидкости (глицерин, вазелиновое масло), поскольку они плохо передают тепло и очень медленно прогреваются. Их лучше стерилизовать в сушильных шкафах при 160 ° в течение 2 ч или 1 ч при 170 °. В этом случае слой масла или порошка в сосуде не должен превышать 1,5 см. [c.34]

    При оценке возможности применения полимерных материалов в медицине необходимо учитывать их устойчивость к воздействию различных видов стерилизации обработке водяным паром при избыточном давлении 120 кн м , или 1,2 кгс1см (автоклавирование) прогреву до 120—130°С в течение 30 жим (т. наз. сухожарная стерилизация) обработке этиленоксидом или др. газа-вди (газовая стерилизация) обработке р-рами гидроперекисей, хлорамина, четвертичных аммониевых оснований и др. облучению у-лучами, ускоренными электронами (радиационная стерилизация). Механизмы процессов, протекающих при стерилизации полимерных материалов, еще мало изучены. [c.183]

    Питательные среды стерилизуют обычно в автоклавах (таблица 52). В принципе желательна стерилизация автоклавированием (12ГС) небольщих объемов питательных сред, поскольку многие ингредиенты разрушаются при более продолжительном нагревании и давлении. Установлено, что температура выше 12 ГС может быть причиной нарушения качества сред, и, как следствие, плохого роста культур. [c.502]

    Для блоксополиуретанов (сегментированных полиуретанов) у-облучение может вызвать распад полимера на низкомолекулярные фрагменты с выделением исходных мономеров, например, диаминодифенилметана, чего не наблюдалось при стерилизации автоклавированием [24]. Поэтому, для тонкостенных изделий из этих полимеров использование доз 25-30 кГр не рекомендуется [6]. [c.309]

    Следует сделать важное замечание, относящееся к подсчету бактерий с помощью как эпифлюоресцентной микроскопии, ак и микроскопии в проходящем свете Растворы и другие чйатериалы, используемые в процессах окраски и фильтрации, сами могут содержать бактерии, которые будут уловлены на 1 1ембране или фильтре и подсчитаны. Действительно, бактерии огут расти в разбавленных растворах красителей при хране- йи. Поэтому весьма существенно, чтобы все растворы красителей, а также вода, используемая для любого разбавления, были предварительно отфильтрованы через мембраны. или 4>ильтры, имеющие те же размеры пор, что и используемые окончательном анализе. Стерилизация автоклавированием не позволяет избавиться от бактерий, и поэтому их можно подсчитать под микроскопом. Самое лучшее, что можно сделать,— это предварительно отфильтровать все растворы и затем хра- ить их в стерильных контейнерах, извлекая из них в стерильных условиях небольшие пробы для ежедневной работы. [c.218]

    Для культивирования грибов этого семейства используются как искусственные питательные среды, так и сложные природные субстраты. К числу последних относятся стерилизованные в автоклаве продукты, используемые в виде кусочков или фарша морковь, редька, картофель, свинина, говядина, телятина, рыба, печень, селезенка. Кровь, свернувшаяся сыворотка, а также яичный желток или молоко являются основными частями, добавляемыми в бактериологические среды. Среды из насекомых готовились из растертых простерилизованиых особей видов хозяев, поражаемых данным возбудителем, обычно с 1,5—2,0% -ным агаром. Для стерилизации животных тканей применяют преимущественно автоклавирование или холодную стерилизацию этиленоксидом. Этот газ при низких температурах сжижается, и его можно долго сохранять в холодильнике. Жидкий этиленоксид выливают на стерилизуемый материал в пробирке или чашке Петри, помещаемые в эксикатор, где химикат, испаряясь, переходит в газообразное состояние и после полного испарения стерилизует материал, используемый в качестве питательного субстрата. Лучшая среда для выделения и культивирования грибов этого семейства — [c.313]

    Из других методов контроля следует отметить сухую стерилизацию почв (175° в течение 18 час.), автоклавирование, обработку окисью этилена (12% в течение 72 час.). Опыты показали, что лучшими можно считать первые два способа стерилизации. Однако потеря в весе нри сухой стерилизации составляла 17% для пиролитического СОг и 18% для улавливаемой органики. В случае автоклавирования наблюдалась меньшая потеря образцов (Hubbard et al., 1970). Это обстоятельство пе позволяет рекомендовать какой-либо из данных методов стерилизации в качестве универсального для контрольного эксперимента. Ошибки, которые могут возник путь при неправильном контроле, довольно значительные. Особенно в случае щелочных типов почв, которые вызывают пеоргапичсскос связывание СОг минеральными частицами. [c.125]

    Доводят pH до 7,0. Для получения первичной накопительной культуры среду используют без стерилизации. Чтобы получить среду, используемую для посева разливом в чашки, готовят среду двойной концентрации, но без агара, доводят ее pH до указанного значения и стерилизуют фильтрованием (положительное давление). Отдельно готовят 4%-ный раствор агара в свежедистиллированной прокипяченной воде и стерилизуют его кратковременным автоклавированием. Температуру среды двойной концентрации и расплавленного агара доводят до 45—50°С и с соблюдением правил асептики смешивают их в равных объемах. [c.348]

    Стерилизационные ампулы Брауна содержат жидкость, которая под влиянием высокой температуры претерпевает медленное химическое превращение, так что ее цвет меняется с красного на желтый и затем на зеленый. Именно появление зеленого цвета свидетельствует о правильности выбранной комбинации температуры и продолжительности нагреваний. Несколько таких индикаторов должны быть размещены в каждой партии стерилизуемого материала. При автоклавировании жидкостей важно помещать ампулы Брауна в контрольные бутыли с жидкостями, поскольку условия внутри таких бутылей могут отличаться от условий вне их. Для стерилизации сухим жаром и паром используются различные типы ампул Брауна. При стерилизации паром используются ампулы типа I (черная метка), а при стерилизации сухим жаром используются ампулы типа П1 (зеленая метка). Ампулы Брауна поставляются фирмой Albert Browne Ltd. (приложение 3) каждый набор снабжен инструкцией и цветовым кодом. [c.48]

    Мембранные фильтры удаляют из протекающей через них жидкости все частицы, размер которых превышает размер пор. Высокая пористость обеспечивает достаточно высокую скорость протекания, и при правильном подборе размера пор можно получать стерильный фильтрат. Как правило, используются фильтры с диаметром пор 0,22 мкм, но в некоторых случаях требуются фильтры с пораТли меньшего диаметра. Поэтому часто используются две или даже три мембраны с уменьшающимся размером пор, например с порами диаметром 0,45, 0,22 и 0,10 мкм. Фильтры изготовляются из этерифицированной целлюлозы, так что их можно стерилизовать автоклавированием. Они устанавливаются в держателе фильтров и в случае необходимости покрываются алюминиевой фольгой. В продаже имеются фильтры с широким диапазоном диаметров, так что фильтрование является рутинным методом стерилизации жидкости в объеме от 1 мл до 5 галлонов и более. [c.48]

    В процессе культивирования гриба на твердых и жидких автоклавированных средах без перемешивания и принудительной аэрации предусматривается стерилизация размещенных по отдельным емкостям питательных сред твердых — сусло — агар, картОф Л1>, морковь, кукуруза, корки арбуза, иногда зерна пшеницы и кукурузы — в течение 40 мин при 112°С и жидких — сусло с содержанием сахаров около 7% — в течение 20 мин при 110°С. В стерильный субстрат вносят сухие споры или их суспензию, емкости с субстратом встряхивают до однородного распределения посевного материала и оставляют стоять при температуре окружающего воздуха 18—23°С. [c.77]

    Стерилизуют листья, погружая их на 20 мин в 10%-ный (вес на объем) коммерческий отбеливатель (например. Domes-tos), а затем ополаскивают 5 раз в 400 мл стерильной водопроводной воды. Для стерилизации удобен автоклавирован-ный сосуд из пирекса. [c.146]

