Внутримышечная инъекция алгоритм: Ошибка выполнения

Содержание

Алгоритм выполнения внутримышечных инъекций — презентация на Slide-Share.ru 🎓


1


Первый слайд презентации

Алгоритм выполнения внутримышечных инъекций

Изображение слайда


2


Слайд 2

Выберите, осмотрите и пропальпируйте место предполагаемой инъекции.
Наиболее подходящие места для внутримышечных инъекций – мышцы ягодицы, плеча, бедра.
Шаг 1

Изображение слайда


3


Слайд 3

Обработайте место инъекции не менее чем двумя салфетками или шариками, смоченными антисептиком. После обработки дайте спирту высохнуть.
Шаг 2

Изображение слайда


4


Слайд 4

Туго натяните кожу в месте инъекции большим и указательным пальцами одной руки, у детей или пожилых людей захватите мышцу. Это увеличит массу мышцы и облегчит введение иглы.
Шаг 3

Изображение слайда


5


Слайд 5

Возьмите шприц другой рукой, придерживая канюлю иглы указательным пальцем.
Шаг 4

Изображение слайда


6


Слайд 6

Быстрым движением ведите иглу под углом 90 градусов на 2/3 ее длины. Потяните поршень на себя, чтобы убедиться, что игла не попала в сосуд.
Шаг 5

Изображение слайда


7


Слайд 7

Медленно введите препарат в мышцу.
Шаг 6

Изображение слайда


8


Слайд 8

Извлеките иглу, прижмите к месту инъекции шарик с кожным антисептическим раствором. Не отрывая руку с шариком, слегка помассируйте место введения препарата.
Шаг 7

Изображение слайда


9


Слайд 9

Продезинфицируйте все материалы, которые использовали во время инъекции.
Шаг 8

Изображение слайда


10


Слайд 10

Обработайте руки гигиеническим способом, высушите.
Шаг 9

Изображение слайда


11


Слайд 11

Спросите пациента, как он себя чувствует после процедуры.
Шаг 10

Изображение слайда


12


Последний слайд презентации: Алгоритм выполнения внутримышечных инъекций

Сделайте запись о выполнении инъекции в журнале.
Шаг 11

Изображение слайда

Внутримышечные инъекции в Москве – цены на услугу в Центре восстановительной медицины на Бауманской

Показания

Как было отмечено, внутримышечная инъекция – один из самых популярных способов введения разнообразных препаратов. Показаний к назначению может быть множество. Главные среди них – терапевтические. Во время манипуляции создается депо препарата в мышечной ткани, а также обеспечивается постепенное попадание лекарства в мышечное русло. 

Также внутримышечные инъекции назначаются в том случае, если ввести медпрепараты другими способами не представляется возможности ввиду их формы выпуска. Также внутримышечные инъекции ставятся в том случае, если внутривенные, внутриаортальные или внутрикостные введения невозможно сделать. 

Места инъекций

Исходя из названия, понятно, что ставится он только в мышцу:

  1. Ягодицы. Во время манипуляции пациент должен лечь на бок или живот. Чтобы определить максимально подходящее место введения лекарства, необходимо кончик указательного пальца приложить к верхней передней ости подвздошной кости, после чего – развести пальцы таким образом, чтобы средний был отведен как можно больше назад, при этом указательный палец не отрывать от тела. После этого повернуть руку таким образом. Чтобы ладонное возвышение большого пальца легло в область большого вертела бедренной кости. Вводить препарат необходимо в нижнюю 1/3 треугольника, который определяется средним и указательным пальцами.  

  2. Бедро. Пациент ложится на спину. Как и в предыдущем способе, руку специалист кладет на большой вертел, вторую – на колено пациенту. После чего движениями рук необходимо определить линию, соединяющую большие пальцы. Это место и будет идеальным для внутримышечной инъекции.  

Возможные противопоказания

Отказаться от внутримышечных инъекций стоит в том случае, если на кожных покровах имеются любые поражения. Не проводятся манипуляции при поражениях подкожной клетчатки и при атрофии мышц. Противопоказаниями считаются гиперчувствительность пациента, а также – непереносимость препаратов.

Алгоритм введения

Вводить лекарства можно разными способами. Наиболее подходящий – всегда указывается в инструкции. Есть и общепринятые правила и рекомендации, которых необходимо придерживаться:

  • перед введением раствор прогреть руками до 30-37 градусов, особенно это актуально при введении масляных препаратов;
  • обязательно делать укол в стерильных перчатках;
  • после набора лекарства со шприца необходимо выпустить лишний воздух;
  • место введения обработать спиртом;
  • при введении лекарства в ягодицу, шприц устанавливать под углом 90 градусов, в бедро – под углом 70 градусов;
  • после изъятия игры место снова обработать спиртом. 

Воспользовавшись услугами медсестер нашей клиники в Москве, каждый пациент гарантировано получит качественное, быстрое и вежливое обслуживания. Кабинеты отличаются современным оснащением и полной стерильностью. 

 

Эффективность процедуры и возможные осложнения

Внутримышечная инъекция позволяет препарату быстро поступить в кровь и тем самым начать скорейшее лечебное воздействие. Эффект от уколов пролонгированный. Вводить можно разные растворы, в том числе, масляные, суспензии и с раздражающими свойствами. 

При правильном выполнении процедуры негативные последствия полностью исключены. Иногда у пациентов возникают незначительные кровоподтеки и может появиться болезненное ощущение. Это вполне нормально и в скором времени проходит. 

Если же технику введения нарушить, возможно более серьезные последствия, среди которых – паралич нерва, абсцесс, фиброз мышцы и так далее. Поэтому, чтобы избежать осложнений, доверять проведение процедуры необходимо только профессионалам, к числу которых относятся сотрудники нашей клиники. 

Главными показателями, что игла не туда попала при введении являются следующие симптомы:

  • сильная боль;
  • постоянная болезненность места введения;
  • слабость нижних конечностей;
  • сниженная активность;
  • невозможность передвигаться.

Первая помощь при неправильном введении

Если укол поставлен неправильно (обычно это происходит, если его делает непрофессионал), и возникли вышеперечисленные симптомы, необходимо немедленно обратиться за медицинской помощью, где специалисты проведут блокаду специальными препаратами. Самостоятельно делать это категорически запрещается, потому что дозировка лекарств рассчитывается в индивидуальном порядке.

Как долго длится курс?

Длительность терапевтического курса рассчитывается лечащим врачом и зависит от показаний, степени заболевания и других факторов. Иногда может понадобиться одна внутримышечная инъекция, иногда – не менее 5-10 уколов. Сколько длится курс – решает врач.

 

Внутримышечная инъекция детям раннего возраста

Показания:введение в организм медленно всасывающихся лекарственных веществ, которые при подкожном впрыскивании могут образовать инфильтрат или оказать раздражающее действие на подкожную клетчатку

Противопоказания:гемофилия

Оснащение:шприц с вводимым раствором и иглой, спирт, стерильные ватные шарики, лоток, дезраствор, резиновые перчатки

Этапы Обоснование
Объясните маме (ребенку) цель и ход выполнения манипуляции, получите согласие Обеспечение права на информацию, участие в процедуре
Подготовьте крайне важно е оснащение Обеспечение четкости выполнения процедуры
Вымойте руки с мылом, осушите, наденьте перчатки Обеспечение инфекционной безопасности
Успокойте ребенка
 
Психологическая подготовка
Уложите ребенка на живот: помощник удерживает одной рукой ноги ребенка, другая рука находится на пояснице ребенка Создание удобного положения пациента для выполнения инъекции
Удалите воздух из шприца Профилактика эмболии
Кожу на месте введения дважды протрите стерильным ватным шариком, смоченным в спирте, делая мазки в одном направлении Подготовка инъекционного поля
Соберите кожу в месте инъекции в складку, держа шприц под острым углом введите иглу в мышцу на ¾ у основания складки и медленно введите лекарственное вещество, затем быстро извлеките иглу Учёт возрастных особенностей, профилактика осложнений
Приложите к месту инъекции ватный шарик Профилактика инфекционных осложнений
Использованный шприц и иглу положите в дезраствор Обеспечение инфекционной безопасности

Примечание:

1. При внутримышечных инъекциях могут возникнуть осложнения: инфильтрат, абсцесс, медикаментозная эмболия при введении масляных растворов, повреждение нервных стволов, некроз тканей, аллергические реакции, вирусный гепатит, СПИД, облом иглы на месте соединœения с канюлей.

2. Детям раннего возраста инъекции делают с помощником.


Внутримышечная инъекция детям раннего возраста — понятие и виды. Классификация и особенности категории «Внутримышечная инъекция детям раннего возраста» 2017, 2018.

Техника выполнения внутримышечной инъекции — Мегаобучалка

Цель:введение лекарственного средства в мышечную ткань. Терапевтический эффект наступает в течение 10-30 мин. Объем вводимого вещества не должен превышать 10 мл за одно введение.

Противопоказания.

— Атрофия мышечной ткани.

— Поражение кожи и подкожно-жировой клетчатки любого характера в месте инъекции.

— Аллергическая реакция на лекарственное средство.

Места введения (рис. 38).

— Верхний наружный квадрант ягодицы.

— Средняя часть наружной поверхности бедра.

Рис. 38. Внутримышечное введение лекарств: а – места, куда нельзя
делать внутримышечные инъекции; б – техника инъекции.

Материальное обеспечение.

— Все необходимое для парентеральных введений.

— Шприц 5-10 мл.

— Иглы длиной 40-100 мм, сечение 0,8 мм.

