Предстерилизационная очистка и контроль качества: Предстерилизационная очистка, этапы, способы, контроль качества, средства

Предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения. Контроль качества

Предстерилизационную очистку изделий осуществляют после дезинфекции или при совмещении с дезинфекцией в одном процессе (в зависимости от применяемого средства): ручным или механизированным (в соответствии с инструкцией по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию) способами.

Предстерилизационную очистку изделий проводят в централизованных стерилизационных, при отсутствии централизованных стерилизационных этот этап обработки осуществляют в отделениях лечебных организаций.

дыхательных

При проведении предстерилизационной очистки растворами химических средств изделия медицинского назначения погружают в рабочий раствор средства (далее — «раствор») с заполнением каналов и полостей. Разъемные изделия погружают в разобранном виде, инструменты с замковыми частями замачивают раскрытыми, сделав этими инструментами в растворе несколько рабочих движений.

Объем емкости для проведения обработки и объем раствора средства в ней должны быть достаточными для обеспечения полного погружения изделий медицинского назначения в раствор; толщина слоя раствора над изделиями должна быть не менее одного сантиметра.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют pH более 8,5) в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят ежедневно. Контролю подлежат: в стерилизационной — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; при децентрализованной обработке — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц. Результаты контроля регистрируют в журнале.

Предстерилизационная очистка медицинского инструментария, цель, контроль качества ПСО

Предстерилизационная очистка

проводится с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, остатков лекарственных препаратов. Подвергаются изделия многократного применения, подлежащие стерилизации. Для ПСО используют растворы, содержащие перекись водорода и моющие средства (Лотос, астра, прогресс). При наличии у средства наряду с антимикробными свойствами моющих свойств ПСО может быть совмещено с дезинфекцией, что позволяет упростить обработку инструмента. Растворы препаратов для ПСО допускается применять многократно до появления видимых признаков загрязнения, но не более чем в течение времени, указанного в методическом документе по применения конкретного средства.

Этапы ПСО – замачивание в моющем растворе, мойка каждого изделия в том же растворе при помощи ерша, ватно-марлевого тампона, салфетки, ополаскивание питьевой проточной водой, ополаскивание дистиллированной водой. После проведения ПСО изделие высушивают до полного исчезновения влаги при температуре 85 градусов в суховоздушных шкафах.

Контроль качества ПСО

контролю подлежат 1 % от каждого наименования изделия, но не менее 3-х единиц. Оценивают качество ПСО путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови, окислителей, стирального порошка с отбеливающим эффектом, хлорамина, ржавчины, кислот). Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темном месте. Допустимый срок хранения при температуре +4 градуса – 2 месяца, при комнатной температуре не более одного месяца. Азопирам С хранится 6 месяцев. Перед постановкой пробы готовят реактив, смешивая равные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Реактив хранится не более 2-х часов. Пригодность реактива азопирам проверяют след. образом – 2-3 капли реактива наносят на пятно крови, не позже чем через одну минуту должно появиться фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет. Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой или наносят 2-3 капли реактива с помощью пипетки. Качество очистки катетеров или других полых изделий оценивают путем введения раствора внутрь изделия с помощью чистого шприца. Реактив оставляют на одну минуту, после чего сливают на марлевую салфетку. Результаты контроля отражают в журнале формы 366. После проведения ПСО производят упаковку мед.инструментария для стерилизации.

2.1.1. Контроль качества предстерилизационной очистки

Проводится после
завершающего этапа предстерилизационной
очистки – подсушивания инструментов.
Выполняют пробы на наличие остатков
крови и моющих средств на инструментах,
шприцах, иглах и пр.

Для выявления
остатков крови проводят амидопириновую
или азопирамовую пробы, а, если это
невозможно, – бензидиновую или
ортотолидиновую пробы.