    Углеводы и спирты готовят в виде 10%-ных водных растворов и стерилизуют отдельно от основного фона среды автоклавированием при 0,5 ати или фильтрованием. Раздельная стерилизация рекомендуется в связи с тем, что сахара в присутствии фосфатов и других компонентов среды частично разрушаются и образуют соединения, токсичные для микроорганизмов. Стерильные растворы добавляют к основному фону в таком количестве, чтобы концентрация сахара (спирта) в среде составляла 1 г на 100 мл. Среды засевают суспензией клеток микроорганизмов и выдерживают в течение 1—5 суток при соответствующей температуре. Медленно развивающиеся микроорганизмы инкубируют в течение 7—10 суток. Рост или его отсутствие на среде с данным источником углерода определяют по помутнению среды, образованию пленки или осадка. Изменение цвета индикатора указывает на образование кислых или щелочных (вследствие разложения пептона) продуктов метаболизма. Об образовании газа свидетельствует накопление его в поплавке (рис. 61). Результаты наблгоде- [c.156]

Способ стерилизации медицинских инструментов

Использование: медицина, в частности способ стерилизации медицинских инструментов. Сущность изобретения: способ включает размещение инструментов в емкости, введение в емкость этилового спирта в количестве, определяемом в зависимости от объемов емкости и обрабатываемого инструмента, герметизацию емкости и ее нагревание, вследствие чего инструмент обрабатывается парами спирта. 2 з.п.ф-лы.

Изобретение относится к медицине, а именно к способам термической стерилизации медицинских инструментов, таких как скальпели, зажимы, иглы, сшивающие аппараты, пилы, фрезы, зубные боры, пинцеты, кусачки и т. д.

Известно, что наиболее надежным способом стерилизации медицинских инструментов является способ термической обработки, например, при помощи автоклава [1] Недостатком известного способа является то, что при термической обработке инструмента водяным паром в автоклаве происходит затупление режущего инструмента, он коррозирует (подвергается коррозии). Кроме того, стерильность материала без специальной упаковки считается 3 суток [см. 1, стр. 34] а реинфекция материала в биксах при транспортировке достигает 23% случаев [там же, стр. 66] Известен способ стерилизации медицинских инструментов, включающий размещение инструментов в герметичной емкости и обработку поверхности инструмента парами спирта [2] Недостатком известного способа, принятого за прототип, является то, что он не обеспечивает надежной стерилизации в связи с осуществлением последней при нижних температурах (45-65^oC) и низком давлении (порядка 1 атм), при которых при стерилизации медицинского инструмента, в частности хирургического, а именно в местах соединения, соприкосновения частей и поверхностей между собой и т.д. не проникает химический реагент. Целью данного изобретения является повышение надежности стерилизации, обеспечение возможности длительного хранения инструмента с стерильном состоянии (в том числе при транспортировке), а также предотвращение корродирования и притупления инструмента. Для этого медицинский инструмент помещают в герметичную емкость, в которую вводят этиловый спирт в определенном объеме, например, 2-3 мл спирта на 1 л объема емкости для образования насыщенных паров спирта, после чего емкость герметизируют и подвергают термической обработке, стерилизуя медицинский инструмент разогретыми парами спирта. При этом термообработка емкости снаружи возможна насыщенными парами в режиме автоклавирования в принятых режимах или в сухожаровом шкафу. При повышении температуры в автоклаве этиловый спирт, имея Т^o кипения 78,3^oC начинает испаряться раньше воды в автоклаве и создавать повышенное давление внутри герметичной емкости, что дополнительно будет препятствовать проникновению паров воды внутрь этой емкости медицинским инструментом в автоклаве и в сухожаровом шкафу. При этом внутри герметичной емкости с мединструментом будут находиться пары этилового спирта, который не вызывает коррозию и притупление медицинского инструмента и, являясь антисептиком, повышает степень надежности стерилизации. Снаружи в автоклаве герметическая емкость стерилизуется как обычно водяным паром. При осуществлении стерилизации в сухожаровом шкафу герметичная емкость выступает как мини-автоклав, работающий на этиловом спирте. Сохранность стерильности медицинского инструмента в этом случае определяется временем сохранности герметичности емкости. Способ может быть осуществлен известными устройствами в соответствии с необходимыми режимами для определенного мединструмента с учетом его материала. Например, скальпель, зажимы из углеродистой стали стерилизуют автоклавированием при Т^o 120^oC и давлении 1,2 атм в течение 45 мин или при Т 132^oC давление 2 атм в течение 20 мин согласно ОСТ-42-21-2-85. При указанном выше способе V₁ объем этилового спирта; V₂ объем герметичной емкости и V₃ объем стерилизуемого материала определяется из соотношения: V₂-V₃V₁V₂0,002; при этом нижний предел V₂0,002 обусловлен тем, что ниже него не обеспечивается полного наполнения объема герметичной емкости насыщенными парами этилового спирта при температуре автоклавирования. Применение данного способа позволяет повысить эффективность стерилизации медицинского инструмента с последующим обеспечением их длительного хранения в стерильном состоянии.

Формула изобретения

1. Способ стерилизации медицинских инструментов, включающий размещение инструментов в герметичной емкости и обработку поверхности инструментов парами спирта, отличающийся тем, что используют этиловый спирт, который вводят в емкость в жидком виде в количестве, определенном из соотношения V₂ V₃ V₁ V₂ 0,002, где V₁ объем спирта; V₂ объем емкости;
V₃ объем стерилизуемого инструмента,
после чего емкость нагревают. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что нагревание емкости осуществляют в автоклаве. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что нагревание емкости осуществляют в сухожаровом шкафу.

Как работает лабораторный автоклав?

Стерилизация паром — важный процесс, который выполняется в каждой лаборатории. В этой статье мы рассмотрим историю паровой стерилизации, принцип работы стерилизатора и новые тенденции в дизайне стерилизатора.

Содержание

Введение в паровую стерилизацию

Терминология

Термины паровой стерилизатор и автоклав являются синонимами и могут использоваться как синонимы.Тем не менее, автоклав часто используется в лабораторных условиях, а стерилизатор чаще используется в больницах или фармацевтических учреждениях.

Автоклавы используют тепло пара для уничтожения любых микробов, которые могут присутствовать на зараженной загрузке . Загрузка, также известная как товаров , считается стерильной после того, как она прошла полный цикл стерилизации . После того, как загрузка станет стерильной, ее можно использовать, не опасаясь занесения чужеродных микроорганизмов в чувствительную среду, такую ​​как лаборатория, операционная больницы, предприятие по производству пищевых продуктов и т. Д.Различные типы товаров необходимо стерилизовать в течение разного времени и при разных температурах. Некоторые автоклавы включают дополнительные функции, такие как функции вакуумирования, специальные циклы и встроенные электрические бойлеры.

История автоклава

Чарльз Чемберленд изобрел автоклав в 1879 году, но концепция использования пара в замкнутом пространстве для предотвращения болезней существует в той или иной форме с 1679 года.

Принципы и методы для стерилизация практически не изменилась за последние 150 лет.Фактически, большинство основных достижений в технологии автоклавов с 1879 года были связаны с мониторингом процесса стерилизации, безопасностью автоклавов и созданием цикла стерилизации, а не с изменениями процесса стерилизации.

Почему Steam?

Чтобы убить клетку теплом, ее температура должна быть повышена до такой степени, при которой белки в клеточной стенке разрушаются и коагулируют. Пар — очень эффективная среда для передачи тепла, что делает его отличным способом уничтожения микробов.С другой стороны, воздух — очень неэффективный способ передачи тепла / энергии из-за концепции, известной как теплота испарения.

