Стерилизация методы виды: Стерилизация. Методы стерилизации инструментов и медицинских изделий

Стерилизация: виды, методы.

Практическое занятие №14

ПМ 04 «Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными»

МДК 04.02 Безопасная среда для пациента и персонала.

Тема занятия: Стерилизация: виды, методы.

Уметь:

• рекомендовать метод дезинфекции или стерилизации в зависимости от свойств микроорганизмов и качественных характеристик объекта;
• различать и применять методы стерилизации изделий медицинского назначения;
• укладывать коробки стерилизационные для отправки в ЦСО.
• владеть профессиональной лексикой по данной теме.

Знать:

• значение понятий «антисептика», «асептика», «дезинфекция», «стерилизация»;
• методы стерилизации;
• виды стерелизации.
• методы дезинфекции.

Вопросы к занятию.

1. Чем отличается антисептика от асептики?
2. Укажите основной недостаток антисептики.
3. Чем отличается дезинфекция от стерилизации?
4. Почему стерилизация кипячением считается неполной, если обрабатывают предметы, инфицированные споровыми формами микроорганизмов?
5. Эффективность автоклавирования (стерилизации перегретым паром под давлением) выше, чем стерилизация текучим паром или кипячением. Почему?
6. В каких случаях Вы предложили бы заменить дробную стерилизацию текучим паром тиндализацией?
7. Можно ли назвать профильтрованную через бактериальный фильтр воду из реки стерильной?
8. Почему для стерилизации питательных сред, жидкостей, масел газовая стерилизация не применяется?
9. Для надёжной стерилизации оборудования ультрафиолетовыми лучами применяется предстерилизационная обработка: влажная уборка с добавлением моющих средств. Почему?
10. Какие методы (способы) дезинфекции используются для воздействия на инфекционный процесс?
11. Для каких целей применяют механический метод дезинфекции?
12. Какие факторы включает в себя физический метод дезинфекции?
13. Как осуществляется химический метод дезинфекции?
14. Какие факторы определяют эффективность физических методов дезинфекции?
15. От каких факторов зависит эффективностьвоздействия на микроорганизмы химических веществ?
16. Сделайте самостоятельное заключение: как изменится эффективность дезинфекции при использовании комбинированного воздействия физических и химических факторов? Приведите пример такого воздействия.

Место проведения практического занятия: ГБУЗ «Городская больница №1 г. Новороссийска».

Продолжительность занятия: 270 минут (6 часов)

Зачетная манипуляция №14: Укладка бикса.

Литература: Мухина С. А., Тарновская И.И.-2016г. «Практическое руководство к предмету «Сестринское Дело» Москва, «ГЭОТАР-Медиа», стр. 51-56.

Домашнее задание.

Подготовить сообщения «ЦСО», «Укладка бикса», на выбор студента.

Стерилизация (микробиология)

Стерилиза́ция — полное освобождение какого-либо предмета от всех видов микроорганизмов, включая бактерии и их споры, грибы, вирионы, а также от прионного белка, находящихся на поверхностях, оборудовании, в пищевых продуктах и лекарствах. Осуществляется термическим, химическим, радиационным, фильтрационным методами.

Применение

Пищевые продукты

С давних времен частичная стерилизация пищи обеспечивалась за счет тщательной тепловой обработки во время приготовления. Нагревание пищи и воды позволяло снизить число случаев инфекционных заболеваний, увеличивая продолжительность жизни и трудоспособного возраста. Консервирование продуктов в герметичной упаковке стало логическим продолжением этого подхода к сохранению пищи.

Медицина

В медицине под стерилизацией понимается микробная деконтаминация неживых объектов. Принцип асептики предполагает исключение контакта пациента с поверхностями контаминированными условно-патогенной или даже патогенной микрофлорой. С этой целью стерилизовались скальпели, иглы и другой хирургический инструмент. Также стерилизация играет важную роль в производстве парентеральных препаратов.

Нагревание медицинских инструментов было известно ещё в Древнем Риме, но было забыто в Средние века, что привело к резкому росту числа осложнений и летальности после хирургических операций.

Методы стерилизации

• Термическая: паровая и воздушная (сухожаровая).
• Химическая: газовая или химическими растворами (стерилянтами)
• Радиационная стерилизация — применяется в промышленном варианте
• Метод мембранных фильтров — применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации(бактериофаг, селективные питательные среды, антибиотики)

Термические методы стерилизации

Преимущества термических методов стерилизации:

• Надёжность
• Отсутствие необходимости удаления стерилянтов с предметов медицинского назначения
• Удобство работы персонала
• Стерилизация проводится в упаковках, что позволяет сохранить стерильность некоторый период времени.

Паровая стерилизация

Осуществляется подачей насыщенного водяного пара под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах).

Паровая стерилизация под давлением считается наиболее эффективным методом, так как чем выше давление, тем выше температура пара, стерилизующего материал; бактерицидные свойства пара выше, чем воздуха, поэтому для стерилизации применяют пересыщенный пар.

Паровой стерилизации подвергают изделия из текстиля (бельё, вату, бинты, шовный материал), из резины, стекла, некоторых полимерных материалов, питательные среды, лекарственные препараты.

Режимы паровой стерилизации

132 °C — 2 атмосферы(2 кгс/см²) — 20 минут — основной режим. Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, кроме резиновых).

120 °C — 1,1 атмосфера(1,1 кгс/см²) — 45 минут — щадящий режим (стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия — согласно паспорту, текстиль)

110 °C — 0,5 атмосферы(0,5 кгс/см²) — 180 мин — особо щадящий режим (нестойкие препараты, питательные среды)

Упаковочные материалы при паровой стерилизации:

• Стерилизационная коробка (бикс) простая. Срок хранения 3 суток после стерилизации.
• Стерилизационная коробка (бикс) с фильтром. Срок хранения 20 суток после стерилизации.
• Крафт-пакеты со скрепками. Срок хранения — трое суток после стерилизации.
• Крафт-пакеты заклеивающиеся. Срок хранения — 20 суток после стерилизации.
• Ткань (бязь — КРОМЕ МАРЛИ). Срок хранения — трое суток после стерилизации.
• Комбинированные упаковки (прозрачная синтетическая плёнка + бумага) (дгм стеригард). Срок хранения от 180 суток до 720 суток.

Тиндализация — способ стерилизации, предложенный Дж. Тиндалем.

Заключается в дробной обработке жидкостей и пищевых продуктов в текучем паре при 100°С или при трёх — четырёхкратном нагревании их до 100—120°С с промежутками в 24 ч.

За это время споры бактерий, выжившие при 100°С, прорастают, и вышедшие из них вегетативные клетки бактерий погибают при последующем нагревании.

Применение:

Стерилизация лекарственных препаратов, а также для так называемого горячего консервирования пищевых продуктов в специальных аппаратах с терморегуляторами.

Химические методы стерилизации
Используются при обработке приборов, аппаратов, сложных оптических систем, крупногабаритных изделий или изделий из титана, полимерных смол, резин.

Для газовой (холодной) стерилизации используют герметичные контейнеры с парами окиси этилена, формальдегида или специализированными многокомпонентными системами.

Для химической стерилизации растворами применяются основных четыре группы веществ:

• Кислота+окислитель (например «Первомур»)
• Альдегид (например формалин)
• Детергент (например хлоргексидина биглюконат)
• Галоид (например Повидон-йод)

Концентрации и время стерилизации зависит от используемого антисептика или дезинфектанта.

Стерилизация ионизирующим излучением

• радиационный метод или лучевую стерилизацию γ-лучами применяют в специальных установках при промышленной стерилизации однократного применения — полимерных шприцев, систем переливания крови, чашек Петри, пипеток и других хрупких и термолабильных изделий.
• Ряд лет в фармтехнологии для стерилизации используется ультрафиолетовое (УФ) (длина волны 253,7 нм). Источники УФ-излучения — ртутные кварцевые лампы. Их мощное бактериостатическое действие основано на совпадении спектра испускания лампы и спектра поглощения ДНК микроорганизмов, что может является причиной их гибели при длительной обработке излучением кварцевых ламп. При недостаточно мощном действии УФ в прокариотической клетке активизируются процессы световой и темновой репарации и клетка может восстановиться. Метод применяется для стерилизации воздуха приточно-вытяжной вентиляции, оборудования в биксах, также для стерилизации дистиллированной воды.

Источник wikipedia. org

Лекция 5 ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ 1. Определение дезинфекции. Виды дезинфекции. 2. Методы дезинфекции. 3. Стерилизация. Методы стерилизации.

Стерилизация Принципы работы ЦСО

ГБПОУ «Тольяттинский медколледж» МДК «Безопасная больничная среда для пациента и персонала» Стерилизация Принципы работы ЦСО Преподаватель Зуева Е.В. Что такое стерилизация? Стерилизация (от лат. sterilis-

Подробнее

5 ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ

1 Лекция 5 ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ 1. Определение дезинфекции. 2. Физические методы дезинфекции. 3. Классификация химических соединений, применяемых для дезинфекции. 4. Аппаратная дезинфекция. 5. Классификация

Подробнее

3.1. Профилактика инфекционных заболеваний

Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 3 апреля 2003 г. N 30 «О введении в действие санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.1275-03» На основании Федерального закона «О санитарно-эпидемиологическом

Подробнее

Организация работы процедурно кабинета.

Организация работы процедурно кабинета. Наличие графика работы: Время текущих, генеральных уборок; Время работы бактерицидных ламп; Время отпуска процедур в кабинете; График вывешен на входной двери кабинета.