Амидопириновая
проба

Смешивают равные
количества 0,5% спиртового раствора
амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3%
раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

На нестерильную
вату наносят вышеказанный реактив.
Через несколько секунд при отсутствии
цветовой реакции на вате, этой ватой
протирают инструменты или поршень
щприца многоразового использования,
цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю
внутри. Затем заливают реактив в цилиндр
шприца, пропускают его через шприц на
другую вату (проверяется цилиндр
шприца).

После этого
закрепляют на шприце иглу, вновь наливают
в цилиндр реактив и пропускают через
шприц и иглу (проверяется игла).

Оценка
результатов амидопириновой пробы

• при наличии
  кровяных загрязнений на вате появляется
  сине-зеленое окрашивание; окрашивание
  может быть и при наличии на шприце, а
  также в игле, лекарственных средств и
  хлорамина;

• при положительных
  пробах повторный контроль инструмента
  проводят до получения трехкратного
  отрицательного результата.

(Из методических
рекомендаций по предстерилизационной
очистке изделий медицинского назначения
№ 28 – 6/13 от 08.06.82 г).

Азопирамовая
проба

Готовят в аптеке
1% или 1,5% раствор солянокислого анилина
в 95% этиловом спирте. Готовый раствор
может храниться в плотно закрытом
флаконе в темноте (в холодильнике) 2
месяца, в комнате при температуре +
18-23 С не более одного
месяца. Умеренное пожелтение реактива,
наступающее в процессе хранения, без
выпадения осадка не снижает его рабочих
качеств. Непосредственно перед
постановкой пробы готовят рабочий
раствор, смешивая равные по объему
количества азопирама и 3% перекиси
водорода. Рабочий раствор должен быть
использован в течение 1-2 часов. При
более длительном хранении может
появиться спонтанное розовое окрашивание
реактива. При температуре +25С.
раствор розовеет быстрее. Поэтому его
наиболее целесообразно использовать
в течение 30-40 минут после приготовления.
Из-за изменения окраски раствора в
условиях высокой температуры нельзя
держать его на ярком свете, вблизи
отопительных приборов, наносить на
горячие инструменты.

Пригодность
рабочего раствора азопирама проверяют
при необходимости путем нанесения 2-3
его капель на кровяное пятно. Если не
позднее чем через 1 мин. появляется
фиолетовое окрашивание, переходящее
в сиреневый цвет – реактив пригоден к
применению. Если окрашивание в течение
1 минуты не появляется – реактивом
пользоваться нельзя.

(Выписка из
инструктивно-методических рекомендаций
по контролю качества предстерилизационной
очистки изделий медицинского назначения
с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от
26.05.86 г.).

Бензидиновая
проба

Не позднее чем
за 2 часа до проведения пробы готовят
реактив. В мезурку помещают несколько
кристаллов бензидина, 2-3 мл 50% уксусной
и кислоты столько же 2% раствора перекиси
водорода.

Ортолидиновая
проба

Состав реактива:
2-3 мл 50% уксусной кислоты, 0,25 г ортолидина
и 2-3 мл 3% перекиси водорода.

Оценка
результатов проведения проб на наличие
остатков крови на изделиях

Контролируемые
изделия должны быть сухими, иметь
комнатную температуру. При постановке
проб на контролируемые изделия наносят
по 1 капле реактива. При наличии внутренних
каналов реактив пропускают через них.
Оценка проб проводится не позднее чем
через 1 минуту. При наличии на изделии
остатков крови во время проведения
амидопириновой пробы появляется
сине-зеленое окрашивание, при азопирамовой
пробе – сначала фиолетовое, затем
розово-сиреневое. При положительной
реакции на наличие остатков крови все
этапы предстерилизационной очистки
необходимо повторить до получения
отрицательного результата.

Определение
остатков моющих средств на изделии
фенолфталеиновой пробой

Готовят 1% спиртовый
раствор фенолфталеина. Наносят на
контролируемое изделие 1-2 капли раствора.
При наличии внутренних каналов у
изделий, пропускают реактив через эти
каналы. Контролируемое изделие должно
быть сухим и иметь комнатную температуру.
Оценка результатов пробы проводится
не позднее чем через 1 минуту. При наличии
остаточного количества моющего средства
появляется розовое окрашивание. В этом
случае изделие промывают под проточной
водой, а затем в дистиллированной воде
до получения отрицательного результата.
При использовании моющего средства
«Биолот» проба с фенолфталеином
не проводится.