Для доведения одного литра воды до точки кипения (100˚C) требуется 80 килокалорий (ккал) тепловой энергии. Для преобразования этого литра воды в пар потребуется 540 ккал, а это значит, что пар при 100 ° C содержит в семь раз больше энергии, чем вода при 100 ° C.

Эта энергия делает пар намного более эффективным в уничтожении микроорганизмов.Когда пар сталкивается с более холодным объектом, он конденсируется в воду. Затем он передает всю энергию, которая была использована для кипячения воды, прямо в воду. Этот процесс нагревает клетки намного эффективнее, чем воздух при аналогичных температурах. Вот почему мы используем пар для достижения стерильности.

Что такое бесплодие?

У большинства людей есть рабочее понимание, что стерильные товары не содержат микроорганизмов и, следовательно, безопасны для использования в медицине, производстве пищевых продуктов, исследованиях или других условиях, в которых присутствие микробов может представлять значительную угрозу безопасности или вред.

Точное количество микроорганизмов, которые останутся живыми с течением времени при фиксированной температуре, выражается в виде вероятностной логарифмической кривой — функции, которая приближается, но никогда не достигает нуля (см. Рисунок 1).

Рисунок 1

Когда функция приближается к нулю, обычно выбирают уровень достоверности, называемый уровнем обеспечения стерильности (SAL), для вероятности того, что последний присутствующий микроорганизм выживет. Вопреки распространенному мнению, стерилизация не является бинарной, если что-то либо стерильно, либо нестерильно.Стерилизация — это статистическое событие, характеризующееся этим коэффициентом достоверности (SAL). Общий стандарт для SAL — 10-6, или один шанс на миллион выживания одного жизнеспособного микроорганизма. Продолжительность стерилизации зависит от заданной температуры и желаемого уровня SAL; более высокие температуры обеспечат стерильность быстрее.

Как работает автоклав?

Общий процесс

Будь то небольшой настольный агрегат или крупногабаритный агрегат размером с комнату, все автоклавы работают по принципам, аналогичным принципам обычной кухонной скороварки, то есть дверца закрывается, образуя герметичную камеру. и весь воздух в этой камере заменяется паром.Затем пар повышается под давлением, чтобы довести его до желаемой стерилизации в течение желаемой продолжительности. По завершении цикла пар выпускается, и товары могут быть удалены.

Для более подробного объяснения различных фаз цикла стерилизации, пожалуйста, обратитесь к списку и изображению (Рисунок 2), показанным ниже:

1. Фаза продувки: Пар проходит через стерилизатор и начинает вытеснять воздух. ; температура и давление слегка повышаются до непрерывной продувки.

2. Фаза выдержки (стерилизации): Во время этой фазы система управления автоклава запрограммирована на закрытие выпускного клапана, в результате чего внутренняя температура и давление повышаются до желаемой уставки. Затем программа поддерживает желаемую температуру (остается) до тех пор, пока не будет достигнуто желаемое время.

3. Выпускная фаза: Давление сбрасывается из камеры через выпускной клапан, и внутри восстанавливается давление окружающей среды (хотя содержимое остается относительно горячим).

Рисунок 2

Критические компоненты автоклава

Типичный лабораторный автоклав состоит из следующих компонентов (Рисунок 3):

Рисунок 3

1. Емкость

Емкость является основной корпус автоклава и состоит из внутренней камеры и внешней рубашки. Лабораторные и больничные автоклавы сконструированы с камерами с «рубашкой» (см. Рис. 4), где рубашка заполнена паром, что сокращает время, необходимое для завершения цикла стерилизации, и уменьшает конденсацию внутри камеры.Сосуд, спроектированный и изготовленный с полной рубашкой, превосходит сосуд с частичной рубашкой или рубашкой по следующим причинам: полная рубашка улучшает однородность температуры в камере, снижает вероятность образования мокрых пакетов и помогает минимизировать влажный пар, который не подходит для стерилизации. [

В США каждая емкость автоклава проверяется и маркируется паспортной табличкой Американского общества инженеров-механиков (ASME), на которой указан номер Национального совета.Производители должны провести гидростатические испытания каждого сосуда и наклеить паспортную табличку ASME перед вводом автоклава в эксплуатацию. Этот осмотр и паспортная табличка ASME являются ключевыми показателями исправной работы автоклава.

Сосуды для лабораторных и больничных автоклавов могут различаться по размеру от 100 л до 3 000 л и обычно изготавливаются из нержавеющей стали 316L. Внутренние камеры изготавливаются из нержавеющей стали 316L или никелированной, а внешние кожухи изготавливаются из нержавеющей стали 316L, 304L или углеродистой стали.

2.Система управления

Все современные автоклавы оснащены интерфейсом контроллера, мало чем отличающимся от того, что вы найдете в микроволновой печи или духовке. Тем не менее, системы управления автоклавами, как правило, немного сложнее, чем системы бытовой техники. Цикл стерилизации следует заранее запрограммированной формуле программного обеспечения, которая открывает и закрывает клапаны и другие компоненты в определенной последовательности. Следовательно, для всех автоклавов требуется какая-либо система управления, будь то простая система «нажимных кнопок» с микропроцессором или такая сложная, как программируемый логический контроллер с цветным сенсорным экраном.

3. Термостатическая ловушка

Все автоклавы оснащены термостатической ловушкой или конденсатоотводчиком той или иной формы — устройством, предназначенным для выхода воздуха и воды (конденсата) из камеры. Хотя система подачи пара / паровой автоклав может использовать множество ловушек, все они выполняют одну и ту же основную функцию: удаление конденсата при одновременном предотвращении прохождения сухого пара. Чаще всего конденсатоотводчики представляют собой термочувствительные клапаны, которые закрываются при нагреве до определенного заданного значения.Термостатические ловушки — важный компонент любого хорошо спроектированного автоклава.

4. Предохранительный клапан

Все автоклавы работают под повышенным давлением (14–45 фунт-сила на квадратный дюйм манометра) и поэтому должны быть изготовлены с невероятно прочной конструкцией и оснащены рядом функций безопасности и устройств, обеспечивающих они не представляют опасности для пользователей. Одним из этих предохранительных устройств является предохранительный клапан, который является последним предохранительным устройством для резервуара высокого давления в случае выхода из строя всех электронных средств управления.Крайне важно, чтобы предохранительный клапан был осмотрен, испытан и подтвержден на предмет надлежащего рабочего состояния в соответствии с рекомендациями производителя стерилизатора и / или клапана, а также местных инспекционных и страховых агентств.

5. Механизм охлаждения сточной воды

Многие автоклавы оборудованы системой охлаждения сточных вод (воздуха, пара и конденсата) до их попадания в дренажный трубопровод. Многие муниципалитеты и здания не допускают попадания сточных вод выше 140 ° F в канализацию пола.Во избежание повреждения дренажного трубопровода на предприятии пар необходимо охладить перед тем, как его можно будет отправить по вытяжке. Самый простой способ охлаждения этого пара — смешать его с дополнительной холодной водопроводной водой, но необходимое количество воды может привести к тому, что автоклав станет основным источником потребления воды зданием. Некоторые автоклавы оснащены системами, предназначенными для уменьшения или даже исключения потребления воды.

6. Вакуумная система (если применимо)

Для обеспечения надлежащей стерилизации жизненно важно, чтобы весь воздух внутри камеры автоклава был заменен паром.Некоторые обычно стерилизуемые товары — особенно пористые материалы, такие как подстилка для животных или ткань, или контейнеры с небольшими отверстиями, такие как фляги или товары в мешках, — имеют тенденцию удерживать воздушные карманы. Если во время цикла присутствует воздушный карман, любые микроорганизмы в этом кармане выживут, и товары не будут стерильными.

