Наименование объектов при химическом методе стерилизации: III. Химический метод стерилизации (растворы химических препаратов)

III. Химический метод стерилизации (растворы химических препаратов)

*
— Технология, контроль качества и срок
годности раствора водорода перекиси
6%, изготовляемого в аптеках (Методические
указания утв. 18.07.1996)

*
Интервал времени от начала изготовления
раствора до стерилизации не должен
превышать 3-х часов.

Наименование объекта	Стерили-зующий агент	Режим стерилизации*				Условия проведения стерилизации	Срок сохранения простерилизованного изделия.
		Температура, оС		Время выдержки, мин.
		Номин. знач.	Пред. откл.	Номин. знач.	Пред. откл.
Изделия из стекла и коррозийно-стойких металлов и сплавов, полимерных материалов, резины.	6 %-ный раствор* перекиси водорода (ГОСТ 177-88)	18 50	— 2	360 180	5 5	Закрытые емкос-ти из стекла, пластмассы или покрытые эмалью (эмаль без поврежде-ния). Стерилизацию проводят при полном погру-жении изделия в раствор на время стерилизационной выдержки, после чего изделие про-мывают стериль-ной водой в сте-рильной емкости	В стерильной емкости (стерилизационная коробка), выложенной простыней – 3 суток.
№	Наименование объекта контроля	Требования к микробиологической чистоте	Нормативный документ
1	2	3	4
1	Вода очищенная	Не более 100 микроорганизмов в 1 мл при отсутствии Enterobacteriaceae, P.aeruginosa, S.aureus	ФС 42-2619-97
2	Вода для инъекций	Апирогенность	ФС 42-2620-97
3	Инъекционные растворы после стерилизации *	Cтерильность	ГФ XI, вып. 2, стр. 187
4	Глазные капли после стерилизации	Стерильность	ГФ XI, вып. 2, стр. 187
4.1	Глазные капли, приготовленные в асептических условиях на стерильной воде	Стерильность	ГФ XI, вып. 2, стр. 187
5	Основное сырье (субстанции) для производства стерильных препаратов	Не более 100 бактерий и грибов суммарно в 1 г или 1 мл при отсутствии Enterobacteriaceae, P.aeruginosa, S.aureus	Изменение к статье ГФ XI, вып. 2, стр. 187 «Методы микробиологического контроля лекарственных средств» (1995 г.)
6	Лекарственные средства для новорожденных (растворы для внутреннего и наружного применения, глазные капли, масла для обработки кожных покровов)	Стерильность	Приказ МЗ СССР N 1026 от 19.10.82 «Об усилении контроля за санитарным состоя- нием родильных домов, детских лечебно-профилактических учреждений и аптек»
7	Детские лекарственные средства (от 0 до 1 года)	Не более 50 бактерий и грибов суммарно в 1 г или 1 мл при отсутствии Enterobacteriaceae, P.aeruginosa, S.aureus	Изменение к статье ГФ XI, вып. 2, стр. 187 «Методы микробиологического контроля лекарственных средств» (1995 г.) Методические указания по изготовлению стерильных растворов в аптеках (1994 г.)

Тесты: Санитарно — противоэпидемиологический режим

Раздел: Санитарно — противоэпидемиологический режим

1. Пути передачи внутрибольничной инфекции:

а) парентеральный
б) контактный
в) воздушно-капельный
г) фекально-оральный
д) биологический
е) химический

2. Санитарно-противоэпидемиологический режим означает проведение комплекса мероприятий:

а) по профилактике экзогенных интоксикаций
б) направленных на пропаганду «Здорового образа жизни»
в) по профилактике внутрибольничной инфекции

3. Срок наблюдения за контактными при менингите:

а) 10 дней
б) 7 дней
в) 35 дней
г) 1 месяц

4. Срок наблюдения за контактными при брюшном тифе:

а) 21 день
б) 35 дней
в) 6 месяцев

5. При подозрении на дифтерию мазок берется:

а) из слизистой зева и носа
б) только из слизистой носа
в) только из слизистой зева

6. При выявлении носителя австралийского антигена, текущая дезинфекция проводится:

а) 1% раствором хлорамина
б) 3% раствором хлорамина
в) только 5% раствором хлорамина

7. Камерная дезинфекция белья, одежды пациента проводится при:

а) обнаружении вшей
б) общем загрязнении
в) госпитализации пациента

8. Срок наблюдения за контактными с больным дизентерией:

а) 10 дней
б) 7 дней
в) 21 день

9. Сухую хлорную известь используют для обработки:

а) туалетов
б) оформленного кала
в) жилых помещений
г) рвотных масс и испражнений

10. Контактным с больными вирусным гепатитом вводится:

а) гамма — глобулин
б) интерферон
в) сыворотка

11. Факторы передачи при гепатите «В»:

а) кровь
б) сперма
в) медицинский инструментарий
г) продукты питания
д) воздух

12. Инкубационный период гепатита «В»:

а) 35 дней
б) 6 месяцев
в) 2 месяца

13. Постельные принадлежности пациента вирусным гепатитом подлежат:

а) камерной дезинфекции
б) стирке в прачечной
в) дезинфекции в 2% растворе соды

14. Факторы передачи гепатита «А»:

а) пищевые продукты, загрязненные выделениями больного
б) руки медперсонала, загрязненные выделениями больного
в) шприцы, медицинский инструментарий

15. Пути передачи гепатита «В»:

а) половой
б) парентеральный
в) фекально-оральный
г) аспирационный

16. Источник инфекции при гепатите «В»:

а) медицинский инструментарий
б) больной гепатитом
в) вирусоноситель
г) кровь

17. Предметы ухода за пациентами вирусным гепатитом можно обеззараживать:

а) путем двукратного протирания ветошью, смоченной в 3% растворе хлорамина
б) однократным протиранием ветошью, смоченной в 3% растворе хлорной извести

18. Пути передачи гепатита «А»:

а) половой
б) парентеральный
в) фекально-оральный

19. Инкубационный период гепатита «А»:

а) 35 дней
б) 6 месяцев
в) 1 год

20. Текущая уборка процедурного кабинета проводится:

а) не менее 2 раз в сутки
б) перед началом работы, 1 раз в день

21. Смена халата медицинской сестры процедурного кабинета должна проводиться:

а) ежедневно
б) 2 раза в неделю
в) 1 раз в неделю

22. Стерильный стол в процедурном кабинете накрывается:

а) перед началом работы, на одну смену
б) накануне вечером

23. При повреждении кожи рук медсестры, во время манипуляции проводимой ВИЧ-инфицированному, необходимо:

а) выдавить кровь из раны, обработать рану 5% спиртовым раствором йода
б) обработать рану 5% спиртовым раствором йода
в) обработать рану 0,05% раствором марганцовокислого калия

24. Изделия однократного применения подлежат дезинфекции в растворе:

а) 5% хлорамина
б) 6% перекиси водорода
в) 0,5% нейтрального гипохлорида калия
г) 3% хлорамина

25. После забора крови, медицинская сестра промыла инструменты под проточной водой:

а) действие медсестры правильное
б) действие медсестры неправильное

26. Химический метод стерилизации:

а) дезоксон — 1 (1%) в течение 45 минут
б) глютаровый альдегид 2,5% при температуре 18°-20°С в течение 6 часов
в) 3% перекись водорода — 6 часов

27. Срок хранения стерильных изделий в асептических условиях без упаковки:

а) 6 часов
б) 3 суток
в) 20 суток

28. Срок хранения изделий в упаковке из бумаги мешочной влагопрочной:

а) трое суток
б) двадцать суток
в) одни сутки

29. Раствор Дезоксона-1 для стерилизации можно применять:

а) в течение 24 часов
б) однократно
в) до изменения окраски раствора

30. Наименование объектов при химическом методе стерилизации:

а) шприцы, иглы, хирургические инструменты
б) ватные шарики
в) изделия из металла, стекла
г) резина, полимерные материалы
д) хлопчатобумажная ткань

31. Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в биксах без фильтра:

а) 3 суток
б) 1 день
в) 20 суток

32. Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в двойной мягкой упаковке из бязи:

а) 3 суток
б) 1 день
в) 20 суток

33. Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в бумаге мешочной влагопрочной:

а) 3 суток
б) 6 суток

34. Химический контроль стерилизации- при режиме 132°С — 20 минут — 2 атмосфер:

а) мочевина
б) никотинамид
в) ТВИИС — 132°С
г) бензойная кислота

35. Режимы при паровом методе стерилизация:

а) 2 атм. 132°С — 20 минут
б) 1,1 атм. — 120°С — 45 минут
в) 160°С — 2,5 часа
г) 180°С — 1 час

36. Объекты стерилизации при паровом методе стерилизации:

а) изделия из металла, стекла
б) резиновые перчатки
в) текстильный материал
г) изделия из полимерных материалов
д) только изделия из хлопчатобумажной ткани

37. Медсестра простерилизовала шприцы воздушным методом в открытом виде. Тактика медсестры:

а) правильная
б) неправильная

38. Воздушный метод стерилизация проводится в:

а) автоклаве
б) сухожаровом шкафу
в) в специальном помещении при t=100°С

39. Изделия, простерилизованные без упаковки используются:

а) непосредственно после стерилизации
б) в течение суток, в асептических условиях

40. Методы стерилизации:

а) паровой
б) воздушный
в) химический
г) газовый
д) механический

41. Воздушный метод стерилизации применяется для изделий из:

а) металла
б) хлопчатобумажной ткани
в) стекла
г) силиконовой резины

42. Азопирамовая проба, ставится:

а) на горячих инструментах
б) при температуре окружающей среды свыше 30°С
в) при комнатной температуре

43. Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют нанесением:

а) 2-3 капель раствора на кровяное пятно
б) 2-3 капель раствора на стерильный ватный шарик

44. Для постановки фенолфталеиновой пробы готовят:

а) 1% спиртовой раствор фенолфталеина
б) 5% спиртовой раствор фенолфталеина

45. Рабочий раствор азопирама готовят:

а) непосредственно перед постановкой пробы
б) накануне, за день до постановки пробы

46. Рабочий раствор азопирама готовится смешиванием равного количества:

а) азопирама
б) 3% перекиси водорода
в) 5% спиртового раствора амидопирина

47. Рабочий раствор азопирама может быть использован в течение:

а) 1-2 часов
б) 24 часов
в) 7 дней

48. Мойка каждого изделия в моющем растворе проводится в течение:

а) 0,5 минут (30 секунд)
б) 1 минуты (60 секунд)

49. Ополаскивание инструментов проточной водой после моющего средства «Биолот» проводится

а) 3 минуты
б) 5 минут
в) 10 минут

50. Ополаскивание изделий медицинского назначения под проточной водой после моющих средств «Лотос», «Лотос -автомат» проводится в течение:

а) 10 минут
б) 3 минуты
в) 5 минут

51. При предстерилизационной очистке мед. инструментария замачивание в моющем средстве проводится:

а) при полном их погружении в раствор
б) в зависимости от вида моющего средства

52. Режим предстерилизационной очистки при применении моющего средства «Лотос»:

а) 50°С — 15 минут
б) 40°С — 15 минут
в) 60°С — 10 минут

53. Моющий раствор подлежит замене:

а) при изменении его окраски
б) каждые три часа
в) при снижении температуры ниже 50°С

54. Температура моющего раствора во время замочки инструментария:

а) поддерживается в пределах 40°-50°С
б) не поддерживается
в) поддерживается в зависимости от вида моющего средства

55. Ополаскивание шприцев и игл под проточной водой от моющего раствора проводится:

а) в зависимости от вида моющего средство от 3 до 10 минут
б) в течение 10 минут

56. Наличие остатком моющих средств на инструментах проверяется с помощью:

а) фенолфталеиновой пробы
б) азопирамовой или амидопириновой пробы

57. Положительная реакция на наличие скрытой крови дает:

а) розовое окрашивание
б) сиренево-фиолетовое окрашивание

58. Для приготовления моющего раствора из средства «Биолот»:

а) используется 3%перекись водорода
б) перекись водорода не используется

59. Азопирамовая проба проводится для определения остатков:

а) крови
б) гноя
в) хлора
г) моющего средства

60. Для приготовления 1 литра моющего средства «Зифа» необходимо:

а) 5 гр. порошка и 995 мл воды
б) 50 гр. порошка и 950 мл воды

61. Моющий раствор с использованием средства «Зифа» может быть использован:

а) дважды в течение рабочей смены, если его внешний вид не изменился
б) до 6 раз, если внешний вид раствора не изменился

62. Срок годности моющего раствора из средства «Зифа»:

а) рабочая смена (6 часов)
б) 12 часов
в) 24 часа

63. Дезинфекция шпателей проводится кипячением в:

а) 2% содовом растворе — 15 мин.
б) дистиллированной воде — 30 мин
в) 1% хлорамине — 15 минут

64. Дезинфекция медицинских термометров проводится в растворе:

а) 0,5% хлорамина — 30 минут
б) 2% хлорамина — 5 минут
в) 2,5% раствор хлоргексидина — 30 минут
г) 6% перекиси водорода — 60 минут

65. Дезинфекция резиновых грелок, пузырей для льда проводится:

а) двухкратным протиранием ветошью, смоченной 1% хлорамином с интервалом 15 минут
б) однократным протиранием ветошью, смоченной 3% хлорамином

66. Наконечники для клизм обеззараживаются в растворе:

а) 3% хлорамина — 60 мин
б) 2% питьевой соды — кипячением в течение 15 мин
в) 0,05% нейтрального анолита 30 мин
г) 4% перекиси водорода — 90 минут
д) 3% перекиси водорода — 15 минут

67. После дезинфекции наконечники промываются и подвергаются:

а) предстерилизационной очистке
б) стерилизации

68. Нейтральный анолит, Виркон, Лизетол можно использовать:

а) для дезинфекции и предстерилизационной очистки
б) только для дезинфекции

69. Химический метод дезинфекции изделий медицинского назначения:

а) 70% спирт — 30 мин.
б) 6% перекись водорода — 60 минут
в) 70% спирт — 60 минут
г) 3 % перекись водорода- 60 минут

70. Концентрация раствора и время дезинфекции при применении «Деохлор»:

а) таблетка на 10 литров воды — 60 мин
б) 1 таблетка на 1 литр воды — 30 мин

71. «Деэоформ» и «Бланизол» могут быть применены для:

а) одновременной дезинфекции и предстерилизационной очистки
б) одномоментного проведения всех этапов обработки медицинского инструментария

72. Режим дезинфекции изделий медицинского назначения дезинфицирующим агентом «Пресепт»:

а) 0,1% — 90 минут
б) 0,5% — 90 минут
в) 1% — 60 минут

73. Дезинфекция медицинского инструментария средством «Сайдекс» проводится при режиме:

а) 2% — 15 минут
б) 2% — 60 минут
в) 2% — 20 минут

74. Инструменты из металла, изделия из стекла можно дезинфицировать:

а) сухим горячим воздухом при режиме 120°С — 45 минут
б) сухим горячим воздухом при режиме 160°С — 2,5 часа

75. Дезинфекция инструментария сухим горячим воздухом проводится:

а) без упаковки (на лотках), в воздушном стерилизаторе
б) только в упаковке из бязи, в воздушном стерилизаторе

76. Химический метод дезинфекции медицинского инструментария проводится в:

а) закрытых емкостях из стекла, пластмассы
б) открытых емкостях, покрытых эмалью
в) закрытых емкостях, покрытых эмалью

77. Инструменты из металла, изделия из стекла, резины можно дезинфицировать:

а) кипячением
б) замачиванием в моющем средстве Лотос, Биолот

78. Уничтожение болезнетворного начала на различных объектах внешней среды — это:

а) дезинфекция
б) стерилизация
в) асептика
г) антисептика

79. Влажная уборка помещений стационара должна проводиться не менее:

а) 2 раз в сутки с применением дезинфицирующих средств
б) 3 раз в сутки с применением моющих средств
в) одного раза с применением дезинфицирующих средств

80. 3% раствор хлорной извести готовится из трех литров маточного раствора из:

а) воды до 10 литров
б) воды до 3 литров

81. Источник инфекции при сыпном тифе:

а) зараженные вши
б) постельное белье пациента
в) больной человек
г) выделения больного

82. Контактные с больным гепатитом «В» подлежат наблюдению в течение:

а) 6 месяцев
б) 35 дней

83. Источником инфекции при гепатите «А» является:

а) больной человек
б) столовая посуда
в) предметы ухода

84. Столовая и чайная посуда больного вирусным гепатитом обеззараживается путем:

а) кипячения в 2% растворе пищевой соды в течении 15 минут
б) замачивания в 3% растворе хлорамина на 30 минут
в) замачивания в 3% растворе хлорамина на 60 минут

85. Остатки пищи, больного гепатитом засыпают сухой хлорной известью в соотношении:

а) 1:5
б) 1:2

86. Генеральная уборка процедурного кабинета проводится:

а) 1 раз в неделю
б) 1 раз в 10 дней

87. Генеральная уборка процедурного кабинета проводится:

а) 5% раствором хлорамина
б) 6% перекисью водорода с добавлением 5 гр. моющего средства на 1 литр перекиси водорода
в) 3% раствором хлорамина

88. Выбор метода стерилизации зависит от:

а) особенностей стерилизуемого изделия
б) степени загрязненности изделия

89. Моющий раствор может подогреваться до 6 раз при использовании порошка:

а) Лотос, Лотос — автомат
б) Айна, Астра, Маричка
в) Зифа
г) Луч

РЕЖИМЫ И МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ОТДЕЛЬНЫХ ОБЪЕКТОВI. ПАРОВОЙ МЕТОД (ВОДЯНОЙ НАСЫЩЕННЫЙ ПАРПОД ИЗБЫТОЧНЫМ ДАВЛЕНИЕМ)II. ВОЗДУШНЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (СУХОЙ ГОРЯЧИЙ ВОЗДУХ)III. ХИМИЧЕСКИЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (РАСТВОРЫХИМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ)

