Псо стерилизация дезинфекция: Отделение последипломного образования КОГПОБУ «Кировский медицинский колледж»

Содержание

ДЕЗИНФЕКЦИЯ ПСО И СТЕРИЛИЗАЦИЯ МАНИКЮРНОГО ИНСТРУМЕНТА НА ПРАКТИКЕ

Здравствуйте, друзья! Сегодня поговорим о дезинфекции и стерилизации инструментов.

Приглашенный гость  — Инна, ведущий специалист компании Чистовье.

 

Добрый день, уважаемые коллеги! Меня зовут Инна, я специалист компании Чистовье. Сегодня расскажу как производится обработка инструментов в маникюрных и педикюрных кабинетах.

 

 

 

 

 

 

 

Обработка проводится в 3 этапа. 

 

1. Дезинфекция — по противовирусному режиму
2. Предстерилизационная очистка
3. Стерилизация

 

 

 

 

 

 

Одеваем перчатки. Разводим дезсредство. Лучше всего, если ваше средство обладает дезинфицирующими и моющими свойствами. 

 

Чем меньше концентрация воды в растворе, тем выше шансы, что ваши инструменты могут начать ржаветь из-за длительного контакта с водой (не из-за дезсредства!).

 

 

 

 

 

 

Баночки для стерилизации должны быть специальными. На емкости необходимо заполнить всю информацию (см.фото). Затем ответственное лицо заполянет журнал.

 

 

 

 

 

 

При разведении рабочего раствора помните, что вода должна быть питьевой и комнатой температуры (не ниже 18*С). 

 

Как проконтролировать правильность разведения рабочего раствора? Нам помогут индикаторные полоски и шкала. Полоску опускаем в раствор и ждем 15сек. Цвет получился темно-зеленый, что соответствует шкале. Правильно развели раствор.

 

 

 

 

 

 

Заливаем рабочий раствор в ванночку. Кладем инструмент. Ждем необходимое время.

 

 

 

 

 

Очищаем от остатков крови, кожи, косметических средств. Лучше это делать щеточкой. Выкладываем инструмент в чистую емкость и промываем проточной водой в течении трех минут. Просушиваем, положив на салфетку. 

 

 

 

 

 

 

Проводим азопирамовую пробу, чтобы убедиться на сколько качественно мы провели предстерилизационную очистку. В этом нам поможет Азопирам-комплект, который актуален для предприятий индустрии красоты, потому что он не требует разведения спиртом, который запрещен предприятиям бытового значения. В нем находится инструкция и два пузырька. 

 

 

 

 

 

 

 

Только Азопирама для проведения пробы не достаточно. Нам понадобится 3%-ая перекись водорода.

 

На салфетку, в одинаковых пропорциях капаем перекись водорода и раствор азопирама и протираем режущие поверхности.

 

 

 

 

 

 

 

Если у нас на салфетке, после проведения азопирамовой пробы, через 1 минуту появится пятно бурого цвета — значит предстерилизационную очистку провели не качественно.

 

Все результаты заносятся в журнал. 

 

 

 

 

Складываем в лоток все инструменты и в стерилизатор. Только в  течении часа они будут пригодны для работы.

 

 

Чтобы продлить «жизнь» простерилизованного инструмента удобно использовать крафт пакеты.

 

Благодаря индикаторам мы можем проверить качество проведенной процедуры. В зависимости от производителя они как вкладываются внутрь пакеты, так и приклеиваются снаружи. Бывают и универсальные.

 

 

 

 

Помните, что каждый клиент верит вам и надеется, что инструменты, которые вы используете, не навредят его здоровью.

 

 

 

 

Вам пригодится:

 

 

 

Компания Чистовье  https://chistovie.ru/ инстаграм @chistovie

 

Посмотрите видео по Санитарной безопасности http://vip.grandnail.com/san-bezopasnost

 

 

 

 

 

 

 

 

Читайте также:

 

 

» УБОРКА КАБИНЕТА ПО САНПИН

» ОБОРУДОВАНИЕ КАБИНЕТА ПЕДИКЮРА

» КАК ЧИТАТЬ СОСТАВЫ КОСМЕТИКИ ДЛЯ МАНИКЮРА И ПЕДИКЮРА

» ОБРАБОТКА МАНИКЮРНОГО ИНСТРУМЕНТА ПО САНПИН

 

 

 

 

Оцените статью и спрашивайте, если остались вопросы

 

 

 

Дезинфекция и ПСО инструмента — Дезинфицирующие средства и профессиональные моющие средства

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Для ежедневной очистки и ухода за стоматологическими отсасывающими системами и плевательницами.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Для дополнительной еженедельной специальной очистки отсасывающих систем, плевательниц и отводящих систем.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Обладает моющими свойствами. Концентрация от 0,1%.
Многократно в течение 28 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Обладает моющими свойствами.
Многократно в течение 7 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Дезинфицирующее средство с широким спектром действия. Обладает отличными моющими свойствами.
Концентрация от 0,025%.
Многократно в течение 31 суток. Коррозионно-пассивны.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция с моющим эффектом инструментов, поверхностей, оборудования. Концентрация рабочего раствора от 0,5% Многократно в течение 28 суток.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Готовый раствор на основе перекиси водорода для стерилизации медицинских инструментов.
Время экспозиции 15 мин.
Многократно в течение 31 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Хлорсодерщащие таблетки массой 3.4 гр.
Дезинфекция оборудования, инвентаря, тары и поверхностей

Продукт недоступен.

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Отличные моющие свойства. Возможность добавлять дополнительные моющие средства. Концентрация от 0,2%.
Многократно в течение 31 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Комбинированный препарат без альдегида для дезинфекции и очистки, а также дезинфекции, совмещенной с предстерилизационной очисткой инструментов всех видов, кроме гибких эндоскопов. Без альдегида.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Дезинфицирующее средство на основе диальдегида янтарной кислоты для дезинфекции, дезинфекции высокого уровня и стерилизации жестких и гибких эндоскопов, и ультразвуковых зондов.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Готовый раствор. Дезинфекция совмещенная с ПСО стоматологических инструментов, в том числе вращающихся.

В наличии

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Совмещает дезинфекцию и предстерилизационную очистку (30 дней)

В наличии

Доступна оптовая скидка

660 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток
Средство обладает моющим и дезодорирующим эффектом, полностью нейтрализует неприятные запахи(в т.ч. запах мочи, гнилостные запахи, запах плесени, посторонние запахи в помещениях с лежачими больным)

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Миродез универ 1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Совмещает дезинфекцию и предстерилизационную очистку (41 день)

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Готовый к применению раствор для дезинфекции и предстерилизационной очистки боров и вращающихся инструментов в стоматологии с ультразвуком и без.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Мультиферментное моющее средство для автоматизированных систем и ручной очистки.

Продукт недоступен.

5050 руб

Добавить

Сайдекс Опа 3,8 л.

Дезинфекция изделий медицинского назначения из различных материалов (включая жесткие и гибкие эндоскопы, инструменты к ним, металлические инструменты)

Продукт недоступен.

5050 руб

Добавить

Экобриз 1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Энзимодез1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, Многократно в течение 3 дней

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Дезинфекция и стерилизация ИМН

Дезинфекция и стерилизация ИМН

Вопрос №1

Стерилизация — это метод уничтожения

A) всех форм микроорганизмов

B) только споровых форм микроорганизмов

C) только непатогенных микроорганизмов

D) только патогенных микроорганизмов

Вопрос №2

Дезинфекцию, совмещенную с ПСО изделий медицинского назначения, можно проводить 

A) химическим методом

B) механическим методом

C) биологическим методом

D) физическим методом

Вопрос №3

Изделия из резины стерилизуют в автоклаве в режиме:

A) 2,5 атм — 1320С — 20 мин

B) 2 атм — 1320С — 20 мин

C) 1,1 атм — 1200С — 45 мин

D) 0,5 атм — 1800С — 60 мин

Вопрос №4

На стерильном столе стерильность изделий сохраняется:

A) 6 часов

B) 12 часов

C) 24 часов

D) 36 часов

E) 72 часа

Вопрос №5

Дезинфекция — это метод уничтожения:

A) всех форм микроорганизмов

B) только патогенных микроорганизмов 

C) только споровых форм микроорганизмов

D) патогенных и условно-патогенных микроорганизмов

Вопрос №6

Для стерилизации ИМН химическим методом применяют препараты из групп:

A) ПАВ

B) спирты

C) альдегиды

Вопрос №7

Для контроля качества ПСО берут:

A) 1% изделий, но не менее 3 штук

B) 5 изделий

C) все изделия

D) все ответы верны

Вопрос №8

Режим стерилизации изделий из стекла в сухожаровом шкафу:

A) 1600С — 60 мин

B) 1600С — 120 мин

C) 1800С — 60 мин

D) 1800С — 30 мин

E) 1800С — 120 мин

Вопрос №9

Стерилизации подлежат медицинские изделия, соприкасающиеся:

A) с кровью

B) с раневой поверхностью

C) с продуктами питания

D) с воздухом

E) все ответы верны

Вопрос №10

Режимы стерилизации воздушным способом:

A) 1200С — 30 мин

B) 1800С — 60 мин

C) 1800С — 45 мин

D) 2000С — 30 мин

E) все ответы верны

F) нет правильного ответа

Вопрос №11

Контроль на наличие остатков жира, масленых растворов:

A) амидопириновая проба

B) судановая проба

C) фенолфталеиновая проба

D) все ответы верны

E) нет правильного ответа

Вопрос №12

Качественная реакция на остаточное количество моющего средства:

A) все  ответы верны

B) фенолфталеиновая проба

C) судановая проба

D) амидопириновая проба

Вопрос №13

Дезинфекции подлежат медицинские изделия, соприкасающиеся:

A) с воздухом

B) с кожей и слизистыми оболочками

C) с продуктами питания

D) с выделениями пациента

E) все ответы верны

Вопрос №14

Глассперленовый способ предназначен для стерилизации изделий

A) из металла

B) из резины

C) из хлопка

D) из стекла

E) нет правильного ответа

Вопрос №15

Преимущества химического способа стерилизации:

A) щадящий температурный режим

B) возможность стерилизовать оптику, полимерных материалов

C) все ответы верны

D) высокий температурный режим

Вопрос №16

Источник информации для работы с дезинфицирующим средством:

A) приказ Министерства Здравоохранения

B) приказ МЗСР РФ

C) инструкция по применению дезинфицирующего средства

D) методические указания по применению дезинфицирующего средства

E) все ответы верны

Вопрос №17

При химическом контроле качества стерилизации в автоклаве используют:

A) индикатор ИС 180 — 60

B) индикатор ИС 160 — 120

C) индикатор ИС 132 — 20

D) индикатор ИС 120 — 45

E) индикатор ИС 200 — 60

F) нет правильного ответа

Вопрос №18

На качество паровой стерилизации влияют факторы:

A) все ответы верны

B) правильность загрузки камеры для стерилизации

C) правильная загрузка бикса

D) исправная дезкамера

E) исправность автоклава

F) исправный сухожаровой шкаф

Вопрос №19

Выбрать режимы дезинфекции для физического метода:

A) в сухожаровом шкафу 1600С  — 150 мин

B) в автоклаве 0,5 атм. — 1100​С  — 20 мин

C) в сухожаровом шкафу 1200​С  — 45 мин

D) в автоклаве 0,5 атм. — 1200​С  — 30 мин

E) в сухожаровом шкафу 1800​С  — 120 мин

F) кипячение в дистиллированной воде 30 мин

G) нет верного ответа

H) все ответы верны

Вопрос №20

Индикаторы, используемые для контроля качества химической стерилизации в сухожаровом шкафу:

A) все ответы верны

B) ИС 180 — 60

C) ИС 160 — 150

D) ИС 132 -20

E) ИС 120 — 45

F) нет верного ответа

Вопрос №21

В сухожаровом шкафу стерилизация проводится:

A) Все ответы верны

B) в крафт-пакетах

C) в закрытых металлических футлярах

D) открытым способом

E) на решетке открытым способом

Вопрос №22

Последовательность этапов обработки ИМН:

A) ПСО — дезинфекция — стерилизация

B) ПСО — стерилизация  — дезинфекция

C) дезинфекция — ПСО — стерилизация

D) стерилизация — ПСО — дезинфекция

E) нет верного ответа

Вопрос №23

Химические индикаторы серии «СТЕРИКОНТ» используют для контроля качества:

A) все ответы верны

B) стерилизация внутри автоклава

C) стерилизация внутри упаковок

D) дезинфекции

Вопрос №24

В автоклаве стерилизация полимерных материалов и резины проводять при:

A) нет верного ответа

B) 0,5 атм. — 1000С — 180 мин

C) 0,5 атм. — 1300​С — 45 мин

D) 1,1 атм. — 1200​С — 45 мин

E) 2 атм. — 1320​С — 20 мин

F) 2,5 атм. — 1450​С — 5 мин

Вопрос №25

Для стерилизации, совмещенной с ПСО изделий медицинского назначения, 

A) галоиды 

B) спирты

C) поверхностно-активные вещества

D) все ответы верны

E) нет верного ответа

Вопрос №26

Химические индикаторы серии «СТЕРИТЕСТ» закладывают:

A) на полки сухожарового шкафа

B) внутрь стерилизуемой упаковки

C) в автоклаве в контрольные точки

D) все ответы верны

Вопрос №27

После вскрытия бикса срок сохранности стерильности: 

A) 6 часов при соблюдении асептических условий работы

B) 72 часа при соблюдении асептических условий работы

C) 10 суток при соблюдении асептических условий работы

D) нет верного ответа

E) все ответы верны

Вопрос №28

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют нанесением 3 капель раствора

A) на металлический предмет

B) на каплю физраствора

C) на стерильный инструмент

D) на каплю крови

E) все ответы верны

Вопрос №29

В закрытом биксе с фильтром ватные шарики стерильны

A) 3 суток

B) 7 суток

C) 10 суток

D) 14 суток

E) 20 суток

F) все ответы верны

G) нет верного ответа

Вопрос №30

Дезиконты применяются для контроля качества

A) дезинфекции

B) ПСО

C) стерилизации

D) дезинфицирующего средства

E) все ответы верны

Вопрос №31

Качественная реакция на скрытую кровь

A) азопирамовая проба

B) фенолфталеиновая проба

C) судановая проба 

D) йодокрахмальная проба

Вопрос №32

Стериконты применяются для контроля качества

A) стерилизации

B) ПСО

C) дезинфекции

D) все ответы верны

Вопрос №33

В сухожаровом шкафу время начала стерилизации отсчитывают

A) с момента включения сухожарового шкафа

B) с момента подъема температуры до 1000С

C) с момента подъема температуры до 1500​С

D) с момента подъема температуры до 1800​С

E) все ответы верны

F) нет верного ответа

Правильные ответы, решения к тесту:

Вопрос №1

Правильный ответ — A

Вопрос №2

Правильный ответ — A, D

Вопрос №3

Правильный ответ — C

Вопрос №4

Правильный ответ — A

Вопрос №5

Правильный ответ — D

Вопрос №6

Правильный ответ — C

Вопрос №7

Правильный ответ — A

Вопрос №8

Правильный ответ — C

Вопрос №9

Правильный ответ — A, B

Вопрос №10

Правильный ответ — B, D

Вопрос №11

Правильный ответ — B

Вопрос №12

Правильный ответ — B

Вопрос №13

Правильный ответ — B, D

Вопрос №14

Правильный ответ — A

Вопрос №15

Правильный ответ — A, B

Вопрос №16

Правильный ответ — D

Вопрос №17

Правильный ответ — C, D

Вопрос №18

Правильный ответ — B, C, E

Вопрос №19

Правильный ответ — B, C, F

Вопрос №20

Правильный ответ — B, C

Вопрос №21

Правильный ответ — B, E

Вопрос №22

Правильный ответ — C

Вопрос №23

Правильный ответ — B

Вопрос №24

Правильный ответ — D

Вопрос №25

Правильный ответ — C

Вопрос №26

Правильный ответ — B

Вопрос №27

Правильный ответ — A

Вопрос №28

Правильный ответ — D

Вопрос №29

Правильный ответ — E

Вопрос №30

Правильный ответ — A

Вопрос №31

Правильный ответ — A

Вопрос №32

Правильный ответ — A

Вопрос №33

Правильный ответ — D

Инструкция «Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинского назначения»

1. Общие положения

1.1.
Дезинфекция, предстерилизационная
очистка и стерилизация изделий
медицинского назначения (далее изделия)
производятся с целью профилактики
внутрибольничных инфекций у пациентов
и персонала лечебно-профилактических
учреждений (ЛПУ).