По этой причине многие стерилизаторы включают вакуумную систему. Это не только позволяет пользователю принудительно удалять воздух с помощью вакуума в камере перед циклом (известный как предварительный вакуум), но также позволяет им использовать вакуум после цикла (известный как пост-вакуум) для удаления любого пара. который остается в камере, и для сушки товаров внутри автоклава.

7. Парогенератор (если имеется)

Центральный «домашний» котел является наиболее распространенным источником пара для автоклава. Однако, если пар в помещении недоступен или недостаточен для автоклава, необходимо прибегнуть к использованию электрического парогенератора, также известного как бойлер. Эти котлы обычно располагаются под камерой автоклава и используют электрические нагревательные элементы для нагрева воды и генерации пара.

Нужна помощь в выборе источника пара для автоклава? Проверьте это >>>

Рисунок 4

Чтобы узнать больше об автоклавах, посмотрите наше видео здесь:

Циклы стерилизации

Как правило, существует четыре стандартных цикла стерилизации: гравитационная , предварительный вакуум, жидкости и вспышка (также известная как немедленное использование).Таблица, показанная ниже, объясняет эти циклы более подробно.

Некоторые автоклавы также могут выполнять специальные циклы, предназначенные для предотвращения повреждения хрупких товаров, которые необходимо стерилизовать, но которые могут быть повреждены или разрушены быстрыми изменениями температуры и давления в нормальном цикле. Эти специальные циклы включают в себя гораздо более длительные циклы при более низких температурах, циклы паровоздушного смешения со специальными регуляторами давления, чтобы избежать разрушения запечатанных пробирок, и циклы, в которых используется специальное оборудование для обеспечения полной температуры стерилизации.

Вот что вам нужно знать о циклах стерилизации паром >>>

Новые тенденции в автоклаве

Автоклавы могут считаться древними устройствами по стандартам современной науки, но это не означает, что автоклавам не хватает инноваций, особенно когда дело доходит до средства управления, возможность подключения к облаку и воздействие на окружающую среду.

Как упоминалось ранее, средства управления автоклавами значительно продвинулись в эпоху компьютеров, от ручного управления и простых таймеров до компьютерной автоматизации, которая сводит к минимуму или полностью исключает необходимость ввода данных пользователем.Компьютеризированные средства управления также привели к прогрессу в управлении данными, ведении записей и удаленном мониторинге с помощью мобильных устройств. Автоклавы с автоматическими принтерами, которые записывают данные с целью проверки успешной стерилизации, теперь заменены новыми автоклавами, которые подключаются к облаку для хранения записей цикла в Интернете.

Еще одна тенденция в конструкции автоклавов — экологичность. Автоклавы являются основным источником потребления воды и энергии как в лабораториях, так и в больницах; Признавая это, многие производители нашли инновационные способы уменьшения воздействия автоклавов на окружающую среду.Зеленые автоклавы, которые сокращают или даже полностью рециркулируют воду, потребляемую стерилизатором — в некоторых случаях от 1500 галлонов в день до менее одного галлона в день — имеют решающее значение для создания экологически чистой лаборатории. Системы управления, которые автоматически поворачивают автоклав, когда он не используется, также могут значительно снизить потребление энергии — в некоторых случаях с 80 киловатт-часов в день до 20 киловатт-часов в день.

Ваш надежный источник всего, что связано с автоклавом

Независимо от того, используете ли вы автоклав для стерилизации медицинского или лабораторного оборудования, важно, чтобы вы хорошо понимали процесс стерилизации — как то, как он работает сегодня, так и как он меняется.

Задайте эти ключевые вопросы перед покупкой следующего автоклава >>>

Consolidated Sterilizer Systems имеет богатое наследие в индустрии паровой стерилизации с более чем 75-летним опытом. Мы стремимся к совершенству производства и стремимся поставлять высококачественные, высокоэффективные решения для стерилизации и дистилляции. Если вы хотите узнать больше о процессе паровой стерилизации или у вас есть другие вопросы, связанные с автоклавом, свяжитесь с нами сегодня.

17 вопросов , которые следует задать перед покупкой следующего автоклава

Мы создали эту электронную книгу из 17 вопросов в качестве основы, которая поможет вам изучить и найти именно тот тип автоклава, который лучше всего подходит для ваших нужд.

Получить электронную книгу

Руководство по процессу стерилизации в автоклаве | Tuttnauer

Производство пара и качество пара

Пар является средством стерилизации автоклава. В нашей серии «Методы стерилизации» мы объяснили физику пара и почему он идеально подходит для уничтожения таких микроорганизмов, как бактерии и споры.В первой части этого поста будет рассказано, как создается пар для автоклавирования. Во второй части этой серии будут обсуждаться различные типы подачи и генерации пара в автоклаве, а также их использование.

Назад к истокам

Стандарт стерилизации ANSI / AAMI гласит:

Существует два распространенных источника пара, используемых для стерильной обработки: больничные паровые котельные и автономные электрические котлы. В обоих случаях необходима подача очищенной воды для удаления всех растворенных твердых частиц (TDS).Каждую систему следует проектировать, контролировать и поддерживать, чтобы гарантировать, что качество, чистота и количество подаваемого пара соответствуют эффективной стерильной обработке (см. Https://www.health.qld.gov.au/chrisp/sterilising /large_document.pdf)

Tuttnauer предлагает автоклавы, которые подключаются к системе подачи пара в здание или больницу, а также модели, оборудованные автономными электрическими парогенераторами. Другие автоклавы Tuttnauer оснащены опцией двойного пара (с возможностью изменения источника подачи пара в зависимости от наличия пара в здании), приспособленной к требованиям пользователя.Парогенератор автоклава может быть встроенным или автономным, в зависимости от размера камеры.

Качество пара для автоклава

Когда дело доходит до передачи большого количества энергии объекту, требующему стерилизации, нет ничего более мощного, чем пар. В конце концов, паровые машины приводят в движение корабли и поезда. Даже Титаник приводился в движение паром.

Мы обсуждали качество пара в подробном посте о методах стерилизации, но давайте рассмотрим факторы, которые определяют это качество, потому что оно имеет решающее значение для правильной работы автоклава и процесса стерилизации в целом.Наиболее важны два параметра:

• уровень неконденсируемых газов
• уровень влажности

Оптимальный состав пара в автоклаве: 3% жидкости и 97% газа. Любое изменение процентного содержания влаги увеличивает или уменьшает время стерилизации. На практике время стерилизации рассчитывается в соответствии с оптимальными условиями пара и способностью пара передавать энергию нестерильной загрузке до стерилизации. В конце концов, одним из наиболее важных преимуществ стерилизации в автоклаве паром является то, что она требует значительно меньше времени и тепла, чем стерилизатор сухого нагрева, благодаря способности пара передавать энергию.

Сухой пар? Влажный пар? Нет в автоклаве

При влажности менее 3% образуется так называемый сухой или перегретый пар. Этот пар увеличивает время стерилизации, поскольку снижает возможность передачи энергии. Перегретый пар снижает влажность примерно до 0%, превращая автоклав в сушильный шкаф. Передача энергии снижается, и то, что занимает трех минут в автоклаве при 134 ° C, занимает двух часов при 160 ° C и тридцать минут при 180 ° C !!

Однако при влажности выше 3% образуется насыщенный или влажный пар, что требует более высокого давления и температуры стерилизации.Влажный пар также увеличивает время сушки в конце процесса стерилизации. Сухая загрузка требуется в конце процесса, когда загрузка завернута и не предназначена для немедленного использования.

Стандарты и директивы стерилизации для автоклавов допускают некоторую гибкость в уровнях влажности пара, поскольку практически невозможно подавать идеальный пар при стабильном потоке. Даже если условия почти оптимальны, многие переменные влияют на пар, передаваемый в автоклав. Главные из них: погодные условия и температура; качество, длина и конструкция трубопроводов; дренажные станции; и наличие качественных конденсатоотводчиков.

Поднимите Steam

Теперь, когда мы понимаем, как работает пар, мы можем изучить, как он генерируется и подается в автоклав. В следующем посте мы поговорим о парогенераторе в автоклаве и расскажем о его различных типах и назначении. Оставайтесь в курсе.

Подробнее о автоклавных стерилизаторах Tuttnauer

:

Обзор автоклава

Последнее обновление: 31 октября 2016 г., 9:45:31 PDT

Узнайте о назначении и ограничениях автоклавов, типах циклов и процедурах безопасного и эффективного автоклавирования.

Назначение

Автоклавирование, иногда называемое стерилизацией паром, представляет собой использование пара под давлением для уничтожения инфекционных агентов и денатурирования белков. Этот вид «влажного тепла» считается наиболее надежным методом стерилизации лабораторного оборудования и обеззараживания биологически опасных отходов.

Другие методы обеззараживания — сухое тепло, ультрафиолетовое или ионизирующее излучение, а также дезинфекция жидкостью, газом или паром — не являются подходящей заменой автоклавирования или сжигания перед утилизацией биологически опасных материалов.Автоклавы не удаляют химические загрязнения.

Рабочие процедуры

При правильном использовании автоклавы безопасны и очень эффективны. В автоклавах используется насыщенный пар под давлением примерно 15 фунтов на квадратный дюйм для достижения температуры камеры не менее 250 ° F (121 ° C) в течение заданного времени — обычно 30–60 минут.

В дополнение к правильной температуре и времени, предотвращение захвата воздуха имеет решающее значение для достижения стерильности. Стерилизуемый материал должен контактировать с паром и теплом.

Использование автоклава требует осторожности и соблюдения строгих нормативных и эксплуатационных требований. Для рабочих процедур читать:

Циклы автоклава

Есть 2 основных цикла автоклавирования:

• Гравитация или «быстрый выхлоп»
• Жидкость или «медленный выхлоп»

Оба цикла и материалы, подходящие для каждого цикла, описаны ниже.

Контроль стерильности

Химический индикатор (например, автоклавная лента) должен использоваться с каждой загрузкой, помещенной в автоклав. Однако использование только автоклавной ленты не является адекватным средством контроля эффективности. Мониторинг стерильности в автоклаве должен проводиться не реже одного раза в месяц с использованием соответствующих биологических индикаторов (полоски со спорами Bacillus stearothermophilus), размещенных в разных местах автоклава.

Споры, которые могут выжить при 250 ° F в течение 5 минут, но погибают при 250 ° F за 13 минут, более устойчивы к нагреванию, чем большинство из них, тем самым обеспечивая достаточный запас безопасности при валидации процедур дезактивации.Каждый тип используемого контейнера должен быть протестирован на споры, поскольку его эффективность зависит от загрузки, объема жидкости и т. Д.

Помогите UCSD выйти вперед!

Индикаторная лента для автоклавов некоторых марок может содержать свинец. Узнайте больше о возможных высоких уровнях содержания свинца в ленте автоклава, о том, как правильно утилизировать его, и о бессвинцовых альтернативах.

Уведомление: Удаление опасных отходов через раковины, преднамеренное испарение или как обычный мусор является нарушением закона.Лаборатории кампуса должны соблюдать строгие государственные и федеральные требования по утилизации отходов. Вы можете быть привлечены к ответственности за нарушение применимого законодательства.

Разоблачение шумихи об автоклавах: важные термины в мире паровой стерилизации

В мире паровых стерилизаторов полезно развенчать некоторые, казалось бы, критические термины. В этой статье мы сделаем следующие предложения:

Начнем со стерилизации, стерилизации паром и связанных с ними терминов.

Стерилизация — это утвержденный процесс, используемый для очистки продукта от жизнеспособных микроорганизмов, состоящий из последовательности шагов, предназначенных для достижения стерилизации. Его не следует путать с «Терминальная стерилизация» , в котором предметы стерилизуются с использованием барьерной системы для стерилизации. Паровая стерилизация использует насыщенный пар под давлением при указанной температуре и времени воздействия. Валидация в данном контексте относится к документированной процедуре производителя, которая позволяет получать, регистрировать и интерпретировать результаты, чтобы проверить и гарантировать, что стерилизатор будет постоянно соответствовать требуемым спецификациям.Валидация выполняется производителем на предпродажной стадии, затем во время установки, обслуживания и периодически в соответствии с местными требованиями и инструкциями производителя по применению (IFU).

Прочтите все о методах стерилизации и различных методах стерилизации, используемых в медицинской, стоматологической, лабораторной и фармацевтической областях, здесь https://tuttnauerusa.com/tabletop-sterilizers/markets/medical-clinics/

Тип стерилизаторов

Есть вопросы по типам паровых стерилизаторов.Стерилизаторы с гравитационным вытеснением полагаются на вытеснение воздуха под действием силы тяжести, когда пар входит в камеру, также известные как автоклавы класса S. Автоклавы с продувкой паром и импульсным давлением включают воздух, удаляемый серией продувок паром и импульсом давления, и представляют собой один из двух типов циклов стерилизации. Они не являются отдельной категорией из автоклавов с динамическим удалением воздуха (тип класса B). Для всех других автоклавов с динамическим удалением воздуха используется серия скачков давления и вакуума для удаления воздуха, т.е.е., «цикл предварительного вакуумирования». Что касается автоклавов типа N , их точный режим действия и параметры зависят от автоклава типа N данного производителя. Еще один термин, с которым мы сталкиваемся, — « период разминки ». Это применимо только к некоторым настольным (настольным) паровым стерилизаторам и происходит до фазы стерилизации. При необходимости цикл разогрева будет указан в инструкции производителя.

Понимание преимуществ и использования каждого класса автоклавов, а также требуемых нормативных требований будет полезно перед покупкой автоклава, который лучше всего подходит для ваших нужд.Узнайте больше о конкретных деталях и преимуществах каждого настольного автоклава здесь https://tuttnauerusa.com/tabletop-sterilizers/markets/medical-clinics/

Механические, химические и биологические индикаторы

Когда мы думаем о мерах, принятых для оценки стерилизации паром, они состоят из механических, химических и биологических индикаторов. Механические индикаторы просто отображают аналоговые или цифровые данные о том, были ли достигнуты параметры стерилизации — время, температура и давление. Химические индикаторы — второй метод контроля процесса стерилизации. Они предназначены для реагирования на изменение параметров или, в случае индикатора типа 2, для определения того, было ли достигнуто надлежащее функционирование стерилизатора предварительных вакуумных автоклавов и удаление воздуха. Тип 1 — это внешний индикатор того, что упаковка была открыта, а типы с 3 по 6 по-разному указывают, были ли достигнуты один или несколько параметров, определенный набор параметров или параметров для определенного цикла.Они указывают на потенциальные сбои стерилизации, фактически являясь системой раннего предупреждения. Термин Параметрический выпуск относится к «высвобождению загрузки на основе данных процесса стерилизации». Другими словами, на основе результатов, показанных для индикаторов, что все параметры в процессе были соблюдены до того, как пакеты в загрузке были выпущены. Параметрический выпуск не основан ни на тестировании образцов, ни на результатах биологических индикаторов (тесты спор).