к Инструкции по санитарному

режиму аптечных организаций (аптек)

РЕЖИМЫ И МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ОТДЕЛЬНЫХ ОБЪЕКТОВ

I. ПАРОВОЙ МЕТОД (ВОДЯНОЙ НАСЫЩЕННЫЙ ПАР

ПОД ИЗБЫТОЧНЫМ ДАВЛЕНИЕМ)

Таблица 1

┌──────────────────────┬───────────────────────────────────────────────┬─────────────────────────┬─────────────┐
│    Наименование      │           Режим стерилизации <*>              │Условия проведения стери-│    Срок     │
│      объекта         ├────────────────┬───────────────┬──────────────┤лизации в паровом стери- │ сохранения  │
│                      │давление пара в │рабочая темпе- │время стерили-│        лизаторе         │стерильности │
│                      │стерилизационной│ратура в стери-│зационной вы- │                         │             │
│                      │   камере МПА   │лизационной ка-│ держки, мин. │                         │             │
│                      │  (кгс/кв. см)  │   мере, °C    │              │                         │             │
│                      ├──────┬─────────┼───────┬───────┼──────┬───────┤                         │             │
│                      │номин.│  пред.  │ номин.│ пред. │номин.│ пред. │                         │             │
│                      │знач. │  откл.  │ знач. │ откл. │знач. │ откл. │                         │             │
├──────────────────────┼──────┼─────────┼───────┼───────┼──────┼───────┼─────────────────────────┼─────────────┤
│Стеклянная посуда,    │      │         │       │       │      │       │Стерилизацию проводят без│Срок сохране-│
│ступки, изделия из:   │      │         │       │       │      │       │упаковки, или в стерили- │ния стериль- │
│стекла, текстиля      │ 0,20 │ +/- 0,02│  132  │ +/- 2 │  20  │  +2   │зационной коробке, или  в│ности изделий│
│(халаты, вата, марля, │(2,0) │(+/- 0,2)│       │       │      │       │упаковке  из  2-слойной  │в упаковке   │
│фильтровальная бумага)│      │         │       │       │      │       │бязи или пергаментной бу-│3 дня        │
│                      │      │         │       │       │      │       │маги марки А  или Б,  или│             │
│коррозийностойкого    │ 0,11 │  +0,02  │  120  │  +3   │  45  │  +3   │в стеклянных банках      │             │
│металла               │(1,1) │ (+0,2)  │       │       │      │       │                         │             │
├──────────────────────┼──────┼─────────┼───────┼───────┼──────┼───────┼─────────────────────────┼─────────────┤
│Изделия из резины, ла-│      │         │       │       │      │       │Стерилизацию проводят    │             │
│текса и отдельных по- │      │         │       │       │      │       │или / или:               │             │
│лимерных материалов   │ 0,11 │  +0,02  │  120  │  +3   │  45  │  +3   │- без упаковки           │             │
│(полиэтилен высокой   │(1,1) │ (+0,2)  │       │       │      │       │- в стерилизационных     │             │
│плотности, ПВХ-плас-  │      │         │       │       │      │       │  коробках               │             │
│тикаты, фильтры из    │      │         │       │       │      │       │- в двойной мягкой упа-  │             │
│фторопласта и полия-  │      │         │       │       │      │       │  ковке из бязи          │             │
│дерные из лавсана)    │      │         │       │       │      │       │- в пергаментной бумаге  │             │
│                      │      │         │       │       │      │       │  марки А или Б          │             │
│                      │      │         │       │       │      │       │- в стеклянных банках,   │             │
│                      │      │         │       │       │      │       │  колбах                 │             │
└──────────────────────┴──────┴─────────┴───────┴───────┴──────┴───────┴─────────────────────────┴─────────────┘

———————————

<*> Контроль температурного режима паровой стерилизации осуществляют максимальным термометром со шкалой на 150° C или термопарами. В качестве химического термотеста используют смесь бензойной кислоты с фуксином (10:1), температура плавления 121° C.

II. ВОЗДУШНЫЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (СУХОЙ ГОРЯЧИЙ ВОЗДУХ)

Таблица 2

┌──────────────────┬───────────────────────────┬───────────────┬──────────────┐
│   Наименование   │   Режим стерилизации <*>  │   Условия     │     Срок     │
│     объекта      ├──────────────┬────────────┤  проведения   │ сохранности  │
│                  │рабочая темпе-│время стери-│ стерилизации  │ стерильности │
│                  │ратура в сте- │лизационной │ в воздушном   │              │
│                  │рилизационной │ выдержки,  │ стерилизаторе │              │
│                  │  камере, °C  │    мин.    │               │              │
│                  ├───────┬──────┼──────┬─────┤               │              │
│                  │номин. │ пред.│номин.│пред.│               │              │
│                  │ знач. │ откл.│знач. │откл.│               │              │
├──────────────────┼───────┼──────┼──────┼─────┼───────────────┼──────────────┤
│Стеклянная посуда,│ 180   │  +2  │  60  │ +5  │Стерилизации   │- Изделия,    │
│ступки, изделия из│       │ -10  │      │     │подвергают     │  простерили- │
│стекла, металла и │ 160   │  +2  │ 150  │     │сухие изделия. │  зованные    │
│силиконовой резины│       │ -10  │      │     │Стерилизацию   │  в упаковке, │
│                  │       │      │      │     │проводят:      │  хранятся    │
│                  │       │      │      │     │- в упаковке   │  3 суток     │
│                  │       │      │      │     │  из бумаги    │              │
│                  │       │      │      │     │  (мешочной    │- Без упаковки│
│                  │       │      │      │     │  непропитанной│  должны быть │
│                  │       │      │      │     │  или          │  использованы│
│                  │       │      │      │     │  влагопрочной)│  непосред-   │
│                  │       │      │      │     │- или          │  ственно     │
│                  │       │      │      │     │  без упаковки │  после       │
│                  │       │      │      │     │  в открытых   │  стерилизации│
│                  │       │      │      │     │  емкостях     │              │
└──────────────────┴───────┴──────┴──────┴─────┴───────────────┴──────────────┘

———————————

<*> Контроль воздушной стерилизации осуществляют с помощью индикаторной бумаги (на основе термоиндикаторной краски N 6), которая изменяет цвет при 160° C, или используют химические термотесты: сахароза, тиомочевина, температура плавления 180° C; гидрохинон, температура плавления 170° C.

Примечание. Аптечную посуду после снижения температуры в стерилизаторе до 60 — 70° C вынимают и тотчас закрывают стерильными пробками.

III. ХИМИЧЕСКИЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (РАСТВОРЫ

ХИМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ)

Таблица 3

┌────────────┬──────────────┬─────────────────────────┬─────────────┬────────────┐
│Наименование│Стерилизующий │    Режим стерилизации   │   Условия   │    Срок    │
│  объекта   │    агент     ├────────────┬────────────┤ проведения  │ сохранения │
│            │              │температура,│время выдер-│стерилизации │простерили- │
│            │              │     °C     │жки, в мин. │             │ зованного  │
│            │              ├──────┬─────┼──────┬─────┤             │  изделия   │
│            │              │номин.│пред.│номин.│пред.│             │            │
│            │              │знач. │откл.│знач. │откл.│             │            │
├────────────┼──────────────┼──────┼─────┼──────┼─────┼─────────────┼────────────┤
│Изделия     │6% раствор <*>│  18  │  -  │ 360  │+/- 5│Закрытые     │В стерильной│
│из стекла и │Перекись      │  50  │+/- 2│ 180  │+/- 5│емкости      │емкости     │
│коррозийно- │водорода      │      │     │      │     │из стекла,   │(стерилиза- │
│стойких     │(ГОСТ 177-88) │      │     │      │     │пластмассы   │ционная     │
│металлов и  │              │      │     │      │     │или покрытые │коробка),   │
│сплавов,    │              │      │     │      │     │эмалью       │выложенной  │
│полимерных  │              │      │     │      │     │(эмаль без   │стерильной  │
│материалов, │              │      │     │      │     │повреждения).│простыней,- │
│резины      │              │      │     │      │     │Стерилизацию │3 суток     │
│            │              │      │     │      │     │проводят при │            │
│            │              │      │     │      │     │полном       │            │
│            │              │      │     │      │     │погружении   │            │
│            │              │      │     │      │     │изделия в    │            │
│            │              │      │     │      │     │раствор      │            │
│            │              │      │     │      │     │на время     │            │
│            │              │      │     │      │     │стерили-     │            │
│            │              │      │     │      │     │зационной    │            │
│            │              │      │     │      │     │выдержки,    │            │
│            │              │      │     │      │     │после        │            │
│            │              │      │     │      │     │чего изделие │            │
│            │              │      │     │      │     │промывают    │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │водой в      │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │емкости      │            │
└────────────┴──────────────┴──────┴─────┴──────┴─────┴─────────────┴────────────┘

———————————

<*> Технология, контроль качества и срок годности раствора водорода перекиси 6%, изготовляемого в аптеках (Методические указания, утв. 18.07.96).

Начальник

Управления организации

обеспечения лекарствами

и медицинской техникой

Т.Г.КИРСАНОВА

Методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения. Термины и определения – РТС-тендер

Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 5 августа 1982 г. N 3094 срок введения установлен с 01.07.83

ПЕРЕИЗДАНИЕ. Февраль 1986 г.

Настоящий стандарт устанавливает применяемые в науке, технике и производстве термины и определения методов, средств и режимов стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения, используемых в медицинской практике*.
________________
* Изделие медицинского назначения — изделие, предназначенное для применения в медицинской практике, изготовляемое по нормативно-технической документации.

Термины, установленные настоящим стандартом, обязательны для применения в документации всех видов.

Стандарт полностью соответствует СТ СЭВ 3188-81.

Для каждого понятия установлен один стандартизованный термин. Применение терминов — синонимов стандартизованного термина запрещается.

Для отдельных стандартизованных терминов в стандарте приведены в качестве справочных их краткие формы, которые разрешается применять в случаях, исключающих возможность их различного толкования.

Приведенные определения можно, при необходимости, изменять по форме изложения, не допуская нарушения границ понятий.

В случаях, когда необходимые достаточные признаки понятия содержатся в буквальном значении термина, определение не приведено, и, соответственно, в графе «Определение» поставлен прочерк.

В стандарте имеется справочное приложение, содержащее термины и определения общих понятий, используемых в области стерилизации и дезинфекции.

Стандартизованные термины набраны полужирным шрифтом, их краткие формы — светлым.

Электронный текст документа
подготовлен АО «Кодекс» и сверен по:
официальное издание
М.: Издательство стандартов, 1986