(Из методических
рекомендаций по контролю качества
предстерилизационной очистки изделий
медицинского назначения № 28-6/13 от
08.06.82 г).

Общие
требования к оценки качества
предстерилизационной очистки

• качественный
  контроль на остаточное количество
  крови и моющих средств проводится
  только после предстерилизационной
  очистки, проведенной в полном объеме;

• котролируемые
  изделия должны быть сухими и иметь
  комнатную температуру;

• оценка проб
  проводится не позднее 1 минуты после
  нанесения реактива на изделие;

• контролю качества
  предстерилизационной очистки подлежит
  1% каждого вида изделий, обрабатываемых
  одновременно, но не менее 3-5 единиц;

• при выявлении
  положительной пробы на повторную
  обработку отправляется вся партия
  изделий, от которых отбирался контроль,
  до получения отрицательных результатов;

• контроль качества
  предстерилизационной очистки проводят
  в отделении ежедневно, старшей сестрой
  отделения – не реже 1 раза в неделю,
  сотрудниками санитарно-эпидемиологических
  и дезинфекционных станций – не реже
  1 раза в квартал;

• сведения о
  результатах контроля заносят в
  специальный журнал (Из приказа МЗ СССР
  № 408 от 12.07.89 г.).

Предстерилизационная
очистка завершается комплектованием
(упаковкой) медицинских изделий.

Предстерилизационной обработке должны подвергают все изделия медицинского назначения с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных

Предстерилизационной обработке должны подвергают все изделия медицинского назначения с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. Проверку качества предстерилизационной обработки медицинского инструментария проводят с помощью постановки проб на наличие остатков крови и полноту отмывания изделий от щелочных компонентов. Контролю подлежит 1% каждого вида изделий, обработанных за сутки. Для предотвращения коррозии (ингибиция) при использовании моющего раствора, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства «Лотос» применяют ингибитор коррозии — 0,14% олеат натрия. К 1 л моющего раствора добавляют 1,4%-ный олеат натрия. Для предохранения инструментария от коррозии использованные в ходе операции или манипуляции инструменты, загрязненные кровью, можно погружать в 1%-ный раствор бензоата натрия и ингибитор коррозии при комнатной температуре на время не менее 60 минут.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводится постановкой следующих проб:

• фенолфталеиновой — на качество отмывки от синтетических средств «Лотос», «Астра», «Айна». На «Биолот», «Прогресс», «Новость» фенолфталеин не действует;

• азопирамовой или амидопириновой — на качество отмывки от крови и лекарственных препаратов.

Фенолфталеиновая проба — на ватный тампон наносят несколько капель 1%-ного спиртового раствора фенолфталеина и этим тампоном протирают испытуемый инструмент. Появление розового окрашивания указывает на некачественную отмывку от моющих средств.

Азопирамовая проба — содержит 10% амидопирина: 0,10—0,15% солянокислого анилина, 95% этилового спирта. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темном месте в холодильнике два месяца, при комнатной температуре 18—23 °С не более месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Приготовление рабочего раствора: непосредственно перед проверкой качества очистки готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы «азопирама» и 3%-ного раствора перекиси водорода. Приготовленный раствор «азопирама» наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, то реактивом пользоваться нельзя.

Методика постановки реакции. Рабочим раствором обрабатывают исследуемые изделия, протирают тампонами, смоченными реактивом, различные поверхности аппаратуры и оборудования, наносят несколько капель на исследуемый предмет. Иглы, катетеры, шприцы проверяют следующим способом. В шприц наливают рабочий раствор (3—4 капли) и несколько раз продвигают поршнем, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно место соединения шприца с металлом. Реактив в шприце, катетере оставляют на 0,5—1 минуты. После этого реактив вытесняется на вату или белую бумагу. В присутствии следов крови менее чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется вначале фиолетовое окрашивание, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины, фиолетовое — при наличии хлорсодержащих окислителей.