Подробнее

Дневник преддипломной практики

Краевое государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение «Барнаульский базовый медицинский колледж» Дневник преддипломной практики СТУДЕНТКИ (А) ГРУППЫ СПЕЦИАЛЬНОСТЬ ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА

Подробнее

ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ Стерилизация ОФС.1.1.0016.15 Взамен ст. ГФ XI, вып.2 Настоящая общая фармакопейная статья устанавливает методы и условия стерилизации,

Подробнее

Пояснительная записка

Пояснительная записка Элективный курс по химии в 8 классе имеет особое значение. Именно в этом классе складывается отношение к новому предмету. Целью курса является формирование глубокого и устойчивого

Подробнее

ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ Температура плавления ОФС.1.2.1.0011.15 Взамен ГФ XII, ч.1, ОФС 42-0034-07 Температурой плавления называют температуру, при

Подробнее

СанПиН МЗ и СЗ ПМР

«УТВЕРЖДЕНО» Приказом Министра здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 1 июня 2010 г. N 241 Регистрационный N 5290 от 16 июня 2010 г.( САЗ 10-24) САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ

Подробнее

ИНСТРУКЦИЯ ПРОБА-ЦТАБ

ИНСТРУКЦИЯ по применению комплекта реагентов для выделения ДНК ПРОБА-ЦТАБ Выполнено в соответствии с методическими указаниями МУК 4.2.1913-04 ВНИМАНИЕ! Изучите инструкцию перед началом работы 2 1. НАЗНАЧЕНИЕ

Подробнее

Имя Рабочее место Район Шифр Итого:

Фамилия Шифр Имя Рабочее место Район Шифр Итого: Задания практического тура регионального этапа XXXII Всероссийской. БИОХИМИЯ. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ЭКСТРАКТОВ Оборудование: Пробирки (3 пробирки с экстрактами

Подробнее

СРЕДСТВА ИНДИВИДУАЛЬНОЙ ЗАЩИТЫ

Г О С У Д А Р С Т В Е Н Н Ы Й С Т А Н Д А Р Т С О Ю З А С С Р СИСТЕМА СТАНДАРТОВ БЕЗОПАСНОСТИ ТРУДА СРЕДСТВА ИНДИВИДУАЛЬНОЙ ЗАЩИТЫ МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПРОНИЦАЕМОСТИ МИКРООРГАНИЗМАМИ ГОСТ 12.4.136-84 Издание

Подробнее

ИНСТРУКЦИЯ. Москва, 2009 г.

ИНСТРУКЦИЯ по применению фильтра Фильтраниос ПС 1000 производства «Лаборатории АНИОС» (Франция) для получения микробиологически чистой воды в лечебно-профилактических учреждениях Москва, 2009 г. ИНСТРУКЦИЯ

Подробнее

КАФЕДРА ОБЩЕЙ ХИРУРГИИ

КАФЕДРА ОБЩЕЙ ХИРУРГИИ Асептика в хирургии Цель формирование формирование представлений о значении системы профилактики инфекции в хирургии. Мотивация. 1. Инфекционные осложнения 6-8% операционных ран.

Подробнее

Register your product and get support at www.philips.com/welcome SCF283, SCF282, SCF281 1 Русский 53 Введение Поздравляем с покупкой продукции Philips! Для получения полной поддержки, оказываемой компанией

Подробнее

специальность Лабораторная диагностика

1 Перечень практических навыков для оценки в симулированных условиях при проведении второго этапа первичной аккредитации лиц, завершивших освоение основных образовательных программ среднего профессионального

Подробнее

9 КЛАСС Задание: Вам выданы 7 пробирок, в которых находятся растворы индивидуальных веществ: HCl, NaOH, Pb(NO 3 ) 2, NH 4 Cl, MgSO 4, ZnSO 4, BaCl 2.

9 КЛАСС Задание: Вам выданы 7 пробирок, в которых находятся растворы индивидуальных веществ: HCl, NaOH, Pb(NO 3 ) 2, NH 4 Cl, MgSO 4, ZnSO 4, BaCl 2. Используя эти растворы и универсальную индикаторную

Подробнее

Мужская стерилизация, методы. Урология и андрология

Мужская контрацепция, какие бывают методы и их эффективность

В настоящее существует несколько способов мужской контрацепции:

1. Прерванный половой акт

Этот способ является самым старым и простым, однако при этом крайне ненадежным. На первом году его применения беременность возникает у 18 из 100 семей. 

2. Периодическое воздержание или «календарный» метод

При этом методе половая жизнь ограничивается «безопасными» днями. Этот способ также ненадежен т. к. беременность наступает в течение 1 года его применения у 20 из 100 семей. Если сроки необходимого воздержания определяются с помощью портативной системы изменения лютеинизирующего гормона и эстрона-3-глюкуронида в моче (система «Persona»), вероятность беременности снижается до 12%. В среднем «небезопасны» 13 дней каждого цикла.

3. Презервативы

Презервативы – старейшие барьерные средства. В 1200 году до нашей эры при Минойском дворе на Крите для предохранения от венерических инфекций использовались воздушные пузыри рыб. В 1564 году итальянский анатом Фаллопий рекомендовал применять льняные мешочки пропитанные лекарством для предохранения от венерических заболеваний. В XVII веке английский врач Кондом, практиковавший при дворе Карла II с 1660 по 1685 годы, предложил в качестве контрацептивного приспособления кишку ягненка. Латексный презерватив придумал американец Чарлз Гудийр (1800–1860) разработавший процесс вулканизации резины. Первым крупным производителем латексных презервативов был Юлиус Фромм, который в 1920 году выпускал 150 тысяч кондомов в день. 

Главная проблема этого вида контрацепции в том, что презервативы рвутся. Несмотря на строгий контроль качества, принятый странах ЕЭС, 7–13% кондомов рвутся при половом акте.
Надежность презервативов в плане предотвращения беременности такова, что на первом году использования у 12 из 100 семей наступает зачатие. Это значительно хуже женских пероральных контрацептивов, при использовании которых беременность в течение первого года наступает у 3% женщин.

4. Мужская стерилизация 

Сейчас такой метод мужской контрацепции, как вазэктомия, становится все более и более популярен. Причина его популярности в том, что он имеет много преимуществ перед другими методами контрацепции: 

• Эффективность метода более 99%
• Не осложняет занятия любовью, не снижает сексуальных ощущений 
• Операция проводится один раз в жизни 
• Операция не влияет на либидо, эрекцию и оргазм
• Операция не влияет на гормонпродуцирующую функцию яичек 
• Не уменьшается объем спермы, так как сперматозоиды занимают всего около 1% от ее объема 
Операция простая, доступная, массовая. В США мужской стерилизации подвергается ежегодно полмиллиона мужчин.
Процедура вазэктомии проводится под общим или местным обезболиванием с пребыванием в стационаре в течение суток. Семявыносящие протоки в мошонке перевязываются через маленькие разрезы таким образом, чтобы не допустить появление сперматозоидов в семенной жидкости. Продолжительность процедуры около 25 минут.

Пациентам необходимо помнить следующее:

• После вазэктомии мужчина должен дополнительно предохраняться от нежелательной беременности еще в течение 1 месяца, т. к. сперматозоиды депонируются в семенных пузырьках. Возможно сокращение сроков дополнительной контрацепции, но в этом случае необходимо провести анализ семенной жидкости в клинике.
• Метод позволяет восстановить плодовитость мужчины в первые 5 лет после операции в большинстве случаев. Позднее развивается антиспермальный иммунитет, что приводит к аутоиммунному бесплодию даже при восстановлении проходимости семявыносящих путей. Поэтому к мужской стерилизации лучше прибегать тогда, когда дети уже есть, либо желательно их не иметь по каким-то серьезным медицинским показаниям.

Новые способы мужской стерилизации

В настоящее время применяются новые способы мужской стерилизации, которые позволят преодолеть ряд серьезных недостатков классической вазэктомии:

• Вазэктомия на основе специального интравазального устройства (IVD) 
• Метод бесскальпельной вазэктомии (NSV) 

Интравазальное устройство IVD

Впервые силиконовое устройство для мужской контрацепции, которое блокирует выделение сперматозоидов, начали разрабатывать в США и Канаде в 80-х годах. С тех пор были проведены исследования, подтверждающие эффективность и безопасность данного метода. В 2006 году авторы получили одобрение Управления по контролю за продуктами и лекарствами на проведение клинических исследований.
Интравазальное устройство IVD представляет собой 2 гибких силиконовых обтуратора длиной около 1 дюйма (2,54 см) и шириной от 1,2 мм до 1,6 мм.
Устройство имплантируется в семявыносящий проток через 2 небольших отверстия. Для облегчения установки IVD-обтураторов используется специальное патентованное приспособление, которое сжимает обтуратор и делает его диаметр меньше диаметра vas deferens. После удаления устройства обтураторы расширяются и заполняют просвет протока. Если сперма проходит через первый обтуратор, то ее продвижение блокируется вторым обтуратором. Для избежания миграции IVD-обтураторов производится их фиксация к стенке vas deferens. IVD-стерилизация выполняется под местной анестезией, ее длительность составляет около 20 минут. У пациента IVD-обтураторы не вызывают никаких ощущений инородного тела. Время, необходимое для наступления азооспермии или выраженной олигоспермии, составляет 2–3 месяца.

Смысл IVD-стерилизации подобен вазэктомии, но при этом не происходит повреждения vas deferens. IVD-стерилизация может использоваться несколько раз у одного и того же пациента.
Из осложнений процедуры встречаются: местное воспаление (1%), которое разрешается приемом антибиотиков; увеличение и повышенная чувствительность придатка яичка (3–5%), которое проходит самостоятельно в течение нескольких дней; образование сперматоцеле (0,02%).
IVD-обтураторы могут быть удалены для восстановления фертильности. Эта процедура может быть выполнена амбулаторно, и ее стоимость будет гораздо менее стоимости вазовазостомии. 

Бесскальпельная вазэктомия (No-Scalpel Vasectomy (NSV)). 

Бесскальпельная вазэктомия (No-Scalpel Vasectomy (NSV)) – оригинальная разработка доктора Ли Шункианга (Dr. Li Shunqiang) из Китая, который начал впервые ее использовать для стерилизации мужчин в 1970 году. На сегодняшний день более 15 миллионов мужчин подверглись NSV.

Для проведения процедуры используется специальные инструменты – хирургические щипцы и зажим. Процедура занимает около 15 минут, при этом на кожу мошонки швы не накладываются.

Кроме того, выполнение стерилизации у мужчин регламентировано законодательством.
Законодательно ее применение было разрешено только с 1990 года у женщин с их согласия и по медицинским показаниям, а с 1993 года – как у мужчин, так и у женщин.
В соответствии со статьей 20 Закона Республики Казахстан от 16 июня 2004 года
№ 565-II О репродуктивных правах граждан и гарантиях их осуществления 

« 1. Хирургическая стерилизация как метод предупреждения нежелательной беременности может быть проведена в отношении граждан не моложе тридцати пяти лет или имеющих не менее двух детей, а при наличии медицинских показаний и согласия гражданина — независимо от возраста и наличия детей.

2. Хирургическая стерилизация проводится только по письменному согласию гражданина организациями здравоохранения, физическими лицами, занимающимися частной медицинской практикой, имеющими лицензию на осуществление данной деятельности, с обязательным предварительным уведомлением о возможной необратимости данной операции».