Термин	Определение
1. Деконтаминация изделий медицинского назначения Деконтаминация изделий	Снижение количества микроорганизмов на изделиях медицинского назначения
2. Устойчивость изделий медицинского назначения к деконтаминации Устойчивость изделий к деконтаминации	Способность изделий медицинского назначения сохранять свои функциональные характеристики после дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации
3. Стерилизация изделий медицинского назначения Стерилизация изделий	Умерщвление на изделиях или в изделиях медицинского назначения микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития
4. Дезинфекция изделий медицинского назначения Дезинфекция изделий	Умерщвление на изделиях или удаление с изделий медицинского назначения патогенных микроорганизмов
5. Стерильное изделие медицинского назначения Стерильное изделие	Изделие медицинского назначения, не содержащее микроорганизмов, способных к размножению
6. Нестерильное изделие медицинского назначения Нестерильное изделие	Изделие медицинского назначения, содержащее микроорганизмы, способные к размножению
7. Простерилизованное изделие медицинского назначения Простерилизованное изделие	Изделие медицинского назначения, ставшее стерильным в результате проведения стерилизации
8. Стерилизующий (дезинфицирующий) агент	Действующее начало, обеспечивающее стерилизацию (дезинфекцию)
9. Стерилизующее (дезинфицирующее) средство	Физическое или химическое средство, включающее в себя стерилизующий (дезинфицирующий) агент
10. Физическое стерилизующее (дезинфицирующее) средство	—
11. Химическое стерилизующее (дезинфицирующее) средство	—
12. Серия стерилизуемых изделий медицинского назначения Серия стерилизуемых изделий	Число изделий медицинского назначения, стерилизуемых за один цикл в одном стерилизаторе на промышленном предприятии
13. Партия стерилизуемых изделий медицинского назначения Партия стерилизуемых изделий	Число изделий медицинского назначения, стерилизуемых за сутки на промышленном предприятии
14. Предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения Предстерилизационная очистка	Удаление загрязнений с изделий медицинского назначения, подлежащих стерилизации
15. Ручной способ предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения Ручной способ предстерилизационной очистки	—
16. Механизированный способ предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения Механизированный способ предстерилизационной очистки	—
17. Метод стерилизации (дезинфекции)	Совокупность приемов и операций, обеспечивающих стерилизацию (дезинфекцию) при установленных условиях
18. Химический метод стерилизации (дезинфекции)	Метод стерилизации (дезинфекции), осуществляемый химическим стерилизующим (дезинфицирующим) средством
19. Физический метод стерилизации (дезинфекции)	Метод стерилизации (дезинфекции), осуществляемый физическим стерилизующим (дезинфицирующим) средством
20. Комбинированный метод стерилизации (дезинфекции)	Метод стерилизации (дезинфекции), осуществляемый двумя и более стерилизующими (дезинфицирующими) средствами
21. Термический метод стерилизации	Метод стерилизации, осуществляемый при температуре свыше 100 °С
22. Паровой метод стерилизации	Термический метод стерилизации, осуществляемый водяным насыщенным паром при избыточном давлении
23. Воздушный метод стерилизации	Термический метод стерилизации, осуществляемый сухим горячим воздухом
24. Стерилизация инфракрасным излучением	Термический метод стерилизации, осуществляемый инфракрасным излучением
25. Холодный метод стерилизации	Метод стерилизации, осуществляемый при температуре не свыше 100 °С
26. Радиационный метод стерилизации	Холодный метод стерилизации, осуществляемый ионизирующим излучением
27. Газовый метод стерилизации	Холодный метод стерилизации, осуществляемый спороцидным средством в газообразном состоянии
28. Стерилизация растворами	Холодный метод стерилизации, осуществляемый растворами спороцидных средств
29. Параметры стерилизации (дезинфекции)	Количественные показатели физических, химических и временных факторов, обеспечивающих стерилизацию (дезинфекцию)
30. Режим стерилизации (дезинфекции)	Совокупность параметров стерилизации (дезинфекции)
31. Время стерилизационной выдержки	Интервал времени, необходимый для стерилизации в установленном режиме
32. Цикл стерилизации	Минимальный интервал времени для загрузки, стерилизации и выгрузки при стерилизации в паровом, воздушном и газовом стерилизаторе или емкости
33. Температура стерилизации (дезинфекции)	Температура, при которой обеспечивается стерилизация (дезинфекция) в установленном режиме
34. Стерилизующая доза газа	Доза газа, обеспечивающая стерилизацию в установленном режиме
35. Стерилизующая доза ионизирующего излучения	—
36. Стерилизующий (дезинфицирующий) раствор	Раствор химического стерилизующего (дезинфицирующего) средства, обеспечивающий стерилизацию (дезинфекцию) в установленном режиме
37. Стерилизующая (дезинфицирующая) концентрация раствора	Концентрация действующего вещества в растворе, обеспечивающая стерилизацию (дезинфекцию) в установленном режиме
38. Дезинфицированное изделие медицинского назначения Дезинфицированное изделие	Изделие медицинского назначения, на котором умерщвлены или с которого удалены патогенные микроорганизмы
39. Недезинфицированное изделие медицинского назначения Недезинфицированное изделие	—
40. Незараженное изделие медицинского назначения Незараженное изделие	—
41. Серия дезинфицируемых изделий медицинского назначения Серия дезинфицируемых изделий	Число изделий медицинского назначения, дезинфицируемых паровым, воздушным или газовым методом за один цикл в одной дезинфекционной камере на промышленном предприятии
42. Партия дезинфицируемых изделий медицинского назначения Партия дезинфицируемых изделий	Число изделий медицинского назначения, дезинфицируемых в единицу времени на промышленном предприятии
43. Термический метод дезинфекции	Метод дезинфекции, осуществляемый при температуре свыше 50 °С
44. Газовый метод дезинфекции	Химический метод дезинфекции, осуществляемый дезинфицирующим средством в газообразном состоянии
45. Влажный метод дезинфекции	Химический метод дезинфекции, осуществляемый растворами дезинфицирующих средств
46. Радиационный метод дезинфекции	Физический метод дезинфекции, осуществляемый ионизирующим излучением
47. Воздушный метод дезинфекции	Физический метод дезинфекции, осуществляемый сухим горячим воздухом
48. Паровой метод дезинфекции	Физический метод дезинфекции, осуществляемый насыщенным водяным паром
49. Паровоздушный метод дезинфекции	Физический метод дезинфекции, осуществляемый увлажненным горячим воздухом
50. Пароформалиновый метод дезинфекции	Комбинированный метод дезинфекции, осуществляемый смесью увлажненного воздуха или водяного пара с формальдегидом при температуре дезинфекции
51. Цикл дезинфекции	Минимальный интервал времени для загрузки, дезинфекции и выгрузки при дезинфекции изделий медицинского назначения в дезинфекционной камере, кипятильнике, в паровом, воздушном и газовом стерилизаторе или емкости
52. Расход дезинфицирующего средства	Доза дезинфицирующего средства, обеспечивающая дезинфекцию в установленном режиме
53. Время воздействия дезинфицирующего агента	Интервал времени, необходимый для дезинфекции в установленном режиме
54. Тест-микроорганизмы	Культура микроорганизмов с определенными параметрами устойчивости, используемая для бактериологического контроля стерилизации или дезинфекции
55. Контроль стерильности	Определение наличия микроорганизмов, способных к размножению, на изделиях, подвергнутых стерилизации
56. Контроль стерилизации	Определение эффективности стерилизации, осуществляемое бактериологическим контролем стерилизации, и определение параметров стерилизации, осуществляемое физическим или химическим контролем стерилизации
57. Контроль дезинфекции	Определение эффективности дезинфекции, осуществляемое бактериологическим или биологическим контролем дезинфекции, и определение параметров дезинфекции, осуществляемое физическим или химическим контролем дезинфекции
58. Биотест стерилизации (дезинфекции)	Объект из установленного материала, обсемененный тест-микроорганизмами, предназначенными для контроля стерилизации (дезинфекции)
59. Бактериологический контроль стерилизации	Контроль стерилизации, осуществляемый биотестом стерилизации
60. Бактериологический контроль дезинфекции	Контроль дезинфекции путем обнаружения микроорганизмов, способных к размножению после дезинфекции
61. Биологический контроль дезинфекции	Контроль дезинфекции путем обнаружения патогенных микроорганизмов при заражении животных
62. Естественный биотест стерилизации	Биотест стерилизации, естественно обсемененный микроорганизмами различных видов
63. Земля-биотест стерилизации	Естественный биотест стерилизации, состоящий из высушенной и просеянной почвы
64. Искусственный биотест стерилизации	Биотест стерилизации, искусственно обсемененный микроорганизмами определенного вида
65. Устойчивость тест-микроорганизмов	Способность тест-микроорганизмов сохранять жизнеспособность при воздействии физических и химических дезинфицирующих и стерилизующих агентов при определенных параметрах, но погибать при режиме стерилизации
66. Физический контроль стерилизации (дезинфекции)	Контроль параметров стерилизации (дезинфекции), проводимый с помощью соответствующих средств измерения
67. Термический контроль стерилизации (дезинфекции)	Физический контроль стерилизации (дезинфекции), проводимый с помощью средств измерения температуры
68. Химический контроль стерилизации (дезинфекции)	Контроль параметров стерилизации (дезинфекции), проводимый с помощью химических тестов стерилизации (дезинфекции) или путем определения количества стерилизующего (дезинфицирующего) агента
69. Химический тест стерилизации (дезинфекции)	Химическое вещество, изменяющее свой цвет или физическое состояние при температуре стерилизации (дезинфекции), стерилизующей дозе газа или стерилизующей дозе ионизирующего излучения, служащее для контроля параметров стерилизации (дезинфекции)
Агент дезинфицирующий	8
Агент стерилизующий	8
Биотест дезинфекции	58
Биотест стерилизации	58
Биотест стерилизации естественный	62
Биотест стерилизации искусственный	64
Время воздействия дезинфицирующего агента	53
Время стерилизационной выдержки	31
Дезинфекция изделий	4
Дезинфекция изделий медицинского назначения	4
Деконтаминация изделий	1
Деконтаминация изделий медицинского назначения	1
Доза газа стерилизующая	34
Доза ионизирующего излучения стерилизующая	35
Земля-биотест стерилизации	63
Изделие дезинфицированное	38
Изделие медицинского назначения дезинфицированное	38
Изделие медицинского назначения недезинфицированное	39
Изделие медицинского назначения незараженное	40
Изделие медицинского назначения нестерильное	6
Изделие медицинского назначения простерилизованное	7
Изделие медицинского назначения стерильное	5
Изделие недезинфицированное	39
Изделие незараженное	40
Изделие нестерильное	6
Изделие простерилизованное	7
Изделие стерильное	5
Контроль дезинфекции	57
Контроль дезинфекции бактериологический	60
Контроль дезинфекции биологический	61
Контроль дезинфекции термический	67
Контроль дезинфекции физический	66
Контроль дезинфекции химический	68
Контроль стерилизации	56
Контроль стерилизации бактериологический	60
Контроль стерилизации термический	67
Контроль стерилизации физический	66
Контроль стерилизации химический	68
Контроль стерильности	55
Концентрация раствора дезинфицирующая	37
Концентрация раствора стерилизующая	37
Метод дезинфекции	17
Метод дезинфекции влажный	45
Метод дезинфекции воздушный	47
Метод дезинфекции газовый	44
Метод дезинфекции комбинированный	20
Метод дезинфекции паровоздушный	49
Метод дезинфекции паровой	48
Метод дезинфекции пароформалиновый	50
Метод дезинфекции радиационный	46
Метод дезинфекции термический	43
Метод дезинфекции физический	19
Метод дезинфекции химический	18
Метод стерилизации	17
Метод стерилизации воздушный	23
Метод стерилизации газовый	27
Метод стерилизации комбинированный	20
Метод стерилизации паровой	22
Метод стерилизации радиационный	26
Метод стерилизации термический	21
Метод стерилизации физический	19
Метод стерилизации химический	18
Метод стерилизации холодный	25
Очистка изделий медицинского назначения предстерилизационная	14
Очистка предстерилизационная	14
Параметры дезинфекции	29
Параметры стерилизации	29
Партия дезинфицируемых изделий	42
Партия дезинфицируемых изделий медицинского назначения	42
Партия стерилизуемых изделий	13
Партия стерилизуемых изделий медицинского назначения	13
Раствор дезинфицирующий	36
Раствор стерилизующий	36
Расход дезинфицирующего средства	52
Режим дезинфекции	30
Режим стерилизации	30
Серия дезинфицируемых изделий	41
Серия дезинфицируемых изделий медицинского назначения	41
Серия стерилизуемых изделий	12
Серия стерилизуемых изделий медицинского назначения	12
Способ предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения механизированный	16
Способ предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения ручной	15
Способ предстерилизационной очистки механизированный	16
Способ предстерилизационной очистки ручной	15
Средство дезинфицирующее	9
Средство стерилизующее	9
Средство дезинфицирующее физическое	10
Средство дезинфицирующее химическое	11
Средство стерилизующее физическое	10
Средство стерилизующее химическое	11
Стерилизация изделий	3
Стерилизация изделий медицинского назначения	3
Стерилизация инфракрасным излучением	24
Стерилизация растворами	28
Температура дезинфекции	33
Температура стерилизации	33
Тест дезинфекции химический	69
Тест-микроорганизмы	54
Тест стерилизации химический	69
Устойчивость изделий к деконтаминации	2
Устойчивость изделий медицинского назначения к деконтаминации	2
Устойчивость тест-микроорганизмов	65
Цикл дезинфекции	51
Цикл стерилизации	32
Термин	Определение
1. Контаминанты	Микроорганизмы, обсеменяющие объекты
2. Контаминация микроорганизмами	Обсеменение объектов микроорганизмами
3. Инициальная контаминация	Контаминация объекта до стерилизации или дезинфекции
4. Вторичная контаминация	Контаминация объектов после стерилизации или дезинфекции
5. Величина контаминации	Количество микроорганизмов на объектах или их частях
6. Инициальное заражение	Заражение объектов патогенными микроорганизмами до дезинфикации или стерилизации
7. Деконтаминация	Снижение количества микроорганизмов на объектах
8. Устойчивость микроорганизмов к стерилизующему (дезинфицирующему) средству	Способность микроорганизмов к размножению после воздействия стерилизующего (дезинфицирующего) средства
9. Стерилизация	Умерщвление на объектах или в объектах микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития
10. Дезинфекция	Умерщвление на объектах или удаление с объектов патогенных микроорганизмов и их переносчиков
11. Обеззараживание	Умерщвление или удаление на (в) объектах патогенных микроорганизмов
12. Нейтрализатор стерилизующего (дезинфицирующего) агента	Вещество, которое прекращает действие стерилизующего (дезинфицирующего) агента
13. Термоустойчивость микроорганизмов	Способность микроорганизмов к размножению после воздействия высокой температуры
14. Радиочувствительность микроорганизмов	Свойство микроорганизмов утрачивать способность к размножению после воздействия ионизирующих излучений в определенных дозах
15. Радиорезистентность микроорганизмов	Свойство микроорганизмов сохранять способность к размножению после воздействия ионизирующих излучений в определенных дозах
16. Фактор инактивации	Соотношение количеств способных к размножению микроорганизмов до и после стерилизации или дезинфекции
17. Показатель	Доза ионизирующего излучения, необходимая для уменьшения численности способной к размножению популяции микроорганизмов в 10 раз
18. Спороцидное средство	Дезинфицирующее средство, обеспечивающее умерщвление спор микроорганизмов
19. Бактериостатическое действие	Действие дезинфицирующего агента, при котором не происходит умерщвление микроорганизмов, а только задерживается их размножение
20. Споростатическое действие	Действие дезинфицирующего агента, при котором не происходит умерщвление спор микроорганизмов, а только задерживается их вегетация

III. ХИМИЧЕСКИЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (РАСТВОРЫ ХИМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ) [ИНСТРУКЦИЯ ПО САНИТАРНОМУ РЕЖИМУ АПТЕЧНЫХ ОРГАНИЗАЦИЙ] — последняя редакция

III. ХИМИЧЕСКИЙ МЕТОД СТЕРИЛИЗАЦИИ (РАСТВОРЫ
ХИМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ)

Таблица 3

┌────────────┬──────────────┬─────────────────────────┬─────────────┬────────────┐
│Наименование│Стерилизующий │    Режим стерилизации   │   Условия   │    Срок    │
│  объекта   │    агент     ├────────────┬────────────┤ проведения  │ сохранения │
│            │              │температура,│время выдер-│стерилизации │простерили- │
│            │              │     °C     │жки, в мин. │             │ зованного  │
│            │              ├──────┬─────┼──────┬─────┤             │  изделия   │
│            │              │номин.│пред.│номин.│пред.│             │            │
│            │              │знач. │откл.│знач. │откл.│             │            │
├────────────┼──────────────┼──────┼─────┼──────┼─────┼─────────────┼────────────┤
│Изделия     │6% раствор │  18  │  -  │ 360  │+/- 5│Закрытые     │В стерильной│
│из стекла и │Перекись      │  50  │+/- 2│ 180  │+/- 5│емкости      │емкости     │
│коррозийно- │водорода      │      │     │      │     │из стекла,   │(стерилиза- │
│стойких     │(ГОСТ 177-88) │      │     │      │     │пластмассы   │ционная     │
│металлов и  │              │      │     │      │     │или покрытые │коробка),   │
│сплавов,    │              │      │     │      │     │эмалью       │выложенной  │
│полимерных  │              │      │     │      │     │(эмаль без   │стерильной  │
│материалов, │              │      │     │      │     │повреждения).│простыней,- │
│резины      │              │      │     │      │     │Стерилизацию │3 суток     │
│            │              │      │     │      │     │проводят при │            │
│            │              │      │     │      │     │полном       │            │
│            │              │      │     │      │     │погружении   │            │
│            │              │      │     │      │     │изделия в    │            │
│            │              │      │     │      │     │раствор      │            │
│            │              │      │     │      │     │на время     │            │
│            │              │      │     │      │     │стерили-     │            │
│            │              │      │     │      │     │зационной    │            │
│            │              │      │     │      │     │выдержки,    │            │
│            │              │      │     │      │     │после        │            │
│            │              │      │     │      │     │чего изделие │            │
│            │              │      │     │      │     │промывают    │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │водой в      │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │емкости      │            │
└────────────┴──────────────┴──────┴─────┴──────┴─────┴─────────────┴────────────┘

———————————

Технология, контроль качества и срок годности раствора водорода перекиси 6%, изготовляемого в аптеках (Методические указания, утв. 18.07.96).

Начальник
Управления организации
обеспечения лекарствами
и медицинской техникой
Т.Г.КИРСАНОВА

Таблица 3 Приказ Минздрава РФ от 21.10.1997 N 309 (ред. от 24.04.2003) Об утверждении Инструкции по санитарному режиму аптечных организаций (аптек)

┌────────────┬──────────────┬─────────────────────────┬─────────────┬────────────┐
│Наименование│Стерилизующий │    Режим стерилизации   │   Условия   │    Срок    │
│  объекта   │    агент     ├────────────┬────────────┤ проведения  │ сохранения │
│            │              │температура,│время выдер-│стерилизации │простерили- │
│            │              │     °C     │жки, в мин. │             │ зованного  │
│            │              ├──────┬─────┼──────┬─────┤             │  изделия   │
│            │              │номин.│пред.│номин.│пред.│             │            │
│            │              │знач. │откл.│знач. │откл.│             │            │
├────────────┼──────────────┼──────┼─────┼──────┼─────┼─────────────┼────────────┤
│Изделия     │6% раствор <*>│  18  │  -  │ 360  │+/- 5│Закрытые     │В стерильной│
│из стекла и │Перекись      │  50  │+/- 2│ 180  │+/- 5│емкости      │емкости     │
│коррозийно- │водорода      │      │     │      │     │из стекла,   │(стерилиза- │
│стойких     │(ГОСТ 177-88) │      │     │      │     │пластмассы   │ционная     │
│металлов и  │              │      │     │      │     │или покрытые │коробка),   │
│сплавов,    │              │      │     │      │     │эмалью       │выложенной  │
│полимерных  │              │      │     │      │     │(эмаль без   │стерильной  │
│материалов, │              │      │     │      │     │повреждения).│простыней,- │
│резины      │              │      │     │      │     │Стерилизацию │3 суток     │
│            │              │      │     │      │     │проводят при │            │
│            │              │      │     │      │     │полном       │            │
│            │              │      │     │      │     │погружении   │            │
│            │              │      │     │      │     │изделия в    │            │
│            │              │      │     │      │     │раствор      │            │
│            │              │      │     │      │     │на время     │            │
│            │              │      │     │      │     │стерили-     │            │
│            │              │      │     │      │     │зационной    │            │
│            │              │      │     │      │     │выдержки,    │            │
│            │              │      │     │      │     │после        │            │
│            │              │      │     │      │     │чего изделие │            │
│            │              │      │     │      │     │промывают    │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │водой в      │            │
│            │              │      │     │      │     │стерильной   │            │
│            │              │      │     │      │     │емкости      │            │
└────────────┴──────────────┴──────┴─────┴──────┴─────┴─────────────┴────────────┘

———————————

<*> Технология, контроль качества и срок годности раствора водорода перекиси 6%, изготовляемого в аптеках (Методические указания, утв. 18.07.96).

Начальник
Управления организации
обеспечения лекарствами
и медицинской техникой
Т.Г.КИРСАНОВА
 
Стерильность — PharmSpravka
  
Стерильность инъекционных растворов, приготовляемых в условиях аптеки, обеспечивается в результате неукоснительного соблюдения правил асептики, а также стерилизации этих растворов.
Стерилизацией, или обеспложиванием, называется полное уничтожение в том или ином объекте жизнеспособной микрофлоры.
При изготовлении инъекционных растворов стерилизации подвергают посуду, вспомогательные материалы, исходные продукты и готовый раствор.
Таким образом, работа по приготовлению растворов для инъекций должна начинаться со стерилизации и заканчиваться ею.
Стерилизация осуществляется физическими, механическими и химическими методами.
Физические методы стерилизации. К физическим методам стерилизации относится воздействие высокой температуры на стерилизуемые объекты (тепловая стерилизация), а также воздействие ультрафиолетовым излучением, токами высокой частоты, ультразвуковыми колебаниями, радиоактивным излучением, инфракрасными лучами и т. д.
В аптечной практике для стерилизации посуды и лекарств пользуются исключительно способами, основанными на воздействии высоких температур. Ультрафиолетовое облучение находит применение главным образом для обеззараживания воздуха аптечных помещений, тары и поступающих в аптеку рецептов.
Использование высокой температуры для стерилизации основано на необратимой коагуляции протоплазмы, пирогенети-ческом ее разрушении и на повреждении ферментных систем микробной клетки. Температура и длительность нагревания, необходимые для достижения стерильности, могут изменяться в зависимости от вида микрофлоры и других условий.
Большинство патогенных микроорганизмов погибают при температуре около 60 °С, но их споры выдерживают значительно более высокую температуру. Текучий пар и кипящая вода убивают микроорганизмы значительно быстрее, хотя многие споры и в этих условиях сохраняются несколько часов (особенно в вязких средах). Чистый водяной пар действует сильнее, чем в смеси с воздухом. Пар под давлением (при температуре выше 100 °С) убивает микроорганизмы быстрее. Сухой горячий воздух убивает бактерии и споры при более высокой температуре по сравнению с водяным паром. Выбор метода зависит от свойств стерилизуемого объекта. Выбирая метод стерилизации, стремятся к полной ликвидации живой микрофлоры и спор, сохраняя в то же врем неизменным лекарственное  вещество.  При    выборе    стерилизации    руководствуются статьей ГФХ «Стерилизация» (см. с. 991).
В практике находят применение следующие физические методы стерилизации.
1.  Стерилизация сухим жаром. Стерилизуемый объект нагревают в сушильном шкафу при температуре 180 °С в течение-20-60 мин или при 200 °С в течение 10-30 мин. Сухим жаром стерилизуют стеклянную и фарфоровую посуду, жиры, вазелин, глицерин, термоустойчивые порошки (каолин, стрептоцид, тальк, кальция сульфат, цинка окись и др.).
В сушильных шкафах нельзя стерилизовать водные растворы в склянках, так как вода при высоких температурах превращается в пар и склянка может быть разорвана.
2.  Стерилизация влажным жаром. При использовании этого способа стерилизации комбинируются воздействие высокой температуры и влажности. Если сухой жар вызывает главным образом пирогенетическое разрушение микроорганизмов, то влажный жар — коагуляцию белка, требующую участия воды.
На практике стерилизацию влажным жаром производят при температуре 50-150 °С и осуществляют следующими способами.
Кипячение. Этим способом стерилизуют резиновые предметы, хирургический инструментарий, стеклянную посуду. Применять кипячение для стерилизации инъекционных растворов не рекомендуется, так как по эффективности оно значительно уступает стерилизации паром.
Стерилизация текучим паром. Текучим называете» насыщенный водяной пар (без примеси воздуха), имеющий давление 760 мм рт. ст. и температуру 100 °С. Стерилизацию текучим паром осуществляют в паровом стерилизаторе или автоклаве при 100 °С в течение 30-60 мин в зависимости от объема раствора. Это один из распространенных методов стерилизации инъекционных растворов в аптеках.
Стерилизация паром под давлением (автоклавирование). Осуществляется в автоклавах разной конструкции.. Автоклав представляет собой герметически закрывающийся сосуд, состоящий из толстостенной стерилизационной камеры и кожуха (рис. 36). На автоклаве имеются предохранительный клапан, обеспечивающий выход пара при избыточном давлении, и манометр. При каждом автоклаве должны быть инструкция по его эксплуатации и уходу, а также паспорт котлонадзора.
Стерилизуемый объект помещают внутрь паровой камеры. Водяную камеру подвергают нагреванию. Вначале автоклав нагревают при открытом кране до тех пор, пока пар не пойдет сильной сплошной струей и не вытеснит находящийся в автоклаве воздух, который значительно снижает теплопроводность водяного пара (при содержании в водяном паре 5% воздуха она уменьшается на 50 %)
Во время нагревания автоклава после закрывания крана необходимо следить за давлением, параллельно с возрастанием которого увеличивается температура пара. Зависимость между температурой и давлением пара выражается следующим образом:
1 атм     100 °С 1,5 »      112,7 0С
2  »       119,6 °С
3  »       132,9 «С 5 »       151,1 «С
Автоклавирование-наиболее надежный способ стерилизации. Обычно стерилизацию в автоклаве производят при 119- 121 °С в течение 8-15 мин в зависимости от объема раствора. Этим гарантируется достаточно полная стерилизация независимо от вида микроорганизма. Таким образом стерилизуют посуду, бумажные и стеклянные фильтры, инструменты, водные растворы устойчивых к воздействию высокой температуры лекарственных веществ, перевязочный материал.
В некоторых случаях нагревание насыщенным паром в автоклаве при 119-121 °С осуществляют до 120 мин, а если стерилизацию проводят при 110°С, то ее продолжительность составляет 30-60 мин.
3. Дробная стерилизация. При дробной стерилизации объект (обычно водный раствор) нагревают текучим паром при 100 °С в течение 30 мин, затем раствор выдерживают при комнатной температуре 24 ч, после чего снова стерилизуют в тех же условиях (30 мин при 100 °С). Описанный цикл повторяют 3- 5 раз. При первом нагревании погибают вегетативные формы микроорганизмов, при последующих — вновь появившиеся вегетативные формы. Вследствие длительности этот способ в аптеках применяется редко.
4.  Пастеризация — однократное нагревание объекта при температуре 60 °С в течение 1 ч или при температуре 70-80 °С в течение 30 мин. Позволяет уничтожить вегетативные формы микробов (кроме термофильных), но не споры.
5.  Тиндализация (дробная пастеризация). При тиндализации объект нагревают при температуре 60-65 °С по 1 ч ежедневно-в течение 5 дней или при 70-80 °С в течение 3 дней. Это надежный и бережный способ стерилизации термолабильных: лекарственных веществ. Однако вследствие длительности он мало пригоден для аптек и в последних почти не используется.
Ряд лет в фармацевтической технологии для стерилизации используется ультрафиолетовое (УФ) (длина волны 253,7 нм) и у-излучение. Источники УФ-излучения — ртутные лампы, Бактерицидное действие УФ-излучения основано на адсорбировании УФ-лучей нуклеиновыми кислотами микроорганизмов,. что является причиной их гибели. Наиболее мощное бактерицидное действие оказывают лучи с длиной волны 253-258 нм, В аптечной практике широкое применение нашла бактерицидная лампа БУВ-30 (бактерицидная увиолевая; цифра после аббревиатуры обозначает мощность лампы в ваттах), представляющая собой газоразрядную ртутную лампу низкого давления, выполненную из прозрачного для УФ-излучения увиоле-вого стекла. Лампы БУВ применяются для стерилизации воздуха, стен и оборудования в боксах, стерилизационных и ассистентских комнатах, а также для стерилизации дистиллированной воды.
Стерилизация фильтрованием. Микроорганизмы, их споры и продукты жизнедеятельности являются нерастворимыми образованиями, которые могут быть отделены от жидкости чисто-механическим путем — фильтрованием сквозь микропористые фильтры.
Механические способы обеспложивания обычно используют при стерилизации растворов термолабильных веществ, а также-в качестве предварительной операции перед термической стерилизацией (для уменьшения содержания частиц убитых микроорганизмов в инъекционном растворе).
Для стерилизации фильтрованием применяют мембранные-фильтры, фильтры из волокнистых материалов и керамические свечи.
Мембранные фильтры применяют для достижения высокой  стерильности.  Фильтрующей частью  является  мембра-
на — пористый диск, изготовляемый из эфиров целлюлозы или фторопласта, толщиной около 100 мкм с порами размером от 0,2 до 3 мкм. Они устойчивы к действию воды, разбавленных щелочей и кислот. После высушивания мембранные фильтры становятся хрупкими (особенно целлюлозные), поэтому в перерывах между использованием их хранят в дистиллированной воде с добавлением антимикробного средства.
К группе фильтров из волокнистых материалов — бактериальны хфильтров — относятся фильтры Зейтца и фильтры Сальникова (СФ). Основными частями фильтра СФ (рис. 37) являются корпус, состоящий из крышек (1-2) с входными штуцерами (5) и рам (5) (3 или 7 штук) с сетками (4), стягивающим болтом {6) и штуцерами (7). Для фильтрации служат асбестовые пластины диаметром до 300 мм. Пластины вкладывают между рамами и крышками, которые соединяются друг с другом с помощью шпилек и гаек-барашков (8). Фильтруемая жидкость проходит через асбестовые пластины, попадает в межрамное пространство и выходит наружу через выходные штуцеры рам. Фильтр Сальникова, как и другие бактериальные фильтры, работает под давлением. Перед работой собранный фильтр подвергают тепловой стерилизации.
К керамическим свечам (рис. 38) относятся фильтры, имеющие вид полых цилиндров, выполненных из неглазиро-ванного фарфора и открытых с одного конца. Фильтрование может осуществляться двумя способами: либо жидкость вводят внутрь фильтра, и она, просачиваясь через пористые стенки, вытекает в стерильный приемный сосуд (свечи Шамберлана), либо, наоборот, жидкость просачивается через стенки внутрь свечи и оттуда собирается в стерильный сосуд (свечи Берке-фельда).
Керамические свечи работают под вакуумом.
Действие свечей тем совершеннее, чем мельче и равномернее их поры. Свечи требуют аккуратности в работе; малейшая трещина делает их непригодными. Через один фильтр можно пропускать только одноименные растворы. Вследствие лрорас-тания фильтров (засасывание микробов внутрь свечи) необходима их периодическая очистка (выщелачивание бактериальных тел паром в автоклаве) или стерилизация сухим жаром при 150-170 °С в течение 1 ч.
В отличие от фильтрования для удаления из инъекционного раствора механических примесей основное действие ультрамикропористых перегородок стерилизующих фильтров заключается не в механической задержке, а в адсорбции микроорганизмов на большой поверхности, образуемой стенками пор фильтра.
Химические методы стерилизации. Стерилизацию химическим путем осуществляют, воздействуя на микрофлору химическими веществами, уничтожающими ее. Такие химические вещества называют антимикробными. Основное требование к антимикробным веществам, применяемым для стерилизации инъекционных растворов, — их полная безвредность для организма человека.
Химическую стерилизацию, как и механическую, применяют для обеспложивания растворов, содержащих термолабильные лекарственные вещества. В фармацевтической практике с этой целью используют следующие вещества.
Нипагин — метиловый эфир параоксибензойной кислоты, малорастворимый в воде (0,25% при 20 °С) и дающий хорошие результаты уже в концентрации 0,05%. Применяется в концентрации 0,25%, в которой его бактерицидность превышает таковую фенола в 2,6 раза.
Нипазол — пропиловый эфир параоксибензойной кислоты, малорастворим в воде-(0,03% при 20 °С). Бактерицидность его-более чем в 5 раз выше, чем нипагина. Ввиду малой растворимости в воде рекомендуется применять 0,07% раствор смеси 7 частей нипагина и 3 частей нипазола.
Хлорбутанолгидрат (хлорэтон) — бесцветное кристаллическое вещество с запахом камфоры. Применяется в концентрации до 0,5%.
Трикрезол — метилфенол (смесь всех трех изомеров), обладающий большей бактерицидностью, чем фенол, и при этом значительно меньшей ядовитостью. Применяется в концентрации до 0,3%.
Антимикробные вещества ни в коем случае нельзя вводить в состав инъекционного лекарства произвольно. Это делается только с согласия врача и по соответствующей прописи. На сигнатуре должны быть указаны наименование и количество использованного антимикробного средства.
Газовая («холодная») стерилизация. Этот вид химической стерилизации основан на применении летучих дезинфицирующих веществ, легко удаляемых из стерилизуемого объекта путем слабого нагревания или вакуума. Применяется для стерилизации чувствительных к нагреванию лекарственных веществ. На практике используются два вещества — окись этилена и р-пропиолактон. Их антимикробное действие основано на спонтанном гидролизе, которому указанные газы подвергаются в растворе, в результате чего образуются соединения, непосредственно действующие на микроорганизмы.
Метод стерилизации окисью этилена в смеси с углекислым газом был включен в Фармакопею США издания 1965 г. и Британскую фармакопею издания 1963 г. Жидкая окись этилена кипит при 10,7 °С, хранится в стабильных баллонах, легко воспламеняется, раздражающе действует на кожу. В концентрации 0,5 мг на 1 мл окись этилена становится безвредной для человека. Для еще большего уменьшения вредного воздействия применяется в смеси с углекислым газом (9 + 1 часть). Окись этилена используют для стерилизации как термолабильных веществ, так и инструментов, аппаратуры, пластмасс, перевязочных материалов. Обработку осуществляют в специальных аппаратах с камерами, где поочередно создают вакуум и давление, после чего производят 2-4-кратную обработку стерильным воздухом. Для стерилизации растворов достаточно 400-500 мг окиси этилена на 1 л при 20 °С; длительность экспозиции 6 ч. Для стерилизации растворов В-пропиолактоном применяют 0,2% объемную концентрацию газа при 37 °С в течение 2 ч.
28.06.2015

 
 Другие методы стерилизации | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль 
 Озон уже много лет используется в качестве дезинфицирующего средства для питьевой воды. Озон образуется, когда O  2  возбуждается и расщепляется на две одноатомные (O  1 ) молекулы. Затем молекулы одноатомного кислорода сталкиваются с молекулами O  2  с образованием озона, который равен O  3 . Таким образом, озон состоит из O  2  со слабосвязанным третьим атомом кислорода, который легко доступен для присоединения и окисления других молекул.Этот дополнительный атом кислорода делает озон мощным окислителем, который разрушает микроорганизмы, но очень нестабилен (то есть, период полураспада составляет 22 минуты при комнатной температуре).
 Новый процесс стерилизации, в котором в качестве стерилизатора используется озон, был одобрен FDA в августе 2003 года для обработки медицинских изделий многократного использования. Стерилизатор создает свой собственный стерилизатор из кислорода класса USP, воды качества пара и электричества; стерилизующее средство снова превращается в кислород и водяной пар в конце цикла, проходя через катализатор перед тем, как попасть в комнату.Продолжительность цикла стерилизации составляет около 4 часов 15 минут, и он происходит при температуре 30-35 ° C. Микробная эффективность была продемонстрирована достижением SAL 10  -6  для различных микроорганизмов, включая наиболее устойчивый микроорганизм,  Geobacillus stearothermophilus .
 Процесс озона совместим с широким спектром широко используемых материалов, включая нержавеющую сталь, титан, анодированный алюминий, керамику, стекло, диоксид кремния, ПВХ, тефлон, силикон, полипропилен, полиэтилен и акрил.Кроме того, можно обрабатывать устройства с жестким просветом следующего диаметра и длины: внутренний диаметр (ID):> 2 мм, длина ≤ 25 см; ID> 3 мм, длина ≤ 47 см; и ID> 4 мм, длина ≤ 60 см.
 Процесс должен быть безопасным для использования оператором, поскольку в нем нет операций со стерилизатором, нет токсичных выбросов, нет остатков для аэрации, а низкая рабочая температура означает, что нет опасности случайного ожога. Цикл контролируется с помощью автономного биологического индикатора и химического индикатора.Стерилизационная камера небольшого размера, около 4 футов  3  (Письменное сообщение, S Dufresne, июль 2004 г.).
 Генератор газообразного озона был исследован для дезактивации комнат, используемых для размещения пациентов, колонизированных MRSA. Результаты показали, что тестируемое устройство не подходит для дезактивации больничной палаты  946 .
 Химические методы стерилизации — газообразные и жидкие 
 На главную »Основы микробиологии» Химические методы стерилизации — газообразные и жидкие
 Что такое химическая стерилизация? 
 Химическая стерилизация — это процесс удаления микроорганизмов с помощью химических бактерицидных агентов.
 Даже если физические методы стерилизации более подходят для эффективной стерилизации, их не всегда целесообразно использовать для термочувствительных материалов, таких как пластмассы, волоконная оптика и биологические образцы.
 В таких условиях химикат в жидком или газообразном состоянии может использоваться для стерилизации. Однако крайне важно убедиться, что стерилизуемые материалы совместимы с используемым химическим веществом.
 Кроме того, важно соблюдать правила техники безопасности на рабочем месте при использовании химических средств.
 Химический метод стерилизации можно разделить на жидкую и газовую стерилизацию.
 Читайте также: Физические методы стерилизации 
 1. Газовая стерилизация 
 Газовая стерилизация представляет собой процесс воздействия на оборудование или устройства различных газов в закрытой камере с подогревом или под давлением.
 Газовая стерилизация — более эффективный метод, поскольку газы могут проходить через крошечное отверстие и обеспечивать более эффективные результаты.
 Кроме того, газы обычно используются вместе с термической обработкой, которая также облегчает функционирование газов.
 Однако существует проблема выделения некоторых токсичных газов во время процесса, которые необходимо регулярно удалять из системы.
 Механизм действия разный для разных газов.
 Некоторые из обычных газов, используемых для газовой стерилизации, описаны ниже:
 i. Оксид этилена 
 Этиленоксид (ЭО) газ — это обычный газ, используемый для химической обработки, применяемой для стерилизации, пастеризации или дезинфекции различных типов оборудования и поверхностей из-за его широкой совместимости с различными материалами.
 Обработка ЭО часто заменяет другие методы стерилизации, такие как тепло, излучение и даже химические вещества, в случаях, когда объекты чувствительны к этим методам.
 Этот метод является широко распространенным методом, который используется почти для 70% всех стерилизаций и около 50% для одноразовых медицинских устройств.
 Предполагается, что механизм противомикробного действия этого газа заключается в алкилировании сульфгидрильных, амино, гидроксильных и карбоксильных групп белков и иминогрупп нуклеиновых кислот.
 Обработка ЭО обычно проводится при температуре 30-60 ° C в течение нескольких часов, что способствует активности газа.
 Эффективность газа зависит от концентрации газа, доступного для каждого изделия, чему в значительной степени способствует хорошая проникающая природа газа, который легко диффундирует во многие упаковочные материалы, включая резину, пластик, ткань и бумагу.
 Оксид этилена убивает все известные микроорганизмы, такие как бактерии (включая споры), вирусы и грибки (включая дрожжи и плесень), и совместим почти со всеми материалами даже при многократном применении.
 Этот процесс, однако, не лишен недостатков, поскольку уровень газа в стерилизаторе продолжает снижаться из-за абсорбции, а обработанные изделия должны подвергаться процессу десорбции для удаления токсичных остаточных отходов.
 Организмы более устойчивы к обработке оксидом этилена в высушенном состоянии, так же как и те, которые защищены от газа путем включения в кристаллические или высушенные органические отложения.
 ii. Формальдегид 
 Формальдегид — еще один важный газ с высокой реакционной способностью, который используется для стерилизации.
 Этот газ получают нагреванием формалина (37% мас. / Об.) До температуры 70-80 ° C.
 Он обладает широким спектром биоцидной активности и нашел применение при стерилизации многоразовых хирургических инструментов, специального медицинского, диагностического и электрического оборудования, а также при поверхностной стерилизации порошков.
 Формальдегид не обладает такой же проникающей способностью, как оксид этилена, но работает по тому же принципу модификации белка и нуклеиновой кислоты.
 Из-за низкой проникающей способности его использование часто ограничивается бумажными и хлопчатобумажными тканями.
 Формальдегид обычно можно обнаружить по запаху при концентрациях ниже, чем разрешенные в атмосфере, и, таким образом, его можно обнаружить во время утечки или других подобных происшествий.
 iii. Диоксид азота (NO  2 ) 
 Двуокись азота — это быстрое и эффективное стерилизующее средство, которое можно использовать для удаления обычных бактерий, грибков и даже спор.
 NO  2  имеет низкую температуру кипения (20 ° C), что обеспечивает высокое давление пара при стандартной температуре.
 Это свойство NO  2  позволяет использовать газ при стандартной температуре и давлении.
 Биоцидное действие этого газа включает деградацию ДНК путем нитрования фосфатного остова, что приводит к летальному исходу для пораженного организма, поскольку он поглощает NO  2 .
 Преимущество этого газа заключается в том, что на поверхности устройств не происходит конденсации газа из-за низкого уровня используемого газа и высокого давления пара. Это позволяет избежать прямой аэрации после процесса стерилизации.
 iv. Озон 
 Озон — это промышленный газ с высокой реакционной способностью, который обычно используется для стерилизации воздуха и воды, а также в качестве дезинфицирующего средства для поверхностей.
 Озон — это мощное окислительное свойство, которое способно уничтожать широкий спектр организмов, включая прионы, без использования опасных химикатов, поскольку озон обычно образуется из кислорода медицинского класса.
 Точно так же высокая реакционная способность озона позволяет удалять отработанный озон, превращая озон в кислород, пропуская его через простой катализатор.
 Однако, поскольку озон является нестабильным и химически активным газом, его необходимо производить на месте, что ограничивает использование озона в различных условиях.
 Он также очень опасен и поэтому может использоваться только в концентрации 5 частей на миллион, что в 160 раз меньше, чем у этиленоксида.
 Читайте также: Физические методы стерилизации 
 2. Жидкостная стерилизация 
 Жидкая стерилизация — это процесс стерилизации, который включает погружение оборудования в жидкий стерилизатор для уничтожения всех жизнеспособных микроорганизмов и их спор.
 Хотя жидкая стерилизация не так эффективна, как газовая стерилизация, она подходит в условиях низкого уровня загрязнения.
 Различные жидкие химикаты, используемые для жидкой стерилизации, включают следующее:
 i. Перекись водорода 
 Перекись водорода — жидкое химическое стерилизующее средство, которое является сильным окислителем и может уничтожить широкий спектр микроорганизмов.
 Используется при стерилизации оборудования, чувствительного к теплу или температуре, такого как эндоскопы.В медицинских целях используется более высокая концентрация (35-90%).
 H  2  O  2  имеет короткое время цикла стерилизации, так как эти циклы составляют всего 28 минут, тогда как у этиленоксида есть циклы продолжительностью 10-12 часов.
 Однако пероксид водорода имеет недостатки, такие как низкая совместимость с материалами, меньшая проницаемость и связанные с этим риски для здоровья.
 Испаренная перекись водорода (VHP) используется для стерилизации в значительной степени закрытых и герметичных помещений, таких как целые комнаты и интерьеры самолетов.
 ii. Глутаральдегид 
 Глутаральдегид — общепринятый жидкий стерилизующий агент, для которого требуется сравнительно долгое время погружения. Для удаления всех спор требуется 22 часа погружения.
 Присутствие твердых частиц еще больше увеличивает время погружения.
 Проникающая способность также мала, поскольку для проникновения в блок тканей требуются часы.
 Таким образом, использование глутаральдегида ограничено определенными поверхностями с меньшим загрязнением.
 iii. Гипохлорит 
 Раствор гипохлорита, который также называют жидким отбеливателем, является еще одним жидким химическим веществом, которое можно использовать в качестве дезинфицирующего средства, даже несмотря на то, что стерилизацию с помощью этого химического вещества трудно.
 Погружение устройств на короткое время в жидкий отбеливатель может убить некоторые патогенные организмы, но для достижения стерилизации требуется погружение на 20-24 часа.
 Это окислитель и, таким образом, действует путем окисления органических соединений, что приводит к модификации белков микробов, что в конечном итоге может привести к смерти.
 Соответствующие концентрации гипохлорита можно использовать для дезинфекции рабочих станций и даже поверхностей, чтобы очистить пролитую кровь и другие жидкости.
 Читайте также: Физические методы стерилизации 
 Список литературы 
 Banwart GJ (1989). Основы пищевой микробиологии. Chapman & Hall, Нью-Йорк, штат Нью-Йорк.
 Джей Дж. М. (2000). Современная пищевая микробиология. Публикации и распространение CBS. Дели.
 Адамс Р.М. и Мосс МО (2008). Королевское химическое общество.Кембридж.
 https://www.fda.gov/medical-devices/general-hospital-devices-and-supplies/liquid-chemical-sterilization
 https://study.com/academy/lesson/chemical-sterilization-methods.html
 Источники 
 3% — https://infogalactic.com/info/Sterilization_(microbiology)
 2% — https://basicmedicalkey.com/sterilization-procedures-and-sterility-assurance/
 2% — http://www.pharmacy180.com/article/gaseous-sterilization—sterilization-methods-637/
 1% — https: // www.uwo.ca/animal-research/doc/bleach-sop.pdf
 1% — https://www.sciencedirect.com/topics/nursing-and-health-professions/ozone
 1% — https://www.ozonetech.com/sites/default/files/datasheet_-_about_ozone_v2.0_en-web.pdf
 1% — https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4791376/
 1% — https://study.com/academy/lesson/chemical-sterilization-methods.html
 1% — https://quizlet.com/80921551/chem-131-gas-law-test-flash-cards/
 1% — https: // en.wikipedia.org/wiki/Ionizing_radiation_sterilization
 1% — https://answers.yahoo.com/question/index?qid=20141107093415AArUsva
 <1% - https://www.slideshare.net/tamilsilambarasan/sterilization-and-disinfection-45668455
 <1% - https://www.slideshare.net/BrittoSamuel/chemical-sterilization
 <1% - https://www.sciencedirect.com/topics/immunology-and-microbiology/vaporized-hydrogen-peroxide
 <1% - https://www.osha.gov/SLTC/hazardousdrugs/controlling_occex_hazardousdrugs.HTML
 <1% - https://www.lenntech.de/processes/disinfection/chemical/disinfectants-sodium-hypochlorite.htm
 <1% - https://en.wikipedia.org/wiki/Vaporized_hydrogen_peroxide
 <1% - https://en.wikipedia.org/wiki/Thermal_sterilization
 <1% - https://en.m.wikipedia.org/wiki/Sterilization_(microbiology)
Категории Основы микробиологии Теги Химическая стерилизация, Стерилизация сообщение навигации
 Различные методы стерилизации, используемые в лаборатории Westlab 
 Стерилизация может быть достигнута сочетанием тепла, химикатов, облучения, высокого давления и фильтрации, например паром под давлением, сухим жаром, ультрафиолетовым излучением, стерилизаторами паров газа, диоксидом хлора и т. Д.Эффективные методы стерилизации необходимы для работы в лаборатории, и пренебрежение этим может привести к серьезным последствиям и даже стоить жизни.
 Итак, какие методы стерилизации используются в лаборатории чаще всего и как они работают? Читайте дальше…
   Тепловой метод:   Это наиболее распространенный метод стерилизации. Тепло используется для уничтожения микробов в веществе. Степень стерилизации зависит от температуры нагрева и продолжительности нагрева.В зависимости от типа используемого тепла методы нагрева подразделяются на
.
 (i) Стерилизация влажным теплом / паром. В большинстве лабораторий этот метод широко используется в автоклавах. В автоклавах используется пар, нагретый до 121–134 ° C под давлением. Это очень эффективный метод, который убивает / дезактивирует все микробы, споры бактерий и вирусы. Автоклавирование убивает микробы путем гидролиза и коагуляции клеточных белков, что эффективно достигается за счет интенсивного нагрева в присутствии воды. Сильный жар исходит от пара.Пар под давлением имеет высокую скрытую теплоту и при 100 ° C удерживает в 7 раз больше тепла, чем вода при той же температуре. В целом автоклавы можно сравнить с типичной скороваркой, используемой для приготовления пищи, за исключением того, что почти весь воздух удаляется из автоклава до начала процесса нагрева. Методы стерилизации влажным жаром также включают кипячение и пастеризацию.
 (ii) Стерилизация сухим жаром. В этом методе образцы, содержащие бактерии, подвергаются воздействию высоких температур либо путем сжигания, либо сжигания в печи с горячим воздухом.Обжигание используется для металлических устройств, таких как иглы, скальпели, ножницы и т. Д. Сжигание используется, в частности, для инокуляции петель, используемых в культурах микробов. Металлический конец петли нагревается до докрасна на пламени. Духовка с горячим воздухом подходит для сухих материалов, таких как порошки, некоторые металлические предметы, стеклянная посуда и т. Д.
   Фильтрация   — это самый быстрый способ стерилизовать растворы без нагрева. Этот метод включает фильтрацию с размером пор, который слишком мал для проникновения микробов.Обычно для удаления бактерий используются фильтры с диаметром пор 0,2 мкм. Мембранные фильтры — это более часто используемые фильтры, а не фильтры из спеченного материала, сейтца или свечи. Можно отметить, что вирусы и фаги намного меньше бактерий, поэтому метод фильтрации неприменим, если они вызывают наибольшую озабоченность.
   Радиационная стерилизация:   Этот метод включает облучение упакованных материалов радиацией (УФ, рентгеновские лучи, гамма-лучи) для стерилизации. Основное различие между разными типами излучения заключается в их проникновении и, следовательно, в их эффективности.УФ-лучи имеют низкое проникновение и, следовательно, менее эффективны, но относительно безопасны и могут использоваться для стерилизации небольших площадей. Рентгеновские лучи и гамма-лучи обладают гораздо большей проникающей способностью и, следовательно, более эффективны для крупномасштабной стерилизации. Однако это более опасно и поэтому требует особого внимания. УФ-облучение обычно используется для стерилизации внутренней части боксов биологической безопасности между применениями. Рентгеновские лучи используются для стерилизации больших упаковок и поддонов с медицинскими приборами.Гамма-излучение обычно используется для стерилизации одноразового медицинского оборудования, такого как шприцы, иглы, канюли и наборы для внутривенного введения, а также продуктов питания.
   Химический метод стерилизации  : Нагревание обеспечивает надежный способ избавиться от всех микробов, но не всегда подходит, так как может повредить стерилизуемый материал. В этом случае используются химические методы стерилизации, которые включают использование вредных жидкостей и токсичных газов без воздействия на материал.Стерилизация эффективна с использованием газов, поскольку они быстро проникают в материал, как пар. Существует несколько рисков, поэтому следует учитывать вероятность взрыва и факторы стоимости.
 Обычно для стерилизации используются газы, состоящие из оксида этилена и диоксида углерода. Сюда добавляется углекислый газ, чтобы свести к минимуму вероятность взрыва. Озон — еще один вариант, который окисляет большую часть органических веществ. Перекись водорода, диоксид азота, растворы глутаральдегида и формальдегида, фталальдегид и перуксусная кислота — другие примеры химикатов, используемых для стерилизации.Этанол и IPA хороши в уничтожении микробных клеток, но не влияют на споры.
 Какие методы стерилизации? — CPT Medical 
 Стерилизация — это процесс уничтожения живых микроорганизмов из веществ. Это делается для того, чтобы вещи надолго сохранить и убить микробы. Если что-то не стерилизовать, это может вызвать инфекцию у тех, кто этим пользуется. Следовательно, это не следует воспринимать как должное.Существует несколько методов стерилизации, в том числе:
 Тепловая стерилизация 
 Это наиболее распространенный тип стерилизации, поскольку используемое тепло убивает все микробы. Степень стерилизации зависит от продолжительности нагрева и температуры нагрева. С повышением температуры увеличивается продолжительность нагрева. Тепловой метод стерилизации можно разделить на два:
 Метод влажного тепла 
 Здесь тепло применяется путем кипячения и включает такие методы, как пастеризация, использование пара и кипячение.Кипячение проводится для металлических приспособлений, таких как хирургические ножницы, индивидуальные подносы и иглы. Вещества кипятят, чтобы убить любые микробы. С другой стороны, пастеризация — это метод нагрева молока до 60 или 72 градусов три или четыре раза.
 При использовании пара стерилизуемые вещества подвергаются воздействию пара в автоклавном паронагревательном оборудовании. В процессе используется температура до 115 градусов в течение часа. Это наиболее распространенный метод стерилизации лекарств, поскольку он убивает споры бактерий, которые являются инертными формами бактерий.
 Сухие методы нагрева 
 Вещества подвергаются обжигу, сжиганию, сушке с горячим воздухом или радиационной стерилизации. При горении металлические предметы, такие как иглы или скальпели, помещаются над пламенем на несколько минут. Пламя убьет всех микробов напрямую. Сжигание используется, в частности, для инокуляции петель, используемых в культурах микробов. Металлический конец петли обжигается докрасна в огне, убивая все микробы.
 Радиационный метод заключается в облучении упакованных материалов.Существует два типа облучения: стерилизация неионным и ионизирующим излучением. Первый вариант безопасен для человека, выполняющего процедуру, в то время как второй требует, чтобы оператор носил защитное снаряжение. Метод горячего воздуха идеально подходит для сухих материалов, таких как стеклянная посуда и порошок. Их помещают на решетку духовки с горячим воздухом до стерилизации.