— Лекарственные средства.

— Водяная баня.

Последовательность выполнении:.

1. Вымойте руки, высушите, наденьте перчатки, обработайте их спиртом.

2. Подготовьте ампулу или флакон с лекарственным средством к работе (масляный раствор или суспензии подогрейте до температуры 37ºС).

3. Соберите стерильный шприц, присоедините иглу для набора, наберите назначенную дозу лекарственного средства.

4. Смените иглу для инъекции, удалите воздух, проверьте проходимость иглы, не снимая колпачок с одноразовой иглы.

5. Предложите больному лечь на живот или на бок, освободить место для инъекции от одежды.

6. Определите место инъекции. Мысленно разделите ягодицу на 4 квадранта вертикальной линией, проходящей через седалищный бугор, и горизонтальной линией, проходящей через большой вертел бедренной кости. Инъекцию делайте только в верхненаружный квадрант ягодицы.

7. Пропальпируйте место инъекции, чтобы исключить появление узелков и уплотнений.

8. Возьмите два стерильных ватных шарика, смочите их спиртом.

9. Обработайте одним шариком место инъекции широко, другой стороной этого шарика – узко. Второй шарик оставьте в руке, закрепив его 2 и 3 или 4 и 5 пальцами.

10. Возьмите шприц в правую руку, придерживая муфту иглы 4 или 5 пальцем, а остальными цилиндр шприца.

11. Левой рукой, 1 и 2 пальцами, натяните кожу в месте прокола и немного придавите.

12. Держа шприц с иглой перпендикулярно коже над местом инъекции, быстрым движением введите иглу под прямым углом в мышечную ткань, оставив над нею 0,5-1 см стержня иглы.

13. Введите лекарственное средство, надавливая на поршень большим пальцем левой руки. При введении растворов внутримышечно, особенно масляных и суспензий убедитесь, что игла не попала в кровеносный сосуд, слегка потянув поршень на себя. Если в шприце появилась кровь, то измените положение иглы, придвинув ее вверх и в сторону, опять проверьте, где находится игла. Убедившись, что игла не в сосуде, введите в мышцу лекарственное вещество.

14. Быстрым движением извлеките иглу, приложив к месту инъекции на 2-3 мин ватный шарик, смоченный спиртом. Слегка помассируйте место инъекции, не отнимая ватный шарик от кожи.

15. Продезинфицируйте использованные шарики, шприц и иглы.

16. Вымойте руки, просушите их.

Осложнения.

— Перелом иглы из-за внезапного сокращения мышцы при введении тупой или дефектной иглой.

— Повреждение нервных стволов (неправильный выбор места инъекции, раздражающее действие лекарства, закупорка сосуда, питающего нерв). Повреждение нерва приводит к нарушению чувствительности и движений в конечности (параличи, парезы).

— Медикаментозная эмболия (закупорка сосуда) при введении масляных растворов.

— Гнойная инфекция (абсцесс) вследствие нарушения правил асептики и техники введения.

— Вирусный гепатит, СПИД из-за недостаточной стерилизации многоразовых шприцев и игл.

— Аллергические реакции: появление крапивницы, острого насморка, острого конъюнктивита, отека Квинке. О возникновении любой аллергической реакции нужно немедленно сообщить врачу.

— Анафилактический шок – самая грозная форма аллергической реакции. Признаки: общее покраснение кожи, сыпь, приступы кашля, выраженное беспокойство, нарушение ритма дыхания, сердцебиение, аритмия, падение АД. О развитии такой аллергической реакции следует немедленно сообщить врачу и приступить к оказанию экстренной помощи. В процедурном кабинете всегда должен быть наготове противошоковый набор.

Внутривенное введение лекарственного вещества применяется в тех случаях, когда необходимо быстрое его воздействие на организм, а также тогда, когда введение другими путями, по различным причинам, не показано. Лекарственные вещества, разрешенные для внутривенного введения, могут вводится струйно и капельно. Существенное значение имеет скорость введения лекарств. При струйном введении на поршень шприца нужно нажимать медленно с тем, чтобы на введение 15-20 мл затратить не меньше 2 мин. При капельном вливании скорость введения измеряется количеством вводимых капель в минуту. Для внутривенных вливаний используются только стерильные прозрачные растворы.

Материальное обеспечение.

— Все необходимое для выполнения инъекций.

— Система однократного применения.

— Лекарственное средство во флаконах, ампулах.

— Шприцы, иглы разных размеров.

— Клеенчатая подушечка.

— Резиновый жгут.

— Штатив для инфузий.

Система одноразового использования изготавливается из апирогенной, нетоксичной пластмассы, стерилизуется заводом-изготовителем, выпускается в упаковке с указанием даты стерилизации. Система состоит из: приемной иглы с колпачком, воздуховода, капельницы, зажима, фильтра, инъекционной иглы с колпачком.

Инъекции масляных растворов

Инъекции масляных растворов (раствор камфоры в масле и другие) проводятся подкожно. Допускается введение внутримышечное. Масляные растворы НЕЛЬЗЯ ВВОДИТЬ ВНУТРИВЕННО! При попадании капельки масла в сосуд возникает очень опасное осложнение — масляная эмболия. Если масло попало в артерию, то оно вызовет ее закупорку, нарушается питание окружающих тканей и развивается некроз участка тела. При попа­дании масла в вену оно током крови попадает в сосуды легких, вызывает их закупорку, что сопровождается сильным приступом удушья, который может закончиться смертью пациента. Кроме того, масло очень медленно рассасывается в тканях.

Из всего вышеизложенного следует твердо ЗАПОМНИТЬ:

1. Перед введением ампулу с масляным раствором подогреть до t=38°C (на водяной бане).

2. После прокола кожи или мышцы вначале потянуть поршень на се­бя. Если в шприц не поступает кровь, можно медленно вводить ле­карство.

3. К месту инъекции приложить грелку или согревающий компресс.

ЗАДАНИЕ:

— вспомните, в чем особенности обработки масляных шприцев?

— с чем они связаны?

— какие шприц и игла используются для инъекции?

Инъекции инсулина

Инсулин вводится подкожно за 30 минут до еды. Отечественный ин­сулин выпускается во флаконах по 5 мл. В 1 мл содержится 40 ЕД инсули­на. Для введения инсулина пользуются инсулиновым шприцем, имеющим шкалу делений в единицах действия. Часто используют комбинированные шприцы, на которых, кроме инсулиновой шкалы, есть еще и обычная (в мл) — на 1,5 мл и 2 мл.

Необходимо часто менять места инъекций во избежание осложнения -липодистрофии.

Алгоритм действия

1. Перед набором инсулина определите «цену деления» инсулиновой шкалы (см. определение «цены деления»).

Маленькое деление инсулиновой шкалы соответствует 2 единицам.

2. Рассчитайте, до какого деления Вам следует набрать дозу инсулина, пользуясь пропорцией:

1 деление — 2 единицы инсулина,

X делений — (нужная доза) единиц инсулина

НАПРИМЕР:нужно набрать 10 ЕД инсулина 1 деление -2 ЕД Х-10ЕД

10 X —— = 5 (делений)

3. Если используете комбинированный шприц, то можно произвести расчет другим способом: помня, что в 1 мл содержится 40 ЕД,

0,1 мл — 4 ЕД инсулина

X мл — (нужная доза) единиц инсулина

4. Наберите в шприц воздух в объеме, равном назначенной дозе инсу­лина. Введите его во флакон, предварительно обработав его пробку.

5. Наберите в шприц немного больше расчитанного количества. Из­быток инсулина будет удален при вытеснении воздуха из шприца и при проверке иглы на проходимость.

6. Подготовьте все для подкожной инъекции инсулина. (См. «Под­кожная инъекция»)

ЗАДАЧА:

Рассчитайте, сколько мл инсулина надо набрать в шприц, чтобы в нем содержалось 4 ЕД? 12 ЕД?

ЭТАЛОН ОТВЕТА К ЗАДАЧЕ: 0,1 мл 0,15 мл 0,2мл

ПРАВИЛА ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ

Внимание!

Если пациент не принял пищу спустя 30 минут после инъекции инсулина, возможно развитие гипогликемии, ведущей к потере созна­ния.

Медицинской сестре необходимо строго следить за приемом пищи в связи с инъекциями инсулина!

Помощь при развитии гипогликемии:

1) дать пациенту сладкий чай, белый хлеб, сахар, конфету

2) при потере сознания вводить внутривенно 40% глюкозу — 50 мл

Внутримышечные инъекции

Мышца обладает более широкой сетью кровеносных и лимфатических сосудов, поэтому создаются условия для быстрого и полного всасывания лекарств. Если лекарственные вещества вызывают боли и плохо рассасы­ваются при подкожном введении, а также при необходимости получить быстрый- терапевтический эффект от введения лекарственных веществ, подкожное введение заменяют внутримышечным.

Внутримышечные инъекции следует производить в определенных анатомических областях, где имеется значительный слой мышечной ткани, вдали от крупных сосудов и нервов. Наиболее подходящими местами для внутримышечных инъекций являются: мышцы ягодиц, бедер, плеч.

Для внутримышечных инъекций пользуются иглами диаметром 0,8-1,0 мм и длиной 60-80 мм. Длина иглы зависит от толщины слоя подкож­ной клетчатки, т.к. необходимо, чтобы при введении игла прошла подкож­ный жировой слой и находилась в толще мышцы.

Идеальным местом для внутримышечных инъекций является ягодич­ная область. Но так как там проходит седалищный нерв и крупные крове­носные сосуды, для инъекций пользуются только верхненаружной ее ча­стью, т.е. мысленно делят ягодицу на четыре части, где наружный квад­рант (1/4 круга) является наиболее удобным местом. Чаще всего внутри­мышечно вводят антибиотики, магния сульфат, сыворотки и т.д.

Во время инъекции пациент лежит на животе или на боку.

Внутримышечная инъекция

Алгоритм действия

1) Подготовьте руки к инъекции

2) Соберите шприц емкостью 5-10 мл, приготовьте иглы длиной 60-80 см (одну — для набора лекарства, другую — для инъекции).

3) Наберите лекарство из ампулы или флакона, смените иглу, про­верьте ее проходимость.

4) Приготовьте два ватных шарика, смоченных спиртом.

5) Определите место инъекции (для этого мысленно разделите ягоди­цу на 4 части, проведя горизонтальную линию через большой вер­тел бедренной кости, а вертикальную — через седалищный бугор). Инъекции нужно выполнять в верхненаружный квадрант под углом 90° по отношению к поверхности кожи

6) Протереть место инъекции последовательно двумя ватными шари­ками,смоченными спиртом. Выполнять внутримышеные инъекции лучше в положении пациента лежа на животе или боку. Тогда на­блюдается наиболее полное расслабление мышц. Выполняя инъек­ции стоя, следует посоветовать пациенту перенести тяжесть тела на противоположную месту инъекции ногу.

7) Левой рукой плотно зафиксировать мягкие ткани и, держа правой рукой, ввести иглу перпендикулярно кожной поверхности на глу­бину 5-6 см, оставив у канюли около 1 см.

8) Не перекладывая шприца из руки в руку медленно ввести лекарст­во.

9) Приложив к игле ватный шарик, смоченный спиртом, фиксировать иглу, быстро ее извлечь, место слегка помассировать ватным там­поном.

Дозировка и введение сезонной вакцины против гриппа

Могу ли я предварительно заполнить шприцы в клинике для прививок от гриппа? Если да, то за какое время до клиники я могу предварительно заполнить шприцы?

CDC рекомендует готовить и составлять вакцины только непосредственно перед введением. Шприцы общего назначения предназначены для немедленного введения, а не для хранения. Заражение и рост микроорганизмов могут происходить в шприцах с предварительно набранной вакциной, особенно с вакциной, не содержащей консервантов.Кроме того, компоненты вакцины могут со временем взаимодействовать с полимерами в пластиковом шприце, потенциально снижая эффективность вакцины.

В качестве альтернативы предварительному розыску вакцин CDC рекомендует использовать шприцы, заполненные производителем, для крупных клиник вакцинации.

Однако, если вакцина должна быть получена заранее:

  • Не оформлять вакцины до прибытия в поликлинику. Составление доз за дни или даже часы до клиники неприемлемо.
  • Каждый человек, вводящий вакцину, должен составлять не более одного многодозового флакона или 10 доз за один раз.
  • Следите за потоком пациентов, чтобы избежать ненужных доз.
  • Выбросьте оставшуюся вакцину в заранее набранных шприцах в конце рабочего дня.
  • Если будут доступны разные вакцины (например, вакцины против гриппа и пневмококка), создайте отдельную станцию ​​введения для каждого типа вакцины, чтобы предотвратить ошибки при приеме лекарств.

Дополнительную информацию о хранении и обращении с вакцинами можно найти в Руководстве CDC по хранению и обращению с вакцинами .

Какое расписание подходит для детей?

Ежегодная вакцинация против гриппа рекомендуется лицам в возрасте от 6 месяцев. Некоторым детям потребуется 2 дозы вакцины против гриппа за один сезон. Следующим детям потребуется 2 дозы вакцины против гриппа с интервалом не менее 4 недель в сезоне 2020–2021 гг .:

  • Дети в возрасте от 6 месяцев до 8 лет, которые никогда не получали вакцину от сезонного гриппа или у которых история вакцинации неизвестна
  • Дети в возрасте от 6 месяцев до 8 лет, которые не получили не менее 2 доз * вакцины от сезонного гриппа (трехвалентной или четырехвалентной) до 1 июля 2020 г.

Следующим детям потребуется 1 доза вакцины против гриппа в сезоне 2020–2021 гг .:

  • Дети в возрасте от 6 месяцев до 8 лет, получившие не менее 2 доз * вакцины от сезонного гриппа (трехвалентной или четырехвалентной) до 1 июля 2020 г.
  • Дети от 9 лет

* Дозы , а не должны быть получены в течение одного или нескольких сезонов гриппа подряд.

Какова правильная дозировка (объем) вакцины?

Количество инактивированной (инъекционной) вакцины, которое следует вводить внутримышечно, зависит от возраста пациента и вакцины, которую вы используете.

  • Для детей от 6 до 35 месяцев правильная дозировка (объем) составляет:
    • 0,25 мл для Afluria Quadrivalent
    • 0,5 мл для Fluarix Quadrivalent
    • 0,25 мл или 0,5 мл для Fluzone Quadrivalent
    • 0,5 мл для FluLaval Quadrivalent
  • Для лиц от 3 лет и старше правильная дозировка — 0.5 мл для большинства инактивированных вакцин против гриппа. Fluzone High-Dose Quadrivalent предназначен для людей в возрасте 65 лет и старше, правильная доза составляет 0,7 мл.

Каковы рекомендуемые место и длина иглы для введения вакцины против гриппа взрослым путем внутримышечной инъекции?

Решение о размере иглы и месте инъекции при введении вакцины путем внутримышечной инъекции должно приниматься для каждого человека в зависимости от размера мышцы, толщины жировой ткани в месте инъекции и техники инъекции.Для взрослых в возрасте 19 лет и старше предпочтительным местом является дельтовидная мышца плеча, хотя можно использовать латеральную широкую мышцу переднебоковой мышцы бедра, если нельзя использовать дельтовидную мышцу. Вакцины против гриппа не обладают высокой вязкостью, поэтому можно использовать иглу тонкого калибра (от 22 до 25).

  • Используйте иглу от до 1 дюйма для мужчин и женщин, которые весят менее 130 фунтов (60 кг). Вставьте иглу под углом 90 градусов и растяните кожу между большим и указательным пальцами.
  • Используйте иглу диаметром 1 дюйм для мужчин и женщин весом 130–152 фунтов (60–70 кг).
  • Используйте иглу от 1 до 1½ дюйма для женщин весом 152–200 фунтов (70–90 кг) и мужчин весом 152–260 фунтов (70–118 кг).
  • Используйте иглу диаметром 1½ дюйма для женщин с весом более 200 фунтов (90 кг) и мужчин с весом более 260 фунтов (118 кг).

CDC располагает ресурсами для введения вакцины для клиницистов, вводящих вакцину против гриппа, включая таблицу длины и толщины иглы, а также демонстрационные видеоролики для внутримышечных инъекций и интраназального введения.

Дополнительную информацию об использовании вакцин и безопасных методах инъекций можно найти в следующих ресурсах:

Эпидемиология и профилактика заболеваний, предупреждаемых с помощью вакцин («Розовая книга») , глава «Применение вакцины » (обновлено 11/2020)

ACIP Общие рекомендации по передовой практике иммунизации

CDC Безопасность впрыска

Единственная кампания

Следует ли проводить аспирацию перед введением вакцины?

Нет, поскольку в рекомендуемых участках нет крупных кровеносных сосудов, аспирация (т.(например, оттягивание поршня шприца после введения иглы, но перед инъекцией) не требуется перед введением вакцины. В «Общем руководстве по передовой практике для иммунизации » Консультативного комитета по практике иммунизации указано, что перед введением вакцины аспирация не требуется.

Можно ли вводить инактивированную вакцину против гриппа одновременно с другими вакцинами, такими как вакцины против пневмококкового полисахарида (PPSV23) или против опоясывающего лишая (RZV)?

Да — если показаны другие вакцины, их можно вводить во время того же клинического приема, что и инактивированная вакцина против гриппа.При проведении нескольких инъекций за одно посещение вводите каждую вакцину в отдельное место инъекции. По возможности, места инъекции должны быть разделены на 1 дюйм или более, чтобы можно было различить любые местные реакции.

Можно ли вводить живую аттенуированную вакцину против гриппа одновременно с другими вакцинами?

Живую аттенуированную вакцину против гриппа можно вводить одновременно с другими живыми или инактивированными вакцинами. Однако, если две живые аттенуированные вакцины (инъекционная и интраназальная) не вводятся во время одного и того же клинического визита, их следует разделять минимум на 4 недели (28 дней), чтобы свести к минимуму потенциальный риск вмешательства.Например, если была введена живая аттенуированная вакцина против гриппа (LAIV), до введения MMR должно пройти не менее 4 недель.

Каковы текущие рекомендации для людей с аллергией на яйца? Могут ли они получить вакцину от гриппа?

Консультативный комитет по практике иммунизации недавно обновил свои рекомендации по введению противогриппозной вакцины людям с аллергией на яйца. Самые актуальные рекомендации можно найти у вакцины против гриппа и у людей с аллергией на яйца.

Если инактивированная вакцина против гриппа, одобренная для использования взрослыми, случайно вводится ребенку, считается ли это допустимой дозой?

Если инактивированный препарат против гриппа, одобренный для взрослых, случайно введен ребенку, это следует считать разовой действующей дозой для ребенка. Однако это считается ошибкой введения вакцины. Медицинский персонал должен предпринять шаги, чтобы определить, как произошла ошибка, и разработать стратегии, чтобы предотвратить ее появление в будущем.Кроме того, мы рекомендуем поставщикам услуг сообщать обо всех ошибках введения вакцины — даже тех, которые не связаны с побочным эффектом — на внешний значок Системы сообщений о побочных эффектах вакцин (VAERS). Обсуждение стратегий предотвращения ошибок можно найти в главе «Введение в вакцины» документа «Эпидемиология и профилактика заболеваний, предупреждаемых с помощью вакцин» («Розовая книга»). Дополнительные ресурсы можно найти на веб-странице CDC по администрированию вакцин.

Следует ли мне повторить введение инъекционной вакцины против гриппа неправильным путем (например, внутрикожным)?

Да — если препарат, предназначенный для внутримышечной инъекции, вводится подкожным или внутрикожным путем, его следует повторить.Доза может быть введена как можно скорее. Не требуется минимального интервала между недействительной дозой (подкожным или внутрикожным путем) и повторной дозой.

Введение вакцины неправильным путем считается ошибкой при введении вакцины. Медицинский персонал должен предпринять шаги, чтобы определить, как произошла ошибка, и разработать стратегии, чтобы предотвратить ее появление в будущем.

Кроме того, мы рекомендуем поставщикам сообщать обо всех ошибках введения вакцин — даже тех, которые не связаны с побочным эффектом — на внешний значок Системы сообщений о побочных эффектах вакцин (VAERS).Обсуждение стратегий предотвращения ошибок можно найти в главе «Введение в вакцины» документа «Эпидемиология и профилактика заболеваний, предупреждаемых с помощью вакцин» («Розовая книга»). Дополнительные ресурсы можно найти на веб-странице CDC по администрированию вакцин.

Сотрудник случайно ввел неправильную дозировку (количество) противогриппозной вакцины. Как это исправить?

Если случайно введена доза (объем) любого инактивированного продукта гриппа, меньшая, чем рекомендованная, следует ввести дополнительную вакцину, чтобы пациент получил полную дозу.Количество вакцины, которое следует ввести, зависит от того, когда пациент готов к ревакцинации. Например:

  • Если вводится неполная доза продукта инактивированной вакцины против гриппа и ревакцинация может быть произведена в тот же день клиники, пациент должен получить оставшийся объем для получения правильной дозировки. Например, если правильная доза для пациента составляет 0,5 мл, а он получил только 0,25 мл, следует дать дополнительные 0,25 мл (всего 0.5 мл), если возможна ревакцинация в тот же день.
  • Если пациент не может быть повторно вакцинирован до следующего дня или позже, полную дозу инактивированной вакцины против гриппа следует ввести, как только пациент сможет вернуться.
  • Если большая доза (объем) вакцины против гриппа введена непреднамеренно, считайте эту дозу действительной. Ревакцинация дополнительной вакциной не требуется.

Неправильная доза считается ошибкой введения вакцины. Медицинский персонал должен предпринять шаги, чтобы определить, как произошла ошибка, и разработать стратегии, чтобы предотвратить ее появление в будущем.

Кроме того, мы рекомендуем поставщикам сообщать обо всех ошибках введения вакцин — даже тех, которые не связаны с побочным эффектом — на внешний значок Системы сообщений о побочных эффектах вакцин (VAERS). Обсуждение стратегий предотвращения ошибок можно найти в главе «Введение в вакцины» документа «Эпидемиология и профилактика заболеваний, предупреждаемых с помощью вакцин» («Розовая книга»). Дополнительные ресурсы можно найти на веб-странице CDC по администрированию вакцин.

Начало страницы

Техника и процедура внутримышечной инъекции

Техника и процедура внутримышечной инъекции / внутримышечной инъекции — метод введения лекарств в глубину основной массы специально выбранных мышц.Основа этого процесса заключается в том, что объемные мышцы имеют хорошую васкуляризацию, и поэтому введенное лекарство быстро достигает системного кровообращения, а затем в конкретную область действия, минуя метаболизм первого прохождения. [Rx] Это один из наиболее распространенных способов. медицинские процедуры, которые необходимо выполнять ежегодно. Однако до сих пор нет единых руководств и алгоритма проведения IM среди медицинских работников во всем мире. [Rx] [rx]

TrendingSilver Needle Tea — пищевая ценность, польза для здоровья

Внутримышечная инъекция , часто сокращенно IM , представляет собой инъекцию вещества непосредственно в мышцу.В медицине это один из нескольких методов парентерального введения лекарств. Мышцы имеют более крупные и многочисленные кровеносные сосуды, чем подкожная клетчатка; внутримышечные инъекции обычно абсорбируются быстрее, чем подкожные или внутрикожные инъекции. [rx] Объем инъекции ограничен 2-5 миллилитрами, в зависимости от места инъекции.

Анатомия и физиология внутримышечных инъекций

Анатомические ориентиры
  • Есть определенные ориентиры, которые следует учитывать при внутримышечных инъекциях, чтобы избежать любых нейроваскулярных осложнений.Конкретные ориентиры для наиболее часто используемых участков обсуждаются ниже. ниже гребня подвздошной кости. Препарат вводится в треугольник, образованный указательным, средним пальцем и гребнем подвздошной кости [rx] [rx]
Дельтовидная
Vastus Lateralis
  • Возможные места для внутримышечной инъекции включают — дельтовидную, тыльную и ягодичную, прямую мышцу. бедренная кость, латеральная широкая мышца бедра и вентроглютеальные мышцы.Избегайте участков с синяками, болезненными, красными, опухшими, воспаленными или рубцами.
  • Средняя треть линии, соединяющей большой вертел бедренной кости и латеральный мыщелок бедренной кости коленного сустава [rx]

Внутримышечные инъекции

Лекарства можно вводить внутримышечно как в профилактических, так и в лечебных целях. и наиболее распространенные лекарства включают [rx]:

  • Антибиотики — пенициллин G, бензатин, пенициллин, стрептомицин

  • Биологические препараты — иммуноглобины, вакцины и токсоиды

  • Гормональные препараты — тестостерон,

    не вызывающие раздражения и растворимые препараты можно вводить внутримышечно во время чрезвычайной ситуации.

    Примерами лекарств, которые иногда вводят внутримышечно, являются:
    • Атропин
    • Галоперидол (Галдол)
    • Арипипразол (Абилифай)
    • Палиперидон (Инвега)
    • Хлорпромазин (Торазин)
    • (Араванвест)

    • Лоразин Faslodex)
    • Кодеин
    • Морфин
    • Метотрексат
    • Метоклопрамид
    • Сульфат магния
    • Оланзапин
    • Стрептомицин
    • Диазепам
    • Преднизон
    • Пенициллин
    • Тесто-преднизон, бета-гормон, эстрадон
    • 1 Интерферон, например, бета-гормоны, половые кислоты

      и медроксипрогестерона ацетат (как Депо Провера)

    • Димеркапрол
    • Кетамин
    • Лейпрорелин
    • Налоксон
    • Хинин в его глюконатной форме
    • Витамин B12, как цианокобаламин, гидроксокобаламин 9004 или метилкобаламин
    • Рибаламин

      2 Вакцины часто вводятся в виде внутримышечных инъекций.

      Кроме того, некоторые вакцины вводятся внутримышечно

      • Гардасил
      • Вакцина против гепатита А
      • Вакцина против бешенства
      • Вакцины против гриппа на основе инактивированных вирусов обычно вводятся внутримышечно (хотя в настоящее время ведутся активные исследования способ введения).
      • Инъекции плазмы, богатой тромбоцитами, можно вводить внутримышечно.
      • Определенные вещества (например, кетамин) вводятся внутримышечно в рекреационных целях.

      Показания для внутримышечных инъекций

      Внутримышечное введение обычно показано пациентам

      • Несоответствующим

      • Несоответствующим

      • Неэффективным

      • Невозможно получать лекарства другими обычно используемыми путями [r r

      Препарат

      Необходимые условия-

      E Обеспечьте 5 «Rs»

      • Правый пациент

      • Правильный препарат

      • Правильная доза

      • Правый участок

      • Правый выбор времени

      Спросите о каких-либо побочных реакциях при предыдущих таких процедурах.

      Консультации по поводу процедуры и подготовки пациента — чтобы успокоить их, а также минимизировать боль, связанную с процедурой

      Выбор места проведения
      • Младенцы — обширная мышца латеральная

      • Дети — латеральная широкая мышца бедра и дельтовидная мышца

      • Взрослые — вентролатеральная и дельтовидная [rx]
      Объем препарата
      • 2 мл или менее — дельтовидная инъекция
      • От 2 до 5 мл — вентроглютеальная инъекция [rx]

      Длина иглы

      • Vastus lateralis от -16 до 25 мм
      • Deltoid-16 до 32 мм (дети), от 25 до 38 мм (взрослые)
      • Ventrogluteal-38 мм [rx]

      Техника внутримышечного введения

      Последовательный метод внутримышечного введения можно резюмировать следующим образом [rx] [rx] [rx]

      • Тщательная очистка рук

      • Применение стерильных перчатки

      • Тщательная очистка места инъекции антисептическим раствором на спиртовой основе

      • Перпендикулярное введение иглы подходящей длины [rx]
      • Приготовьте лекарство и затем отсасывайте его через иглу фильтра

      • Обеспечить внутримышечное позиционирование иглы путем подтверждения ограниченного движения иглы из стороны в сторону, в отличие от того, когда игла находится в подкожной плоскости

      • Аспирация, чтобы исключить любой выход крови, особенно в случаях дорзоглютеальной инъекции из-за непреднамеренного сосудистого поражения пункция ягодичной артерии во время процедуры [rx] [rx]
      • Медленное введение препарата со скоростью 10 сек / мл

      • Медленное извлечение иглы и затем легкое давление на место инъекции с помощью сухого ватного тампона

      • Надлежащая утилизация всего оборудования, использованного во время процедуры [rx]
      • Оценка o f область инъекции для вероятных ранних и поздних осложнений

      Осложнения

      Общие осложнения, связанные с внутримышечной инъекцией, можно резюмировать как [rx]:

      • Мышечный фиброз и контрактура

      • Абсцесс в месте инъекции локализация

      • Гангрена

      • Повреждение нерва — седалищный нерв при инъекции в ягодичную мышцу, бедренный нерв в области латеральной широкой мышцы бедра

      • Повреждение сосудов — верхний ягодичный нерв при инъекции в тыльную ягодичную мышцу, бедренный нерв в области латеральной широкой мышцы бедра лучевой нерв в дельтовидной инъекции

      • Кожный шелушение

      • Периостит

      • Передача ВИЧ, вирус гепатита

      • Постоянная боль в месте инъекции

      DEPO-PROVERA ADMINISTRATION ** | Руководства для студенческого оздоровительного центра

      Первый впрыск :

      Убедитесь, что подписанный врачом SHC приказ надлежащим образом внесен в медицинскую карту PNC или соответствует критериям стандартизированных процедур UCSC RN.

      Перед первой инъекцией проводится анализ мочи на беременность. Если результат положительный, перейдите к посещению теста на беременность. Если результат отрицательный, продолжите процесс закачки депо.

      Пациент читает раздаточный материал по инъекционным противозачаточным средствам, и ему предоставляется возможность задать любые вопросы или уточнить любые опасения.

      Первая доза Депо-Провера дается в соответствии с Алгоритмом быстрого старта.

      В соответствии со стандартной медсестринской практикой медсестра делает внутримышечную инъекцию и оформляет документы в EMR.

      DMPA 150 мг / 1 мл вводится однократно глубоко в большую ягодичную или дельтовидную мышцу с помощью иглы 21 или 23 г.

      Пациент ждет 15 минут после инъекции и перед уходом для наблюдения за возможной местной аллергической реакцией.

      Медсестра инструктирует пациента использовать резервный метод контрацепции в течение одной недели и назначать контрольный визит для следующей инъекции каждые 12 недель. Медсестра помогает студенту записаться на прием в клинику, если это указано в текущих распоряжениях.

      Последующие инъекции:

      Медсестра рассматривает побочные эффекты и проблемы пациентов, обращая внимание на изменение менструации. Перед второй инъекцией будет проведен повторный тест на беременность. В случае отрицательного результата медсестра сделает вторую инъекцию.

      Определите вес и артериальное давление. Если вес увеличился более чем на 10% или АД> 130 /> 90, обратитесь к врачу.

      Обсудить риск ИППП и / или тестирование. Закажите тестирование на ИППП, как указано. Просмотрите, как указано, снижение риска ИППП.

      Последующие инъекции менее 14 недель (98 дней) после предыдущей инъекции:

      Дайте Depo-Provera по протоколу. После второго посещения не требуется проводить анализ мочи на беременность, если он был осмотрен в течение 14 недель после инъекции.

      Пациент ждет 15 минут после инъекции, чтобы увидеть аллергическую реакцию.

      Последующая инъекция Более 14 недель (98 дней) после предыдущей инъекции :

      Если в анамнезе незащищенный половой акт был через 14 недель, при необходимости предложите экстренную контрацепцию.

      Сделайте анализ мочи на беременность, если показано. Если результат отрицательный, заверьте пациентку, что инъекция гормона не нанесет вреда нераспознанной беременности. Если студент все еще желает продолжить, дайте Депо.

      Попросите пациента использовать резервный метод контроля над рождаемостью в течение 1 недели после инъекции.

      Запланируйте и выделите повторный визит через 3 недели для повторного теста на беременность.

      Создайте напоминание / обратный звонок в будущем в EMR, чтобы позвонить пациенту через 3 недели и вернуться на тест на беременность.

      Антропометрические измерения области вентроглютеального введения: поперечное исследование

      Burbridge, B.E. (2007). Компьютерное томографическое измерение толщины подкожно-жировой клетчатки в связи с неудачей внутримышечных инъекций в ягодичную область. Жестяная банка. Доц. Радиол. J., 58 (2), 72–75.

      Кокоман, А. и Мюррей, Дж. (2006). Внутримышечные инъекции: как ваша техника. World Ir. Нурс, 14 (4), 50–51.

      Кук И.Ф. (2015). Передовая практика вакцинации и события в месте инъекции с медицинским наблюдением после внутримышечной инъекции в дельтовидную мышцу. Гм. Vaccin Immunother, 11 (5), 1184–1191. DOI: 10.1080 / 21645515.2015.1017694

      Дональдсон, К. и Грин, Дж. (2005). Использование вентрологически ягодичного участка для внутримышечной инъекции. Nurs. Times, 101 (16), 36–38.

      Гринуэй, К. (2014). Ритуалы в уходе: внутримышечные инъекции. J. Clin. Нурс, 23, 3583–3588. DOI: 10.1111 / jocn.12627

      Хемсворт, С. (2000). Техника внутримышечных инъекций. Педиатрический уход, 12 (9), 17-20. Doi: 10.7748 / paed2000.11.12.9.17.c672

      Хант, C.W. (2008). В каком месте лучше всего делать внутримышечную инъекцию? Сестринское дело, 38,62. DOI: 10.1097 / 01.МЕДСЕСТРА. 0000341089.14071.1e

      Хантер, Дж. (2008). Техники внутримышечных инъекций. Nurs. Стенд, 22 (24), 35–40. DOI: 10.7748 / нс2008.02.22.24.35.c6413

      Гюльнар, Э., & Озверен, Х. (2016). Оценка эффективности запланированной программы обучения медсестер по введению внутримышечных инъекций в вентроглютеальный участок. Медсестра Образов. Сегодня, 36, 360–363. DOI: 10. 1016 / j.nedt.2015.09.001

      Кая Н., Салмаслыоглу А., Терзи Б., Туран Н. и Акунас Б. (2015). Надежность методов определения сайта при инъекции в вентроглютеальную область: поперечное исследование. Int. J. Nurs. Стад, 52 (1), 355–360. DOI: 10. 1016 / j.ijnurstu.2014.07.002

      Kaya, N., Turan, N., & Palloş, A.Ö. (2012). Не следует ли использовать для внутримышечных инъекций тыльную ягодичную область? Журнал медсестер Стамбульского университета Флоренс Найтингейл, 20 (2), 146–153.

      Ларкин, Т.А., Эшкрофт, Э., Элджеллай, А., и Хики, Б.А. (2017). Выбор места вентроглютеального и дорсоглютеального: поперечное исследование толщины мышц и подкожно-жировой клетчатки и алгоритм, включающий демографические и антропометрические данные для прогнозирования результата инъекции.Int J Nurs Stud., 71,1–7. DOI: 10.1016 / j.ijnurstu.2017.02.017

      Малкин Б. (2008). Основаны ли методы, используемые для внутримышечных инъекций, на данных исследований? Nurs. Times, 104, 48–51.

      Николл, Л. Х., и Хесби, А. (2002). Внутримышечная инъекция: комплексный обзор исследований и руководство для практики, основанной на доказательствах. Прил. Nurs. Res, 15 (3), 149–162. DOI: 10.1053 / apnr.2002.34142

      Нисбет, А.С. (2006). Внутримышечные инъекции в ягодичную область у людей, страдающих ожирением: ретроспективное исследование.Br. Med. Дж., 332 (7452), 637–638. DOI: 10.1136 / bmj.38706.742731.47

      Пальма, С., и Строфус, П. (2013). Являются ли внутримышечные инъекции внутримышечными инъекциями женщинам с ожирением и избыточной массой тела? Исследование техники инъекций. Прил. Nurs. Res, 26, 1–4. DOI: 10.1016 / j.apnr.2013.09.002

      Поттер П.А. и Перри А.Г. (2013). Основы сестринского дела, 7-е изд. Ежегодник Мосби, Филадельфия.

      Сары Д., Шахин М., Яшар Э., Ташкиран Н. и Телли С.(2017). Исследование частоты использования турецких медсестер и знаний о введении внутримышечных инъекций в вентроглютеальный участок: результаты анкетирования. Медсестра сегодня, 56,47–51. DOI: 10.1016 / j.nedt.2017.06.005

      Тейлор, К., Лиллис, К., ЛеМоне, П., и Линн, П. (2011). Основы сестринского дела и науки сестринского дела. Седьмое изд. Wolters Kluwer, Lippincott Williams & Wilkins, Китай.

      Tuğrul, E., & Denat, Y.(2014). Информация, мнения и практика медсестер по применению инъекций в вентроглютеальную область. Электронный журнал сестринского факультета Университета Докуз Эйлюль, 7 (4), 275–284.

      Wynaden, D., Landsborough, I., McGowan, S., Baigmohamad, Z., Finn, M., & Pennebaker, D. (2006). Рекомендации по передовой практике введения внутримышечных инъекций в условиях психического здоровья. Int. J. Ment. Медицинские медсестры, 15 (3), 195–200. DOI: 10.1111 / j.1447-0349.2006.00423

      Циммерманн, П.Г. (2010). Еще раз о внутримышечных инъекциях: вентроглютеальный участок является самым безопасным для внутримышечных инъекций Am. J. Nurs., 110 (2), 661.doi: 10.1097 / 01.NAJ.0000368058.72729.c6

      Понимание влияния внутримышечной инъекции и отказа от корма на выделение Salmonella Typhimurium и микробиоту кишечника у молодок | Журнал зоотехники и биотехнологии

    • 1.

      Хан С., Мур Р.Дж., Стэнли Д., Чусалкар К.К. Микробиота кишечника кур-несушек и манипуляции с ней с помощью пребиотиков и пробиотиков для улучшения здоровья кишечника и безопасности пищевых продуктов.Appl Environ Microbiol. 2020; 86 (13): e00600.

      CAS
      Статья

      Google ученый

    • 2.

      Шан И, Кумар С., Окли Б., Ким В.К. Микробиота куриного кишечника: важность и технология обнаружения. Front Vet Sci. 2018; 5: 254. https://doi.org/10.3389/fvets.2018.00254.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 3.

      Фоли С.Л., Наяк Р., Ханнинг И.Б., Джонсон Т.Дж., Хан Дж., Рике С.К.Динамика популяций серотипов Salmonella enterica в коммерческом производстве яиц и птицы. Appl Environ Microbiol. 2011. 77 (13): 4273–9. https://doi.org/10.1128/AEM.00598-11.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 4.

      Моффатт С.Р., Мусто Дж., Пинго Н., Миллер М., Стаффорд Р., Грегори Дж. И др. Salmonella Typhimurium и вспышки заболеваний, связанных с яйцами, в Австралии, 2001–2011 гг. Дис. Патогенных микроорганизмов пищевого происхождения.2016; 13 (7): 379–85. https://doi.org/10.1089/fpd.2015.2110.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 5.

      Голе В.К., Торок В., Секстон М., Карагуэль К.Г., Чусалкар К.К. Связь между загрязнением окружающей среды внутри помещений Salmonella enterica и заражением яиц на фермах-несушках. J Clin Microbiol. 2014. 52 (9): 3250–8. https://doi.org/10.1128/JCM.00816-14.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 6.

      Verbrugghe E, Dhaenens M, Leyman B, Boyen F, Shearer N, Van Parys A, et al. Стресс хозяина вызывает рецидивирование сальмонелл. Научный доклад 2016; 6: 20849. https://doi.org/10.1038/srep20849.

    • 7.

      Mon KKZ, Saelao P, Halstead MM, Chanthavixay G, Chang H-C, Garas L, et al. Salmonella enterica Инфекция serovars enteritidis изменяет местное разнообразие микробиоты у молодых цыплят-несушек. Front Vet Sci. 2015; 2 (61). https://doi.org/10.3389/fvets.2015.00061.

    • 8.

      Хан С, Чусалкар КК. Инфекция Salmonella Typhimurium нарушается, но постоянное кормление пробиотиком на основе Bacillus восстанавливает микробиоту кишечника инфицированных кур. J Anim Sci Biotechnol. 2020; 11 (1): 1–16. https://doi.org/10.1186/s40104-020-0433-7.

    • 9.

      Виденска П., Седлар К., Лукач М., Фалдынова М., Герзова Л., Цейкова Д. и др. Сукцессия и замена бактериальных популяций в слепой кишке кур-несушек на протяжении всей их жизни. PLoS One. 2014; 9: e115142. https://doi.org/10.1371 / journal.pone.0115142.

    • 10.

      Бунстра Р. Готовность к жизни: адаптивная роль оси стресса у самцов млекопитающих. J Mammal. 2005. 86 (2): 236–47. https://doi.org/10.1644/BHE-001.1.

      Артикул

      Google ученый

    • 11.

      Чармандари Э., Цигос К., Хрусос Г. Эндокринология стрессовой реакции. Annu Rev Physiol. 2005. 67 (1): 259–84. https://doi.org/10.1146/annurev.physiol.67.040403.120816.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 12.

      Romero LM. Физиологический стресс в экологии: уроки биомедицинских исследований. Trends Ecol Evol. 2004. 19 (5): 249–55. https://doi.org/10.1016/j.tree.2004.03.008.

      Артикул
      PubMed

      Google ученый

    • 13.

      Ногера Дж. К., Айра М., Перес-Лосада М., Домингес Дж., Веландо А. Глюкокортикоиды модулируют микробиом желудочно-кишечного тракта у дикой птицы. R Soc Open Sci. 2018; 5 (4): 171743. https://doi.org/10.1098/rsos.171743.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 14.

      Буркхолдер К.М., Томпсон К.Л., Эйнштейн М.Э., Эпплгейт Т.Дж., Паттерсон Дж.А. Влияние стрессоров на нормальную кишечную микробиоту, морфологию кишечника и восприимчивость к колонизации Salmonella enteritidis у бройлеров. Poult Sci. 2008. 87 (9): 1734–41. https://doi.org/10.3382/ps.2008-00107.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 15.

      Verbrugghe E, Boyen F, Gaastra W., Bekhuis L, Leyman B, Van Parys A, et al.Сложное взаимодействие между стрессом и бактериальными инфекциями у животных. Vet Microbiol. 2012. 155 (2): 115–27. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.09.012.

      Артикул
      PubMed

      Google ученый

    • 16.

      Хан С., Чусалкар К.К. Кратковременное кормление пробиотиками и синбиотиками модулирует микробиоту слепой кишки во время инфекции Salmonella Typhimurium, но не снижает линьку и инвазию у кур. Appl Microbiol Biotechnol. 2020; 104 (1): 319–34.https://doi.org/10.1007/s00253-019-10220-7.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 17.

      Хан С., Чусалкар К.К. Анализ профиля транскриптома слепой кишки у цыплят, зараженных Salmonella Typhimurium, выявляет дифференциальную экспрессию генов, участвующих в иммунном ответе слизистой оболочки хозяина. Appl Microbiol Biotechnol. 2020; 104 (21): 9327–42. https://doi.org/10.1007/s00253-020-10887-3.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 18.

      Юрикова Н., Виденска П., Лукач М., Фалдынова М., Бабак В., Гавличкова Н. и др. Влияние инфекции Salmonella enterica serovar enteritidis на развитие микробиоты слепой кишки у только что вылупившихся цыплят. Appl Environ Microbiol. 2013. 79 (2): 745–7. https://doi.org/10.1128/AEM.02628-12.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 19.

      Кубасова Т., Колларчикова М., Црханова М., Карасова Д., Цейкова Д., Себкова А. и др.Контакт со взрослой курицей влияет на развитие микробиоты слепой кишки у только что вылупившихся цыплят. PLoS One. 2019; 14 (3): e0212446. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0212446.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 20.

      Pisc. Типовой свод правил по защите животных: домашняя птица: CSIRO PUBLISHING; 2002.

    • 21.

      ISA Brown General Management Guide 2009-10. По состоянию на 30 февраля 2015 г.

    • 22.

      Джексон ТГК. Учебное пособие по вакцинации. В: Australian Eggs Limited. 2-е изд; 2018.

      Google ученый

    • 23.

      Ли Дж., Но Би, Чан С., Пак Д., Чанг Й, Чанг Х. Х. Обнаружение стресса и классификация кур-несушек с помощью звукового анализа. Азиатский Австралийский J Anim Sci. 2015; 28 (4): 592–8. https://doi.org/10.5713/ajas.14.0654.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 24.

      Кнудсен Б.Е., Бергмарк Л., Мунк П., Лукьянченко О., Приеме А., Аарструп FM и др. Влияние типа образца и процедуры выделения ДНК на геномный вывод о составе микробиома. MSystems. 2016; 1 (5): e00095–16.

      Артикул

      Google ученый

    • 25.

      Miseq SOP [https://www.mothur.org/wiki/MiSeq_SOP]. По состоянию на 14 июля 2020 г.

    • 26.

      Schloss PD, Westcott SL, Ryabin T, Hall JR, Hartmann M, Hollister EB, et al.Представляем mothur: программное обеспечение с открытым исходным кодом, независимое от платформы, поддерживаемое сообществом для описания и сравнения сообществ микробов. Appl Environ Microbiol. 2009. 75 (23): 7537–41. https://doi.org/10.1128/AEM.01541-09.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 27.

      Quast C, Pruesse E, Yilmaz P, Gerken J, Schweer T., Yarza P, et al. Проект базы данных генов рибосомных РНК SILVA: улучшенная обработка данных и веб-инструменты.Nucleic Acids Res. 2012; 41 (D1): D590 – D6. https://doi.org/10.1093/nar/gks1219.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 28.

      Westcott SL, Schloss PD. OptiClust, улучшенный метод присвоения данных последовательности на основе ампликона рабочим таксономическим единицам. MSphere. 2017; 2: e00073–17. https://doi.org/10.1128/mSphereDirect.00073-17.

    • 29.

      Ондов Б.Д., Бергман Н.Х., Филлиппи А.М. Интерактивная метагеномная визуализация в веб-браузере.BMC Bioinformatics. 2011; 12 (1): 385. https://doi.org/10.1186/1471-2105-12-385.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 30.

      Скрипт для преобразования сводных файлов таксономии моли в формат Krona XML [https://github.com/accaldwell/mothur_krona]. По состоянию на 14 июля 2020 г.

    • 31.

      Простой скрипт для создания диаграмм крон для всех образцов в файле таблицы OTU [https://github.com/GenomicaMicrob/OTUsamples2krona].По состоянию на 14 июля 2020 г.

    • 32.

      Zakrzewski M, Proietti C, Ellis JJ, Hasan S, Brion M-J, Berger B, et al. Calypso: удобный веб-сервер для анализа и визуализации взаимодействий микробиома и окружающей среды. Биоинформатика. 2017; 33 (5): 782–3. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btw725.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 33.

      ГАСТ РК, Борода CW. Возрастные изменения персистенции и патогенности Salmonella Typhimurium у цыплят.Poult Sci. 1989. 68 (11): 1454–60. https://doi.org/10.3382/ps.0681454.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 34.

      Панде В.В., Девон Р.Л., Шарма П., Маквортер А.Р., Чусалкар К.К. Изучение инфекции Salmonella Typhimurium у кур-несушек. Front Microbiol. 2016; 7: 203. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.00203.

    • 35.

      Шарма П., Панде В.В., Мойл Т.С., Маквортер А.Р., Чусалкар К.К. Корреляция выделения бактерий с уровнями кортикостерона в фекалиях и серологическими ответами кур-несушек, экспериментально инфицированных Salmonella Typhimurium.Vet Res. 2017; 48 (1): 5. https://doi.org/10.1186/s13567-017-0414-9.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 36.

      Howard AJ, Chousalkar KK, McWhorter AR. Эффективность живой аттенуированной вакцины Salmonella Typhimurium in vitro и in vivo в предотвращении колонизации кишечника у цыплят. Зоонозы в области общественного здравоохранения. 2018; 65 (6): 736–41. https://doi.org/10.1111/zph.12479.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 37.

      Verbrugghe E, Boyen F, Van Parys A, Van Deun K, Croubels S, Thompson A, et al. Вызванное стрессом рецидивирование Salmonella Typhimurium у свиней совпадает с индуцированным кортизолом усилением внутриклеточной пролиферации в макрофагах. Vet Res. 2011; 42 (1): 118. https://doi.org/10.1186/1297-9716-42-118.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 38.

      Deutsch-Feldman M, Picetti R, Seip-Cammack K, Zhou Y, Kreek MJ.Влияние манипуляций и инъекций носителя на концентрацию адренокортикотропов и кортикостерона у крыс Sprague-Dawley по сравнению с крысами Lewis. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2015; 54 (1): 35–9.

      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 39.

      Ngunjiri JM, Taylor KJ, Abundo MC, Jang H, Elaish M, Mahesh K, et al. Стадия фермы, возраст птицы и место обитания в основном влияют на количество, таксономический состав и динамику респираторной и кишечной микробиоты промышленных кур-несушек.Appl Environ Microbiol. 2019; 85 (9): e03137–18.

      Артикул

      Google ученый

    • 40.

      Озато Н., Сайто С., Ямагути Т., Каташима М., Токуда И., Савада К. и др. Род Blautia связан с накоплением висцерального жира у взрослых в возрасте 20–76 лет. NPJ Biofilms Microbiomes. 2019; 5 (1): 1–9.

      CAS
      Статья

      Google ученый

    • 41.

      Berger FK, Schwab N, Glanemann M, Bohle RM, Gärtner B, Groesdonk HV.Flavonifractor (Eubacterium) plautii инфекция кровотока после острого холецистита. IDCases. 2018; 14: e00461. https://doi.org/10.1016/j.idcr.2018.e00461.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 42.

      Манкабелли Л., Милани С., Лугли Г.А., Туррони Ф., Коккони Д., ван Синдерен Д. и др. Идентификация универсальных кишечных микробных биомаркеров распространенных кишечных заболеваний человека с помощью метаанализа. FEMS Microbiol Ecol.2017; 93 (12): исправление 153.

      Артикул

      Google ученый

    • 43.

      Накамура К., Ямадзаки Ю., Сираиси А., Кобаяси С., Харада М., Йошияма М. и др. Различия в вирулентности между штаммами Melissococcus plutonius с разным генетическим фоном у личинок Apis mellifera в улучшенных экспериментальных условиях. Научный доклад 2016; 6 (1): 1–12.

      Артикул

      Google ученый

    • 44.

      Герритсен Дж., Хорнунг Б., Ренкенс Б., ван Хиджум САФТ, Мартинс душ Сантуш ВАП, Райкерс Г.Т. и др. Геномный и функциональный анализ Romboutsia ilealis CRIBT показывает адаптацию к тонкому кишечнику. Пер Дж. 2017; 5: e3698. https://doi.org/10.7717/peerj.3698.

    • 45.

      Ai D, Pan H, Li X, Gao Y, Liu G, Xia LC. Выявление кишечной микробиоты, связанной с колоректальным раком, с использованием логнормальной модели с нулевым раздутием. Front Microbiol. 2019; 10: 826. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00826.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 46.

      Керс Дж. Г., Велкерс Ф. К., Фишер Э. А., Гермес Г. Д., Стегеман Дж. А., Смидт Х. Хозяин и факторы окружающей среды, влияющие на микробиоту кишечника кур. Front Microbiol. 2018; 9: 235. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00235.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 47.

      Rostagno MH.Влияние теплового стресса на здоровье кишечника птицы. J Anim Sci. 2020; 98 (4): skaa090.

      Артикул

      Google ученый

    • 48.

      Zhu L, Liao R, Wu N, Zhu G, Yang C. Тепловой стресс опосредует изменения фекального микробиома и функциональных путей кур-несушек. Appl Microbiol Biotechnol. 2019; 103 (1): 461–72. https://doi.org/10.1007/s00253-018-9465-8.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 49.

      Ши Д., Бай Л., Цюй Q, Чжоу С., Ян М., Го С. и др. Влияние структуры кишечной микробиоты у бройлеров, подвергшихся тепловому стрессу. Poult Sci. 2019; 98 (6): 2405–13. https://doi.org/10.3382/ps/pez026.

      Артикул
      PubMed

      Google ученый

    • 50.

      Тиан Й., Ли Дж., Чен Л., Бу Х, Шен Дж., Тао З. и др. Воздействие высоких температур изменяет структуру сообщества и функциональные характеристики кишечной микробиоты у уток шаосин (Anas platyrhynchos).Poult Sci. 2020; 99 (5): 2662–74. https://doi.org/10.1016/j.psj.2019.12.046.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 51.

      Карл Дж. П., Хэтч А.М., Арчидиаконо С.М., Пирс С.К., Пантоха-Фелисиано И.Г., Доэрти Л.А. и др. Влияние психологических, экологических и физических стрессоров на микробиоту кишечника. Front Microbiol. 2018; 9: 2013. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02013.

      Артикул
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 52.

      Ott S, Musfeldt M, Wenderoth D, Hampe J, Brant O, Fölsch U, et al. Снижение разнообразия бактериальной микрофлоры слизистой оболочки толстой кишки у пациентов с активным воспалительным заболеванием кишечника. Кишечник. 2004. 53 (5): 685–93. https://doi.org/10.1136/gut.2003.025403.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 53.

      Лайт М. Микробная эндокринология и инфекционные болезни в 21 веке. Trends Microbiol.2004. 12 (1): 14–20. https://doi.org/10.1016/j.tim.2003.11.004.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 54.

      Song Z, Cheng K, Zheng X, Ahmad H, Zhang L, Wang T. Влияние пищевых добавок с ферментативно обработанной Artemisia annua на показатели роста, морфологию кишечника, активность пищеварительных ферментов, иммунитет и антиоксидантную способность жаростойкие бройлеры. Poult Sci. 2018; 97 (2): 430–7. https: // doi.org / 10.3382 / ps / pex312.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 55.

      Ригби С., Петтит Дж. Изменения статуса сальмонелл у цыплят-бройлеров, подвергнутых имитации условий перевозки. Может J Comp Med. 1980. 44 (4): 374–81.

      CAS
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 56.

      Болдер Н., Малдер Р. Загрязнение тушек салмонелл: роль транспортных средств.Курр Авиколь. 1983; 39: 23–5.

      Google ученый

    • 57.

      Isaacson RE, Firkins LD, Weigel RM, Zuckermann FA, DiPietro JA. Влияние транспортировки и отказа от корма на распространение Salmonella typhimurium среди экспериментально инфицированных свиней. Am J Vet Res. 1999. 60 (9): 1155–8.

      CAS
      PubMed

      Google ученый

    • 58.

      Boyen F, Haesebrouck F, Maes D, Van Immerseel F, Ducatelle R, Pasmans F.Нетифоидные сальмонеллезные инфекции у свиней: более пристальный взгляд на эпидемиологию, патогенез и меры борьбы. Vet Microbiol. 2008. 130 (1–2): 1–19. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2007.12.017.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • 59.

      Martín-Peláez S, Peralta B, Creus E, Dalmau A, Velarde A, Pérez JF, et al. Различное время приема корма перед убоем влияет на брожение слепой кишки и выделение фекалий сальмонелл у свиней.Вет Дж. 2009; 182 (3): 469–73. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2008.08.002.

      Артикул
      PubMed

      Google ученый

    • 60.

      Stecher B, Chaffron S, Käppeli R, Hapfelmeier S, Freedrich S, Weber TC, et al. Нравится желает любить: изобилие близкородственных видов может предсказать восприимчивость к колонизации кишечника патогенными и комменсальными бактериями. PLoS Pathog. 2010; 6 (1): e1000711. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1000711.

      CAS
      Статья
      PubMed
      PubMed Central

      Google ученый

    • 61.

      Чжун И, Ниман М., Фок Ф. Модуляция микробиоты кишечника у крыс, получавших диету с высоким содержанием жиров, путем переработки цельнозернового ячменя в ячменный солод. Mol Nutr Food Res. 2015; 59 (10): 2066–76. https://doi.org/10.1002/mnfr.201500187.

      CAS
      Статья
      PubMed

      Google ученый

    • Инъекции депо оланзапина (Zyprexa Relprevv) при шизофрении

      Оланзапин в виде моногидрата памоата — это форма оланзапина для инъекций или депо длительного действия.Он одобрен для поддерживающего лечения шизофрении у взрослых, достаточно стабилизированный во время острого лечения пероральным оланзапином. Его вводят путем глубокой внутримышечной инъекции в ягодичную область каждые 2 или каждые 4 недели.

      Список PBS для инъекций депо оланзапина предоставляет дополнительный вариант атипичного антипсихотического средства длительного действия по сравнению с внутримышечным введением рисперидона длительного действия, единственным другим атипичным антипсихотиком длительного действия, одобренным (и внесенным в список PBS) для поддерживающего лечения шизофрении.

      Другие варианты депо антипсихотических средств включают типичные депо антипсихотических средств флупентиксол, флуфеназин, галоперидол и зуклопентиксол. Без прямого контролируемого сравнительного исследования неясно, насколько эффективность, безопасность, переносимость и приемлемость депо оланзапина отличается от депо-рисперидона и других депо-нейролептиков.

      Определить переносимость и ответ на пероральный оланзапин (таблетки или пластинки) у пациентов, ранее не получавших оланзапин, до начала лечения инъекцией депо оланзапина.2 Нет опубликованной информации о переводе пациентов, стабилизированных на других антипсихотических средствах, непосредственно на инъекции депо оланзапина, и это не соответствует показаниям, утвержденным TGA.

      Не путайте с быстродействующим внутримышечным препаратом для использования в неотложной помощи

      Существует две формы оланзапина для в / м введения, и их не следует путать:

      • оланзапин (Zyprexa IM) 10 мг порошок для внутримышечных инъекций (быстрого действия), восстановленный стерильной водой для инъекций
      • оланзапин (в виде моногидрата памоата) депо для инъекций (Zyprexa Relprevv) 210 мг, 300 мг или 405 мг * порошок и стерильный разбавитель для внутримышечной инъекции.

      * Депо оланзапина для инъекций 405 мг в настоящее время недоступно в Австралии.

      Когда следует рассматривать инъекции антипсихотических препаратов депо

      Несоблюдение режима лечения является обычным явлением и связано с худшими результатами у людей с шизофренией.3,4 Депо антипсихотическая терапия является вариантом, когда соблюдение режима лечения неадекватно, несмотря на соответствующие психосоциальные вмешательства, направленные на улучшение приверженности, а также для людей, которые предпочитают инъекции антипсихотических препаратов длительного действия. оральная терапия.5–8

      Выбирайте между нейролептиками, исходя из относительного риска и пользы отдельных препаратов, а также предпочтений пациента.

      Регулярно проверяйте потребность в антипсихотической терапии депо6.

      Психологические и психосоциальные вмешательства могут улучшить приверженность

      Рассматривать индивидуализированные психологические и психосоциальные вмешательства в качестве дополнения к лекарственной терапии для улучшения результатов для людей с шизофренией.5,6,8,9 Имеются некоторые свидетельства того, что семейные вмешательства, психообразовательные вмешательства и поведенческая терапия могут улучшить приверженность к лечению по сравнению с обычными care10,11, но нет убедительных доказательств эффективности комплаентной терапии.12

      Эффективность у остро больных и стабилизированных пациентов с шизофренией

      Эффективность инъекции депо оланзапина сравнивалась с плацебо у пациентов с острыми заболеваниями и с пероральным оланзапином у пациентов, ранее принимавших пероральный оланзапин. шизофрения.

      В краткосрочном исследовании (продолжительность 8 недель) пациенты, рандомизированные для инъекций оланзапина длительного действия, достигли большего среднего снижения по сравнению с исходным уровнем в общей шкале положительных и отрицательных синдромов (PANSS †) по сравнению с пациентами, рандомизированными для плацебо.13

      В неопубликованном 24-недельном поддерживающем исследовании инъекция депо оланзапина (300 мг / 2 недели в сочетании со 150 мг / 2 недели) была не менее эффективна, чем пероральный оланзапин (10–20 мг в день) с точки зрения обострения симптомов у пациентов ранее. стабилизировано на фиксированных дозах перорального оланзапина (частота обострений 10% по сравнению с 7% при пероральном приеме оланзапина, 95% доверительный интервал –0,02–0,08) .14 Все 3 дозы инъекции депо оланзапина, использованные в исследовании (405 мг / 4 недели, 300 мг / 2 недели и 150 мг / 2 недели) были более эффективными, чем контроль (45 мг / 4 недели) в поддержании ответа.14

      К концу исследования пациенты, рандомизированные для перорального приема оланзапина, достигли численно более низких баллов симптомов (среднее снижение по сравнению с исходным общим баллом PANSS) по сравнению с пациентами, рандомизированными для инъекций депо оланзапина. Эти результаты можно частично объяснить неадекватным дозированием депо оланзапина для пациентов, ранее стабилизированных на фиксированных дозах перорального оланзапина. В то время как некоторые пациенты были рандомизированы для продолжения приема пероральной дозы оланзапина, при которой они продемонстрировали ответ, другие могли быть рандомизированы на дозу инъекции депо оланзапина, которая не была эквивалентна их предыдущей пероральной дозе оланзапина.15 Рекомендуемые начальные дозы для инъекций депо оланзапина выше, чем суточные пероральные дозы, чтобы минимизировать риск обострения.


      † PANSS — это инструмент оценки из 30 пунктов и 7 пунктов, используемый для измерения распространенности и тяжести положительных и отрицательных симптомов и общей психопатологии при шизофрении (от 30 = отсутствие симптома до> 200 = симптом крайне тяжелый) 15. , 16

      Опытные группы могут не напоминать тех, кому рекомендуются антипсихотические препараты депо и которые, вероятно, будут использоваться

      Текущие рекомендации рекомендуют использование депо-нейролептиков людям с шизофренией, для которых приверженность лечению является проблемой.5,6,8 Приверженность к лечению официально не оценивалась ни до, ни во время ключевых исследований, но вполне возможно, что пациенты могли быть более склонными к сотрудничеству, чем целевая группа для этого препарата, о чем свидетельствует их готовность участвовать в исследованиях. Тем не менее, процент прекращения лечения был высоким в плацебо-контролируемом исследовании (около 33% для инъекций депо оланзапина по сравнению с 43% для плацебо), где пациенты находились под высоким уровнем наблюдения (83% участников оставались стационарными на протяжении всего исследования) 13, и могут быть даже выше в реальных условиях.Промежуточные результаты долгосрочного (4-летнего) открытого исследования показали, что 28% пациентов прекратили участие в исследовании через 1 год, а 34% прекратили его через 18 месяцев14.

      Ключевые испытания исключали людей с острыми, серьезными или нестабильными заболеваниями или сопутствующими расстройствами, связанными с употреблением психоактивных веществ, а также со значительным суицидальным или смертельным риском.13,17 В действительности распространенность сопутствующих физических и психических заболеваний и злоупотребления психоактивными веществами у людей с шизофренией хорошо задокументирована18. , 19

      Бензодиазепины для внутримышечного введения: используйте мидазолам — emupdates

      Если у вас нет внутривенного введения, используйте мидазолам при судорогах и возбуждении.Доза составляет 0,2 мг / кг в / м.

      «… Время достижения максимальной концентрации в плазме (Cmax) было короче для мидазолама (17,5 ± 6,5 мин), чем для диазепама (33,8 ± 7,5 мин). (P <0,05, таблица II). Профили абсорбции IM для мидазолама и диазепама демонстрируют, что существует большая вариабельность скорости абсорбции IM диазепама, чем у IM мидазолама (рис. 2). Среднее время до максимальной скорости абсорбции было меньше для мидазолама (9 ± 2 мин), чем для диазепама (13,8 ± 7,5 мин). Всасывание мидазолама было почти полным в течение одного часа после в / м введения.Однако для диазепама значительная абсорбция лекарства продолжалась с большей вариабельностью более одного часа после внутримышечной инъекции ».

      Hung, Dyck, Varvel et al. Сравнительная кинетика всасывания мидазолама и диазепама при внутримышечном введении. Can J Anaesth 1996; 43: 5 pp 450-5.

      «Мидазолам — единственный бензодиазепин, устойчивый в водном растворе и подходящий для внутримышечных инъекций. Можно было ожидать отсроченного начала действия, как показано Jawad et al., Но это не было подтверждено Chamberlain et al.Внутримышечное введение мидазолама может быть полезным у пациентов, когда попытки ввести внутривенное введение не увенчались успехом. Оказалось, что он хорошо переносится и быстро эффективен при лечении острых припадков ».

      Wermeling, Archer, Manaligod et al. Биодоступность и фармакокинетика лоразепама после интраназального, внутривенного и внутримышечного введения. J Clin Pharmacol 2001; 41: 1225-1231.

      «Мы обнаружили, что мидазолам превосходит галоперидол и лоразепам в седации агрессивных и сильно возбужденных пациентов (VSAP) в отношении времени до седации и времени до возбуждения.Использование мидазолама для борьбы с VSAP может облегчить уход за пациентом, быстро облегчить нарушение работы ED и ускорить диспозицию ».

      Нобай, Саймон, Левитт и др. Проспективное двойное слепое рандомизированное испытание мидазолама в сравнении с галоперидолом и лоразепамом в химическом ограничении агрессивных и сильно возбужденных пациентов.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.