Применение биологических индикаторов

Биологические индикаторы состоят из стандартизированной и жизнеспособной популяции спор, о которых известно, что они устойчивы к контролируемому процессу стерилизации.Для стерилизации паром используются споры Geobacillus Stearothermophilus . Флакон со спорами или полоска помещается в автоклав во время процесса, а положительный контроль используется вне автоклава. Этот положительный контроль аналогичен положительному контролю в клинических испытаниях — вы сравниваете тестовый флакон / полоску с чем-то, предназначенным для той же цели. В случае биологического индикатора флакон или полоска для положительного контроля должны быть из одной партии флаконов / полосок.Термин « положительный результат » для биологического индикатора может сбивать с толку. Мы обычно думаем о позитиве как о чем-то хорошем. Для биологических индикаторов мы хотим получить отрицательный результат — что нет спор, оставшихся живыми для спор в автоклаве, и что споры положительного контроля все еще живы. Другими словами, испытание прошло. Тесты с биологическими индикаторами показывают, были ли условия в стерилизаторе достаточными для стерилизации. Они не доказывают, что все в загрузке стерильно или подвергалось адекватным условиям стерилизации.Tuttnauer производит сверхбыстрые биологические индикаторы для стерилизации паром, обеспечивая результаты всего за 20 минут, эта технология обеспечивает эффективный оборот и рабочий процесс.

Для более крупных автоклавов тест на споры выполняется с использованием имеющегося в продаже набора для контрольных тестов , также известного как технологическое устройство для контрольного заражения . Это необходимо для имитации ситуации со стерилизуемыми инструментами / устройствами.Он состоит из тестовой упаковки или лотка с биологическим индикатором.

Что такое гарантия стерильности?

Как насчет термина обеспечения стерильности или уровня обеспечения стерильности (SAL) ? Это представлено в виде логарифма сокращения и относится к вероятности присутствия одного жизнеспособного микроорганизма после завершения стерилизации. Вероятность присутствия одного человека на миллион — это уменьшение Log 6, обозначаемое как SAL 10-6, что считается подходящим SAL для стерилизации.Производитель должен показать, что стерилизатор может предоставить SAL.

Другие соображения включают использование терминов « стерильный » и « стерилизованный ». Стерильный означает, что процесс прошел успешно и на предмете отсутствуют жизнеспособные микроорганизмы. Однако есть несколько причин, по которым впоследствии он не может быть стерильным. Во-первых, он был стерилизован в стерильной барьерной системе . Термин стерильная барьерная система относится к барьеру, который является минимально необходимым для предотвращения проникновения микроорганизмов и обеспечивает асептическое представление продукта в месте использования.Если используется стерильная барьерная система, например пакет из пластика и бумаги или стерилизационная обертка, тогда при условии, что упаковка была сухой на выходе из автоклава и остается неповрежденной до следующего момента использования, содержимое (при условии стерилизации) не подлежит обработке. все еще бесплоден. Крышка для поддержания стерильности , напротив, также известная как пылезащитная крышка, надевается поверх барьерной системы для стерильности. В зависимости от правил или рекомендаций в вашем регионе может быть разрешено стерилизовать инструменты или устройства без упаковки, , а затем оборачивать их, когда они выходят из автоклава.В этом случае после выхода из парового стерилизатора они уже не могут считаться стерильными.

В лексиконе паровой стерилизации используется много других терминов, однако это одни из важнейших, применимых к вашей повседневной практике.

Фиона М. Коллинз

Доктор Коллинз окончил Университет Глазго по специальности стоматолог общего профиля, а также имеет степень магистра делового администрирования и степень магистра Бостонского университета.За свою карьеру она жила и работала в 5 странах и проводила презентации на международном уровне. В настоящее время Фиона является представителем ADA в Ассоциации по развитию медицинского оборудования (AAMI), членом ADA, OSAP, участником рабочих групп по стандартам инфекционного контроля в AAMI и научным сотрудником Академии Пьера Фошара.

Обработка медицинских отходов в автоклаве

Автоклавы — это закрытые камеры, которые применяют тепло, а иногда и давление, и пар в течение определенного периода времени для стерилизации медицинского оборудования.Автоклавы использовались на протяжении столетия для стерилизации медицинских инструментов для повторного использования. Например, хирургические ножи и зажимы помещают в автоклавы для стерилизации.

Для медицинских отходов, которые будут утилизированы, автоклавы можно использовать в качестве блоков термической обработки для уничтожения микроорганизмов перед утилизацией на традиционном полигоне или дальнейшей переработке. Автоклавы — это периодический процесс, а не непрерывный. Автоклавы не содержат химикатов, и это привлекает многих заинтересованных сторон в сложной среде обращения с отходами.Без химикатов означает, что химикаты не добавляются.

Автоклавы лучше всего подходят для отходов, которые вряд ли возгораются или выделяют значительное количество отходящих газов. В то время как мусоросжигательные заводы могут быть построены с системами борьбы с загрязнением, автоклавы меньше по размеру, и создание системы очистки паров, выделяемых из установки, неэкономично.

Одна из проблем с автоклавами заключается в том, что в процессе этого процесса химические вещества, присутствующие в отходах, могут образовываться в виде аэрозоля, что может привести к выбросу материалов, которые вы бы предпочли не выпускать.Это может представлять опасность для людей-операторов и, в некоторой степени, для окружающей среды, даже если система отопления, вентиляции и кондиционирования воздуха может взять на себя большую часть усилий. Возможно, этот аэрозольный материал осядет на поверхностях воздуховодов, столешниц и полов в вашем помещении — так же, как это происходит на кухне. Смазка в виде аэрозоля является источником большого количества грязи на кухне.

Автоклавы заменяют сжигание? Да, в значительной степени. Автоклавы можно использовать для обработки большого количества инфекционных отходов, образующихся в больнице или клинике.Автоклавы бывают самых разных размеров и мощностей.

Физическая конфигурация

Автоклавы больших размеров представляют собой металлические сосуды цилиндрической формы. Эта форма лучше подходит для высоких давлений, чем прямоугольные коробки. Во время работы давление внутри сосуда выше, чем давление окружающей среды. На конце есть дверца, а слова «авто» и «клаве» означают автоматическое запирание из-за высокого давления, но по соображениям безопасности большинство из них также закрывается вручную снаружи.

Маленькие автоклавы бывают электрическими — они работают от электричества в здании. В больших иногда используется пар. Это удобно, если в помещении есть пар. В противном случае необходимо включить бойлер. Конструкции включают автоклавы с внешними рубашками или с внутренними трубами отопления. Слово «реторта», заимствованное из технологии сжигания, иногда используется для обозначения камеры автоклава.

Автоклавы большего размера часто работают в вакууме или в атмосфере пара.Автоклавы предварительного вакуума (или высокого вакуума) имеют насос, который используется для откачивания воздуха после герметизации камеры, но перед нагревом. Автоклавы с гравитационным вытеснением работают, нагнетая пар в камеру и тем самым вытесняя присутствующий воздух.

Рабочая температура обычно составляет от 250 до 280 ° F. Следуйте инструкциям производителя автоклава и урокам, полученным при обработке предыдущих партий. Время замеса до 30 минут.

Рекомендации по эксплуатации

Автоклавы — это, по сути, тупые горячие камеры, и с комбинацией времени и температуры вы можете стерилизовать практически все, поэтому есть соблазн складывать в них всевозможные медицинские отходы.Автоклавы были впервые использованы (более века назад) для стерилизации медицинских инструментов, чтобы их можно было использовать повторно. Когда люди начали беспокоиться об инфекционных отходах, которые они выбрасывали, автоклав стоял там и мог выполнять дезинфекцию / стерилизацию. Однако сообщество профессионалов в области обращения с отходами не рекомендует помещать значительные количества отходов в автоклавы для обработки. Существуют более безопасные и тщательные способы обращения с отходами.

Современные системы управления медицинскими отходами включают автоклавы для обработки отходов культур, острых предметов, сеток, бинтов и т. Д.Иногда хирургические отходы, пластиковые и металлические отходы, загрязненные кровью или другими биологическими жидкостями, помещают в автоклавы. Но основная обработка и любая упаковка для утилизации должны производиться в другом месте.

Время цикла автоклава

При разработке процесса любой системы управления отходами необходимо учитывать время цикла автоклава. Общее время цикла включает

• Пора операторам складывать отходы в установку.
• Время нагрева — до достижения заданной температуры
• Время обработки — время, проведенное при заданной температуре
• Время охлаждения
• Время извлечения, когда операторы открывают автоклав после того, как он достаточно охладится, удаляют отходы и помещают их в упаковку для хранения до транспортировки.

Время цикла автоклава изменить нельзя. Попытки срезать углы приведут к нарушению техники безопасности. К ним относятся нарушение протокола времени-температуры для стерилизации отходов и открытие автоклава до того, как он достаточно остынет, что подвергает опасности людей-операторов.

Автоклавированные медицинские отходы обычно уплотняются после охлаждения. Процесс уплотнения может включать измельчение перед сжатием. Процесс уплотнения значительно снижает объем обрабатываемых отходов.

Подтверждение эффективности автоклава

Периодически операторы должны проводить тесты, чтобы гарантировать эффективность дезинфекции. Промышленным стандартом является тест Боуи-Дика, разработанный полвека назад. Операторы, регуляторы и производители автоклавов знают тест Боуи-Дика, и его использование упрощает работу руководителей медицинских и исследовательских учреждений и вселяет уверенность в том, что автоклав работает так, как задумано. Производитель автоклава может порекомендовать частоту, или соответствующий орган может указать, как часто требуется подтверждение с помощью теста на споры.Например, в штате Западная Вирджиния требуется тест на споры каждые 40 часов работы. Другие специалисты рекомендуют проверять его каждый день, особенно если автоклав выключен и ему дают остыть в течение ночи.

Вы должны вести журнал активности автоклава — дату, время обработки партии, то, что помещается в автоклав (включая массу), и когда вы запускаете тест Боуи-Дика, и прошел ли автоклав этот тест. Калибровку температуры и давления следует проводить в соответствии с рекомендациями производителя, а дату и результаты калибровки следует записывать в журнал.Даже если вашим государственным или местным регулирующим органам не требуется журнал регистрации, рекомендуется сохранить его.

Ваш штат или местный орган власти может также потребовать регулярной проверки механики автоклава внешним и независимым инспектором.

Ограничения лечения

Помните, что цель автоклава — в первую очередь уничтожить микробы. Может произойти возгорание небольшого количества горючего материала, особенно в сухой системе, где имеется доступный кислород.Но не помещайте в автоклавы вещи, которые, как вы ожидаете, могут подвергнуться химической реакции в любых объемах. Не выбрасывайте летучие вещества в автоклав или опасные органические отходы. И не ожидайте, что автоклав окажет какое-либо влияние на радиоизотопы.

Опасные отходы RCRA нельзя сбрасывать в автоклав. Нельзя добавлять тяжелые металлы и ожидать, что они не будут опасными при выходе. У вас могут возникнуть проблемы с нормативными требованиями, поскольку это будет выглядеть как сжигание опасных отходов, а на мусоросжигательные заводы распространяются правила по дальнейшему загрязнению воздуха и обращению с золой.

Можно ли обрабатывать патологические отходы — человеческие ткани — в автоклавах? Нет. Плоть человека и животных имеет более низкую теплопроводность, чем металл, поэтому в автоклаве потребуется больше времени, чем для хирургических инструментов сопоставимого размера. Также существует опасение, что автоклавированные патологические отходы могут содержать низкие уровни радиоактивных материалов или цитотоксических соединений, которые пережили жару. В любом случае правила и нормы в большинстве стран мира призывают к сжиганию патологических отходов.

Лабораторные печи

Продавцы также продают печи с горячим воздухом для использования в лабораториях. Они электрические и не имеют специальной вентиляции. Они могут разогреваться до 350 F, что является максимальной температурой в большинстве автоклавов. Эти печи часто используются для стерилизации оборудования.

Режимы отказа

Если автоклав не достигает заданной температуры и не поддерживает эту температуру в течение соответствующего времени, процесс не будет завершен и стерилизация может не произойти.Это могло произойти по нескольким причинам.

• Неисправный термометр и система контроля температуры.
• Неисправные часы
• Холодные точки внутри агрегата.
• Утечки — приводят к более холодному воздуху внутри блока вместо пара
• Невыполнение цикла прогрева перед работой — это может быть человеческая ошибка или ошибка машины. Устройство должно достичь температуры до того, как часы начнут работать.
• Конденсация — если конденсат скапливается в рубашке автоклава, в нижней части камеры могут образоваться точки холода.

Некоторые материалы по дизайну лечения.

Конструкция для стерилизации медицинской электроники

Медицинские изделия, которые вступают в контакт со стерильными тканями или жидкостями организма, подвергаются процессам стерилизации для уничтожения всех микроорганизмов на их поверхности. К сожалению, те же процессы, которые предназначены для уничтожения микроорганизмов, могут также «убить» плохо спроектированное устройство.

Многие из этих устройств являются электромеханическими.К ним относятся хирургические электроинструменты; имплантируемая электроника, например, стимуляторы и мониторы; и одноразовые пластиковые устройства, содержащие электронику для аутентификации.

Три наиболее распространенных процесса стерилизации — это автоклав, оксид этилена (EtO) и ионизирующее излучение. Ниже мы описываем каждый из этих процессов, а также методы снижения рисков при проектировании, чтобы максимизировать надежность устройства и соответствие каждому из них.

Использование сжатого пара — наиболее широко используемый процесс стерилизации.Поскольку это происходит внутри автоклавной машины, название машины стало синонимом процесса. Основное преимущество процесса автоклавирования — время: обычно требуется всего 15 минут для пара при 121 ° C (250 ° F) и всего три минуты при 134 ° C (273 ° F).

Этот быстрый цикл идеально подходит для хирургических инструментов, которые можно обрабатывать несколько раз в день. К сожалению, высокие температуры и давления могут иметь разрушительные последствия. Наиболее вероятные режимы отказа, вызванные паром под давлением, включают пластическую деформацию, электрическое короткое замыкание или разъединение, ускоренное старение полупроводников и электрохимическое повреждение устройств хранения энергии, таких как батареи и конденсаторы.

Конструкция для стерилизации в автоклаве: Для предотвращения этих режимов отказа возможны различные конструктивные решения. Во-первых, использовать пластмассовые материалы, способные выдерживать такие высокие температуры. Обычно используемые автоклавируемые пластмассы включают полипропилен, Радел (полифенилсульфон), Ultem (полиэфиримид), полисульфоны и многие фторполимеры и силиконовые каучуки. Все они имеют очень высокие температуры плавления.

Для того, чтобы изолировать внутренние компоненты от воздействия окружающей среды, выбор материала и герметизация от проникновения имеют решающее значение.Силиконовая или эпоксидная заливка и защитное покрытие — два средства защиты электронных компонентов и печатных плат. Уплотнение стерилизованных корпусов часто рекомендуется с помощью отдельных резиновых прокладок и уплотнительных колец или деталей, изготовленных методом двухэлементной формовки, со встроенной герметизирующей прокладкой из ТПЭ.

Когда уплотнение невозможно, важно, чтобы конструкция исключала возможность захвата конденсированных жидкостей. В этом случае используйте удачно расположенные дренажные отверстия и вентиляционные отверстия.

Батарейные блоки

особенно уязвимы, так как внутренние элементы будут повреждены при гораздо более низких температурах (60 ° C), чем в автоклаве (до 134 ° C).Обычным средством смягчения последствий является установка теплоизоляторов и датчиков внутри аккумуляторной батареи и определение максимальной продолжительности процесса автоклавирования, чтобы гарантировать, что элементы находятся в установленных пределах.

Выбор компонентов также важен для предотвращения отказов электроники — механические переключатели и кнопки следует заменить бесконтактными датчиками Холла и магнитами. По возможности также следует избегать электролитических конденсаторов, так как их срок службы может значительно сократиться при повышенных температурах.Наконец, рекомендуется конформное покрытие печатной платы для дополнительной защиты ее компонентов.

Соответствие конструкции автоклавной стерилизации оценивается с помощью тестов на соответствие отраслевым стандартам, таким как ISO 17665, AAMI TIR12 и AAMI ST79.

Оксид этилена (EtO) — ядовитый газ, предназначенный для уничтожения микроорганизмов на поверхности медицинских устройств. Он широко используется для стерилизации одноразовых пластиковых компонентов из-за более низких температур и совместимости с материалами.В процессе используется газ при температуре до 63 ° C и продолжительностью до шести часов. Основной риск для устройства — остаточный газ, застрявший внутри корпуса, который может нанести вред пациентам и другим пользователям.

Конструкция для стерилизации оксидом этилена (EtO): Рекомендуются конструктивные меры по снижению риска остаточного газа EtO, захваченного устройством. Тщательный выбор материалов и конструкции корпуса и его герметизации должен предотвратить образование полостей, в которых может скапливаться газ.Большинство пластиков, которые обычно используются в производстве медицинских изделий, способны выдерживать условия стерилизации EtO — даже такие материалы, как полипропилены и материалы для ПК, часто используемые для недорогих одноразовых изделий. Кроме того, на печатные платы должно быть нанесено соответствующее покрытие, чтобы исключить доступ к карманам для остаточного газа.

Воспламеняемость газа EtO требует особой осторожности при проектировании, чтобы электроника не могла создать искру. Для стерилизуемого продукта, который включает в себя постоянную батарею или источник питания, рекомендуется предусмотреть резервирование в цепи отключения питания, например двухпозиционный переключатель и язычок, а также реализовать проектные ограничения на плотность мощности и ток.

Соответствие конструкции стерилизации EtO оценивается посредством испытаний на соответствие отраслевым стандартам, таким как ISO 10993-7 и ISO 11135.

Ионизирующее излучение инактивирует микроорганизмы в медицинских устройствах. Он чаще всего используется для стерилизации предварительно упакованных одноразовых пластиковых компонентов из-за его способности проникать под поверхность. Существует две основных формы стерилизации ионизирующим излучением — гамма-излучение и электронное излучение. Эти процессы имеют разные уровни проникновения, где гамма-лучи проникают гораздо глубже, чем электронные лучи, и здесь рассматриваются.

Конструкция для стерилизации ионизирующим излучением: Основным риском для устройств, вызываемым гамма-излучением, является деградация, особенно для полимеров. Гамма-излучение в высоких дозах также имеет заметную деградацию в полупроводниках. Выбор материала является основным средством смягчения последствий стерилизации. Большинство полимеров, обычно используемых в медицинских изделиях, таких как поликарбонат, АБС, полиуретаны, некоторые полиолефины и большинство эластомеров, хорошо переносят гамма-облучение, но следует проявлять осторожность при выборе подходящих радиационно-устойчивых сортов.

Экранирование может помочь электронике в присутствии малых доз радиации. Однако в целом электронные устройства не подходят для гамма-излучения из-за потенциального повреждения полупроводников и стирания энергонезависимой памяти. Для оценки этого риска необходима соответствующая проверка.

Соответствие конструкции гамма-стерилизации оценивается посредством испытаний на соответствие отраслевым стандартам, таким как ISO 11137 и ISO 13004.

Медицинские изделия должны содержать в своей маркировке достаточную информацию для определения соответствующих процессов, уровней и продолжительности стерилизации.ISO 17664 и AAMI TIR12 определяют требования к информации, предоставляемой производителем медицинского изделия для обработки медицинского изделия перед использованием или повторным использованием. Надлежащая маркировка — существенное снижение риска повреждения устройства при стерилизации.

Таким образом, у дизайнеров есть несколько инструментов для предотвращения повреждений при стерилизации. К ним относятся тщательная спецификация материалов, электромеханический дизайн, выбор компонентов и маркировка. Соответствующие меры по снижению риска зависят от процесса стерилизации.Эти усилия могут значительно повысить надежность устройства, свести к минимуму несоблюдение требований и, что наиболее важно, улучшить результаты лечения пациентов.

Узнайте о нашем опыте в области проектирования медицинских изделий.

электротехника • инженерия • проектирование изделий медицинского назначения • изделия медицинского назначения • машиностроение

Кевин Мерфи

Старший главный инженер-электрик

Кевин считает надежность наследием каждого продукта.«В долгосрочной перспективе никто не помнит, сколько усилий потребовалось для создания продукта, — говорит он, — но пользователи ценят, если он работает каждый раз». В Bresslergroup он отвечает за разработку электронного оборудования и прошивки. Он помогает клиентам решить, какие современные функции следует учитывать, а затем сосредотачивается на том, чтобы воплотить их в жизнь. Самый приятный момент процесса — это когда он впервые видит, как сложная конструкция ведет себя так, как он предполагал. Кевин получил степень бакалавра электротехники в Дрексельском университете и степень магистра электротехники в Принстонском университете.

Еще сообщения от Кевина

Дэвид Шифф

Директор по исследованиям и развитию

Дэйв в течение почти двадцати четырех лет руководил инженерными усилиями в сфере консультирования по проектированию, в том числе двенадцать лет в Bresslergroup. Ему было выдано более шестидесяти патентов, что только начинает намекать на его способности решать проблемы и креативность. Дэйв получил степень бакалавра машиностроения в Политехническом институте Ренсселера, а также закончил аспирантуру по специальности «Промышленный дизайн» в Филадельфийском колледже искусств.

Еще сообщения от Дэвида

определение автоклава по медицинскому словарю

автоклав

[aw´to-klāv]

самоблокирующийся аппарат для стерилизации материалов паром под давлением. Автоклав позволяет пару обтекать каждое изделие, помещенное в камеру. Пар проникает через ткань или бумагу, используемые для упаковки стерилизуемых изделий. Автоклавирование — один из самых эффективных методов уничтожения всех видов микроорганизмов, в том числе спор.Время и температура, необходимые для стерилизации, зависят от стерилизуемых предметов и от того, завернуты ли они или оставлены под прямым воздействием пара.

Энциклопедия и словарь Миллера-Кина по медицине, сестринскому делу и смежным вопросам здравоохранения, седьмое издание. © 2003 Saunders, принадлежность Elsevier, Inc. Все права защищены.

au · to · clave

(aw’tō-klāv),

1. Аппарат для стерилизации паром под давлением, состоящий из прочного закрытого бойлера, в который помещено небольшое количество воды и проволочной корзины, удерживающей предметы, подлежащие стерилизации.

2. Для стерилизации в автоклаве.

[auto- + L. clavis, ключ, в смысле самоблокировки]

Farlex Partner Medical Dictionary © Farlex 2012

автоклав

Устройство для стерилизации инструментов или материалов с помощью тепла, высокого давления и / или или пар.

Медицинский словарь Сегена. © 2012 Farlex, Inc. Все права защищены.

au · to · clave

(aw’tō-klāv)

1. Аппарат для стерилизации паром под давлением.

2. Для стерилизации в автоклаве.

[ auto- + L. clavis, ключ, в смысле самоблокировки]

Медицинский словарь для медицинских работников и медсестер © Farlex 2012

автоклав

Прочная герметичная камера, в которой находятся хирургические инструменты полотенца, перевязочные материалы и другие предметы можно стерилизовать паром под повышенным давлением.

Медицинский словарь Коллинза © Роберт М. Янгсон 2004, 2005

автоклав

1. устройство, в котором предметы или материалы стерилизуются безвоздушным насыщенным паром под давлением при температуре выше 100 ° C.