Особенности реакции:

1. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту после обработки исследуемых предметов, не учитывается.

2. Исследуемые предметы должны иметь комнатную температуру. Нельзя подвергать проверке горячие предметы.

3. Держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре запрещается.

4. Рабочий раствор «азопира» должен быть использован в течение 1—2 часов.

5. После проверки, независимо от результатов, следует удалить остатки азопирама с исследуемых предметов, обмыв их водой или протерев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повторить предстерилизационную очистку этих предметов.

1. После проведения дезинфекции инструменты промывают под сильной струей проточной воды в течение 3—5 минут.

2. Затем полностью погружают в моющий раствор при температуре 50 °С на 15 минут. Температуру моющего раствора в процессе мойки не поддерживают. Неизмененный раствор можно нагревать до 6 раз в течение суток, за исключением моющего средства «Биолот». Его применяют однократно, так как при повторном использовании фермент, входящий в состав моющего средства, разрушается в процессе очистки.

3. Мытье каждого изделия в мыльном растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 30 с.

4. Ополаскивание под проточной водой в течение 10 минут при применении моющего средства «Биолот» — в течение 3 минут, моющего средства «Прогресс» — в течение 5 минут.

Амидопириновую пробу проводят смешиванием равных количеств 5% спиртового раствора амидопирина и 5%-ной перекиси водорода, добавляют несколько капель 30% уксусной кислоты. При наличии крови происходит сине-фиолетовое окрашивание. Самоконтроль проводя! ежедневно, главная медсестра — 1 раз в неделю, СЭС — 1 раз в квартал.

Предстерилизационную очистку проводят ручным или механизированным способом (с помощью специального оборудования). Струйный метод:

5. Ополаскивание дистиллированной водой в бачке в течение 30 с.

6. Сушка горячим воздухом при температуре 85 °С до полного исчезновения влаги в сушильном шкафу.

7. Затем ставят пробы. При положительной пробе предстерилизационную очистку проводят заново. Если инструмент, загрязненный кровью, может быть промыт под проточной водой тотчас после его использования при проведении той или иной манипуляции, то его не погружают в раствор ингибитора коррозии — бензоат натрия. Если такой возможности нет, то перед предстерилизационной очисткой инструменты, загрязненные кровью, погружают в 1%-ный раствор бензоата натрия сразу же после их использования на 60 минут, температура раствора 22—27 °С. В случае необходимости инструменты можно оставить погруженными в раствор бензоата натрия до 7 ч.

Приготовление моющего раствора.

Моющее средство 5 г, пергидроль 27,5% — 17 г, 33% — 16 г. Можно использовать перекись водорода 6% 85 г, 3% — 170 г, вода до 1 л (978 г).

Обновлено: 2019-07-09 23:49:23

Оценка качества предстерилизационной очистки — МегаЛекции

Самоконтроль качества предстерилизационной очистки в отделениях лечебно-профилактических учреждений проводится ежедневно.

Организуется и контролируется старшей медсестрой не реже 1 раза в неделю.

В ЦСО (центральное стерилизационное отделение) — ежедневно!
Контролю подвергается 1% от одновременно отработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки контролируют, определяя:
— кровь — с помощью азопирамивой пробы;
— масляные лекарственные загрязнения — с помощью пробы с суданом — 3;
— остатки моющих средств — с помощью фенолфталеиновой пробы.

1. Азопирамовая проба

На 1 л раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1 — 1,5 г солянокислого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спиртом до объема 1,0 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) 2 месяца; в темноте при комнатной температуре (+18-23°С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 мин. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т.д.).

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют путем нанесения 2-3 капель на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 мин, появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к использованию; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

2. Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода.

Реактив готовят перед использованием.

5% спиртовый раствор амидопирина готовят на 95% этиловом спирте. Данный раствор может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

3. Фенолфталеиновая проба

Готовят 1% раствор спиртовый фенолфталеина. Спиртовый раствор фенолфталеина может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

Методика постановки проб

Контролируемое изделие протирают тампоном, смоченным реактивом, или 2-3 капли реактива пипеткой наносят на изделие.

В шприц вносят 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив в шприце оставляют на 0,5-1,0 мин, после чего вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц, и последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3-4 капли.

При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий реактив вводят внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5–1,0 мин, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

При постановке азопирамовой пробы в присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через 1 минуту появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива. Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и хлорсодержащих окислителей наблюдается буроватое окрашивание реактива; в остальных случаях окрашивание розово-сиреневое.

При постановке амидопириновой пробы о наличии на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или не позже, чем через 1 минуту после контакта реактива с кровью, появление сине-фиолетового окрашивания реактива различной интенсивности.

При постановке проб (азопирамовой, амидопириновой) окрашивание реактивов, наступившее позже, чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

При постановке фенолфталеиновой пробы о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельству появление розового окрашивания реактива.

4. Проба с суданом III

Пробу с суданом III используют для определения жировых загрязнений на шприцах и других изделиях, связанных с этими загрязнениями.

В 70 мл нагретого до 60°С (на водяной бане) 95% этилового спирта растворяют по 0,2 г измельченной краски судана III и метиленового синего. Затем добавляют 10 мл 20-25% раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды.

Данный раствор может храниться в плотно закрытом флаконе (в холодильнике) 6 месяцев.

При проверке качество очистки шприцев от жировых загрязнений, вовнутрь его вносят 3-5 мл реактива, смачивая им всю внутреннюю поверхность.

Через 10 с краску смывают обильной струей воды. Желтые пятна и потеки указывают на наличие жировых загрязнений.

При положительной пробе на кровь, моющее средство всю группу контролируемых изделий, от которой отбирался контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Этап

Стерилизация

Все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также изделия, которые соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения, после предстерилизационной очистки подвергаются стерилизации. Стерилизация обеспечивает гибель в стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.

Стерилизацию проводят различными методами:

а) паровым;

б) воздушным;

в) химическим;

г) в промышленных условиях используют радиа-

ционный метод (гамма-излучения).

Выбор того или иного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемого изделия.

Паровой метод применяется в 2 режимах: 1 — температура 132°С при давлении 0,2 МПа — 20 мин; 2 — температура 120°С при давлении 0,11 МПа.

Паровым методом стерилизуют хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стеклянную посуду, шприцы с надписью 200°С, белье, перевязочный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных полимерных материалов.

Хирургическое белье, перевязочный материал укладывают в стерилизационные коробки параллельно движению пара.

Резиновые перчатки перед стерилизацией внутри и снаружи пересыпают тальком для предохранения их от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток завертывают отдельно в двойную бязь, пергамент или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или в другую упаковку. В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки стерилизуют при температуре пара 120°С.

Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках (биксах) без фильтров или с фильтром или в двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, бумаге мешочной непропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаге упаковочной, высокопрочной, бумаге двухслойной крепированной.

Срок хранения изделий, простерилизованных в коробках с фильтром, равен 20 суткам, в любой другой упаковке — 3 суткам, если не нарушена целостность упаковки. При положительных сторонах паровой метод имеет и существенные недостатки: вызывает коррозию инструментов из коррозионно-стойких металлов; превращаясь в конденсат, увлажняет стерилизуемые изделия, что ухудшает условия хранения, увеличивая опасность повторного обсеменения изделий микроорганизмами.

Воздушный метод стерилизации.

Стерилизующим агентом воздушного метода стерилизации является сухой горячий воздух. Этот метод лишен ряда недостатков парового метода. Однако сухой воздух прогревает стерилизуемые изделия медленно и неравномерно, необходимо механически побуж-дать его движение. По эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высокие температуры. Это сокращает номенклатуру изделий, которые могут быть простерилизованы данным методом: исключаются изделия из резин, полимеров, ограничивается также перечень упаковочных материалов — не следует использовать пергамент, ткани.

Стерилизацию воздушным методом в воздушных стерилизаторах при температуре 160 и 180°С, время экспозиционной выдержки равно 150 и 60 мин соответственно.

Воздушным методом стерилизуют изделия из металлов, стекла, силиконовой резины: хирургические и др. инструменты, инъекционные иглы, шприцы с пометкой “200°С”; стеклянные пипетки, капилляры, меланжеры; трубки и др. изделия из силиконовой резины. Иглы для акупунктуры, гортанные зеркала, зубные боры следует стерилизовать при температуре 160°С. Для уменьшения коррозийного воздействия стерилизации подвергают сухие изделия.

Для упаковки изделий, стерилизуемых воздушным методом, применяют те же оберточные бумаги, за исключением пергамента и мешочной непропитанной.

Исключается мягкая бязевая упаковка. Срок хранения упакованных изделий 3 суток без нарушения целостности упаковки. Можно также стерилизовать предметы без упаковки в открытых, обязательно решетчатых емкостях. Нельзя в чашках Петри, крышках стерилизаторов. После стерилизации они хранятся на стерильно накрытых столиках в асептических условиях не более 6 часов. Затем они подлежат повторной стерилизации.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 (+2–10)°С до исчезновения видимой влаги. Высушивание металлических изделий проводят немедленно после извлечения из влажной среды.

Эффективность воздушной стерилизации зависит от равномерного распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия, подлежащие стерилизации, загружаются в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому предмету. Стерилизуемые изделия необходимо укладывать горизонтально поперек пазов кассет, полок, равномерно их распределяя. Недопустима загрузка стерилизатора навалом. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетку вентиляции. Большие предметы следует класть на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха. Шприцы стерилизуют в разобранном виде.

Во время стерилизации воздушным методом металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга. Должен быть налажен учет сроков хранения стерильных изделий. Для этого должны фиксироваться дата и время стерилизации (должны быть бирочки на биксах, столах, журналы).

В последнее время, в связи с развитием современных медицинских технологий и широким внедрением в практику здравоохранения высокоточных инструментов и сложного дорогостоящего оборудования, возникла насущная необходимость в щадящих низкотемпературных методах стерилизации.

Низкотемпературные методы стерилизации.

В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный.

1. Газовая стерилизация при помощи этилен оксида.

Наиболее широко в мире применяется стерилизация с помощью этилен оксида. Для сравнения, в 1999г. в США 52,2% всех одноразовых медицинских изделий было простерилизовано с помощью этилен-оксида, 45,5% — гамма-радиацией, 1,8% — паровым методом и только 0,5% — другими методами стерилизации.

2. Газовая стерилизация при помощи формальдегида.

Газовая стерилизация на основе формальдегида нашла широкое применение в качестве дезинфекции высокого уровня для камерной дезинфекции.

Кроме того, в связи с низкой проникающей способностью формальдегида, данный метод требует применения рабочей температуры в пределах 65 – 80°С, что ставит под сомнение позиционирование данного метода в качестве действительно низкотемпературного. Для формальдегида имеются существенные ограничения в отношении стерилизации полых многоканальных изделий, изделий с отверстиями и каналами. Для формальдегида не разработано нейтрализаторов отработанных газов и полного мониторинга процесса стерилизации. Капитальные затраты на оснащение формальдегидным стерилизатором в два раза превосходят затраты на этилен оксидный стерилизатор.

3. Плазменный метод, действующим началом которого являются пары перекиси водорода, в настоящее время находится в стадии становления и, возможно, со временем получит определенное распространение в учреждениях здравоохранения. Отсутствуют общепризнанные международные стандарты для данного метода. Ограничения в отношении стерилизации материалов, содержащих целлюлозу и каучук, а также высокая стоимость оборудования и расходных материалов сужают спектр применения данного метода стерилизации. Кроме того, ограничения в отношении стерилизации полых многоканальных изделий требуют применения дополнительных расходных приспособлений, еще более увеличивающих стоимость цикла стерилизации. В результате, использование плазменного метода наиболее приемлемо для стерилизации уникальных термолабильных изделий, имеющихся в единичном экземпляре и используемых неоднократно в течение рабочего дня.

Организация стерилизации

К сегодняшнему дню в России сложилось несколько форм организации стерилизации: децентрализованная, централизованная (осуществляемая в ЦСО) и смешанная.

Децентрализованная стерилизация имеет ряд существенных недостатков, оказывающих влияние на ее эффективность. Предстерилизационная обработка изделий проводится вручную в приспособленных помещениях и необорудованных для этой цели рабочих местах. При этом качество предстерилизационной очистки, разумеется, оказывается низким. Стерилизация изделий осуществляется в различных корпусах (отделениях) больницы и выполняется, как правило, необученным персоналом. Часто не соблюдаются технология проведения стерилизации, правила упаковки и загрузки изделий. Нередки случаи использования неисправного оборудования, так как контроль за эффективностью его работы в условиях децентрализованной стерилизации затруднен.

Централизованная стерилизация лишена этих недостатков. Данными по бактериологическому контролю эффективности стерилизации доказано, что число случаев неудовлетворительной стерилизации в больницах, где организованы ЦСО, примерно в 3 раза меньше, чем в ЛПУ без централизованной стерилизационной. Отмечается снижение в несколько раз количества послеоперационных гнойных осложнений после организации ЦСО. Кроме того, ЦСО улучшает и облегчает работу врачей и среднего медицинского персонала других отделений.

Современное центральное стерилизационное отделение должно иметь 3 зоны: «грязную», «чистую» и «стерильную».

«Грязная» зона — это помещения, в которых находится использованный инструментарий и материалы; представлены комнатой для приема материала в контейнерах из отделений и двумя моечными помещениями — одно для непосредственно инструментов и материалов, а другое — для транспортных тележек, на которых осуществляется перевозка контейнеров по лечебному учреждению. «Грязная» зона сообщается с «чистой» только через моечные автоматы проходного типа и посредством закрывающегося передаточного окна (для передачи инструментов, вымытых, продезинфицированных и высушенных вручную). В состав «грязной» зоны целесообразно включить гардероб для верхней одежды и санузлы общего пользования.

«Чистая» зона — это те помещения, что расположены непосредственно за мойками. Там находятся инструменты и материалы уже чистые, но еще не стерильные. К этим помещениям относятся комнаты упаковки и подготовки к стерилизации инструментов, подготовки и упаковки текстиля, изготовления перевязочных материалов, различные складские помещения и комнаты для персонала, одетого в спецодежду (халаты, головные уборы, специальная обувь). Вход в «чистую» зону осуществляется через санпропускник.

«Стерильная» зона — это, собственно, склад простерилизованного материала. Он отделен от «чистой» зоны проходными стерилизаторами. Это помещение особой чистоты, куда вход разрешен только через санпропускник, строго ограниченному персоналу, в специальной одежде, к примеру, обязательно в масках.

Предусматриваются также служебные помещения, изолированные от функциональных. Это коридоры, канцелярия, комната персонала, не одетого в спецодежду, комната подготовки воды и др.

Рекомендуемые страницы:

Воспользуйтесь поиском по сайту:

Контроль качества предстерилизационной очистки медицинских изделий

.

PPT — Очистка, упаковка и стерилизация инструментов Презентация PowerPoint

.

Инфекционный контроль и стерилизация

Наряду с надлежащей стерилизацией инструментов и материалов, мониторинг стерилизатора является неотъемлемой частью любой программы инфекционного контроля в офисе.

Неудача стерилизации может быть вызвана множеством факторов — от легко исправляемых процедурных ошибок, таких как перегрузка, до механических проблем, которые могут вывести стерилизатор из строя до тех пор, пока не будет произведен ремонт. Поскольку это множество факторов может повлиять на успешную стерилизацию, ADA и CDC поощряют стоматологов регулярно оценивать эффективность своих офисных стерилизаторов. ^{2, 8, 9} Кроме того, могут существовать государственные или местные нормативные акты, касающиеся периодичности и вопросов ведения записей, связанных с мониторингом стерилизатора. За нормативной информацией обратитесь в стоматологическую комиссию штата.

Стерилизацию лучше всего контролировать с помощью комбинации механических, химических и биологических индикаторов. ⁸ CDC предоставил следующие рекомендации: ^{2, 3, 9}

Механические индикаторы

• Запишите время цикла, температуру и давление, отображаемые на манометрах стерилизатора для каждой загрузки инструментов.

Химические индикаторы

• Используйте химические индикаторы, такие как индикаторные ленты, с каждой загрузкой прибора. Эти индикаторы меняют цвет после воздействия надлежащей стерилизационной среды.
• Если индикатор не изменил цвет, это означает, что он не подвергался воздействию надлежащей среды стерилизации (например, надлежащего давления или температуры). В таких случаях загруженный инструмент следует повторно стерилизовать.
• Индикаторные ленты предназначены для конкретных стерилизаторов (т.е.(например, ленты для паровых стерилизаторов нельзя использовать для испытаний химических паровых стерилизаторов).
• Химические индикаторы не должны заменять биологические индикаторы, поскольку только биологический индикатор, состоящий из бактериальных эндоспор, может измерять эффективность уничтожения микробов в процессе стерилизации.

Биологические индикаторы

• CDC рекомендует контролировать стерилизаторы по крайней мере раз в неделю с помощью биологических индикаторов. ^{2, 3} Проверьте, есть ли у вашей государственной стоматологической комиссии другие требования.
• Биологический мониторинг можно проводить двумя способами:
  1. Инкубатор в офисе и полоски для мониторинга спор (за списком продукции обратитесь к поставщику стоматологической продукции). Этот метод обычно дает результат через 24-48 часов.
  2. Почтовые программы мониторинга спор. Обычно этот процесс занимает неделю. Хотя получение результатов с помощью службы занимает больше времени, сторонние программы мониторинга могут обеспечить более высокую точность, чем внутренний мониторинг.

• Положительный результат теста на споры указывает на то, что стерилизация не удалась.Согласно рекомендациям CDC: ^{1, 3}
  1. Выведите стерилизатор из эксплуатации.
  2. Проверьте процесс стерилизации в офисе, чтобы исключить ошибку оператора как причину сбоя.
  3. Устраните все выявленные процедурные проблемы и повторно протестируйте стерилизатор с помощью биологических, механических и химических индикаторов.

• Если повторный тест на биологический индикатор отрицательный, а результаты других тестов находятся в пределах нормы, стерилизатор можно вернуть в эксплуатацию.
• Вести журнал результатов тестирования спор. Проконсультируйтесь с вашим стоматологическим советом штата, чтобы определить, как долго вам нужно хранить записи тестов на споры.

Что делать, если результаты подтверждают отказ стерилизации

Если тест на биологический индикатор положительный или результаты механического или химического теста указывают на сбой, стерилизатор не следует использовать до тех пор, пока причина сбоя не будет выявлена ​​и устранена.

• Если процедурные ошибки не обнаружены или отказы сохраняются после исправления процедурных ошибок, стерилизатор не должен использоваться до тех пор, пока причина отказа не будет выявлена ​​и устранена.

Перед тем, как стерилизатор можно будет вернуть в эксплуатацию, биологический индикатор должен выдать отрицательные результаты тестов, проведенных в течение трех последовательных циклов стерилизации в пустой камере, чтобы гарантировать, что проблема была устранена.

• По возможности повторно обработайте все инструменты, которые были стерилизованы после последнего отрицательного теста на споры.
• Запишите положительные результаты теста и все действия, предпринятые для обеспечения надлежащего функционирования стерилизатора, в журнал мониторинга.

.

Экологическая очистка: эффективные стратегии очистки

.