Методы, средства и режимы стерилизации

Стерилизация изделий медицинского назначения должна обеспечить гибель мик­роорганизмов всех видов на всех стадиях развития. Поскольку к преобладающему большинству средств стерилизации (за исключением ионизирующего излучения) наи­большую устойчивость проявляют споры микроорганизмов, то стерилизующими явля­ются средства, оказывающие спороцидное действие.
Используются следующие методы стерилизации:

• термические: паровой, воздушный, глассперленовый;
• химические: газовый, химические препараты;
• радиационный,
• плазменный и озоновый (группа химических средств).

Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от осо­бенностей изделия и самого метода — его достоинств и недостатков.
Изделия в упаковке стерилизуют при децентрализованной, централизованной системах, или на промышленных предприятиях, выпускающих изделия медицинского назначения однократного применения. Изделия без упаковки стерилизуют только при децентрализованной системе в ЛПУ.
Самые распространенные в ЛПУ — паровой и воздушный методы стерилизации.

Паровой метод — надежный, нетоксичный, недорогой, обеспечивающий сте­рильность не только поверхности, но и всего изделия. Он осуществляется при срав­нительно невысокой температуре, обладает щадящим действием на обрабатывае­мый материал, позволяет стерилизовать изделия в упаковке, благодаря чему предуп­реждается опасность реконтаминации (повторного обсеменения микроорганизмами).
Стерилизующий агент при этом методе — водяной насыщенный пар под избы­точным давлением.
Стерилизацию проводят при следующих режимах:

• 141 ± ГС под давлением 2,8 Бар — 3 мин;
• 134 ± ГС под давлением 2,026 Бар — 5 мин;
• 126 ± ГС под давлением 1,036 Бар — 10 мин.

Паровым методом стерилизуют изделия из коррозионностойких металлов, стек­ла, текстильных материалов, резины, латекса.
В качестве упаковки используют стерилизационные коробки (биксы), пергамент, оберточные бумаги: мешочную непропитанную, мешочную влагопрочную, упаковоч­ную высокопрочную, двухслойную крепированную.
Чтобы пар хорошо проникал в различные точки стерилизационной камеры, между изделиями и внутрь изделий из текстиля, очень важно соблюдать нормы загрузок как стерилизатора, так и бикса.
Срок хранения стерильного материала зависит от вида упаковки.
Паровой метод имеет и существенные недостатки, вызывает коррозию инстру­ментов из некоррозионностойких металлов: превращаясь в конденсат, увлажняет стерилизуемые изделия, что ухудшает условия их хранения, увеличивает опасность реконтаминации.

Воздушный метод. Стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. От­личительная особенность метода — не происходит увлажнения упаковки и изделий, и связанного с этим уменьшения срока стерильности, а также коррозии металлов.
Недостатки метода:

• • медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;
• • необходимость использования более высоких температур;
• • невозможность использовать для стерилизации изделий из резины, полимеров;
• • невозможность использовать все имеющиеся упаковочные материалы. Воздушный метод проводят в воздушных стерилизаторах при следующих ре­жимах:

1. 200±ЗвС — 30 мин;
2. 180±3°С — 40 мин;
3. 160±3°С— 120 мин.

Эффективность воздушной стерилизации во многом зависит от равномерного проникновения горячего воздуха к стерилизуемым изделиям, что достигается прину­дительной циркуляцией воздуха со скоростью 1 м/с и соблюдением норм загрузки стерилизатора.
И паровой, и воздушный методы стерилизации экологически чистые.

Газовый метод осуществляется при 18-80°С. Изделия стерилизуются в упа­ковках.
При газовой стерилизации используют этилен-оксид и его смеси, формальдегид.
В газообразном состоянии этилен-оксид не вызывает коррозии металлов, не пор­тит изделий из кожи, шерсти, бумаги, пластмасс; он является сильным бактерицидным, спороцидным и вирулицидным средством. Пары обладают высоким проникновением.
Недостаток этилен-оксида — его токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности. Процесс стерилизации имеет продолжи­тельный цикл. Этилен-оксид редко используется в ЛПУ.
Формальдегид по своим качествам не уступает, а по некоторым показателям пре­восходит этилен-оксид. Для стерилизации, как правило, используются пары 40-про­центного спиртового раствора формальдегида. Стерилизующим агентом может быть формальдегид, испаряющийся из параформа или формалина.
Стерилизация растворами — вспомогательный метод, который применяют при невозможности использования других. Стерилизация растворами имеет следующие недостатки, изделия стерилизуются без упаковки, их необходимо промывать после стерилизации, что может привести к реконтаминации.
Преимущества: повсеместная доступность, легкость в исполнении и др.
Стерилизуемые растворами изделия свободно раскладывают в емкости. При большой длине изделие укладывают по спирали, каналы и полости заполняют раствором.
После окончания стерилизации изделия трижды (при стерилизации перекисью водорода — дважды) погружают на 5 мин в стерильную воду, каждый раз меняя ее, затем стерильным корнцангом их переносят в стерильную емкость, выложенную сте­рильной простыней.
Поскольку изделия стерилизуют растворами без упаковки, этот метод может быть использован только при децентрализованной системе.

Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующим агентом являются ионизирующие у (гамма)- и в (бета)-излучения.
Для индивидуальной упаковки, помимо бумажных используют пакеты из полиэти­лена. Сохраняется стерильность в такой упаковке годами, но и он ограничен. Срок годности указывается на упаковке.
Радиационный — основной метод промышленной стерилизации. Он использует­ся предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.

Методы стерилизации

Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздушный, в среде нагретых шариков, инфракрасный, лучевой) и химическими (применение растворов химических средств, газовый) методами, указанными в таблице. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

Паровой метод стерилизации (автоклавирование)

Впервые стерилизация паром под повышенным давлением в автоклаве осуществлена в 1884 году Л.Л. Гендейрейхом.

При этом способе стерилизации действующим агентом является горячий пар. В автоклаве возможно нагревание воды под повышенным давлением, что приводит к повышению точки кипения воды и соответственно пара до 1320 С (при давлении 2,9 атм.).

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 2000 С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

Материал для стерилизации помещают в специальные биксы Шиммельбуша, пергамент, бумагу мешочную, упаковочную, крепированную, стерилизационные коробки с фильтром.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обращают внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие – на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Воздушный метод стерилизации

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 1600 С и 1800 С; стерилизацию осуществляют в суховоздушных стерилизаторах.

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионнонестойких металлов, шприцы с пометкой 2000 С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 °C до исчезновения видимой влаги.

Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

Изделия стерилизуют завернутыми в стерилизационные упаковочные материалы. Шприцы стерилизуют в разобранном виде.

Во время стерилизации металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга.

Инфракрасная стерилизация

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200±30 С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут. Недостатками данного метода стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, отсутствие контролирующих индикаторов.

Озоновая стерилизация — стерилизуют инструменты простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов, применяемые в хирургии и стоматологии (скальпели, пинцеты, зеркала цельнометаллические, гладилки, зонды, шпатели, боры стоматологические твердосплавные), в неупакованном виде.

После стерилизации инструменты используют по назначению сразу (без дополнительного проветривания).

Плазменная стерилизация.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS.

Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20%-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками.

Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +500 С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности.

Время стерилизации – от 90 до 120 минут.

Стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков (гласперленовая)

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). При стерилизации стеклянные шарики нагреваются до температуры 190-2400 С. Стерилизация проводится в течение 5 — 15 секунд.

Недостатком метода является возможность стерилизации только мелких инструментов. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Ультразвуковая стерилизация

Механические колебания с частотой от 2х104 до 2х108  колебаний в 1 секунду не воспринимаются ухом человека и называются ультразвуком. Для искусственного получения ультразвука служат специальные приборы. Источником ультразвука являются кристаллы кварца, турмалина, обладающие пьезоэлектрическими свойствами. Пьезоэлектрический эффект обусловлен явлением электрической поляризации кристаллов.

При воздействии на ткани ультразвуковой волны происходит образование микроскопических полостей, которые быстро закрываются под воздействием последующего сжатия. Такое явление называется кавитацией. Ультразвуковая кавитация приводит к образованию свободных радикалов, диссоциации молекул воды на ионы Н+ и ОН-, что приводит к нарушению окислительно-восстановительных процессов в микробной клетке.

Ультразвуковые волны используются для стерилизации инструментов, подготовки рук медицинского персонала к операции. Для этого руки (инструменты) погружают в специальную ванну с дезинфицирующим раствором, через который пропускают ультразвуковые волны.

Лучевая стерилизация.

Используют гамма и бета — частицы и относительно тяжелые нейтроны, протоны и т. д. Разница вызываемых ими биологических изменений почти незаметна. Радиоактивное излучение, проходя через среду, вызывает ионизацию последней, в связи с чем его называют ионизирующим излучением. Бактерицидный эффект ионизирующего излучения обусловлен воздействием на метаболические процессы бактериальной клетки. Наибольшее применение получила стерилизация гамма-лучами. Используются изотопы Co60 иCs138. Доза проникающей радиации значительна и составляет 2-2,5 Мрад. В связи с этим лучевая стерилизация в стационарах не производится и применяется в промышленных условиях.

Метод применяется для стерилизации одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и др.). При сохранении целостности упаковки стерильные свойства предметов сохраняются в течение 5 лет.

Стерилизация растворами химических средств

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9 % раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, то есть в тех случаях, когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендуемые методы стерилизации.

Для стерилизации растворами химических средств используют такие средства, как первомур, перекись водорода, дезоксон — 1, 4, стераниос 20%, сайдекс, лизоформин-3000, глютарали др.

При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 200С для альдегидсодержащих средств и не менее 180С – для остальных средств.

Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости, налитой в стерильные емкости, согласно рекомендациям методического документа по применению конкретного средства. При каждом переносе из одной емкости в другую освобождение каналов и полостей и их заполнение свежей жидкостью осуществляют с помощью стерильного шприца, пипетки или иного приспособления.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Газовая стерилизация

Для газового метода стерилизации используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5 соответственно), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, а также озон.

Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена проводят при комнатной температуре (не менее 180 С), при температуре 350 С и 550 С, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 800 С. 

Стерилизация. Виды, методы, цели, задачи. ЦСО. Устройство, функции

Внимательно изучите предложенный теоретический материал и дайте ответы на следующие вопросы:

1. Стерилизация, цели стерилизации, документы, регламентирующие стерилизацию в ЛПУ.

2. Методы стерилизации.

3. Паровой метод стерилизации, режимы, сроки сохранения стерильности. Материалы, подвергаемые стерилизации паровым методом. Индикаторы стерильности парового метода стерилизации. Понятие ЦСО. Функции.

4. Воздушный метод стерилизации, режимы, сроки сохранения стерильности. Материалы, подвергаемые воздушному методу стерилизации. Индикаторы стерильности воздушного метода стерилизации.

5. Гласперленовая стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков.

6. Химический метод стерилизации. Особенности проведения данного метода. Недостатки химического метода стерилизации.

7. Газовый метод стерилизации. Особенности данного метода.

8. Контроль качества стерильности.

Выполните следующие тестовые задания:

1. Умерщвление микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития: патогенных и непатогенных, в том числе спорообразующих, обладающих высокой устойчивостью к конкретному стерилизующему средству – это ____________________

2. Установите последовательность обработки изделий многоразового использования

А._____________________________________________________________________

Б._____________________________________________________________________

В._____________________________________________________________________

3. Документы, регламентирующие стерилизацию

А._____________________________________________________________________

Б._____________________________________________________________________

В._____________________________________________________________________

4. Укажите методы стерилизации

А._________________________________________

Б._________________________________________

5. К физическом методам стерилизации относят

А. Паровой

Б. Газовый

В. Воздушный

6. К химическим методам стерилизации относят

А. Газовый

Б. 6% перекись водорода

В. Горячим воздухом

7. Как называется прибор, применяемый для паровой стерилизации

А. Сухожаровый шкаф

Б. Автоклав

В. Гласперленовый стерилизатор

8. Укажите режим стерилизации, применяемый для металлов

А. 132°, 2,2 атм – 20 мин

Б. 180° — 60 мин

В. 120 °, 1, 1 атм, 45 мин

9. В стерилизационных коробках с фильтром изделия сохраняют стерильность в течение

А. 3 суток

Б. рабочей смены

В 20 суток

10. В стерилизационных коробках без фильтра изделия сохраняют стерильность в течение

А. 3 суток

Б. рабочей смены

В 20 суток

11. Стерилизацию изделий горячим воздухом производят

А. В металлических лотках

Б. В биксах

В. В открытых емкостях

12. Режим стерилизации в сухожаровом шкафу изделий из стекла

А. 132°, 2,2 атм – 20 мин

Б. 180° — 60 мин

В. 120 °, 1, 1 атм, 45 мин

13. Воздушный стерилизатор загружают при температуре стерилизационной камеры

А. 20-30°С

Б. 40-50°С

85°С

14. После стерилизации горячим воздухом стерильные изделия

А. Используются сразу

Б. Выкладываются на «стерильный стол» на 6 часов

В. Сохраняют стерильность 3 суток

15. При организации маникюрного салона целесообразно приобрести

А. Сухожаровый шкаф

Б. Автоклав

В. Гласперленовый стерилизатор

16. При химической стерилизации, стерилизуемые изделия, погружаемые в раствор должны быть

А. Влажными

Б. Сухими

В. Не имеет значения

17. После стерилизации химическим методом, простерилизованные изделия сохраняют стерильность

А. сутки после стерилизации

Б. 6 часов после стерилизации

В. 3 суток в биксе.

18. Методы контроля режимов стерилизации

А. _____________________________________________

Б.______________________________________________

В._____________________________________________

19. Для контроля стерилизации применяются индикаторы

А._____________________________

Б._____________________________

20. Как называется прибор, представленный на рисунке. Для какого метода стерилизации применяется данный прибор.

_______________________________________

21. Как называется прибор, представленный на рисунке. Для какого метода стерилизации применяется данный прибор.

_______________________________________

22. Как называется индикатор стерильности, представленный на рисунке. Для какого режима стерилизации он используется

_____________________

23. Заполните таблицу

Решите ситуационные задачи.

1. М/с проводит стерилизацию стоматологического инструментария в сухожаровом шкафу в открытой емкости (лотках). Режим стерилизации: 160° — 60 мин. Правильно ли проводится стерилизация? Ответ обоснуйте.

2. В ЦСО проводится стерилизация медицинского инструментария в автоклаве при температуре 132° — 2,2 атм. – 20 мин. без контроля качества стерилизации. Укажите индикатор стерильности. Какие материалы стерилизуют при данном режиме?

3. Укажите возможные режимы стерилизации стекла. Назовите индикаторы стерильности.

ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ: различные виды стерилизации

·
Стерилизация — это метод удаления, уничтожения и дезактивации
микроорганизмы.

·
Процесс стерилизации устраняет (удаляет) или
убивает (дезактивирует) все формы жизни и другие биологические агенты.

·
Стерилизация может быть достигнута одним или несколькими
из следующих

1.
Тепловая стерилизация

2.
Химическая стерилизация

3.
Стерилизация радиацией

4.
Газовая стерилизация оксидом этилена
стерилизация

5.
Фильтрация.

·
В зависимости от требований эти
методы стерилизации имеют разное применение.

·
Например, мы не можем использовать стерилизацию сухим жаром.
метод стерилизации пластмассовых материалов.

·
Эти методы стерилизации зависят от природы стерилизуемого продукта.

·
Все эти методы используются в фармацевтике.
Основная задача промышленности — стерилизация влажным теплом и депирогенизация
сухое тепло.

1.
Тепловая стерилизация:

·
Тепловая стерилизация также Различные типы.

А.
Стерилизация влажным теплом (например, автоклав)

Б.
Другая тепловая стерилизация (Пример: горелка Бунзена)

С.
Стерилизация сухим жаром (Пример: стерилизатор сухим жаром
(DHS), духовка)

А.
Влажная жара
стерилизация:

·
Стерилизация влажным теплом — одна из самых
эффективный метод стерилизации предметов, которые нельзя стерилизовать сушкой
нагревать.

·
Используя автоклавы с различной загрузкой, например, стеклянной посудой,
одежда, резиновые пробки и прочее стерилизуются при 121 °
Температура и давление 15 фунтов на квадратный дюйм.

·
Чистый пар используется для стерилизации влажным теплом.

Б.
Другая тепловая стерилизация:

·
Пламенеем подвергаются петли и прямые провода в
лаборатория микробиологии.

·
Оставляя петлю в пламени горелки Бунзена
или блок спиртовой лампы он светится красным, что гарантирует, что любой инфекционный агент попадет
инактивирован.

·
Этот метод обычно используется для мелких металлов или
стеклянные предметы, но не для крупных предметов.

С.
Стерилизация сухим жаром:

·
Депирогенизация путем стерилизации сухим жаром — это
процесс, с помощью которого мы можем сделать любое изделие стерильным, а также свободным от эндотоксинов.

·
Эндотоксины образуются из грамотрицательных продуктов.
бактерии, которые попадают в кровоток после гибели микробных клеток.

·
Эндотоксины повышают температуру тела и могут
быть очень плодородным.

·
Это повышение температуры тела в
бесконтрольный образ жизни приводит к смерти человека.

·
Для этого используются стерилизаторы сухого тепла и духовки.
процесс депирогенизации и высокая температура, например 250 ⁰ C или 350 ⁰ C
требуется, и это зависит от валидационного исследования.

2. Химическая промышленность
Стерилизация:

·
Химические вещества также используются для стерилизации.

·
Но не всегда уместно, если будет
повреждение термочувствительных материалов, таких как биологические материалы, волоконная оптика,
электроника и многие пластмассы.

·
Пример:

1.
Изопропиловый спирт.

2.
Гипохлорит натрия (отбеливатель) NaOCl

3.
Диоксид хлора (ClO ₂ )

4.
Перуксусная кислота

3.
Стерилизация радиацией:

·
Стерилизация может быть достигнута с помощью
электромагнитное излучение, такое как электронные лучи, рентгеновские лучи, гамма-лучи или
облучение субатомными частицами.

·
Электромагнитное излучение или излучение твердых частиц может быть
достаточно энергичный, чтобы ионизировать атомы или молекулы (ионизирующее излучение), или меньше
энергетический (неионизирующее излучение).

А.
Ионизирующая — радиационная стерилизация.

Б.
Стерилизация неионизирующим излучением.

А.
Ионизирующая — радиационная стерилизация:

·
Гамма-излучение — очень проникающий метод.

·
Этот метод обычно используется для стерилизации.
одноразового медицинского оборудования, такого как шприцы, иглы и продукты питания.

·
Он испускается радиоизотопом, обычно
Коблат-60 ( ⁶⁰ Co) или цезий ( ¹³⁷ Cs).

·
Производится со скоростью света, чтобы убить бактерии.
Подобно свету, но с большей энергией фотонов и меньшей длиной волны (электро
магнитные квантовые волны).

·
Этот процесс разрушает микробную ДНК.

·
Организмы выживают в этом процессе нежизнеспособными или
неспособный.

·
Подавление бактериального деления.

·
25 кГр (килограмм серого) гамма-излучения
рекомендован для терминальной стерилизации медицинских изделий.

Б.
Неионизирующее излучение
стерилизация:

·
Ультрафиолетовое бактерицидное облучение (УФГИ) от
бактерицидная лампа полезна для стерилизации поверхностей и некоторых прозрачных
объекты.

·
Длина плетения
253,7 нм или 2537 ангстрем.

·
Эта длина плетения разрушает микроорганизмы
ДНК.

4.
Газовая стерилизация
сделано оксидом этилена:

·
Оксид этилена (EO или EtO) формула C ₂ H ₄ 0.

·
Легковоспламеняющийся бесцветный газ.

·
3% газа Eo смешивают с воздухом и пропускают. Большинство из
при смешивании с азотом или газом Co ₂ .

·
Время стерилизации около 60 часов.

·
Этот метод подходит для пластиковых, электроаппаратов.

5.
Фильтрация:

·
Фильтрация позволяет исключить организмы
в зависимости от размера.

·
Есть много типов методов фильтрации.
(например, мембранные фильтры, фильтры для разрушения и т. д.), но при стерилизации системы
используется мембранная фильтрация.

·
Мембранная фильтрация улавливает более крупные загрязнения
чем размер пор на поверхности мембраны.

·
Если загрязняющие вещества меньше желаемого
частицы, уменьшают размер пор мембраны и задерживают продукт при прохождении
загрязнения через мембрану.

Тест на стерильность и бактериальный эндотоксин (БЭТ) — это два
важные тесты для выпуска любых инъекционных продуктов. По тесту на стерильность мы
может обнаружить заражение в жилых помещениях, если оно присутствует.Если
микроорганизмы присутствуют в мертвых, поэтому тест на стерильность не может
обнаружить загрязнение.

СТАВКА — еще один важный тест, и с его помощью мы можем только
обнаруживают эндотоксин, который выделяется мертвыми грамотрицательными бактериальными клетками.

Итак, применение обоих этих тестов различно, можно
обнаруживать живое заражение, а другой может обнаруживать эндотоксин, производимый мертвыми
грамотрицательные бактерии. Вот почему оба тестирования необходимы для выпуска любого
инъекционный продукт. Другое дело, что мы не можем использовать стерилизацию влажным теплом.
метод удаления / денатурирования эндотоксина, потому что эндотоксины очень стабильны
(резистивный) для стерилизации влажным теплом при 121 ⁰ C не влияет на свойства эндотоксина.

Это означает, что эндотоксин не может быть денатурирован в процессе
стерилизация влажным теплом, поэтому требуется стерилизация сухим теплом. Теперь это
ясно, если мы хотим убить живого
стерилизация от заражения микроорганизмами стерилизацией влажным теплом
эффективно, и если мы хотим удалить эндотоксин (производимый мертвым грамотрицательным
бактерии), то требуется депирогенизация.

Совместимость с стерилизацией синтетических полимеров

Синтетические полимеры незаменимы в различных областях медицины, поскольку они используются для изготовления ряда медицинских устройств.Они заменяют стекло, металл и другие стандартные материалы в одноразовых и многоразовых медицинских устройствах. Изготовители медицинского оборудования обычно выбирают полимеры из-за их исключительных свойств, включая высокую прочность, малый вес, гибкость и простоту изготовления.
Стерилизация многоразовых медицинских изделий из синтетических полимеров необходима для предотвращения распространения патогенов. По сути, процесс стерилизации направлен на уничтожение или удаление живых организмов в виде грибковых или бактериальных спор.Существует несколько методов стерилизации, и выбор из них зависит от устройства, его предполагаемого использования и типа медицинского учреждения.

FDA регулирует четыре вида методов стерилизации, включая паровой автоклав, сухой жар, оксид этилена и облучение. Эффективность и пригодность этих методов зависит от конкретных свойств каждого стерилизуемого медицинского изделия. Мы посмотрим на совместимость синтетических полимеров каждым из этих методов:

Стерилизация сухим жаром

Стерилизация сухим жаром включает воздействие горячего воздуха на стерилизуемый продукт.Устройство подвергается постоянным температурам и выдерживается в течение определенного периода в зависимости от типа полимера. Стерилизация сухим жаром, возможно, является одним из наиболее эффективных методов, поскольку тепло достигает всех поверхностей одинаково. Однако некоторые типы полимеров могут не выдерживать необходимых идеальных температур и в результате могут обесцветиться.
С этим методом совместимы следующие типы полимеров:

• Ацетали
• Ароматический полиамид
• Сополиэфирный термопласт (TPC)
• Этиленхлортрифторэтилен (ECTFE)
• Этилен-тетрафторэтилен (ETFE)
• Фторированный этиленпропилен (FEP)
• Поликапролактон (PCL)
• Полиэфирэфиркетон (PEEK)
• Полиэфирсульфон (PES)
• Полигликолевая кислота (PGA) Полифениленсульфид (PPS)
• Поли-L-лактид (PLLA)
• Полисульфоны (PSU)
• Силикон

Оксид этилена

Этот метод используется для стерилизации медицинских изделий, чувствительных к влаге или теплу.Оксид этилена имеет высокий уровень токсичности, поэтому перед стерилизацией устройства должны быть полностью высушены. Вода может снизить эффективность газа, поэтому необходимо контролировать температуру, влажность и время воздействия концентрации газа. Обычно полимеры, стерилизованные этим методом, должны выдерживать воздействие газа ETO и технологической влажности. Устройства, стерилизованные с помощью этого метода, требуют до 12 часов аэрации для удаления остаточных газов.
Все типы полимеров совместимы со стерилизацией ETO.

Заинтересованы в полезной инфографике?

Паровой автоклав

Метод паровой автоклавирования — один из наиболее рекомендуемых и широко используемых методов стерилизации медицинских изделий. Паровой автоклав — это не только быстро, но и надежно, и недорого. Этот метод использует сочетание влаги и тепла для уничтожения микроорганизмов. Фактическое время цикла и идеальные уровни температуры будут зависеть от типа полимера в стерилизуемых устройствах.Стандартные циклы составляют от 15 до 30 минут, при температуре от 121 до 134 градусов Цельсия. Полимеры, используемые для изготовления медицинских изделий многократного использования, следует выбирать с осторожностью, поскольку многие из них могут не выдерживать длительного многократного воздействия высоких температур и пара.
Большинство полимеров совместимо с стерилизацией паром в автоклаве и могут выдерживать большое количество циклов стерилизации паром без значительной потери механических свойств.

Следующие типы полимеров совместимы с методом стерилизации паром в автоклаве:

• Ацетали
• Все полимеры из семейства фторполимеров
• Ароматический полиамид
• Полиэфирэфиркетон (PEEK)
• Полиэфирсульфон (PES)
• Полиэтилен (PE)
• Полигликолевая кислота (PGA)
• Полифениленсульфид (PPS)
• Полипропилен (ПП)
• Полисульфоны (PSU)
• Силикон

Облучение

Этот метод включает использование излучения, генерируемого электронным лучом или гамма-лучами, для стерилизации медицинских устройств.Обычно доза может составлять от 2 до 4 мегарад или от 20 до 40 килограммов. Однако дозировка может варьироваться в зависимости от плотности упаковки в стерилизационной камере и типа полимера. Важно отметить, что на цвет и механические свойства некоторых типов полимеров может влиять радиация.

Следующие типы полимеров совместимы как с гамма-, так и с электронно-лучевой стерилизацией:

• Все полимеры семейства эластомеров
• Все термопластичные высокотемпературные полимеры
• Все полимеры семейства полиэфиров
• Все полимеры семейства полистиролов
• Ароматический полиамид
• Циклоолефиновые сополимеры (COC)
• Этиленхлортрифторэтилен (ECTFE)
• Этилен-тетрафторэтилен (ETFE)
• Полиэтилен высокой плотности (HDPE)
• Полиэтилен низкой плотности (LDPE)
• Поликапролактон (PCL)
• Полиэфирсульфон (PES)
• Полиэтилен (PE)
• Полигликолевая кислота (PGA)
• Полиимид (PI)
• Полимолочная кислота (PLA)
• Поли-L-лактид (PLLA)
• Полиуретан (ПУ)
• Поливинилхлорид (ПВХ) пластифицированный
• Поливинилфторид (ПВФ)
• поливинилиденфторид (PVDF)
• Полиэтилен сверхвысокой молекулярной массы
  (СВМПЭ)

6.14A: тепло — биология LibreTexts

1. Последнее обновление

2. Сохранить как PDF

1. Стерилизация влажным теплом
2. Стерилизация сухим теплом
3. Ключевые моменты
4. Ключевые термины

Цели обучения

• Оценить тепло как средство микробиологического контроля

Нагревание бактериальных сред и посуды в исследованиях и медицине, а также для стерилизации пищевых продуктов является одним из наиболее распространенных методов контроля роста бактерий.Для стерилизации используются разные методы и инструменты.

Стерилизация влажным теплом

Влажное тепло вызывает разрушение микроорганизмов путем денатурации макромолекул, в первую очередь белков. Автоклавирование (приготовление под давлением) — очень распространенный метод влажной стерилизации. Он эффективен в уничтожении грибов, бактерий, спор и вирусов, но не обязательно устраняет прионы. При такой стерилизации образцы помещаются в паровую камеру. Камера закрывается и нагревается, так что пар вытесняет воздух из вентиляционных отверстий или выхлопов.Затем прикладывают давление, чтобы внутренняя температура достигла 121 ° C. Эта температура поддерживается от 15 до 30 минут. Эта повышенная температура и давление достаточны для стерилизации образцов любых обычно встречающихся микробов или спор. Затем камере дают возможность медленно остыть или за счет пассивного рассеивания тепла.

Стерилизация под давлением — преобладающий метод медицинской стерилизации термостойких инструментов. Он также используется для стерилизации материалов для микробиологии и других областей, требующих асептической техники.Чтобы облегчить эффективную стерилизацию паром и давлением, используется несколько методов проверки и индикации; к ним относятся меняющие цвет индикаторные ленты и биологические индикаторы. Для любого метода стерилизации влажным теплом обычно используются биологические индикаторы в качестве средства проверки и подтверждения. При использовании биологических индикаторов образцы, содержащие споры термостойких микробов, таких как Geobacillus stearothermophilis , стерилизуются вместе со стандартной загрузкой, а затем инкубируются в стерильных средах (часто содержащихся в образце в стеклянной ампуле, которую необходимо разбить после стерилизации).Изменение цвета среды (указывает на выработку кислоты бактериями; требуется, чтобы среда была составлена ​​для этой цели) или появление помутнения (помутнение, указывающее на рассеяние света бактериальными клетками) указывает на то, что стерилизация не была достигнута и цикл стерилизации может нуждаться в пересмотре. или улучшение. Другими влажными методами являются кипячение образцов в течение определенного периода времени и тиндаллизация. Кипячение не помогает избавиться от спор. Тиндаллизация также инактивирует споры, но это более длительный процесс.

Рисунок: Автоклав : Большой автоклав, используемый для влажной стерилизации сред и оборудования

Стерилизация сухим жаром

Сухое тепло уничтожает микроорганизмы, вызывая коагуляцию белков. Процесс стерилизации сухим жаром осуществляется кондуктивным способом; именно здесь тепло поглощается внешней поверхностью предмета и затем передается внутрь следующему слою. В конце концов, все изделие достигает нужной температуры, необходимой для стерилизации.Время и температура стерилизации сухим жаром составляет 160 ° C в течение 2 часов или 170 ° C в течение 1 часа. Инструменты должны быть высушены перед стерилизацией, так как вода будет мешать процессу. Другие методы тепловой стерилизации включают в себя пламя и сжигание. Пламя обычно используется для стерилизации небольшого оборудования, используемого для асептических манипуляций с бактериями. Если оставить контуры переноса в пламени горелки Бунзена или спиртовой лампы до тех пор, пока они не загорятся красным, это гарантирует, что любой инфекционный агент будет инактивирован. Обычно это используется для небольших металлических или стеклянных предметов, но не для больших предметов (см. Сжигание ниже).Однако во время первоначального нагрева инфекционный материал может «разбрызгиваться» с поверхности проволоки до того, как он погибнет, загрязняя близлежащие поверхности и предметы. Поэтому были разработаны специальные нагреватели, которые окружают инокуляционный контур нагретой клеткой, гарантируя, что такой распыляемый материал не будет дополнительно загрязнять область. Другая проблема заключается в том, что газовое пламя может оставлять на объекте загрязнения, например углерод, если объект недостаточно нагрет. Вариант пламени заключается в том, чтобы окунуть объект в 70% этанол (или более высокую концентрацию) и просто прикоснуться им на короткое время к пламени горелки Бунзена, но не удерживать его в газовом пламени.Этанол загорится и сгорит через несколько секунд. 70% этанол убивает многие, но не все, бактерии и вирусы. Его преимущество в том, что он оставляет меньше остатков, чем газовое пламя. Этот метод хорошо подходит для стеклянных разносчиков бактерий в форме «хоккейной клюшки». Сжигание также сожжет любой организм дотла. Он используется для дезинфекции медицинских и других биологически опасных отходов перед тем, как их выбросить вместе с неопасными отходами.

Ключевые моменты

• Для стерилизации используются разные методы.Одним из наиболее распространенных является применение влажного тепла, которое включает автоклавирование (приготовление под давлением), кипячение и тиндаллизацию.
• Стерилизация сухим жаром осуществляется методом кондукции и широко используется для инструментов.
• К другим методам нагрева относятся пламя и сжигание. Пламя обычно используется для стерилизации небольшого оборудования, используемого для асептических манипуляций с бактериями.

Ключевые термины

• стерилизация : любой процесс, который устраняет или уничтожает все формы микробной жизни, присутствующие на поверхности, растворе или твердом соединении.
• Тиндаллизация : Тиндаллизация — это процесс трех последовательных паровых обработок для достижения стерилизации в течение трех дней. Это работает, убивая вегетативные клетки, позволяя прорастать выжившим спорам и убивая образовавшиеся вегетативные клетки, прежде чем они успеют сформировать новые споры.

Типы стерилизации

Типы стерилизации

В современном мире потребность в инфекционном контроле как никогда высока.
Пациенты и медицинские работники стали больше беспокоиться о
передача патогенных организмов, чем когда-либо прежде. Контролирующий
микробное заражение в результате стерилизации долгое время считалось наиболее распространенным
важный компонент программы инфекционного контроля. Результат правильного
стерилизация инструментов — это защита пациента и забота о здоровье
профессионал от различных инфекционных заболеваний. В
усиление внимания к инфекционному контролю.
Поскольку инфекции увеличивают степень тяжести
болезни, затрудняют выздоровление и продлевают пребывание в стационаре, они повышают
Стоимость ухода. Постоянно растущие расходы на здравоохранение сосредоточили внимание поставщиков
внимание на снижение затрат. Часто это означает повторную стерилизацию и повторное использование
дорогие пластиковые предметы, от которых иначе можно было бы отказаться. Инструменты
необходимо стерилизовать между использованием. Существует несколько видов стерилизационного оборудования.
Паровые стерилизаторы (автоклавы), стерилизаторы сухого нагрева, химикаты с подогревом
паровые стерилизаторы и газовые стерилизаторы.

Сухой жар
В стерилизаторах сухого тепла используются более высокие температуры
для уничтожения микроорганизмов. Они считаются эффективными и безопасными для
металлические инструменты, потому что в процессе обработки края инструментов не тускнеют, не ржавеют / не корродируют
инструменты. Есть два вида
«Стерилизаторы сухого нагрева». Традиционный стиль «тостерной печи», медленный
и стерилизуйте час при температуре 320 ° F (160 ° C) или стерилизаторе COX Rapid Heat.
который использует запатентованную технологию принудительной подачи воздуха и перегородки для стерилизации
за 6 минут при 375f (190c). Рекомендации CDC требуют еженедельного мониторинга
работа стерилизатора сухого тепла путем еженедельного тестирования спор.

Паровой стерилизатор
Паровой стерилизатор позволит вам стерилизовать
широкий выбор материалов. Температура, давление и время — главные
факторы этого процесса. Чем выше температура, тем больше давление
и тем короче цикл стерилизации. Максимальная температура повысится
к 273f (133c).Однако стерилизация паром может привести к незащищенным инструментам.
разъедать, а незащищенные режущие кромки тупить. Кроме того, избыток
вода в паре может стать порталом для проникновения микроорганизмов во влажный инструмент.
пакеты. Паровые стерилизаторы (автоклавы) — самый популярный метод
стерилизации и производятся и продаются по всему миру. Есть несколько
паровые стерилизаторы продаются в США и многих других странах мира.
В настольной среде размеры камеры
колеблется от 6 дюймов (15.Диаметр 24 см, глубина 14 дюймов (35,56 см), до 15 дюймов
(38,1 см) в диаметре x 26 дюймов (66,04 см) в глубину.
Рекомендации CDC требуют еженедельного контроля работы парового стерилизатора.
проводя еженедельный тест на споры.

Паровые стерилизаторы с подогревом
Стерилизаторы этого типа также предлагают относительно
короткое время цикла. Металлические инструменты можно обрабатывать с минимальной степенью ржавчины
или коррозия, а режущие кромки остаются острыми; однако инструменты необходимо сушить
полностью перед обработкой.Для стерилизатора требуется специальный раствор;
и термочувствительные пластмассы могут быть разрушены. Кроме того, агрегат
должен быть помещен в хорошо проветриваемое место, чтобы рассеять химический запах. Рекомендации CDC
требует еженедельного контроля работы химического стерилизатора путем выполнения
еженедельный тест на споры.

Химическая промышленность
Раствор
Жидкие дезинфицирующие средства, такие как глутаральдегид,
широко используются в медицинских учреждениях. У них короткие, недорогие
циклы дезинфекции.Однако гутаровый альдегид нельзя использовать во всех медицинских целях.
материалы. Обычное время цикла и концентрации обеспечивают только дезинфекцию,
которые не могут убить устойчивые микроорганизмы. Решения очень
едкие и токсичные; поскольку они бывают жидкими, их нельзя использовать
с барьерной упаковкой. В тот момент, когда инструмент извлекается из жидкости,
его стерильность нарушена. Погружение в жидкий стерилизатор не допускается.
рекомендуется, потому что стерилизацию жидкими химикатами невозможно контролировать биологически.
Кроме того, инструменты, дезинфицированные жидкостями, должны обрабатываться асептически.
промыть стерильной водой и высушить стерильным полотенцем. Более того,
инструменты, погруженные в жидкие стерилизаторы, не упаковываются и, следовательно,
необходимо использовать немедленно или хранить в стерильном контейнере в соответствии с
Советы Американской стоматологической ассоциации по научным вопросам и стоматологической практике
«Рекомендации по инфекционному контролю для стоматологического кабинета и стоматологической лаборатории»,
представлен на научном форуме OSAP 1996 г.

Стекло
Стерилизаторы для шариков
Стекло
стерилизатор шариков уже давно используется для инструментов, повторно используемых на одном и том же
пациент на единовременном приеме; однако они не подходят для терминала
стерилизация инструментов перед повторным использованием на других пациентах. Причина
они неэффективны, потому что нет возможности проверить температуру на всем протяжении
цикл. На самом деле стерилизаторы для стеклянных шариков не одобрены FDA, и любые
новые машины должны получить предпродажное одобрение, по словам доктора Др.Джени Фуллер
с отделением устройств инфекционного контроля Управления по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США.

Лабораторные стерилизаторы
Стерилизаторы с верхней загрузкой (вертикальные) чаще всего используются в лабораторных условиях из-за низкой стоимости стерилизации. Размер корзин, используемых в лабораторных условиях, является причиной, по которой производители стерилизаторов, такие как TOMY Hirayama и Sanyo, разработали стерилизатор с верхней загрузкой. Цены намного меньше горизонтальных.

Свяжитесь с нами по электронной почте

методов стерилизации стоматологических инструментов | Paradigm Dental

Существует множество различных методов стерилизации стоматологических инструментов. В Paradigm Dental Austin TX мы заботимся о безопасности пациентов, поэтому мы обязательно дезинфицируем все наши стоматологические инструменты и оборудование с использованием новейших технологий стерилизации зубов.

Перед стерилизацией стоматологи замачивают инструменты в воде или дезинфицирующем средстве, чтобы на них ничего не высохло.Они также применяют ингибитор ржавчины, чтобы предотвратить ржавление инструментов.

Здесь представлены различные типы методов стерилизации, использованные на протяжении многих лет:

Автоклав

В 1879 году Чарльз Чемберленд изобрел автоклав, который является одним из самых распространенных стерилизаторов, используемых до сих пор. Он выглядит как тяжелая микроволновая печь и стерилизуется путем нагрева влажного воздуха до температуры от 250 ° F до 273 ° F. Химические вещества и тепло могут слегка изнашивать материалы, которые впоследствии должны высохнуть.

Сухой жар

При использовании этого метода воздух более сухой, поэтому процесс занимает несколько часов. Материалы помещаются в объект, похожий на печь, где температура повышается до 320 ° F. Материалы остаются там от одного до двух часов. Поскольку он не мокрый, этот процесс не изнашивает инструменты.

Перегретый пар

Этот метод аналогичен методу сухого нагрева, но практически отсутствует влажность и температура 180 ° F. Этот процесс занимает 30 минут.

Быстрая теплопередача

Этот метод стерилизует при температуре около 375 ° F в течение 6–20 минут и обеспечивает циркуляцию нагретого воздуха по всему устройству.В конце цикла инструменты высохли.

Стерилизатор для ненасыщенных химических паров

Здесь температура держится на уровне 270 ° F в течение 20 минут, а инструменты быстро сохнут после цикла.

Есть много способов стерилизовать инструменты. Большинство из них различаются по времени и температуре, но конечный результат — одни и те же безупречные инструменты.

Свяжитесь с нами, если у вас есть какие-либо вопросы о методах стерилизации, которые мы используем. Мы очистим ваши зубы так же тщательно, как и свое оборудование.Позвоните нам по телефону (512) 992-2822, чтобы записаться на прием!

Общие сведения о типах стерилизации компонентов медицинских устройств

Чтобы лучше понять различные типы стерилизации компонентов медицинских устройств, мы обращаемся за определением в Центр по контролю и профилактике заболеваний; «стерилизация — это использование физического или химического процесса, который уничтожает всю микробную жизнь, включая бактериальные эндоспоры, которые обладают такой высокой устойчивостью».

Существует несколько типов стерилизации, которые можно рассматривать как оксид этилена и радиацию.Стерилизация с использованием излучения может быть гамма-, электронно-лучевой или рентгеновской.

Оксид этилена: Стерилизация медицинского пластика под давлением

Окись этилена (стерилизация EtO) чрезвычайно реактивна в качестве газового стерилизатора. Он очень эффективен при низких температурах, в отличие от других процессов стерилизации. Валидация стерилизации оксидом этилена обычно выполняется с использованием избыточных методов.

Метод избыточного уничтожения означает, что процессы стерилизации предназначены для уничтожения одного миллиона спор самого устойчивого организма — бациллы атрофа — всего за половину времени обычного цикла.

Газообразный оксид этилена совместим со многими материалами. Это контактный стерилизатор, поэтому сложные устройства с длинными просветами, сопрягаемыми поверхностями или другими конструкциями, которые трудно уничтожить, обычно требуют более длительного воздействия для эффективности. Его можно использовать для стерилизации металлических и стеклянных поверхностей, однако он не проникает сквозь них.

Окись этилена не может стерилизовать или проникать в жидкости. Это означает, что некоторые смазочные материалы создают реальные проблемы для эффективной стерилизации. Процесс литья под давлением медицинского пластика идеально подходит для специальных процедурных комплектов, изделий из целлюлозы и пластика, которые могут обесцвечиваться при облучении.Также — устройства, изготовленные из материалов, физические свойства которых ухудшаются под действием тепла или облучения, и других различных материалов, несовместимых с другими методами стерилизации.

Стерилизация с использованием излучения

Радиация использует гамма-волну, электронный луч или рентгеновское излучение вместо газа. Этот процесс радиационной стерилизации основан на биологической нагрузке. Это означает, что производителям необходимо будет определить количество радиации, необходимое для стерилизации своего продукта, на основе подсчета биологической нагрузки продукта.

Перед тем, как стерилизационная доза может считаться валидированной, необходимо провести испытание на биологическую нагрузку, чтобы определить правильную проверочную дозу, необходимую для испытания на стерильность.

Гамма-стерилизация

Гамма-лучи — наиболее часто используемый метод, поскольку они могут проникать дальше в материалы. Иногда они сталкиваются с электроном, который обеспечивает пораженную электронику энергией, достаточной для полного уничтожения биологической нагрузки.

Гамма-лучи инициируют больше электронов с высокой энергией, когда они проходят через медицинское устройство.Гамма-излучение имеет очень высокое проникновение при низких дозах. Гамма-излучение лучше всего подходит для обработки больших партий большого количества коробок в течение шести-десяти часового цикла.

Стерилизация электронным пучком для литья под давлением медицинского пластика

Электронные лучи начинаются как электроны очень высокой энергии, которые непосредственно разрушают биологические нагрузки. Эти высокоэнергетические электроны также сталкиваются с другими локальными электронами. Вторичные электроны также выделяют достаточно энергии, чтобы адекватно разрушить биологическую нагрузку.

Это приводит к увеличению дозы. Поскольку электронный луч проникает в медицинское устройство, каждое последующее столкновение снижает энергию образующихся электронов. Это продолжается до тех пор, пока в пучке не останется проникающей способности. Электронные пучки имеют высокие мощности дозы и низкие результаты проникновения.

Электронный пучок — это непрерывный процесс стерилизации, доставляющий необходимые дозы за одну-две минуты, когда отдельные коробки проходят мимо ускорителя электронного пучка. Более низкое «время пребывания» в процессе облучения электронным пучком оказывает меньшее воздействие на материалы.Электронный луч обеспечивает более быстрое время выполнения работ и большую гибкость для доставки определенных доз облучения в небольшие партии продукта.

Рентгеновская стерилизация:

Уникальным свойством рентгеновских лучей является узкое угловое распределение, сосредоточенное в направлении стерилизуемого продукта. Это обеспечивает превосходную однородность дозы по сравнению с
с другими процедурами радиационной стерилизации.

Рентгеновские лучи обеспечивают отличное проникновение во время стерилизации за счет тщательной обработки
поверхности и внутренних частей продукта.Рентгеновские лучи — это электрическая технология
.

Crescent Industries предоставляет медицинские пластиковые компоненты, изготовленные литьем под давлением, включая стерилизацию в качестве дополнительной услуги для завершения вашего компонента медицинского устройства.

Стерилизация — физико-химические методы | Основы микробиологии

Микроорганизмы играют важную роль в возникновении инфекции и заражения. Следовательно, стерилизация — важный метод в микробиологии, который помогает удалять или уничтожать микроорганизмы с материалов или поверхностей.

Стерилизация

Это процесс, с помощью которого изделие, поверхность или среда очищаются от всех микроорганизмов в вегетативной или спорной форме.

Дезинфекция

Это означает уничтожение всех патогенов или организмов, которые могут вызвать инфекцию, но не обязательно спор. Невозможно убить все организмы, но их количество сокращается до уровня, который больше не причиняет вреда здоровью.

Антисептики

Это химические дезинфицирующие средства, которые безопасно наносить на живые ткани и используются для предотвращения инфекции путем остановки роста микроорганизмов.

Асептика

Это относится к технике, которая помогает предотвратить попадание инфекции в неинфицированную ткань.

Источник изображения: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814421-3.00014-2

Физические методы

Солнечный свет

Солнечный свет обладает активным бактерицидным действием благодаря наличию ультрафиолетовых лучей. Это естественная процедура стерилизации, которая снижает количество микроорганизмов в резервуарах для воды, озерах и т. Д.

Тепло

Тепловая стерилизация — это наиболее часто используемый метод стерилизации. К тому же это очень эффективный и надежный процесс. Существует два основных метода использования тепла при стерилизации: сухое тепло и влажное тепло. Принципы, лежащие в основе обоих этих методов, аналогичны. Сухое тепло вызывает денатурацию белка, окислительное повреждение и токсический эффект из-за высокого уровня электролитов. Более того, сухой жар может также повредить ДНК микроорганизма. В результате микроорганизм погиб.Влажное тепло убивает микроорганизмы путем денатурации и коагуляции белков. Есть несколько факторов, которые могут повлиять на процедуру уничтожения тепла. Например,

• Температура и продолжительность: Продолжительность и температура обратно пропорциональны друг другу. Следовательно, в случае длительного нагрева, предусмотренного для стерилизации, температура будет снижена, в то время как в случае высокой температуры продолжительность будет уменьшена.
• Характеристика микроорганизма: Микроорганизмы могут присутствовать как в вегетативной, так и в спорной форме.Формы спор обычно термостойкие. Следовательно, процесс стерилизации будет зависеть от характеристик микроорганизма.
• Тип материала: Органические вещества часто защищают вегетативные и споровые формы микроорганизмов, что снижает их смертоносность при нагревании. Кроме того, материалы, содержащие вещества, также должны быть термостойкими для надлежащей стерилизации.

Красная жара

Инокуляционные петли, проволоки, наконечники щипцов, иглы необходимо стерилизовать для предотвращения микробного заражения.Эти инструменты держат в пламени горелки Бунзена до тех пор, пока они не станут докрасна.

Пылающий

Стеклянные предметные стекла, скальпели и горлышки культуральных пробирок или конических колб пропускают через пламя Бунзена, не позволяя им нагреться докрасна.

Сжигание

Эта процедура используется для превращения инфекционного материала в пепел путем сжигания. Для процесса используется мусоросжигательная печь. Этим методом обрабатываются загрязненные повязки, туши животных, постельные принадлежности и патологические материалы.

Духовка с горячим воздухом

Это широко используемый метод стерилизации сухим жаром. Тепло внутри духовки поддерживается за счет электричества, а вентилятор, установленный внутри духовки, обеспечивает адекватное распределение горячего воздуха внутри камеры. Также подключен термостат, который поддерживает температуру внутри камеры. 160 ⁰ C в течение двух часов требуется для стерилизации. Есть также несколько альтернативных температур и времени выдержки, которые включают 170 ⁰ C в течение 1 часа и 180 ⁰ C в течение 30 минут.

Использование: Стерилизация

• Посуда из стекла, например стеклянные шприцы, чашки Петри, колбы, пипетки и пробирки.
• Хирургические инструменты, такие как скальпели, ножницы, щипцы и т. Д.
• Химические вещества, такие как жидкости, парафин, жиры, порошки сульфонамидов и т. Д.

Контроль стерилизации

• Споры Bacillus subtilis subsp. Нигер (NCTC 10075 или ATCC 9372) хранятся в духовке. Эти споры следует уничтожить, если стерилизация прошла должным образом.

Также можно использовать термопары

• .
• Тубус Брауна с зеленым пятном есть в наличии. После надлежащей стерилизации получается зеленый цвет (через два года при 160 ⁰ C).

Температура ниже 100

⁰ C

Пастеризация

Существует два различных метода пастеризации, которые используются для стерилизации молока: метод держателя (63 ^o C в течение 30 минут) и метод мгновенного охлаждения (72 ⁰ C в течение 20 секунд с последующим быстрым охлаждением до 13 ⁰ ). C).Этот метод эффективен против всех не спорящих патогенов, таких как микобактерии, Salmonella, и т. Д., За исключением Coxiella burnetii , которая выживает при использовании метода держателя благодаря характеристикам термостойкости.

Вдохновение

Среды, такие как сыворотка Левенштейна-Йенсена и Леффлера, необходимо стерилизовать при 80-85 ⁰ ° C в течение 30 минут ежедневно в течение трех дней подряд. Этот процесс известен как уплотнение, а используемый инструмент — уплотнение.

Ванна для вакцин

Используется для стерилизации бактериальных вакцин при 60 ⁰ C в течение одного часа.Сыворотку или другие биологические жидкости можно стерилизовать путем нагревания на водяной бане при 56 ⁰ ° C в течение нескольких дней подряд.

Низкотемпературная стерилизация паром формальдегидом (LTSF)

Этот метод применим для материалов, которые не выдерживают температуры 100 ⁰ C. В этом методе используется пар при давлении ниже атмосферного при температуре 75 ⁰ ° C с парами формальдегида. Bacillus stearothermophilus играет важную роль в качестве биологического контроля для проверки эффективности теста.

При температуре 100

⁰ C

Кипячение

Это эффективный метод, убивающий вегетативные клетки. Кипячение в течение 10-30 минут может убить большую часть вегетативных клеток; однако многие споры могут выдерживать эту температуру. Кипячение может применяться, когда отсутствуют адекватные методы стерилизации стеклянных шприцев, резиновых пробок и т. Д.

Тиндаллизация

В этом случае используется пар при температуре 100 ⁰ C в течение последующих 3 дней. Это также известно как периодическая стерилизация.В этом случае первое воздействие убивает вегетативные формы, а в промежутках между нагреванием и оставшимися спорами прорастают в вегетативные формы, которые погибают при последующем нагревании. Этот процесс применяется для стерилизации яиц, сыворотки или сахаросодержащих сред, которые могут быть повреждены из-за длительного воздействия высокой температуры.

Паровой стерилизатор

Стерилизация паром Коха и Арнольда обычно используется для сред, которые могут легко разлагаться из-за высокой температуры в автоклаве.Эти среды хранятся на перфорированном поддоне, и пар при температуре 100 ⁰ ° C и при атмосферном давлении проходит через среду в течение 90 минут. Это эффективный метод уничтожения вегетативных клеток.

Температура выше 100

⁰ C (под давлением)

Автоклав

Пар с температурой выше 100 ⁰ C или насыщенный пар имеет лучшую убивающую способность, чем сухой жар. Бактериальные белки быстро коагулируют при влажном тепле. Насыщенный пар имеет способность проникать в любой пористый материал.Когда пар входит в контакт с более холодной поверхностью, он конденсируется в воду и отдает скрытое тепло поверхности. Большое уменьшение объема приводит к засасыванию большего количества пара в то же место, и процесс продолжается до тех пор, пока температура вещества не поднимется до температуры пара. Конденсированная вода создавала влажные условия для уничтожения присутствующих микробов.

Автоклав представляет собой модифицированную скороварку, которая содержит вертикальный или горизонтальный цилиндр. Цилиндр изготовлен из нержавеющей стали.На баллон установлена ​​крышка, которая закрепляется винтами для обеспечения герметичности. В крышке находится пароотводчик, манометр и предохранительный клапан. Кроме того, присутствует термостат для контроля температуры. Тепло производится за счет электричества. Во время стерилизации цилиндр наполняется достаточным количеством воды и выдерживается некоторое время для предварительного нагрева. После этого материалы, которые необходимо стерилизовать, вставляются в цилиндр, и крышка плотно закрывается.Со временем температура будет расти вместе с давлением. Когда температура достигает 121,1 ⁰ C и давление 15 фунтов на квадратный дюйм, стерилизация выполняется в течение 15 минут.

Использование: Стерилизация

• Питательные среды, резиновый материал, перевязочные перчатки.
• Материалы, которые не выдерживают сухого тепла в духовке с горячим воздухом.

Контроль стерилизации

• Термопара
• Бактериальные споры Bacillus stearothermophilus, используемые на тестовых организмах.

Пробирки

• Брауна содержат красный раствор, который становится зеленым при воздействии определенной температуры в течение 15 минут в автоклаве.
• Наконечники для автоклавов.

Озон

Стерилизатор для озона

использует кислород, воду и электричество для производства озона внутри стерилизатора и обеспечивает стерилизацию без образования токсичных химикатов. Работает при температуре 25-35 ⁰ С. Внутри этого устройства кислород превращается в атомарный кислород из-за сильного электрического поля.Затем атомарный кислород объединяется с молекулой кислорода с образованием озона. Озон обеспечивает гарантию стерильности 10 ^-6 примерно за 4 часа.

Фильтрация

Этот процесс полезен для стерилизации тех материалов, которые не выдерживают высокой температуры. Есть несколько типов фильтров, например

• Свечной фильтр : Используется для очистки воды. Эти фильтры состоят из полых свечей, и вода проходит через свечи для очистки.
• Асбестовые дисковые фильтры : состоят из силиката магния.
• Фильтры из спеченного стекла : Их получают путем плавления тонко измельченных стеклянных порошков.
• Мембранные фильтры : Они состоят из эфиров целлюлозы и используются для анализа воды, проверки стерильности и для приготовления растворов. Доступны мембранные фильтры с размером пор от 0,015 до 12 микрон. Чаще всего используется фильтр 0,22 мкм, поскольку он меньше, чем бактерии.
• Воздушные фильтры : Эти фильтры используются в камерах с ламинарным потоком воздуха, чтобы обеспечить подачу воздуха без бактерий. Они также известны как высокоэффективные воздушные фильтры для твердых частиц (HEPA). Эти фильтры могут отделять частицы размером 0 микрон и более.
• Шприцевые фильтры : Доступны шприцы с мембраной разного диаметра.

Ограничением использования процесса фильтрации является недостаточный размер пор для вирусов.

Радиация

Ионизирующее излучение

Ионизирующие излучения, такие как гамма-лучи, рентгеновские лучи и космические лучи, используются в процессе стерилизации.Из-за высокой проникающей способности эти излучения смертельны для клеток. Бактериальные клетки погибают из-за повреждения ДНК. Гамма-излучение от источника кобальта 60 коммерчески используется для стерилизации одноразовых предметов. Эта процедура также известна как холодная стерилизация.

Неионизирующее излучение

Инфракрасное и УФ-излучение подпадает под это излучение. Инфракрасное излучение используется для массовой стерилизации шприцев и катетеров. УФ-излучение с длиной волны от 240 до 280 нм обладает бактерицидной способностью.УФ-излучение вызывает денатурацию белка и препятствует репликации ДНК бактерий. УФ-излучение используется для стерилизации закрытых участков, поверхностей, операционных, ламинарного воздушного потока и т. Д.

Некоторые химические вещества используются в качестве антисептических и дезинфицирующих средств. Свойства химического антисептика или дезинфицирующего средства следующие

• Химические дезинфицирующие средства должны обладать широким спектром действия против всех микроорганизмов, таких как бактерии, вирусы, простейшие и грибы.
• Химические вещества должны действовать в присутствии органических веществ.
• Высокая проникающая способность — важное свойство химических агентов
• Химический агент должен быть химически устойчивым как в кислой, так и в щелочной среде.
• Химические вещества не должны вызывать коррозию металлов.
• Дезинфицирующие средства должны быть нетоксичными при попадании в кровоток.
• Наконец, химические вещества должны быть легкодоступными и менее дорогими.

Спирты

Этиловый спирт и изопропиловый спирт часто используются в качестве химических средств для дезинфекции. Оба химиката способствуют денатурации бактериальных белков. 70% этиловый спирт — стандартная концентрация, которая используется для дезинфекции. Они используются как антисептики для кожи. Кроме того, метиловый спирт обладает активностью против спор грибов и используется для дезинфекции инокуляционных шкафов.

Альдегиды

Формальдегид

Он известен своей бактерицидной, спороцидной и вирулицидной активностью.Его можно использовать как в водной, так и в газообразной форме. 10% раствор формалина — стандартное химическое дезинфицирующее средство. Используется для

• Профилактика тканей при гистологических исследованиях.
• Стерилизация бактериальных вакцин
• Получение анатоксинов из шлаков.

Глутаральдегид

Обладает активностью против бактерий ( Mycobacterium tuberculosis), , грибов и вирусов (включая ВИЧ, гепатит В и т. Д.). Он также может убивать споры и известен своей менее токсичной природой.Используется как 2% -ный буферный раствор. Глутаральдегид используется для

• Стерилизация цистоскопов, эндоскопов и бронхоскопов
• Стерилизация пластиковых эндотрахеальных трубок, масок для лица, металлических инструментов и т. Д.

Ортофатальный альдегид

Ортофаталовый альдегид (OPA) — это дезинфицирующее средство высокого уровня, известное своей стабильностью при хранении. Обладает бактерицидным действием против микобактерий. 0,5% OPA медленно вызывает спор, а пары OPA раздражают дыхательные пути и глаза, поэтому при обращении с ним необходимо соблюдать меры безопасности.

Фенолы

Листер (отец антисептической хирургии) впервые применил фенол для стерилизации хирургических инструментов. Фенолы действуют как дезинфицирующее средство и убивают микроорганизмы путем повреждения клеточной мембраны. Токсичен для кожи. В качестве антисептиков используются различные производные фенола, следующие

.

Крезолы

Примером крезола является лизол, который в основном используется для стерилизации зараженной стеклянной посуды, полов и т. Д.

Хлоргексидин

Savlon — это пример раствора хлоргексидина, который широко используется для обработки ран, предоперационной дезинфекции кожи.Бактерицидно при высоком разведении. Кроме того, он также обладает фунгицидным действием.

Хлороксиленол

Деттол коммерчески доступен в виде раствора хлороксиленола. Он менее токсичен и менее раздражает.

Гексахлорофен

Бактериостатическое средство при очень высоком разбавлении.

Галогены

Хлор и йод — обычно используемые дезинфицирующие средства. Хлор используется в системах водоснабжения, плавательных бассейнах, пищевой и молочной промышленности. Соединения хлора в виде отбеливающего порошка, гипохлорита натрия и хлораминов.Дезинфекционное действие всех соединений хлора связано с выделением свободного хлора, который становится сильным окислителем.

Йод в спиртовом и водном растворе применяется как дезинфицирующее средство для кожи. Он активен против M tuberculosis и немного активен против спор. Соединения с йодом и поверхностно-активными веществами, известными как йодофоры, считаются более активными, чем водный или спиртовой раствор.

Окислители

Перекись водорода

Эффективен против большинства организмов в концентрации 3-6%.Однако он убивает споры при более высоких концентрациях (10-25%). Механизм действия заключается в высвобождении свободного гидроксильного радикала при разложении перекиси водорода. Эти свободные радикалы являются активными ингредиентами в процессе дезинфекции.

перуксусная кислота

Это окислитель и более сильный бактерицидный агент, чем перекись водорода.

Соль

Планки из тяжелых металлов токсичны для бактерий. Соли меди, серебра и ртути используются как дезинфицирующее средство.Они представляют собой белковые коагулянты и действуют за счет объединения с сульфгидрильными группами бактериальных белков и других важных внутриклеточных соединений. Мертиолат (этилмеркуритиосалицилат натрия) используется в разведении 1: 10000 для сохранения сывороток.

Красители

Две группы красителей, анилиновые и акридиновые красители используются в качестве антисептиков для кожи и ран. Оба красителя обладают бактериостатической активностью. Анилиновые красители включают кристаллический фиолетовый, бриллиантовый зеленый и малахитовый зеленый. Акридиновые красители включают акрифлавин, куфлавин, профлавин и аминакрин.

Дезинфицирующие средства в паровой фазе

Оксид этилена (ETO)

Это бесцветная жидкость с температурой кипения 10,7 ⁰ C. Эффективен против всех типов микроорганизмов, включая вирусы и споры. Он действует путем алкилирования амниокарбоксильных, гидроксильных и сульфгидрильных групп в молекулах белка. Кроме того, он реагирует с ДНК и РНК. Он специально используется для стерилизации пластмассовых и резиновых изделий, респираторов, аппаратов искусственного кровообращения, стоматологического оборудования и т. Д.

Бетапропилолактон (BPO)

Это продукт конденсации кетана и формальдегида. Обладает быстрым действием и используется в 0,2% случаев. Он более эффективен при фумигации, чем формальдегид. BPO используется для инактивации вакцин.

Номер ссылки

Учебник микробиологии К.П. Baveja, 4 ^th Edition, Arya Publications

Стерилизация — физико-химические методы

.