 Химическая стерилизация 
 В этом методе предметы подвергаются стерилизации токсичными газами. При стерилизации термочувствительных жидкостей следует использовать бактериальные фильтры.В этом виде стерилизации используются фильтры трех типов:
 Фильтры Seitz — они сделаны из таких материалов, как асбест, имеют форму подушечек и толще мембранных фильтров. Фильтры Seitz не разрываются в процессе фильтрации. Однако раствор может впитаться фильтром. Альтернативой фильтрам Зейтца являются фильтры из спеченного стекла, которые сделаны из стекла и, следовательно, не могут поглощать жидкости. Однако они хрупкие и хрупкие.
 Мембранные фильтры — эти тонкие фильтры изготовлены из целлюлозы и могут использоваться для онлайн-стерилизации во время инъекций.Мембрана помещается между иглой и шприцем. Однако этот тип фильтра может легко разорваться, что приведет к неправильной стерилизации.
 Свечные фильтры — они сделаны из глины, такой как диатомовая грязь, у которой есть маленькие поры, образованные водорослями. Фильтры имеют множество длинных пор, которые задерживают микробы, проходящие через свечу.
 Тип фильтра, который вы выбираете, зависит от вещества, которое вы хотите стерилизовать. При использовании газа для стерилизации следует учитывать факторы стоимости, а также вероятность взрыва.Используемые газы обычно очень токсичны, и их следует использовать с осторожностью. Если вы хотите стерилизовать хирургические инструменты, наиболее эффективными методами являются автоклав, кипячение и сжигание.
 Методы обеззараживания для лабораторного использования 
 Влажное тепло 
 Влажное тепло — самый надежный метод стерилизации.
 Автоклавирование, иногда называемое стерилизацией паром, является наиболее удобным методом быстрого уничтожения всех форм микробной жизни. В автоклавах используется насыщенный пар под давлением примерно 15 фунтов на квадратный дюйм для достижения температуры камеры не менее 250 ° F (121 ° C) в течение заданного времени — обычно 30–60 минут.
 Типичные области применения: Автоклавирование — надежный метод стерилизации лабораторного оборудования и обеззараживания биологически опасных отходов.
 Ссылки по теме: 
 Сухой жар 
 Сухой жар менее эффективен, чем влажный, и требует более длительного времени и / или более высоких температур для достижения стерилизации.Он подходит для уничтожения жизнеспособных организмов на непроницаемых неорганических поверхностях, таких как стекло, но он ненадежен в присутствии мелких слоев органических или неорганических материалов, которые могут действовать как изоляция.
 Типичные применения: Стерилизацию стеклянной посуды сухим жаром обычно можно выполнять при 160–170 ° C в течение 2–4 часов.
 Меры предосторожности: Регулярно контролируйте стерилизаторы влажного и сухого тепла, используя соответствующие биологические индикаторы [полоски со спорами].
 Жидкие дезинфицирующие средства обычно можно разделить на галогены, кислоты, щелочи, соли тяжелых металлов, соединения четвертичного аммония, фенольные соединения, альдегиды, кетоны, спирты и амины.
 Эффективность жидкого дезинфицирующего средства зависит от организма, концентрации, времени контакта и других условий использования. Выбирайте только жидкие дезинфицирующие средства, эффективность которых против присутствующих организмов подтверждена.Никакое жидкое дезинфицирующее средство не является одинаково полезным или эффективным при любых условиях и для всех жизнеспособных агентов.
 Типичные области применения: Жидкие дезинфицирующие средства используются для дезинфекции поверхностей и, при использовании в достаточной концентрации, в качестве дезинфицирующего средства для жидких отходов перед окончательной утилизацией. Всегда используйте химические дезинфицирующие средства в соответствии с инструкциями на этикетке.  Не используйте химические дезинфицирующие средства с истекшим сроком годности. 
 Меры предосторожности: Чем более химически активным является соединение, тем более вероятно, что оно будет токсичным и коррозионным.
 Рекомендуемые дезинфицирующие средства, их использование и требования см. В сводке дезинфицирующих средств   (Excel) (PDF). ПРИМЕЧАНИЕ. В таблице приведены рекомендации по обеззараживанию поверхности.
 Для химической дезинфекции жидких биологически опасных отходов единственным дезинфицирующим средством, одобренным университетом для Калифорнийского университета в Сан-Диего, является отбеливатель ( 1 часть отбеливателя на 9 частей жидких отходов, время контакта 30 минут, затем шитье ).
 Если ваша лаборатория желает узнать об использовании альтернативных дезинфицирующих средств для инактивации жидких биологически опасных отходов, отправьте электронное письмо со следующей информацией.Вы получите ответ в течение 5 (пяти) рабочих дней относительно утверждения.
 Дезинфицируемый материал
 Используемый химикат
 Концентрация химикатов
 Время контакта
 Способ утилизации (канализация, вывоз опасных отходов)
 Ссылки по теме: 
 Пары и газы при использовании в закрытых системах и в контролируемых условиях температуры и влажности обеспечивают отличную дезинфекцию.К агентам этой категории относятся аэрозольная, паровая или газовая фаза диоксида хлора, глутаральдегида, параформальдегида, этиленоксида, надуксусной кислоты и перекиси водорода.
 Типичное применение: Пары и газы в основном используются для дезактивации шкафов биобезопасности, помещений для животных и связанных с ними систем, громоздкого или стационарного оборудования, не подходящего для жидких дезинфицирующих средств, инструментов или оптики, которые могут быть повреждены другими методами дезинфекции, а также комнат, зданий, и сопутствующие системы кондиционирования воздуха.
  Осторожно:  В связи с их опасным характером, свяжитесь с EH&S Biosafety, (858) 534-5366, чтобы узнать о специальных требованиях к мониторингу, если эти соединения будут использоваться.
 Ссылки по теме: 
 Ионизирующий 
 Ионизирующее излучение уничтожает микроорганизмы, но не является практическим инструментом для лабораторного использования.
 Неионизирующий 
 Диапазон УФ-С ультрафиолетового (УФ) излучения содержит волны с длиной волны (250–270 нм, оптимальная — 265), которые эффективно уничтожают большинство микроорганизмов в воздухе, воде и на поверхностях.Организмы должны подвергаться прямому воздействию ультрафиолета; грязь, пыль и тени могут защитить от организмов, ограничивая эффективность УФ-лампы.
 Типичные области применения: Ультрафиолетовое излучение обычно используется для снижения уровней переносимых по воздуху микроорганизмов и поддержания хорошей гигиены воздуха в воздушных шлюзах, помещениях для содержания животных, вентилируемых шкафах и лабораторных помещениях. УФ также используется в шкафах биологической безопасности (BSC) и в некоторых лабораторных помещениях для уменьшения поверхностного загрязнения.
 Меры предосторожности: УФ-излучение может вызвать ожоги глаз (фотокератит) и кожи людей, подвергшихся воздействию даже в течение короткого периода времени.
 Соблюдайте следующие меры предосторожности:
 Активировать УФ-свет только тогда, когда в помещении никого нет.
 Используйте надлежащую защиту при использовании УФ-ламп.
 Interlock УФ-лампы используются для дезактивации пространства с общим освещением комнаты или шкафа, поэтому включение света выключает УФ.
 Предупредить новый и посещающий персонал об опасном воздействии УФ-излучения и о необходимых мерах предосторожности.
 Техническое обслуживание 
 Поскольку интенсивность УФ-лампы (ее разрушительная сила) со временем снижается, надлежащее техническое обслуживание имеет решающее значение для целей обеззараживания.Выполните это регулярное обслуживание:
 Ежемесячно проверяйте эффективность лампы с помощью УФ-метра или контрольной ленты.
 Очищайте УФ-лампы каждые несколько недель, чтобы предотвратить накопление пыли и грязи, что резко снижает эффективность УФ-лампы.
 Жидкая химическая стерилизация | FDA 
 Хотя термины схожи, «жидкая химическая стерилизация» отличается от термической стерилизации и низкотемпературной стерилизации газом / паром / плазмой.»Как поясняется на этой веб-странице, FDA считает, что стерилизация жидкими химическими стерилизаторами не обеспечивает такой же гарантии стерильности, как стерилизация с использованием методов термической или газовой / паровой / плазменной низкотемпературной стерилизации. Руководящий документ FDA по жидким химическим стерилизаторам / дезинфицирующим средствам высокого уровня — это проверенный процесс, используемый для очистки продукта от всех форм жизнеспособных микроорганизмов. Во многих случаях для стерилизации используются термические методы, такие как пар.Методы термической стерилизации широко изучены и охарактеризованы. Кроме того, кинетика выживания для методов низкотемпературной стерилизации газом / паром / плазмой также была хорошо охарактеризована.
 Жидкая химическая стерилизация 
 Жидкостная химическая стерилизация состоит из двух частей:
 Устройства обрабатываются жидким химическим бактерицидным средством (LCG).
 Обработанные устройства промываются водой для удаления остатков химикатов.
 У жидкой химической стерилизации есть несколько ограничений.Хотя промывочная вода обрабатывается для минимизации бионагрузки, она не стерильна. Поскольку промывочная вода нестерильна, нельзя гарантировать стерильность устройств, промытых этой водой. Кроме того, устройства нельзя обернуть или надлежащим образом удерживать во время обработки в жидком химическом стерилизаторе. Это означает, что невозможно поддерживать стерильность после обработки изделий.
 Рекомендации 
 По причинам, указанным выше, FDA рекомендует ограничить использование жидких химических стерилизующих обработкой только критических устройств, которые чувствительны к нагреванию и несовместимы с методами стерилизации, такими как пар и низкотемпературные процессы газ / пар / плазма.
 Биологические и химические индикаторы для жидкой химической стерилизации 
 Биологические индикаторы не подходят или не требуются для мониторинга процесса жидкой химической стерилизации. Обычно они используются для мониторинга традиционных процессов стерилизации, где достигается уровень SAL 10-6. FDA не одобрило никаких биологических индикаторов для мониторинга процесса жидкой химической стерилизации.
 Химические индикаторы подходят и необходимы для контроля минимально необходимой концентрации большинства жидких химических стерилизаторов.FDA утвердило многие химические индикаторы для мониторинга концентрации жидких химических стерилизаторов. См. Инструкции производителя для совместимого химического индикатора, одобренного FDA для использования с жидким химическим стерилизатором.
 Текущее содержание с: 
  11.12.2017 
 Использование химических веществ для борьбы с микроорганизмами 
 Цели обучения 
 Понимать и сравнивать различные химические вещества, используемые для контроля роста микробов, включая их применение, преимущества и недостатки, химическую структуру и способ действия
 Помимо физических методов борьбы с микробами, для контроля роста микробов также используются химические вещества.В качестве дезинфицирующих или антисептических средств можно использовать самые разные химические вещества. При выборе того, что использовать, важно учитывать тип целевого микроба; насколько чистым должен быть предмет; влияние дезинфицирующего средства на целостность изделия; его безопасность для животных, людей и окружающей среды; его расход; и простота использования. В этом разделе описывается множество химических веществ, используемых в качестве дезинфицирующих и антисептических средств, в том числе их механизмы действия и общие способы использования.
 Фенолы 
 В 1800-х годах ученые начали экспериментировать с различными химическими веществами для дезинфекции.В 1860-х годах британский хирург Джозеф  Листер  (1827–1912) начал использовать карболовую кислоту, известную как  фенол , в качестве дезинфицирующего средства для лечения хирургических ран (см. «Основы современной клеточной теории»). В 1879 году работа Листера вдохновила американского химика Джозефа  Лоуренса  (1836–1909) на разработку листерина, смеси нескольких родственных соединений на спиртовой основе, которая до сих пор используется в качестве перорального антисептика. Сегодня карболовая кислота больше не используется в качестве хирургического дезинфицирующего средства, поскольку она раздражает кожу, но химические соединения, содержащиеся в антисептических жидкостях для полоскания рта и пастилках для горла, называются фенольными соединениями  .
 Химически фенол состоит из бензольного кольца с группой –ОН, а фенольные соединения — это соединения, которые имеют эту группу как часть своей химической структуры. Фенольные соединения, такие как  тимол  и  эвкалиптол , встречаются в растениях в природе. Другие фенольные соединения могут быть получены из креозота, компонента каменноугольной смолы. Фенольные смолы, как правило, стабильны, устойчивы на поверхности и менее токсичны, чем фенол. Они подавляют рост микробов, денатурируя белки и разрушая мембраны.
 Рисунок 1.Фенол и фенольные соединения использовались для контроля роста микробов. (а) Химическая структура фенола, также известного как карболовая кислота. (b) о-фенилфенол, тип фенола, использовался в качестве дезинфицирующего средства, а также для контроля роста бактерий и грибков на собранных цитрусовых. (c) Гексахлорофен, другой фенол, известный как бисфенол (два кольца), является активным ингредиентом pHisoHex.
 Со времен Листера несколько  фенольных соединений  использовались для контроля роста микробов.Фенольные соединения, такие как  крезолы  (метилированные фенолы) и  о-фенилфенол , были активными ингредиентами в различных составах лизола с момента его изобретения в 1889 году. О-фенилфенол также широко использовался в сельском хозяйстве для контроля роста бактерий и грибков на собранных культурах, особенно цитрусовых. фрукты, но его использование в Соединенных Штатах сейчас гораздо более ограничено. Бисфенол  гексахлорофен , дезинфицирующее средство, является активным ингредиентом pHisoHex, моющего средства для местного применения, широко используемого для мытья рук в больницах.pHisoHex особенно эффективен против грамположительных бактерий, в том числе вызывающих стафилококковые и стрептококковые инфекции кожи. pHisoHex раньше использовался для купания младенцев, но эта практика была прекращена, поскольку было показано, что воздействие гексахлорофена может привести к неврологическим проблемам.
 Триклозан — еще одно соединение бисфенола, которое за последние несколько десятилетий широко использовалось в антибактериальных продуктах. Первоначально используемый в зубных пастах, триклозан   теперь широко используется в мыле для рук и часто пропитывается широким спектром других продуктов, включая разделочные доски, ножи, занавески для душа, одежду и бетон, чтобы сделать их противомикробными.Он особенно эффективен против грамположительных бактерий на коже, а также некоторых грамотрицательных бактерий и дрожжей.
 Триклозан: антибактериальный избыток? 
 Мыло для рук и другие чистящие средства часто продаются как «антибактериальные», предполагая, что они обеспечивают более высокий уровень чистоты, чем обычное мыло и моющие средства. Но действительно ли антибактериальные ингредиенты в этих продуктах безопасны и эффективны?
 Около 75% жидкого антибактериального мыла для рук и 30% мыла для мыла содержат химический триклозан, фенол.Триклозан блокирует фермент в пути биосинтеза жирных кислот бактерий, который не встречается в сопоставимых путях у человека. Хотя использование триклозана в домашних условиях резко увеличилось в течение 1990-х годов, более чем 40-летние исследования, проведенные FDA, не дали убедительных доказательств того, что мытье с использованием продуктов, содержащих триклозан, обеспечивает большую пользу для здоровья по сравнению с мытьем с традиционным мылом. Хотя некоторые исследования показывают, что после мытья с мылом на основе триклозана на руках может оставаться меньше бактерий, по сравнению с традиционным мылом, нет доказательств, указывающих на снижение передачи бактерий, вызывающих респираторные и желудочно-кишечные заболевания.Короче говоря, мыло с триклозаном может удалить или убить еще несколько микробов, но этого недостаточно для уменьшения распространения болезни.
 Возможно, более тревожным является то, что выявлены некоторые явные риски, связанные с мылом на основе триклозана. Широкое использование триклозана привело к увеличению числа устойчивых к триклозану штаммов бактерий, в том числе имеющих клиническое значение, таких как  Salmonella enterica ; эта устойчивость может сделать триклозан бесполезным в качестве антибактериального средства в долгосрочной перспективе. Бактерии могут легко приобрести устойчивость к триклозану за счет изменения одного гена, кодирующего целевой фермент в пути синтеза жирных кислот бактериями.Другие дезинфицирующие средства с менее специфическим механизмом действия гораздо менее склонны к возникновению резистентности, потому что для этого потребуется гораздо больше, чем одно генетическое изменение.
 Использование триклозана в течение последних нескольких десятилетий также привело к накоплению этого химического вещества в окружающей среде. Триклозан в мыле для рук напрямую попадает в канализационные и канализационные системы в результате мытья рук. Там его антибактериальные свойства могут подавлять или уничтожать бактерии, ответственные за разложение сточных вод, вызывая засорение и резервное копирование септических систем.В конце концов, триклозан из сточных вод попадает в поверхностные воды, ручьи, озера, отложения и почвы, разрушая естественные популяции бактерий, которые выполняют важные экологические функции, такие как подавление роста водорослей. Триклозан также проникает в тела земноводных и рыб, где он может действовать как эндокринный разрушитель. Обнаруживаемые уровни триклозана также были обнаружены в различных жидкостях организма человека, включая грудное молоко, плазму и мочу. Фактически, исследование, проведенное CDC, обнаружило обнаруживаемые уровни триклозана в моче у 75% из 2 517 человек, прошедших тестирование в 2003–2004 годах.Это открытие вызывает еще большее беспокойство, учитывая доказательства того, что триклозан может влиять на иммунную функцию человека.
 В декабре 2013 года FDA дало производителям мыла срок до 2016 года, чтобы доказать, что антибактериальное мыло имеет значительные преимущества по сравнению с традиционным мылом; если это не удастся, производители будут вынуждены удалить эти продукты с рынка.
 Рис. 2. Триклозан является обычным ингредиентом антибактериального мыла, несмотря на доказательства того, что он представляет опасность для окружающей среды и здоровья и не приносит значительной пользы для здоровья по сравнению с обычным мылом.(кредит b, c: модификация работы FDA)
 Подумай об этом 
 Почему триклозан больше похож на антибиотик, чем на традиционное дезинфицирующее средство?
 Тяжелые металлы 
 Одним из первых химических дезинфицирующих средств и антисептиков, которые были использованы, были  тяжелых металлов . Тяжелые металлы убивают микробы, связываясь с белками, тем самым подавляя ферментативную активность. Тяжелые металлы олигодинамичны, что означает, что очень небольшие концентрации проявляют значительную антимикробную активность.Ионы тяжелых металлов прочно связываются с серосодержащими аминокислотами и биоаккумулируются в клетках, позволяя этим металлам достигать высоких локальных концентраций. Это приводит к денатурированию белков.
 Тяжелые металлы не являются избирательно токсичными для микробных клеток. Они также могут биоаккумулироваться в клетках человека или животных, а чрезмерные концентрации могут оказывать токсическое воздействие на людей. Если, например, в организме накапливается слишком много серебра, это может привести к состоянию под названием  argyria , при котором кожа становится необратимо серо-голубой.Один из способов снизить потенциальную токсичность тяжелых металлов — это тщательно контролировать продолжительность воздействия и концентрацию тяжелых металлов.
 Рис. 3. Тяжелые металлы денатурируют белки, нарушая функцию клеток и, таким образом, придавая им сильные антимикробные свойства. (а) Медь в светильниках, подобных этой дверной ручке, убивает микробы, которые в противном случае могли бы накапливаться на поверхностях, к которым часто прикасаются. (б) Столовая посуда содержит небольшое количество серебра для подавления роста микробов. (c) Инкубаторы обычно проходят через медные линии, чтобы свести к минимуму загрязнение клеточных культур, хранящихся внутри.(d) Антисептические жидкости для полоскания рта обычно содержат хлорид цинка. (e) Этот пациент страдает аргирией, необратимым заболеванием, вызванным биоаккумуляцией серебра в организме. (Фото b: модификация работы «Shoshanah» / Flickr; кредит e: модификация работы Герберта Л. Фреда и Хендрика А. ван Дейка)
 Меркурий 
 Ртуть — это пример тяжелого металла, который в течение многих лет использовался для контроля роста микробов. Его использовали на протяжении многих веков для лечения сифилиса. Соединения ртути, такие как  хлорид ртути , в основном  бактериостатические  и обладают очень широким спектром активности.Различные формы  ртути  связываются с серосодержащими аминокислотами в белках, подавляя их функции.
 В последние десятилетия использование таких соединений сократилось из-за токсичности ртути. Он токсичен для центральной нервной, пищеварительной и почечной систем в высоких концентрациях и оказывает негативное воздействие на окружающую среду, включая биоаккумуляцию в рыбе. Когда-то широко использовались местные антисептики, такие как  меркурохром , содержащий ртуть в низких концентрациях, и  мертиолат , настойка   (раствор ртути, растворенной в спирте).Однако из-за опасений по поводу использования соединений ртути эти антисептики больше не продаются в Соединенных Штатах.
 Серебро 
 Серебро издавна использовалось как антисептик. В древности питьевая вода хранилась в  серебряных  кувшинах. Крем сильваден обычно используется для лечения местных ран и особенно полезен для предотвращения инфицирования ожоговых ран. Когда-то капли нитрата серебра обычно наносили на глаза новорожденных для защиты от  ophthalmia neonatorum , глазных инфекций, которые могут возникать из-за воздействия патогенов в родовых путях, но сейчас чаще используются кремы с антибиотиками.Серебро часто сочетается с антибиотиками, что делает их в тысячи раз более эффективными. Серебро также обычно вводят в катетеры и повязки, делая их противомикробными; однако есть свидетельства того, что тяжелые металлы могут также усиливать селекцию по устойчивости к антибиотикам.
 Медь, никель и цинк 
 Некоторые другие тяжелые металлы также обладают антимикробной активностью. Сульфат меди — это распространенный альгицид  , используемый для контроля роста водорослей в плавательных бассейнах и аквариумах.Использование металлической меди   для минимизации роста микробов также становится все более распространенным. Медные футеровки в инкубаторах помогают снизить загрязнение клеточных культур. Использование медных горшков для хранения воды в слаборазвитых странах исследуется как способ борьбы с диарейными заболеваниями. Медные покрытия также становятся популярными для часто используемых предметов, таких как дверные ручки, фурнитура для шкафов и другие приспособления в медицинских учреждениях, в попытке уменьшить распространение микробов.
 Покрытия из никеля и цинка теперь используются аналогичным образом. Другие формы цинка, включая хлорид цинка   и оксид цинка  , также используются в коммерческих целях. Хлорид цинка довольно безопасен для человека и обычно содержится в жидкостях для полоскания рта, что значительно увеличивает срок их действия. Оксид цинка содержится в различных продуктах, включая антисептические кремы для местного применения, такие как лосьон с каламином, мази для подгузников, детская присыпка и шампуни от перхоти.
 Подумай об этом 
 Почему многие тяжелые металлы являются противомикробными и токсичными для человека?
 Галогены 
 Другими химическими веществами, обычно используемыми для дезинфекции, являются галогены , , йод, , , хлор , и фтор , .Йод действует путем окисления клеточных компонентов, в том числе серосодержащих аминокислот, нуклеотидов и жирных кислот, и дестабилизации макромолекул, содержащих эти молекулы. Его часто используют в качестве настойки для местного применения, но он может вызвать окрашивание или раздражение кожи. Йодофор   представляет собой соединение йода в комплексе с органической молекулой, тем самым повышая стабильность йода и, в свою очередь, его эффективность. Один из распространенных йодофоров — это  повидон-йод , который включает увлажняющий агент, который относительно медленно выделяет йод.Бетадин — это марка повидон-йода, обычно используемая медицинским персоналом в качестве скраба для рук перед операцией и для местной антисептики кожи пациента перед разрезом.
 Рис. 4. (а) Бетадин представляет собой раствор йодофорной повидон-йодистой кислоты. (б) Он обычно используется в качестве местного антисептика на коже пациента перед разрезом во время операции. (кредит b: модификация работы Эндрю Ратто)
 Хлор — еще один галоген, обычно используемый для дезинфекции. Когда газообразный хлор смешивается с водой, образуется сильный окислитель, называемый хлорноватистой кислотой, которая не заряжается и легко проникает в клетки.Газообразный хлор обычно используется в городских очистных сооружениях питьевой воды и сточных вод, в результате чего образующаяся хлорноватистая кислота оказывает фактическое противомикробное действие. Лица, работающие на водоочистных сооружениях, должны проявлять большую осторожность, чтобы свести к минимуму воздействие газообразного хлора на себя. Гипохлорит натрия является химическим компонентом обычного бытового отбеливателя  , а также используется для самых разных целей дезинфекции. Соли гипохлорита, в том числе гипохлориты натрия и кальция, используются для дезинфекции бассейнов.Газообразный хлор, гипохлорит натрия и гипохлорит кальция также широко используются в качестве дезинфицирующих средств в пищевой и ресторанной промышленности для снижения распространения болезней пищевого происхождения. Работники этих отраслей также должны заботиться о правильном использовании этих продуктов, чтобы обеспечить свою безопасность, а также безопасность потребителей. В недавнем совместном заявлении, опубликованном Продовольственной и сельскохозяйственной организацией Объединенных Наций (ФАО) и ВОЗ, указано, что ни одно из многих полезных применений хлористых продуктов в пищевой промышленности для сокращения распространения болезней пищевого происхождения не представляет риска для потребителей.
 Другой класс хлорированных соединений, называемых хлораминами  , широко используется в качестве дезинфицирующих средств. Хлорамины относительно стабильны, выделяя хлор в течение длительного времени. Хлорамины представляют собой производные аммиака путем замещения одного, двух или всех трех атомов водорода атомами хлора.
 Рис. 5. Монохлоамин, один из хлораминов, получают из аммиака путем замены одного атома водорода на атом хлора.
 Хлорамины и другие соединения холина могут использоваться для дезинфекции питьевой воды, и таблетки хлорамина часто используются в военных для этой цели.После стихийного бедствия или другого события, которое ставит под угрозу коммунальное водоснабжение, CDC рекомендует дезинфицировать водопроводную воду, добавляя небольшое количество обычного бытового отбеливателя. Недавние исследования показывают, что дихлоризоцианурат натрия (NaDCC) также может быть хорошей альтернативой для дезинфекции питьевой воды. В настоящее время таблетки NaDCC доступны для общего использования и для использования военными, отдыхающими или людьми, нуждающимися в неотложной помощи; для этих целей NaDCC предпочтительнее таблеток хлорамина. Двуокись хлора, газообразный агент, используемый для фумигации и стерилизации закрытых помещений, также обычно используется для дезинфекции воды.
 Хотя хлорированные соединения являются относительно эффективными дезинфицирующими средствами, у них есть свои недостатки. Некоторые из них могут вызвать раздражение кожи, носа или глаз у некоторых людей, и они не могут полностью уничтожить определенные выносливые организмы из загрязненной питьевой воды. Например, гриб   Cryptosporidium   имеет защитную внешнюю оболочку, которая делает его устойчивым к хлорированным дезинфицирующим средствам. Таким образом, в экстренных случаях рекомендуется кипячение питьевой воды, когда это возможно.
 Галоген фтор, как известно, обладает антимикробными свойствами, которые способствуют предотвращению  кариеса зубов  (кариес). Фтор — это основной активный ингредиент зубной пасты, который также обычно добавляют в водопроводную воду, чтобы помочь общинам поддерживать здоровье полости рта. Химически фторид   может включаться в гидроксиапатит зубной эмали, делая его более устойчивым к коррозионным кислотам, образующимся при ферментации микробов полости рта. Фторид также увеличивает поглощение ионов кальция и фосфата зубной эмалью, способствуя реминерализации.Помимо укрепления эмали, фторид также обладает бактериостатическим действием. Он накапливается в бактериях, образующих зубной налет, нарушая их метаболизм и снижая выработку кислот, способствующих разрушению зубов.
 Подумай об этом 
 В чем преимущество хлорамина перед гипохлоритом при дезинфекции?
 Спирты 
 Спирты составляют еще одну группу химикатов, обычно используемых в качестве дезинфицирующих и антисептических средств. Они работают за счет быстрой денатурирования белков, что препятствует клеточному метаболизму, и за счет разрушения мембран, что приводит к лизису клеток.После денатурирования белки могут потенциально повторно укладываться, если в растворе присутствует достаточно воды. Спирты обычно используются при концентрации около 70% водного раствора и, фактически, лучше работают в водных растворах, чем 100% спиртовые растворы. Это потому, что спирты коагулируют белки. При более высоких концентрациях спирта быстрая коагуляция поверхностных белков препятствует эффективному проникновению в клетки. Наиболее часто используемые спирты для дезинфекции — это  этиловый спирт  (этанол) и  изопропиловый спирт  (изопропанол, медицинский спирт).
 Спирты, как правило, обладают бактерицидным и фунгицидным действием, но также могут быть вирусными только в отношении вирусов в оболочке. Хотя спирты не обладают спороцидным действием, они подавляют процессы споруляции и прорастания. Спирты летучие и быстро сохнут, но они также могут вызывать раздражение кожи, поскольку обезвоживают кожу в месте нанесения. Одно из распространенных клинических применений спиртов — это мазок с кожи для удаления зародышей перед иглой. Спирты также являются активными ингредиентами дезинфицирующих средств для рук  быстрого приготовления, которые приобрели популярность в последние годы.Спирт в этих дезинфицирующих средствах для рук действует как денатурируя белки, так и разрушая мембрану микробных клеток, но не будет работать эффективно в присутствии видимой грязи.
 Наконец, спирты используются для приготовления  настойки  с другими антисептиками, такими как настойки йода, которые обсуждались ранее в этой главе. В целом спирты недороги и достаточно эффективны для дезинфекции широкого спектра вегетативных микробов. Однако одним из недостатков спиртов является их высокая летучесть, ограничивающая их эффективность сразу после нанесения.
 Рис. 6. (a) Этиловый спирт, опьяняющий ингредиент алкогольных напитков, также широко используется в качестве дезинфицирующего средства. (б) Изопропиловый спирт, также называемый медицинским спиртом, имеет родственную молекулярную структуру и является еще одним широко используемым дезинфицирующим средством. (кредит фото: модификация работы Д. Кутзи; кредит b фото: модификация работы Крейга Спурриера)
 Подумай об этом 
 Назовите хотя бы три преимущества спиртов как дезинфицирующих средств.
 Опишите несколько конкретных применений спиртов, используемых в дезинфицирующих средствах.
 ПАВ 
 Поверхностно-активные вещества или  поверхностно-активные вещества  — это группа химических соединений, снижающих поверхностное натяжение воды. Поверхностно-активные вещества являются основными ингредиентами мыла   и моющих средств  . Мыла представляют собой соли длинноцепочечных жирных кислот и имеют как полярные, так и неполярные области, что позволяет им взаимодействовать с полярными и неполярными областями в других молекулах. Они могут взаимодействовать с неполярными маслами и жирами, создавая эмульсии в воде, разрыхляя и удаляя грязь и микробы с поверхностей и кожи.Мыло не убивает и не подавляет рост микробов, поэтому не считается антисептиком или дезинфицирующим средством. Однако правильное использование мыла механически уносит микроорганизмы,  эффективно очищая  поверхность от зародышей. Некоторые мыла содержат добавленные бактериостатические агенты, такие как  триклокарбан  или  клофлукарбан , соединения, структурно родственные триклозану, которые придают мыло  антисептическое  или  дезинфицирующее  свойства.
 Рис. 7. Мыла представляют собой соли (натриевая соль на иллюстрации) жирных кислот и обладают способностью эмульгировать липиды, жиры и масла, взаимодействуя с водой через их гидрофильные головки и с липидами на их гидрофобных хвостах.
 Однако мыло часто образует пленки, которые трудно смыть, особенно в жесткой воде, содержащей высокие концентрации минеральных солей кальция и магния. Моющие средства содержат молекулы синтетических поверхностно-активных веществ как с полярными, так и с неполярными областями, которые обладают сильной очищающей активностью, но более растворимы даже в жесткой воде и, следовательно, не оставляют мыльных отложений. Анионные моющие средства  , такие как те, которые используются для стирки, имеют отрицательно заряженный анион на одном конце, прикрепленный к длинной гидрофобной цепи, тогда как катионные моющие средства вместо этого имеют положительно заряженный катион.Катионные моющие средства включают важный класс дезинфицирующих и антисептических средств, называемых солями четвертичного аммония  (кватерны) , названными в честь характерного четвертичного атома азота, который придает положительный заряд. В целом четвертичные соединения обладают свойствами, аналогичными фосфолипидам, имея гидрофильные и гидрофобные концы. Таким образом, четвертичные соединения обладают способностью вставляться в бактериальный фосфолипидный бислой и нарушать целостность мембраны. Катионный заряд четвертичных соединений, по-видимому, придает их антимикробные свойства, которые уменьшаются при нейтрализации.Кваты обладают рядом полезных свойств. Они стабильны, нетоксичны, недороги, не имеют цвета, запаха и вкуса. Они обладают бактерицидным действием, разрушая мембраны. Они также активны против грибов, простейших и вирусов в оболочке, но эндоспоры не затронуты. В клинических условиях они могут использоваться как антисептики или для дезинфекции поверхностей. Смеси четвертичных также часто встречаются в бытовых чистящих и дезинфицирующих средствах, в том числе во многих современных составах продуктов марки Lysol, которые содержат  хлоридов бензалкония  в качестве активных ингредиентов.Хлориды бензалкония, наряду с хлоридом цетилпиримидина quat  , также содержатся в таких продуктах, как антисептики для кожи, полоскания для полости рта и жидкости для полоскания рта.
 Рис. 8. (a) Двумя общими четвертичными соединениями являются хлорид бензилалкония и хлорид цетилпиримидина. Обратите внимание на гидрофобную неполярную углеродную цепь на одном конце и азотсодержащий катионный компонент на другом конце. (b) Quats способны проникать в фосфолипидные плазматические мембраны бактериальных клеток и нарушать их целостность, что приводит к гибели клетки.
 Подумай об этом 
 Почему мыло не считается дезинфицирующим средством?
 Правильное мытье рук 
 Мытье рук имеет решающее значение для общественного здравоохранения, и ему следует уделять особое внимание в клинических условиях. Для широкой публики CDC рекомендует  для мытья рук  до, во время и после работы с пищевыми продуктами; до еды; до и после общения с больным человеком; до и после обработки раны; после посещения туалета или смены подгузников; после кашля, чихания или сморкания; после обработки мусора; и после взаимодействия с животным, его кормом или отходами.На рисунке 9 показаны пять этапов правильного мытья рук, рекомендованных CDC.
 Мытье рук еще более важно для медицинских работников, которым следует тщательно мыть руки между каждым контактом с пациентом, после снятия перчаток, после контакта с биологическими жидкостями и потенциально инфекционными фомитами, а также до и после оказания хирургу помощи при проведении инвазивных процедур. Даже при использовании надлежащей хирургической одежды, в том числе перчаток, чистка во время операции требует больше усилий, чем обычное мытье рук.Целью хирургической очистки   является уменьшение нормальной микробиоты на поверхности кожи, чтобы предотвратить попадание этих микробов в хирургические раны пациента.
 Не существует единого общепринятого протокола хирургической чистки. Протоколы продолжительности чистки могут зависеть от применяемого противомикробного препарата; медицинские работники всегда должны проверять рекомендации производителя. По данным Ассоциации хирургических технологов (AST), хирургические скрабы могут выполняться с использованием щеток или без них.
 Рис. 9. (a) CDC рекомендует пять этапов обычного мытья рук для населения. (b) Хирургическая чистка более обширна и требует очистки, начиная с кончиков пальцев, до кистей и предплечий, а затем до локтей, как показано здесь. (кредит А: модификация работы Всемирной организации здравоохранения)
Чтобы узнать больше о правильном мытье рук, посетите веб-сайт CDC.
 Бисбигуаниды 
 Бисбигуаниды были впервые синтезированы в 20 веке и представляют собой катионные (положительно заряженные) молекулы, известные своими антисептическими свойствами.Одним из важных антисептиков  бисбигуанид  является хлоргексидин  . Он обладает активностью широкого спектра действия против дрожжей, грамположительных и грамотрицательных бактерий, за исключением   Pseudomonas aeruginosa  , у которых может развиться устойчивость при многократном воздействии. Хлоргексидин разрушает клеточные мембраны и обладает бактериостатическим действием при более низких концентрациях или бактерицидным при более высоких концентрациях, при которых он фактически вызывает застывание цитоплазматического содержимого клеток.Он также действует против вирусов в оболочке. Однако хлоргексидин малоэффективен против   Mycobacterium tuberculosis   и вирусов без оболочки, а также не является спороцидным. Хлоргексидин обычно используется в клинических условиях в качестве хирургического скраба и для других целей мытья рук для медицинского персонала, а также для местного антисептического действия у пациентов перед операцией или инъекцией иглы. Он более стойкий, чем йодофоры, обеспечивая длительное противомикробное действие.Растворы хлоргексидина также можно использовать в качестве ополаскивателей для полости рта после пероральных процедур или для лечения гингивита. Другой бисбигуанид,  алексидин , набирает популярность в качестве хирургического скраба и средства для полоскания рта, поскольку действует быстрее, чем хлоргексидин.
 Рис. 10. Бисбигуаниды хлоргексадин и алексидин являются катионными антисептическими соединениями, обычно используемыми в качестве хирургических скрабов.
 Подумай об этом 
 Какие два эффекта хлоргексидин оказывает на бактериальные клетки?
 Алкилирующие агенты 
 Алкилирующие агенты   представляют собой группу сильнодействующих дезинфицирующих химикатов, которые действуют путем замены атома водорода в молекуле на алкильную группу (C  n  H  2n + 1 ), тем самым инактивируя ферменты и нуклеиновые кислоты.Алкилирующий агент формальдегид (CH  2  OH) обычно используется в растворе с концентрацией 37% (известный как формалин  ) или как газообразное дезинфицирующее средство и биоцид. Это сильнодействующее дезинфицирующее средство и биоцид широкого спектра действия, обладающее способностью убивать бактерии, вирусы, грибки и эндоспоры, что приводит к стерилизации при низких температурах, что иногда является удобной альтернативой более трудоемким методам тепловой стерилизации. Он также связывает белки и широко используется в качестве химического фиксатора.Из-за этого он используется для хранения образцов тканей и в качестве жидкости для бальзамирования. Он также использовался для инактивации инфекционных агентов при приготовлении вакцины. Формальдегид очень раздражает живые ткани, а также является канцерогенным; поэтому он не используется в качестве антисептика.
 Глутаральдегид структурно подобен формальдегиду, но имеет две реакционноспособные альдегидные группы, что позволяет ему действовать быстрее, чем формальдегид. Он обычно используется в виде 2% раствора для стерилизации и продается под торговой маркой Cidex.Он используется для дезинфекции различных поверхностей, хирургического и медицинского оборудования. Однако, как и формальдегид, глутаральдегид раздражает кожу и не используется в качестве антисептика.
 Новый тип дезинфицирующего средства, набирающий популярность для дезинфекции медицинского оборудования, — это  о-фталевый альдегид  (OPA), который содержится в некоторых новых составах Cidex и аналогичных продуктов, заменяя глутаральдегид. о-Фталальдегид также имеет две реакционноспособные альдегидные группы, но они связаны ароматическим мостиком.Считается, что о-фталальдегид действует аналогично глютаральдегиду и формальдегиду, но гораздо менее раздражает кожу и носовые ходы, имеет минимальный запах, не требует обработки перед использованием и более эффективен против микобактерий.
  Оксид этилена  — это тип алкилирующего агента, который используется для газовой стерилизации. Он обладает высокой проникающей способностью и может стерилизовать предметы в пластиковых пакетах, такие как катетеры, одноразовые предметы в лабораториях и клинических учреждениях (например, упакованные чашки Петри) и другое оборудование.Воздействие оксида этилена — это форма холодной стерилизации, что делает его полезным для стерилизации термочувствительных предметов. Однако следует соблюдать осторожность при использовании окиси этилена; он канцерогенный, как и другие алкилирующие агенты, а также очень взрывоопасен. При осторожном использовании и надлежащей аэрации продуктов после обработки оксид этилена очень эффективен, и стерилизаторы оксида этилена обычно используются в медицинских учреждениях для стерилизации упакованных материалов.
 β-Пропионолактон представляет собой алкилирующий агент с химической структурой, отличной от других уже рассмотренных.Как и другие алкилирующие агенты,  β-пропионолактон  связывается с ДНК, тем самым инактивируя ее. Это прозрачная жидкость с сильным запахом, которая убивает эндоспоры. Как таковой, он использовался либо в жидкой форме, либо в виде пара для стерилизации медицинских инструментов и тканевых трансплантатов, и он является обычным компонентом вакцин, используемых для поддержания их стерильности. Он также использовался для стерилизации питательного бульона, а также плазмы крови, молока и воды. Он быстро метаболизируется животными и людьми до молочной кислоты.Однако он также является раздражителем и может привести к необратимому повреждению глаз, почек или печени. Кроме того, было показано, что он канцерогенный для животных; таким образом, необходимы меры предосторожности, чтобы свести к минимуму воздействие β-пропионолактона на человека.
 Рис. 11. (a) Алкилирующие агенты заменяют атомы водорода алкильными группами. Здесь гуанин алкилируется, в результате чего образуется водородная связь с тимином, а не с цитозином. (б) Химические структуры нескольких алкилирующих агентов.
 Подумай об этом 
 В какой химической реакции участвуют алкилирующие агенты?
 Почему алкилирующие агенты не используются в качестве антисептиков?
 Дихард Прионс 
 Прионы, бесклеточные неправильно свернутые белки, ответственные за неизлечимые и смертельные заболевания, такие как куру и болезнь Крейтцфельдта-Якоба (см. Вироиды, вирусоиды и прионы), как известно, трудно уничтожить.Прионы чрезвычайно устойчивы к нагреванию, химическим веществам и радиации. Они также чрезвычайно заразны и смертельно опасны; таким образом, обращение с предметами, инфицированными прионами, и их утилизация требуют обширного обучения и особой осторожности.
 Типичные методы дезинфекции могут снизить, но не устранить инфекционность прионов. Автоклавирование не является полностью эффективным, равно как и химические вещества, такие как фенол, спирты, формалин и β-пропиолактон. Даже при фиксации в формалине пораженные ткани головного и спинного мозга остаются заразными.
 Персонал, работающий с зараженными образцами или оборудованием или работающий с инфицированными пациентами, должен носить защитное пальто, защиту лица и перчатки, устойчивые к порезам. Любой контакт с кожей необходимо немедленно промыть моющим средством и теплой водой, не используя скребок. Затем кожу следует промыть 1 N NaOH или разбавлением 1:10 отбеливателем в течение 1 минуты. Загрязненные отходы необходимо сжигать или автоклавировать в сильном щелочном растворе, а инструменты необходимо очистить и пропитать сильным щелочным раствором.
Для получения дополнительной информации об обращении с животными и материалами, загрязненными прионами, посетите руководящие принципы, опубликованные на веб-сайтах CDC и ВОЗ.
 Пероксигены 
 Пероксигены — сильные окислители, которые можно использовать в качестве дезинфицирующих или антисептических средств. Наиболее широко используемым пероксидом   является перекись водорода   (H  2  O  2 ), которая часто используется в растворах для дезинфекции поверхностей, а также может использоваться в качестве газообразного агента. Растворы перекиси водорода — недорогие кожные антисептики, которые распадаются на воду и кислород, оба из которых являются экологически безопасными.Это разложение ускоряется в присутствии света, поэтому растворы перекиси водорода обычно продаются в коричневых или непрозрачных бутылках. Одним из недостатков использования перекиси водорода в качестве антисептика является то, что она также вызывает повреждение кожи, которое может замедлить заживление или привести к образованию рубцов. Очистители контактных линз часто содержат перекись водорода в качестве дезинфицирующего средства.
 Перекись водорода производит свободные радикалы, которые повреждают клеточные макромолекулы. Перекись водорода имеет широкий спектр действия, действуя против грамположительных и грамотрицательных бактерий (с немного большей эффективностью против грамположительных бактерий), грибов, вирусов и эндоспор.Однако бактерии, вырабатывающие кислород-детоксицирующие ферменты , каталазу  или пероксидазу  , могут иметь внутреннюю толерантность к низким концентрациям перекиси водорода. Чтобы убить эндоспоры, необходимо увеличить продолжительность воздействия или концентрацию растворов перекиси водорода. Газообразная перекись водорода имеет большую эффективность и может использоваться в качестве стерилизатора   для помещений или оборудования.
 Рис. 12. Каталаза ферментативно превращает перекись водорода с высокой реакционной способностью (H  2  O  2 ) в воду и кислород.Перекись водорода можно использовать для очистки ран. Перекись водорода используется для стерилизации таких предметов, как контактные линзы. (кредитные фотографии: модификация работы Керри Чешика)
 Плазма, горячий ионизированный газ, описываемый как четвертое состояние вещества, полезен для стерилизации оборудования, поскольку он проникает через поверхности и убивает вегетативные клетки и эндоспоры. Перекись водорода и  перуксусная кислота , другой обычно используемый пероксид, могут вводиться в виде плазмы. Перуксусную кислоту можно использовать в качестве стерилизатора жидкости или плазмы, поскольку она легко убивает эндоспоры, более эффективна, чем перекись водорода даже при довольно низких концентрациях, и невосприимчива к инактивации каталазами и пероксидазами.Он также распадается на экологически безвредные соединения; в данном случае уксусная кислота и кислород.
 Другие примеры пероксигенов включают  пероксид бензоила  и  пероксид карбамида . Пероксид бензоила — это пероксид, который используется в растворах для лечения акне. Он убивает бактерии    Propionibacterium acnes   , которые связаны с акне. Перекись карбамида, ингредиент, используемый в зубной пасте, представляет собой пероксид, который борется с биопленками полости рта, вызывающими обесцвечивание зубов и неприятный запах изо рта (неприятный запах изо рта).Наконец,  озон  газ представляет собой перекисный кислород с дезинфицирующими свойствами и используется для очистки воздуха или воды. В целом пероксигены высокоэффективны и широко используются, не опасаясь окружающей среды.
 Подумай об этом 
 Как перекиси убивают клетки?
 Сверхкритические жидкости 
 В течение последних 15 лет использование  сверхкритических жидкостей , особенно сверхкритического диоксида углерода (scCO  2 ), стало популярным в некоторых случаях стерилизации.Когда углекислый газ доводится до давления, примерно в 10 раз превышающего атмосферное, он достигает сверхкритического состояния, которое имеет физические свойства между жидкостями и газами. Материалы, помещенные в камеру, в которой таким образом создается давление диоксида углерода, можно стерилизовать из-за способности scCO  2  проникать через поверхности.
 Сверхкритический диоксид углерода проникает в клетки и образует  угольную кислоту , тем самым значительно снижая pH клетки. Этот метод эффективен против вегетативных клеток, а также используется в сочетании с перуксусной кислотой для уничтожения эндоспор.Его эффективность также может быть усилена повышением температуры или быстрыми циклами повышения и сброса давления, которые с большей вероятностью вызывают лизис клеток.
 Преимущества scCO  2  включают инертные, нетоксичные и негорючие свойства диоксида углерода, и этот протокол эффективен при низких температурах. В отличие от других методов, таких как нагревание и облучение, которые могут разрушить стерилизуемый объект, использование scCO  2  сохраняет целостность объекта и обычно используется для обработки пищевых продуктов (включая специи и соки) и медицинских устройств, таких как эндоскопы.Он также набирает популярность для дезинфекции таких тканей, как кожа, кости, сухожилия и связки, перед трансплантацией. scCO  2  также может использоваться для борьбы с вредителями, поскольку он может убивать яйца и личинки насекомых в продуктах.
 Подумай об этом 
 Почему использование сверхкритического диоксида углерода становится все более популярным в коммерческих и медицинских целях?
 Химические консерванты для пищевых продуктов 
 Chemical  консерванты  используются для подавления роста микробов и минимизации порчи некоторых пищевых продуктов.Обычно используемые химические консерванты включают сорбиновую кислоту  , бензойную кислоту   и пропионовую кислоту  , а также их более растворимые соли  сорбат калия , бензоат натрия  и  пропионат кальция , все из которых используются для контроля рост плесени в кислой пище. Каждый из этих консервантов нетоксичен и легко метаболизируется человеком. Они также не имеют вкуса, поэтому не влияют на вкус сохраняемых продуктов.
 Сорбиновая и бензойная кислоты проявляют повышенную эффективность при снижении pH. Считается, что сорбиновая кислота действует путем ингибирования различных клеточных ферментов, включая ферменты цикла лимонной кислоты, а также каталазы   и пероксидазы  . Он добавляется в качестве консерванта в самые разные продукты, включая молочные продукты, хлеб, фрукты и овощи. Бензойная кислота естественным образом содержится во многих фруктах и ​​ягодах, специях и ферментированных продуктах. Считается, что он работает за счет снижения внутриклеточного pH, препятствуя таким механизмам, как окислительное фосфорилирование ,  и поглощение молекул, таких как аминокислоты, клетками.Продукты, консервированные бензойной кислотой или бензоатом натрия, включают фруктовые соки, джемы, мороженое, выпечку, безалкогольные напитки, жевательную резинку и соленые огурцы.
 Считается, что пропионовая кислота подавляет ферменты и снижает внутриклеточный pH, действуя аналогично бензойной кислоте. Однако пропионовая кислота является более эффективным консервантом при более высоком pH, чем сорбиновая кислота или бензойная кислота. Пропионовая кислота естественным образом вырабатывается некоторыми сырами во время их созревания и добавляется в другие виды сыра и выпечку для предотвращения заражения плесенью.Его также добавляют в сырое тесто, чтобы предотвратить заражение бактериями   Bacillus mesentericus  , из-за которых хлеб становится вязким.
 Другие широко используемые химические консерванты включают  диоксид серы  и  нитриты . Диоксид серы предотвращает потемнение продуктов и используется для консервирования сухофруктов; его использовали в виноделии с давних времен. Газообразный диоксид серы легко растворяется в воде, образуя  сульфитов .Хотя сульфиты могут метаболизироваться в организме, у некоторых людей есть аллергия на сульфиты, включая астматические реакции. Кроме того, сульфиты разлагают тиамин, важный нутриент в некоторых продуктах питания. Механизм действия сульфитов не совсем ясен, но они могут препятствовать образованию дисульфидной связи   в белках, подавляя ферментативную активность. Альтернативно, они могут снижать внутриклеточный pH клетки, вмешиваясь в механизмы, управляемые протонной движущей силой.
 Нитритов добавляют в переработанное мясо для сохранения цвета и остановки прорастания эндоспор   Clostridium botulinum  .Нитриты восстанавливаются до  оксида азота , который реагирует с гемовыми группами и железо-серными группами. Когда оксид азота вступает в реакцию с гемовой группой миоглобина мяса, образуется красный продукт, придающий мясу красный цвет. С другой стороны, считается, что когда азотная кислота реагирует с ферментом железо-сера , ферредоксином  в бактериях, этот переносчик электронной транспортной цепи разрушается, предотвращая синтез АТФ. Однако нитрозамины являются канцерогенными и могут вырабатываться при воздействии консервированного нитритом мяса (например,г., хот-доги, мясо для обеда, колбаса для завтрака, бекон, мясо в консервированных супах) для разогрева во время приготовления.
 Природные химические консерванты для пищевых продуктов 
 Открытие природных антимикробных веществ, продуцируемых другими микробами, пополнило арсенал консервантов, используемых в пищевых продуктах.  Низин  представляет собой антимикробный пептид, продуцируемый бактерией   Lactococcus lactis   и особенно эффективен против грамположительных организмов. Низин действует, нарушая производство клеточной стенки, делая клетки более склонными к лизису.Его используют для консервирования сыров, мяса и напитков.
  Натамицин  — противогрибковый макролидный антибиотик, продуцируемый бактерией   Streptomyces natalensis  . Он был одобрен FDA в 1982 году и используется для предотвращения роста грибков в различных типах молочных продуктов, включая творог, нарезанный сыр и тертый сыр. Натамицин также используется для консервирования мяса за пределами США.
 Подумай об этом 
 Каковы преимущества и недостатки использования сульфитов и нитритов в качестве пищевых консервантов?
 Основные понятия и краткое изложение 
  Тяжелые металлы , включая ртуть, серебро, медь и цинк, уже давно используются для дезинфекции и консервирования, хотя некоторые из них связаны с токсичностью и экологическими рисками.
  Галогены , включая хлор, фтор и йод, также обычно используются для дезинфекции. Для дезинфекции воды обычно используются соединения хлора, включая гипохлорит натрия  , хлорамины   и диоксид хлора  . Йод в форме настойки   и йодофор   является эффективным антисептиком.
  Спирты , в том числе этиловый спирт и изопропиловый спирт, являются обычно используемыми антисептиками, которые действуют, денатурируя белки и разрушая мембраны.
  Фенольные смолы  — это стабильные дезинфицирующие средства длительного действия, которые денатурируют белки и разрушают мембраны. Они обычно входят в состав бытовых чистящих средств, жидкостей для полоскания рта и дезинфицирующих средств в больницах, а также используются для консервирования собранного урожая.
 Фенольное соединение  триклозан , обнаруженное в антибактериальном мыле, пластике и текстиле, технически является антибиотиком из-за его специфического механизма действия, подавляющего синтез жирных кислот бактериями.
  Поверхностно-активные вещества , включая мыло и детергенты, снижают поверхностное натяжение воды, создавая эмульсии, которые механически уносят микробы.Мыло — это длинноцепочечные жирные кислоты, а моющие средства — синтетические поверхностно-активные вещества.
  Соединения четвертичного аммония  ( четвертичные ) являются катионными детергентами, разрушающими мембраны. Они используются в бытовых чистящих средствах, дезинфицирующих средствах для кожи, полосканиях для рта и полосканиях для рта.
  Бисбигуаниды  разрушают клеточные мембраны, в результате чего содержимое клеток превращается в гель.  Хлоргексидин  и  алексидин  обычно используются для хирургических скрабов, для мытья рук в клинических условиях и в рецептурных полосканиях для полости рта.
  Алкилирующие агенты  эффективно стерилизуют материалы при низких температурах, но являются канцерогенными и могут также вызывать раздражение тканей.  Глутаральдегид  и о-фталальдегид   используются в качестве дезинфицирующих средств в больницах, но не в качестве антисептиков.  Формальдегид  используется для хранения образцов тканей, как жидкость для бальзамирования, а также при приготовлении вакцин для инактивации инфекционных агентов.  Оксид этилена  — это газовый стерилизатор, который может проникать в термочувствительные упаковочные материалы, но также является взрывоопасным и канцерогенным.
  Пероксигены , включая  перекись водорода ,  перуксусную кислоту ,  бензоилпероксид  и газ озон, являются сильными окислителями, которые производят свободные радикалы в клетках, повреждая их макромолекулы. Они экологически безопасны и являются высокоэффективными дезинфицирующими и антисептическими средствами.
 Углекислый газ под давлением в форме сверхкритической жидкости   легко проникает в упакованные материалы и клетки, образуя угольную кислоту и снижая внутриклеточный pH.Сверхкритический диоксид углерода нереактивен, нетоксичен, негорючий и эффективен при низких температурах для стерилизации медицинских устройств, имплантатов и трансплантированных тканей.
 Химические консерванты добавляются в различные пищевые продукты.  Сорбиновая кислота , бензойная кислота  , пропионовая кислота   и их более растворимые соли ингибируют ферменты или снижают внутриклеточный pH.
  Сульфиты  используются в виноделии и пищевой промышленности для предотвращения потемнения продуктов.
  Нитриты  используются для сохранения мяса и поддержания цвета, но приготовление мяса с консервированным нитритом может производить канцерогенные нитрозамины.
  Низин  и  натамицин  — естественные консерванты, используемые в сырах и мясе. Низин эффективен против грамположительных бактерий, а натамицин — против грибков.
 Множественный выбор 
 Что из перечисленного относится к дезинфицирующему химическому веществу, растворенному в спирте?
 йодофор
 настойка
 фенольный
 пероксид
 Показать ответ
 г.Настойка относится к дезинфицирующему химическому веществу, растворенному в спирте.
 Какой из следующих пероксигенов широко используется в качестве дезинфицирующего средства в домашних условиях, стоит недорого и распадается на воду и газообразный кислород?
 перекись водорода
 перуксусная кислота
 пероксид бензоила
 озон
 Показать ответ
 а. Перекись водорода широко используется в качестве дезинфицирующего средства в домашних условиях, стоит недорого и распадается на воду и газообразный кислород.
 Какие из следующих химических пищевых консервантов используются в винодельческой промышленности, но могут вызывать астматические реакции у некоторых людей?
 нитриты
 сульфиты
 пропионовая кислота
 бензойная кислота
 Показать ответ
 г.Сульфиты используются в винной промышленности, но у некоторых людей могут вызывать астматические реакции.
 Отбеливатель — пример какой группы химикатов используется для дезинфекции?
 тяжелые металлы
 галогены
 кв.
 бисбигуанидов
 Показать ответ
 г. Отбеливатель — это пример галогенов.
 Какое химическое дезинфицирующее средство действует путем метилирования ферментов и нуклеиновых кислот и известно как токсичное и канцерогенное?
 кислота сорбиновая
 триклозан
 формальдегид
 гексаклорофен
 Показать ответ
 г.Формальдегид действует путем метилирования ферментов и нуклеиновых кислот и известен своей токсичностью и канцерогенностью.
 Заполните пропуск 
 Дверные ручки и другие поверхности в клинических условиях часто покрываются ________, ________ или ________ для предотвращения передачи микробов.
Покажи ответ
 Дверные ручки и другие поверхности в клинических условиях часто покрываются медью  , никелем   и цинком   для предотвращения передачи микробов.
 Верно / Неверно 
 Мыло классифицируется как дезинфицирующее средство.