Какой из приемов стерилизации операционных наиболее эффективно: Биология в вопросах и ответах

Содержание

тестовый контроль знаний по теме «Бактерии» | Тест по биологии (6 класс) по теме:

                                                   Тест «Бактерии»

                                                       Вариант I

     1. Любая бактерия – это:

   А) многоклеточный организм      Б) одноклеточный организм, не имеющий оформленного ядра    

  В) клетка, имеющая ядро               Г) клетка в форме палочки

2. Бактерии могут питаться:

   А) образуя нас свету органические вещества      Б) готовыми органическими веществами

    В) поселяясь на продуктах питания                     Г) всеми перечисленными способами

3. Большинство бактерий не способны к фотосинтезу, потому что:

    А) они живут в почве                                                    Б) не имеют хлорофилла

    В) паразитируют на других животных организмах   Г) имеют небольшие размеры

4. Клетки бактерий отличаются от (растительных) клеток других организмов:

    А) отсутствием клеточной оболочки                Б) отсутствием цитоплазмы

    В) отсутствием ядра                                           Г) отсутствием ядерного вещества

5. Какой из приемов стерилизации операционных наиболее эффективно действует на бактерии?

    А) мытье полов                                                  Б) проветривание    

    В) облучение ультрафиолетовыми лучами    Г) нагрев воздуха до температуры +30

6. В каком случае указан симбиоз бактерий с другими организмами?

    А) возбудитель холеры у человека            Б) сенная палочка

    В) почвенные бактерии                              Г) клубеньковые бактерии бобовых растений

7. Возбудителями холеры являются:

    А) сапрофиты     Б) паразиты    В) симбионты      Г) автотрофы

8. Наилучшим способом защиты от возбудителей холеры является:

     А) питье кипяченой воды                       Б) мытье овощей и фруктов

     В) личная гигиена                                   Г) все перечисленное

9. Какие из свойств бактерий в большей степени определяют их болезненность?

    А) скорость размножения и способ питания

    Б) способность некоторых к фотосинтезу

    В) способность образовывать споры

   Г) способность к симбиозу с другими организмами

10. Исключите лишнее:

    А) чума                   Б) холера             В) грипп                Г) тиф                  

11. Какова роль бактерий в жизни человека?    

     12. Как бактерии заражают (пути заражения) человека?

                                                         Тест «Бактерии»

                                                          Вариант II

1. Большинство бактерий не способны к фотосинтезу, потому что:

    А) они живут в почве                                 Б) не имеют хлорофилла

    В) паразитируют на других животных организмах

   Г) имеют небольшие размеры

2. Возбудителями холеры являются:

    А) сапрофиты     Б) паразиты    В) симбионты      Г) автотрофы

3. Какой из приемов стерилизации операционных наиболее эффективно действует на бактерии?

    А) мытье полов                                                  Б) проветривание    

    В) облучение ультрафиолетовыми лучами     Г) нагрев воздуха до температуры +30

   4. Любая бактерия – это:

   А) многоклеточный организм      Б) одноклеточный организм, не имеющий оформленного ядра    

  В) клетка, имеющая ядро               Г) клетка в форме палочки

5. Какие из свойств бактерий в большей степени определяют их болезненность?

    А) скорость размножения и способ питания

    Б) способность некоторых к фотосинтезу

    В) способность образовывать споры

   Г) способность к симбиозу с другими организмами

6. Наилучшим способом защиты от возбудителей холеры является:

     А) питье кипяченой воды                       Б) мытье овощей и фруктов

     В) личная гигиена                                   Г) все перечисленное

7. Бактерии могут питаться:

   А) образуя нас свету органические вещества      Б) готовыми органическими веществами

    В) поселяясь на продуктах питания                     Г) всеми перечисленными способами

8. Исключите лишнее:

    А) чума                   Б) холера             В) грипп                Г) тиф                  

9. Клетки бактерий отличаются от (растительных) клеток других организмов:

    А) отсутствием клеточной оболочки                Б) отсутствием цитоплазмы

    В) отсутствием ядра                                           Г) отсутствием ядерного вещества

10. В каком случае указан симбиоз бактерий с другими организмами?

    А) возбудитель холеры у человека            Б) сенная палочка

    В) почвенные бактерии                              Г) клубеньковые бактерии бобовых растений

11. Какова роль бактерий в природе?

12. Как происходит размножение бактерий?

Признаки организмов

Задания с решениями

 

1. Из одной клетки состоят

1. Хлорелла и ряска

2. Вирус ВИЧ и гриб мукор

3. Бактерия сенной палочки и яйцо страуса

4. Яйцеклетка и эндосперм семени

Объяснение: одноклеточные организмы — некоторые грибы, простейшие и бактерии, а еще половые клетки. Поэтому, правильный ответ — 3.

 

2. Сходство процессов жизнедеятельности у некоторых бактерий и цветковых растений проявляется в способности к 

1. Гетеротрофному питанию

2. Автотрофному питанию

3. Образованию семян

4. Двойному оплодотворению

Объяснение: для бактерий не характерно половое размножение, образование семян, а вот типы питания у них различны, они могут быть как гетеротрофами, так и автотрофами. А растения могут быть только автотрофами. Правильный ответ — 2.

 

3. Меньше всего живет бактерий в

1. В гейзерах Камчатки

2. В болотах средней полосы России

3. На вершинах Гималаев

4. В организмах животных

Объяснение: теплое и влажное место идеально подходит для развития бактерий, такими местами являются организмы животных и болота средней полосы России, в гейзерах тоже живут бактерии-термофилы, а на вершинах Гималаев очень холодно, и еще там очень высокое давление и проблемы с кислородом, такие условия достаточно экстремальны и мало кто к ним может приспособиться. Правильный ответ — 3.

 

4. Бактерии, наиболее полезные для человека — это

1. Стрептококки

2. Туберкулезные палочки

3. Молочнокислые

4. Пневмококки

Объяснение: все перечисленные бактерии, кроме молочнокислых, являются патогенами, а молочнокислые бактерии, наоборот, очень полезны для нашего организма и даже живут у нас (в симбиозе) в кишечнике и помогают нашему пищеварению. Правильный ответ — 3.

 

5. Некоторые бактерии выживают в условиях вечной мерзлоты в виде

1. Группы делящихся клеток

2. Спор

3. Отдельных живых клеток

4. Множественных колоний

Объяснение: при возникновении некомфортных условий среды, бактерии превращаются в споры и переживают эти условия. Но, здесь нужно упомянуть, что даже в экстремальных условиях среды обязательно будут жить какие-нибудь микроорганизмы, приспособленные к данной среде (термофилы, галофилы и т.д.). Правильный ответ — 2.

 

6. Возбудители дифтерии являются

1. Сапрофитами

2. Паразитами

3. Симбионтами

4. Автотрофами

Объяснение: дифтерия — инфекционное заболевание, вызываемое бактериями-паразитами. Правильный ответ — 2.

 

7. В каком случае указан симбиоз бактерий с другим организмом?

1. Возбудитель холеры и человека

2. Сальмонелла и курица

3. Возбудитель сибирской язвы и овца

4. Бактерии в толстой кишке человека

Объяснение: в первых трех вариантах ответа представлены примеры не симбиоза, а паразитизма, то есть не взаимовыгодные отношения, а отношения, при которых только один организм получает пользу, а другой страдает от этого. Правильный ответ — 4.

 

8. В каких отношениях находятся гриб и водоросль, образующие лишайник?

1. Гриб паразитирует на водоросли

2. Водоросль паразитирует на грибе

3. Их отношения взаимовыгодны

4. Гриб фотосинтезирует, а водоросль всасывает воду и соли

Объяснение: их отношения взаимовыгодны, и они являются, как бы, самодостаточной системой, так как гриб — гетеротроф, а водоросль — автотроф. Правильный ответ — 3.

 

9. Сахар превращается в спирт благодаря жизнедеятельности

1. Дрожжей

2. Сыроежек

3. Мукора

4. Пеницилла

Объяснение: данной процесс происходит при помощи дрожжей и называется спиртовое брожение (не самый эффективный, с точки зрения энергетики, процесс). Правильный ответ — 1.

 

10. По характеру питания белые грибы относятся к 

1. Гетеротрофам

2. Автотрофам

3. Автотрофам и гетеротрофам одновременно

4. Паразитическим гетеротрофам

Объяснение: все грибы являются гетеротрофами. Правильный ответ — 1.

 

Автор решения: Лунькова Е. Ю.

 

Задания для самостоятельного решения

 

1. Съедобная часть белого гриба называется

1. Грибницей

2. Пеньком

3. Спорангием

4. Плодовым телом

Ответ: 4.

 

2. К пластинчатым грибам относится

1. Подосиновик

2. Масленок

3. Сыроежка

4. Подберезовик

Ответ: 3.

 

 

3. Грибница, опутывающая корни растений, называется

1. Плесень

2. Лишайник

3. Микоз (грибковое заболевание)

4. Микориза

Ответ: 4.

 

 

4. Заболевание, вызывающее паралич мышц у человека, — это

1. Корь

2. Ветрянка

3. Столбняк

4. Скарлатина

Ответ: 3.

 

5. Функция лишайников в природе

1. Загрязнители окружающей среды

2. Редуценты

3. Почвообразователи

4. Паразиты

Ответ: 3.

 

6. Лишайники не растут в промышленных городах потому, что в городах

1. Нет грибов

2. Нет водорослей

3. Загрязнен воздух

4. Недостаточная влажность

Ответ: 3.

 

7. Какой из приемов стерилизации операционных наиболее эффективно действует на бактерии?

1. Мытье полов

2. Проветривание

3. Облучение ультрафиолетовыми лучами

4. Нагрев воздуха до температуры +30С

Ответ: 3.

 

8. Спора отличается от свободной бактерии тем, что

1. У споры более плотная оболочка

2. В споре несколько бактериальных клеток

3. Спора менее долговечна, чем свободная бактерия

4. Спора питается автотрофно, а свободная бактерия — гетеротрофно

Ответ: 1. 

 

9. Дрожжи получают энергию для жизнедеятельности за счет

1. Фотосинтеза

2. Поглощения из почвы минеральных веществ

3. Разложения сахара на спирт и углекислый газ

4. Получения из почвы органических веществ

Ответ: 3.

 

10. Антибиотики готовят из

1. Пеницилла

2. Дрожжей

3. Спорыньи

4. Мукора

Ответ: 1.

 

11. Пораженный головней колос злака заполнен 

1. Грибницей

2. Плодовыми телами

3. Спорами

4. Грибницей и спорами

Ответ: 3.

 

12. Некоторые плесневые грибы применяются для

1. Изготовления красок

2. Получения антибиотиков

3. Корма для домашних животных

4. Защиты почвы от истощения

Ответ: 2.

 

13. Опята поселяются на пнях и питаются

1. Водой и минеральными и солями

2. Готовыми органическими веществами

3. Используют энергию неорганических соединений

4. Создают органические вещества из неорганических

Ответ: 2.

 

14. Кто из четверых грибников наиболее правильно собирал грибы? Тот, который

1. Вырывал грибы с грибницей

2. Подкапывал почву вокруг и вынимал гриб

3. Срезал плодовые тела у поверхности почвы

4. Срезал только шляпки

Ответ: 3.

 

15. Подъем теста для пирогов обеспечивают

1. Мукор

2. Пеницилл

3. Дрожжи

4. Споры

Ответ: 3.

 

16. Растения не образуют микоризы с 

1. Подосиновиком

2. Подберезовиком

3. Лисичками

4. Трутовиками

Ответ: 4.

 

17. Хитин входит в состав клеточной стенки клеток

1. Ржи

2. Мухомора

3. Хлореллы

4. Амебы

Ответ: 2.

 

Задания взяты из пособия по ГИА по биологии за 2014 год, автор: Г. И. Лернер.

3. СИСТЕМА, МНОГООБРАЗИЕ И ЭВОЛЮЦИЯ. ЖИВОЙ ПРИРОДЫ

3.1. Систематика царства Бактерии, Г]рибы

1. Какой цифрой обозначены на рисунке спириллы?

1)1

2)2

3)3

4)4

2. Клетки бактерий отличаются от клеток растений и живот­ных отсутствием?

1) клеточной оболочки

2) цитоплазмы

3)ядра

4) рибосом

3. Температурный диапазон жизни бактерий примерно равен

1)-10 …+10°

2)-50… +30°

3)—80… +80°

4)-5… +50°

4. Из перечисленных клеточных органоидов у бактерий есть

1)ядро

2) аппарат Гольджи

3) митохондрии

4) рибосомы

5. Клеточная стенка бактерий состоит из

1)хитина

2) муреина

3) целлюлозы

4) гликогена

6. Сходство процессов жизнедеятельности некоторых бак­терий и растений проявляется в способности к

1) гетеротрофному питанию

2) автотрофному питанию

3) спорообразованию

4) двойному оплодотворению

7. У кого из перечисленных организмов наследственная ин­формация содержится в одной кольцевой молекуле ДНК?

1) у амебы обыкновенной

2) у гидры пресноводной

3) у возбудителя дифтерита

4) у инфузории туфельки

8. Наследственный аппарат бактерий представлен

1) одной линейной хромосомой

2) несколькими линейными хромосомами

3) одной кольцевой хромосомой

4) несколькими кольцевыми хромосомами

9. Бактерии, полезные для человека

1) стрептококки

2) туберкулезные палочки

3) пневмококки

4) молочнокислые

10. К царству Бактерии относят

1) возбудителя холеры

2) хламидомонаду

3) хлореллу

4) малярийного плазмодия

11. Некоторые бактерии выживают в вечной мерзлоте в виде

1) группы делящихся клеток

2) спор

3) отдельных клеток

4) множественных колоний

12. Уничтожение всех бактерий на Земле приведет к

1) расцвету жизни

2) улучшению здоровья населения

3) угнетению и исчезновению жизни

4) исчезновению органических веществ

13. Бактерии гниения быстро размножаются в

1) сгущенном молоке

2) открытых консервах

3) мясе в морозильнике

4) квашеной капусте

14. Спора отличается от свободной бактерии тем, что

1) спора менее долговечна, чем свободная бактерия

2) в споре несколько бактериальных клеток

3) у споры более плотная оболочка

4) спора питается автотрофно, а свободная бактерия — гете — ротрофно

15. Возбудители дифтерии являются

1) сапрофитами

2) паразитами

3) симбионтами

4) автотрофами

16. Какой из приемов стерилизации операционных наибо­лее эффективно действует на бактерий?

1) мытье полов

2) проветривание

3) нагрев воздуха до температуры +300

4) дезинфекция

17. В каком случае указаны организмы, находящиеся в сим­биозе?

1) возбудитель холеры и человек

2) сальмонелла и курица

3) возбудитель сибирской язвы и овца

4) клубеньковые бактерии и бобовые растения

18. По характеру питания грибы относятся к

1) гетеротрофам

2) автотрофам

3) автотрофам и гетеротрофам одновременно

4) паразитическим гетеротрофам

19. Мукор, скорее всего, можно встретить на (в)

1) дереве

2) почве

3) влажном хлебе

4) злаках

20. К одноклеточным грибам относится

1)пеницилл

2) мукор

3)вольвокс

4)опенок

21. Дрожжи получают энергию для жизнедеятельности за счет

1) фотосинтеза

2) поглощения из почвы минеральных веществ

3) разложения сахара на спирт и углекислый газ

4) получения из почвы органических веществ

22. Антибиотики готовят из

1) пеницилла

2) дрожжей

3) спорыньи

4) мукора

23. Пораженный головней колос злака заполнен

1) грибницей

2) плодовыми телами

3) бактериями

4)спорами

24. Белый гриб с корнями дуба образует

1) микоризу

2) мицелий

3) гифы

4) плодовые тела

25. Растения не образуют микоризы с

1) подосиновиком

2) подберезовиком

3) лисичками

4) трутовиками

26. В состав лишайника входят

1) водоросли и споры бактерий

2) грибы и водоросли

3) бактерии и грибы

4) водоросли и кора деревьев

27. Роль лишайников в природе заключается в том, что они

1) являются почвообразователями

2) являются сырьем для лекарств

3) живут в симбиозе с животными

4) являются основными продуцентами в лесу

28. Роль водоросли в лишайнике заключается в том, что во­доросль обеспечивает гриб

1) водой

2) углекислым газом

3) жирами

4) углеводами

29. Лишайники не растут в промышленных городах потому, что в городах

1) нет грибов

2) нет водорослей

3) загрязнен воздух

4) нет почвы для роста лишайника

30. Наиболее крупной систематической группой ученые считают

1) царство

2) класс

3) отдел

4) тип

31. Общий признак, на основании которого бактерий отнес­ли к прокариотам — это

1) наличие клеточной стенки

2) отсутствие оформленного ядра

3) наличие жгутиков

4) наличие одной молекулы ДНК

32. Грибы

1) не имеют сходства с растениями

2) не имеют сходства с животными

3) имеют сходные признаки и с растениями и с животными

4) состоят из других химических элементов

33. Организм, показанный на рисунке, размножается

1) семенами

2) спорами

3) почками

4) простым делением

3.2. Царство Растения

1. Органический мир был разделен на растительный и жи­вотный благодаря появлению разных

1) способов питания

2) условий существования

3) способов размножения

4) способов деления клеток

2. Какой из процессов в жизни растения обеспечивает по­явление новых признаков у потомства?

1) половое размножение

2) бесполое размножение

3) размножение спорами

4) вегетативное размножение

3. C появлением растений на Земле атмосфера обогатилась

1) азотом и углекислым газом

2) азотом

3) углекислым газом

4) кислородом

4. Выход растений на сушу связан с появлением в первую очередь

1) семян

2) цветков и плодов

3) органов и тканей

4) двойного оплодотворения

5. Среди перечисленных ниже систематических групп рас­тений эволюционно более поздними были

1) мохообразные

2) голосеменные

3) многоклеточные водоросли

4) покрытосеменные

6. Первыми семенными растениями были

1) голосеменные хвойные растения

2) семенные папоротники

3) покрытосеменные

4) псилофиты

7. Функции, сходные с функциями таможни, в раститель­ной клетке выполняет

1) цитоплазма

2) клеточная стенка

3) вакуоль

4)ядро

8. Какой из органоидов клетки окружен двумя мембранами?

1) ядро клетки

2) лизосома

3) рибосома

4) аппарат Гольджи

9. Между первым и вторым понятием в задании существует определенная связь. Такая же связь существует между третьим и одним из понятий, приведенных ниже. Найдите это понятие.

Растение: лист = клетка

10. Исключите лишнее понятие

1)ядро

2) цитоплазма

3) пластиды

4) клеточный сок

11. Наследственный аппарат растительной клетки содер­жится в

1)ядре

2) аппарате Гольджи

3)рибосомах

4) лейкопластах

12. Между первым и вторым понятием в задании существует определенная связь. Такая же связь существует между третьим и одним из понятий, приведенных ниже. Найдите это понятие.

Хлоропласты: фотосинтез = наследственный аппарат клет­ки

13. Общим признаком клеток всех существующих на Земле организмов является

1) наличие хлоропластов

2) одинаковое количество хромосом

3) обмен веществ

4) одинаковое строение

14. К представителям какого отдела относится организм,

Показанный на рисунке?