1.2.
Дезинфекцию изделий (на поверхностях,
а также в их каналах и полостях) проводят
с целью уничтожения патогенных и
условно-патогенных микроорганизмов:
вирусов (в том числе возбудителей
парентеральных вирусных гепатитов,
ВИЧ-инфекции), вегетативных бактерий
(включая микобактерии туберкулеза),
грибов (включая грибы рода Кандида).

Дезинфекции
подлежат все изделия после применения
их у пациентов. После дезинфекции изделия
промывают водопроводной водой, высушивают
и применяют по назначению или (при
наличии показаний) подвергают
предстерилизационной очистке и
стерилизации.

1.3.
Стерилизацию изделий проводят с целью
уничтожения микроорганизмов всех видов,
в том числе споровых форм. Стерилизации
подлежат все изделия, соприкасающиеся
с раневой поверхностью, контактирующие
с кровью в организме пациента или
вводимой в него, инъекционными препаратами,
а также изделия, которые в процессе
эксплуатации контактируют со слизистой
оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

1.4.
Изделия многократного применения,
подлежащие стерилизации, перед
стерилизацией подвергаются
предстерилизационной очистке (ПСО).
Предстерилизационную очистку проводят
с целью удаления с изделий белковых,
жировых и механических загрязнений, а
также остатков лекарственных препаратов.

1.5.
В качестве средств дезинфекции,
предстерилизационной очистки и
стерилизации в Республике Беларусь
используются только разрешенные в
установленном порядке физические и
химические средства.

1.6.
При выборе средств следует учитывать
рекомендации изготовителей изделий,
касающиеся воздействия конкретных
средств на материалы этих изделий (из
числа разрешенных в республике для
данной цели).

При
проведении дезинфекции, предстерилизационной
очистки и стерилизации допускается
использование оборудования (установки,
моечные машины, стерилизаторы и др.),
разрешенного в установленном порядке
к промышленному выпуску и применению
(в случае импортного оборудования —
разрешенного к применению) в Республике
Беларусь.

1.7.
Емкости с растворами дезинфицирующих,
моющих и стерилизующих средств должны
быть изготовлены из коррозионностойких
материалов, снабжены перфорированными
поддонами и плотно закрывающимися
крышками, иметь четкие надписи с указанием
названия средства, его концентрации,
даты приготовления (для готовых к
применению средств, разрешенных для
многократного использования, указывают
дату начала использования средства).

1.8.
Рекомендации по дезинфекции,
предстерилизационной очистке и
стерилизации сложных по конструкции
изделии (эндоскопы, медицинские
инструменты к гибким эндоскопам и др.),
а также дополнительные сведения,
касающиеся различных аспектов указанных
видов обработки изделий, более подробно
изложены в официальных инструктивно-методических
документах.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ДЕЗИНФЕКЦИИ И СТЕРИЛИЗАЦИИ ИНСТРУМЕНТА — Блог STALEKS

Страна
Украина

Россия

Беларусь

Казахстан

Израиль

Узбекистан

Киргизстан

Грузия

Армения

Турция

Азербайджан

США

Кипр

Бельгия

Германия

Ирландия

Италия

Литва

Молдавия

Польша

Румыния

Чехия

Швеция

Аргентина

Австралия

Япония

Бенин

Албания

Австрия

Андорра

Афганистан

Бангладеш

Алжир

Ангола

Бахрейн

Болгария

Босния и Герцеговина

Боливия

Бразилия

Ботсвана

Буркина-Фасо

Бурунди

Великобритания

Венесуэла

Вьетнам

Габон

Гаити

Ганна

Гватемала

Гвинея

Гибралтар

Гондурас

Гонконг

Греция

Дания

Доминиканская Республика

Эквадор

Эстония

Эфиопия

Египет

Йемен

Замбия

Зимбабве

Индия

Индонезия

Ирак

Иран,Исламская Республика

Исландия

Испания

Иордания

Камбоджа

Камерун

Канада

Катар

Кения

Китай

Конго

Колумбия

Корейская,народно-демократическая республика

Корея,Республіка

Коста-Рика

Кот-д’Ивуар

Куба

Кувейт

Лао́сская Наро́дно-Демократи́ческая Респу́блика

Латвия

Ливан

Ливия

Лихтенштейн

Люксембург

Мавритания

Мадагаскар

Макао

Малави

Малайзия

Мали

Мальта

Марокко

Мексика

Мозамбик

Молдова,Республика

Монако

Монголия

Мьянма

Непал

Нигер

Нигерия

Нидерланды

Никарагуа

Новая Зеландия

Объединённые Ара́бские Эмира́ты

Оман

Пакистан

Палестина

Панама

Папуа — Новая Гвинея

Парагвай

Перу

Южная Африка

Южный Судан

Португалия

Пуэрто-Рико

Республика Македония

Руанда

Сальвадор

Сан-Марино

Саудовская Аравия

Сенегал

Сербия

Сингапур

Сирийская Арабская Республика

Словакия

Словения

Сомали

Судан

Суринам

США

Сьерра-Леоне

Таджикистан

Таиланд

Тайвань,Провинция Китая

Танзания,Обьединенная Республика

Того

Тунис

Туркменистан

Уганда

Венгрия

Уругвай

Филиппины

Финляндия

Франция

Хорватия

Чад

Чили

Черногория

Швейцария

Шри-Ланка

Ямайка

Язык
Русский

Українська

English

Portugal

Espanol

Дезинфекция, ПСО и стерилизация медицинских инструментов

1. Дезинфекция, ПСО и стерилизация медицинских инструментов.

Презентацию подготовила
Студентка 1-3 курса
Литвиненко Д. В.
Преподаватель
Яковлева В.О.
Евпатория 2017
г. Армавир
2012

2. 1 этап — ДЕЗИНФЕКЦИЯ

Химическая дезинфекция:
Для ИМН стойких к коррозии
Дез.раствор
1. Промывание
Дез.раствор
2. Полное погружение

3. Рекомендуемые дез.растворы:

Хлорамин 3% — 60 мин.
Н2О2 6% — 90 мин.
Н2О2 6% с 0,5% СМС – 90 мин.
Пероксимед 3% — 60 мин.
Виркон 2% — 10 мин.
Секусепт 2% — 120 мин.
Дезоксон-1 0,5% — 30 мин.
Физическая дезинфекция:
Для ИМН не стойких к коррозии
Вода
промывание
Промывные
воды подлежат
дезинфекции
или
Дез.раствор
промывание
Обеззараживание
промывных вод:
•Кипячение в дист.воде – 30’
•Засыпание хлорной
известью 1:5 (200г на 1л)

5. Физическая дезинфекция:

Кипячение в дистиллированной воде – 30’
Кипячение в 2% р-ре пищевой соды – 15’
Паровой метод – 0,5 атм 110° 20’
Воздушный метод — 120° 45’
2 этап — ПСО
После дезинфекции инструмент и перчатки
замачивают в одном из моющих растворов:
•Дистил. вода – 975 мл
•СМС – 5 г
•27,5% р-р Н2О2 — 17 мл
•Дистил. вода – 825 мл
•СМС – 5 г
•3% р-р Н2О2 — 170 мл
на 15 мин при температуре 50°С.

7. Контроль качества ПСО

Проверяется 1% из партии, но не менее
3-5 изделий каждого наименования.
Проба
Азопирамовая
Определяемое в-во Окрашивание
Скрытая кровь,
Фиолетовое,
ржавчина, СМС,
сиреневое,
остатки Cl
бурое
Фенолфталеиновая
Остатки
Розовое
компонентов СМС
Амидопириновая
Судан-III
Остатки крови
Жировые
загрязнения
Сине-зелёное
Жёлтое

8. Правила ПСО медицинских изделий

• 1.По завершению дезинфекции медицинские
инструментарии ополаскиваются проточной
водой. Время выдержки 0,5 мин
Затем: замачиваются при полном погружении в
один из растворов моющего средства
разрешенных уполномоченным органом в
области санитарно-эпидемиологического
благополучия населения. Первоначальная
температура раствора 20-25, время выдержки
15 мин.

2.Мытьё каждого изделия в моющем
растворе при помощи ерша или ватномарлевого тампона. Время выдержки 0,5
мин.
3.Ополаскивание проточной водой. Время
выдержки 10 мин.
4.Ополаскивание дистиллированной водой.
Время выдержки 0,5 мин
5.Сушка горячим воздухом в сушильном
шкафу при t° — 85°С. До полного
исчезновения влаги.
3 этап – СТЕРИЛИЗАЦИЯ
Режим
Контроль
Автоклав
2 атм 132° 20’
1,1 атм 120° 45‘
Мочевина,ИС-132°,
бензойная к-та,
ИС-120°
Сухожаровой
шкаф
180° 60’
160° 150’
Мочевина, янтарная
к-та, ИС-180°,
ИС-160°
Химическая
стерилизация
•Н2О2 6% 50°-180’,
18°-360’
•Дезоксон-1 1% 18°- 45’
•Лизоформин-3000 8%
40°- 60’

Инструкция по правилам дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации медицинских изделий

Качественная дезинфекция и стерилизация медицинских изделий — легко и быстро!

Классификация медицинских изделий;

Требования, предъявляемые к информации о медицинских изделиях;

Этапы обработки медицинских изделий;

Этап № 1 «Дезинфекция»: правила и нюансы дезинфекции медицинских изделий;

Журнал дезинфекции — ай да важно!

Этап № 2 «Предстерилизационная очистка»: способы и механизмы ПСО, советы;

Постановка азопирамовой, амидопириновой и фенолфталеиновой проб: правила работы и фиксация результатов;

Журнал учета качества предстерилизационной обработки, образец заполнения;

Этап № 3 «Стерилизация»: выбор правильного метода и режима стерилизации для стоматологических медицинских изделий;

Глассперленовые стерилизаторы и УФ-бктерицидные камеры – на что имеете Вы право? Необходимые документы, сопровождающие их работу;

Журнал работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава), образец заполнения. Укажи корректный режим стерилизации;

Контроль стерилизации: виды индикаторов, правила их раскладки, фиксация результата;

Хранение медицинских изделий, прошедших стерилизацию;

Советы по выбору современных средств для дезинфекции и стерилизации;

Советы и характеристика современных автоклавов. Не ниже класса Б?

Автоклав – сосуд, работающий под давлением. Специальные нормы;

Вся правда о техническом обслуживании стерилизаторов и их поверке;

Советы по упаковочному одноразовому материалу;

Допуск работников к проведению дезинфекционных и стерилизационных работ;

Действия персонала в случае аварийной ситуации;

Необходимый инструктаж персонала, правила его оформления;

Охрана труда и техника безопасности. Электробезопасность;

Соответствующий раздел плана программы производственного контроля;

Административная ответственность за нарушение законодательства в области обеспечения санитарно-эпидемиологического благополучия населения.

Если он не чистый, он не стерильный: обработка загрязненных инструментов

PSO Compass Points

Пациент находился в операционной, но не спал. Во время настройки мастер заметил мусор на одном из инструментов — вероятно, засохшую кровь или ткань из предыдущего случая. Инструмент не был должным образом очищен перед стерилизацией. (Когда это происходит, все стерильное поле считается зараженным.) Все инструменты и принадлежности должны быть удалены, а инструменты должны быть повторно стерилизованы.Хирург решил отменить процедуру и отправить пациента домой, чтобы его вернули в ближайшем будущем. Менеджер стерильной обработки был уведомлен и планировал принять меры.

Ситуация

Неспособность обработать зараженные инструменты должным образом — то есть не очистить, не дезинфицировать или стерилизовать их — перед использованием их на последующих пациентах может привести к распространению смертельных патогенов.

Справочная информация

PSO Института ECRI обнаружил в своей базе данных 234 события, относящихся к грязным хирургическим инструментам.Пять основных факторов загрязнения:

  • Неадекватная очистка перед стерилизацией (34%)
  • Проблемы с паровой стерилизацией сразу после немедленного использования (также известной как мгновенная стерилизация) (12%)
  • Отверстия в обертке (11%)
  • Инструменты, не стерилизованные вовремя для случая (10%)
  • Проблема с инструментами у поставщика (9%)

Из событий, в которых неадекватная очистка перед стерилизацией была определена как фактор, инструменты были идентифицированы следующим образом (проценты не добавляются до 100% из-за округления):

  • Сложный инструмент (39%)
  • Канюлированный или просветный инструмент (35%)
  • Простой несложный инструмент (9%)
  • Другой или неидентифицированный (16%)
Оценка

Сложные и канюлированные инструменты или инструменты с просветом представляют все большую проблему для процесса очистки хирургических инструментов.Отчеты показывают, что персонал, занимающийся обработкой стерильных продуктов, часто сталкивается с проблемами, связанными с производительностью, неадекватным инвентарем инструментов и отсутствием доступа к конкретным инструкциям по очистке хирургических инструментов.

Рекомендации

Институт ECRI PSO рекомендует следующее:

  • Обращайте особое внимание на весь персонал, занимающийся переработкой (очисткой, дезинфекцией или стерилизацией) медицинских изделий многократного использования, включая персонал клинических и центральных стерильных отделений, который пропускает какие-либо этапы очистки в протокол обработки может привести к смертельным инфекциям.
  • Оцените программу обработки организации, чтобы определить и устранить факторы, которые могут способствовать плохой очистке инструмента.
  • Изучите процедуры обработки, чтобы убедиться, что они всеобъемлющие и легкодоступные для всего персонала, участвующего в процессе очистки.
  • Периодически проверяйте процедуры, чтобы убедиться, что они соответствуют текущим рекомендациям производителя по очистке.
  • Проверьте соблюдение процедур обработки, чтобы убедиться, что они соблюдаются должным образом, и что имеются предохранительные устройства для предотвращения попадания загрязненных инструментов на поле или пациента.
  • Постоянно оценивайте компетентность и регулярно проводите переподготовку, чтобы помочь персоналу поддерживать компетентность. Центры США по контролю и профилактике заболеваний (CDC) рекомендуют проводить обучение не реже одного раза в год (CDC 2015).
  • Предотвратите снижение производительности, вынуждающее персонал отклоняться от инструкций по очистке имеющихся инструментов.
  • При оценке новых инструментов для покупки обращайтесь к персоналу по переработке.
  • Стимулируйте регулярную связь между персоналом, занимающимся переработкой, и клиническими отделениями, которые они обслуживают.

ECRI PSO выпускает 10 основных принципов эффективной очистки инструментов

Ежедневно отделы стерильной обработки медицинских учреждений управляют подготовкой бесчисленных хирургических инструментов к предстоящим процедурам. Это было продемонстрировано в выпуске PSO Monthly Brief за февраль 2013 г., в котором рассматривались устройства, подвергшиеся неадекватной переработке. Если устройства не были должным образом очищены перед дезинфекцией и стерилизацией, ткани, кости или другие органические материалы могут остаться внутри или на инструменте.

Последствия ненадлежащей обработки могут быть относительно незначительными, например, задержка операции на время поиска новых инструментов, если контаминация выявлена ​​до начала процедуры, или более значительными, например, возможная инфекция.
Медицинские работники часто ошибочно полагают, что стерилизация сама по себе позволяет подготовить оборудование к повторному использованию; Это просто неправда. Фактически, повторная обработка — это многоступенчатая практика, которая включает в себя тщательную очистку, а также дезинфекцию или стерилизацию.Частично увеличение сложности переработки может быть связано с развитием технологий. «Современные инструменты имеют сложные подвижные части, которые трудно разобрать и тщательно очистить», — говорит Гейл Хорват, MSN, BS, RN, CNOR, CRCST, аналитик по безопасности пациентов в Институте ECRI PSO.

Руководство учреждения должно быть осведомлено о процессах и проблемах в отделении обработки стерильных продуктов и рассматривать их как часть предоставления безопасного ухода за пациентами. Изменения в оборудовании, персонале или процедурах могут повлиять на способность организации предоставлять надлежащим образом переработанные и безопасные инструменты.Таким образом, Институт PSO ECRI создал список из 10 основных принципов эффективной очистки инструментов:

1. Обеспечьте соответствующий обученный персонал, помещения и ресурсы для отделения стерильной обработки.

2. Стандартизируйте и упростите процедуры во всех областях, где обрабатываются инструменты.

3. Â Контролируйте качество обработки инструмента с помощью проверок после очистки.

4. Обратитесь к персоналу отдела переработки за информацией о закупках инструментов и оборудования.

5. Ограничьте зависимость операционных от немедленной стерилизации.

6. Установить критерии доставки для одалживаемых инструментов и запретить их немедленную стерилизацию.

7. Требовать регулярной оценки компетентности персонала, занимающегося переработкой инструментов.

8. Содействовать сотрудничеству и совместной работе персонала отделения переработки и персонала операционной.

9. Принимать во внимание и уважать вклад персонала, занимающегося переработкой, в безопасность пациентов и качественный уход.

10. Поощряйте незамедлительное информирование о событиях или возможных авариях, связанных с загрязненными инструментами.

Источник: Институт ECRI

7 ключей к эффективной дезактивации — инфекционный контроль

PRE-TREAT Современные инструменты имеют сложные подвижные части, которые трудно разобрать и тщательно очистить. Чтобы мусор не высыхал на инструментах, лучше сразу замочить их.

Обеззараживание инструментов путем удаления органических материалов имеет решающее значение в процессе дезинфекции и стерилизации и, как следствие, предотвращения инфекций, связанных со здоровьем.Эффективная стерилизация невозможна, если на инструментах или внутри них остается мусор. Белковый материал не пропускает ни пар, ни газ. Персонал, не осознающий важность предварительной дезинфекции, может ошибочно предположить, что инструменты, направляемые в стерилизатор, не нуждаются в дезинфекции. Обязательно проводите навыки повторной обработки для сотрудников центрального технологического отдела ежегодно и по мере необходимости.

Целью дезинфекции является удаление всего органического материала, включая кровь, выделения и ткани, которые скопились на поверхности, в канавках и шарнирах инструментов перед дезинфекцией и стерилизацией высокого уровня.

Основные шаги
Если вы собираетесь контролировать процесс обеззараживания, обратите особое внимание на следующие 7 шагов. Если они соблюдаются надлежащим образом и в соответствии с инструкциями, скорее всего, вы предотвратите неоптимальную дезинфекцию и стерилизацию. Не забывайте всегда носить полные СИЗ, включая халаты, перчатки и маску для лица или маски и очки, при обеззараживании инструментов.

1. Сразу после процедуры промойте инструменты теплой водой, чтобы удалить органические вещества.Это поможет в процессе очистки, предотвратив высыхание и слеживание крови, выделений и тканей. Высушенные белковые вещества трудно удалить, и увеличивается вероятность остаточной бионагрузки.

2. Если немедленная промывка невозможна, как можно скорее после использования обработайте ее в растворе для замачивания ферментов перед процессом очистки.

3. Очистка является критическим этапом дезактивации после предварительных этапов, описанных выше. Именно на этом этапе необходимо полностью удалить мусор, в том числе засохшие биологические жидкости.Помните, что стерилизация не будет эффективной, если на инструменте останется мусор.

4. Ультразвуковая очистка наиболее эффективна, особенно для инструментов на шарнирах и инструментов с движущимися частями. Предпочтительно использование дистиллированной или деминерализованной воды. Убедитесь, что инструменты находятся в открытом положении, прежде чем помещать их в ультразвуковой очиститель. Должен быть завершен полный ультразвуковой цикл. Ополаскивание после очистки важно, так же важно и смена раствора в соответствии с инструкциями производителя.Другой способ использования — это автоматический стиральный аппарат-стерилизатор. Смазка инструментов после последнего цикла ополаскивания и перед стерилизацией важна при использовании автоматического стирально-стерилизатора.

5. При ручной чистке с использованием жестких нейлоновых щеток для чистки не используйте их повторно, если это не указано производителем. Отделяйте тонкие инструменты от обычных инструментов. Осмотрите поверхности инструмента на предмет крупных загрязнений, пятен, а также на предмет надлежащего функционирования и состояния.

ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНЫЕ ШАГИ
Если он грязный, как он может быть стерильным?

МНОГОСТУПЕНЧАТАЯ ПРАКТИКА Ошибочно полагать, что стерилизация сама по себе подготавливает оборудование к повторному использованию.

Повторная обработка — это многоступенчатая практика. Если вы не очистите устройства должным образом до их дезинфекции и стерилизации, ткани, кости или другие органические материалы могут остаться внутри или на инструменте. PSO Института ECRI (Организация по безопасности пациентов) составила список из 10 основных вещей, необходимых для эффективной очистки инструментов:

1. Обеспечьте отдел стерильной обработки соответствующим обученным персоналом, оборудованием и ресурсами.

2. Стандартизируйте и упростите процедуры во всех областях обработки инструментов.

3. Контролируйте качество обработки инструментов с помощью проверок после очистки.

4. Запросите мнение сотрудников отдела переработки по закупкам инструментов и оборудования.

5. Ограничьте зависимость операционной от немедленной стерилизации.

6. Установить критерии доставки для одалживаемых инструментов и запретить их немедленную стерилизацию.

7. Требовать регулярной оценки компетентности персонала, занимающегося переработкой инструментов.

8. Стимулируйте сотрудничество и командную работу среди персонала отделения переработки и операционной.

9. Признать и уважать вклад персонала по переработке в безопасность пациентов и качественное лечение.

10. Поощряйте незамедлительное сообщение о событиях или близких обстоятельствах, связанных с загрязненными инструментами.

— Гейл Хорват, MSN, BS, RN, CNOR, CRCST

Г-жа Хорват ([адрес электронной почты защищен]) — аналитик по безопасности пациентов в PSO Института ECRI.

В ИЛИ
Во время процедуры

ТОГДА И ТАМ Предварительно очистите инструменты в месте использования, прежде чем бионагрузка успеет высохнуть.

Поскольку бионагрузка имеет тенденцию очень быстро высыхать и слеживаться на инструментах после любого типа инвазивной процедуры, важно обеззараживать устройства во время операции. Вот 3 шага действий из периоперационных стандартов AORN:

• При необходимости протрите инструменты стерильными хирургическими губками, смоченными стерильной водой во время процедуры, чтобы удалить грубые загрязнения.

• Промывайте инструменты с просветами стерильной водой по мере необходимости на протяжении всей хирургической процедуры.

• Канюлированные инструменты или инструменты с просветом могут быть забиты органическим материалом.Орошение этих инструментов стерильной водой помогает удалить остатки. Инструменты следует ополаскивать водой из-за агрессивности физиологического раствора.

— Фенель Сигал, РН, CIC

6. Очистка инструментов удаляет смазку и предотвращает накопление белка. Предпочтительны водорастворимые противомикробные смазочные растворы, такие как инструментальное молочко. После очистки и смазки, но перед глубокой дезинфекцией или стерилизацией инструменты следует промыть дистиллированной, деионизированной или стерильной водой.

7. Последний шаг дезактивации включает разблокировку всех инструментов, чтобы они стерилизовались в открытых положениях. Если инструменты хранятся до стерилизации, обязательно храните их в чистом и сухом месте.

«Чистота» в СПД требует сотрудничества и компетентности — Часть 2

Загрязненные хирургические инструменты представляют опасность для пациентов и для чистой прибыли организации. В первой части этой серии из двух частей мы обсудили стратегии профилактики (OR Manager, апрель 2019 г., 14–15, 19).В части 2 основное внимание уделяется исследованию потенциального загрязнения, а также конструктивным соображениям.

Детективная работа

Несмотря на все усилия, заражение хирургических инструментов все же происходит. По словам Скотта Лукаса, доктора медицинских наук, директора по расследованию несчастных случаев и судебно-медицинской экспертизы Института ECRI, Plymouth Meeting, Пенсильвания, расследования могут быть инициированы сотрудниками, которые видят видимую бионагрузку на приборе, или ростом числа инфекций пациентов. «Операционная и стерильный технологический персонал часто обвиняют друг друга, но следственная группа, состоящая из нескольких отделов, прекращает поиск виновных и сосредотачивает усилия на поиске источника проблемы», — говорит Лукас.


Рекламное сообщение


В состав группы обычно входят представители администрации, операционной, отдела стерильной обработки (SPD), профилактики инфекций, управления рисками, инженеров и управления оборудованием. Члены команды исследуют шесть областей.

Политики и процедуры. Политики и процедуры должны быть конкретными, достаточными и соответствовать действующим руководящим принципам, — говорит Лукас.Если это не так, их следует пересмотреть. Лукас добавляет, что лучше иметь отдельные политики для инструментов и эндоскопов, потому что каждая категория имеет уникальные потребности. Он советует пересматривать и обновлять политики на регулярной основе и всякий раз, когда добавляется новое оборудование.

Соответствие. Иногда самые лучшие политики и процедуры не соблюдаются из-за нехватки времени. Для оценки соответствия команда может проверить журналы повторной обработки на полноту, проверить биологические индикаторы и процедуры и результаты тестов, а также провести аудит.

«Хорошо использовать коллег для проведения некоторых аудитов», — говорит Лукас. Например, персонал может проверить процент лотков на предмет правильной обработки. Надзорные органы могут проводить выборочные аудиты на различных этапах цикла обработки. Некоторые системы слежения за инструментами позволяют привязать лотки к конкретным пациентам, для которых они использовались.

Персонал. Лукас говорит, что команда должна спросить: «Где узкие места?» потому что в таких ситуациях сотрудники могут срезать углы.Узкие места могут возникать во время определенной смены или в определенный момент цикла обработки, например, на станции ручной очистки.

Также важно оценить уровень укомплектования персоналом, какой процент сотрудников представляют агентства, прошел ли персонал достаточную подготовку и сколько времени требуется персоналу для очистки инструмента. (Если очистка занимает много времени, может потребоваться изменить технику, чтобы инструмент оставался чистым, но время сократилось). Лукас рекомендует организациям взять на себя обязательство иметь руководителя SPD в каждую смену для поддержки персонала и решения проблем. которые возникают.

Оборудование. Отсутствие надлежащего чистящего оборудования может привести к ненадлежащей очистке инструментов. Например, ферментные растворы должны быть легко доступны в операционной для очистки в местах оказания медицинской помощи. Персоналу СПД нужны подходящие раковины, распылители, щетки и другое оборудование для правильной обработки инструментов. За оборудованием тоже нужно ухаживать. «Убедитесь, что кто-то ежедневно чистит оборудование, такое как стиральные машины и стерилизаторы, — говорит Лукас. Также жизненно важны регулярные осмотры и профилактическое обслуживание оборудования.

Техника. Члены группы должны оценить, правильно ли персонал ОР и СПД выполняет ручную очистку. «Персонал должен строго следовать рекомендациям производителя по очистке, дезинфекции и повторной обработке, включая использование надлежащих инструментов для очистки», — говорит Лукас. Он отмечает, что персоналу операционной может потребоваться напоминание о том, что нельзя использовать физиологический раствор для очистки инструментов.

Чтобы снизить вероятность заражения, сотрудники СПД должны носить длинные рукава и не иметь бороды. Персоналу также может быть полезен доступ к видео и фотографиям, демонстрирующим правильную технику.Иногда характер проблемы дает ключ к решению. Например, мокрые упаковки обычно являются результатом проблемы процесса, такой как недостаточное время сушки, которое может варьироваться в зависимости от географического расположения.

Системные проблемы. Примеры системных проблем: недостаточный инвентарь, плохая связь и управление поставщиками. Дополнительными факторами, которые команда может захотеть изучить, являются использование нескольких сложных устройств и невозможность обновления подносов или устройств, предназначенных для конкретного врача.

Лукас говорит, что команде необходимо определить, что это за мусор, отправив его на анализ с помощью таких методов, как сканирующая электронная микроскопия и стереомикроскопия.Команда должна отправить потенциальный источник загрязнения вместе с обломками, чтобы проверить, есть ли совпадение.

Дизайн и транспорт

Физическая рабочая среда SPD играет большую роль в эффективной обработке инструментов и, следовательно, играет решающую роль в предотвращении загрязнения инструментов. Три основных области — это дезинфекция, чистая установка (когда персонал собирает и упаковывает очищенные инструменты, чтобы подготовить их к стерилизации) и стерильное хранение.

руководителей СПД, которым посчастливилось участвовать в разработке нового СПД, должны следовать рекомендациям национальных организаций, говорит Роберт Малифф, директор по стратегическому росту и развитию бизнеса в Институте ECRI (врезка справа). Организации должны учитывать количество операционных, которым потребуется поддержка, и количество проектов для каждого из следующего: транспортные тележки, ежедневная переработка наборов инструментов, ежедневная переработка тележек / контейнерных стеллажей и ежедневные хирургические процедуры.Если вы используете систему тележек для ящиков, запланируйте как минимум восемь стандартных единиц хранения на одно операционное.

Роберт Малифф

«Важно обеспечить гибкость и адаптируемость дизайна к будущему расширению, — говорит Малифф. «Не пытайтесь втиснуть стерилизацию в шкаф». Организации должны предоставить помещения и инженерные сети для одного дополнительного устройства для мытья-дезинфекции инструментов и одного дополнительного парового стерилизатора. «Использование модульных стеновых панелей из нержавеющей стали поможет упростить установку будущего оборудования», — отмечает Малифф.Безопасность, например, контролируемые точки доступа и видеонаблюдение в стратегически важных местах, должны быть включены в планирование на ранних этапах процесса.

Учитывая дороговизну основного оборудования СПД, руководителям СПД необходимо с особой тщательностью подходить к выбору торговой марки. Например, Малифф утверждает, что срок службы машины для мойки тележек составляет 15 лет, а стоимость жизненного цикла составляет от 250 000 до 375 000 долларов. Критерии выбора включают оценку пропускной способности тележки, того, насколько хорошо она дезинфицирует хирургические инструменты и можно ли повторно использовать воду.Срок службы парового стерилизатора составляет 15 лет, а стоимость жизненного цикла в среднем составляет около 200 000 долларов. В этом случае критерии выбора включают внутренние или внешние источники пара, удаление воздуха (гравитация / вакуум / продувка паром / импульс давления), потребность в пропускной способности и количество используемой воды.

Системы здравоохранения все чаще централизуют услуги, что может затруднить транспортировку между учреждениями из-за потенциального загрязнения в результате изменений температуры и влажности.

«Не существует каких-либо универсальных правил, определяющих подходящий диапазон температур или уровень влажности для транспортных средств», — говорит Малифф.Организации должны проявлять бдительность при тестировании на загрязнение и внесении необходимых изменений. Один из вариантов — использовать грузовики с климат-контролем и регистрировать температуру и влажность на каждой остановке. Также важна регулярная и тщательная чистка грузовиков для защиты инструментов от пыли, грязи и других загрязнений.

Обеспечение наилучшего ухода за пациентами

Самый неприятный результат «грязных» инструментов — это воздействие на здоровье пациентов. Обеспечение надлежащих процессов, обучение персонала, исследование загрязнения и проектирование пространства для УЗИП для оптимизации рабочего процесса — все это может помочь в достижении оптимальных результатов для пациентов.Чтобы ознакомиться с контрольным списком передовых методов, посетите сайт www.ormanager.com и нажмите «Free Toolbox» на вкладке «Ресурсы». ✥

Синтия Савер, MS, RN, президент CLS Development, Inc, Колумбия, Мэриленд, которая предоставляет редакторские услуги для медицинских публикаций.

Список литературы

Чобин Н. Исследование проблемы грязных инструментов в медицинских учреждениях. Инфекционный контроль сегодня. 2012. https://www.infectioncontroltoday.com/sterile-processing/dissecting-dirty-instruments-issue-healthcare-facilities.

Институт ECRI PSO. Роль отделения стерильной обработки в безопасности пациентов. PSO Navigator ™. 2012; 4 (3): 1-9. https://www.ecri.org/components/PSOCore/Pages/PSONav0812.aspx?tab=2.

«Чистота» в СПД требует сотрудничества и компетентности — Часть 1

Загрязненные хирургические инструменты вошли в ежегодный список 10 основных опасностей медицинских технологий Института ECRI за 2019 год, заняв пятое место: «Неправильное обращение с гибкими эндоскопами после дезинфекции может привести к инфицированию пациентов.Второе место в списке в 2018 году было «Неудачи при повторной обработке эндоскопов по-прежнему подвергают пациентов риску инфицирования».

Не только эндоскопы вызывают беспокойство. Организация по безопасности пациентов Института ECRI, в которой размещена добровольная база данных событий, содержала более 1000 событий, связанных с воздействием загрязненных инструментов в период с 1 января 2015 года по 30 июня 2017 года. События попали в одну из трех категорий: устройство, хирургия / анестезия, или инфекции, приобретенные в результате оказания медицинской помощи.Эти категории входят в число общих форматов Агентства по исследованиям и качеству в области здравоохранения, которые используются для содействия последовательному сбору и анализу данных о безопасности.

Случайная выборка из 536 событий, связанных с загрязненными инструментами, выявила шесть типов режимов отказа:


Рекламное сообщение


• паровая стерилизация для немедленного использования (IUSS) (60%)

• бионагрузка или загрязняющие вещества на инструментах (34%)

• нестерильные инструменты (34%)

• выпуск инструмента продавца (16%)

• проблемы с качеством стерилизации (8%)

• человеческий фактор (7%).

Такие сбои не только представляют угрозу безопасности пациентов, они также могут подвергнуть организации здравоохранения негативной огласке и, возможно, судебным разбирательствам. Недавний поиск в Google по запросу «грязные хирургические инструменты» дал 601 результат, включая сообщения местных и национальных новостных агентств.

Частично проблема связана с давлением в отделении стерильной обработки (SPD). «Хирургические объемы выше во многих областях, из-за неадекватной доступности инструментов, повышенной сложности инструментов и недостатка персонала или неквалифицированного персонала», — говорит Гейл Хорват, MSN, RN, CNOR, CRCST, старший специалист по анализу безопасности пациентов IV и консультант по Институт ECRI, Плимутское собрание, Пенсильвания.

Когда руководители операционных и СПД сотрудничают друг с другом, своими командами и другими экспертами, они могут уменьшить загрязнение инструментов. В первой части этой серии из двух частей обсуждаются масштабы проблемы и стратегии предотвращения. В части 2, в которой основное внимание уделяется тому, как исследовать потенциальное загрязнение и исправить ситуацию, также рассматриваются соображения по проектированию и оборудованию.

За ошибками

Большинство людей приходят на работу, желая хорошо поработать, так почему же происходят такие события, как зараженные инструменты? В статье 2012 года Чобин разделил возможные причины на процессы и людей.

Факторы процесса

• сложные хирургические инструменты, которые трудно чистить или которые нельзя разобрать для очистки

• Неясные или отсутствующие инструкции производителя по применению (IFU)

• арендуемое оборудование без обучения персонала чистке и стерилизации

• Отсутствие входных данных для стерильной обработки для покупок инструментов и устройств, чтобы убедиться, что SPD может соответствовать IFU

• Недостаточный инвентарь, что приводит к ярлыкам и IUSS.

Человеческий фактор

• нехватка персонала

• низкооплачиваемый технический персонал

• высокая текучесть кадров

• срочное ориентирование и обучение

• нет стимулов для прохождения сертификации

• отсутствие у сотрудников возможностей карьерного роста

• отсутствие финансовой поддержки для повышения квалификации, уборки оборудования и создания приятной физической рабочей среды.

Обеспечение надлежащей обработки инструментов во избежание заражения инструментов требует обращения как с процессами, так и с людьми.

Процессы и эффективность

Гейл Хорват, MSN, RN, CNOR, CRCST

Ключевыми этапами обработки многоразовых инструментов являются предварительная очистка в операционной, транспортировка в УЗИП, дезактивация и очистка, осмотр для обеспечения чистоты инструмента, дезинфекция или стерилизация высокого уровня, а также хранение и обращение. «Вы должны изучить каждую подзадачу [в рамках этих шагов] и определить, что может пойти не так», — говорит Кэтрин Пьюзи, MBA, RN, заместитель директора Института ECRI (боковая панель справа).«Это поможет вам обеспечить качество».

Несколько инструментов могут помочь проанализировать сбои в процессе, которые могут привести к загрязнению инструмента.

Спрашивать почему. Продолжайте спрашивать почему, пока не ответите на все вопросы. Пьюзи иллюстрирует это на примере пакетной доставки инструментов в SPD, что приводит к значительным колебаниям рабочей нагрузки. Ответ на первый вопрос («Почему это происходит?») Заключается в том, что операционная ожидает завершения нескольких хирургических процедур, чтобы заполнить большие тележки для пациентов.Второй вопрос: почему операционная ждет, чтобы заполнить тележки с чемоданами? Ответ заключается в том, что это уменьшает количество раз, когда персонал операционной должен спускаться на лифте к SPD. Ответы на вопросы «почему» помогают определить источник проблемы.

Схема спагетти. Схема спагетти показывает рабочий процесс, который помогает выявить неэффективность и узкие места. Для создания диаграммы:

• Запишите шаги или процесс на отдельном листе бумаги. (Например, руководитель СПД может захотеть записать процесс обеззараживания и очистки инструментов.)

• Нарисуйте процесс со стрелками, показывающими направление.

• Отметьте, сколько времени занимает каждый шаг процесса и сколько времени занимает каждая станция в рамках шага.

• Документируйте, кто выполнил каждый шаг процесса.

Диаграмма часто позволяет определить, на что тратится время, например, на ненужные шаги для перехода от одной станции к другой.

Кэтрин Пусей, MBA, RN

Диаграмма Fishbone. Диаграммы Fishbone помогают в анализе первопричин.«Голова» рыбы — это постановка проблемы, а ответвления от «тела» рыбы определяют категории способствующих факторов. Затем каждая ветвь описывается более подробно. Пьюзи приводит пример диаграммы «рыбья кость», исследуя проблему отсутствия инструментов. Категории факторов могут включать человеческие знания (например, текучесть кадров и неточные подсчеты), помещения (например, размещение полок и стеллажей) и процессы (прерывания рабочего процесса и нехватка времени).

Матрица ударно-воздействия. Результаты диаграммы «рыбья кость» можно преобразовать в матрицу «воздействие-эффект», которая помогает определить основные причины, с которыми команда может лучше всего справиться. В матрице выделяются четыре категории: малое усилие — сильное воздействие, низкое усилие — низкое воздействие, высокое усилие — высокое воздействие и высокое усилие — низкое воздействие.

«Обычно лучше всего начинать с решений, требующих минимальных усилий и высокой отдачи», — говорит Пьюзи. (Для получения дополнительной информации об этих методах загрузите справочник Adrianzen 2014.)

«Подумайте, какие обходные пути могут использовать сотрудники, которые могут поставить под угрозу обработку инструментов», — добавляет Пьюзи.Способы оценки обходных путей включают наблюдение за персоналом во время их работы или во время имитационных лабораторий. Например, руководитель может увидеть, что персонал использует неправильный инструмент для очистки инструмента, потому что правильный инструмент находится слишком далеко. Персонал должен понимать, что следующие IFU требуются несколькими органами по аккредитации, включая Центры услуг Medicare и Medicaid, Объединенную комиссию и Ассоциацию по аккредитации амбулаторной медицинской помощи.

Руководители

СПД также должны проверить ключевые моменты.Например, одна контрольная точка может проверять заданное количество случайно выбранных лотков на предмет таких факторов, как то, соответствует ли счетный лист тому, что находится в наборе, и находятся ли навесные инструменты в открытом положении. Другие потенциальные точки аудита включают лотки, возвращаемые из операционной, подготовку тележки для ящиков, пакеты для снятия кожуры, обернутые лотки и жесткие контейнеры. При надлежащем обучении персонал может проводить эти аудиты.

Национальные тесты

недоступны для выявления ошибок IUSS, поэтому Хорват рекомендует проводить тесты против вашей собственной организации.Например, если IUSS встречается в 25% случаев, организация может решить, что она хочет сократить до 10% к определенному моменту времени.

Люди и производительность

Показатели производительности могут использоваться для обоснования кадровых потребностей. Хорват говорит, что показатели можно разделить на две категории: фиксированные и переменные часы.

Фиксированные часы включают часы, необходимые для работы каждую неделю, административную поддержку отчетов и время управления. Переменные часы могут меняться день ото дня и включать количество отобранных тележек для ящиков, количество обработанных лотков, сложность лотков, колебания рабочей нагрузки, вызванные чрезвычайными ситуациями, и количество лотков, сданных во временное пользование.

«В некоторых случаях сотрудники СПД собирают и чистят оборудование, которое не находится в операционной», — добавляет Хорват. «Это также необходимо учитывать при оценке производительности». Руководители СПД могут сравнить количество минут, затрачиваемых на конкретный шаг, например, на сборку лотка, с контрольными показателями, установленными организацией (боковая панель ниже).

Для поощрения позитивного партнерства и общения между операционным отделом и персоналом СПД Хорват предлагает выделить время, в течение которого персонал СПД будет наблюдать в операционной, а персонал операционной — наблюдать за процессами в ОПД.

Персонал

операционной часто удивляется тому, сколько времени требуется, чтобы перевернуть даже базовый лоток для инструментов, а наблюдение за работой сотрудников СПД позволяет сотрудникам операционной лучше понять давление, которое испытывают их коллеги.

В свою очередь, персонал СПД может лучше понять давление в операционной, например, разочарование хирурга, когда нужный инструмент отсутствует в лотке.

Хороший пример того, как улучшить понимание и взаимодействие между операционным отделом и персоналом SPD, см. В разделе «Работа с инструментами в операционной после обучения SPD», менеджер операционного отделения, 15–18 апреля 2018 г.

Еще один способ развития необходимых навыков у сотрудников СПД — поощрение (и предложение финансовых стимулов для) сертификации и создание клинической лестницы для персонала, чтобы у них было пространство для роста. Наконец, персоналу требуется интенсивное обучение тому, как чистить все более сложные инструменты, с которыми они сталкиваются ежедневно.

Согласованный подход

Это лишь некоторые из шагов, которые руководители операционных могут предпринять для улучшения коммуникации и сотрудничества между отделами и повышения компетентности.Чем больше они сосредотачиваются на этих вещах, тем больше шансов снизить риск заражения хирургических инструментов, тем самым защищая пациентов от вреда.

Синтия Савер, MS, RN, президент CLS Development, Inc, Колумбия, Мэриленд, которая предоставляет редакторские услуги для медицинских публикаций.

Список литературы

Адрианзен Д., Домброски З., Софи и др. Внедрение улучшения бережливого процесса в отделении стерильной обработки в академическом медицинском центре.Вустерский политехнический институт. 2014. https://web.wpi.edu/Pubs/E-project/Available/E-project-032514-103357/unrestricted/Implementing_Lean_Process_Improvement_in_the_Sterile_Processing_Department_at_The_Academic_Medical_Center.pdf.

Чобин Н. Исследование проблемы грязных инструментов в медицинских учреждениях. Инфекционный контроль сегодня. 2012. https://www.infectioncontroltoday.com/sterile-processing/dissecting-dirty-instruments-issue-healthcare-facilities.

Институт ECRI.10 основных опасностей, связанных с технологиями здравоохранения, 2019 г. Исполнительная записка. https://www.ecri.org/Resources/Whitepapers_and_reports/Haz_19.pdf.

Институт ECRI PSO. Роль отделения стерильной обработки в безопасности пациентов. PSO NavigatorTM. 2012; 4 (3): 1-9. https://www.ecri.org/components/PSOCore/Pages/PSONav0812.aspx?tab=2.

Введение

Справочник по бактерицидному ультрафиолетовому облучению. 2009 июля 9: 1–16.

1

Владислав Ковальский

Immune Building Systems, Inc., 575 Madison Ave., 10022 New York, NY USA

Immune Building Systems, Inc., 575 Madison Ave., 10022 New York, NY USA

Соответствующий автор Авторские права © Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2009

Эта статья является предоставляется через Подмножество открытого доступа PMC для неограниченного повторного использования в исследованиях и вторичного анализа в любой форме и любыми средствами с указанием первоисточника. Эти разрешения предоставляются на период, пока Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) объявила COVID-19 глобальной пандемией.

Реферат

Ультрафиолетовое бактерицидное облучение (УФГИ) определяется как использование ультрафиолетовых (УФ) длин волн света в бактерицидном диапазоне (200–320 нм) для дезинфекции воздуха и поверхностей. Термин « UVGI » был первоначально введен Международной комиссией по освещению (CIE) и позже принят Центрами по контролю за заболеваниями (CDC), и этот термин отличает средства дезинфекции от небактерицидных длин волн УФА черного света и ламп для загара ( 320–400 нм).UVGI также используется для отделения дезинфекции воздуха и поверхностей от дезинфекции воды (CIE 2003). В этой книге термины «УФГИ» и «УФ» будут использоваться взаимозаменяемо, с пониманием того, что в любом контексте, если не указано иное, оба термина относятся к длинам бактерицидных волн УФС (200–280 нм) и УФВ (280–320 нм). нм). УФ-излучение ниже 320 нм является актиничным, что означает, что оно вызывает фотохимические реакции. УФА-излучение (320–400 нм) не считается бактерицидным и не рассматривается в этой книге специально (за исключением импульсного света).

Ключевые слова: Патоген пищевого происхождения, дезинфекция воды, черный свет, дезинфекция поверхности, система дезинфекции

Бактерицидное ультрафиолетовое облучение (UVGI)

Ультрафиолетовое бактерицидное облучение (UVGI) определяется как использование ультрафиолетового (УФ) света бактерицидный диапазон (200–320 нм) для дезинфекции воздуха и поверхностей. Термин « UVGI » был первоначально введен Международной комиссией по освещению (CIE) и позже принят Центрами по контролю за заболеваниями (CDC), и этот термин отличает средства дезинфекции от небактерицидных длин волн УФА черного света и ламп для загара ( 320–400 нм).UVGI также используется для отделения дезинфекции воздуха и поверхностей от дезинфекции воды (CIE 2003). В этой книге термины «УФГИ» и «УФ» будут использоваться взаимозаменяемо, с пониманием того, что в любом контексте, если не указано иное, оба термина относятся к длинам бактерицидных волн УФС (200–280 нм) и УФВ (280–320 нм). нм). УФ-излучение ниже 320 нм является актиничным, что означает, что оно вызывает фотохимические реакции. УФА-излучение (320–400 нм) не считается бактерицидным и не рассматривается в этой книге специально (за исключением импульсного света).В таблице приведены определения основных диапазонов УФ-излучения. Ранее считалось, что УФА простирается до 315 нм, но было обнаружено, что диапазон 315–320 нм оказывает незначительное бактерицидное действие. Диапазон UVA, а, следовательно, и диапазон UVB, были пересмотрены различными организациями, так что теперь все актиническое УФ-излучение находится строго в пределах диапазонов UVB и UVC. Это разделение позволяет UVA быть полностью небактерицидным и удобно помещает все бактерицидные UV в диапазоны UVB и UVC.

Таблица 1.1

Первичные полосы ультрафиолетового излучения

Полоса Длина волны, нм Тип и классификация
UVA 320–400 Черный без УФ-излучения )
УВБ 280–320 Эритемальный Бактерицидный Актинический
UVC 200–280 Озонопроизводящий
VUV 100–200 Вакуумный ультрафиолет

Определения диапазонов УФ-излучения UVA, UVB и UVC, приведенные в таблице, еще не полностью включены во все соответствующие директивы или принятые каждым агентством, но, вероятно, в конечном итоге будут приняты повсеместно.ВУФ (вакуумный ультрафиолет) не пропускает воздух через воздух, поскольку он быстро поглощается, и поэтому полоса ВУФ не представляет интереса для дезинфекции воздуха и поверхностей и в этой книге не рассматривается в дальнейшем.

В этой вводной главе представлены некоторые другие основные определения и предметы, которые служат основой для последующих глав, где эти концепции будут рассмотрены более подробно. Главы в этой книге составлены таким образом, чтобы в первую очередь обратиться к справочной информации, включая теорию и математическое моделирование, затем оборудование и методы проектирования и, наконец, тестирование и приложения.В приложениях представлены таблицы с полезными данными и информацией, на которые будут ссылаться в этой книге.

Краткая история ультрафиолетовой дезинфекции

История ультрафиолетового света начинается с Исаака Ньютона и его современников. В 1672 году Исаак Ньютон опубликовал серию экспериментов с призмами, которые разделяли солнечный свет на составляющие его цвета, от красного до фиолетового. Воздействие солнечного света на человека, микроорганизмы и химические вещества стало предметом большого интереса и экспериментов в 1800-х годах.В 1814 году Фраунгофер нанес на карту более 500 полос солнечного света, некоторые из которых находились в ультрафиолетовой области. В 1842 году Беккерель и Дрейпер независимо друг от друга показали, что длины волн от 340 до 400 нм вызывают фотохимические изменения на пластинах дагеротипа (Hockberger 2002).

УФ-лампа была разработана раньше, чем исследования бактерий при солнечном свете. В 1835 году Уитстон изобрел первую дуговую лампу на парах ртути (Hg), но она оказалась нестабильной и недолговечной. Физо и Фуко (1843) сообщили о проблемах с глазами после экспериментов с угольной дуговой лампой и предположили, что это произошло из-за «химических лучей».В 1850 году Стокс использовал алюминиевые электроды для изготовления «закрытой» дуговой лампы в кварцевой трубке, которая испускала УФ-лучи с длиной волны 185 нм (Hockberger 2002).

Самые ранние научные наблюдения бактерицидных эффектов ультрафиолетового излучения начались с Доунса и Бланта (1877), которые сообщили, что бактерии инактивировались солнечным светом, и обнаружили, что фиолетово-синий спектр был наиболее эффективным. В 1885 году Арлоинг и Дюкло продемонстрировали, что солнечный свет убивает Bacillus anthacis и Tyrothrix scaber соответственно.Видмарк (1889, 1889a) опубликовал исследования, подтверждающие, что УФ-лучи от дуговых ламп являются причиной ожогов кожи, с использованием призмы для разделения УФ-спектра и воды, чтобы блокировать инфракрасные лучи. В 1892 году было продемонстрировано, что ультрафиолетовый свет отвечает за это действие с помощью тестов на Bacillus anthracis (Ward 1892). Также в 1892 году Гейслер использовал призму и гелиостат, чтобы показать, что солнечный свет и дуговые лампы смертельны для Bacillus typhosus . Финсен (1900) выполнил первый строгий анализ воздействия УФ-света.УФ-спектр около 250 был идентифицирован как биоцидный Барнардом и Морганом (1903), а диапазон был сужен Ньюкомером (1917) и выделен до 253,7 нм Эрисманном и Ноэтлингом (1932). В таблице приведены наиболее важные события в истории исследований и приложений УФ-излучения.

Таблица 1.2

Хронология критических событий в истории УФ-излучения

Widmark

Lorch

для армии / ВМС

и другие.(1942)

905
Год Событие Ссылка
1814 Фраунгофера отображает спектральные полосы солнечного света

1835 Уитстон изобретает первую дуговую лампу на парах ртути Хокбергер (2002)
1850 Стокс изобретает кварцевую дуговую лампу с длиной волны 185 нм. Свет с длиной волны 340–400 нм, фотореактивный Hockberger (2002)
1877 Впервые продемонстрировано бактерицидное действие солнечного света Downes and Blunt (1877)
1889 УФ-свет продемонстрировал эритемальность 1889)
1892 УФ-компонент солнечного света признано биоцидным Ward (1892)
1892 Гейслер демонстрирует летальность дуговых ламп до B.брюшной тиф Hockberger (2002)
1903 УФ-спектр от 226 до 328 нм оказался бактерицидным Барнард и Морган (1903)
1904 Первая кварцевая лампа для УФ-излучения )
1906 УФ, впервые использованный для дезинфекции питьевой воды фон Реклингхаузен (1914)
1909 Первые европейские приложения для обеззараживания воды УФ-излучением AWWA (1971) обнаружено, что более короткие длины волн УФ не проникают Анри (1912)
1916 Первые применения УФ в США для дезинфекции воды AWWA (1971)
1921 УФ фотореактивность с первый продемонстрировано Ренц (1921)
1925 Впервые продемонстрировано УФ-фотодеградация материалов 90 485

Luckiesh and Taylor (1925)
1927 Опубликован первый спектр эритемного действия Hausser and Vahle (1927)
1927 Бактерицидное действие UV62 Bedford 19295 905 )
1928 Вирулицидное действие ультрафиолета, впервые количественно оценено научно Риверс энд Гейтс (1928)
1929 Фунгицидное действие ультрафиолета, впервые количественно определено научно Fulton и Коултон и Коултон УФ бактерицидный пик при 253.7 нм, изолированные Ehrismann and Noethling (1932)
1932 Эритемный спектр УФ, впервые количественно определен Coblentz et al. (1932)
1936 Первая потолочная УФ-система в больницах Wells and Wells (1936), Hart (1936)
1936 Явления УФ фотореактивации впервые выявлены Prat (1936) 1937 Первое применение в верхних слоях воздуха в школах Wells (1938)
1938 Первая люминесцентная газоразрядная УФ лампа Whitby and Scheible (2004)
1940 УФ впервые применили к воздуху системы Rentschler and Nagy (1940)
1942 Первые рекомендации по выбору размеров для УФ-дезинфекции воздуха Luckiesh and Holladay (1942)
1942 Верхний и нижний УФ-62 барраки Well
1950 Методы определения размеров первого каталога Баттольф и Хейнс (1950)
1954 Первое применение кондиционера Harstad et al. (1954)
1954 Ошибочное британское исследование пришло к выводу, что УФ неэффективен MRC (1954)
1957 Райли доказывает эффективность УФ для борьбы с туберкулезом Riley et al. (1957)
1974 Первые системы контроля роста микробов Grun and Pitz (1974)
1985 УФ-системы охлаждающего змеевика, используемые на европейских пивоварнях Philips (1985)
CDC подтверждает эффективность УФ-излучения для борьбы с туберкулезом CDC (2005)
1996 Первая система облучения охлаждающего змеевика в США Scheir (2000)
1997 Первые УФ-светодиоды (светодиоды) при 265 нм Гуха и Боярчук (1998)
1999 ВОЗ рекомендует UVGI для борьбы с туберкулезом ВОЗ (1999)
2000 Армия США рекомендует UVGI для изоляции болезней USACE (2000)
2003 CDC официально санкционирует использование UVGI в больницах CDC (2003)
2003 FEM UVGI санкционирует как вариант биозащиты зданий FEMA (2003)
2003 Первая внутриканальная система UVGI, продемонстрировавшая снижение симптомов болезни и загрязнения воздуха Menzies et al.(2003)
2003 ASHRAE формирует комитет по УФ-обработке воздуха и поверхности Martin et al. (2008)
2005 Федеральное правительство определяет УФ для дезинфекции охлаждающего змеевика GSA (2003)
2007 Доказано, что потолочная УФ-система снижает SSI в операционных Ritter et al. (2007)

Согласно фон Реклингхаузену (1914), первое использование ультрафиолетового излучения для дезинфекции питьевой воды произошло в 1906 году.В 1909-1910 годах первая система обеззараживания воды была запущена в Марселе, Франция. Первое свидетельство того, что УФ-свет оказывает фотохимическое воздействие на микроорганизмы, было представлено Анри (1914). В 1916 году первая американская система обеззараживания воды была испытана в Хендерсоне, штат Кентукки (AWWA, 1971). В 1921 году Ренц продемонстрировал, что УФ может вызывать фотореакции с оксидом титана (TiO2). Hausser и Vahle (1927) представили первый подробный спектр действия эритемы. Бедфорд (1927) и Гейтс (1929) были одними из первых, кто установил дозы УФ-излучения, необходимые для бактериальной дезинфекции.Дозировки для дезинфекции грибков были впервые опубликованы Фултоном и Кобленцем (1929). Первые исследования УФ-облучения вирусов, по-видимому, были опубликованы Риверсом и Гейтсом (1928) и Штурмом и др. (1932). Coblentz et al. (1932) уточнил спектр эритемного действия.

В 1930-е годы были впервые применены УФ-системы в больницах для борьбы с инфекциями (Wells and Wells 1936, Hart and Sanger 1939, Robertson et al. 1939, Kraissl et al. 1940, Overholt and Betts 1940). Первые УФ-системы в верхней комнате, по-видимому, были установлены Уэллсом (1938).В 1940-х годах были опубликованы первый подробный проект и анализ УФ-дезинфекции воздуха вместе с основными руководящими принципами по применению УФ-излучения в системах вентиляции (Rentschler and Nagy 1940, Sharp 1940, Wells 1940, Buchbinder and Phelps 1941, DelMundo and McKhann 1941, Luckiesh and Holladay 1942, Sommer and Stokes 1942, Henle et al.1942, Hollaender 1943). Первые попытки использовать УФ-системы для борьбы с респираторными инфекциями в школах и бараках были предприняты вскоре после этого (Wells et al. 1942, Wells 1943, Schneiter et al.1944 г., Уиллер и др. 1945 г., Перкинс и др. 1947, Хиггонс и Хайд 1947). Было предпринято несколько первых попыток разработать строгие методы определения размеров и технические инструкции для УФ-приложений (Luckiesh and Holladay 1942a, Luckiesh 1945, 1946).

К 1950-м годам было четко установлено, что УФ-облучение эффективно для дезинфекции как воздуха, так и поверхностей, и были разработаны новые инженерные приложения. В каталогах General Electric подробно описывается широкий спектр УФ-приложений, включая различные методы установки УФ-ламп внутри воздуховодов и кондиционеров (Buttolph and Haynes 1950, GE 1950).Harstad et al. (1954) продемонстрировали, что установка УФ-ламп в кондиционерах снизит загрязнение воздуха, и что микроорганизмы накапливаются и накапливаются на внутренних поверхностях AHU. Рост бактерий на охлаждающих змеевиках был признан потенциальной проблемой для здоровья еще в 1958 году (Walter 1969). Первое доказательство того, что оборудование для охлаждения воздуха может вызывать респираторные инфекции, было представлено Андерсоном (1959), когда было обнаружено, что устройство для охлаждения воздуха заражено размножением микробов.Та же проблема возникла в больницах примерно с 1944 года, но возможность роста бактерий на охлаждающих змеевиках не была окончательно продемонстрирована до 1964 года (Cole et al. 1964). Рост микробов на другом оборудовании, таком как фильтры и пыль внутри каналов кондиционирования воздуха, был впервые продемонстрирован Уайтом (1968). Распространение микробов через вентиляционные системы и их способность вызывать респираторные инфекции получили широкое признание в конце 1960-х годов как в медицинских, так и в инженерных профессиях (Banaszak et al.1970, Schicht 1972, Zeterberg 1973). В то время стало понятно, что рост микробов может происходить везде, где воздух соприкасается с влагой (Gunderman 1980, Ager and Tickner 1983, Spendlove and Fannin 1983). Первая система UVGI, разработанная специально для дезинфекции поверхностей оборудования для обработки воздуха, включая увлажнители воды и фильтры, была подробно описана Груном и Питцем (1974). Лучано (1977) подробно описал множество применений UVGI, в том числе больниц, в которых УФ-лампы специально устанавливаются перед охлаждающими змеевиками и после фильтров.В 1985 году Филлипс опубликовал руководство по дизайну, в котором было представлено первое исчерпывающее описание применения УФ-ламп для контроля роста микробов (Philips 1985). В руководстве по проектированию Philips упоминаются европейские установки, которые уже работали до 1985 года. В январе 1996 года первая система UVGI в США, предназначенная для контроля роста охлаждающих змеевиков, была установлена ​​государственной службой Омахи (PSO) в Талсе (Scheir 2000). . В том же году Central and Southwest Corporation последовала примеру PSO и начала реализовывать значительную экономию энергии (ELP 2000).

Хотя системы UVGI использовались в больницах с 1936 года, но только в 2003 году, примерно шестьдесят лет спустя, CDC официально признал, что УФ-системы эффективны и могут использоваться в больницах с одной оговоркой — УФ-верхняя комната и системы воздуховодов могут использоваться только в дополнение к другим системам очистки воздуха (CDC 2003). В 1957 году Райли и его сотрудники успешно завершили демонстрацию того, как УФ-дезинфекция воздуха может контролировать распространение туберкулеза (ТБ) в больничных палатах (Riley et al.1957). Только в 1994 году, более сорока лет спустя, Центры по контролю за заболеваниями (CDC) признали, что УФ-излучение может быть эффективным для борьбы с туберкулезом в ответ на растущую во всем мире эпидемию туберкулеза, которая не поддавалась контролю с помощью традиционных методов (CDC 2005). . В 2003 году влиятельное Американское общество инженеров по отоплению, охлаждению и кондиционированию воздуха (ASHRAE) сформировало рабочую группу по УФ-обработке воздуха и обработки поверхности (TG2.UVAS), которая в 2007 году стала постоянным Техническим комитетом TC 2.9 (Martin et al.2008 г.).

Единицы и терминология

В УФ-дезинфекции использовались различные единицы измерения освещенности и дозы УФ-излучения. Энергия излучения, иногда называемая интенсивностью, имеет предпочтительные единицы Вт / м 2 при дезинфекции воздуха и поверхностей. Доза УФ-излучения (также известная как мощность потока) имеет предпочтительные единицы Дж / м 2 при дезинфекции воздуха и поверхностей. Коэффициенты пересчета для различных единиц, которые использовались в литературе, представлены в таблице. Использование Table очень просто, как показано в следующих примерах.Обратите внимание, что джоуль (Дж) эквивалентен ватт-секунде (Вт-с), а Вт / м 2 равен мкВт / мм 2

Таблица 1.1

Первичные полосы ультрафиолетового излучения

Таблица 1.3

Единицы энергетической освещенности и УФ-дозы

Пример 1:

Преобразование энергетической освещенности 144 мВт / см 2 (милливатты на квадратный сантиметр) в единицы Вт / м 2 (ватты на квадратный метр)

Ответ:

Считайте вниз от первого столбца, мВт / см 2 до серого прямоугольника, а затем до второго столбца, Вт / м 2 , где коэффициент преобразования равен 10.Умножаем 144 10 = 1440 Вт / м 2 .

Пример 2:

Преобразуйте дозу УФ-излучения 33 мкДж / см 2 (микроджоули на квадратный сантиметр) в единицы Дж / м 2 (Джоули на квадратный метр).

Ответ:

Считайте из четвертого столбца, мкДж / см 2 , до серого прямоугольника, а затем до второго столбца, Дж / м 2 , где коэффициент преобразования равен 0,01. Умножаем 33 0,01 = 0,33 Дж / м 2 .

Термин «УФС» сегодня часто используется для обозначения всех применений бактерицидного УФ-излучения, но правильное определение этого термина — это, конечно, диапазон длин волн УФ-излучения между 200 и 280 нм, и это строгое определение используется повсюду. эта книга.Например, УФ-лампа может относиться к любой лампе, которая излучает УФ-свет с любой длиной волны, включая лампы черного света и лампы для загара (хотя в этой книге рассматриваются только бактерицидные УФ-лампы). Термин «лампа UVGI» конкретно относится к лампам, которые излучают длины волн УФ в актиническом «широкополосном» диапазоне от 200 до 320 нм (исключая черный свет и солнечные лампы). Термин «УФ-лампа» конкретно относится к лампам, которые излучают длины волн УФ-С в «узкополосном» диапазоне 200–280 нм. В текущем и общепринятом использовании термин «UVC» часто подразумевает, что полоса UVC является единственным фактором, способствующим бактерицидному эффекту, но это значение часто неверно, и такое использование избегается в данном тексте — везде, где в данном документе используется термин «UVC». это относится конкретно к диапазону УФС излучения.Другие термины, такие как UVR (ультрафиолетовое излучение) и GUV (бактерицидный ультрафиолет), также использовались в прошлом в бактерицидном контексте.

Термин «бактерицидный» означает, что эти УФ-системы уничтожают, убивают или инактивируют микроорганизмы, такие как вирусы, бактерии и грибки. Технически вирусы — это молекулы, поэтому принято называть вирусы инактивированными, а не убитыми. Во всех случаях бактерицидное действие означает дезинфекцию, а дезинфекция подразумевает сокращение микробной популяции, будь то в воздухе, воде или на поверхностях.Популяции микробов измеряются в КОЕ или колониеобразующих единицах (т.е. выращиваются на чашках Петри). В случае вирусов подходящей мерой вирусных популяций является БОЕ или бляшкообразующие единицы. Однако, где бы в этой книге ни использовался термин «КОЕ», он будет применяться как к вирусам, так и к бактериям (для удобства), с пониманием читателя, что правильная терминология для вирусов — это БОЕ, независимо от того, используется ли он. или не. Плотность микробов в воздухе всегда указывается в КОЕ / м 3 (хотя в некоторых более старых текстах используется КОЕ / фут 3 ).Плотность микробов на поверхности дается в КОЕ / см 2 (в старых текстах это КОЕ / дюйм 2 ). Следовательно, дезинфекция воздуха будет измеряться с точки зрения снижения плотности в воздухе в КОЕ / м 3 , а дезинфекция поверхностей измеряется с точки зрения снижения КОЕ / см 2 .

Стерилизация — это родственный термин, означающий полное уничтожение микробной популяции. Однако действительно трудно продемонстрировать полное уничтожение микробной популяции, поскольку любой микробиологический тест будет иметь определенный предел точности.Для практического удобства при дезинфекции воздуха и для аналитических целей «математическая стерилизация» может представлять собой степень дезинфекции, равную шести логарифмам или выше, когда нет выживших. Это определение может не применяться к ультрафиолетовой дезинфекции воды, но при дезинфекции воздуха было бы крайне необычно иметь воздушные плотности порядка миллиона КОЕ / м 3 , а типичные воздушные плотности находятся в диапазоне нескольких тысяч КОЕ / м. / м 3 . Очевидно, что при плотности в несколько тысяч КОЕ / м 3 уменьшение на три или четыре логарифма (1000–10 000 КОЕ / м 3 ) приведет к стерилизации, а уменьшение на шесть логарифмов является адекватным определением стерилизации для воздуха. средства дезинфекции.Дезинфекция поверхностей — это совсем другое дело, и плотности поверхностного загрязнения не совсем понятны и не определены, поэтому «математическое определение» стерилизации для дезинфекции поверхностей в этом тексте не определено.

Дезинфекция воздуха и воды

Дизайн УФ-систем для обеззараживания воды отличается от систем обеззараживания воздуха и поверхностей, и поэтому совокупные знания, накопленные в водной промышленности, имеют ограниченное прямое применение для обеззараживания воздуха и поверхностей.Ультрафиолетовые лучи ослабляются в воде, и этот процесс не имеет аналогов при обеззараживании воздуха, даже если он насыщен. Ослабление УФ-излучения в воде происходит в пределах примерно 15 см, и это требует как более высоких уровней мощности УФ-излучения, так и плотно упакованных массивов УФ-ламп. Оценки доз ультрафиолетового излучения, необходимых для обеззараживания воды, примерно в десять раз выше, чем те, которые необходимы для обеззараживания воздуха, и эта разница искажает любые попытки использовать методы определения размеров УФ-систем для воды при разработке систем обеззараживания воздуха.Кроме того, ряд конкретных микроорганизмов, вызывающих озабоченность в водном хозяйстве, значительно отличается от микроорганизмов, обнаруженных в воздухе, и поэтому константы скорости УФ-излучения на водной основе используются только в том случае, если микробный агент переносится как по воздуху, так и через воду (например, Legionella ) или также поверхностные и для теоретического анализа. Некоторое совпадение в области применения УФ-излучения на воде и в воздухе также существует в области патогенов пищевого происхождения, где определенные патогены пищевого происхождения могут переноситься по воздуху и где они могут существовать в виде поверхностного загрязнения, поддающегося дезинфекции УФ-излучением.

Хотя доза УФ-облучения в воздухе является простой функцией воздушного потока и времени воздействия, а поле УФ-излучения в воздухе определить несложно, восприимчивость переносимых по воздуху микробов является сложной функцией относительной влажности и реакции, зависящей от вида. . Часто считалось, что чувствительность микробов к ультрафиолетовому излучению в воздухе при 100% относительной влажности (RH) должна соответствовать их восприимчивости в воде, но это оказывается чрезмерно упрощенным, и можно только сказать, что чувствительность к ультрафиолету при высокой относительной влажности приближается к в воде.В результате этих различных различий между УФ-дезинфекцией на водной основе и УФ-дезинфекцией воздуха и поверхности, исследования первой из них дают ограниченные преимущества для исследований в области воздушной дезинфекции, и тема дезинфекции воды не рассматривается в этой книге, за исключением тех случаев, когда он оказывает определенное влияние на дезинфекцию воздуха и поверхностей и в их общих теоретических аспектах. База данных констант скорости ультрафиолета в Приложениях охватывает все известные ультрафиолетовые исследования микробной дезинфекции, включая исследования патогенов и аллергенов, передающихся через воду и продукты питания.Существует множество подробных текстов по теме обеззараживания воды УФ-излучением (во много раз больше, чем об УФ-обеззараживании в воздухе), и читатели, желающие познакомиться с УФ-технологией и методами, должны напрямую обращаться к этим текстам (см., Например, Bolton и хлопок 2008 г.). Однако представленная здесь информация о теории УФ-излучения и константах скорости УФ-инактивации может представлять немалый интерес для тех, кто занимается дезинфекцией воды.

Дезинфекция поверхностей

Дезинфекция поверхностей означает либо дезинфекцию внутренних поверхностей зданий и вентиляционных систем, либо дезинфекцию поверхностей оборудования и материалов, таких как стоматологическое и медицинское оборудование.Как и водные системы, системы УФ-дезинфекции поверхностей имеют долгую историю успеха. Однако конструкция и работа поверхностных УФ-систем имеют гораздо больше общего с дезинфекцией воздуха, чем водные системы. Загрязненные поверхности часто являются источником переносимых по воздуху микробов, а переносимые по воздуху микробы часто вызывают поверхностное загрязнение. Взаимодействие процессов загрязнения воздуха и поверхности делает вопрос дезинфекции воздуха и поверхности практически неотделимым для некоторых приложений, например, в сфере здравоохранения и пищевой промышленности.Дезинфекция поверхностей охлаждающих змеевиков, например, удаляет споры плесени со змеевиков и предотвращает последующее образование аэрозолей, тем самым помогая поддерживать чистоту воздуха. УФ-системы для дезинфекции змеевиков также дезинфицируют воздух напрямую, поэтому такие системы часто выполняют одновременно функции дезинфекции воздуха и поверхности.

Одно из основных различий между дезинфекцией воздуха и поверхностей с помощью УФ-излучения заключается в том, что соответствующие константы интенсивности УФ-излучения различаются при этих двух типах воздействия — константы скорости распространения по воздуху обычно выше в воздухе при нормальной влажности.То есть микробы более уязвимы в воздухе, тогда как микробы на поверхности, по-видимому, обладают определенной степенью внутренней защиты. Хотя этот вопрос еще предстоит решить в ходе будущих исследований, имеющаяся база данных констант скорости УФ-излучения для микробов на поверхности полезна в качестве консервативной оценки констант скорости переноса по воздуху, а также констант скорости на основе воды, когда исследования констант скорости переноса по воздуху не проводятся.

Поскольку микробы, переносимые по воздуху, часто переносятся с поверхности, и наоборот, и по различным причинам, упомянутым выше, эти темы, а именно дезинфекция воздуха и поверхности ультрафиолетовым излучением, часто пересекаются.Фактически, дезинфекция поверхностей имеет гораздо больше общего с дезинфекцией воздуха, чем с дезинфекцией воды, и часто эти две технологии взаимосвязаны. Поэтому целесообразно обрабатывать воздух и поверхность УФ-дезинфекцией вместе, как в этом тексте, и следует понимать, что большинство систем дезинфекции воздуха будут одновременно выполнять некоторую функцию дезинфекции поверхности, намеренно или иным образом. Точно так же многие УФ-системы для дезинфекции поверхностей (например, системы нижних комнат, хирургические системы над головой) также будут выполнять некоторые функции обеззараживания воздуха в силу своей конструкции или иным образом.

Дезинфекция воздуха

Воздушные патогены и аллергены представляют гораздо большую угрозу для здоровья человека, чем водные микробы, с точки зрения общей заболеваемости и чистых затрат на здравоохранение, но систем обеззараживания воздуха гораздо меньше, чем систем обеззараживания воды , а по воздушной УФ-дезинфекции доступно гораздо меньше информации, чем по водным системам. Успех UVGI для дезинфекции воздуха также подвергался многочисленным интерпретациям и даже полностью отвергался, несмотря на неоднократные демонстрации его эффективности.После десятилетий исследований область аэрозольной УФ-дезинфекции по-прежнему полна неизвестных и заблуждений, а ее применения гораздо менее многочисленны, чем следовало бы. В последующих главах делается попытка консолидировать всю базу знаний, относящуюся к UVGI, и продемонстрировать, как тщательное применение правильных принципов проектирования и новых подходов может привести к результатам, столь же предсказуемым и надежным, как и у систем обеззараживания воды. Новые вычислительные методы в сочетании с обширным недавним опытом проектирования и установки и текущими исследованиями теперь позволяют устанавливать системы с довольно высокой степенью уверенности в их производительности.

Методы демонстрации производительности на месте, наряду с различными руководящими принципами и стандартами для таких установок, превратили область UVGI из неопределенного искусства в почти полную науку. Ключевым отсутствующим компонентом в настоящее время является убедительное доказательство того, что дезинфекция воздуха UVGI снижает заболеваемость воздушно-капельным путем, что потребует годы сбора данных, когда будет достаточно и адекватных установок, доступных для мониторинга. Некоторые текущие исследования изучают это направление исследований, и предварительные результаты показывают, что UVGI, как предсказывают теория и анализ, эффективен в уменьшении как симптомов, так и частоты различных заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем.По мере увеличения количества приложений эта база данных должна в конечном итоге предоставить надежные доказательства, которые могут привести к полному экономическому обоснованию установки UVGI в медицинских учреждениях, школах и других типах зданий. Широкое распространение ультрафиолетового излучения для дезинфекции воздуха в зданиях, вероятно, принесет будущим поколениям экономические дивиденды и дивиденды для здоровья.

Дезинфекция воздуха Полевые исследования

УФ-излучение для дезинфекции воздуха началось около восьмидесяти лет назад, и тем не менее его применение в современных зданиях далеко не так широко.Хотя девять из десяти полевых исследований UVGI дали положительные результаты, те немногие, которые не оправдали больших ожиданий, чаще всего приводились как доказательство неудач. В 1936 году Харт использовал ряд ультрафиолетовых ламп для стерилизации приточного воздуха в хирургической операционной (Hart 1937). В 1937 году первая установка УФ-ламп в школьной вентиляционной системе резко снизила заболеваемость корью, и последующие применения имели аналогичный успех (Riley, 1972). В конце 1940-х годов Уэллс и его сотрудники установили УФ-системы во всех общинах и продемонстрировали снижение скорости передачи болезней в общинах (Wells and Holla, 1950).В конце 1950-х годов эксперименты на морских свинках продемонстрировали устранение туберкулезных (ТБ) бацилл из отработанного воздуха больничных палат (Riley and O’Grady 1961). За этими ранними приложениями последовало множество проектов, которые были скорее имитационными, чем спроектированными. Результатом стала смесь успехов и неудач. В одном плохо спланированном исследовании MRC исследователи не смогли достичь статистически значимого снижения заболеваемости и ошибочно пришли к выводу, что ультрафиолетовое излучение не способствовало снижению заболеваемости (MRC 1954).Исследование MRC серьезно затруднило дальнейшее развитие УФ-технологий в 1950-х и 1960-х годах, и в результате того, что это исследование широко цитируется (и несмотря на его широкую критику со стороны экспертов), почти остановило дальнейшее развитие. внедрения и замедленные исследования (Riley 1980, 1980a). Этот спад УФ-индустрии нельзя измерить с точки зрения потерянных разработок, потерянных полевых данных, потерянных затрат на здравоохранение или потерянных жизней, но есть те, кто сегодня продолжает настаивать на том, что УФГИ — это непроверенная технология «змеиного масла».Мы должны убедить их в обратном.

В результате явно несовершенного отчета об успехе UVGI широко игнорировалось в различных руководствах и стандартах, особенно в медицинских учреждениях, где к нему следовало обращаться напрямую. Без санкции высших органов здравоохранения UVGI томилась и в значительной степени игнорировалась в медицинских учреждениях, где она принесла бы наибольшую пользу. Эта изменчивая история отражена в различных руководствах, в которых не упоминается использование UVGI.Лишь несколько избранных из наиболее хорошо информированных больниц и исследователей нашли время, чтобы изучить и внедрить УФ-технологии, часто с большим успехом (Goldner and Allen 1973, Goldner et al. 1980, Nardell 1988). Недавно новое исследование подтвердило то, что всегда говорилось в первоначальных исследованиях, что УФ-технология может иметь большое влияние на сокращение различных типов внутрибольничных и внебольничных инфекций (Menzies et al.2003, Ritter et al.2007, Escombe et al. др. 2009).

Патогены и аллергены

Патогены — это любые микробы, вызывающие инфекции у людей и животных, в том числе вирусы, бактерии и грибки.Некоторые более крупные микробы, такие как простейшие, также могут вызывать инфекции, но эти паразиты, как правило, слишком велики, чтобы переноситься по воздуху. Поэтому в этой книге в первую очередь рассматриваются только вирусы, бактерии и грибки, включая споры бактерий и споры грибов, как загрязнители воздуха и поверхности. Насекомые, такие как пылевые клещи, не уничтожаются УФ-излучением, и в этом тексте они не рассматриваются. Все вирусы, перечисленные в Приложении B, являются патогенами или бактериофагами, как и большинство бактерий в Приложении A и некоторые грибы в Приложении C.

Аллергены — это микробы, биологические продукты и соединения, которые вызывают аллергические реакции у атопических или восприимчивых людей. Соединения и биологические продукты (например, летучие органические соединения и перхоть домашних животных), как правило, не очень восприимчивы к ультрафиолетовому разрушению (хотя они легко удаляются фильтрами), поэтому в этой книге они специально не рассматриваются. Аллергены, о которых идет речь в этой книге, строго относятся к грибам и бактериям — вирусных аллергенов нет. Некоторые возбудители также могут быть аллергенами. Почти все грибы, перечисленные в Приложении C, являются аллергенами, и многие из них также являются патогенами.Почти все бактерии, перечисленные в Приложении А, являются патогенами, а некоторые из них также являются аллергенами.

Некоторые бактерии и практически все грибы могут образовывать споры. В нормальном состоянии или состоянии роста (называемом «вегетативным») бактерии существуют как клетки, а грибы существуют как клетки или дрожжи. Спорообразующие (спорообразующие) бактерии и грибы образуют споры при правильных условиях (обычно неблагоприятных). Споры представляют собой спящие формы, обычно более компактные, чем клеточные, круглой или яйцевидной формы, и могут противостоять теплу, обезвоживанию и холоду намного лучше, чем клеточная (или вегетативная) форма.Они также устойчивы к УФ-излучению. Поскольку они обычно меньше исходных клеток, споры имеют тенденцию легко переноситься по воздуху и могут переноситься на улицу. Спорам требуется только тепло, влага и тень, чтобы прорасти или вернуться в вегетативное состояние, а для роста и размножения требуются только питательные вещества.

Некоторые бактерии и грибы вырабатывают токсины, включая эндотоксины и экзотоксины. УФ оказывает ограниченное влияние на токсины, но длительное воздействие может снизить концентрацию токсинов (Anderson et al.2003, Астхана и Тувсон 1992, Шанта и Шриниваса 1977). Обычно в неблагоприятных условиях микробы должны вырабатывать токсины в высоких уровнях роста, а поскольку УФ-излучение уничтожает бактерии и грибы, продуцирующие токсины, маловероятно, что после УФ-дезинфекции останется достаточный уровень токсинов, чтобы создать опасность отравления.

Текущие исследования

Несмотря на обширные результаты исследований УФГИ по дезинфекции воздуха и поверхностей, еще предстоит проделать большую работу. Недавние исследования продемонстрировали эффективность UVGI и намекнули на возможное сокращение заболеваний, передаваемых воздушно-капельным путем, в коммерческих офисных зданиях.Способность UVGI сокращать расходы на техническое обслуживание охлаждающего змеевика хорошо известна. Также необходимы дополнительные исследования для определения констант скорости УФ-излучения для более широкого круга патогенов. С этой целью было предоставлено руководство по лабораторным испытаниям (включенное в эту книгу), которое должно облегчить получение воспроизводимых результатов испытаний, что не всегда имело место в прошлом.

В дополнение к предоставлению самой последней информации из текущей литературы по UVGI, этот текст также предоставляет результаты авторского исследования восприимчивости к ультрафиолетовому излучению, включая модель воздействия относительной влажности в воздухе и геномную модель для прогнозирования восприимчивость к ультрафиолетовому излучению для вирусов (рассматривается в 10.1007 / 978-3-642-01999-9_2и 10.1007 / 978-3-642-01999-9_4). Также здесь впервые представлены исследования автора по моделированию импульсного УФ-излучения.

Возможно, наиболее важные области применения UVGI сегодня находятся в отрасли здравоохранения, которая остро нуждается в решениях проблемы внутрибольничных (нозокомиальных) инфекций. Такие инфекции в настоящее время распространились вовне и стали инфекциями, приобретаемыми в сообществе, и вполне вероятно, что эта картина будет повторяться с новыми и появляющимися патогенами и устойчивыми к лекарствам штаммами, пока более эффективное решение не будет реализовано в широком масштабе.УФГИ может сыграть важную роль в ограничении распространения внутрибольничных инфекций, но больше всего необходимы не новые технологии (соответствующие технологии существуют в настоящее время), а поощрение и поддержка в виде руководящих принципов и рекомендаций по УФ-технологии от тех органов, которые до недавнего времени был несколько сдержанным и уклончивым по этому поводу.

UVGI и будущее борьбы с болезнями

UVGI имеет определенное будущее в борьбе с инфекционными заболеваниями, и при широкомасштабном применении он может стать ключом к борьбе с эпидемиями и пандемиями.Никакая другая современная технология не обладает возможностями, адаптируемостью и благоприятными экономическими показателями, чтобы сделать ее жизнеспособной для чрезвычайно широкого круга приложений по борьбе с болезнями. Он уже широко и эффективно используется в системах водоснабжения и дезинфекции поверхностей. В сочетании с фильтрацией воздуха это наиболее эффективная и экономичная технология обеззараживания воздуха. От приложений здравоохранения до школ и жилых помещений UVGI обещает однажды внести значительный вклад в искоренение многих заразных болезней.Появление микробов с множественной лекарственной устойчивостью, таких как MRSA и XTB, и новых патогенов, таких как SARS и птичий грипп, вероятно, будет стимулировать более широкое использование систем UVGI во все более широком числе приложений. Вклад УФ-технологий в борьбу с эпидемиями поддается анализу с помощью статистических моделей эпидемиологии, которые продемонстрировали потенциал широкого использования УФ-систем для теоретической остановки эпидемий инфекционных заболеваний, передающихся по воздуху (Ковальски, 2006). Возможно, продолжающиеся исследования и разработки в конечном итоге приведут к тому, что UVGI станет стандартным компонентом систем вентиляции во всех помещениях, и этому веку воздушных эпидемий придет конец.

Ссылки

  • Ager BP., Tickner JA. Контроль микробиологических опасностей, связанных с системами кондиционирования и вентиляции. Ann Occup Hyg. 1983. 27 (4): 341–358. DOI: 10.1093 / annhyg / 27.4.341. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Андерсон К. Pseudomonas pyocyanea , рассыпанный из аппарата воздушного охлаждения. Med J Aus. 1959; 1: 529. [PubMed] [Google Scholar]
  • Андерсон В.Б., Хак П.М., Диксон Д.Г., Мэйфилд С.И. Инактивация эндотоксинов в воде с помощью УФ-ламп среднего давления.Appl Environ Microbiol. 2003. 69 (5): 3002–3004. DOI: 10.1128 / AEM.69.5.3002-3004.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Asthana A., Tuveson RW. Воздействие ультрафиолета и фототоксинов на отдельных грибковых возбудителей цитрусовых. Int J Plant Sci. 1992. 153 (3): 442–452. DOI: 10,1086 / 297050. [CrossRef] [Google Scholar]
  • AWWA. 1971. Качество воды и очистка. Американская ассоциация водопроводных сооружений I, редактор. Нью-Йорк: Макгроу-Хилл.
  • Banaszak EF., Thiede WH., Fink JN.Гиперчувствительный пневмонит из-за загрязнения кондиционера. New England J Med. 1970. 283 (6): 271–276. DOI: 10.1056 / NEJM197008062830601. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Барнард Дж., Морган Х. Физические факторы в фототерапии. Брит Мед Дж. 1903; 2: 1269–1271. DOI: 10.1136 / bmj.2.2237.1269. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Bedford THB. Природа действия ультрафиолета на микроорганизмы. Brit J Exp Path. 1927; 8: 437–441. [Google Scholar]
  • Bolton JR., Хлопок CA. Справочник ультрафиолетовой дезинфекции. Денвер, Колорадо: Американская ассоциация водопроводных сооружений; 2008. [Google Scholar]
  • Buchbinder L., Phelps EB. Исследования микроорганизмов в смоделированных комнатных средах. II. Выживаемость стрептококков в темноте. J Bact. 1941; 42: 345–351. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Баттольф Л.Дж., Хейнс Х. Ультрафиолетовая очистка воздуха. Кливленд, Огайо: General Electric. Отчет № ЛД-11; 1950. [Google Scholar]
  • CDC. 2003 г.Руководство по контролю экологических инфекций в медицинских учреждениях. MMWR 52 (RR-10). [PubMed]
  • CDC. 2005. Руководство по профилактике передачи Mycobacterium tuberculosis в медицинских учреждениях. В: CDC, редактор. Федеральный регистр. Вашингтон: Правительство США. Типография.
  • CIE. 2003. Ультрафиолетовая дезинфекция воздуха. Вена, Австрия: Международная комиссия по освещению. Отчет № CIE 155: 2003.
  • Coblentz WW., Stair R., Hogue JM. Спектральная эритемическая реакция незагорелой кожи человека на ультрафиолетовое излучение.J Res Nat Bur Stand. 1932; 8: 541–547. [Google Scholar]
  • Коул В.Р., Бернард Х.Р., Данн Б. Рост бактерий на змеевиках кондиционирования воздуха прямого расширения. Операция. 1964. 55 (3): 436–439. [PubMed] [Google Scholar]
  • DelMundo F., McKhann CF. Влияние ультрафиолетового облучения воздуха на заболеваемость инфекциями в детской больнице. Am J Dis Child. 1941; 61: 213–225. [Google Scholar]
  • Даунс А., Блант Т.П. Исследование влияния света на бактерии и другие организмы. Proc Roy Soc London.1877; 26: 488–500. DOI: 10.1098 / rspl.1877.0068. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ehrismann O., Noethling W. Uber die bactericide wirkung monochromatischen lichtes. Ztschr Hyg Infektionskr. 1932; 113: 597–628. DOI: 10.1007 / BF02177985. [CrossRef] [Google Scholar]
  • ELP. 2000. Как лампы UV-C сэкономили одной компании 58 000 долларов. Электроосвещение и питание 78 (2).
  • Эскомб А., Мур Д., Гилман Р., Навинкопа М., Тикона Э., Митчелл Б., Ноукс К., Мартинес К., Шин П., Рамирес Ротерс.Ультрафиолетовое излучение в верхних комнатах и ​​отрицательная ионизация воздуха для предотвращения передачи туберкулеза. PLoS Med. 2009. 6 (3): 312–322. DOI: 10.1371 / journal.pmed.1000043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • FEMA. 2003. Справочное руководство по снижению потенциальных террористических атак на здания: Федеральное агентство по чрезвычайным ситуациям. Отчет № FEMA 426.
  • Finsen N. Die Resultate der Behandlung des lupus vulgaris durch knzentrierte chemische Lichtstrahlen. Allg Wien Med Z.1900; A5: 60–65. [Google Scholar]
  • Физо Х., Фуко Л. Наблюдения, касающиеся действий в области красных пятен на дегуеринских бляшках. C R Habd Seances Acad Sci. 1843; 23: 679–682. [Google Scholar]
  • Fulton HR., Coblentz WW. Фунгицидное действие ультрафиолета. J Agric Res. 1929; 38: 159. [Google Scholar]
  • Gates FL. Исследование бактерицидного действия ультрафиолета. J Gen Physiol. 1929; 13: 231–260. DOI: 10.1085 / jgp.13.2.231. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • GE.1950. Бактерицидные лампы и их применение. США: General Electric. Отчет № SMA TAB: VIII-B.
  • Гольднер Дж. Л., Аллен БЛ. Ультрафиолет в ортопедических операционных в Университете Дьюка. Clin Ortho. 1973; 96: 195–205. DOI: 10.1097 / 00003086-197310000-00028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Goldner JL., Moggio M., Beissinger SF., McCollum DE. Ультрафиолетовое излучение для борьбы с переносящимися по воздуху бактериями в операционной. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук.Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 271–284. [PubMed] [Google Scholar]
  • Grun L., Pitz N. U.V. радиаторы в увлажняющих установках и воздушных каналах систем кондиционирования в больницах. Zbl Bakt Hyg. 1974; B159: 50–60. [PubMed] [Google Scholar]
  • GSA. 2003. Стандарты обслуживания общественных зданий. Вашингтон: Служба общественных зданий Управления общих служб.
  • Гуха С., Боярчук Н. Ультрафиолетовые и фиолетовые светодиоды на основе GaN на кремнии. Appl Phys Lett.1998; 72: 415. DOI: 10,1063 / 1,120775. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Гундерман К.О. Распространение микроорганизмов через системы кондиционирования воздуха, особенно в больницах. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение. Бостон: Нью-Йоркская академия наук; 1980. С. 209–217. [PubMed] [Google Scholar]
  • Harstad JB., Decker HM., Wedum AG. Использование ультрафиолетового излучения в комнатном кондиционере для удаления бактерий. Am Ind Hyg Assoc J. 1954; 2: 148–151. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Hart J.Стерилизация воздуха в операционной специальной бактерицидной лучистой энергией. J Thoracic Surg. 1936; 6: 45–81. [Google Scholar]
  • Харт Д. Инфекции в операционной: предварительный отчет. Arch Surg. 1937; 34: 874–896. [Google Scholar]
  • Харт Д., Сэнгер П. У. Влияние бактерицидного ультрафиолетового излучения на заживление ран из специального отделения: экспериментальное исследование. Arch Surg. 1939. 38 (5): 797–815. [Google Scholar]
  • Hausser K., Vahle W. Sonnenbrand und sonnenbraunung. В: Райтер Т., Габор Д., редакторы. Zellteilung und Strahlung. Берлин: Springer; 1927. С. 101–120. [Google Scholar]
  • Henle W., Sommer HE., Stokes J. Исследования воздушно-капельной инфекции в больничной палате: II. Влияние ультрафиолетового излучения и испарения пропиленгликоля на предотвращение экспериментального заражения мышей воздушно-капельным путем. J Pediat. 1942; 21: 577–590. DOI: 10.1016 / S0022-3476 (42) 80046-3. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Анри В. Сравнение действия ультрафиолетовых лучей на организмы с использованием простых фотохимических реакций и комплексов.Compt Rend Soc Biol. 1912; 73: 323–325. [Google Scholar]
  • Анри В. Этюд метаболического действия в области ультрафиолета. CR Acad Sci (Париж), 1914; 159: 340–343. [Google Scholar]
  • Хиггонс Р.А., Хайд Г.М. 1947. Влияние ультрафиолетовой стерилизации воздуха на заболеваемость респираторными инфекциями в детском учреждении. Штат Нью-Йорк, журнал J Med 47 (7). [PubMed]
  • Хокбергер П. История ультрафиолетовой фотобиологии человека, животных и микроорганизмов. Photochem Photobiol.2002. 76 (6): 561–579. DOI: 10.1562 / 0031-8655 (2002) 076 <0561: AHOUPF> 2.0.CO; 2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Холлендер А. Влияние длинного ультрафиолетового и короткого видимого излучения (от 3500 до 4900) на Escherichia coli . J Bact. 1943; 46: 531–541. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Kowalski WJ. Справочник по аэробиологической инженерии: Руководство по технологиям борьбы с заболеваниями, передающимися по воздуху. Нью-Йорк: Макгроу-Хилл; 2006. [Google Scholar]
  • Kraissl CJ., Cimiotti JG., Meleney FL. Рекомендации по использованию ультрафиолетового излучения в операционных. Ann Surg. 1940; 111: 161–185. DOI: 10.1097 / 00000658-194002000-00001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Lorch W. Handbook of Water Purification. Чичестер: Ellis Horwood Ltd; 1987. [Google Scholar]
  • Лучано-младший. Контроль загрязнения воздуха в больницах. Нью-Йорк: Пленум Пресс; 1977. [Google Scholar]
  • Luckiesh M., Taylor AH. Выцветание цветных материалов при дневном и искусственном освещении.Trans Illum Eng Soc. 1925; 20: 1078. [Google Scholar]
  • Luckiesh M., Holladay LL. Испытания и данные по обеззараживанию воздуха бактерицидными лампами. Gen Electric Rev.1942; 45 (4): 223–231. [Google Scholar]
  • Luckiesh M., Holladay LL. Проектирование установки бактерицидных ламп для жилых помещений. Обзор General Electric. 1942. 45 (6): 343–349. [Google Scholar]
  • Luckiesh M. Дезинфекция бактерицидными лампами: Воздух — II. Электрический мир, октябрь 1945; 13: 109–111. [Google Scholar]
  • Лакиеш М.Применение бактерицидной, эритемной и инфракрасной энергии. Нью-Йорк: D. Van Nostrand Co; 1946. [Google Scholar]
  • Мартин С., Данн К., Фрихаут Дж., Банфлет В., Лау Дж., Неделькович А. Бактерицидное ультрафиолетовое облучение: современные передовые практики. ASHRAE J августа; 2008. С. 28–36. [Google Scholar]
  • Мензис Д., Попа Дж., Хэнли Дж. А., Рэнд Т., Милтон Д. К.. Влияние бактерицидных ультрафиолетовых ламп, установленных в системах вентиляции офисов, на здоровье и благополучие работников: двойные слепые множественные перекрестные испытания.Ланцет. 2003; 362: 1785–1791. DOI: 10.1016 / S0140-6736 (03) 14897-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • MRC. 1954. Обеззараживание воздуха ультрафиолетовым облучением; Его влияние на болезни среди школьников Комитетом по гигиене воздуха. Лондон: Совет медицинских исследований, Канцелярия Ее Величества. Отчет № 283.
  • Nardell EA. Глава 12: Ультрафиолетовая дезинфекция воздуха для борьбы с туберкулезом. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Архитектурный дизайн и микробное загрязнение помещений.Нью-Йорк: издательство Оксфордского университета; 1988. С. 296–308. [Google Scholar]
  • Новичок Х. Абиотическое действие ультрафиолетового света. J Exp Med. 1917; 26: 841. DOI: 10.1084 / jem.26.6.841. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Overholt RH., Betts RH. Сравнительный отчет по инфицированию ран после торакопластики. J Thoracic Surg. 1940; 9: 520–529. [Google Scholar]
  • Perkins JE., Bahlke AM., Silverman HF. Влияние ультрафиолетового облучения классных комнат на распространение кори в крупных сельских центральных школах.Am J Pub Health. 1947; 37: 529–537. DOI: 10.2105 / AJPH.37.5.529. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Philips. 1985. Каталог UVGI и руководство по дизайну. Нидерланды: Каталожный номер U.D.C. 628,9.
  • Prat S. Strahlung und antagonistische wirkungen. Протоплазма. 1936; 26: 113–149. DOI: 10.1007 / BF01628602. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Rentschler HC. Преимущества бактерицидного ультрафиолетового излучения в системах кондиционирования воздуха. HPAC. 1940; 12 (Надь Р.): 127–130. [Google Scholar]
  • Ренц К.Фотореакции оксидов титана, церия и земных кислот. Helv Chim Acta. 1921; 4: 961. DOI: 10.1002 / hlca.192100401101. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Райли Р., Уэллс В., Миллс К., Ника В., Маклин Р. Гигиена воздуха при туберкулезе: количественные исследования инфекционности и контроля в экспериментальной палате. Am Rev Tuberc Pulmon. 1957; 75: 420–431. [PubMed] [Google Scholar]
  • Райли Р.Л., О’Грейди Ф. Инфекция, передающаяся по воздуху. Нью-Йорк: компания «Макмиллан»; 1961. [Google Scholar]
  • Riley RL.Экология атмосферы в помещениях: воздушно-капельные инфекции в больницах. J Chron Dis. 1972; 25: 421–423. DOI: 10.1016 / 0021-9681 (72) -4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Райли Р.Л. Часть I. История и эпидемиология: Историческая справка. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук. Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 1–9. [Google Scholar]
  • Райли Р.Л. Профилактика и контроль инфекций, передающихся воздушно-капельным путем, в обществе. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук.Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 331–339. [Google Scholar]
  • Риттер М., Олбердинг Э., Малинзак Р. Ультрафиолетовое освещение во время ортопедических операций и скорость инфицирования. J Bone Joint Surg. 2007; 89: 1935–1940. DOI: 10.2106 / JBJS.F.01037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Риверс Т., Гейтс Ф. Ультрафиолетовый свет и вакцинный вирус. II. Влияние монохроматического ультрафиолетового света на вакцинный вирус. J Exp Med. 1928; 47: 45–49. DOI: 10.1084 / jem.47.1.45. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Robertson EC., Дойл МЭ., Тисдалл Ф.Ф., Коллер Л.Р., Уорд Ф.С. Загрязнение воздуха и стерилизация воздуха. Am J Dis Child. 1939; 58: 1023–1037. [Google Scholar]
  • Scheir R. Электроэнергетика решает проблему качества воздуха в помещении с помощью электроэнергии UVC. HPAC Eng. 2000. 69 (5): 28–29. [Google Scholar]
  • Schicht HH. Распространение микроорганизмов установками кондиционирования воздуха. Паровозик Октябрь; 1972. С. 6–13. [Google Scholar]
  • Schneiter R., Hollaender A., ​​Caminita BH., Kolb RW., Fraser HF., DuBuy HG., Neal PA., Rosenblum HG. Эффективность ультрафиолетового облучения верхних слоев воздуха для контроля бактериального загрязнения воздуха в спальных помещениях. Am J Hyg. 1944; 40: 136. [Google Scholar]
  • Шанта Т., Шриниваса М. Фото-разрушение афлатоксина в арахисовом масле. Индийский J Technol. 1977; 15: 453. [Google Scholar]
  • Sharp G. Воздействие ультрафиолетового света на бактерии, взвешенные в воздухе. J Bact. 1940; 38: 535–547. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Sommer HE., Стоукс Дж. Исследования воздушно-капельной инфекции в больничной палате. J Pediat. 1942; 21: 569–576. DOI: 10.1016 / S0022-3476 (42) 80045-1. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Spendlove JC., Fannin KF. Источник, значение и контроль микробных аэрозолей в помещениях: аспекты здоровья человека. Представитель общественного здравоохранения, 1983; 98 (3): 229–244. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • USACE. 2000. Руководство по проектированию и эксплуатации систем отопления, вентиляции и кондиционирования воздуха в зонах изоляции заболеваний. Центр укрепления здоровья и профилактической медицины армии США.Отчет № TG252.
  • фон Реклингхаузен М. Ультрафиолетовые лучи и их применение для стерилизации воды. Институт Дж. Франклина. 1914; 1057–1062: 681–704. DOI: 10.1016 / S0016-0032 (14)

    -7. [CrossRef] [Google Scholar]

  • Уолтер К.В. Вентиляция и кондиционирование как бактериологическая инженерия. Анестезиология. 1969; 31: 186–192. DOI: 10.1097 / 00000542-196 0-00012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Уорд М. Эксперименты по действию света на Bacillus anthracis .Proc Roy Soc Lond. 1892; 52: 393–403. DOI: 10.1098 / rspl.1892.0086. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Уэллс У., Уэллс М. Инфекция, передаваемая воздухом. ДЖАМА. 1936; 107: 1698–1703. [Google Scholar]
  • Wells WF. Воздушные инфекции. Mod Hosp. 1938; 51: 66–69. [Google Scholar]
  • Wells WF. Бактерицидное облучение воздуха, физические факторы. J Franklin Inst. 1940; 229: 347–372. DOI: 10.1016 / S0016-0032 (40)

    -0. [CrossRef] [Google Scholar]

  • Wells WF., Wells MW., Wilder TS. Экологический контроль эпидемического заражения; I — Эпидемиологическое исследование лучистой дезинфекции воздуха в дневных школах.Am J Hyg. 1942; 35: 97–121. [Google Scholar]
  • Wells WF. Обеззараживание воздуха в дневных школах. Am J Pub Health. 1943; 33: 1436–1443. DOI: 10.2105 / AJPH.33.12.1436. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Wells WF., Holla WA. Вентиляция при кори и ветрянке по месту жительства. Отчет о ходе работ с 1 января 1946 года по 15 июня 1949 года, исследование инфекций, передающихся воздушно-капельным путем. J Am Med Assoc. 1950; 142: 1337–1344. [PubMed] [Google Scholar]
  • Wheeler SM., Ingraham HS., Hollaender A., Лилль Н.Д., Гершон-Коэн Дж., Браун Е.В. Ультрафиолетовый контроль инфекций, передающихся по воздуху, в военно-морском учебном центре. Am J Pub Health. 1945; 35: 457–468. DOI: 10.2105 / AJPH.35.5.457. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Whitby G., Scheible O. История ультрафиолетового излучения и сточных вод. Новости IUVA. 2004. 6 (3): 15–26. [Google Scholar]
  • ВОЗ. 1999. Руководство по профилактике туберкулеза в медицинских учреждениях в условиях ограниченных ресурсов. Женева: Всемирная организация здравоохранения.Отчет № ВОЗ / CDS / TB / 99.269.
  • Уайт В. Бактериологические аспекты установок кондиционирования воздуха. J Hyg. 1968; 66: 567–584. DOI: 10.1017 / S002217240002831X. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Видмарк Э. Uber den einfluss des lichtes auf die haut. Гигиея. 1889; 3: 1–23. [Google Scholar]
  • Видмарк Дж. Де l’influence de la lumiere sur la peau. Biol Foren Forhandl Verhandlungen Biolog Vereins. 1889; 1: 9–13: 131–134. [Google Scholar]
  • Zeterberg JM.Обзор респираторной вирусологии и распространения вирулентных и, возможно, антигенных вирусов через системы кондиционирования воздуха. Энн Аллергия. 1973; 31: 228–299. [PubMed] [Google Scholar]

Russell, Hugo & Ayliffe’s: Принципы и практика дезинфекции, сохранения и стерилизации, 5-е издание

Больничные инфекции (HAI) — растущая проблема во всем мире и лучший способ справиться с они осуществляются с помощью систем отслеживания и эпиднадзора за инфекциями в сочетании со стратегиями профилактики, а именно эффективными протоколами дезинфекции, в которых используются различные биоциды.Однако растущее количество сообщений о снижении чувствительности к биоцидам и развитии перекрестной устойчивости к противомикробным препаратам подчеркивает необходимость выявления факторов, влияющих на эффективность биоцидов. В этом исследовании было изучено 29 бактериальных изолятов (n = 3 E. coli, n = 2 Pseudomonas spp., N = 23 Enterococcus spp. И n = 1 Staphylococcus pseudintermedius), полученных из проб окружающей среды, собранных в Отделении биологической изоляции и содержания ( BICU) Ветеринарной клинической больницы факультета ветеринарной медицины Лиссабонского университета были протестированы для определения их антимикробной чувствительности к различным антибиотикам.Тринадцать из этих изолятов были дополнительно отобраны для определения их антимикробной чувствительности к Virkon ™ S, с присутствием и без присутствия органических веществ. После этого семь из этих изолятов инкубировали в присутствии сублетальных концентраций этого состава, и впоследствии были определены новые профили чувствительности. Четырнадцать из 29 изолятов (48,3%) были классифицированы как мультирезистентные, все ранее идентифицированные как энтерококки. Что касается чувствительности Virkon ™ S, минимальная бактерицидная концентрация (МБК) этого биоцида в отношении всех изолятов была как минимум в восемь раз ниже, чем концентрация, обычно используемая при отсутствии органических веществ.Однако при добавлении органических веществ значения МБК выросли до 23 раз. После воздействия сублетальных концентраций Virkon ™ S четыре энтерококка продемонстрировали фенотипические изменения в отношении чувствительности к антимикробным препаратам по отношению к гентамицину. Virkon ™ S также приводил к более высоким значениям МБК, до 1,5 раз, в присутствии низких концентраций органического вещества, но не наблюдалось повышения этих значений в анализах без мешающего вещества. Virkon ™ S оказался эффективным препаратом для уничтожения всех изолятов бактерий, выделенных из BICU.Однако органические вещества могут препятствовать этой способности, что подчеркивает важность санитарной обработки перед процедурами дезинфекции.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *