Способы контроля автоклавирования контроль стерильности: Способы контроля стерильности

Способы контроля стерильности

Все действия по
обработке и стерилизации инструментов,
белья и прочего подлежат обязательному
контролю. Контролируют как эффективность
стерилизации, так и качество
предстерилизационной подготовки.

Контроль
стерильности

Методы контроля
стерильности делят на прямой и непрямые.

Прямой метод

Прямой метод
контроля стерильности — бактериологическое
исследование: специальной стерильной
палочкой проводят по стерильным
инструментам (коже рук хирурга или
операционного поля, операционному белью
и пр.), после чего помещают её в стерильную
пробирку и отправляют в бактериологическую
лабораторию, где проводят посев на
различные питательные среды и таким
образом определяют бактериальную
загрязнённость.

Бактериологический
метод контроля стерильности наиболее
точен. Отрицательный момент — длительность
проведения исследования: результат
посева бывает готов лишь через 3-5 сут,
а использовать инструменты нужно
непосредственно после стерилизации.
Поэтому бактериологическое исследование
проводят в плановом порядке и по его
результатам судят о методических
погрешностях в работе медицинского
персонала или дефектах используемого
оборудования. По существующим нормативам,
несколько различающимся для разного
вида инструментария, бактериологическое
исследование необходимо проводить 1
раз в 7-10 дней. Кроме того, 2 раза в год
подобные исследования во всех
подразделениях больницы проводят
районные и городские санитарно-эпидемиологические
службы.

Непрямые методы

Непрямые методы
контроля используют в основном при
термических способах стерилизации. С
их помощью можно определить величину
температуры, при которой проводили
обработку, не давая точный ответ на
вопрос о присутствии или отсутствии
микрофлоры. Преимущество непрямых
методов в быстроте получения результата
и возможности их использования при
каждой стерилизации.

При автоклавировании
в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку)
с порошкообразным веществом, имеющим
температуру плавления в пределах 110-120
°С. После стерилизации при открытии
бикса сестра прежде всего обращает
внимание на эту ампулу: если вещество
расплавилось, то материал (инструменты)
можно считать стерильными, если же нет
— нагревание было недостаточным и
пользоваться таким материалом нельзя,
так как он нестерилен. Для подобного
метода наиболее часто используют
бензойную кислоту (температура плавления
120 °С), резорцин (температура плавления
119 °С), антипирин (температура плавления
110 °С). Вместо ампулы в бикс можно поместить
термоиндикатор или максимальный
термометр, по которому также можно
определить, какова была температура во
время обработки.

Аналогичные непрямые
способы используют при стерилизации в
сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют
вещества с более высокой температурой
плавления (аскорбиновая кислота — 190 °С,
янтарная кислота — 190 °С, тиомочевина —
180 °С), другие термоиндикаторы или
термометры.

Контроль качества
предстерилизационной обработки

Для контроля
качества предстерилизационной обработки
используют химические вещества, с
помощью которых можно обнаружить на
инструментах следы неотмытой крови или
остатки моющих средств. Реактивы обычно
изменяют свой цвет в присутствии
соответствующих веществ (крови, щелочных
моющих средств). Методы используют после
проведения обработки перед стерилизацией.

Для обнаружения
так называемой скрытой крови наиболее
часто применяют бензидиновую пробу.

Для выявления
следов моющих веществ используют
кислотно-щелочные индикаторы, наиболее
распространена фенолфталеиновая проба.

Контроль стерильности

Существуют 3 группы способов контроля стерильности.
1. Физический контроль: берется пробирка, куда насыпают какое-либо вещество, плавящееся при температуре около 120 градусов — сера, бензойная кислота. Недостаток этого способа контроля состоит в том, что мы видим, что порошок расплавился и, значит, необходимая температура была достигнута, но мы не можем быть уверены, что она была такой на протяжении всего времени экспозиции.

2. Химический контроль: берут фильтровальную бумагу, помещают ее в раствор крахмала, после чего погружают в раствор Люголя. Она приобретает темно-бурый цвет. После экспозиции в автоклаве крахмал при температуре свыше 120 градусов разрушается, бумажка обесцвечивается. Метод имеет тот же недостаток, что и физический контроль.

3. Биологический контроль: это метод самый надежный. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные среды, не нашли микробов — значит все в порядке. Нашли микробы -значит необходимо повторно провести стерилизацию.

Недостаток метода в том, что ответ мы получаем только спустя 48 часов, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе в течение 48 часов. Значит, материал используется еще до получения ответа из бактериологической лаборатории.

Наиболее опасный источник контактной инфекции — руки хирурга. Для стерилизации кожи неприменимы физические методы, кроме того, сложность еще состоит в том, что после обработки рук они опять загрязняются за счет секрета сальных, потовых желез. Поэтому применяют дубление кожи спиртом, танином, при этом наблюдается резкий спазм выводных протоков потовых, сальных желез и инфекция, которая там находится, неспособна выйти наружу.

В последние годы стали применять в основном химические методы обработки рук: широко распространена обработка рук первомуром. Этот метод чрезвычайно надежен: перчаточный сок, образовавшийся в течение 12 часов после того как надели перчатки (в эксперименте), оставался стерильным.

Методы контроля стерильности

Стерильность медицинских принадлежностей подвергается обязательному контролю. Также проводится контроль предстерилизационной обработки инструментов.

Бактериологический метод контроля стерильности является наиболее точным. В бактериологической лаборатории после взятия мазков со стерильных предметов производят посев на различные питательные среды, и через 3—5 дней определяется бактериологическая загрязненность. Бактериологическое исследование стерильности обязательно проводится 1 раз в 7—10 дней.

При термических способах стерильности проводится непрямой метод контроля, который позволяет определить величину температуры необходимой для стерилизации.

При автоклавировании укладывают в бикс ампулу с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110—120 °С. Если после стерилизации вещество расплавилось, то медицинские принадлежности в биксе считаются стерильными. Для этого метода используется бензойная кислота (t плавления 120°С), резорцин (t плавления 119°С), антипирин (t плавления 110°С), термоиндикатор.

При стерилизации в сухожаровом шкафу используются вещества с более высокими точками плавления: аскорбиновая кислота (t плавления 190 °С), янтарная кислота (t плавления 190°С),
тиомочевина (t плавления 180°С), термоиндикатор.

Контроль предстерилизационной обработки проводится после обработки и обсушивания инструментов. Проводится на наличие гемоглобина (крови), окислителей, хлорсодержащих средств, моющего средства, ржавчины. Для определения крови применяются амидопириновая и азопирамовая пробы. Для определения моющего средства применяются фенолфталеиновая и азопирамовая пробы. Для определения окислителей, хлорсодержащих средств и ржавчины применяется азопирамовая проба. При положительной пробе раствор, нанесенный на инструмент, изменяет окраску. В лечебно-профилактических учреждениях ежедневному контролю подвергают 1—4% предметов медицинского назначения и с каждой обработанной партии, но не менее 3—5 единиц. При положительной пробе всю партию изделий повторно обрабатывают.

Способы контроля стерильности

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

Контроль стерильности

Методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые. Прямой метод

Прямой метод контроля стерильности — бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость.

Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент — длительность проведения исследования: результат посева бывает готов лишь через 3-5 сут, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование необходимо проводить 1 раз в 7-10 дней. Кроме того, 2 раза в год подобные исследования во всех подразделениях больницы проводят районные и городские санитарно-эпидемиологические службы.

Непрямые методы

Непрямые методы контроля используют в основном при термических способах стерилизации. С их помощью можно определить величину температуры, при которой проводили обработку, не давая точный ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности их использования при каждой стерилизации.

При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110-120 ?С. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными, если же нет — нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя, так как он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используют бензойную кислоту (температура плавления 120 ?С), резорцин (температура плавления 119 ?С), антипирин (температура плавления 110?С). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которому также можно определить, какова была температура во время обработки.

Аналогичные непрямые способы используют при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют вещества с более высокой температурой плавления (аскорбиновая кислота — 190 ?С, янтарная кислота — 190 ?С, тиомочевина — 180 ?С), другие термоиндикаторы или термометры.

Контроль качества предстерилизационной обработки

Для контроля качества предстерилизационной обработки используют химические вещества, с помощью которых можно обнаружить на инструментах следы неотмытой крови или остатки моющих средств. Реактивы обычно изменяют свой цвет в присутствии соответствующих веществ (крови, щелочных моющих средств). Методы используют после проведения обработки перед стерилизацией.

Для обнаружения так называемой скрытой крови наиболее часто применяют бензидиновую пробу.

Для выявления следов моющих веществ используют кислотно-щелочные индикаторы, наиболее распространена фенолфталеиновая проба.

Профилактика имплантационной инфекции

Имплантация — внедрение, вживление в организм больного искусственных, чужеродных материалов и приспособлений с определённой лечебной целью.

Особенности профилактики имплантационной инфекции

Профилактика имплантационной инфекции — обеспечение строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного. В отличие от контактного пути распространения инфекции, при имплантационном отмечают практически 100% контагиозность. Оставаясь в организме больного, где существуют благоприятные условия (температура, влажность, питательные вещества), микроорганизмы долго не погибают и часто начинают размножаться, вызывая нагноение. При этом внедрённое в организм инородное тело в последующем длительно поддерживает воспалительный процесс. В части случаев происходит инкапсуляция колоний микроорганизмов, которые не погибают и могут стать источником вспышки гнойного процесса через месяцы или годы. Таким образом, любое имплантированное тело — возможный источник так называемой дремлющей инфекции.

Источники имплантационной инфекции

Что же хирурги «оставляют» в организме больного? Прежде всего шовный материал. Без этого не обходится практически ни одно вмешательство. В среднем во время полостной операции хирург накладывает около 50-100 швов.

Вероятным источником имплантационной инфекции становятся дренажи — специальные трубки, предназначенные для оттока жид- костей, реже воздуха (плевральный дренаж) или предназначенные для введения лекарств (катетеры). Учитывая этот путь распространения инфекции, существует даже понятие «катетерный сепсис» (сепсис — тяжёлое общее инфекционное заболевание, см. главу 12).

Кроме шовного материала и дренажей, в организме больного остаются протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д., различные металлические конструкции (скобки, скрепки из шовных аппаратов, винты, спицы, шурупы и пластинки для остеосинтеза), специальные приспособления (кава-фильтры, спирали, стенты и пр.), синтетическая сетка, гомофасция, а иногда и трансплантированные органы.

Все имплантаты, безусловно, должны быть стерильны. Способ стерилизации зависит от того, из какого материала они выполнены. Многие протезы имеют сложную конструкцию и строгие специальные правила стерилизации. Если резиновые дренажи и катетеры можно стерилизовать в автоклаве или кипятить, то некоторые изделия из пластмассы, а также из разнородных материалов следует стерилизовать с помощью химических методов (в растворах антисептиков или газовом стерилизаторе).

В то же время сейчас основным, практически наиболее надёжным и удобным методом признана заводская стерилизация γ-лучами.

Основным вероятным источником имплантационной инфекции остаётся шовный материал, постоянно используемый хирургами.

(9) СПОСОБЫ КОНТРОЛЯ СТЕРИЛЬНОСТИ — Med24info.com

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и пр. подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

а)              Контроль стерильности

Все методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.

Прямым методом контроля стерильности является бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают ее в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где производят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязненность.
Бактериологический метод контроля стерильности является наиболее точным. Отрицательным моментом является длительность проведения исследования: результат посева будет готов лишь через 3-5 суток, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводится в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование должно проводиться 1 раз в 7-10 дней. Кроме того, 2 раза в год подобные исследования по всем подразделениям проводят в больнице районные и городские санитарно-эпидемиологические службы.

Непрямые методы контроля используются в основном при термических способах стерилизации и позволяют определить величину температуры, при которой проводилась обработка, не давая точный ответ на присутствие или отсутствие микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности использования при каждой стерилизации.

При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110-120°С. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными. Если же нет — нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя — он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используются: бензойная кислота (t° плавл. — 120°С), резорцин (t° плавл. — 119°С), антипирин (t° плавл. — 110°С). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которым также можно определить, достигалась ли в процессе обработки необходимая температура.

Аналогичные непрямые способы используются при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь используют вещества с более высокими точками плавления (аскорбиновая кислота « 190°С, янтарная кислота — 190°С, тиомочевина ~ 180°С), другие термоиндикаторы или термометры.

б)              Контроль качества предстерилизационной обработки

Для контроля за качеством предстерилизационной обработки используются химические вещества, с помощью которых можно обнаружить на инструментах следы неотмытой крови или остатки моющих средств. Реактивы обычно изменяют свой цвет в присутствии соответствующих веществ (кровь, щелочные моющие средства). Методы используются после проведения обработки перед стерилизацией.

Для обнаружения так называемой скрытой крови наиболее часто используется бензидиновая проба.

Для выявления следов моющих веществ используют кислотно-щелочные индикаторы, наиболее распространена фенол-фталеиновая проба.

Способы контроля стерильности. — Студопедия

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

Контроль стерильности.

Методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.

Прямой метод контроля стерильности – бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость. Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент – длительность проведения исследования: результат посева бывает готов лишь через 3 – 5 сут, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медперсонала или в дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование необходимо проводить 1 раз в 7 – 10 дней. Кроме того, в 2 раза в год подобное исследования во всех подразделениях больницы проводят районные и городские санитарно — эпидемиологические службы. Непрямые методы – контроля используют в основном при термических способах стерилизации. С их помощью можно определить величину температуры, при которой проводили обработку, не давая точный ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результатов и возможности их использования при каждой стерилизации. При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110 – 120 ^о C. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными, если же нет – нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя, так как он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используют бензойную кислоту (температура плавления 120 ^о C), резоцирин (температура плавления 119 ^о C), антипирин (температура плавления 110 ^о C). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которому также можно определить, какова была температура во время обработки. Аналогичные непрямые способы используют при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют вещества с более высокой температурой плавления (аскорбиновая кислота – 190 ^о C, янтарная кислота -190 ^о C, тиомочевина — 180 ^о C), другие термоиндикаторы или термометры.

Контроль качества стерилизации

Контроль качества автоклавирования осуществляют: 1) бактериологическим методом — постоянные пробы па стерильность материала; 2) с помощью инди­каторных бумажек (метод Микулича)—на обработанной крахмалом бумаге пишут слово «стерилизовано» и опускают бумагу в раствор Люголя. Она при­нимает интенсивно-синий цвет, и надпись становится невидна.

При 115 °С в авто­клаве бумага обесцвечивается, и слово «стерилизовано» становится отчетливо видимым; 3) с помощью порошкообразных веществ, сплавляющихся при дости­жении определенной температуры: сера — 111 —120 СС, антипирин — 113°С, ан­тифебрин — 115°С, мочевина — 132 °С.

Качество обработки хирургических инструментов, шприцев, игл и частей аппаратов определяют как проверкой их стерильности, так и путем постановки бепзидшювой пробы на наличие следов крови.

Бензидиновый реактив годен только в течение часа. В шприц наливают 3 кап­ли бензидннового реактива и несколько раз передвигают поршень, результат оценивается через 3 мин. При наличии малейших следов кровн реактив становит­ся зеленым. Иглы проверяют таким же образом. Через 3 мин реактив выпускают на белую ткань или бумагу; изменение окраски реактива свидетельствует о на­личии следов крови.

Приготовление бензидинового реактива: в пробирку наливают 2 мл ледяной уксусной кислоты,- добавляют немного бензидина и встряхивают смесь, затем добавляют 4 мл 3 % раствора перекиси водорода и снова тщательно встряхи­вают. Качество реактива проверяют нанесением 2 его капель на кровяное пятно. Появление зеленого цвета свидетельствует о пригодности реактива.

Контроль стерильности проводится не реже одного раза в 10—14 дней. По­севы с рук хирургов и операционных сестер, инструментов и различных предме­тов в операционной берут стерильными ватными или марлевыми шариками, смо­ченными стерильным изотоническим раствором натрия хлорида непосредственно перед операцией. Материал помещают в пробирку со стерильным изотоническим раствором натрия хлорида или сахарным бульоном и в тот же день направляют в бактериологическую лабораторию. Персонал не должен знать, когда и у кого будет   взят   посев.

Посевы воздуха в операционной осуществляют на чашках Петри с питатель­ным агаром или с помощью аппарата Кротова. Открытые чашки расставляют в различных местах операционной на 15 мин. Количество микробов в 1 м3 воз­духа в операционной до работы не должно превышать 500,-а после работы — 1000.

Перевязочный материал доставляют в лабораторию в закрытых биксах после стерилизации.

Посевы с шовного материала осуществляют до стерилизации, во время нес и в процессе хранения — не реже одного раза в 10 дней. Забор материала про­водится с соблюдением всех правил асептики. Каждую пробу берут отдельным инструментом и помещают в стерильную пробирку. Материал признается сте­рильным, если рост микробов не получен.

Результаты посевов фиксируют в специальном журнале, где указывают дату посева, характер исследуемого материала, способ стерилизаций, отмечают полу­ченный результат и указывают фамилию производившего исследование.

Справочник хирурга поликлиники. Кутушев Ф. Х., Либов А. С. Мичурин Н.В., 1982г. 

Еще статьи на эту тему:

— Стерилизация шовного материала

— Стерилизация операционного белья и перевязочного материала

— Стерилизация инструментов и оптических приборов

АВТОКЛАВ: ИСПЫТАНИЕ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ * | Руководства для студенческого оздоровительного центра

Дата вступления в силу:

Ср, 01.06.2005

Отзывов:

Ср, 16.06.2021

Пересмотрено:

Ср, 16.06.2021

Тест: Внутренние испытания автоклавов на стерильность
Оборудование:

Ампулы для теста на стерильность
Ritter M11 UltraClave
Прецизионная водяная баня Модель 181

Принцип:

Ампулы для определения стерильности

предназначены для контроля циклов стерилизации насыщенным паром при 121 ° C.Каждая ампула содержит суспензию спор Geobacillus stearothermophilus (ATCC № 7953) в среде для выращивания, также содержащей бромкрезоловый пурпурный, который служит индикатором pH. Производство кислоты, связанное с ростом, вызывает изменение цвета с пурпурного на желтый.

Частота тестирования: Для максимального контроля стерилизованных товаров производитель рекомендует еженедельно включать ампулы для проверки стерильности.

Меры предосторожности: ВНИМАНИЕ: Содержимое ампулы горячее и находится под давлением.Несоблюдение достаточного времени для охлаждения (10-15 минут) может привести к разрыву ампулы. Не использовать поврежденные ампулы. Не использовать по истечении срока годности. С ампулами для анализа спор на стерильность следует обращаться осторожно, поскольку они содержат живые культуры.

Утилизация : Все ампулы (стеклянные) следует утилизировать в контейнере для острых предметов.

Процедура: Оператор автоклава

1. Оператор автоклава поместит одну ампулу для испытания на стерильность в переднюю нижнюю часть камеры.

2. Оберните верх ампулы автоклавной лентой, чтобы наклеить этикетку. Напишите на ленте следующее:

• Риттер 1 (SDC) или Риттер 2 (2-й этаж)
• Дата исследования спор
• Инициалы оператора

3. Документ «Ежемесячный журнал активности автоклава», HC: 899: инициалы оператора, дата / время входа, проведенный тест на споры = «Да»

4. Стерилизовать в соответствии с обычной процедурой.

5. Оператор автоклава размещает заказы лаборатории в EMR для документирования тестов на споры:

• Открыть карту> Столик для встреч> Примечание к карте первичной медицинской помощи (не приложение), MA размещает заказы на обоих тестируемых пациентов:
  • Тест, пол автоклава 1 («Разбить стекло» — еженедельный тест на споры »)
  • Test, Autoclave Floor 2 (Разбить стекло — Еженедельный тест на споры)
• В примечании к таблице в поле «Примечания» введите «Еженедельная проверка спор в автоклаве».
• Заказы> Наборы заказов> Проверка автоклава> Проверка стерилизации автоклава
• Изменить имя поставщика заказа на имя медицинского директора
• Диагноз: Найти — перейти на МКБ-10 — ввести Z00.00 Обычный общий экзамен
• Подпишите каждую записку

6. После завершения работы в автоклаве извлеките тестовую ампулу (ам) после охлаждения. ВНИМАНИЕ: Содержимое ампулы горячее и находится под давлением. Несоблюдение достаточного времени для охлаждения (10-15 минут) может привести к разрыву ампулы.

7. Верните стерилизованные ампулы в лабораторию.

8. Оператор автоклава несет ответственность за последующие действия в лаборатории в случае отсутствия уведомления о результатах теста на споры ~ 48 часов после доставки в лабораторию.

Процедура: Лаборатория

1. Поместите помеченные ампулы в вертикальном положении в отдельный контейнер или чашку в водяную баню (55–58 ° C).

2. Поместите неавтоклавированную ампулу в контейнер с обработанными ампулами. Пометьте неавтоклавированную ампулу как «Контроль» и инкубируйте в течение 48 часов (Контроль является индикатором жизнеспособности спор).

3. Ежедневно исследуйте обработанные и контрольные ампулы во время инкубации. Ежедневно фиксируйте наблюдения и температуру водяной бани.

4. После 48-часовой инкубации введите результаты обоих тестов на споры в соответствующие таблицы ЭМИ и утилизируйте ампулы в контейнер для острых предметов.

• Неудачный цикл стерилизации обозначается помутнением и / или изменением цвета на желтый или в сторону желтого. Сохранение пурпурного цвета тест-ампулы указывает на адекватный цикл стерилизации.

Процедура : Документирование результатов и дальнейшие действия

1. Отрицательные результаты :

• Персонал лаборатории документирует отрицательный результат (-ы) в лабораторной информационной системе, которая загружается в таблицу EMR.
• К концу недели директор клиники или помощник координатора клинических операций рассматривает и подтверждает результаты в EMR.
• Директор клиники или помощник координатора клинических операций отправляет результаты оператору автоклава через IM. Оператор автоклава записывает результаты в соответствующие ежемесячные журналы активности автоклава (HC: 899).

2. Положительные результаты :

• Лаборатория делает вызов старшей медсестре, указывая, что тест на споры в автоклаве был «Положительным через (24 или 48) часов: повторите тест».«
• Старшая медсестра уведомляет соответствующего менеджера / супервизора.
• Персонал лаборатории документирует положительный результат (ы) в соответствующей таблице EMR.
• Медперсонал и / или менеджер / руководитель при получении положительных результатов:
  • Проконсультируйтесь с ежемесячным журналом активности автоклава (HC: 899), чтобы определить, подвергалось ли какое-либо неупакованное оборудование / инструменты автоклавированию с момента предыдущего отрицательного теста на споры.
  • Принять меры к тому, чтобы все упакованное и неупакованное оборудование / инструменты, обработанные после предыдущего отрицательного анализа на споры, были изъяты из использования и переработаны.
  • Оценивает возможное участие пациента (инструменты, используемые в процедурах и т. Д.) И при необходимости уведомляет пациентов.
  • Соревнуйтесь и отправьте отчет об инциденте через систему RLS.

Контроль качества: Неавтоклавированная ампула прилагается к инкубации автоклавированных ампул для обеспечения жизнеспособности спор.

Артикул: Вставка продукта находится в лаборатории студенческого центра здоровья.

Стандарты мониторинга автоклавов и хранения стерильных упаковок — Комитет по уходу и использованию животных в учреждениях

ИСТОРИЯ ВОПРОСА

Настоящая стандартная рабочая процедура (СОП) описывает стандарты, которым необходимо следовать, чтобы контролировать работу автоклава, а также время безопасного хранения стерильных хирургических пакетов.

В Руководстве по уходу и использованию лабораторных животных говорится, что «следует использовать индикаторы стерилизации для подтверждения того, что материалы были должным образом стерилизованы». (стр. 119)

ПРИМЕЧАНИЕ. Этих требований к валидации и мониторингу недостаточно, если автоклав используется для обработки опасных биологических материалов. Если биологические опасности необходимо автоклавировать, необходимо связаться с сотрудником по биобезопасности.

Стандартная рабочая процедура IACUC:

Подготовка хирургического пакета

• Пакеты, предназначенные для автоклавирования, должны быть обернуты пористыми термостойкими материалами, которые допускают проникновение пара.Подходящие материалы включают бумагу, ткань и отслаивающиеся пакеты ¹ . Фольга подходит только для стерилизации сухим жаром и не может использоваться при автоклавировании паром.
• Каждая автоклавированная упаковка, используемая в хирургических операциях по выживанию, должна иметь индикаторы, подтверждающие достижение минимальной температуры во время цикла.
• В каждой упаковке должны использоваться как внешние ( автоклавная лента ² ), так и внутренние ( химический интегратор ³ ) индикаторы.
• Внутренние методы должны быть помещены в центр упаковки для проверки адекватного проникновения пара.
• ОБА ИНДИКАТОРА ДОЛЖНЫ ИЗМЕНИТЬСЯ, чтобы упаковка использовалась для хирургических операций по выживанию.

Проверка и документация автоклава

Проверка использует биологических индикаторов ⁴ для оценки функциональной эффективности автоклава. Это испытание должно периодически выполняться и документироваться для любого автоклава, используемого для стерилизации инструментов для хирургической операции по выживанию.Любой, кто использует автоклав для хирургической операции по выживанию животных в WSU, несет ответственность за обеспечение проведения валидации, как описано в этом документе. Это относится как к автоклавам, принадлежащим лаборатории, так и к автоклавам с централизованным управлением. Как минимум, проверка должна проводиться каждые 6 месяцев с использованием биологических индикаторов.

Отказ любого из этих циклов проверки указывает на то, что настройки автоклава должны быть отрегулированы или автоклав отремонтирован. Автоклав, не прошедший валидацию, не может быть снова использован для стерилизации хирургических инструментов до тех пор, пока он не пройдет тест на биологический индикатор.Результаты всех тестов, пройденных или не прошедших испытания, должны быть задокументированы и доступны для рассмотрения на полугодовых инспекциях IACUC.

Хранение стерильных предметов

В идеале стерильные предметы стерилизуются в автоклаве как можно ближе к дню использования (например, за день до операции) и не хранятся в течение длительного периода времени. На всех стерильных упаковках должна быть указана дата автоклавирования. Их следует хранить в закрытом шкафу и беречь от влаги. Как правило, упаковки, завернутые в ткань или тканую бумагу, следует использовать в течение 1 месяца после автоклавирования, а запечатанные упаковки для снятия кожуры следует использовать в течение 1 года.

При возникновении любого из следующих событий, упаковка должна быть переупакована и простерилизована перед использованием:

• Любые разрывы или перфорации в упаковке, независимо от того, подвергаются ли инструменты непосредственному воздействию или нет.
• Смачивание хирургической упаковки.
• Падение пакетов на пол или чрезмерное скопление пыли на внешней поверхности.

Определения

1. Пакеты для стерилизации — Содержит химически пропитанные индикаторы на внешней и внутренней поверхности пакета, которые визуально меняют цвет при воздействии определенных условий.[Например, пакеты для стерилизации Chex-All ^® Propper ™, доступные от Fisher Scientific.]
2. Индикаторная лента (также известная как автоклавная лента) — Лента, пропитанная химическим веществом, которое визуально меняет цвет при воздействии высокой температуры . Лента размещается снаружи стерилизуемого предмета. Подтверждает достигнутую температуру, а не стерилизацию. [Например, лента для автоклава 3M ™, доступная от Fisher Scientific.]
3. Химический интегратор (a.к.а. полоса интегратора) — Содержит химическое вещество, которое подвергается визуальному цвету / физическому изменению при соблюдении всех параметров стерилизации (время, температура и проникновение пара). Их помещают внутрь хирургической упаковки, подготовленной клетки или других предметов, подлежащих стерилизации, чтобы гарантировать проникновение пара во внутренние слои упаковки / клетки. [Например, парохимические интеграторы 3M ™ Comply ™ (Thermalog ™ или SteriGage ™), доступные из многих источников.]

ПРИМЕЧАНИЕ. Также доступны индикаторные полоски Chemical , которые, как и автоклавная лента, меняют цвет при определенной температуре достигается.В отличие от интеграторов, они не обеспечивают гарантии того, что давление или продолжительность, необходимые для стерилизации, были соблюдены. Это не эквивалентная замена химических интеграторов.

4. Биологические индикаторы — это индикаторы высшего порядка. Они контролируют время, температуру и проникновение пара, подтверждая уничтожение микробных спор Geobacillus stearothermophilus, термофильных бактерий. Это единственный метод, который фактически подтверждает, что стерилизация происходит.[Например, биологический индикатор 3M ™ Attest ™, доступный из многих источников или как услуга Ветеринарно-технической службы DLAR].

Утверждено: апрель 2017 г.

Утверждено исправлений: нет

Проверено: апрель 2020 г.

— Отдел безопасности исследований

В автоклавах

используется пар под высоким давлением и высокой температурой для уничтожения микроорганизмов и деактивации биологически опасных материалов. Для эффективной стерилизации материалы / загрузка должны быть пропитаны паром.Воздушные карманы или недостаточная подача пара препятствуют эффективной стерилизации. Правильные параметры цикла для эффективного обеззараживания инфекционных отходов определяются с использованием индикаторов автоклавов и выполнения валидации автоклавов. Для получения дополнительной информации см. Автоклав — Отходы и проверка.

Потенциальные риски при использовании автоклава включают тепловые и паровые ожоги, ожоги горячей жидкостью, травмы рук и предплечий от двери и телесные повреждения в случае взрыва. Воздействие биологически опасных материалов может произойти, если биологически опасные отходы неправильно упакованы или неправильно обработаны.Обучение на месте правильному и безопасному использованию автоклава важно для всех новых сотрудников, чтобы предотвратить травмы. Использование теплоизоляционных перчаток, лабораторного халата и обуви с закрытым носком помогает предотвратить ожоги и ожоги во время загрузки и разгрузки автоклава.

Если вы никогда не пользовались автоклавом, который будете использовать, обратитесь к опытному пользователю в вашей лаборатории за инструкциями по безопасной эксплуатации. Для автоклавов в вашем здании вам может потребоваться связаться с менеджером по эксплуатации или с сотрудником службы безопасности.Для дополнительной помощи; свяжитесь с Отделом безопасности исследований по телефону 217-333-2755 или по электронной почте.

Безопасность в автоклаве

Предотвращение травм:

• Использование соответствующих средств индивидуальной защиты (СИЗ), включая лабораторный халат, термостойкие перчатки и средства защиты глаз, особенно при разгрузке автоклава.
• Никогда не запечатывать контейнеры; под давлением они представляют опасность взрыва.
• Никогда не открывайте дверцу автоклава, если вода выходит из дна.Засоренные паропроводы, неисправность оборудования или закупорка канализации могут стать причиной скопления кипящей воды.
• Подождите, пока давление достигнет нуля и температура не достигнет 121 ° C, прежде чем открывать дверцу в конце цикла, чтобы избежать ожогов паром и разбитой посуды. Не стойте прямо перед дверью.
• Запрещается перегревать жидкости. Перегрев — это состояние, которое возникает, когда жидкости имеют температуру выше их нормальной точки кипения, но не кажутся кипящими.Любое нарушение жидкости может привести к тому, что часть ее быстро превратится в пар и разбрызгивается. В ситуациях, когда персонал спешит вынуть фляги или бутыли из автоклава, перегретые жидкости могут выскочить из контейнеров или взорваться.

Никогда не автоклавировать следующие предметы:

• Острые предметы: нет необходимости автоклавировать выброшенные острые предметы (использованные / неиспользованные иглы и шприцы, загрязненное битое стекло, предметные стекла и покровные стекла, пипетки Пастера, скальпель или бритвенные лезвия) перед утилизацией. контейнер для утилизации острых предметов.Чтобы получить полные контейнеры для острых предметов, заполните онлайн-форму.
• Опасные химические вещества (включая предметы, загрязненные опасными химическими веществами). Не автоклавировать легковоспламеняющиеся, химически активные, коррозионные или токсичные химические вещества (например, спирты, хлороформ, уксусную кислоту, формалин или фиксированные ткани). Лабораторные халаты, загрязненные химическими веществами, не следует автоклавировать, их следует очищать в утвержденной прачечной или утилизировать как химические отходы. Чтобы запланировать вывоз химических отходов, заполните онлайн-форму вывоз химических отходов.
• Сушеные отбеливатели и материалы, связанные с отбеливателями, или нитроцеллюлоза; оба соединения представляют опасность пожара или взрыва.
• Радиоактивные материалы: обратитесь в Программу радиационной безопасности DRS для получения информации о надлежащей утилизации радиоактивных материалов. Чтобы запланировать вывоз, заполните онлайн-заявку на вывоз радиоактивных отходов.
• Патологические отходы: включают туши, ткани и органы животных, а также ткани и органы человека. Политика университета требует, чтобы определенные виды патологических отходов утилизировались путем сжигания.Обратитесь к онлайн-информации о том, как утилизировать патологические отходы для сжигания, или отправьте электронное письмо в Отдел безопасности исследований.
• Биотоксины и прионы с низкой молекулярной массой (НММ): некоторые биологические опасности не могут быть устранены автоклавированием, так как материал чрезвычайно стабилен. Свяжитесь с Отделом безопасности исследований по электронной почте, если вы утилизируете эти типы материалов.

Подготовка материалов

Чтобы обеспечить достаточное проникновение пара, плотно упаковывайте твердые материалы; не уплотняйте отходы намеренно и не переполняйте мешки для биологически опасных отходов.Пакеты / контейнеры должны быть помещены в большую неглубокую неглубокую кастрюлю, герметичную, не из стекла, чтобы не допустить утечки. Рекомендуются сковороды из нержавеющей стали или пластмассы, которые можно многократно автоклавировать при высоких температурах (например, полипропилен, сополимер полипропилена или фторполимеры). Перед обработкой откройте пакеты / контейнеры, чтобы пар мог проникнуть внутрь и эффективно повысить температуру для адекватной стерилизации. Можно добавить небольшое количество воды для обеспечения теплопередачи внутри мешка / контейнера. Если пакет закрыт во время автоклавирования, температура его содержимого может быть недостаточно повышена для обеззараживания.Если вы обрабатываете несколько противней, убедитесь, что между ними достаточно места, чтобы не препятствовать циркуляции пара.

Поместите емкости с жидкостью (например, бутылки, химические стаканы, фляги) с ватной пробкой или паропроницаемой пробкой в ​​большую герметичную неглубокую кастрюлю. Осмотрите стекло, чтобы убедиться, что на нем нет трещин. Не наполняйте емкости до верха и оставляйте много свободного пространства. Бутылки с узким горлышком могут выкипеть, если наполнить их слишком сильно. По возможности избегайте использования бутылок, но при необходимости убедитесь, что завинчивающаяся крышка почти откручена, чтобы учесть изменения давления, иначе она может взорваться.В кастрюлю следует налить воду, чтобы избежать теплового шока в контейнерах.

Основные инструкции по эксплуатации

Ниже приведены основные инструкции по использованию автоклава, но они не заменяют инструкции производителя по эксплуатации и практическое обучение. Перед первым использованием любого автоклава прочтите и тщательно изучите руководство пользователя, поскольку многие марки и модели обладают уникальными характеристиками.

1. Поместите предметы для автоклавирования в камеру.
2. Проверьте сливную сетку, чтобы убедиться, что она не закупорена и не забита.
3. Для настольных агрегатов, в которых нет встроенного пара, проверьте и заполните резервуар деионизированной водой до линии заполнения (см. Инструкции производителя).
4. Закройте и закройте дверцу автоклава.
5. На клавиатуре автоклава или дисках выберите:
   a. Тип нагрузки: гравитационная или жидкая.
   г. Время стерилизации: время стерилизации будет варьироваться в зависимости от содержимого и способа упаковки загрузки, и его следует измерять после того, как температура материалов достигнет 121 ° C и 15 фунтов на квадратный дюйм (PSI).Он может изменяться от 12 до 15 минут. Некоторым лоткам с большими мешками или контейнерами, загруженным в автоклав, потребуется больше времени для достижения 121 ° C, и их следует настроить соответствующим образом.
   г. Температура стерилизации. Если не указано иное, температура камеры установлена ​​на 121 ° C (250 ° F).
   г. При желании сухой цикл.
   e. Или выберите запрограммированный цикл, т. Е. цикл «отходов», если в вашем автоклаве есть такая возможность. Предварительно запрограммированные циклы вводятся либо на заводе, либо лицом, ответственным за автоклав.
6. Запустите цикл автоклава. Если требуется, заполните журнал автоклава.
7. По завершении цикла наденьте соответствующие СИЗ перед тем, как открывать дверцу. Надевайте защитные очки, лабораторный халат с длинными рукавами, обувь с закрытым носком и термостойкие перчатки.
8. Медленно и немного откройте дверцу и дайте выходить пару.
9. Дайте предметам остыть в автоклаве не менее 10 минут, прежде чем полностью открыть дверцу.
10. Проверьте ленту автоклава на предмет изменения цвета и распечатку записывающего устройства, чтобы увидеть, были ли достигнуты время и температура.В противном случае загрузку следует повторно автоклавировать в другом автоклаве.
11. Любой мешок с символом биологической опасности должен быть переполнен непрозрачным мешком для мусора и запечатан перед утилизацией в обычном потоке отходов. Мешки с символом биологической опасности, независимо от использования, нельзя выбрасывать в обычный поток отходов без переполнения.

Справочник по температуре и времени

Загружаемая версия плаката по безопасности в автоклаве (8,5X11)

Загружаемая версия плаката по безопасности в автоклаве (11X17)

A Пошаговое руководство по стерилизации инструментов — контроль инфекций

включает «_nav_tab.php». Существует три метода стерилизации: стерилизация паром (также известная как «автоклавирование» или «влажное тепло под давлением»), стерилизация сухим жаром (электрическая печь) и химическая («холодная») стерилизация.Обратите внимание, что если в вашем учреждении выполняются какие-либо процедуры, связанные с контактом с кровотоком или тканями под кожей, у вас должно быть более одного метода стерилизации, который можно использовать в качестве резервного, если ваше оборудование выходит из строя, расходуются расходные материалы или отсутствует электричество.

Вот обзор ключевых последовательностей событий, необходимых для выполнения различных типов стерилизации, а также дезинфекции высокого уровня. Советы адаптированы из всеобъемлющего бесплатного курса повышения квалификации, разработанного EngenderHealth (writeOutLink («www.engenderhealth.org/ip/instrum/in11.html»,1)).

эхо «

»;

echo «». strtoupper («Предстерилизационная упаковка.»). «
«;
Обертывание предметов перед стерилизацией паром и сухим жаром помогает снизить вероятность их загрязнения перед использованием. Чтобы обернуть инструменты и другие предметы для стерилизации паром, используйте два слоя бумаги, газетной бумаги, муслина или хлопчатобумажной ткани. Не используйте холст для стерилизации паром, так как пар не может проникнуть в этот материал. При упаковке предметов для стерилизации сухим жаром используйте фольгу, двухслойную хлопчатобумажную ткань или муслиновую ткань.

• Шаг 1
  Поместите инструмент или другой предмет в центр верхней обертки. Обертку следует расположить так, чтобы точки, а не плоские края, находились сверху, снизу и по бокам.
• Шаг 2
  Согните нижнюю часть верхней обертки к центру и загните кончик.

• Шаг 3
  Согните левую часть к центру и загните кончик.

• Шаг 4
  Согните правую часть к центру и загните острие.
• Шаг 5
  Согните верхнюю часть к центру и загните острие.
  Шаг 6
  Согните нижнюю часть нижней обертки к центру и загните кончик.

• Шаг 7
  Согните левую часть к центру и загните острие.
• Шаг 8
  Согните правую часть к центру и загните острие.
• Шаг 9
  Согните верхнюю часть к центру и загните острие.
• Шаг 10
  Подоткните острие под правую и левую секции.

  Шаг 11
  Надежно закрепите складки с помощью автоклавной ленты, если таковая имеется.

echo «

» .strtoupper («Автоклавирование»). «
»;

• Шаг 1
  Обеззараживайте, очищайте и сушите все инструменты и другие предметы, подлежащие стерилизации.
• Шаг 2
  Откройте или разблокируйте все сочлененные инструменты и другие предметы, такие как кровоостанавливающие зажимы и ножницы, и разберите те, у которых есть скользящие или состоящие из нескольких частей.Это позволяет пару достигать всех поверхностей изделия. Избегайте плотного расположения инструментов и других предметов, так как это предотвратит попадание пара на все поверхности.
• Шаг 3
  Оберните инструменты.
• Шаг 4
  Расположите все упаковки, бочки или неупакованные предметы в камере автоклава так, чтобы пар мог свободно циркулировать.
• Шаг 5
  Примечание. Единицы измерения давления, указанные на манометре автоклава, могут отличаться от одного автоклава к другому.Следующие значения давления (которые приблизительно эквивалентны) являются желаемым давлением для автоклавирования:
  • 15 фунтов / дюйм2 (15 фунтов на квадратный дюйм)
  • 106 кПа (106 килопаскалей)
  • 1 атм (1 атмосфера)
  • 1 кгс / см2 (1 килограмм силы на квадратный сантиметр)
  • 776 торр
  • 776 мм рт. Ст. (776 миллиметров ртутного столба)
• Шаг 6
  Если автоклав автоматический, нагрев отключится, и давление начнет падать после завершения цикла стерилизации.Если автоклав не автоматический, выключите нагрев или снимите автоклав с источника тепла через 30 минут, если предметы обернуты, и через 20 минут, если предметы неупакованы. Подождите, пока манометр не покажет «ноль», чтобы открыть автоклав. Откройте крышку или дверцу, чтобы выпустить оставшийся пар. Оставьте пакеты с инструментами или предметы в автоклаве до полного высыхания, что может занять до 30 минут.
  Примечание: предметы необходимо снимать насухо. После извлечения из автоклава влажные пакеты втягивают микроорганизмы из окружающей среды и должны считаться загрязненными.

• Шаг 7
  Удалите упаковки, барабаны или неупакованные предметы из автоклава, используя стерильные съемники.Чтобы предотвратить образование конденсата после извлечения пакетов или бочек из автоклава, поместите их на поверхность, покрытую стерильной бумагой или тканью, пока они не остынут. Перед хранением подождите, пока пачки, бочки или предметы не достигнут комнатной температуры (это может занять до нескольких часов).
• Шаг 8
  Храните предметы правильно.

echo «

» .strtoupper («Стерилизация сухим жаром»). «
«;

• Шаг 1
  Шаг 2
  Либо 1) оберните инструменты и другие предметы фольгой, двухслойной хлопчатобумажной тканью или муслиновой тканью; 2) кладите неупакованные инструменты и другие предметы на поднос или полку; или 3) поместите инструменты и другие предметы в металлический контейнер с крышкой.
• Шаг 3
  Поместите инструменты и другие предметы в духовку и нагрейте до заданной температуры. В духовке должен быть термометр или датчик температуры, чтобы гарантировать достижение заданной температуры.

  Используйте приведенный здесь список, чтобы определить подходящее время стерилизации для инструментов. Время отражает продолжительность стерилизации инструмента при соответствующей температуре.

  • 170 ‘C (340’ F) — 1 час
  • 160 ‘C (320’ F) — 2 часа
  • 150 ° C (300 ° F) — 2.5 часов
  • 140 ° C (285 ° F) — 3 часа

  Примечание. Поскольку сухой жар может притупить острые инструменты и иглы, эти предметы не следует стерилизовать при температуре выше 160 ° C.

• Шаг 4
  Дайте предметам остыть в духовке перед тем, как вынуть их. Когда они остынут, извлеките предметы стерильными пикапами и немедленно используйте или храните.
• Шаг 5
  Храните предметы правильно.

echo «

» .strtoupper («Химическая (« холодная ») стерилизация»).«
»;

Химическая стерилизация используется для инструментов и других предметов, которые чувствительны к нагреванию или когда методы, требующие тепла, недоступны. Предметы стерилизуются путем замачивания их в определенном химическом растворе (например, содержащем глутаровый альдегид) с последующим ополаскиванием в стерильной воде.

НЕ ИСПОЛЬЗУЙТЕ ЭТИ РЕШЕНИЯ ДЛЯ ВЫСОКОЙ ДЕЗИНФЕКЦИИ. Перекись водорода (6%). Перекись водорода быстро теряет эффективность при воздействии тепла и света и требует бережного хранения.Кроме того, этот раствор может вызвать коррозию, которая может повредить лапароскопы и металлические, резиновые и пластиковые предметы. Формальдегид. Этот раствор, потенциально вызывающий рак, вызывает сильное раздражение кожи, глаз и дыхательных путей. Спирт (60-90% этилового или изопропилового). Хотя алкоголь эффективен против широкого круга микроорганизмов, он не убивает все вирусы. Йодофоры. Наиболее распространенные йодофоры — это антисептические препараты, которые не подходят для дезинфекции.Их не рекомендуют, потому что их низкий уровень йода позволяет им заражаться микроорганизмами. Спорицидин. Этот продукт на основе глутарового альдегида также содержит фенол. В прошлом он был доступен во многих частях мира. Однако тестирование показало, что он неэффективен для химической HLD и стерилизации. Антисептики. никогда не следует использовать для HLD. Они предназначены для нанесения на кожу, а не на предметы. Никогда не следует использовать дезинфицирующие средства низкого уровня для ДВУ, поскольку они не обладают достаточной убивающей способностью.

• Шаг 1
  Обеззараживайте, очищайте и тщательно просушивайте все инструменты и другие предметы, подлежащие стерилизации. Вода из влажных вещей разбавит химический раствор, тем самым снизив его эффективность.
• Шаг 2
  Приготовьте глутаральдегид (или другой химический раствор), следуя инструкциям производителя, или используйте раствор, который был приготовлен ранее, если он прозрачный (не мутный) и не просрочен.После приготовления раствора переложите его в чистую емкость с крышкой. Всегда маркируйте контейнер с датой приготовления раствора и датой истечения срока его годности.

  Примечание. Большинство имеющихся в продаже растворов глутаральдегида можно использовать в течение как минимум двух недель после приготовления. Следуйте инструкциям производителя. В идеале следует использовать индикаторную полоску каждый раз, когда нужно использовать раствор, чтобы определить, действительно ли раствор по-прежнему эффективен.

• Шаг 3
  Откройте все навесные инструменты и другие предметы и разберите те, которые имеют выдвижные или состоящие из нескольких частей.Для обеспечения стерилизации раствор должен контактировать со всеми поверхностями. Полностью погрузите в раствор все инструменты и другие предметы. Все части предметов должны находиться под поверхностью раствора. Поставьте все миски и емкости вертикально, а не вверх дном, и залейте раствором.

• Шаг 4
  Следуйте инструкциям производителя относительно времени, необходимого для стерилизации. Как правило, если раствор содержит глутаральдегид, накройте контейнер и дайте инструментам и другим предметам впитаться не менее 10 часов.Не добавляйте и не удаляйте какие-либо элементы в раствор после того, как начался отсчет времени.
• Шаг 5
  Извлеките предметы из раствора, используя большие стерильные пипетки.
• Шаг 6
  Тщательно промойте стерильной водой, чтобы удалить остатки химических стерилизаторов на предметах. Этот остаток токсичен для кожи и тканей.

  Примечание: кипяченая вода не стерильна; кипячение не гарантирует уничтожения бактериальных эндоспор.

• Шаг 7
  Храните предметы правильно.

echo «

» .strtoupper («Дезинфекция высокого уровня (ДВУ)»). «
»;

Когда стерилизация недоступна или неосуществима, дезинфекция высокого уровня (HLD) становится третьим шагом в обработке инструментов. ДВУ — это не то же самое, что стерилизация. HLD уничтожает бактерии, вирусы, грибки и паразитов, но не убивает все бактериальные эндоспоры, вызывающие такие заболевания, как столбняк и газовая гангрена. HLD подходит для предметов, которые будут контактировать с поврежденной кожей или неповрежденными слизистыми оболочками.

Многие учреждения используют метод HLD в качестве резервной копии основного метода стерилизации. Существует три метода ДВУ: кипячение, химическое ДВУ и пропаривание.

• Кипячение. Кипячение — это простой метод ДВУ, который можно выполнять в любом месте, где есть доступ к чистой воде и источнику тепла. Используя этот метод, инструменты и другие предметы помещают в кастрюлю или бойлер, а воду нагревают до кипения в течение 20 минут.
• Химическая HLD. Химическая ДВУ, как и химическая стерилизация, используется для термочувствительных предметов, таких как лапароскопы, или когда источник тепла недоступен.Химический ДВУ отличается, потому что:
  —Для ДВУ можно использовать глутаральдегид или хлор. (Хлор нельзя использовать для стерилизации или для HLD лапароскопов или других эндоскопов.)
  —Время замачивания короче для HLD
  —Предметы ДВУ можно ополаскивать кипяченой водой. (Стерилизованные предметы необходимо ополаскивать стерильной водой.)
  —В большинстве случаев единственными химическими веществами, подходящими для ДВУ, являются хлор и глутаральдегид. Никогда не используйте спирт, карболовую кислоту (например, лизол, фенол), глюконат хлоргексидина с цетримидом (например, савлон), глюконат хлоргексидина (например, гибитан, гибискраб), хлороксиленол (например, деттол), перекись водорода или йодофоры (например, бетадин). .
• Приготовление на пару. Предметы готовятся в пароварке, состоящей из одного-трех ярусов. Пропаривание — лучший метод HLD для перчаток и полезный метод HLD для канюль, используемых во время ручной вакуумной аспирации (MVA). Хотя канюли MVA можно обрабатывать другими методами, ДВУ перчаток другими методами менее целесообразно, потому что:
  —Перчатки могут подвергнуться ДВУ при кипячении, но это не рекомендуется, так как трудно высушить перчатки должным образом, не загрязнив их. Если необходимо HLD перчатки путем кипячения, перчатки можно носить мокрыми.
  — Использование химикатов для перчаток HLD непрактично, так как их сложно смыть должным образом с остатков химикатов.

echo «

» .strtoupper («Обычные дезинфицирующие средства высокого уровня»). «
«;

Двумя химическими веществами, которые наиболее доступны в большинстве стран с ограниченными ресурсами, которые подходят для HLD инструментов и других предметов, являются хлор и глутаральдегид.

• Хлор. Эффективен против широкого спектра микроорганизмов, включая туберкулезные микроорганизмы. Не обязательно убивает все бактериальные эндоспоры.
  —Преимущества: быстродействие; обычно недорого.
  — Недостатки: может вызывать коррозию металлов при длительном контакте (более 20 минут), может вызывать раздражение кожи, глаз и дыхательных путей; не следует использовать на эндоскопическом оборудовании.
• Глутаральдегид (например, Cidex). Эффективен против широкого спектра микроорганизмов, включая туберкулезные микроорганизмы. Вымачивание в течение 10 часов может убить бактериальные эндоспоры.
  —Преимущества: не вызывает коррозии инструментов и других предметов при использовании по назначению.
  — Недостатки: раздражает кожу, глаза и дыхательные пути. При работе с глутаровым альдегидом надевайте перчатки, готовьте раствор в хорошо вентилируемом помещении и ограничивайте воздействие химического вещества.

Стерилизация от комаров открывает новые возможности для борьбы с чикунгунья, денге и вирусом Зика

Метод стерилизации самцов комаров с помощью радиации скоро будет опробован в рамках глобальных усилий в области здравоохранения по борьбе с такими заболеваниями, как чикунгунья, денге и Зика.

Метод стерильных насекомых (МСН) — это одна из форм контроля над рождаемостью насекомых. Процесс включает выращивание большого количества стерилизованных самцов комаров в специальных помещениях, а затем их выпуск для спаривания с самками в дикой природе. Поскольку они не производят потомства, популяция насекомых со временем сокращается.

Специальная программа исследований и подготовки кадров по тропическим болезням (СПТБ) и Международное агентство по атомной энергии (МАГАТЭ) в партнерстве с Продовольственной и сельскохозяйственной организацией Объединенных Наций (ФАО) и ВОЗ разработали руководящий документ для стран, которые проявили интерес к тестированию метода стерильных насекомых (МСН) на комарах Aedes .

Полмира подвержена риску лихорадки денге

«Половина населения мира в настоящее время подвержена риску лихорадки денге», — сказал д-р Сумья Сваминатан, главный научный сотрудник ВОЗ. «И, несмотря на все наши усилия, текущие усилия по контролю над этим терпят неудачу. Нам отчаянно нужны новые подходы, и эта инициатива многообещающая и захватывающая ».

В последние десятилетия заболеваемость лихорадкой денге резко возросла из-за изменений окружающей среды, нерегулируемой урбанизации, транспорта и путешествий, а также недостаточных устойчивых инструментов борьбы с переносчиками болезней и их применения.

Вспышки денге в настоящее время происходят в нескольких странах, особенно на Индийском субконтиненте. Бангладеш сталкивается с самой серьезной вспышкой денге с момента ее первой зарегистрированной эпидемии в 2000 году. В южноазиатской стране с января 2019 года число заболевших выросло до более чем 92 000, при этом за последние недели в больницах был зафиксирован пик ежедневных госпитализаций более чем 1500 новых пациентов с денге. и является одной из стран, проявивших интерес к технике стерильных насекомых.

Болезни, передаваемые комарами, такие как малярия, денге, Зика, чикунгунья и желтая лихорадка, составляют около 17% всех инфекционных заболеваний во всем мире, унося более 700 000 жизней каждый год и причиняя страдания еще большему числу людей.Вспышка вируса Зика в Бразилии в 2015 году была связана с увеличением числа детей, рожденных с микроцефалией.

Новый метод оказался успешным против насекомых, нападающих на сельскохозяйственные культуры и домашний скот

Метод стерильных насекомых был впервые разработан Министерством сельского хозяйства США и успешно использовался для борьбы с насекомыми-вредителями, поражающими сельскохозяйственные культуры и домашний скот, такими как средиземноморская плодовая муха и муха-черви Нового Света. В настоящее время он используется во всем мире в сельскохозяйственном секторе на шести континентах.

В руководстве по использованию этого метода для борьбы с болезнями человека рекомендуется применять поэтапный подход, который дает время для проверки эффективности стерилизованных насекомых. Эпидемиологические индикаторы позволяют отслеживать влияние метода на передачу болезней. Он также содержит рекомендации по массовому производству стерильных комаров, вовлечению правительства и общественности, измерению воздействия этой техники и оценке экономической эффективности.

«Страны, серьезно пострадавшие от денге и вируса Зика, проявили реальный интерес к испытанию этой технологии, поскольку она может помочь подавить устойчивость комаров к инсектицидам, которые также негативно влияют на окружающую среду», — сказала Флоренс Фук, ученый из TDR . .

Совместные усилия включают планы по поддержке трех многострановых групп научно-исследовательских институтов, агентств по борьбе с переносчиками болезней и заинтересованных сторон общественного здравоохранения в тестировании метода стерильных насекомых против комаров Aedes. «Использование метода стерильных насекомых в сельскохозяйственном секторе за последние 60 лет показало, что это безопасный и эффективный метод», — сказал Жереми Буйе, медицинский энтомолог Объединенного отдела ядерных методов в продовольствии и сельском хозяйстве ФАО / МАГАТЭ.«Мы рады сотрудничать с СПТБ и ВОЗ, чтобы внедрить эту технологию в сектор здравоохранения для борьбы с человеческими болезнями».

Примечание редакции


TDR, Специальная программа исследований и подготовки специалистов по тропическим болезням, представляет собой глобальную программу научного сотрудничества, которая помогает облегчить, поддержать и повлиять на усилия по борьбе с болезнями бедности. Его спонсорами являются Детский фонд Организации Объединенных Наций (ЮНИСЕФ), Программа развития Организации Объединенных Наций (ПРООН), Всемирный банк и ВОЗ.

Принцип, процедура, типы, использование • Microbe Online

Последнее обновление: 21 июня 2021 г.

Автоклав — это герметичное устройство (похожее на скороварку), которое уничтожает микроорганизмы с помощью насыщенного пара под давлением. Использование влажного тепла способствует уничтожению всех микроорганизмов, включая термостойкие эндоспоры, что достигается путем нагревания материалов внутри устройства до температур выше точки кипения воды. Согласно принципу газовых законов, этого можно достичь, подняв давление внутри устройства .

Температура кипения (давление пара равно давлению окружающей атмосферы) воды изменяется в зависимости от давления окружающей среды. Например, вода закипает при температуре 100 ° C на уровне моря (более высокое давление), но при температуре 93,4 ° C на высоте 1905 метров (более низкое давление). Итак, в закрытом устройстве, если мы увеличиваем давление, температура, при которой вода закипает, также увеличивается.

Обычная процедура заключается в нагревании до давления пара 1,1 кг / квадратный сантиметр (кг / см ² ) [15 фунтов / квадратный дюйм (фунт / дюйм ² )], что дает температуру 121 ° C .При 121 ° C время автоклавирования для достижения стерилизации обычно считается равным 15-20 мин , в зависимости от объема загрузки. Чтобы убедиться, что стерилизация прошла успешно, необходимо обеспечить:

1. Воздух
   следует откачать воздух, чтобы камера наполнилась паром.
2. Статьи
   должны быть помещены в автоклав так, чтобы пар мог легко проникать в них.

Обратите внимание, что не давление автоклава убивает микроорганизмы, а высокая температура, которая может быть достигнута, когда пар находится под давлением.

Если стерилизуются громоздкие предметы, передача тепла внутрь будет медленной, и время нагрева должно быть достаточно большим, чтобы объект имел температуру 121 ° C в течение 15 минут. Увеличенное время также требуется при автоклавировании больших объемов жидкостей, поскольку для достижения температуры стерилизации большим объемам требуется больше времени.

Компоненты автоклава

Автоклав состоит из трех частей: напорной камеры, крышки и электрического нагревателя .Автоклав с гравитационным вытеснением

Камера давления состоит из —

• Большой цилиндр (вертикальный или горизонтальный), в который помещаются стерилизуемые материалы. Он изготовлен из пушечной бронзы или нержавеющей стали и помещен в поддерживающий металлический корпус через
• Паровую рубашку (отсек для воды)

Крышка крепится винтовыми зажимами и герметизируется с помощью асбестовой шайбы. На крышке расположены следующие элементы:

• Выпускной кран для выпуска воздуха и пара
• Манометр (устанавливает давление на определенном уровне).
  уровень)
• Предохранительный клапан (для удаления избыточного пара)

К рубашке прикреплен электрический нагреватель ; который нагревает воду для образования пара.

Типы автоклавов

Доступны различные типы автоклавов.

1. Автоклав гравитационного вытеснения: это наиболее распространенный тип, используемый в лабораториях, доступен в различных размерах и размерах.
   1. Вертикальный тип (малый объем)
   1. Горизонтальный автоклав (большой объем)
2. Автоклав вытеснительного типа с положительным давлением
3. Автоклав вытесняющего типа с отрицательным давлением (вакуум).

Процедура

• Поместите стерилизуемый материал в камеру высокого давления и наполните цилиндр достаточным количеством воды.
• Закройте крышку и наденьте электрический нагреватель.
• Отрегулируйте предохранительный клапан на необходимое давление.
• После того, как вода закипит, дайте паровоздушной смеси выйти через выпускной кран до тех пор, пока не будет вытеснен весь воздух.
  • Это можно проверить, пропустив паровоздушную смесь, выходящую из выпускного крана, в ведро с водой через соединительная резиновая трубка.
  • Когда пузырьки воздуха перестают поступать в ведро, это означает, что весь воздух вытеснен паром.
• Закройте сливной кран. Давление пара внутри повышается, и когда оно достигает желаемого установленного уровня (например, 15 фунтов на квадратный дюйм в большинстве случаев), предохранительный клапан открывается, и избыточный пар выходит наружу.
• Отсчитайте период удержания от этого момента времени, который в большинстве случаев составляет около 15 минут.
• После периода выдержки выключите электрический нагреватель и дайте автоклаву остыть до тех пор, пока манометр не покажет, что давление внутри равно атмосферному давлению.
• Медленно откройте сливной кран и дайте воздуху войти в автоклав.
• Откройте крышку автоклава и удалите стерилизованные материалы.

Контроль стерилизации

Современные автоклавы имеют устройства для
поддерживать надлежащее давление и записывать внутреннюю температуру во время работы.
Независимо от наличия такого устройства давление в автоклаве должно быть
периодически проверяется и обслуживается.

Существует несколько методов обеспечения стерильности при автоклавировании.Эффективность стерилизации в автоклаве можно контролировать с помощью:

1. Биологический индикатор : Споры Geobacillus stearothermophilus (ранее называвшиеся Bacillus stearothermophilus ) являются лучшим индикатором, поскольку они устойчивы к обработке паром. Их споры погибают за 12 минут при 121 ° C. Центры по контролю за заболеваниями (CDC) рекомендуют еженедельно автоклавировать культуру, содержащую термостойкие эндоспоры Geobacillus stearothermophilus, для проверки работы автоклава.Полоска со спорами и ампула со средой, заключенная в мягкий пластиковый флакон, имеются в продаже. Флакон помещают в центр стерилизуемого материала и автоклавируют. Затем внутренняя ампула разбивается, высвобождая среду, и весь контейнер инкубируется. Если в автоклавированной культуре не наблюдается роста, стерилизация считается эффективной.
2. Ленты для автоклавирования: Бумажная лента на липкой основе с термочувствительной химической индикаторной маркировкой, меняющей цвет или диагональные полосы дисплея, слова «стерильный» или «автоклавированный» при воздействии эффективной температуры стерилизации (121 ° C) используется для проверки эффективности автоклавов.
   Эти ленты размещаются внутри и рядом с центром больших упаковок, поскольку проникновение тепла в эти области обеспечивает надлежащее проникновение тепла (например, когда большой кусок мяса жарится, поверхность может быть хорошо обработана, в то время как центр все еще может оставаться ненагретым, и если центр достаточно нагрет, значит, желаемая температура достигнута). Ленты для автоклавов не являются полностью надежными, поскольку они не показывают, как долго поддерживались соответствующие условия.
3. Другими полезными индикаторами являются термопара и трубка Брауна. Термопара — это устройство для измерения температуры, которое регистрирует температуру с помощью потенциометра. Трубка Брауна (изобретенная Альбертом Брауном в 1930 году) содержит термочувствительный красный краситель, который становится зеленым после воздействия определенной температуры в течение определенного периода времени. Преобразование цвета красителя дает информацию о продолжительности времени и температуре.

Использование автоклава

Автоклав особенно полезен для
среды, содержащие воду, которую нельзя стерилизовать сухим жаром.Это метод
по выбору для стерилизации следующего:

1. Хирургические инструменты
2. Питательные среды
3. Автоклавируемые пластиковые контейнеры
4. Пластиковые пробирки и наконечники для пипеток
5. Растворы и вода
6. Биологически опасные отходы
7. Стеклянная посуда (устойчивая к автоклавированию)

Меры предосторожности

Никогда не автоклавируйте жидкость в закрытом контейнере.

Следует соблюдать следующие меры предосторожности.
взято при использовании автоклава.

1. Автоклав не следует использовать для стерилизации водонепроницаемых материалов, таких как масла и смазки, или сухих материалов, таких как перчаточный порошок.
2. Материалы загружаются таким образом, чтобы обеспечить эффективное проникновение пара (не переполнять камеру). Более эффективно и безопасно работать с двумя отдельными незаполненными грузами, чем с одной загруженной.
3. Не рекомендуется заворачивать предметы в алюминиевую фольгу, так как это может помешать проникновению пара. Изделия должны быть завернуты в материалы, пропускающие пар.
4. Материалы не должны касаться стенок или верха камеры.
5. Чистые предметы и отходы следует автоклавировать отдельно.
6. Не следует использовать полиэтиленовые лотки, так как они могут расплавиться и вызвать повреждение автоклава.

Ссылки и дополнительная литература

Сопутствующие товары

Управление отходами — Портал pSMILE

Приносим извинения за неудобства, но страница, к которой вы пытались получить доступ, находится не по этому адресу.Вы можете использовать приведенные ниже ссылки, чтобы помочь вам найти то, что вы ищете.

Если вы уверены, что имеете правильный веб-адрес, но столкнулись с ошибкой, пожалуйста,
связаться с Администрацией сайта.

Спасибо.

Возможно, вы искали…

Управление отходами

Гематология Диаграмма Леви-Дженнингса СОП

Ссылка на аудит: Раздел статей о тестировании и контроле

Процедура построения карты CD4 Леви-Дженнингса

Ссылка на аудит: Раздел

статей о тестировании и контроле

Процедура построения диаграммы Леви-Дженнингса для химии

Ссылка на аудит: Раздел

статей о тестировании и контроле

СОП по контролю документов Anglo Lab

Ссылка на аудит: Раздел

«Эксплуатация средств тестирования»

Приложение A QSE 1 — Документы и записи

Ссылка на аудит: Раздел управления качеством

Приложение C QSE 3- Персонал.

Ссылка на аудит: Раздел управления качеством

SmartLab Tools: часто задаваемые вопросы

Справка по аудиту — Раздел статей о тестировании и контроле
Этот часто задаваемый вопрос предназначен для следующих документов: Рассчитать среднее значение, SD, CV%, контрольный диапазон -…

CAPRISA Lab Написание СОП и управление документами

Ссылка на аудит: Раздел

«Эксплуатация средств тестирования»

СОП по обучению и оценке компетентности

Ссылка на аудит: организация и персонал

Приложения и рекомендации по разработке плана управления качеством

Ссылка на аудит: Раздел управления качеством

.