1) моховидные

2) бактерии

3) одноклеточные водоросли

4) грибы

15. На рисунке показан

1) спорофит хвоща полевого

2) гаметофит голосеменного растения

3) гаметофит папоротника

4) спорофит папоротника

16. Представитель какого отдела показан на рисунке?

1) папоротниковидные

2) покрытосеменные

3) моховидные

4) плауновидные

17. В процессе фотосинтеза

1) создаются органические вещества из неорганических

2) создаются неорганические вещества из органических

3) выделяется углекислый газ и вода

4) синтезируются белки и жиры

18. Фотосинтез у растений происходит в

1) митохондриях

2) рибосомах

3)ядре

4) хлоропластах

19. Живые клетки разных видов растений отличаются друг от друга

1) количеством ядер

2) наличием клеточной стенки

3) наличием хромосом

4) числом хромосом

20. Образовавшиеся после деления клетки корня несут

1) измененную наследственную информацию

2) такую же информацию, как и в материнских клетках

3) в два раза меньше информации

4) в два раза больше информации

21. Между первым и вторым понятием в задании существу­ет определенная связь Такая же связь существует между третьим и одним из понятий, приведенных ниже. Найдите это понятие.

Цитоплазма: обмен веществ = клеточная стенка

1)фотосинтез 3)запасание веществ

2)защита клетки 4) растворение веществ

22. Что такое дифференциация клеток и тканей?

1) рост клеток и тканей

2) деление клеток разных тканей

3) специализация разных клеток и тканей

4) размножение клеток разными способами

23. Точки роста растения образованы тканью

1) образовательной

2) механической

3) покровной

4)основной

24. К проводящей ткани относятся

1) ситовидные трубки

2) столбчатые клетки листа

3) корневые волоски

4) каменистые клетки груши

25. Обрезка крон деревьев и кустарников приводит к усиле­нию

1) деятельности камбия

2) роста боковых побегов

3) роста корневой системы

4) верхушечного роста дерева

26. Жилка листа образована тканью

1) образовательной

2) фотосинтезирующей

3) основной

4) проводящей

27. Фотосинтезирующие клетки находятся в

1) только в кожице листа

2) кожице и мякоти листа

3) мякоти листа

4) во всех клетках листа

28. Растения с цветком трехчленного типа, мочковатой кор­невой системой и параллельным жилкованием листьев отно­сятся к

1) отделу голосеменные

2) классу двудольные

3) классу однодольные

4) семейству крестоцветные

29. В завязи пестиков цветковых растений формируются

1) пылинки

2) семена

3) спермии

4) пыльцевые мешки

30. В зародышевом мешке цветкового растения образуются

1) пыльцевые мешки

2) тычиночные нити

3) венчик цветка

4) семена

31. Чтобы обеспечить усиленный рост стебля некоторых растений вверх, необходимо регулярно

1) срезать его верхушку

2) интенсивно поливать растение

3) обрезать боковые побеги

4) обрезать боковые корни

32. Размножение представителей какого отдела растений показано на рисунке?

1) голосеменных

2) покрытосеменных

3) папоротниковидных

4) моховидных

33. Способом вегетативного размножения растений является

1) перекрестное опыление

2) самоопыление

3) двойное оплодотворение

4)прививка

35. На рисунке показан график зависимости скорости фото­синтеза от силы света (измеряется в канделлах). Определите, в какой точке эта зависимость резко замедляется.

36. На рисунке показан

1) плаун булавовидный

2) папоротник — страусник

3) хвощ полевой

4) проросток сосны обыкновенной

3.3. Царство Животные

1) клеточный рот инфузории

2) ядро

3) порошица

4) сократительная вакуоль

4. Смешанный тип питания у

1) эвглены зеленой

2) инфузории туфельки

3) амебы обыкновенной

4) аскариды человеческой

5. На рисунке показан способ питания амебы, который на­

Зывается

1) всасывание

2) обволакивание

3) фагоцитоз

4) пиноцитоз

6. Представители какого типа животных имеют хитиновый покров?

1) моллюски

2) членистоногие

3) хордовые

4) круглые черви

7. Первыми трехслойными животными были представители

1) кольчатых червей

2) круглых червей

3) плоских червей

4) кишечнополостных

8. Единичные мускульные клетки впервые появились у

1) кольчатых червей

2) моллюсков

3) членистоногих

4) кишечнополостных

9. Какие клетки гидры обозначены цифрой 1?

1) стрекательные

2) пищеварительные

3) половые

4) нервные

10. Чья кровеносная система показана на рисунке?

1) птицы

2) лягушки

3) ящерицы

4) рыбы

11. Основными признаками рыб являются

1) жаберное дыхание, трехкамерное сердце, слизистая кожа

2) наличие боковой линии, смешанная кровь в сердце, от­сутствие слуха

3) венозная кровь в сердце, жаберное дыхание, боковая линия

4) холоднокровность, внутреннее оплодотворение, кора мозга

12. Важнейшим приспособлением к жизни пресмыкающих­ся на суше является

1) защита потомства

2) строительство жилища

3)холоднокровность

4) сухая ороговевшая кожа

13. В отличие от пресмыкающихся у земноводных

1) трехкамерное сердце без перегородки, два круга крово­обращения

2) двухкамерное сердце, один круг кровообращения

3) четырехкамерное сердце, два круга кровообращения

4) трехкамерное сердце, один круг кровообращения

14. Какова роль молекулы ДНК в жизни организмов?

1) транспорт веществ

2) запасание большого количества энергии

3) хранение наследственной информации

4) транспорт аминокислот к рибосомам

15. Определите правильную последовательность развития прудовой лягушки

1) оплодотворение -» откладывание икры в воду -» созрева­ние икринки -» выход лягушонка

2) откладывание икры в воду ÷ оплодотворение -» появле­ние личинки-» развитие лягушонка

3) оплодотворение -» перемещение икры на сушу ÷ развитие личинки-» развитие лягушонка

4) откладывание икры в воду -» развитие личинки -» развитие лягушонка

16. Выберите пару насекомых, развивающихся с полным превращением

1) кузнечик и стрекоза

2) саранча и капустная белянка

3) клоп и тля

4) майский жук и пчела медоносная

17. Роль двустворчатых моллюсков в природе

1) основная пища рыб

2) продуценты водоемов

3) хищники

4) фильтраторы воды

18. Определите, к какому типу относится животное, нервная

Система которого показана на рисунке.

1) кольчатые черви

2) кишечнополостные

3) плоские черви

4)хордовые

19. Важнейшим отличительным признаком класса млеко­питающих является

1) пятипалые конечности

2) развитие зародыша в матке

3) четырехкамерное сердце

4) два круга кровообращения

20. Что общего имеют все представители типа Членистоно­гие?

1) жаберное дыхание

2) полное превращение при развитии

3) хитиновый покров

4) сухопутный образ жизни

21. Известно, что активность ферментов зависит от разных условий. Определите, при каком значении pH среды фермент наименее активен.

1)4

2)6

3)7

4)8

23. Какой цифрой обозначен на рисунке хозяин печеночного сосальщика?

2)2

3)3

4)4

3.4. Эволюция органического мира

1. Первым эволюционистом считают

1) Ж. Б. Ламарка

2) К. Линнея

3) Ч. Дарвина

4) А. Уоллеса

2. Основной движущей силой эволюции является

1) изоляция

2) мутации

3) естественный отбор

4) приспособленность

3. Основной идеей Ч. Дарвина была мысль о

1) возникновении приспособлений у организмов в результа­те естественного отбора

2) выживании самых сильных

3) наследовании полезных приобретенных признаков

4) стремлении всех организмов к прогрессу

4. Одной из причин, по которой в настоящее время не воз­никают новые виды человека, является

1) отсутствие генетической изоляции между расами

2) сходство генотипов всех людей

3) принадлежность рас к разным видам

4) отсутствие биологической эволюции

5. Предки каких животных обладали пятипалыми конечно­стями и впервые вышли на сушу?

1) рыб

2) птиц

3) пресмыкающихся

4) земноводных

6. Между первым и вторым понятиями существует опреде­ленная связь. Такая же связь существует между третьим и чет­вертым понятием. Укажите четвертое понятие.

Расхождение в признаках у особей: дивергенция = случай­ное возникновение признака:

1) модификация

2) мутация

3) отбор

4) изоляция

7. Чем можно объяснить тот факт, что, сколько бы ни трави­ли домашних тараканов ядами, они все равно выживают в жи­лищах?

1) в домах для них достаточно пищи

2) яды недостаточно сильны

3) у части тараканов есть мутации, позволяющие им выжить

4) естественный отбор не действует в популяции тараканов

8. Иногда рождаются хвостатые дети. Это доказывает

1) родство человека с животными

2) полезность хвоста у человека

3) наследование приобретенного признака

4) возможность появления в будущем хвостатых людей

9. Двойное название видов ввел в науку

1)4. Дарвин

2) Ж. Б. Ламарк

3) К. Линней

4) Л. Пастер

10. Укажите пункт, в котором перечислены движущие силы эволюции.

1) наследственная изменчивость, борьба за существование, естественный отбор

2) модификационная изменчивость, приспособленность, изоляция

3) условия среды, условия питания, возможность для раз­множения

4) приспособленность, расхождение в признаках

11. Появление проводящих и механических тканей привело к

1) семенному размножению

2) увеличению роста растений

3) смене поколений

4) автотрофному питанию

12. Ряд, отражающий эволюцию лошади, называется

1) ископаемым

2) эволюционным

3) филогенетическим

4) палеонтологическим

13. К летающим ящерам относят

1) ихтиозавра

2) стегозавра

3) стегоцефала

4) птеродактиля

14. Важнейшим эволюционным приобретением млекопита­ющих стало развитие

1) продолговатого мозга

2) среднего мозга

3) мозжечка

4) коры мозга

15. Основным отличием человека от человекообразных обе­зьян является способность к

1) наследованию рефлексов

2) обучению

3) членораздельной речи

4) передразниванию кого-либо

16. Дарвин считал, что в основе разнообразия видов лежат

1) наследственная изменчивость и естественный отбор

2) способность к неограниченному размножению и распро­странению

3) географическая изоляция

4) приобретенные в течение жизни признаки

17. Приспособления к распространению семян животны­ми есть у

1) клена

2) липы

3) рябины

4)акации

18. Примером мимикрии является чередование полос раз­ного цвета на теле

1) некоторых мух

2) зебр

3) жирафов

4)енотов

ТОГБУЗ «ГКБ им. Арх. Луки г. Тамбова»

28 ноября 2019 года операционным блоком ТОГБУЗ «ГКБ им. Арх Луки г. Тамбова» было проведено очередное занятие школы практического мастерства.

 

Деконтаминация – процесс удаления и уничтожения микроорганизмов с целью обезвреживания и защиты, включающий в себя очистку, дезинфекцию и стерилизацию.

 

Очистка – процесс, в результате которого инородные тела (микроорганизмы) удаляются с поверхности объекта. Дезинфекция – процесс, уменьшающий количество патогенных микроорганизмов, кроме бактериальных спор. Стерилизация – процесс уничтожения всех микроорганизмов, включая бактериальные споры.

Деконтаминация изделий медицинского назначения – снижение количества микроорганизмов на изделиях медицинского назначения. Поэтому очень важно правильно обеззараживать медицинские изделия. Качество дезинфекции можно оценить с помощью смывов на определение золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Дезинфекция считается эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Методы очистки:

1. Механическая очистка.
2. Ручная очистка.
3. Ультразвуковая очистка.
4. Применение порошков и специальных дез. средств.

Уровни дезинфекции:

1. Высокий – уничтожение всех микроорганизмов, кроме спор бактерий.
2. Средний – уничтожение бактерий, вирусов, грибов, микобактерий туберкулеза.
3. Низкий – уничтожение большинства бактерий, отдельных видов вирусов и грибов.

 

Обработка медицинских инструментов включает в себя дезинфекцию, предстерилизационную очистку и собственно стерилизацию.

Средства химической дезинфекции наиболее часто используется в ЛПУ. Большинство таких средств по химическому составу можно разделить на 7 групп:
– В состав галогенсодержащих веществ входят в качестве активного действующего вещества хлор, бром, йод.
– В кислородсодержащей группе препаратов действующим веществом является кислород, выделяющийся из перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот.
– Средства на основе катионных поверхностно-активных веществ (ПАВы) представляются весьма перспективными, так как позволют совмещать дезинфекцию и предстерилизационную обработку. ПАВы не вызывают коррозию медицинских инструментов.
– Гуанидсодержащие средства созданы на основе сложных органических соединений. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов.
– В состав альдегидсодержащих средств входят глутаровый или янтарный альдегид. Препараты этой группы обладают выраженным бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным, спороцидным действием. Вместе с тем они отрицательно действуют на макроорганизмы. Часть этих дез. средств может использоваться не только для дезинфекции, но и для стерилизации инструментария, а также для проведения дезинфекции эндоскопического оборудования по режиму ДВУ.
– Спирты. Это группа препаратов на основе этанола, пропанола, изопропанола.
– Фенолсодержащие препараты эффективны для проведения текущей и заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза для обеззараживания биоматериала от больных.

Стерилизация. Методы стерилизации инструментов и медицинских изделий

Стерилиза́ция (иногда деконтаминация) – освобождение какого-либо предмета или материала от всех видов микроорганизмов (включая бактерии и их споры, грибы, вирусы и прионы), либо их уничтожение.

Этапы стерилизации:

1. Дезинфекция.
2. Предстерилизационная очистка.
3. Сборка, группировка,размещение.
4. Стерилизация.
5. Постстерилизационная обработка.
6. Контроль стерилизации.
7. Транспортировка и хранение.

 

Как проводят дезинфекцию изделий:

– Медицинские изделия погружают в дезраствор сразу же после их использования. При этом дезраствор должен полностью покрывать инструменты не менее 1 см над их поверхностью. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не оставалось пузырьков воздуха.

– Хлорсодержащие средства, например, Де-Хлор, Хлорсепт, применяют в основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала.

 
– Для дезинфекции многоразового металлического инструментария рекомендуется использовать препараты, которые не вызывают коррозии.

– По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают.

Предстерилизационная обработка:

О качестве же дезинфекции и предстерилизационной подготовки медицинского инструментария судят по результатам постановки азопирамовой пробы. Проверке подлежит 1% изделий от партии, но не менее трех единиц.

Методы стерилизации:

– Термическая: паровая и воздушная (сухожаровая).
– Химическая: газовая или химическими растворами (стерилянтами).
– Плазменная и озоновая (плазмой перекиси водорода).
– Радиационная стерилизация — применяется в промышленном варианте.
– Метод мембранных фильтров — применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации (бактериофаг, селективные питательные среды, антибиотики).

 

Деконтаминация включает в себя все виды уборок.

Выделяют пять видов уборки:

Предварительная уборка – ежедневно утром перед началом работы. Главной её целью является удаление осевшей за ночь пыли на горизонтальных поверхностях предметов и самой операционной. При этом сначала протирают чистой сухой ветошью полированные и никелированные поверхности мебели и оборудования. Затем влажной ветошью протирают операционные столы и завершают уборку подтиранием пола.

Текущая уборка – выполняют во время операции. Несмотря на то, что около операционного стола ставят тазик для использованного материала, на пол могут упасть салфетки, инструменты и использованное операционное бельё, их тотчас убирают в специальные ёмкости. При выполнении операции на органах живота на пол попадает содержимое брюшной полости, которое убирают чистой ветошью. После этого пол протирают дезраствором.

Послеоперационная уборка – по завершении оперативного вмешательства. Она состоит в удалении из операционной всего, что использовали во время операции и не потребуется в дальнейшей работе. Меняют бельё на операционном столе, приводят в порядок состояние не стерильных столов, пополняют запасы растворов. В заключение протирают пол влажной ветошью, подготавливая таким образом помещение к следующей операции.

Заключительная уборка – ежедневно в конце рабочего дня., во время которой помимо удаления использованного материала, белья, инструментов проверяют готовность аппаратуры и различных устройств, протирают их влажной или сухой чистой ветошью. Рамы, стёкла и подоконники, светильники, мебель и калориферы центрального отопления протирают влажной ветошью. По окончании уборки операционный стол, наркозный аппарат и другую аппаратуру покрывают чистой простынёй.

Плановая дезинфекция (генеральная уборка) – в конце рабочей недели в операционной и в конце месяца во всём операционном блоке.

Генеральная уборка (плановая дезинфекция), проводится в соответствии с графиком, один раз в неделю, о чем делается отметка в журнале проведения генеральных уборок. После дезинфекции помещения операционного блока и перевязочных облучают ультрафиолетовым излучением (прямым или отраженным), включая настенные или потолочные бактерицидные облучатели.

Антисептика кожи рук предусматривает применение химических веществ, обладающих антимикробным действием, предназначенных для деконтаминации микрофлоры рук. В зависимости от поставленной цели к требуемой степени деконтаминации различают: гигиеническую и хирургическую антисептику рук.

 

Правила обработки рук медицинского персонала и кожных покровов пациентов:

1. В целях профилактики ИСМП обеззараживанию подлежат руки медицинских работников (гигиеническая обработка рук, обработка рук хирургов) и кожные покровы пациентов (обработка операционного и инъекционного полей, локтевых сгибов доноров, санитарная обработка кожных покровов).

2. Для достижения эффективного мытья и обеззараживания рук необходимо соблюдать следующие условия: коротко подстриженные ногти, отсутствие лака на ногтях, отсутствие искусственных ногтей, отсутствие на руках колец, перстней и других ювелирных украшений. Перед обработкой рук хирургов необходимо снять также часы, браслеты и пр. Для высушивания рук применяют чистые тканевые полотенца или бумажные салфетки однократного использования, при обработке рук хирургов — только стерильные тканевые.

 

Офтальмологический центр

Оказывает специализированную офтальмологическую консультативно-диагностическую помощь при болезнях и травмах глаз и его придаточного аппарата. На сегодняшний день основные направления работы офтальмологического кабинета состоят в следующем:

  • Осуществление амбулаторного приема (диагностика и лечение) пациентов с различными заболеваниями глаз и его придаточного аппарата.
  • Подготовка больных к плановым операциям по поводу катаракты и глаукомы.
  • Оказание экстренной специализированной помощи населению при неотложных состояниях.
  • Участие в проведение профилактических медицинских осмотров для работающего населения и учащихся РУДН.

Определение остроты зрения на диспансерном приемеПроведение авторефрактометрии

Проведение авторефрактометрии (позволяет определить миопию, дальнозоркость, астигматизм и узнать степень этих нарушений, отличить виды астигматизма (хрусталиковый, роговичный).

 

Определение рефракции пациента на авторефрактокератометре.

Процедура безболезненна, выполняется в течение считанных минут любому пациенту. Расшифровку данных должен выполнять только офтальмолог, особенно если этот вид диагностики выполнялся без применения глазных капель, расширяющих зрачок.

 

Амбулаторный прием пациентаПроведение биомикроскопии глаза на амбулаторном приемеПроведение компьютерной перемирии

Эта современная методика выявляет на ранних стадиях многие изменения зрительной системы, а ежегодные наблюдения за периметрией глаз позволяет максимально точно и эффективно разработать курс лечения.

Определение рефракции пациента

Оказывает специализированную офтальмологическую консультативно-диагностическую помощь при болезнях и травмах глаз и его придаточного аппарата.

Располагает новейшим высокотехнологичным оборудованием, а сочетание с квалифицированными специалистами обеспечивает индивидуальный подход к пациенту в каждом отдельном случае. Все эти составляющие в комплексе позволяют эффективно оценить состояние пациента, выявить причины заболеваний глаз и помогают достичь наилучшего результата.

Обращайтесь к нам, если появились признаки:

  • утомление глаз после зрительной нагрузки;
  • снижение остроты зрения;
  • ощущение сухости, жжения или инородного тела в глазах;
  • гнойные выделения;
  • выпадение участка изображения;
  • а также если у вас возникла необходимость коррекции зрения.

Мы предлагаем полный комплекс диагностических услуг:

  • контактная (бесконтактная) биометрия,
  • тонометрия,
  • авторефрактометрия,
  • визометрия,
  • офтальмоскопия,
  • биомикроскопия,
  • компьютерная периметрия.

Мы осуществляется диагностика и лечение зрительного компьютерного синдрома, синдрома «сухого глаза», воспалительных заболеваний переднего отрезка глаз: конъюнктивы и век, в том числе, демодекозных. Проводится удаление инородних тел роговицы и конъюнктивы глаза.

Щелевая лампа

Биомикроскопия дает возможность выявить мельчайшие изменения в глазу, обнаружить мелкие инородные тела и определить глубину расположения патологического процесса. Биомикроскопия имеет очень важное значение для диагностики прободных ранений роговой оболочки и других заболеваний глаза.

Рабочее место офтальмолога, оснащенное авторефрактометром, проектором знаков и фороптором

Прибор наделен самой первоклассной конструкцией, точными современными средствами измерения и запатентованной технологией автоюстировки. Пациент просто наклоняется вперед, упираясь лбом в подголовник, и фиксирует свой взгляд на зеленой точке в качестве ориентира, а все остальное делает сам прибор.

 

Пневмотонометр

Тонометр бесконтактный — цифровой прибор, используемый в офтальмологии для определения показателя внутриглазного давления. Входит в число наиболее информативных инструментов функциональной диагностики состояния органов зрения.

Операционный офтальмологический блок является самостоятельным функционирующим подразделением, цель которого обеспечить постоянное и своевременное проведение оперативных вмешательств на переднем и заднем отрезке глаза. Операционная оснащается современной диагностической аппаратурой, микроскопом, хирургической системой, например, комбинированными системами фако-витрео для проведения операций на переднем и заднем отрезках глаза. Кроме того, операционная оснащается современными микрохирургическими инструментами и расходными материалами.

Современный офтальмологический операционный стол

Многофункциональный четырехсекционный стол для для глазной хирургии. Операционный стол электромеханическим механизмом и аккумулятором. Высокая устойчивость Y-образной алюминиевый колонны обеспечивает хирургу максимальное пространство для ног, дновременно обеспечивая полный доступ к пациенту. А также создает максимальный комфорт для пациента во время операции.Электронное управление позволяют легко и комфортно управлять столом или его частями одному человеку. Ножной джойстик управления подъемом всего стола и головной секции вверх/вниз. 

Высококачественная бесшовная обивка: комфортная, гигиеническая, антибактериальная, негорючая, водостойкая, плесенеустойчивая, облегчает процесс стерилизации.

 

Факоэмульсификатор

Основной инструмент офтальмолога-хирурга — факоэмульсификатор, микрохирургический прибор для деструкции ядра хрусталика. Модульная система для факоэмульсификации и витрэктомии. Новый уровень удобства, гибкости и эффективности при проведении операции.

Офтальмологический операционный микроскоп Carl Zeiss

С функциями, интегрированными в OPMI LUMERA 700, вы оптимально подготовлены не только к операциям катаракты и сетчатки глаза на следующий день, но также и к будущему.

 

Операционный стол

 

 

Сотрудники офтальмологического центра с делегацией из Дацинского офтальмологического госпиталя (КНР)

мнение ветеринарного врача ʕᵔᴥᵔʔ ЗооВита ветеринарные клиники в Казани

Необходима ли стерилизация кошек? И в каком возрасте проводить стерилизацию?

Стерилизацию проводить нужно, если только животное не участвует в племенном разведении. В противном случае, не стерилизованные питомцы дают потомство, вынужденное выживать. Бессчетное количество кошек и собак в поисках пищи и крыши над головой погибает на улице. Случается, если у всеобщих домашних любимцев появляется нежелательное потомство, новорожденных малышей просто топят.

Провести эту операцию желательно до первой течки, так как беременность и роды — серьезный стресс для организма. Однако, течка не является противопоказанием к стерилизации.

Чтобы избежать задержек в развитии, оптимальным для стерилизации возрастом будет 6 месяцев — 1 год, к этому периоду у кошек наступает физиологическая зрелость. В этом возрасте они не только могут забеременеть, но и в случае, если беременность не наступает, животное может доставить массу дискомфорта всем членам семьи. Кошка будет пытаться убежать в подъезд или на улицу в поисках пары, или кричать «дурным» голосом, особенно в ночное время.

Стерилизация до первой течки – самая эффективная профилактика патологии молочной железы. Так же стерилизация способствует предотвращению серьезных заболеваний репродуктивной системы, таких как: аденома и пиометра (гнойное воспаление матки). Как результат, по статистике стерилизованные кошки и собаки живут дольше: их жизнь более спокойна и размеренна, они не испытывают периодических гормональных всплесков и не стремятся к контакту с агрессивной уличной средой.

На улице у животного может возникнуть множество различных проблем:

  • Заражение паразитарными, инфекционными заболеваниями, особенно во время контакта с бездомными животными.
  • Травматизация.



Ветклиника «ЗооВита»: кошка с травмой

ФАМ — фиброаденоматоз молочной железы

Наталия Евгеньевна, можно ли в качестве альтернативы хирургическому вмешательству давать животным гормональные таблетки с целью подавить половую охоту?

Противозачаточные средства резко нарушают гормональный фон животного, в итоге течка лишь откладывается на какое-то время. Гормональные препараты проблему не решают, их прием отодвигает операцию на более поздний срок — тогда велика вероятность, что потребуется уже другое вмешательство. Побочные эффекты, вызванные применением гормональных средств, проявляются в заболеваниях молочной железы, яичники и матка также могут быть вовлечены в патологический процесс.

Давать гормональные таблетки небезопасно, особенно, если планируете делать это длительно, либо постоянно. Дача гормональных контрацептивов неизменно повлечет ряд проблем со здоровьем, в некоторых случаях необратимых и даже приводящих к гибели питомца.

Решает проблему качественно проведенная операция по стерилизации.

Какой способ стерилизации выбрать: традиционный (обычный) или эндоскопический?

У каждого метода есть плюсы и минусы.

ПРЕИМУЩЕСТВА ЭНДОСКОПИЧЕСКОЙ СТЕРИЛИЗАЦИИ

Безопасность и малотравматичность

Эндоскопическая стерилизация — это современный метод, при котором удаление яичников (при необходимости и матки) проводится специальными манипуляторами через пару незначительных проколов брюшной стенки размером всего 5 мм, т.е. повреждение тканей — минимально. Благодаря крошечности операционного разреза налицо эстетический эффект.

При этом важную роль играет чистота при хирургическом вмешательстве. Поскольку во время эндоскопической стерилизации отсутствует влияние окружающей среды и прямой контакт доктора с внутренними органами — возможность инфицирования брюшной полости стремится к нулю, также отпадает необходимость в послеоперационной терапии антибиотиками.




Подготовка к эндоскопической операции

Шов после эндоскопической стерилизации

Возможность ранней диагностики

Неоспоримым плюсом является и то, что при эндоскопической стерилизации можно заметить патологии внутренних органов, изменения в которых клинически еще не проявились. Как это работает: для беспрепятственного осмотра оперативного пространства брюшная полость заполняется углекислым газом, затем в прокол вводится видеокамера, так у доктора появляется возможность свободно видеть не только оперируемые, но и другие органы, что невозможно сделать при обычной операции.

Отсутствие риска возобновления течки

При эндоскопической стерилизации отсутствует риск недоудалить яичники. После обычной стерилизации, как известно, у кошек, а иногда и у собак при оставленной даже небольшой части яичника, порой даже невидимой глазу, развивается овариореминантный синдром. Когда маленькая часть яичника образует кисты, продуцирует гормоны, что приводит к появлению симптомов половой охоты у кошек и признаков течки у сук. В случае появления овариореминантного синдрома в результате предыдущих операций, эндоскопическая операция является оптимальным методом устранения проблемы.

Минимум дискомфорта как для животного, так и для его владельца

Большинство животных не любят, когда их движения чем-то ограничены. Послеоперационная попона (фартук), которая надевается на кошку при обычной операции, туго фиксируется завязками на спине и сковывает движение около 10 дней, что может привести к стрессу, потере аппетита. Это оправданная мера: при обычной стерилизации попона необходима, чтобы защитить постоперационную рану от патогенной микрофлоры, предотвратить попытки питомца расчесать и вылизать живот. Давящая повязка стягивает края раны, тем самым способствуя заживлению по натяжению.




После обычной стерилизации

Шов после обычной стерилизации

После эндоскопической стерилизации — попона не нужна, не нужен дополнительный тщательный уход за швами, которые после обычной стерилизации могут загноиться или разойтись. Если вашему питомцу провели эндоскопическую операцию, приходить повторно в клинику для снятия швов не нужно, потому что ран и, соответственно, швов при такой стерилизации — нет.

Быстрая и безболезненная реабилитация

Большое преимущество эндоскопической стерилизации для собак служебных и охотничьих пород в том, что данный вид стерилизации позволяет животному в короткие сроки после операции восстановить работоспособность. Поскольку эндоскопическая стерилизация малотравматична, слабо выражен болевой синдром. Послеоперационный период проходит очень легко — большинство животных уже через сутки ведут обычный образ жизни.

Плюсом обычной операции можно назвать ее стоимость относительно эндоскопической стерилизации.

Преимущества эндоскопической операции перед обычной очевидны. Но все же: кому и когда нельзя проводить эндоскопическую стерилизацию, есть ли ограничения?

Как и любое хирургическое вмешательство, эндоскопическая стерилизация имеет те же основные противопоказания, что и обычная.

  • Беременность. В этот период нельзя проводить операцию, за исключением крайних случаев, когда есть медицинские показания для удаления матки. Во время беременности матка сильно увеличивается в размерах, при операции возникает риск сильного кровотечения, увеличивается реабилитационный период и в дальнейшем неизвестно: сможет ли животное полностью восстановиться.
  • Заболевания сердца. Важно знать, у некоторых животных есть породная предрасположенность к патологиям сердца, это: мейн-куны, британские кошки и некоторые другие породы. Для выявления возможных проблем проводится кардиологическое обследование.
  • Онкологические заболевания.
  • Острые воспалительные процессы.

В некоторых случаях потребуется сначала животное вылечить, а потом уже оперировать. Иногда от эндоскопической операции и вовсе приходится отказаться, прибегая к альтернативным методам. Всё зависит от конкретного животного и ситуации.




Им нужна наша забота

Мы рядом!

С методом определились. Какие условия нужно соблюсти до и после стерилизации?

До операции, вне зависимости от метода, потребуется провести подготовительные мероприятия, при необходимости взять анализы, назначить дополнительные исследования. Животное должно подходить по возрасту, быть здоровым и в хорошем самочувствии. Основная часть подготовки — организация голодного режима. Кормить животное нельзя 12 часов до операции. Воду нельзя давать за 3-4 часа до операции.

На эндоскопическую стерилизацию в среднем требуется около 15-30 мин. Продолжительность процедуры доктор определит после того, как предварительно осмотрит животное. Длительность операции иногда даже меньше, чем при обычной стерилизации из-за сокращения времени, которое тратится на наложение послеоперационных швов. После стерилизации животное остается у нас в клинике и выходит из наркоза под контролем врача.

После малотравматичного хирургического вмешательства не требуется какого-то особого ухода. Однако, лучше следить за состоянием питомца первые 2 дня. На этот счет наш доктор дает четкие рекомендации по домашнему уходу. В том числе нужно учесть, что в период реабилитации следует оградить прооперированное животное от взаимодействия с маленькими детьми и другими животными. Нельзя выпускать его на улицу, допускать к активным играм, поднимать за передние лапы, давить на живот и перекармливать.

Наталия Евгеньевна, что Вы порекомендуете тем, кто решился на стерилизацию питомца?

Советую принимать решение о методе стерилизации после консультации с вашим ветеринарным врачом и, во избежание возможных нежелательных последствий, стараться неукоснительно соблюдать его предписания.

Проявляйте заботу о своем питомце, который доверят вам и принимает ваш выбор, и четвероногий друг будет радовать вас своим состоянием здоровья и хорошим настроением.

Интерьвью подготовлено
Ветеринарная клиника «ЗооВита»

О клинике

     Приветствуем Вас на сайте Клиники семейной стоматологии «Парадиз Денталь»!

 С момента, открытия и в течении 10 лет,  мы ежедневно доказываем своей работой, что стоматологическая помощь может быть профессиональной, качественной , быстрой и доступной. Диагностика и лечение проводятся по всем основным направлениям стоматологии: терапия, пародонтология , хирургия  и имплантация, ортопедия, микропротезирование,  ортодонтия, отбеливание , детская стоматология, рентгенодиагностика с возможностью получать высокоточные 3D-изображения, а также наличие собственной  зуботехнической  лаборатории и CAD CAM центра , что позволяет изготавливать различные стоматологические  конструкции в оптимальные сроки и с высоким качеством.

     В нашей клинике мы создали все условия для того чтобы  нести людям качественную стоматологическую помощь для обеспечения и сохранения здоровья, красоты и полноценного долголетия .Современное инновационное оснащение, уникальные передовые технологии, грамотные специалисты и комфортная  обстановка позволяют  нам рассчитывать на  признание и любовь наших пациентов. Мы, в первую очередь, заботимся об их здоровье. Стоматология для нас — это не просто    работа, это наше  призвание.

    В составе коллектива нашей  клиники  работают более 76 человек . Прием ведут  25 врачей-специалистов  по разным направлениям  стоматологии: терапевты, пародонтологи,хирурги-имплантологи,ортопеды, ортодонты, детские стоматологи, а так же работают зубные техники, ассистенты , рентгенолаборанты и администраторы. Наши врачи грамотные , опытные специалисты, все они регулярно проходят обучение и практическую  стажировку в ведущих российских и зарубежных учебных центрах и ежегодно совершенствуют свои знания. За время работы клиники наши врачи  получили более  20 международных сертификатов и свидетельств, прошли 300 лекционно-практических  курсов усовершенствования, приняли  участие в 20 конгрессах, симпозиумах , выставках . Квалифицированная стоматологическая помощь – это гарантия качественного лечения.

      Клиника «Парадиз Денталь » – многопрофильная, оснащённая высокотехнологичном медицинским оборудованием ведущих мировых производителей. Созданы и работают  17 современно оснащенных кабинетов : 5 — терапевтических , 3- детской стоматологии , 2- пародонтологических, 4- ортопедических, 2 – хирургических, операционная , кабинет ортодонтии , кабинет рентгенодиагностики , собственная зуботехническая лаборатория.

     За 10 лет  специалистами клиники проведено более 500 000 приемов, оказана комплексная стоматологическая помощь более 50 000 пациентов ,  каждый из них важен для нас и мы заботимся  о том , чтобы работа нашей клиники была четко  организована  . Мы обеспечиваем комфортное и безопасное лечение с соблюдением самых высоких современных стандартов. Врач и ассистент работают с пациентом в «четыре руки», что гарантирует  максимально быстрое и эффективное проведение любых манипуляций. Лечение в стоматологической  клинике «Парадиз Денталь» —проводится под эффективным обезболиванием, с использованием самых современных анестетиков, что делает процедуру  максимально безболезненной . Мы применяем продвинутые  современные методики и технологии, используем стоматологические материалы самого высокого качества от эксклюзивных импортеров  .  

    Нашим пациентам гарантирована надежная стоматологическая помощь и абсолютная безопасность при лечении. Комплекс мероприятий по стерилизации «АнтиСПИД» и « АнтиГепатит» обеспечивает полную инфекционную безопасность. В нашей   клинике создан и работает отдельный, специально оборудованный центр стерилизационной  обработки , где все инструменты проходят многоступенчатую обработку химическую, высокотемпературную путём автоклавирования современными аппаратами, бактерицидную и ультразвуковую. А всё, что в стоматологии должно быть одноразовым – применяется в нашей клинике только один раз. Стерилизация воздуха в кабинетах проводится бактерицидными рециркуляторами.

       Современная стоматология – невозможна без качественного сервиса . В нашей клинике создана максимально благоприятная и комфортная обстановка для всей семьи и  для посещения пациентами любого возраста. Вас всегда с улыбкой  встретят и проводят   доброжелательные администраторы, предложат чашечку ароматного кофе или вкусного чая, вы сможете удобно расположиться в зоне отдыха и полистать свежую прессу . А наших маленьких пациентов всегда ждет яркая  игровая зона, интересные мультфильмы   во время приема  и приятные сюрпризы по окончанию лечения .

       Поверьте, что наши услуги для Вас не только эффективны, качественны и безопасны  и комфортны . И мы делаем всё возможное для того, чтобы после посещения нашей  клиники  у Вас остались самые хорошие впечатления, ну и, конечно же  здоровая, красивая , белоснежная улыбка.  «Парадиз  Денталь» ждет Вас !

Методы стерилизации хирургических инструментов

Стерилизация — это уничтожение всех микроорганизмов на медицинских инструментах, которые вступают в контакт с открытыми ранами, жидкостями организма и слизистыми оболочками. Само собой разумеется, что хирургические инструменты — это такие устройства, которые требуют регулярной стерилизации.

Перед стерилизацией инструменты должны пройти несколько предварительных стадий очистки и дезинфекции. Дезинфекция высокого уровня достигается кипячением или химической обработкой.Считается, что дезинфекция холодным раствором, хотя и считается более агрессивной, имеет минимальный эффект притупления по сравнению с кипячением. Большинство производителей не рекомендуют холодную стерилизацию, поскольку длительное погружение в растворы, необходимые для стерилизации, может повредить инструменты. Как только это произойдет, невозможно будет проверить их бесплодие.

Автоклавирование, вероятно, самый распространенный, быстрый и безопасный метод стерилизации. Другой метод термической обработки — стерилизация сухим жаром.В сухой среде споры бактерий могут дольше выдерживать более высокие температуры. Это означает, что для стерилизации этим методом требуется больше времени и более высокие температуры по сравнению с автоклавированием.

Стерилизация стеклянными шариками используется в качестве метода вторичной тепловой стерилизации для быстрой обработки наконечников инструментов или твердых металлических частей. Инфракрасная стерилизация иногда используется для стоматологических и микрохирургических инструментов. В ходе этого процесса инструменты подвергаются кратковременному мощному тепловому воздействию инфракрасного излучения.

Газовая стерилизация оксидом этилена может использоваться для чувствительных к теплу или влажности инструментов. Этот метод наносит минимальный ущерб. Поэтому его используют для обработки оптических, ценных и прецизионных инструментов. Однако ETO — токсичный газ, и стерилизованные предметы перед использованием необходимо проветрить. Это значительно увеличивает время обработки.

Стерилизация перекисью водорода — второй по популярности метод низкотемпературной стерилизации. Существует 2 типа стерилизации h3O2: в одном просто используется испаренная перекись водорода, а в другом также используется плазма, генерируемая электромагнитным излучением.Оба типа не оставляют токсичных побочных продуктов и остатков. Однако стерилизация паром h3O2 требует аэрации. h3O2 является сильным окислителем и может не подходить для некоторых типов материалов.

Правильная стерилизация и повторная обработка максимально защищают ваши инструменты. Однако нормальный износ все равно будет. Компании по ремонту хирургических инструментов, такие как US Medical Systems, помогут вам поддерживать ваши инструменты в хорошем состоянии. Ваши пациенты получат высочайшее качество обслуживания, а вы сможете продлить срок службы ваших инструментов.Позвоните нам сегодня, чтобы узнать о наших биомедицинских услугах по ремонту хирургических инструментов.

Современные концепции стерилизации операционных

Инфекции в области хирургического вмешательства (ИОХВ) являются второй наиболее частой причиной внутрибольничных (нозокомиальных) инфекций. Эти осложнения хирургических вмешательств вызывают значительную заболеваемость. Источник SSI может быть эндогенным или экзогенным, что включает хирургический персонал, среду операционной (включая воздух), а также инструменты, инструменты и материалы, доставленные в стерильное поле во время операции.Поддерживая стерильную среду в операционной, мы можем контролировать большую часть экзогенных инфекций. Джозеф Листер (1827–1912), профессор лондонской больницы Королевского колледжа, был одним из первых, кто осознал важность стерилизации. Он применил микробную теорию болезни Пастера, согласно которой невидимые микробы вызывают болезнь, к хирургии, таким образом обнаружив современную антисептическую хирургию. Асептическая техника — это набор конкретных практик и процедур, выполняемых в тщательно контролируемых условиях с целью минимизировать заражение патогенами.

Базовая архитектура операционных залов: —

Четыре зоны могут быть описаны в комплексе OT [1], основанном на различной степени чистоты, в которой количество бактерий постепенно уменьшается от внешней к внутренней зоне (рабочая зона) и поддерживается за счет разницы в уменьшающемся градиенте вентиляции с положительным давлением. из внутренней зоны во внешнюю.

(1) Защитная зона: включает комнаты для переодевания для всего медицинского и парамедицинского персонала с удобствами, перегрузочную площадку для пациентов, материалов и оборудования
— Комнаты для административного персонала
— Магазины и записи
— Комнаты до и после операции
— Стерильные склады

(2) Чистая зона: соединяет защитную зону с асептической зоной и имеет другие зоны, такие как магазины и уборные
— Склад оборудования
— Мастерская технического обслуживания
— Кухня (кладовая)
— Комната пожарных устройств
— Аварийные выходы
— Помещение для обслуживания персонала
— Зона управления телевизором с замкнутым контуром

(3) Асептическая зона: включает операционные (стерильные)

(4) Зона утилизации: зоны утилизации из каждой операционной и коридор, ведущий в зону утилизации

Операционная зона

Количество и размер операционных могут соответствовать требованиям, но рекомендуемый размер — 6.5 м х 6,5 м х 3,5 м. Главные двери комплекса OT должны быть соответствующей ширины (от 1,2 до 1,5 м). Двери каждого ОТ должны иметь подпружиненный тип створок, но раздвижные двери предпочтительнее, поскольку не образуются воздушные потоки. Вся арматура в OT должна быть заподлицо и изготовлена ​​из стали. Поверхность / пол должны быть устойчивыми к скольжению, прочными и непроницаемыми с минимальным количеством стыков (например, мозаика с медными пластинами для антистатического эффекта) или менее проводящей плиткой / терраццо, линолеумом и т. Д. чтобы облегчить очистку и избежать застаивания воды или загрязнений.В настоящее время потребность в антистатических покрытиях уменьшилась, поскольку легковоспламеняющиеся анестетики больше не используются. Стены — Ламинированный полиэстер или гладкая краска обеспечивают бесшовную стену; плитка может треснуть, а эпоксидная краска отслоиться. Углы сговора должны быть покрыты стальными или алюминиевыми пластинами, цвет краски должен позволять отражать свет и успокаивать глаза. Идеально подойдет моющаяся краска светлого (голубого или зеленого цвета). Полуматовая поверхность стены отражает меньше света, чем глянцевая отделка, и менее утомительна для глаз команды OT.Рекомендуется один операционный стол на одно ОТ. Электрическая розетка: Соответствующие электрические розетки на стене (на высоте <1,5 м от пола). Электропроводка должна быть сдвоенной, а заземление - в утопленном пластиковом или металлическом кабелепроводе. Системы IPS / UPS должны быть предоставлены и размещены в производственном помещении. Утопленные герметичные люминесцентные светильники рекомендуются для всех помещений, обычно с призматическим контролем и регулируемой яркостью для театров.

Базовое обслуживание операционных

I. ВЕНТИЛЯЦИЯ

Принцип вентиляции в операционной заключается в подаче отфильтрованного воздуха с положительным давлением вертикальным однонаправленным потоком над операционным столом.Текущие минимальные требования Службы общественного здравоохранения США к оптимальному воздуху в операционных: температура 18-24 ° C, влажность 55-80% и 25 изменений в час. [2,3] Ламинарные воздушные завесы или радиальный экспоненциальный поток воздуха рисунок вдали от операционного поля особенно полезны. В хирургической операционной, где есть помещения для большинства хирургических вмешательств, рекомендуемое количество бактерий в воздухе не должно превышать л / фут3 (35,5 / м3) [4]. Воздух, поступающий в операционную из фильтров, не должен содержать более 0.5 / м3 частиц, содержащих бактерии. Кроме того, содержание содержащих бактерии частиц воздуха в пределах 30 см от места эксплуатации не должно превышать 10 / м3, а в остальной части операционной — не более 20 / м3.

II. ЧИСТКА

Очистка является наиболее важной при обслуживании операционных, даже больше, чем стерилизация и дезинфекция, поскольку она удаляет загрязнения, пыль и органические вещества. Поддерживая пол чистым и сухим, бактерии уменьшаются. Сухие места вызывают естественную гибель бактерий, кроме спор.Пол следует мыть пылесосом или мокрыми швабрами. Использование веников не рекомендуется, так как это увеличивает бактериальную флору в окружающей среде. Простое моющее средство уменьшает флору на 80%. Добавление дезинфицирующего средства сокращается до 95%. Не следует беспокоить крыши без надобности, следует избегать использования потолочных вентиляторов, так как они вызывают распространение аэрозолей. Чистка кровель рекомендуется только при перепланировке или скоплении пыли. Стены следует мыть водой с дезинфицирующим средством еженедельно. В перерывах между операциями рекомендуется точечная очистка операционных столов, театрального оборудования дезинфицирующим раствором.В случае разлива крови / биологических жидкостей необходимо провести дезактивацию хлорной извести / хлорным раствором. Отходы следует выбрасывать в специальные пластиковые пакеты. Запрещается выбрасывать грязные халаты в операционную. В конце дня следует очистить все раковины на столешницах, дверные ручки моющим средством / низким уровнем дезинфицирующего средства, полы моющими средствами, смешанными с теплой водой, и, наконец, протереть шваброй с помощью дезинфицирующего средства, такого как фенол, в концентрации 1:10. График уборки приведен в (Таблица 1).

Фильтр кондиционера следует снимать и промывать водой с мылом еженедельно.

III. ДЕЗИНФЕКЦИЯ

Существует три уровня дезинфекции: высокий, средний и низкий.

Дезинфекция высокого уровня убивает все организмы, за исключением высоких уровней бактериальных спор и прионов, и осуществляется с помощью химического гермицида, разрешенного для продажи в качестве стерилизатора Управлением по контролю за продуктами и лекарствами, например, агентов на основе глутральдегида и ортофтальдегида (доступны в Индии) .

Дезинфекция промежуточного уровня убивает микобактерии, большинство вирусов и бактерий с помощью химического гермицида, зарегистрированного Агентством по охране окружающей среды (EPA) как туберкулоцид.

Низкоуровневая дезинфекция убивает некоторые вирусы и бактерии с помощью химического бактерицида, зарегистрированного Агентством по охране окружающей среды в качестве больничного дезинфицирующего средства.

A. Химическая дезинфекция:

Фумигация формальдегидом: Обычно используется для стерилизации ОТ. Для площади 1000 кубических футов нам потребуется 500 мл 40% формальдегида в одном литре воды, плита или электрическая плита для нагрева формалина и 300 мл 10% аммиака. Все двери и окна должны быть герметично закрыты, а вентиляторы и A.C. выключить и раствор формалина нагреть до кипения. ОТ должен оставаться запечатанным на ночь. Нейтрализация паров формальдегида проводится с использованием 300 мл аммиака на 1 литр формальдегида, затем ОТ может быть открыт для начала операции. Рекомендуется проводить фумигацию с еженедельными интервалами

Механизм действия — Формальдегид инактивирует микроорганизмы путем алкилирования аминокислотных и сульфгидрильных групп белков и кольцевых атомов азота пуриновых оснований.
Управление охраны труда и здоровья OSHA указало формальдегид как потенциальный канцероген и ограничивает 8-часовую средневзвешенную концентрацию воздействия на уровне 0.75 ч. / Млн.

Прочие агенты

Стабилизированная Ecoshield перекись водорода 11% мас. / Об. И 0,01% мас. / Об., Разбавленный раствор нитрата серебра

Альдекол — формальдегид 6%, глутаральдегид 6% и хлорид бензалкония 5%. На 4000 куб.футов распыляют 325 альдекола в 350 мл воды в течение 30 минут. OT должно быть закрыто на 2 часа.

Бациллоцидный разант: новый и эффективный состав с очень хорошим соотношением цены и качества, хорошей совместимостью с материалами, отличными очищающими свойствами и практически без остатков.Его преимущество в том, что он является дезинфицирующим средством без формальдегида с низкой концентрацией использования. Активные ингредиенты: глутарал 100 мг / г, хлориды бензил-C12-18-алкилдиметиламмония 60 мг / г, хлорид дидецилдиметиламмония 60 мг / г. Это обеспечивает полную асептику в течение 30-60 минут. Очистка моющим средством или карболовой кислотой не требуется.

Бацилол — содержит этанол, 2-пропанол, 1-пропанол, может использоваться как спрей для дезинфекции поверхностей, не действует на споры. Используется для моментальной дезинфекции.

Б. Ультрафиолетовое излучение

Daily U.V. Рекомендуется облучение в течение 12-16 часов, которое следует выключить за 2 часа до входа в ОТ

Микробиологический мониторинг:

Мазки собирают из разных мест в ОТ каждые 2 недели и культивируют на кровяном агаре. Области, которые необходимо протереть, включают:
1. Рабочий стол на головном конце
2. Верхний светильник
3. Четыре стены
4. Пол под головным концом стола
5. Инструментальная тележка
6.Воздуховод переменного тока
7. Ручки микроскопа

Мониторинг качества воздуха

— Метод отстаиваемой чашки: помещают кровяной агар и агар с декстрозой Сабуро (SDA) и оставляют крышку открытой в течение 30 минут. Сообщается о подсчете колоний бактерий и грибов.
— Метод щелевого пробоотборника (из заданного объема): очень эффективный, высокочувствительный. Отсасывается фиксированный объем воздуха и производится подсчет бактерий.

Количество бактериальных колоний более 10 на чашку и более одной грибковой колонии на чашку считается неприемлемым

Хирургические инструменты

Подготовка инструментов к стерилизации

Американский комитет по сестринскому делу в операционной (AORN) [5] разработал рекомендации по уходу за хирургическими инструментами и их очистке.Первым шагом является отделение острых инструментов от тупых, после чего их следует разобрать как можно скорее после их использования. Очистка — это удаление всей грязи и органических веществ с обрабатываемого инструмента. Это можно сделать, промывая инструменты стерильной дистиллированной водой или механически с помощью ультразвука.

1. Ручная очистка включает ополаскивание холодной водой для удаления белковых материалов, затем чистку предметов щеткой с последующим ополаскиванием чистой водой и сушкой. Предпочтительна механическая очистка, поскольку она сводит к минимуму манипуляции и снижает риск контакта с инфекционными материалами.В ультразвуковом устройстве звуковые волны проходят в жидкости с частотой 100 000 Гц и образуют субмикроскопические пузырьки, которые позже взрываются и создают крошечный вакуум, который поднимает частицы с инструментов. [6] После извлечения инструментов из ультразвукового очистителя инструменты моются в четырех емкостях с минеральной водой и сушатся стерильным полотенцем

2. Смазка: смазка необходима при каждой обработке инструментов, что помогает инструментам оставаться чистыми, предотвращая накопление «запеченных» от протеиновых и минеральных отложений и позволяет более эффективно очищать моющими средствами.[7]

3. Упаковка: Большинство предметов, подлежащих стерилизации, следует упаковать или обернуть, чтобы предотвратить последующее загрязнение пылью, грязью и микроорганизмами.

Типы

Стерилизационные обертки: Стерилизационные обертки [8,9] (тканые и нетканые) доступны в различных размерах, сортах и ​​материалах. Они используются для лотков, сетчатых контейнеров, кассет и стеллажей, а также для штучных изделий

Пакеты для снятия кожуры используются, когда видимость инструмента критична для его эффективного использования.

Жесткие контейнеры: это специально разработанные емкости из жаропрочного металла, пластика или анодированного алюминия, используемые для упаковки предметов, обычно хирургических инструментов, для стерилизации. Крышки и / или нижние поверхности проницаемы для пара или газа

4. Стерилизация

После того, как обеззараженные инструменты собраны, упакованы и промаркированы, они готовы к стерилизации. Стерилизация — это процесс, который обеспечивает полное уничтожение или уничтожение всех микроорганизмов, включая споры бактерий.Предпочтительные методы стерилизации для различных типов инструментов приведены в таблице 2.

Стерилизация в основном осуществляется с помощью:
— пара под давлением (автоклав)
— сухого тепла (печь с горячим воздухом)
— химических агентов, таких как оксид этилена или низкотемпературных методов
— химической стерильности, как глутаральдегид 2%

A . Пар под давлением

Автоклав: стерилизация в автоклаве [10] — безопасный метод стерилизации; он убивает бактерии, споры, вирусы и грибок.[11,12] Для этого все предметы расположены внутри автоклава таким образом, чтобы пар мог свободно циркулировать. УПАКОВКА НЕ ДОЛЖНА выполняться При работе с инструментами необходимо носить перчатки, чтобы избежать заражения материала и порезов. Затем регулируется продолжительность, температура и давление. Отсчет времени должен начинаться после того, как автоклав достигнет желаемой температуры и давления. Автоклав следует открывать, когда манометр показывает «о». Перед использованием все предметы необходимо просушить. Мокрые пакеты следует считать нестерильными.Маркировка должна быть точной с указанием содержимого, даты обработки и срока годности.

Автоклавные инструменты следует использовать в течение 48 часов. Воду следует сливать ежедневно, чтобы не допустить оседания соли на инструментах и ​​в камере. Автоклав следует обслуживать один раз в 6 месяцев.

Автоклав Flash или высокоскоростной автоклав: Для автоклава Flash или высокоскоростного автоклава [13] инструменты сначала промывают чистой стерильной водой или дистиллированной водой. Это тип автоклавов с перемещением вниз под действием силы тяжести, который наполняется паром, вытесняет воздух вниз и выталкивает его из дренажного клапана.Канюли следует очищать отдельно раствором RL. Воду для очистки следует менять после очистки 4 или 5 комплектов.

B. Стерилизация сухим жаром

Менее предпочтительный в последнее время, но показан для многоразового стекла, металлических инструментов, масел, мазей и порошков. Все предметы необходимо очистить и высушить, а затем положить в металлический контейнер, нагреть до температуры выдержки (141–180 °) и выдержать в течение рекомендованного времени (от 3 часов до 30 минут). изделиям позволяют остыть в духовке до комнатной температуры, а затем их можно использовать или хранить.

C. Низкотемпературная стерилизация

Он используется для медицинских устройств, чувствительных к теплу и влаге. Типы включают:
— Стерилизация ETO
— Стерилизация плазмой

Стерилизация ETO (этиленоксидом): это алкилирующий агент, который вступает в реакцию с ДНК и разрушает способность микроорганизмов к метаболизму или воспроизводству. Этот метод был выбран для многих устройств, чувствительных к нагреванию и влаге, но в настоящее время вместо него часто используются новые методы стерилизации при низких температурах.Эффективная стерилизация ЭО зависит от концентрации стерилизующего средства, относительной влажности, температуры и времени воздействия. Для стерилизации ETO после загрузки стерилизатора воздух удаляют с помощью вакуума с последующим нагреванием до 45-55 ° C с относительной влажностью 60%. Требуемое воздействие ЭТО составляет до 12 часов при давлении 5 фунтов на квадратный дюйм и 6 часов при давлении 10 фунтов на квадратный дюйм с последующим удалением газа с помощью вакуума и 4-кратной продувкой воздухом.

Перекись водорода Плазменная стерилизация: Плазма определяется как сильно ионизированный газ, состоящий из ионов, электронов и нейтральных частиц.Плазма генерируется путем введения газа-прекурсора или пара (например, перекиси водорода или надуксусной кислоты) в камеру в условиях низкого вакуума с последующим возбуждением газа или пара с помощью микроволновой или радиочастотной энергии. [14] Время цикла составляет примерно 75 минут. У них есть особые потребности в упаковке, поскольку обертки, содержащие целлюлозу, несовместимы с процессами обработки перекиси водорода, поскольку они абсорбируют перекись и не обеспечивают эффективного проникновения. Предпочтительным материалом являются имеющиеся в продаже нетканые полипропиленовые обертки и пакеты из полиолефина.[15]

D. Химическая стерилизация

Cidex (глютеральдегид 2%) используется для химической стерилизации, которая обычно используется для стерилизации инструментов, в промежутках между случаями используются четыре лотка, один для хранения раствора Cidex, а затем три лотка для стерильной воды. Острые инструменты следует выдержать в активированном растворе Cidex (2% -ный глутаральдегид) в течение 15 минут, а затем промыть 3 раза стерильной водой в трех лотках. Эффективен против вегетативных патогенов через 15 минут и против спор через 3 часа.Споры через 3 часа. Глютеральдегид раздражает глаза и может вызвать аллергический дерматит или астму, поэтому при работе с ним следует носить перчатки, фартук и маску. После смешивания они обычно годны до 14 дней. Растворы следует заменять каждый раз, когда они становятся мутными.

Прочие характеристики
1. Все предметы должны иметь этикетку с датой стерилизации.
2. У каждого стерилизованного предмета есть срок годности.
3. Перед использованием необходимо проверить предметы на предмет отсутствия разрывов, проколов, открытых швов, попадания влаги, грязи на пол и т. Д.
4. После вскрытия упаковки она больше не считается стерильной, независимо от того, используется ли ее содержимое.
5. Не храните нестерильные предметы вместе со стерильными.
6. Если невозможно оценить стерильность предмета, его необходимо повторно стерилизовать или выбросить.

Хорошо проведенная операция может быть испорчена инфекцией. Инфекция увеличивает расходы как для пациентов, так и для больницы. Стерилизация ОТ и надлежащее обслуживание инструментов могут обеспечить пациентам безинфекционную среду и качественный уход.

Раскрытие информации о финансовых и конкурирующих интересах

Авторы не имеют никаких конкурирующих интересов ни в каком продукте / процедуре, упомянутой в этом исследовании. Авторы не имеют никаких финансовых интересов в упомянутых продуктах / процедурах

Список литературы

  1. Райс Н.С., Гарри Дж. Дизайн офтальмологической операционной: методы стерилизации. Proc R Soc Med 1969; 62: 1203-04.
  2. Лауфман Х. Операционная. В: Benett JV, Brachman PS, ред.Больничные инфекции. Бостон: Little Brown & Co; 1986. pp 315-24.
  3. Sehulster LM. Чинн Р.Ю., Ардуино М.Дж., Карпентер Дж., Донлан Р., Эшфорд Д. и др. Руководство по контролю загрязнения окружающей среды в медицинских учреждениях. Рекомендации CDC и Консультативного комитета по практике инфекционного контроля (HICPAC), ноябрь 2003 г.
  4. Senior BW. Исследование воды, молока, пищи и воздуха. В: Collee JG, Duguid JP, Frase AG, Marmion BP, Simmons A, редакторы.Mackie & McCartney’s. Практическая медицинская микробиология. Нью-Йорк; Черчилль Ливингстон, 1989. ПП 204-39.
  5. Рекомендуемые практики по уходу и очистке хирургических инструментов и электрического оборудования. AORN Journal 1997; 6: 124-28.
  6. Шарма С., Бансал А.К., Гьянчанд Р. Асептика в офтальмологической операционной. Indian J Ophthalmol 1996; 44: 173-77.
  7. Alfa MJ, Jackson M, Новое моющее средство для медицинских устройств на основе перекиси водорода с бактерицидными свойствами; сравнение с ферментными очистителями.Am J. Infect. Контроль 2001; 29: 168-77.
  8. Rutala WA, Weber DJ. Выбор стерилизационной пленки. Infect Control Today, 2000; 4: 64-70.
  9. Мэлони Дж. М., Кохут РД. Инфекционный контроль, барьерная защита и лечебная среда. Dent Hyg. (Chic) 1987; 61: 310-3.
  10. Шнайдер П.М., Райх Р.Р., Киркоф СС, Фольц РГ. Показатели различных показателей стерилизации паром при оптимальных и неоптимальных условиях воздействия. В: Rutala WA, ed. Дезинфекция, стерилизация и антисептика: принципы, практика, проблемы и новые исследования.Вашингтон, округ Колумбия: Ассоциация профессионалов в области инфекционного контроля и эпидемиологии, 2004: 200-23.
  11. Perkins JJ. 1983. Принципы и методы стерилизации в медицинских науках, 2-е изд. Чарльз С. Томас Издатель Лтд .: Спрингфилд, Иллинойс.
  12. Рассел А.Д., У. Б. Хьюго и Г. А. Эйлифф. 1982. Принципы и практика дезинфекции, консервирования и стерилизации. Научные публикации Блэквелла: Оксфорд, Англия.
  13. Ассоциация развития медицинского оборудования.Мгновенная стерилизация: стерилизация паром предметов ухода за пациентом для немедленного использования. ААМИ. Арлингтон, Вирджиния, 1996.
  14. Vesley D, Langholz AC, Rohlfing SR, Foltz WE. Флуориметрическое определение фермента, связанного со спорами бациллы stearothermophilus, D-глюкозидазы для быстрой идентификации неудачной мгновенной стерилизации. Прил. Environ. Microbial 1992; 58: 717-9.
  15. Rutala WA, Gergen MF, WeberDJ, Оценка биологического индикатора быстрого считывания для мгновенной стерилизации с тремя биологическими индикаторами и тремя химическими индикаторами.Заразить. Control Hosp. Эпидемиол 1993; 14. 390-4.

Безупречная чистота — обеспечение стерильности операционных


Поддержание чистоты и стерильности операционных — жизненно важный процесс, который постоянно совершенствуется. Тревор Гарсия, MIDSc, директор по образованию в Институте дезактивации Великобритании, рассказывает Керри Тейлор-Смит о том, как обеспечить надлежащее хранение в операционной, чтобы обеспечить беспрепятственный поток хирургических инструментов.Он объясняет, почему сочетание инновационных методов хранения, ротации и упаковки с давно существующими традиционными методами — лучший способ обеспечить успешную работу операционной для пациентов и персонала.


Операционные — это загруженные помещения, особенно в экстренных случаях, поэтому медицинскому персоналу важно знать, что помещение, которое они собираются использовать, чистое, а оборудование — стерильное. Обеспечение максимальной гигиены в операционных и складских помещениях имеет решающее значение для безопасности пациентов, и способ, которым это достигается, представляет собой постоянно развивающийся процесс, который регулярно пересматривается и изменяется.

Первое, что нужно учитывать, — это сама комната; он должен быть незагрязненным, незагрязненным и непыльным. Он также должен быть минималистичным, так как его будет легче чистить, и нежелательным микробам и микроорганизмам негде будет спрятаться. Но сама комната вряд ли будет стерильной, говорит Тревор Гарсиа, директор по образованию Британского института дезактивационных наук, профессионального органа, который управляет рисками, связанными с инфекциями, приобретенными в медицинских учреждениях (HCAI), при переработке медицинских устройств.

«Ни операционные, ни складские помещения не будут стерильными, поэтому их необходимо содержать в максимально возможной чистоте с регулярными режимами очистки, кондиционированием воздуха с фильтрами и ограниченным доступом», — говорит Гарсиа. «Все стены и потолки в помещении должны быть окрашены или покрыты легко очищаемым продуктом, выдерживающим химическую очистку, а полы должны легко очищаться, а все стыки должны быть сварены для обеспечения сплошной поверхности. В нем также должны быть герметичные окна и осветительные приборы ».

То, что относится к операционной, относится и к складским помещениям.В них находится стерилизованное оборудование, поэтому их следует легко содержать в чистоте, а доступ к ним разрешен только тем, кто работает в этом районе.

Воздух должен быть максимально чистым и беспыльным. Помещения для хранения должны хорошо вентилироваться с контролируемыми уровнями температуры и влажности в соответствии с рекомендациями производителей упаковочного материала, поскольку слишком много или слишком мало влаги в воздухе может повлиять на целостность упаковки и этикеток, что сделает некогда стерильное оборудование нестерильным.

Стеллажи, другие элементы для хранения и мебель должны изготавливаться из прочных материалов без ворса — например, алюминия, нержавеющей стали или хромированных материалов, — которые легко чистить, продолжает Гарсия.Он должен быть прочным, чтобы не повредить обертку, полки должны быть четко обозначены, а план расположения должен быть легко доступен для непосредственного персонала в чрезвычайной ситуации. Коммерчески стерилизованные упаковки следует хранить отдельно от упаковок, произведенных на предприятии, а внешние картонные коробки нельзя допускать в склад переработанных товаров, поскольку они могут содержать пыль и бактерии в своих углублениях.

Слишком много или слишком мало влаги в воздухе может повлиять на целостность упаковки и этикеток, что сделает некогда стерильное оборудование нестерильным.

Закрытые стеллажи в зоне хранения могут быть наиболее предпочтительным способом хранения оборудования, поскольку это поможет защитить их от внешних воздействий, но на самом деле наиболее распространены открытые стеллажи. Он экономичен, его легко содержать в чистоте и обеспечивает легкий доступ к оборудованию. Но он не обеспечивает достаточной защиты оборудования, и все стерильные предметы должны храниться вдали от стен и пола, чтобы избежать перепадов температуры и влажности, которые могут повлиять на целостность упаковки оборудования.

«При размещении упаковок на полках непосредственно или в специально отведенных контейнерах следует придерживаться принципа« первым пришел — первым ушел »», — говорит Гарсия. «И следует свести к минимуму обращение со стерилизованными упаковками, чтобы избежать повреждений», поскольку считается, что загрязнение инструментов увеличивается по мере того, как с ними обращаются.

По принципу «первым пришел — первым ушел»

Принцип «первым пришел — первым ушел» — или метод, связанный с датой — является наиболее часто используемым, когда речь идет о хранении стерильных предметов. Подобно обороту запасов в супермаркете, сначала стерилизованные предметы используются, а потом стерилизуются позже, чтобы обеспечить постоянный поток обработанных предметов.Срок безопасного хранения зависит от пористости обертки и условий хранения; любой медицинский или хирургический инструмент, который был стерилизован, нельзя использовать после истечения срока его годности или если упаковка намокла, разорвалась или проколола.

Однако многие предприятия начали переходить на метод хранения, связанный с определенными событиями, который предполагает, что продукт должен оставаться стерильным до тех пор, пока событие — например, порванная или упавшая упаковка — не вызовет контаминацию. Даже если используется упаковка, связанная с событием, рекомендуется, чтобы каждая упаковка по-прежнему включала дату стерилизации и чтобы события были специально определены, чтобы персонал знал, безопасно ли использовать предмет или нет, или его нужно повторно стерилизовать.

Гарсия говорит, что дебаты относительно стерильности, связанной с событием, и стерильности, связанной с датой, интересны: «Я думаю, что стерильность, связанная с событием, может контролироваться с помощью инструкций, предоставленных производителем медицинского устройства, таких как заявление на этикетке, говорящее ‘хранить в пределах этих параметров’; если они превышены или не соблюдаются, продукт следует считать нестерильным, а если упаковка повреждена, продукт следует считать нестерильным », — говорит он.

«Если вы используете стерильность, связанную только с событием, некоторые устройства могут быть изготовлены из материалов, которые со временем разлагаются, и в этом случае« событие »может не быть причиной нестерильности устройства: это материалы в этом устройстве, которое, возможно, вышло из строя до такой степени, что стало небезопасно, поэтому время — важная часть », — добавляет он.«Кроме того, упаковочный материал, даже если он хранится в идеальных условиях, в какой-то момент перестанет действовать как барьер для микроорганизмов. Так что, опять же, может понадобиться метод, связанный с датой ».

Отслеживание происхождения

Следующее, что нужно учитывать, — это откуда взялось стерилизованное оборудование. Он будет либо поставляться напрямую от производителя, либо использоваться в хирургии. В любом случае, прежде чем он будет считаться готовым к использованию или помещен в стерильное хранилище, он должен быть доставлен в центральный обрабатывающий центр больницы для дезактивации.Этот процесс очистки и дезинфекции направлен на защиту пациентов от инфекций, сводя к минимуму риски для персонала и сохраняя ценность предметов.

Блок стерилизации и обеззараживания может очищать от 100 до 150 наборов инструментов ежедневно — каждый с почти таким же количеством деталей — поэтому каждый предмет имеет бирку-трекер, позволяющую отслеживать их прогресс в процессе стерилизации. Когда он поступает в подразделение, он сканируется, и по мере обработки его запись обновляется, чтобы персонал мог точно определить его, если есть запрос.После стирки наборы проверяются, собираются и упаковываются.

На этом этапе возникает важный вопрос: во что должно быть упаковано стерильное оборудование? Это должна быть обертка или контейнер, который позволяет проникать стерилизующему агенту и поддерживать эту стерильность до тех пор, пока не потребуется оборудование. Упаковочный материал должен соответствовать типу используемого процесса стерилизации и стерилизуемых предметов. После стерилизации оборудование должно оставаться упакованным до тех пор, пока оно не потребуется, и храниться в закрытом помещении для хранения вдали от общего движения, чтобы сохранить целостность упаковки.

А как насчет самого процесса стерилизации? Надежная стерилизация зависит от контакта стерилизующего агента со всеми поверхностями стерилизуемого предмета, а выбор агента зависит от характера предмета. Наиболее распространено использование автоклава, который использует влажное тепло под давлением для термического разрушения микробной жизни, но если объект чувствителен к теплу или влаге, используется оксид этилена. Оксид этилена мешает нормальному метаболизму белков внутри микроорганизма и его репродуктивным процессам, вызывая гибель клеток.Другие методы могут включать использование сухого тепла, микроволн и ионизирующего излучения, газообразного формальдегида, газообразного озона или плазмы перекиси водорода.

Очень важно следить за процессом стерилизации; все стерилизаторы оснащены датчиками, термометрами, таймерами или записывающими устройствами для контроля их работы, а многие из них имеют функции сигнализации, которые активируются в случае сбоя процесса. Химические индикаторы на упаковке оборудования — ленты или этикетки с чернилами, меняющими цвет, например, — могут проверить, была ли проведена стерилизация, и помочь отличить стерильное оборудование от нестерильного.Если это не показывает, что стерилизация произошла, оборудование не следует использовать.

Некоторые устройства могут быть изготовлены из материалов, которые со временем разрушаются, и в этом случае «событие» не может быть причиной нестерильности устройства.

После стерилизации предметы переносятся в стерильные складские помещения, а затем отправляются туда, где они необходимы. В течение этого периода они будут оставаться стерильными, если только какое-либо событие не сделает их нестерильными.

Безопасность прежде всего

Обеспечение чистой, продезинфицированной комнаты и стерильного оборудования необходимо для обеспечения того, чтобы медицинские и хирургические инструменты не передавали инфекционные патогены пациентам во время неотложных и обычных операций.Несоблюдение безупречной среды или подходящих условий хранения может привести к вспышке инфекции. При правильном выполнении дезинфекция и стерилизация инвазивных и неинвазивных медицинских устройств обеспечат их безопасное использование, а метод очистки зависит от самого устройства.

При рассмотрении передовой практики стерилизационного хранения необходимо рассматривать процесс в целом — от начальной дезинфекции до помещения предмета на полку — поскольку каждый шаг важен для обеспечения эффективного и надежного хранения медицинских и хирургических устройств. предотвращение загрязнения.Метод стерилизации и средства упаковки зависят от самого инструмента, а целостность упаковки зависит от условий ее хранения. Способ хранения инструмента будет иметь прямое влияние на его стерильность, поэтому это первоочередной задачей является рассмотрение этого вопроса для обеспечения безопасности пациентов и персонала.

Процедура в стерилизационной комнате — Мохамед Али, DDS

Самая яркая битва
во всем мире каждая больница сталкивается с войной против микробов! Здравоохранение
окружающая среда полна микроорганизмов (включая споры, вирусы и
бактерии).Это еще не все, но в нем также есть несколько нестабильных органических соединений.
которые появляются из-за чистящих средств и мебели, таких как пыль, ворсинки из больницы
белье и ткани, иногда хирургический дым, а иногда пыльца и
налет от шерсти или перьев различных животных, доставленных через больницу
персонал, пациенты и посетители. Поверхность обычно загрязняется
поскольку микробы попадают в руки медицинских работников. Чтобы победить
распространение инфекции, микробы должны быть уничтожены до контакта с
как пациенты, так и персонал больницы.Основная жертва связанных со здоровьем
инфекции (HAI) — это только пациенты, и, к сожалению, инфекции, которые
get — результат их пребывания в больнице. Это может быть вызвано
зараженное оборудование, хирургические инструменты или неправильная гигиена персонала.
А стерилизация — выход. Стерилизация — это процедура умерщвления живого
бактерии или другие микроорганизмы (обычно при нагревании или химическими средствами) из
объекты. Этот процесс делает организм бесплодным или бесплодным.И мы предоставляем
наилучшая гигиена и безопасность для наших пациентов.

Гигиена
и санитария важны для нас, и мы делаем все, чтобы предотвратить
перекрестное загрязнение. Битва должна быть обязательной для каждой больницы.
планируют предотвратить распространение HAI. Стратегия больницы по борьбе с микробами касается
с тремя шагами для избавления от инфекций: чистка, дезинфекция и
стерилизация. Давайте посмотрим, как именно это делается, начиная с
наиболее уязвимая форма для наиболее жесткой формы удаления микробов:

1.Уборка

Термин «очистка» в основном определяется как
удаление всей видимой пыли, грязи и других посторонних веществ. Этот
относится к очистке видимых загрязнений с помощью моющего средства или мыла и
вода. Это делает его свободным от всех физических и химических остатков и спасает
от микроорганизмов. Этого процесса очистки достаточно, чтобы уменьшить бионагрузку.
(или начальное загрязнение) только. Для большинства видов медицинского оборудования
дезинфекция и стерилизация обязательны.Чистка всего медицинского оборудования
чрезвычайно важно, потому что;

  • Удаляет грязь или посторонние вещества, очищает кровь и гной, которые могут вызвать опасные осложнения для других пациентов.
  • Убивает бионагрузку.
  • Удаляет существующие микробы и их питательную среду.
  • Защищает дорогостоящий инструмент от коррозии, у которого хрупкие шарниры и шарниры.
  • Гарантирует безопасную транспортировку и упаковку оборудования для дезинфекции или стерилизации.

2. Дезинфекция

Дезинфекция, описываемая как уничтожение всех существующих микроорганизмов без полного уничтожения всех спор бактерий. По сути, переводит живые бактерии в состояние покоя, которое может выдерживать тяжелые условия. Сибирская язва и столбняк — это своего рода споры бактерий, которые очень опасны, и нам необходимо стерилизовать их, чтобы убить все виды микроорганизмов, включая эти два. Обычно больничные палаты дезинфицируют различными химическими препаратами.Напротив, очень заразное медицинское оборудование, такое как унитазы и писсуары, помещается в автоматическую стиральную машину, которая контактирует с биологическими жидкостями и фекалиями. И, наконец, это оборудование отправляется на стерилизацию.

3. Стерилизация

После того, как оборудование закончено с процессами очистки и дезинфекции, оно готово к последнему и самому строгому процессу уничтожения микробов; стерилизация. Этот процесс убивает все микроорганизмы, включая споры бактерий. ВОЗ (Всемирная организация здравоохранения) считает жизненно важным стерилизовать все инструменты, которые вступают в контакт с жидкостями внутри тела, перед их использованием (там же). Несмотря на то, что открытый огонь известен как самый старый метод стерилизации, когда предмет удерживается над открытым огнем для уничтожения микробов, современная эпоха, конечно, придумала более продвинутые и научные методы стерилизации, такие как влажное тепло, сухое тепло, биоцид с помощью газа или химикатов и радиация.

В данном сценарии используется специализированная машина, называемая автоклавом, для уничтожения всех микроорганизмов с помощью сжатого высокотемпературного пара.Готовится аналогично модели скороварки. Они доступны в различных размерах, от небольших настольных машин размером с микроволновую печь до больших машин размером с больничный лифт. Современные автоклавы в основном работают в несколько циклов для различных типов оборудования и материалов в соответствии с потребностями больницы.

Центральное отделение стерильной обработки (CSSD) / или Отделение стерильной обработки (SPD) должно обязательно присутствовать в каждой больнице для обеспечения надлежащей очистки, дезинфекции и стерилизации.И каждая больница должна следовать определенным правилам для всего процесса стерилизации; как инструменты должны быть упакованы и обработаны до и после стерилизации, чтобы гарантировать, что предметы не будут повторно загрязнены. И CSSD каждой больницы строго следит за тем, чтобы после выхода оборудования из автоклава оставалось стерильным до тех пор, пока оно не будет открыто в операционной.

Подводя итог, можно сказать, что стерилизационная комната в основном предотвращает инфекцию в месте хирургического вмешательства (SSI), которая является второй по значимости причиной внутрибольничных инфекций, и ее осложнения часто вызывают заболеваемость.Источник SSI может быть эндогенным и экзогенным. CSSD ведет непрекращающуюся борьбу с распространением инфекции, которая ведется в больнице ежесекундно. Мы обеспечиваем безопасность наших пациентов от микробов и заражения. Поэтому мы инвестируем в наших технических специалистов, которые облачились в скрабы, выбрасываемые перчатки, кепки и маски, чтобы сделать свой первый шаг в борьбе с микробами; «Очистка», которая убивает микроорганизмы чистым мылом и водой. Затем следует второй этап «дезинфекция», который уничтожает все вегетативные организмы.И, наконец, что не менее важно, процесс «стерилизации». В процессе стерилизации в автоклаве уничтожаются все микроорганизмы, включая устойчивые бактериальные споры. Техник CSSD бережно хранит упаковку недавно стерилизованных инструментов до тех пор, пока они не понадобятся для следующей операции в больнице.

Когда вы посетите доктора Мохамеда Али, Сан-Франциско, он тщательно осмотрит состояние вашего рта и при необходимости предложит различные варианты лечения.Он также посоветует вам наиболее подходящий вариант. Эксперты по выставлению счетов проверит ваши страховые выплаты и предложат вам полный план лечения со всеми необходимыми мерами. Принимаются все основные стоматологические и медицинские страховые планы PPO, включая Medicare. Для тех, у кого нет страховки, существует также действующий план медицинского обслуживания. Кроме того, мы сотрудничаем с различными финансовыми учреждениями, такими как The Lending Club, Care Credit, Healthcare Finance Solutions, чтобы сделать ваше лечение максимально доступным.Если у вас есть вопросы, не стесняйтесь спросить. Так что сядьте, расслабьтесь и получите лечение от микробов. Позвоните нам сегодня, чтобы назначить бесплатную консультацию. Вы можете связаться с нами по телефону 415.391.7751.

Поделись с друзьями

Surgery Tutorial Instrument Prep | Офис старшего вице-президента по исследованиям Penn State

Выбор и использование прибора

Инструменты, используемые для хирургии грызунов, являются хрупкими и обычно предназначены для определенной функции. Неправильное использование этих инструментов приведет к их повреждению и затруднит, а то и сделает невозможным их правильное использование.Например, кровоостанавливающие щипцы предназначены для захвата и удержания таких тканей, как кровеносные сосуды или кожа. Хотя их можно использовать для удержания иглы для наложения швов в экстренных случаях, обычное использование кровоостанавливающих щипцов вместо хирургических иглодержателей не рекомендуется. Эти щипцы не предназначены для надежного захвата иглы, и их использование для наложения швов приведет к повреждению наконечников, что сделает их непригодными для использования по назначению. Инструменты также должны быть подходящего размера для хирургии на грызунах.Использование слишком больших инструментов приведет к усилению движений рук и уменьшению хирургической точности, что приведет к плохой технике и увеличению травм тканей.

Сообщалось, что повторное использование стерилизаторов со стеклянными шариками со временем сделает инструменты хрупкими и тусклыми. Любой инструмент, который часто используется, грубо обращается или очищается абразивными материалами, может быть поврежден или затупился. Инструменты следует регулярно проверять и при необходимости заменять. Ножницы и другие острые инструменты иногда можно затачивать, чтобы продлить жизнь.Инструменты необходимо аккуратно очищать после каждого использования, чтобы гарантировать удаление всей крови и тканей. Ультразвуковой очиститель может помочь в этом процессе. Правильный уход продлит срок службы ваших инструментов и поможет сохранить ваши вложения.

Ссылка:
Как выбрать и приобрести хирургический инструмент для хирургических исследований на грызунах. 2012. С. Баран, Э. Джонсон и М. Перрет-Жентиль. https://www.alnmag.com/article/2012/09/how-select-and-procure-surgical-instrumentation-rodent-surgical-research

Стерилизация инструментов

Перед операцией инструменты и другие принадлежности помещают в «хирургический пакет».Хирургический пакет должен не только удерживать инструменты и расходные материалы во время процесса стерилизации, но также сохранять стерильность содержимого до использования в хирургии. Существуют различные методы упаковки, в том числе:

  • Инструменты, с лотком для инструментов или без него, упаковываются в сложенную ткань или бумажную обертку и заклеиваются лентой, предназначенной для обозначения достижения стерилизации. Внутри упаковки могут быть размещены другие типы индикаторов стерилизации.
  • Отрывные пакеты — самоуплотняющиеся «конверты», используемые для стерилизации паром или газом.Индикатор стерилизации находится на конверте.

Обеспечение стерильности инструментов во время операции
Используйте дополнительный кусок стерильной салфетки или внутреннюю часть хирургической повязки или конверта в качестве стерильного пространства для размещения инструментов во время операции. Одна из самых распространенных ошибок неопытного хирурга — это установка инструментов на нестерильную поверхность.

Процедуры стерилизации

Хирургические инструменты и другие материалы или оборудование, которые будут контактировать с операционным полем, перед использованием должны быть стерильными.Процесс стерилизации убивает все формы жизни, включая бактериальные споры и вирусы. Химическая дезинфекция — это не то же самое, что стерилизация, и она неприемлема в качестве основного метода подготовки инструментов для хирургии . Методы стерилизации инструментов включают паровую (автоклав) и газовую (оксид этилена) стерилизацию. Стерилизация сухим жаром с использованием стерилизатора со стеклянными шариками неприемлема для первоначальной стерилизации инструментов перед операцией, но может использоваться во время «периодических» операций.

Паровая стерилизация

  • Паровая стерилизация или стерилизация в автоклаве — наиболее распространенный метод стерилизации инструментов.
  • Инструменты помещаются в хирургический пакет и подвергаются воздействию пара под давлением.
  • Индикатор стерилизации (обязательно), такой как автоклавная лента или индикаторная полоска, используется для идентификации инструментов, которые были стерилизованы.

Оксид этилена

  • Этиленоксидный газ используется для стерилизации предметов, которые не выдерживают высоких температур и пара в автоклаве.
  • Оксид этилена очень токсичен. Предметы, стерилизованные оксидом этилена, перед использованием необходимо проветрить, чтобы газ мог рассеяться.

Стерилизаторы для стеклянных шариков:

  • Стерилизаторы со стеклянными шариками могут использоваться для повторной стерилизации инструментов во время хирургической процедуры, но не подходят в качестве первоначального метода стерилизации.
  • Стерилизаторы для стеклянных шариков имеют центральный отсек, заполненный стеклянными шариками, нагретыми до высокой температуры (приблизительно 5000F).
  • После удаления крови и тканей кончики хирургических инструментов помещаются в горячие стеклянные шарики примерно на 10-15 секунд.
  • В этом процессе повторно стерилизуются только кончики инструментов. .
  • Наконечники инструментов сильно нагреваются, и перед использованием их необходимо охладить.
  • Стерилизаторы со стеклянными шариками могут использоваться между животными, когда один комплект первоначально автоклавированных инструментов используется для группы до 5 животных.

Повторное использование инструментов

Когда хирургические процедуры должны выполняться на нескольких грызунах, один и тот же набор инструментов может использоваться на нескольких животных при следующих условиях.

  • Инструменты должны быть первоначально стерилизованы автоклавированием или газовой стерилизацией .
  • Перед помещением в стерилизатор для стеклянных шариков необходимо удалить кровь и частицы тканей с наконечников инструментов с помощью спирта .
  • Кончики инструментов необходимо поместить в стерилизатор с горячими шариками между животными .
  • Новый набор стерильных инструментов необходимо использовать после каждых 4-5 животных.
  • Если кончики инструментов загрязнены в результате контакта с нестерильной поверхностью или нестерильными частями тела (такими как содержимое желудочно-кишечного тракта), для последующих животных необходимо использовать новый стерильный набор инструментов.

Техника наконечника инструмента для особых хирургических процедур на грызунах

Несмотря на свою сложность, техника с наконечником инструмента может быть полезна в некоторых хирургических ситуациях на грызунах. Как правило, это ограничивается операциями, при которых разрезы затрагивают только кожу (без воздействия на внутренние органы или манипуляций с ними).При использовании техники «только подсказки» помните о следующих моментах:

  • Для использования метода наконечника инструмента на грызунах-исследователях требуется предварительное одобрение IACUC.
  • Животное необходимо поддерживать в хирургической плоскости анестезии на протяжении всей процедуры.
  • Начните операцию со стерильными инструментами и соблюдайте правила асептики во время процедуры.
  • Один и тот же набор предварительно стерилизованных инструментов может использоваться до пяти аналогичных операций при условии соблюдения асептической техники во всех процедурах.

Стерильные хирургические перчатки можно не носить, если строго соблюдаются следующие критерии:

  • Перчатки меняются после завершения хирургической чистки, так что новые чистые перчатки надеваются в начале хирургической процедуры.
  • Руки в перчатках никогда не касаются рабочего (кончика) конца инструментов, нити, шовной иглы или любой части подготовленного операционного поля.
  • Для работы с тканями животного используются только стерильные кончики инструментов.

Краткое описание процедур в кабинете «только подсказки»

  • Хирург должен носить маску и чистый лабораторный халат или халат. Рекомендуется головной убор (кепка или капот).
  • Поместите под наркозом и хирургически подготовленное животное на согревающее устройство, накрытое чистым бумажным полотенцем.
  • Откройте стерильный хирургический пакет и любое другое необходимое стерильное оборудование (например, шовный материал), не прикасаясь к стерильному содержимому и не касаясь его.
  • Продезинфицируйте руки дезинфицирующим средством для рук или вымойте руки водой с мылом. После того, как руки высохнут, наденьте чистые смотровые перчатки.
  • Накройте место операции большой стерильной салфеткой . Хирург должен брать простыню только за края, чтобы она не загрязнялась. (Простыня должна содержать «предварительно вырезанное» отверстие , которое обеспечивает доступ к операционному полю, так как хирургу будет сложно вырезать отверстие, не загрязнив простыню.) Для каждого животного необходимо использовать новую стерильную простыню.
  • После того, как хирург взял в руки хирургический инструмент, только кончик инструмента считается стерильным . Если хирург кладет инструмент, стерильный наконечник необходимо положить на стерильную марлевую губку или салфетку. Ручка инструмента не должна соприкасаться со стерильной поверхностью, чтобы избежать загрязнения этой поверхности.
  • Если кончик хирургического инструмента загрязнен, кончики можно повторно стерилизовать, смыв кровь или ткань спиртом или стерильной водой и поместив кончики в стерилизатор с горячими шариками.
  • Имейте в виду, что хирург не может касаться кончиков инструментов, шовного материала или зажимов для ран, шовной иглы или любой части подготовленного операционного поля руками во время операции.
  • Между операциями следует ополаскивать перчатки 70% спиртом. Если вам необходимо использовать другую мышь для обезболивания и подготовки ее, вы должны сменить перчатки перед выполнением следующей операции.

Перейти к подготовке животных

Эффективность паровой стерилизации многоразовых медицинских изделий в государственных больницах первичной и вторичной медицинской помощи в Непале и факторы, связанные с неэффективной стерилизацией: общенациональное перекрестное исследование

Аннотация

Фон

Неадекватная стерилизация многоразовых медицинских устройств может привести к инфекциям, связанным с оказанием медицинской помощи (HAI), через передачу патогенов от человека к человеку или через окружающую среду.Автоклавирование (стерилизация паром) чаще всего используется для стерилизации медицинских изделий в медицинских учреждениях. Мы провели общенациональное перекрестное исследование для оценки эффективности методов паровой стерилизации в государственных больницах первичной и вторичной медицинской помощи в Непале и для выявления факторов, связанных с неэффективной стерилизацией.

Методы

С помощью стратифицированной кластерной случайной выборки было отобрано 13 государственных больниц первичного и вторичного звена в Непале.189 циклов стерилизации паром в этих больницах были оценены на предмет их эффективности с использованием автономных биологических индикаторов, химических индикаторов класса 5, индикаторной ленты автоклава и физических параметров. Также была собрана информация о больницах и типах используемых автоклавов. Данные были проанализированы для оценки доли неэффективных циклов стерилизации паром. Логистическая регрессия использовалась для выявления факторов, связанных с неэффективной стерилизацией.

Выводы

В государственных больницах первичной и вторичной медицинской помощи в Непале, 71.0% (95% ДИ 46,8% — 87,2%) циклов автоклавирования были неэффективными (т. Е. Показали положительные результаты) при тестировании с биологическими индикаторами, а 69,8% (95% ДИ 44,4% — 87,0%) показали результаты «отбраковки» с классом 5. химические индикаторы. Не было статистически значимой разницы в долях положительных или отклоненных результатов по типам больниц ни для биологических (p = 0,51), ни для химических показателей класса 5 (p = 0,87). Тип автоклава и давление, достигнутое во время стерилизации, были статистически значимо связаны с ошибками стерилизации паром с поправкой на период выдержки, равномерность давления и используемую барьерную систему.

Заключение

В больницах первичной и вторичной медико-санитарной помощи в Непале высока доля случаев неудачной стерилизации паром, что указывает на риск передачи патогенов от человека к человеку через многоразовые медицинские устройства. Существует острая необходимость в улучшении процессов стерилизации паром в этих больницах.

Образец цитирования: Panta G, Richardson AK, Shaw IC, Chambers S, Coope PA (2019) Эффективность паровой стерилизации многоразовых медицинских устройств в государственных больницах первичной и вторичной медицинской помощи в Непале и факторы, связанные с неэффективной стерилизацией: по всей стране перекрестное исследование.PLoS ONE 14 (11):
e0225595.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0225595

Редактор: Луиза Грегори, FDA, США

Поступила: 26 мая 2019 г .; Одобрена: 7 ноября 2019 г .; Опубликовано: 21 ноября 2019 г.

Авторские права: © 2019 Panta et al. Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Данные, лежащие в основе исследования, доступны в репозитории BioStudies (https://www.ebi.ac.uk/biostudies/) под регистрационным номером S-BSST303.

Финансирование: Это исследование частично финансировалось Школой медицинских наук и Школой физических и химических наук Кентерберийского университета. Финансовая поддержка, предоставляемая школами, заключалась в отказе от платы за обучение и в расходах на приобретение оборудования и принадлежностей, необходимых для исследования.Спонсор не имел никакого отношения к дизайну исследования, сбору и анализу данных, принятию решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

Некоторые медицинские изделия предназначены для многократного использования после соответствующей дезактивации и обработки. Многоразовые медицинские устройства делятся на критические, полукритические и некритические [1]. Важнейшие медицинские устройства контактируют со стерильными частями человеческого тела, представляющими более высокий риск инфицирования пациентов, и для обеззараживания таких медицинских устройств рекомендуется стерилизация [2].Эффективная стерилизация гарантирует, что медицинское изделие не содержит жизнеспособных микроорганизмов, включая споры, и обеспечивает высочайший уровень обеззараживания. Паровая стерилизация, также известная как автоклавирование или стерилизация влажным теплом, использует насыщенный пар при высокой температуре (обычно 121 ° C) и считается наиболее надежным, наиболее распространенным и экономичным методом стерилизации [3,4].

Неадекватная стерилизация медицинских изделий сопряжена с риском заражения через передачу патогенов от человека к человеку и через окружающую среду [5].В многочисленных исследованиях сообщалось об инфекциях, связанных с неадекватной обработкой медицинских изделий [6–10]. Несмотря на это, о влиянии плохой стерилизации на инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи (HAI) в глобальном масштабе или в условиях ограниченных ресурсов, где повторное использование медицинских устройств, вероятно, будет менее стандартизировано и регулируется, не сообщается. Неадекватная стерилизация устройств является одним из нескольких факторов, способствующих развитию ИСМП, которые чаще встречаются в странах с низким и средним уровнем доходов (совокупная распространенность пораженных пациентов = 10.2%; 95% ДИ 9,0–13,0%), чем в странах с высоким уровнем дохода (объединенная распространенность пораженных пациентов = 7,1 на 100 пациентов; 95% ДИ 6,5–7,8), при этом инфекция области хирургического вмешательства (ИОХВ) является наиболее частым типом ИСМП [ 5,11]. Больницы высокоспециализированной медицинской помощи в Непале сообщили о высоких показателях ИОХВ (от 2,7 до 23,0 на 100 пациентов), но не исследовали связь между этими инфекциями и процедурами стерилизации [12-15].

Обеспечение стерильности медицинских изделий многоразового использования в больницах является основным, но важным компонентом профилактики инфекций и борьбы с ними [5], и его важность возросла с увеличением использования хирургических вмешательств (в том числе в учреждениях первичной медико-санитарной помощи) и повышением устойчивости к противомикробным препаратам.Сообщалось о неэффективных методах стерилизации паром в медицинских учреждениях в разных частях мира, но большинство сообщений относятся к стоматологическим практикам, которые могут не иметь отношения к учреждениям здравоохранения общего профиля [16–30]. Причины неэффективной стерилизации неясны, и их необходимо изучить, чтобы сформулировать меры по улучшению обработки и повторного использования медицинских изделий. В этом исследовании оценивается эффективность стерилизации паром в больницах первичной (районные и районные больницы) и больницах вторичной помощи (зональные больницы) в Непале, а также определяются факторы, связанные со сбоями стерилизации паром в этих больницах.В этом исследовании также сообщается о чувствительности и специфичности химического индикатора класса 5 по сравнению с биологическим индикатором (золотой стандарт) при обнаружении сбоев паровой стерилизации в учреждениях общественного здравоохранения Непала.

Методы

Дизайн исследования

Это было перекрестное исследование, в котором изучались циклы паровой стерилизации (автоклавирования) в больницах Непала. В Непале 10 зональных, 62 районных и 16 районных больниц [31]. Был использован стратифицированный план с тремя стратами (типами больниц) с выборкой больниц внутри каждой страты с использованием простого пропорционального распределения больниц.Каждая больница представляла собой кластер наблюдений (повторный отбор проб цикла стерилизации).

Сначала мы рассмотрели «разумную» оценку необходимых наблюдений, исходя из простой случайной выборки единиц. Затем этот размер выборки был скорректирован для выборки кластеров наблюдений. Ключевыми факторами, определяющими размер выборки, были требуемый предел погрешности и предположение о влиянии кластеризации, измеренное с помощью «rho» (коэффициент корреляции внутри класса), что дало расчет эффекта схемы (DEFF).DEFF дает коэффициент, на который можно уменьшить количество единиц простой случайной выборки, сохраняя при этом ту же точность, что и реализованная кластерная выборка [32]. При rho = 0,2 для каждой категории больниц и достоверности 95% размер выборки 189 был оценен для стратифицированного кластерного дизайна с погрешностью 0,09 (таблица 1).

Выборка

В каждом типе больниц была взята простая случайная выборка для выбора больниц. Для районных больниц мы хотели, чтобы выборка (девять больниц) была распределена по семи провинциям, поэтому использовалась систематическая случайная выборка.В больнице автоклавирование — это непрерывный процесс, и «популяция» для целей этого исследования (то есть общее количество циклов автоклавирования) было фактически бесконечным. Практически невозможно было выбрать циклы автоклава случайным образом из такой совокупности. Поэтому мы протестировали заранее определенное количество последовательных циклов автоклавирования в каждой больнице.

Процедуры

Основная информация о каждой больнице была собрана на сводном информационном листе. Такая информация включала количество коек, количество персонала, доступные клинические услуги, выполненные мероприятия по дезактивации, количество автоклавов и типы автоклавов.Необходимая информация была получена от персонала соответствующих отделений больницы или путем наблюдения.

Исследователь пометил самодостаточный биологический индикатор ProSpore 2 (Mesa Labs, Inc .; каталожный номер PS2-3-6-50), содержащий 10 6 спор Geobacillus stearothermophilus и интегратор паровой стерилизации ProChem SSW (Mesa Labs , Inc .; каталожный номер CI-SSW) — химический индикатор класса 5 с тем же кодом наблюдения [33,34]. Затем оператор автоклава в больнице упаковал оба индикатора вместе таким же образом, как реальные медицинские устройства были упакованы и подготовлены для определенного цикла автоклавирования, используя тот же оберточный материал, который использовался для медицинских устройств.Лента для автоклава (Mesa Labs, Inc .; каталожный номер: CI-STP) также была прикреплена к упаковке, содержащей индикаторы [35]. Затем упаковку с индикаторами поместили внутрь автоклава вместе с упаковками медицинских изделий, подлежащих стерилизации. Медицинские устройства вместе с индикаторами автоклавировались оператором автоклава в соответствии с внутренними процедурами. Исследователь снимал показания манометра камеры автоклава каждую минуту во время цикла автоклава и записывал значения давления.Один и тот же процесс использовался для всех 189 процессов автоклавирования. Потребовалось несколько дней для проверки заранее определенного количества последовательных циклов автоклавирования в больнице (таблица 1) в зависимости от частоты циклов автоклавирования в каждой больнице.

После завершения цикла автоклава индикаторная упаковка была извлечена из камеры автоклава. Ленту автоклава проверяли на предмет изменения цвета. Пакет индикаторов был открыт, и Интегратор паровой стерилизации ProChem SSW (химический индикатор класса 5) был проверен, чтобы увидеть, вошла ли темная полоса в окно приема.Биологический индикатор вынули из упаковки, запечатали, дали остыть и затем измельчили в соответствии с инструкциями производителя. Затем пробирку инкубировали при 57 ° C в течение 24 ч вместе с дополнительной контрольной пробиркой (не подвергнутой циклу стерилизации) в портативном инкубаторе (Mesa Labs, Inc .; Модель 1450). После этого пробирки исследовали на предмет изменения цвета. Если пробирка, подвергнутая стерилизации, показывала изменение цвета на желтый или в сторону желтого (положительный результат теста), цикл стерилизации считался неудачным или неэффективным.Если пробирка не изменила цвет (отрицательный результат теста), циклы считались успешными или эффективными. Чтобы тест был действительным, цвет контрольной пробирки изменился на желтый или стал желтым. Результаты по всем трем показателям заносились в форму результатов.

Анализ данных

Информация из форм исследования вводилась в электронную таблицу Excel каждый день. После завершения полевых работ данные в электронных таблицах были импортированы в программу IBM SPSS Statistics 24 .Импортированные наборы данных были проверены на наличие ошибок и неточностей, которые затем были исправлены путем обращения к формам исследования. Переменные больницы, такие как тип больницы, количество коек и количество персонала в различных категориях, были сведены в таблицу. Мы провели описательный анализ результатов химических и биологических испытаний, типов автоклавов, продолжительности циклов автоклавов, периодов выдержки, поддержания давления во время периодов выдержки и используемых барьерных систем. Анализ включал вычисление пропорций и оценку связей между переменными.Модель логистической регрессии для сложных образцов использовалась для определения факторов, связанных с ошибками стерилизации паром.

Этические соображения

Этическое одобрение для этого исследования было получено от Совета по этике Непальского совета по исследованиям в области здравоохранения (рег. № 13/2016) и Комитета по этике человека Кентерберийского университета (HEC 2015/139). Письменное согласие было получено от суперинтендантов или руководителей больниц, участвовавших в этом исследовании.

Результаты

Характеристики больниц, включенных в исследование

Некоторые характеристики, включая количество коек, общее количество персонала, пространство, выделенное для обработки медицинских изделий, количество доступных автоклавов и циклов стерилизации в неделю, варьировались в разных больницах (таблица 2). Однако другие характеристики, включая персонал, выделенный для обработки медицинских изделий, тип автоклава, наличие руководства по процедурам или блок-схем, мониторинг циклов стерилизации, техническое обслуживание автоклавов и наличие запасных частей, были одинаковыми во всех больницах (таблица 2).Из тринадцати больниц в шести (46%) были отдельные помещения, предназначенные для обработки медицинских изделий. Мероприятия по дезактивации, проводимые в больницах, включали очистку, химическую дезинфекцию, кипячение, пропаривание и автоклавирование. Автоклавирование выполнялось во всех больницах для стерилизации важнейших медицинских устройств, при этом количество автоклавов на больницу варьировалось от одного до трех. Из 24 автоклавов, используемых в больницах, три были автоклавами с вертикальным перемещением (самотеком), а 21 — автоклавами базового типа, работающими под давлением.

Все тринадцать больниц предоставляли стационарные и амбулаторные услуги, небольшие хирургические услуги, услуги по планированию семьи, иммунизации, дородовые услуги, услуги по беременности и родам и лабораторные услуги. Основные хирургические услуги (требующие наличия операционной) также оказывались всеми, кроме двух районных больниц и двух районных больниц. Стоматологические услуги оказывались во всех больницах, кроме районных.

Давление стерилизации и периоды выдержки

Давление не может быть записано для 15.5% (95% ДИ 4,0% — 44,9%) циклов стерилизации, поскольку в четырех автоклавах были неисправные манометры. Для остальных циклов стерилизации давление, достигаемое внутри автоклавов во время периодов выдержки, варьировалось от <10 фунтов на квадратный дюйм до ≥15 фунтов на квадратный дюйм (таблица 3).

Средняя продолжительность цикла автоклава (период времени между началом и окончанием цикла стерилизации) составляла примерно 64 минуты (95% ДИ 55,8–72,56), а средний период выдержки составлял 20 минут (95% ДИ 14,3–25,7 ). Периоды выдержки циклов автоклавирования статистически значимо не различались для трех типов больниц (p = 0.09) и не связаны с давлениями, достигнутыми во время периодов выдержки (p = 0,29). Некоторые циклы стерилизации (таблица 3) имели периоды выдержки с неравномерным давлением (давление периодически снижалось до более низких значений).

Барьерные системы для стерилизации

Для упаковки медицинских изделий для стерилизации использовались различные стерильные барьерные системы (Таблица 4).

Эффективность автоклавных циклов

Общая доля циклов паровой стерилизации, показывающих положительные (неэффективные) результаты с биологическими индикаторами, составила 71.0% (95% ДИ 46,8% — 87,2%). Пропорции для разных типов больниц (таблица 5) статистически значимо не различались (p = 0,51). Пропорция колебалась от 0% до 100% в тринадцати больницах (рис. 1).

Из циклов автоклавирования 69,8% (95% ДИ 44,4% — 87,0%) показали результаты «брака» с химическими индикаторами класса 5. Доля отказов в трех типах больниц (таблица 5) статистически значимо не различалась (p = 0,87). Доля отказов варьировалась от 6.От 7% до 100% в тринадцати больницах (рис. 1). Биологический индикатор обычно считается «золотым стандартом», но чувствительность и специфичность химического индикатора класса 5 были очень высокими (таблица 6).

В целом, 13,5% (95% ДИ 2,9% — 45,1%) циклов стерилизации не показали изменения цвета автоклавной ленты (черные полосы не появились). Разница в пропорциях между тремя типами больниц (таблица 5) не была статистически значимой (p = 0,62). Результаты автоклавной ленты не были статистически значимо связаны с результатами биологического индикатора (p = 0.29) или химических индикаторов (p = 0,27).

Факторы, связанные с неэффективностью паровой стерилизации

Как для биологических индикаторов, так и для химических индикаторов класса 5, давление, достигнутое во время периода выдержки, и тип автоклава были статистически значимо связаны с ошибками стерилизации паром (положительными или отклоненными) с поправкой на период выдержки, поддержание давления и используемую барьерную систему (Таблица 7).

Обсуждение

Стерилизация паром (автоклавирование) — основной метод, используемый для стерилизации медицинских изделий в государственных больницах первичной и вторичной медицинской помощи в Непале.Наше исследование выявило высокую долю случаев неудачной стерилизации в этих больницах. Тип автоклава и давление, достигаемое в течение периода выдержки цикла, были статистически значимо связаны с такими отказами. Насколько нам известно, эти доли неудач превышают те, о которых сообщалось в предыдущих исследованиях (от 1,5% до 43,0%) в других местах [16–30], однако в некоторых из этих исследований использовались надежные методы, и большинство из них проводилось в стоматологических учреждениях.

Первичной конечной точкой этого исследования был рекомендованный во всем мире уровень обеспечения стерильности (SAL) для многоразовых медицинских изделий 10 −6 ; вероятность того, что продукт останется нестерильным после его стерилизации, должна быть ≤ 10 −6 при использовании спор G . stearothermophilus в качестве эталона [36,37]. Это означает, что если SAL 10 -6 достигается после процесса стерилизации, один из 1 000 000 продуктов (каждый из которых содержит 1 000 000 спор) останется нестерильным. В целом, мы обнаружили, что 71% биологических индикаторов остались нестерильными после воздействия процессов стерилизации в больницах Непала, и была аналогичная доля отказов с использованием химических индикаторов класса 5, демонстрирующих, что это надежный результат.Между больницами наблюдались значительные различия в доле отказов (рис. 1), что приводило к широкому 95% доверительному интервалу (46,8–87,2%), поэтому общая частота отказов не обязательно отражает эффективность стерилизации паром в отдельных больницах. Тем не менее, высокая доля неудачных циклов стерилизации демонстрирует, что неприемлемое количество инструментов будет нестерильным после стерилизации в первичных и вторичных больницах, изученных, и вполне вероятно, что аналогичные результаты будут обнаружены в других учреждениях Непала.

Чтобы избежать затруднения ежедневной стерилизации из-за процедур исследования, биологические индикаторы и химические индикаторы класса 5 были упакованы отдельно с использованием тех же методов и материалов, которые использовались для упаковки медицинских устройств для цикла автоклавирования. Хотя методы упаковки были одинаковыми, это не имитировало в точности сложность реальной упаковки, содержащей медицинские устройства, и, возможно, вносило некоторую предвзятость. Во всяком случае, это могло привести к переоценке эффективности цикла стерилизации, поскольку температура внутри упаковки медицинских изделий может не достигать необходимого уровня так быстро, как температура в камере автоклава [38].Кроме того, операторы автоклава из-за присутствия исследователя могли бы управлять автоклавом более осторожно, чем обычно.

Давление внутри стерилизационной камеры должно достигать 15 фунтов на кв. Дюйм (выше атмосферного давления) для достижения температуры стерилизации 121 ° C. Менее половины циклов автоклавирования достигали давления 15 фунтов на квадратный дюйм или выше, что вместе с использованием автоклавов типа скороварки было статистически значимо связано с неудачей стерилизации паром.Ни период выдержки, ни равномерность давления во время периода выдержки не были связаны с неудачей стерилизации. Отсутствие связи между временем и эффективностью циклов стерилизации, вероятно, связано с невозможностью достичь требуемых параметров температуры / давления. В принципе, время (период выдержки) четко связано с эффективностью стерилизации, когда достигается требуемая температура / давление автоклава [39], поэтому важно, чтобы были достигнуты все параметры, необходимые для эффективной стерилизации.

Еще одним ограничением службы стерилизации был тип автоклава. Из 24 автоклавов, используемых в больницах, 21 был автоклавом скороварочного типа с очень плохой способностью вытеснять воздух [40]. Рекомендуется использовать устройства, стерилизованные в этих автоклавах, сразу после стерилизации [41]. Эти автоклавы не подходят для пористых грузов, медицинских устройств, обернутых стерильной барьерной системой, или медицинских устройств с просветами или сложной извилистой структурой, поскольку они неэффективны для вытеснения воздуха внутри таких грузов или устройств с насыщенным паром.Остальные три автоклава были автоклавами с гравитационным вытеснением, которые считаются более совершенными по сравнению с автоклавами скороварочного типа, но также не считаются подходящими для этих типов медицинских устройств, поскольку они также не очень эффективны при замещении воздуха паром [42]. Мы обнаружили, что многоразовые медицинские устройства были заключены в барьерную систему для всех циклов обработки. Большая часть стерилизационных загрузок состояла из пористых предметов, и примерно половина из них включала предметы с просветами или трубками.Вытеснение сухого воздуха из таких предметов и проникновение в них пара становится затруднительным при использовании невакуумных автоклавов скороварочного типа или самотечных автоклавов [43].

В большинстве больниц, включенных в это исследование, не было выделенных помещений для обработки медицинских изделий. Количество персонала, выделенного для обработки медицинских изделий, было небольшим (от 1 до 3) независимо от типов и размеров больниц. Только в двух больницах имелись инструкции по стерилизации или технологические схемы, и только в одной были запасные части.Ни в одной из больниц не было записей о техническом обслуживании автоклавов и систем для мониторинга процессов стерилизации с использованием химических или биологических индикаторов. Эти ситуации могут быть косвенно связаны с высокой долей неудачных попыток стерилизации в больницах Непала.

Хотя очевидно, что изученные процессы стерилизации паром не гарантировали стерильность, это не обязательно означает, что инструменты были способны передавать инфекцию. Другие части процесса, такие как дезинфекция, механическая очистка и очистка, а также обезвоживание, могут снизить микробную нагрузку на медицинские устройства, а более восприимчивые организмы могут быть инактивированы в результате проведенного процесса стерилизации.Риск передачи инфекционного заболевания через зараженное медицинское устройство зависит от дополнительных факторов, включая распространенность заболевания среди населения и инфекционность патогена [44,45]. Тем не менее, поставщики медицинских услуг обязаны минимизировать риск для пациентов, и обеспечение эффективной стерилизации многоразовых медицинских устройств является основной обязанностью.

Для обеспечения безопасного повторного использования медицинских устройств критически важно использование надежного и доступного индикатора процесса.Мы обнаружили высокую чувствительность и специфичность химических индикаторов класса 5 по сравнению с биологическими индикаторами в больницах Непала (p <0,001). Важно отметить, что в этом случае индикаторы химического процесса дешевле, чем биологические индикаторы, а их результаты легко интерпретировать и получить сразу после стерилизации. Немедленная доступность результатов помогает при принятии решения о выпуске «стерильных» устройств для немедленного хирургического использования. Таким образом, химический индикатор класса 5 можно с пользой и эффективно использовать в больницах Непала для контроля эффективности каждого цикла стерилизации паром.Однако только биологические индикаторы могут предоставить окончательное свидетельство эффективности процесса стерилизации, и использование биологического индикатора через регулярный интервал времени, например, один раз в неделю рекомендуется как часть программы обеспечения качества; такой подход обеспечит общую эффективность процессов стерилизации в больнице [2,5]. Если с химическим или биологическим индикатором класса 5 был получен неудовлетворительный результат, необходимо провести исследования для выявления причин таких отказов и немедленно принять корректирующие меры.Лента для автоклавов не предназначена для определения эффективности цикла стерилизации паром, а предназначена для информирования медицинских работников о том, подвергались ли упаковки медицинских устройств процессу стерилизации паром путем изменения ее цвета. Кроме того, результаты этого исследования ясно показывают, как и ожидалось, что изменение цвета автоклавной ленты не означает стерильность медицинских устройств и, следовательно, его нельзя использовать для мониторинга эффективности стерилизации паром.

Насколько нам известно, доля отказов при стерилизации паром, о которой сообщается в этом исследовании, для государственных больниц первичной и вторичной медицинской помощи в Непале является самой высокой среди показателей доли отказов при стерилизации паром, о которых сообщается во всем мире.Очевидно, что существует острая необходимость в корректировке практики паровой стерилизации в этих больницах, уделяя особое внимание используемому стерилизационному оборудованию (автоклавам) и температуре / давлению стерилизации, достигаемым во время циклов стерилизации. Однако все процессы, связанные с циклами стерилизации паром, включая очистку, осмотр, упаковку, стерилизацию, транспортировку и использование, должны выполняться в соответствии со стандартными процедурами, чтобы гарантировать достижение и поддержание рекомендуемого уровня стерильности медицинских изделий.Также должны быть внедрены процессы управления и поддержки, необходимые для обеспечения стерильности медицинских изделий. Улучшение практики паровой стерилизации в этих больницах могло бы способствовать снижению бремени ИСМП в этих больницах и, таким образом, спасти множество жизней. Это исследование может предупредить другие страны с низким и средним уровнем дохода о возможных недостатках в практике стерилизации паром и предоставить путь для выявления и улучшения практики и снижения вреда, причиняемого госпитализацией.

Список литературы

  1. 1.
    Сполдинг Э. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. Дезинфекция, стерилизация и консервация. 1968: 517–531.
  2. 2.
    Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ). Обеззараживание и переработка медицинских изделий для медицинских учреждений. 2016 г. [цитировано 17 декабря 2017 г.] –Доступно по адресу: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/250232/1/9789241549851-eng.pdf.
  3. 3.
    Альфа MJ. Обработка медицинских изделий.Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 2000; 21 (8): 496–498. pmid: 10968713
  4. 4.
    Рутала WA, Вебер DJ. Инфекционный контроль: роль дезинфекции и стерилизации. J Hosp Infect. 1999; 43: S43 – S55. pmid: 10658758
  5. 5.
    Rutala WA, Weber DJ, Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в здравоохранении. Руководство по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях, 2008 г. [цитировано 2 августа 2017 г.] –Доступно по адресу: https://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/Disinfection_Nov_2008.pdf.
  6. 6.
    Esel D, Doganay M, Bozdemir N, Yildiz O, Tezcaner T, Sumerkan B, Aygen B, Selcuklu A. Полимикробный вентрикулит и оценка вспышки в хирургическом отделении интенсивной терапии из-за недостаточной стерилизации. J Hosp Infect. 2002; 50 (3): 170–174. pmid: 11886191
  7. 7.
    Танцовщица С.Дж., Стюарт М., Куломб С., Грегори А., Вирди М. Инфекции в области хирургического вмешательства, связанные с зараженными хирургическими инструментами. J Hosp Infect. 2012; 81 (4): 231–238. pmid: 22704634
  8. 8.Тош П.К., Дисбот М., Даффи Дж. М., Бум М.Л., Хеселтин Г., Сринивасан А., Гулд К.В., Берриос-Торрес С.И. Вспышка инфекции области хирургического вмешательства, вызванной Pseudomonas aeruginosa, после артроскопических процедур: Техас, 2009. Infect Control Hosp Epidemiol. 2011; 32 (12): 1179–1186. pmid: 22080656
  9. 9.
    Хильди М., Браун-Эллиотт Б.А., Дуглас М., Карри Дж., Сесиль Т., Яншенг З., Уоллес-младший Р.Дж. Вспышка инфекции Mycobacterium chelonae после липосакции. Clin Infect Dis. 2002; 34 (11): 1500–1507.pmid: 12015697
  10. 10.
    Лу В.П., Линь Г.Х., Ши С., Донг Дж. Х. Одновременно высокая распространенность вирусной инфекции гепатита B и C среди населения в округе Путянь, Китай. J Clin Microbiol. 2012; 50 (6): 2142–2144. pmid: 22403430
  11. 11.
    ВОЗ. Отчет о бремени эндемических инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, во всем мире. 2011 г. [цитировано 7 июля 2016 г.] –Доступно по адресу: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/80135/1/9789241501507_eng.pdf.
  12. 12.
    Гири BR, Pant HP, Шанкар PR, Sreeramareddy CT, Сен ПК.Инфекция в области хирургического вмешательства и использование антибиотиков в больнице третичного уровня в Непале. J Pak Med Assoc. 2008; 58 (3): 148–151. pmid: 18517124
  13. 13.
    Giri S, Kandel BP, Pant S, Lakhey PJ, Singh YP, Vaidya P. Факторы риска инфекций в области хирургического вмешательства в абдоминальной хирургии: исследование в Непале. Хирургическая инфекция. 2013; 14 (3): 313–318.
  14. 14.
    Шреста С., Венджу П., Шреста Р., Кармачарья Р. М.. Заболеваемость и факторы риска инфекций в области хирургического вмешательства в университетской больнице Катманду, Кавре, Непал.Медицинский журнал Университета Катманду. 2016; 14 (54): 107–111.
  15. 15.
    Чапагейн К., Покхарел Р., Ачарья Р., Шах С., Паранджапе Б.Д. Заболеваемость послеоперационной раневой инфекцией после использования антибиотиков в хирургии чистой загрязненной головы и шеи в центре третичной медицинской помощи в Восточном Непале. Биратский журнал медицинских наук. 2017; 1 (1): 51–55.
  16. 16.
    Скауг Н. Надлежащий мониторинг процедур стерилизации, используемых в челюстно-лицевой хирургии. Int J Oral Maxillofac Surg. 1983; 12 (3): 153–158.
  17. 17.
    Паленик CJ, King TN, Newton CW, Miller CH, Koerber LG. Обзор методов стерилизации в выбранных эндодонтических кабинетах. Дж. Эндод. 1986; 12 (5): 206–209. pmid: 3459805
  18. 18.
    Scheutz F, Reinholdt J. Результат стерилизации паровыми автоклавами в датских стоматологических кабинетах. Eur J Oral Sci. 1988; 96 (2): 167–170.
  19. 19.
    Мессиха Н, Розен С, Бек FM. Оценка мониторинга стерилизации для стоматологических кабинетов в Огайо. Огайо Дент Дж. 1990; 64 (2): 8.pmid: 2129135
  20. 20.
    Макэрлан Б., Роузбуш В.Дж., Уотерфилд Д.Д. Оценка эффективности стоматологических стерилизаторов с помощью биомониторов. J Can Dent Assoc. 1992; 58 (6): 481–483. pmid: 1633580
  21. 21.
    Берк Ф. Дж., Колтер В. А., Чунг С. В., Паленик С. Дж.. Производительность автоклава и практические знания об использовании автоклава: обзор избранных практик в Великобритании. Quintessence Int. 1998; 29 (4): 231–238. pmid: 9643261
  22. 22.
    Скауг Н., Лингаас Э., Нильсен Э., Паленик С.Дж.Биологический мониторинг стерилизаторов и отказов стерилизации в норвежских стоматологических кабинетах в 1985 и 1996 годах. Acta Odontologica Scandinavica. 1999; 57 (4): 175–180. pmid: 10540925
  23. 23.
    Coulter WA, Chew-Graham CA, Cheung SW, Burke FJ. Производительность автоклава и знания оператора об использовании автоклава в первичной медико-санитарной помощи: обзор практики Великобритании. J Hosp Infect. 2001; 48 (3): 180–185. pmid: 11439004
  24. 24.
    Acosta-Gío AE, Mata-Portuguez VH, Herrero-Farías A, Pérez LS.Биологический мониторинг стерилизаторов стоматологических кабинетов в Мексике. Am J Infect Control. 2002; 30 (3): 153–157. pmid: 11988709
  25. 25.
    Келкар У., Бал А.М., Кулкарни С. Мониторинг процесса паровой стерилизации по биологическим показателям — необходимый инструмент наблюдения. Am J Infect Control. 2004; 32 (8): 512–513. pmid: 15609450
  26. 26.
    Хили С.М., Кирнс Х.П., Колтер В.А., Стивенсон М., Берк Ф.Дж. Использование автоклава в стоматологической практике Ирландии. Int Dent J. 2004; 54 (4): 182–186.pmid: 15335087
  27. 27.
    Чан А.В., Закон NC. Производительность автоклава в частной стоматологической практике в Гонконге. Гонконг Дент Дж. 2007; 4: 102–112.
  28. 28.
    Миранзаде М.Б., Сабахибидголи М., Афшар М., Зарджам Р. Исследование биологического мониторинга паровых стерилизаторов в государственных больницах Кашана в 2011 году. JASES. 2013; 8 (1): 61–66.
  29. 29.
    Окемва К.А., Кибосиа С.Дж., Ньямагоба Х. Практика и мониторинг стерилизации инструментов в частных и государственных стоматологических клиниках в муниципалитетах Элдорет, Накуру и Кисуму в Западной Кении.J Kenya Den Assoc. 2014; 5: 219–226.
  30. 30.
    Патиньо-Марин Н., Мартинес-Кастаньон Г.А., Завала-Алонсо Н.В., Медина-Солис CE, Торрес-Мендес Ф., Сепеда-Аргуэльес О. Биологический мониторинг и причины сбоев в циклах стерилизации в стоматологических кабинетах в Мексике. Am J Infect Control. 2015; 43 (10): 1092–1095. pmid: 261
  31. 31.
    Департамент здравоохранения — Министерство здравоохранения и народонаселения — Правительство Непала. Годовой отчет 2013/2014. [цитировано 17 августа 2015 г.] –Доступно по адресу: http: // dohs.gov.np/wp-content/uploads/2014/04/Annual_Report_2070_71.pdf.
  32. 32.
    Беннетт С., Вудс Т., Лиянаге В.М., Смит Д.Л. Упрощенный общий метод для кластерных выборочных обследований здоровья в развивающихся странах. Мировая статистика здравоохранения, квартал 1991 г .; 44 (3): 98–106. pmid: 1949887
  33. 33.
    Биологический индикатор Mesa Labs Inc. ProSpore2. 2015 г. [цитировано 6 июня 2015 г.] –Доступно по адресу: http://biologicalindicators.mesalabs.com/prospore2/.
  34. 34.
    Mesa Labs Inc. Многопараметрические индикаторы и интеграторы.2015 г. [цитировано 6 июня 2015 г.] –Доступно по адресу: http://biologicalindicators.mesalabs.com/multi-variable-indicators-and-integrators/.
  35. 35.
    Индикаторы процесса Mesa Labs Inc. 2015 [цитировано 6 июня 2015 года] –Доступно по адресу: http://biologicalindicators.mesalabs.com/process-indicators/.
  36. 36.
    Международная Организация Стандартизации. ISO 17665–1: 2006 E. Стерилизация медицинских изделий — Влажное тепло — Часть 1: Требования к разработке, валидации и текущему контролю процесса стерилизации медицинских изделий.Женева, Швейцария: ISO; 2006.
  37. 37.
    Международная Организация Стандартизации. ISO / TS 17665–2: 2009 E. Стерилизация медицинских изделий — Влажное тепло — Часть 2: Руководство по применению ISO 17665–1. Женева, Швейцария: ISO; 2009
  38. 38.
    Киркоф С., Кширсагар Т., Беннаарс-Эйден А. Эмулирующие индикаторы класса 6 и интегрирующие индикаторы класса 5: сравнение их способности обнаруживать сбои температуры в цикле стерилизации паром. 2009 [цитируется 23 сентября 2016 года].В: 3M Science [Интернет]. Доступно по адресу: http://multimedia.3m.com/mws/media/575962O/comparison-of-class-6-and-class-5-indicators-hi-res-complete.pdf.
  39. 39.
    Ван Дорнмален Дж. П., Вершуерен М., Копинга К. Проникновение водяного пара в узкие каналы во время процессов паровой стерилизации. J. Phys D: Appl Phys. 2013; 46 (6): 065201.
  40. 40.
    Перкинс Дж. Принципы и методы стерилизации в медицинских науках. Спрингфилд, Иллинойс: Томас; 1956.
  41. 41.Макдоннелл Дж., Шеард Д. Практическое руководство по дезактивации в здравоохранении. Джон Уайли и сыновья; 2012.
  42. 42.
    Хьюз Дж. Стерилизация предметов медицинского назначения паром: Общая теория. 3-е изд. Том I. Вагенинген, Нидерланды: MHP Verlag GmbH и Heart Consultancy; 2010.
  43. 43.
    Винтер С., Смит А., Лаппин Д., МакДонах Дж., Кирк Б. Исследование проникновения пара с использованием термометрических методов в стоматологические наконечники с узкими внутренними просветами во время процессов стерилизации без использования вакуума или вакуума.J Hosp Infect. 2017; 97 (4): 338–342. pmid: 28778810
  44. 44.
    Донски CJ, Yowler M, Falck-Ytter Y, Kundrapu S, Salata RA, Rutala WA. Пример из практики оценки в реальном времени риска передачи заболевания, связанного с несоблюдением рекомендованных процедур стерилизации. Антимикробная защита от инфекций. 2014; 3 (1): 4. pmid: 24447336
  45. 45.
    Рутала WA, Вебер DJ. Как оценить риск передачи болезни пациентам при несоблюдении рекомендованных руководств по дезинфекции и стерилизации.Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 2007; 28 (2): 146–155. pmid: 17265395

Автоклав

: использование, рекомендации и стоимость

Что такое автоклав?

Автоклавы

также известны как паровые стерилизаторы и обычно используются в здравоохранении или в промышленности. Автоклав — это машина, которая использует пар под давлением для уничтожения вредных бактерий, вирусов, грибков и спор на предметах, помещенных в сосуд под давлением.Предметы нагреваются до соответствующей температуры стерилизации в течение определенного времени. Влага пара эффективно передает тепло предметам, разрушая белковую структуру бактерий и спор.

В здравоохранении термин «автоклав» обычно используется в качестве номенклатуры для описания парового стерилизатора. В стандарте ANSI / AAMI 4 , который предоставляет стандарты и рекомендации по обработке медицинских устройств, автоклавы для здравоохранения, в частности, паровые стерилизаторы.

Ознакомьтесь с нашими паровыми стерилизаторами

Кто изобрел автоклав?

Рис. 1 первый паровой стерилизатор, построенный
в 1880 году Чарльзом Чемберлендом

Паровой варочный котел, прототип автоклава, который теперь более известен как скороварка, был изобретен французским физиком Дени Папеном в 1679 году. 1 Французский микробиолог Шарль Чемберленд создал только в 1879 году. новая версия, названная автоклавом, предназначена для использования в медицине.

Наука о дезинфекции и стерилизации началась в 1881 году с исследования Робертом Кохом дезинфицирующих свойств пара и горячего воздуха. Он продемонстрировал большую проникающую способность влажного тепла (пара) по сравнению с сухим теплом. Наконец, в 1933 году была представлена ​​современная автоклавная технология с первым паровым стерилизатором под давлением, который контролировал производительность путем измерения температуры в дренажной линии камеры (термостатическая ловушка). До этой даты давление было единственным показателем контроля без каких-либо средств для проверки температуры или удаления воздуха.

Со временем была разработана новая технология автоклавов, включая циклы предварительного вакуумирования в 1958 году и импульсное давление с промывкой паром в 1987 году, что позволило науке развиться в автоклавы или паровые стерилизаторы, используемые сегодня в больницах.

Как работает автоклав?

Рис. 2 Пример распечатки ленты цикла
, показывающей три фазы
процесса.

Автоклавы обычно используются в медицинских учреждениях для стерилизации медицинских устройств. Предметы, подлежащие стерилизации, помещаются в сосуд высокого давления, обычно называемый камерой.Три фактора имеют решающее значение для обеспечения успешной стерилизации паром в автоклаве: время, температура и качество пара.

Для удовлетворения этих требований процесс автоклавирования состоит из трех этапов:

  1. Фаза кондиционирования (C): Воздух препятствует стерилизации и должен быть удален из камеры во время первой фазы цикла стерилизации, известной как кондиционирование. В паровых стерилизаторах с динамическим удалением воздуха воздух может быть удален из камеры с помощью вакуумной системы.Его также можно удалить без вакуумной системы, используя серию продувок паром и импульсов давления. Стерилизаторы гравитационного типа используют пар для вытеснения воздуха в камере и вытеснения воздуха через слив стерилизатора.
  2. Фаза воздействия (S): После удаления воздуха слив стерилизатора закрывается, и пар непрерывно поступает в камеру, быстро повышая давление и температуру внутри до заданного уровня. Цикл переходит в фазу экспонирования, и предметы выдерживаются при температуре стерилизации в течение фиксированного времени, необходимого для их стерилизации.
  3. Фаза выпуска (E): Во время заключительной фазы цикла, выпуска, слив стерилизатора открывается и пар удаляется, сбрасывая давление в емкости и позволяя предметам в загрузке высохнуть.

Качественный пар жизненно важен для успешного процесса стерилизации в автоклаве. Пар, используемый для стерилизации, должен состоять на 97% из пара (пар) и 3% влаги (жидкая вода). Это соотношение рекомендуется для наиболее эффективной передачи тепла. Когда влажность пара составляет менее 3%, пар описывается как перегретый (или сухой).Перегретый пар слишком сухой для эффективной передачи тепла и неэффективен для стерилизации паром. 2

Каков диапазон температур автоклава?

Обычно рекомендуемые температуры для стерилизации паром: 250 ° F (121 ° C), 270 ° F (132 ° C) или 275 ° F (135 ° C). Чтобы убить любые присутствующие микроорганизмы, стерилизуемые предметы должны подвергаться воздействию этих температур в течение минимального времени, рекомендованного производителем обрабатываемого устройства.

Каков временной интервал цикла автоклава?

Время воздействия — это время, необходимое для стерилизации устройства, и не включает в себя время всего цикла.Существует соотношение времени и температуры для надлежащей стерилизации паром, которое было разработано научными испытаниями и используется во всех методах стерилизации для создания так называемой фазы полного воздействия. Периоды воздействия при стерилизации паром зависят, среди прочего, от размера, формы, веса, плотности и состава материала стерилизуемого устройства.

Насколько велик автоклав?

Размер стерилизатора будет варьироваться в зависимости от емкости, необходимой для зоны, где будет использоваться автоклав.Например, в стоматологическом кабинете автоклав может просто стоять на столешнице, где оборудование необходимо только для стерилизации небольших пакетов инструментов. Стерилизатор немедленного использования обычно требуется рядом с операционной, и может потребоваться обрабатывать только 1-3 подноса инструментов за раз. Однако большинство медицинских учреждений имеют больших автоклавов в своем отделении стерильной обработки (SPD), которые могут обрабатывать 15-20 лотков инструментов за цикл или даже до 625 фунтов инструментов за цикл в зависимости от размера.

Автоклавы промышленного размера для производственных процессов могут быть очень большими, некоторые сравнимы с размером грузовика или самолета.

Что такое автоклавирование?

Устройства должны быть совместимы с процессом автоклавирования. Автоклавируемые предметы должны быть совместимы с условиями высокой температуры и влажности и должны обрабатываться в соответствии с письменными инструкциями производителя по применению. Медицинские устройства, контактирующие со стерильными тканями или жидкостями организма, считаются критически важными.Эти предметы могут включать хирургические инструменты, имплантированные медицинские устройства, хирургические простыни и постельное белье. Эти предметы должны быть стерильными при использовании, поскольку любое микробное заражение может привести к передаче инфекции. Пар часто является предпочтительным стерилизующим средством для стерилизации предметов, устойчивых к воздействию тепла и влаги, поскольку он надежен, устойчив и опасен для микроорганизмов, а также безопасен для персонала, обслуживающего автоклав. 2

Сколько стоит автоклав?

Стоимость автоклава может сильно различаться из-за различных применений и применений этой технологии.Промышленные и фармацевтические автоклавы настраиваются и изготавливаются для конкретного использования, поэтому их стоимость, вероятно, будет отличаться от стоимости автоклавов, которые вы найдете в больнице или стоматологическом кабинете.

В области здравоохранения стоимость автоклава может варьироваться в зависимости от емкости и способа установки. Помимо первоначальной стоимости автоклава, следует учитывать обслуживание и стоимость продуктов для обеспечения стерильности и мониторинга . В зависимости от производителя автоклава затраты на цикл, потребление коммунальных услуг и затраты на техническое обслуживание могут изменяться с течением времени, и их следует оценивать, чтобы сравнить общую стоимость владения с течением времени.

Сравнение промышленных автоклавов и медицинских автоклавов

Автоклавы

могут использоваться в различных промышленных и медицинских целях. Промышленные автоклавы используются в производственных условиях для обработки деталей и материалов с использованием нагретого пара и давления: например, при производстве обработанной под давлением древесины и специальных каучуков, используемых в шинах вашего автомобиля. Автоклавы также используются в научных исследованиях и фармацевтической промышленности — помимо стерилизационного оборудования, используемого в лабораторных исследованиях, большинство автоклавов оснащены жидкостным циклом для стерилизации жидкостей, используемых в лабораторных условиях.

Медицинские паровые стерилизаторы используются в медицинских учреждениях для стерилизации предметов, устойчивых к нагреванию и влаге, таких как хирургические инструменты, имплантированные медицинские устройства, хирургические простыни и постельное белье. Циклы, используемые в медицинских паровых стерилизаторах, разработаны и утверждены в соответствии с признанными отраслевыми стандартами. В Соединенных Штатах паровые стерилизаторы, используемые в здравоохранении, должны быть допущены к использованию Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов для использования по назначению производителя стерилизатора.

1 https://www.britannica.com/technology/autoclave
2 https://university.steris.com/course/understanding-steam-sterilization/
3 https://www.cdc.gov/hicpac/ Disinfection_Sterilization / 13_0Sterilization.html
4 (ANSI) Американский национальный институт стандартов Inc./(AAMI) Ассоциация развития медицинского оборудования

Дополнительные ссылки

Ассоциация развития медицинского оборудования. (2017). ANSI / AAMI ST79: 2017 подробное руководство по стерилизации паром и обеспечению стерильности в медицинских учреждениях.
Ассоциация медсестер. (2016). Руководство по периоперационной практике.
Международная ассоциация управления материальными ресурсами центральных служб здравоохранения.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *