Стерилизация это комплекс мероприятий: Стерилизация

Содержание

Что такое «Асептика» — Чистящие и моющие средства компании «АЦЕЯ»


Асептика


В этой статье мы поделимся с вами интересной и полезной информацией о том, что такое асептика и где она применяется.


Асептика и антисептика. Понятия и отличия.


Для того, чтобы иметь понимание, что такое асептика и зачем она нужна, давайте разберемся, а чем она отличается от антисептики. Казалось бы, такие похожие и созвучные термины, но что же они представляют из себя на самом деле.


Асептика — это метод, обеспечивающий предупреждение и попадание микробов в рану при ее обработке. Она включает в себя стерилизацию инструментов и обработку рук оказывающих медицинскую помощь.


Основным законом асептики является следующее — все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно.


А антисептика -это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов на поверхностях (коже, ранах и не только) или в организме в целом.


То есть первое является предупреждением попадания микроорганизмов, а второе борется и уничтожает те микробы, которые уже попали на поверхность.


История создания асептики.


История появления понятия асептика началась в прошлом веке во Франции. Ученый по фамилии Пастер смог доказать общественности, что процессы гниения осуществляются из-за микроорганизмов, их попадания в среду и взаимодействия. Далее хирург Листер, изучив работы первого ученого предположил, что и процесс заражения и болезни человека происходит из-за попадании в него микроорганизмов. Но доказал данную теорию ученый русского происхождения Пирогов. Интересно, что задолго до своих предшественников он уже применял в целях дезинфекции ран спирт и йод.


Что включает в себя асептика?


Для начала напомним вам понятие дезинфекция — это это полное уничтожение вредоносных для человеческого организма бактерий (микроорганизмов), которые вызывают ряд вирусных и кишечных инфекций.


Ее применяют для профилактики распространения инфекционных заболеваний. Чтобы формировать или поддерживать безопасные условия жизни, вредные микроорганизмы уничтожаются со всех объектов внешней среды.


Основная — задача — это предупреждение или полное уничтожение процессов размножения микробов или по другому, возбудителей болезней.


Бывают несколько уровней или видов дезинфекции: высокий, средний и низкий. Первый — уничтожает все, кроме споровых форм бактерий, второй — борется с вирусами (что сейчас очень актуально), микробактериями туберкулеза и грибами. И третий — уничтожает почти все бактерии, кроме отдельных видов вирусов и грибов.


Все мы знаем, что большая часть хирургических вмешательств подразумевает собой нарушение целости кожных покровов, а значит и возможность проникновения в организм микробов. В свою очередь асептика и антисептика борются и предупреждают попадание таковых в подкожные слои человеческого организма.


Исходя из этого, можно сделать вывод о том, что асептика есть ни что иное, как создание стерильных условий. Таковые вырабатываются путем дезинфекции и стерилизации всего, что соприкасается с ранами человека, а также всего, что его окружает до, во время и после болезни. Микробы могут попадать в организм не только при прямом контакте, но и воздушно-капельным путем, например, через загрязнённый воздух.


Так что же включает в себя асептика:


·       Обеззараживание кожи человека перед любой процедурой. Это может быть как операция, так и например маникюр.


·       Обеззараживание предметов, которые соприкасаются с кожей;


·       Очищение рабочего места;


·       Уборка всего помещения в целом


Виды асептики


Существует несколько основных видов асептики, главными из которых являются: физический и химический.


·       Физический — то есть воздействие сухим или горячим воздухом. Например, когда вы варите продукты. Здесь уже в отличие от первого пункта, организмы уничтожаются.


·       Химический — проводится с помощью дезинфектантов.


·       И заключительный, комбинированный — в данном случаю выше представленные методы могут использоваться совместно.


В основном химический метод применяются для обеззараживания инструментов, посуды, белья и т.д


Методы физической асептики


Суть физических методов асептики заключается в обеззараживании объектов путем воздействия на них физическими факторами — высокой температурой, ультрафиолетовым излучением, ультразвуком и т.д.


Рассмотрим виды такого метода:


1.     Кипячение — он не обладает высокой эффективностью, но при этом показан для мытья посуды или других предметов быта.

Вспомните, как ваши родители отчищали белье, которое не отстиралось: варили в кастрюле (закрытой ёмкости) с полным погружением. И конечно, добавляли соду. Это и есть основа применения такой методики.;


2.     Паровая и воздушная стерилизация или по другому термическая — это основной метод для обеззараживания медицинских инструментов;


3.     Ультрафиолетовое облучение;


4.     Ионизирующее излучения;


5.     Ультразвук.


Полным уничтожением микробов с медицинских предметов называют стерилизацией. Она также имеет несколько видов: автоклавирование, давление сухим жаром, прокалывание, кипячение, обжигание и замачивание в дезинфектантах. Также предметы обеззараживаются под воздействие гамма-лучей.


Методы химической асептики


Из названия понятно, что в данном случае для обеззараживания используются средства с растворами специальных химикатов или дезинфицирующие средства. Они бывают нескольких видов:


Средства дезинфекции различают по назначению, их основе и форме выпуска.


Соответственно, дезинфектанты подразделяют по основному действующему веществу:


1.    На основе хлора. Их главная отличительная особенность — отсутствие запаха, однако они вызывают коррозию металла.


2.    На основе альдегидов. Они легко проникают в любые ткани и не вызывают коррозию.


3.    На основе спирта. Например, скрабы для лица.


4.    На основе четвертичных аминов. Их используют в моющих средствах.


5.    На основе гуанидинов. Чаще всего их используют в пищевой промышленности.


Обработка дезинфиктантами бывает двух видов: погружение в дезинфицирующее средство и протирание;


Инструменты, которые использует медицинский персонал чаще всего обрабатываются первым путем. А само помещение и его поверхности обрабатывают первым. Большие поверхности комнат (палат) — стены, окна и т.д орошают раствором дезинфектанта из расчета 300 мл/м2. Таким же способом уничтожают микробы и на раковинах и унитазах.


Поверхности помещения (пол, подоконники, стены, двери), мебели и оборудования должны обрабатываться дезсредствами путем протирания. После каждого пациента/клиента проводится уборка помещения, во время которой дезинфицируют все поверхности, с которыми соприкасался посетитель. В конце рабочего дня дезинфицируются все помещение с мытьем полов, плинтусов, подоконников, оборудования и мебели.


Применение асептики


Исходя из всего вышеописанного, можно сделать вывод о том, что асептика и антисептика неразделимы.


В каждом из этих понятий применяются почти одинаковые методы борьбы с микроорганизмами, самыми действенными из которых, являются дезинфицирующие средства или дезинфектанты.


Конечно, в первую очередь показания к применению дезинфектантов пользуются спросов у медицинского персонала. В лечебных учреждениях врачи и весь мед. персонал имею право использовать данные средства только в соответствии с приказом вышестоящего руководства. Чаще всего там описана дозировка дезинфектантов и время их использования. Еще одно важное замечание, что почти все дезинфицирующие .растворы должны применяться однократно и использованием средств первичной защиты (масок, перчаток и других).


Наша компания производит одни из самых качественных продуктов для проведения асептических и антисептических процедур. В наличии у нас имеется огромный и разнообразный вид растворов и других видов дезинфектантов. Мы знаем и понимаем, как важно качество данных, особенно при использовании их в медицинских целях. Ведь от этого зависит человеческие жизни, как бы это громко не звучало.


Ну и конечно, мы понимаем, что сегодня каждый человек хочет уберечь себя от нежелательной болезни, т.е попадания в организм опасных микробов, поэтому предлагаем целый перечь антибактериальных средств защиты.


 


 


 


 

Термины и определения, используемые в области дезинфекции

Термины и определения понятий, используемых в области стерилизации и дезинфекции

Антисептика
— комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение
микробов в ране или в организме в целом.

Асептика
— система мероприятий, направленных на предупреждение внедрения возбудителей
инфекции в рану, ткани, органы при хирургических операциях, перевязках и других
лечебных и диагностических процедурах.

Бактериостатичность
— свойства агентов химической, физической и биологической природы
препятствовать размножению бактерий и вызывать бактериостаз.

Бактерицидность
— свойство агентов химической, физической и биологической природы вызывать
гибель бактерий.

Бактерицидное средство
— дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление бактерий в
вегетативной форме.

Величина контаминации
— количество микроорганизмов на медицинских изделиях или их частях.

Вирулицидное средство
— дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее инактивацию вирусов.

Вторичная контаминация
— контаминация объектов после их стерилизации или дезинфекции.

Дезинфекционная
деятельность
— работы и услуги, включающие
разработку, испытания, производство, хранение, транспортировку, реализацию
средств дезинфекции, стерилизации, дезинсекции, дератизации, их применение для
уничтожения возбудителей инфекционных, паразитарных заболеваний и их
переносчиков, а также контроль за эффективностью и безопасностью проводимых
дезинфекционных и стерилизационных мероприятий.

Дезинфекционные
мероприятия
— работы по профилактической
дезинфекции (дезинфекция, деконтаминация, дезинсекция, дератизация), очаговой
дезинфекции (текущая и заключительная дезинфекция, дезинсекция, дератизация), а
также по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий
медицинского назначения.

Дезинфекция
— умерщвление на объектах или удаление с объектов патогенных микроорганизмов
(обеззараживание) и их переносчиков.

Дезинфекция Высокого
Уровня (ДВУ)
— уничтожение всех вегетативных
бактерий (включая микобактерии туберкулеза), вирусов, грибов и большинства
спор, однако возможно сохранение некоторых спор бактерий.

Дезинфицирующий агент
— действующее вещество (ДВ), обеспечивающее умерщвление патогенных и
условно-патогенных микроорганизмов на (в) объектах окружающей среды.

Дезинфицирующее
средство
— физическое или химическое средство, включающее
дезинфицирующий агент — действующее вещество (ДВ).

Деконтаминация
— снижение количества микроорганизмов на объектах.

Инициальное заражение
— заражение объектов патогенными микроорганизмами до дезинфекции или
стерилизации.

Инициальная
контаминация
— контаминация объектов до стерилизации
или дезинфекции.

Контаминанты —
микроорганизмы, обсеменяющие объекты.

Контаминация
— обсеменение объектов микроорганизмами.

Нейтрализатор стерилизующего
(дезинфицирующего) агента
— вещество, которое прекращает
действие стерилизующего (дезинфицирующего) агента.

Обеззараживание
— умерщвление (или удаление) на (в) объектах окружающей среды патогенных и
условно-патогенных микроорганизмов.

Предстерилизационная
очистка
— удаление загрязнений с изделий медицинского
назначения, подлежащих стерилизации.

Противоэпидемические
мероприятия
— комплекс санитарно-гигиенических,
лечебно-профилактических, вакцинологических, дезинфекционных и административных
мероприятий, направленных на предупреждение возникновения, локализацию и
ликвидацию возникших эпидемических очагов инфекционных и паразитарных болезней.

Профилактическая
дезинфекция
— мероприятия по дезинфекции
(обеззараживание), дезинсекции и дератизации, проводимые при отсутствии
выявленного источника возбудителя инфекции с целью снижения уровня микробной
контаминации различных объектов (профилактическая деконтаминация), снижения
численности членистоногих (профилактическая дезинсекция) и грызунов (профилактическая
дератизация) в помещениях, населенных пунктах и природных станциях.

Профилактическая
деконтаминация
— снижение микробной обсеме-ненности
объектов при отсутствии выявленного источника возбудителя инфекции.

Резистентность
— устойчивость организма к воздействию различных повреждающих факторов.

Спороцидное средство
— дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление спор
микроорганизмов.

Стерилизация изделий
— процесс умерщвления на (в) изделиях микроорганизмов всех видов, находящихся
на всех стадиях развития.

Стерилизующий агент
— действующее начало, обеспечивающее гибель микроорганизмов всех видов на (в)
изделиях медицинского назначения.

Стерилизующее средство
— физическое или химическое средство, включающее в себя стерилизующий агент.

Фунгицидное средство
— дезинфицирующее средство (препарат), обеспечивающее умерщвление грибов.

Цикл дезинфекции
(стерилизации)
— минимальный интервал времени для
загрузки, дезинфекции (стерилизации) и выгрузки при дезинфекции (стерилизации)
изделий медицинского назначения в кипятильнике, в паровом, воздушном, газовом
стерилизаторе или емкости.

Экспозиционная выдержка
— промежуток времени для наступления дезинфекции (стерилизации).

Организация сестринского дела. Тесты квалификационные

Вопрос

1 1.  Определите, какое утверждение является верным:

Варианты ответов

1 1)  дезинфекция – это комплекс мероприятий, направленный на уничтожение
патогенной и условно-патогенной микрофлоры, кроме спор (+)

2 2)  дезинфекция – это комплекс мероприятий, направленный на уничтожение
всех форм микрофлоры, включая споры

3 3)  дезинфекция – это комплекс мероприятий, направленный на уничтожение
всех форм бактерий, кроме спор

4 4)  дезинфекция – это мероприятия, направленные на уничтожение биологиче-ских
и химических загрязнений

5 5)  дезинфекция – это мероприятия, направленные на очистку инструментария
от лекарственных загрязнений

2 2.  Назовите фактор передачи  парентерального пути заражения:

Варианты ответов

1 1)  медицинский инструментарий (+)

2 2)  пищевые продукты

3 3)  вода

4 4)  посуда

5 5)  кровососущие насекомые

3 Определите, какое из предложенных утверждений является верным:

Варианты ответов

1 стерилизация – это комплекс мероприятий, направленных на очистку ин-струментария
от биологических и химических загрязнений

2 стерилизация – это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение всех форм
микрофлоры, включая споры (+)

3 стерилизация – это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение
патогенных и непатогенных микроорганизмов

4 стерилизация – это комплекс мероприятий, направленных на остановку развития
патогенных микроорганизмов

5 стерилизация – это комплекс санитарно-гигиенических мероприятий

4 9.   Что из перечисленного относится к видам  дезинфекции:

Варианты ответов

1 1)  химическая

2 2)  паровая

3 3)  очаговая (+)

4 4)  газовая

5 5)  механическая

5 5.  Что из перечисленного относится к методам дезинфекции:

Варианты ответов

1 1)  физические воздействия на объект (+)

2 2)  стерилизация

3 3)  очаговые мероприятия

4 4)  профилактические мероприятия

5 5)  дератизация

6 6.  Для дезинфекции использованных многоразовых инструментов не допус-кается
проведение:

Варианты ответов

1 1)  кипячения инструментов в дистиллированной воде – 30 минут

2 2)  кипячения инструментов в 2% растворе пищевой соды – 15 минут

3 3)  погружение инструментария в дезинфицирующее средство

4 4)  автоклавирование

5 5)  уничтожение инструментария (+)

7 7.  Медицинская сестра в режимном кабинете производит смену халата:

Варианты ответов

1 1)  каждую смену (+)

2 2)  один раз в неделю

3 3)  один раз в три дня

4 4)  кратность смены халата не регламентируется

5 5)  после каждой серии манипуляций

8 8.   Перед проведением инъекций медицинская сестра обрабатывает руки с
выполнением:

Варианты ответов

1 1)  гигиеническое мытье рук мылом и водой

2 2)  гигиенической обработки мылом и кожным антисептиком (+)

3 3)  хирургической антисептики

4 4)  физиологического уровня антисептики

5 5)  социального уровня антисептики

9 9.  В каких случаях использование стерильных медицинских перчаток не
обязательно:

Варианты ответов

1 1)  при проведении оперативных вмешательств

2 2)  при проведении перевязок

3 3)  при проведении внутривенного капельного вливания

4 4)  при проведении внутримышечных и подкожных инъекций (+)

5 5)  при проведении влагалищного обследования

10 10.      Как часто медицинская сестра должна производить смену перчаток:

Варианты ответов

1 1)  после каждого пациента (+)

2 2)  после 5-6 манипуляций

3 3)  после 3 пациентов

4 4)  1 раз в смену

5 5)  по желанию пациента

11 11.       Для обработки инъекционного поля  перед введением вакцины можно
использовать:

Варианты ответов

1 1)  спирт этиловый 96°

2 2)  спирт этиловый 70° (+)

3 3)  0,5% спиртовый раствор хлоргексидина

4 4)  0,5% раствор хлорамина Б

5 5)  спирт этиловый 50°

12 12.      Выберите, что из перечисленного не входит в ВИЧ-аварийную аптечку:

Варианты ответов

1 1)  70° этиловый спирт

2 2)  перевязочный материал

3 3)  бактерицидный пластырь

4 4)  навески перманганата калия (+)

5 5)  напалечники

13 13.      При попадании биологического материала на слизистые глаз необходимо:

Варианты ответов

1 1)  промыть слизистые глаз раствором перманганата калия в соотношении
1:10000

2 2)  промыть слизистые глаз  раствором перманганата калия в
соотношении 1:5000

3 3)  промыть слизистые глаз 2 %раствором борной кислоты

4 4)  промыть слизистые глаз раствором перманганата калия в соотношении
1:100

5 5)  промыть под проточной водой (+)

14 14.       При проколе (порезе) руки в перчатке использованным инструментом
необходимо:

Варианты ответов

1 1) снять перчатки и положить для дезинфекции в раствор, дать стечь крови не-сколько
секунд, обработать место прокола 70° этиловым спиртом, затем 5% раствором йода
(не втирать), заклеить порез пластырем и надеть напальчник (+)

2 2)  вымыть руки с мылом, обработать место прокола 70° этиловым спиртом,
затем 5% раствором йода (не втирать), заклеить прокол пластырем и надеть
напальчник

3 3)  обработать перчатку дезинфектантом, снять её и положить для дезинфекции в
раствор, выдавить несколько капель крови и вымыть руки с мылом

4 4)  обработать место прокола 3% раствором перекиси водорода

5 5)  выдавить из места прокола несколько капель крови и заклеить его бактери-цидным
пластырем

15 15.      Медсестра при проведении пяти инъекций одному пациенту, после
второй инъекции запачкала перчатку кровью. Выберите правильные действия медсест-ры
из предложенных вариантов:

Варианты ответов

1 1)  перчатка обрабатывается 70° этиловым спиртом, 2-кратно после этого
мед-сестра продолжает проведение инъекций

2 2)  перчатки очищаются сухим ватным тампоном и медсестра продолжает про-ведение
инъекций этому пациенту

3 3)  перчатки снимаются и замачиваются в дезинфектанте, затем, медсестра об-рабатывает
руки кожным антисептиком, надевает новые перчатки и продол-жает манипуляции 
этому пациенту (+)

4 4)  перчатки моются проточной водой с мылом, вытирает их специальным по-лотенцем
и продолжает манипуляции этому пациенту

5 5)  медсестра обрабатывает перчатки в 3% хлорамине Б не снимая их с рук, вы-тирает
их насухо и продолжает работу

16 16.      Укажите, какие изделия медицинского назначения подлежат  стерилиза-ции:

Варианты ответов

1 1)  только хирургический инструментарий

2 2)  любые изделия медицинского назначения

3 3)  все изделия, которые соприкасаются пациентом

4 4)  только инструментарий для проведения инъекций

5 5)  все изделия, которые соприкасаются с раневой поверхностью, контакти-рующие
с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекцион-ными препаратами, а
также контактируют со  слизистой и могут травмиро-вать её (+)

17 17.       Какие изделия медицинского назначения подлежат  предстерилизацион-ной
очистке:

Варианты ответов

1 1)  все изделия, подлежащие стерилизации (+)

2 2)  все изделия, прошедшие дезинфекцию

3 3)  только изделия, имеющие видимые следы органических загрязнений

4 4)  все изделия после использования их у  пациента

5 5)  все металлические инструменты

18 18.      Продолжите утверждение «Дезинфекции подлежат …»:

Варианты ответов

1 1)  все изделия после применения их у пациентов (+)

2 2)  только изделия, подлежащие стерилизации

3 3)  только изделия, контактировавшие с кровью

4 4)  только изделия, используемые у инфекционных больных

5 5)  только хирургический инструментарий

19 19.      Укажите цель предстерилизационной очистки:

Варианты ответов

1 1)  удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остатков дезин-фектанта
и лекарственных средств (+)

2 2)  уничтожение патогенной и условно-патогенной микрофлоры

3 3)  уничтожение всех видов микрофлоры, включая споры

4 4)  уничтожение патогенных микроорганизмов

5 5)  уничтожение сапрофитной микрофлоры

20 20.       Генеральная уборка в режимных кабинетах ЛПУ:

Варианты ответов

1 1)  проводится 1 раз в неделю (+)

2 2)  проводится 1 раз в месяц

3 3)  проводится перед проведением административного обхода в отделении

4 4)  проводится по распоряжению эпидемиолога

5 5)  проводится 1 раз в 3 суток

21 21.      Для оценки качества предстерилизационной очистки изделий медназна-чения
необходимо использовать:

Варианты ответов

1 1)  постановку азапирамовой пробы (+)

2 2)  постановку йодокрахмальной пробы

3 3)  смывы на кишечную палочку

4 4)  визуальную оценку

5 5)  биотесты

22 22.      Выберите, какие категории пациентов подлежат осмотру на педикулез
на амбулаторном приеме:

Варианты ответов

1 1)  только пациенты, подлежащие госпитализации

2 2)  только санитарно неопрятные пациенты

3 3)  все пациенты, при обращении за медпомощью (+)

4 4)  только одинокие пожилые пациенты

5 5)  только дети до 12 лет

23 23.       Выберите из предложенных изделий те, которые подлежат предстерили-зационной
очистке:

Варианты ответов

1 1)  гинекологические зеркала (+)

2 2)  подкладные судна

3 3)  термометр

4 4)  кружка Эсмарха

5 5)  ватные тампоны

24 24.      При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с
применением азопирамовой пробы было получено 6 положительных проб на зажимах
Кохера. Какие действия медперсонала необходимы в данной ситуации:

Варианты ответов

1 1)  персонал подлежит увольнению

2 2)  персонал проводит повторную обработку всей партии инструментов и по-вторный
контроль (+)

3 3)  персонал отстраняется от проведения обработки инструментария

4 4)  персонал проводит повторную обработку 6 зажимов Кохера

5 5)  персонал проводит повторную обработку всех инструментов, имеющих зам-ковые
части

25 25.      При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с
применением азопирамовой пробы  на 6 зажимах Кохера получено розово-фиолетовое
окрашивание. Определите дальнейшие действия медработника:

Варианты ответов

1 1)  вся партия инструментария подлежит повторному контролю для выявления
всех плохо отмытых инструментов

2 2)  инструменты, давшие положительный результат азопирамовой пробы, под-лежат
повторной предстерилизационной очистке

3 3)  инструменты, давшие положительный результат азопирамовой пробы, под-лежат
списанию

4 4)  инструменты, давшие положительную азопирамовую пробу, подлежат
анти-коррозийной обработке

5 5)  вся партия инструментария подлежит повторной предстерилизационной очистке
и повторному контролю (+)

26 26.      При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с
применением азопирамовой пробы  на 6 корнцангах получено бурое окрашива-ние. Определите
дальнейшие действия медработника:

Варианты ответов

1 1)  вся партия инструментария подлежит повторной предстерилизационной очистке
и повторному контролю

2 2)  инструменты, давшие бурое окрашивание, подлежат повторной предстери-лизационной
очистке

3 3)  инструменты, давшие бурое окрашивание, подлежат списанию

4 4)  инструменты, давшие бурое окрашивание подлежат антикоррозийной обра-ботке
(+)

5 5)  проводится повторный контроль старшей медсестрой для оценки работы
персонала

27 27.      Каким, из предложенных способов проверяется годность рабочего рас-твора
азопирама:

Варианты ответов

1 1)  каплю рабочего раствора азопирама капают на чистую белую салфетку, если
цвет раствора не меняется, то годность азопирама считается доказанной

2 2)  каплю рабочего раствора азопирама капают на пятно крови, если цвет рас-твора 
меняется на розово-фиолетовый, то годность азопирама считается до-казанной (+)

3 3)  если сроки хранения готового раствора азопирама не нарушены, то рабочий
раствор считается абсолютно годным

4 4)  если рабочий раствор азопирама через 40 минут после приготовления оста-ется
прозрачным, то раствор считается годным

5 5)  рабочий раствор азопирама контролю на годность не подлежит

28 28.      Определите сроки использования рабочего раствора азопирама для оцен-ки
качества проведенной предстерилизационной очистки при температуре + 25С:

Варианты ответов

1 1)  30 минут

2 2)  1 час 20 минут

3 3)  40 минут

4 4)  2 часа (+)

5 5)  10 дней при условии прозрачности раствора

29 29.       Выберите второе требование к инструментам из предложенного: «Для
проведения азопирамовой пробы инструменты для контроля должны быть сухи-ми и
……»

Варианты ответов

1 1)  «…остывшими до комнатной температуры» (+)

2 2)  «….горячими»

3 3)  «….остывшими до 50 градусов»

4 4)  «….чистыми»

5 5)  второго условия не существует

30 30.      Определите сроки сохранения стерильности в биксах с бактерицидным
фильтром:

Варианты ответов

1 1)  60 суток

2 2)  20 суток (+)

3 3)  3 суток

4 4)  12 часов

5 5)  6 часов

31 31.      Какое утверждение является правильным:

Варианты ответов

1 1)  срок сохранения стерильности в биксе с фильтром после вскрытия составля-ет
1 сутки (+)

2 2)  срок сохранения стерильности в биксе с фильтром после вскрытия составля-ет
3 суток

3 3)  во вскрытом биксе стерильность не сохраняется

4 4)  срок сохранения стерильности в биксе с фильтром после вскрытия составля-ет
6 часов

5 5)  срок сохранения стерильности в биксе с фильтром после вскрытия составля-ет
12 часов

32 32.       Срок сохранения стерильности в 2-х слойной бязевой упаковке
составля-ет:

Варианты ответов

1 1)  трое суток (+)

2 2)  десять суток

3 3)  шесть часов

4 4)  одни сутки

5 5)  неограничен

33 33.      Какие мероприятия не входят в этап подготовки помещения для
генераль-ной уборки:

Варианты ответов

1 1)  отключение электроприборов

2 2)  удаление стерильных укладок

3 3)  удаление медицинских отходов

4 4)  проветривание (+)

5 5)  удаление лекарственных препаратов

34 34.      Выберите из предложенного порядок мытья помещения при проведении
генеральной уборки:

Варианты ответов

1 1)  мебель, стены, пол, потолок

2 2)  стены, потолок, пол, мебель

3 3)  потолок, стены, мебель, пол (+)

4 4)  мебель, стены, потолок, пол

5 5)  пол, мебель, стены, потолок

35 35.      Для проведения генеральной уборки используется:

Варианты ответов

1 1)  стерильная ветошь и спецодежда

2 2)  простерилизованные ветошь и спецодежда (+)

3 3)  ветошь и спецодежда для текущей дезинфекции

4 4)  стерильная спецодежда и простерилизованная ветошь

5 5)  стерильная ветошь и простерилизованная спецодежда

36 36.       Текущая дезинфекция в режимном кабинете проводится:

Варианты ответов

1 1)  каждые 2 часа в течение рабочей смены

2 2)  2 раза в рабочую смену (+)

3 3)  2 раза в сутки

4 4)  ежедневно

5 5)  1раз в неделю

37 37.      Какие из предложенных способов можно использовать для проведения
генеральной уборки:

Варианты ответов

1 1)  способ погружения

2 2)  способ орошения (+)

3 3)  способ замачивания

4 4)  способ засыпания

5 5)  демеркуризация

38 38.      Выберите, каким из перечисленных способов химической дезинфекции
разрешается  проведение дезинфекции медицинского инструментария:

Варианты ответов

1 1)  замачивание

2 2)  засыпание

3 3)  погружение (+)

4 4)  орошение

5 5)  протирание

39 39.      Определитесь, какому препарату вы отдадите предпочтение при проведе-нии
дезинфекции медицинского инструментария:

Варианты ответов

1 1)  совмещающему дезинфицирующий и моющий эффекты (+)

2 2)  обладающему только дезинфицирующим действием

3 3)  обладающему только моющим действием

4 4)  обладающему стерилизующим действием

5 5)  обладающему фунгицидным действием

40 40.       Текущая уборка в палатах должна проводиться:

Варианты ответов

1 1)  1 раз в день

2 2)  2 раза в день (+)

3 3)  3 раза в день

4 4)  1 раз в неделю

5 5)  кратность проведения устанавливается старшей медсестрой

41 41.      Текущая уборка в соматических палатах проводится с применением де-зинфектанта:

Варианты ответов

1 1)  1 раз в день (+)

2 2)  2 раза в день

3 3)  раза в день

4 4)  по распоряжению эпидемиолога

5 5)  только у инфекционных больных

42 42.      Заключительная дезинфекция в ЛПУ проводится:

Варианты ответов

1 1)  в рамках ежедневных уборок

2 2)  в рамках плановых генеральных уборок (+)

3 3)  в рамках субботников

4 4)  по распоряжению главной сестры

5 5)  по специальному распоряжению эпидемиолога

43 43.      Генеральную уборку в режимном кабинете проводит:

Варианты ответов

1 1)  медицинская сестра под руководством старшей сестры

2 2)  санитарка под руководством медсестры

3 3)  медсестра с привлечением санитарки (+)

4 4)  санитарка под руководством сестры-хозяйки

5 5)  сестра-хозяйка

44 44.       В операционной генеральная уборка проводится с применением кисло-родсодержащих
препаратов с целью:

Варианты ответов

1 1)  профилактики анаэробной инфекции (+)

2 2)  профилактики синегнойной инфекции

3 3)  профилактики стафилококковой инфекции

4 4)  профилактики грибковой инфекции

5 5)  профилактики туберкулеза

45 45.      Кратность проведения генеральной уборки определяется:

Варианты ответов

1 1)  приказом главного врача

2 2)  распоряжением старшей сестры

3 3)  приказом МЗ СССР № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусны-ми
гепатитами в стране»

4 4)  определяется произвольно

5 5)  Сан ПиН 2.1.3.1375-03 «Гигиенические требования к размещению, устрой-ству,
оборудованию и эксплуатации больниц, родильных домов и других стационаров» (+)

46 46.      Генеральная уборка палат поводится с периодичностью:

Варианты ответов

1 1)  1 раз в 3 дня

2 2)  1 раз в 7 дней

3 3)  1 раз в 30 дней (+)

4 4)  произвольно

5 5)  ежедневно

47 47.       Выберите из предложенного, биологические жидкости с наибольшим со-держанием
ВИЧ:

Варианты ответов

1 1)  слюна, слеза

2 2)  кровь, ликвор, сперма (+)

3 3)  рвотные массы

4 4)  моча

5 5)  пот, кал

48 48.      Контакт, с какими жидкостями при отсутствии в них примеси крови не
является опасным в плане заражения ВИЧ-инфекцией:

Варианты ответов

1 1)  слюна, пот, слеза (+)

2 2)  лимфа, кровь

3 3)  перикардиальная и синовиальная жидкости

4 4)  грудное молоко, ликвор

5 5)  сперма, влагалищный секрет

49 49.      Назовите, каким  путем передачи ВИЧ-инфекция не передается:

Варианты ответов

1 1)  парентеральный

2 2)  вертикальный

3 3)  половой

4 4)  пищевой (+)

5 5)  гемотрансфузионный

50 50.      Какое утверждение является верным:

Варианты ответов

1 1)  заражение ВИЧ возможно при укусе инфицированным комаром

2 2)  заражение ВИЧ возможно при укусе  инфицированным клещом

3 3)  передача ВИЧ через укусы насекомых невозможно (+)

4 4)  заражение ВИЧ возможно при  укусе инфицированным слепнем

5 5)  заражение ВИЧ возможно при укусе инфицированными пчелами

51 51.       Медсестра для проведения предстерилизационной очистки использует
моющий комплекс с перекисью водорода. После 2-х кратного использования раствор
приобрел розовое окрашивание. Определите дальнейшие действия мед-сестры:

Варианты ответов

1 1)  медсестра должна приготовить новый моющий комплекс (+)

2 2)  медсестра может пользоваться этим же раствором до истечения суток

3 3)  медсестра должна добавить в моющий комплекс перекись водорода в
соот-ношении 2 к 1

4 4)  медсестра должна прокипятить моющий комплекс

5 5)  медсестра должна добавить в моющий комплекс пищевую соду

52 52.      Определите, что из перечисленного  является уровнем деконтаминации
рук:

Варианты ответов

1 1)  бытовой

2 2)  гигиеническая обработка (+)

3 3)  химический

4 4)  асептический

5 5)  универсальный

53 53.      Инфекционное заболевание, которым пациент заражается при получении
лечебно-диагностической помощи, а персонал в процессе работы называется:

Варианты ответов

1 1)  внутрибольничным (+)

2 2)  карантинным

3 3)  особо опасным

4 4)  вирусным

5 5)  сезонным

54 54.       Выберите, из предложенного, что не является показанием для
гигиениче-ской обработки рук медработника с кожным антисептиком:

Варианты ответов

1 1)  раздача пищи (+)

2 2)  смена нательного и постельного белья

3 3)  проведение инвазивных процедур

4 4)  контакт с биологической жидкостью пациента

5 5)  перевязки

55 55.      Определите, в каких ситуациях медсестра должна проводить гигиениче-скую
обработку рук с кожным антисептиком:

Варианты ответов

1 1)  перед выполнением любых инъекций (+)

2 2)  перед проведением термометрии

3 3)  перед раздачей пищи

4 4)  перед сменой спецодежды

5 5)  после посещения туалета

56 56.      Выберите обоснование правильного ответа: выполнение техники мытья
рук – мероприятие обязательное для исполнения или необязательное:

Варианты ответов

1 1)  обязательное, если медсестра располагает временем

2 2)  не обязательное, если медсестра проводит обработку рук кожным
антисеп-тиком

3 3)  обязательное, при любых условиях (+)

4 4)  не обязательное, если медсестра работает в перчатках

5 5)  обязательное перед началом рабочего дня

57 57.       В каком случае медсестра  не проводит гигиеническую обработку рук с
кожным антисептиком:

Варианты ответов

1 1)  перед проведением инъекций

2 2)  после проведения термометрии (+)

3 3)  после снятия перчаток

4 4)  перед проведением  перевязок

5 5)  при контакте с биоматериалом пациента

58 58.      Назовите основной нормативный документ, регламентирующий обработ-ку
медицинского инструментария:

Варианты ответов

1 1)  ОСТ 42-21-2-85 (+)

2 2)  приказ МЗ СССР №170

3 3)  приказ МЗ РФ № 342

4 4)  приказ главного врача по ЛПУ

5 5)  приказ МЗ СССР № 408

59 59.      Медсестра при проведении инъекций осуществляет работу со
стерильного рабочего лотка. Пинцет, которым медсестра берет стерильные шарики, она
затем возвращает на лоток. Охарактеризуйте действия медсестры:

Варианты ответов

1 1)  действия правильные (+)

2 2)  действия не правильные, т. к. рабочий пинцет должен храниться на
стериль-ном столе

3 3)  действия не правильные, т.к. рабочий лоток позволяет брать стерильные
ша-рики рукой в стерильной перчатке

4 4)  действия медсестры не правильные, т.к. рабочий стерильный пинцет
должен храниться в 6% растворе перекиси водорода

5 5)  действия медсестры не правильные, т.к. рабочий стерильный пинцет
должен храниться в тройном растворе

60 60.      В пределах, какого времени может работать стерильный лоток в проце-дурном
кабинете:

Варианты ответов

1 1)  2 часа (+)

2 2)  3 часа

3 3)  30 минут

4 4)  время не ограничено

5 5)  5 часов

61 61.      Определите правила хранения стерильного рабочего пинцета:

Варианты ответов

1 1)  в стерильной пеленке на лотке (+)

2 2)  в стерильной пеленке на столе

3 3)  в открытом стерильном лотке без пеленки

4 4)  в растворе дезинфектанта

5 5)  в растворе стерилянта

62 62.       Причины роста числа ВБИ:

Варианты ответов

1 1)  некорректное использование антибиотиков и дезинфектантов

2 2)  несоответствие планировочно-технических решений современным
техноло-гическим процессам

3 3)  создание больших больничных комплексов со своим микробным пейзажем

4 4)  изменение иммунного фона населения

5 5)  все верно (+)

63 63.      Что, из перечисленного, относится к  способам химического метода де-зинфекции:

Варианты ответов

1 1)  сбор пыли с помощью пылесоса

2 2)  стирка

3 3)  бактерицидное облучение

4 4)  проветривание

5 5)  орошение (+)

64 64.      Медсестра проводит дезинфекцию отработанных инструментов. В емко-сти
инструменты лежат с закрытыми замками, пробирки заполнены дезинфек-тантом до
половины. Оцените работу медсестры:

Варианты ответов

1 1)  нарушила правила дезинфекции: замки должны быть открыты, пробирки
полностью заполнены, стекло и металл должны дезинфицироваться отдель-но (+)

2 2)  нарушила правила дезинфекции: стекло и металл должны
дезинфицировать-ся отдельно

3 3)  проводит дезинфекцию правильно

4 4)  нарушила правила дезинфекции: замки должны быть открыты, 
пробирки полностью заполнены

5 5)  нарушила правила дезинфекции: пробирки должны быть заполнены
полно-стью

65 65.       Какое количество инструментария подвергается контролю на качество
предстерилизационной очистки:

Варианты ответов

1 1)  вся обработанная партия инструментов

2 2)  1% от всей партии инструментов

3 3)  1% от каждого наименования одновременно обработанных инструментов, но
не меньше 3 (+)

4 4)  по 1 инструменту от каждого наименования

5 5)  все инструменты с замковыми деталями

66 66.      При попадании биоматериала на кожу медсестра должна:

Варианты ответов

1 1)  протереть кожу 70% спиртом, вымыть руки с мылом, протереть кожу 70%
спиртом (+)

2 2)  вымыть руки с мылом и протереть кожу 70% спиртом

3 3)  вымыть руки с мылом и обработать кожу 5% раствором йода

4 4)  обработать руки 0,5% раствором хлорамина Б

5 5)  вымыть руки с мылом

67 67.      Через какое время после ВИЧ — аварийной ситуации медсестра должна
обратиться за помощью в центр СПИД:

Варианты ответов

1 1)  в течение 24 часов

2 2)  не позднее 48 часов (+)

3 3)  не позднее 5 суток

4 4)  до 12 часов после аварийной ситуации

5 5)  время обращения значения не имеет

68 68.       Выберите график проветривания палат:

Варианты ответов

1 1)  3 раза в день по 30 минут

2 2)  2 раза в день по 30 минут (+)

3 3)  4 раза в день по 30 минут

4 4)  через каждые 2 часа по 2 часа

5 5)  1 раз в день по 45 минут

69 69.      Дезинфекция ртутных термометров может проводиться:

Варианты ответов

1 1)  погружением в дезраствор (+)

2 2)  погружение в раствор фурацилина

3 3)  мытьем с мылом

4 4)  засыпанием дезинфектантом

5 5)  ополаскиванием в воде

70 70.      Укажите нормативный документ, определяющий противопедикулезные мероприятия:

Варианты ответов

1 1)  ОСТ 42-21-2-85

2 2)  приказ МЗ СССР № 408

3 3)  приказ МЗ РФ № 342 (+)

4 4)  приказ МЗ РФ № 1030

5 5)  приказ МЗ СССР № 720

71 71.      Осмотр на педикулез медсестра в стационаре должна проводить:

Варианты ответов

1 1)  ежедневно

2 2)  при поступлении пациента в отделение

3 3)  каждые 10 дней

4 4)  перед выпиской пациента из стационара

5 5)  при поступлении и затем, каждые 10 дней (+)

72 72.       При выявлении педикулеза у пациента медсестра должна:

Варианты ответов

1 1)  провести противопедикулезную обработку пациента после
предварительного сбривания или стрижки волос

2 2)  провести противопедикулезную обработку пациента без стрижки волос (+)

3 3)  отправить пациента на обработку в дезкамеру

4 4)  отправить пациента на прием к инфекционисту

5 5)  отказать пациенту в оказании медицинской помощи

73 73.      Постельное белье и постельные принадлежности больного педикулезом
подлежат:

Варианты ответов

1 1)  обработке в дезинфекционной камере (+)

2 2)  стирке

3 3)  сжиганию

4 4)  стерилизации

5 5)  списанию

74 74.      Выберите периодичность осмотра целостности кожных покровов персо-нала:

Варианты ответов

1 1)  перед началом  каждой смены (+)

2 2)  2 раза в неделю

3 3)  после отпуска и болезни

4 4)  после аварийных ситуаций

5 5)  2 раза в рабочую смену

75 75.       Целостность кожных покровов персонала проверяет:

Варианты ответов

1 1)  старшая медсестра (+)

2 2)  эпидемиолог

3 3)  заведующий отделением

4 4)  дежурный врач

5 5)  начмед

76 76.      При вскрытии стерильного бикса из трех контрольных тестов 1 не соот-ветствует
эталону. Какие действия должна совершить медсестра?

Варианты ответов

1 1)  использовать стерильный материал в течение 1 часа

2 2)  отправить материал на перестерилизацию (+)

3 3)  использовать материал из тех отделов бикса, где тест соответствует
эталону

4 4)  материал расценивается как стерильный

5 5)  материал может использоваться в течение 40минут

77 77.      За разглашение информации о ВИЧ-инфицированном пациенте:

Варианты ответов

1 1)  медсестра ответственности не несет

2 2)  медсестра несет уголовную ответственность (+)

3 3)  медсестра несет административную ответственность

4 4)  медсестра подлежит увольнению

5 5)  медсестра получит строгий выговор

78 78.       Укажите наиболее вероятный профессиональный путь заражения персо-нала
ВИЧ-инфекцией и парентеральными гепатитами:

Варианты ответов

1 1)  контактный

2 2)  контактно-бытовой

3 3)  половой

4 4)  парентеральный (+)

5 5)  гемотрансфузионный

79 79.      Как организуется  хранение уборочного инвентаря в отделении:

Варианты ответов

1 1)  в отдельном помещении в соответствие с маркировкой (+)

2 2)  в каждом кабинете возле раковины

3 3)  в санпропускнике на стеллажах

4 4)  в кабинете сестры-хозяйки

5 5)  в кабинете дезинфектора

80 80.      Вирусный гепатит А передается:

Варианты ответов

1 1)  половым путем

2 2)  парентеральным путем

3 3)  артифициальным путём

4 4)  водным путем (+)

5 5)  воздушно-капельным путем

81 81.      Система, обеспечивающая сохранность активности вакцинных препаратов
на всех этапах хранения и транспортировки от предприятия -изготовителя до
вакцинируемого:

Варианты ответов

1 1)  холодовая цепь (+)

2 2)  тепловая цепь

3 3)  температурная цепь

4 4)  транспортная цепь

5 5)  нет верного ответа

82 82.       Вакцины и анатоксины предназначены для:

Варианты ответов

1 1)  создание пассивного иммунитета к инфекционным заболеваниям

2 2)  создание активного иммунитета к инфекционным заболеваниям (+)

3 3)  серологической диагностики

4 4)  лечения инфекционных заболеваний

5 5)  для дифференциальной диагностики

83 83.      Медицинская сестра не имеет право:

Варианты ответов

1 1)  менять форму лекарственных средств и их упаковку

2 2)  соединять одинаковые лекарственные средства из разных упаковок в одну

3 3)  заменять и исправлять этикетки на лекарственных средствах

4 4)  хранить лекарственные средства без этикеток

5 5)  все выше перечисленное (+)

84 84.      Перечень всех назначенных для выписки из аптеки средств палатные и процедурные
медсестры подают:

Варианты ответов

1 1)  старшей медицинской сестре отделения (+)

2 2)  главной медицинской сестре

3 3)  лечащему врачу

4 4)  заведующему отделением

5 5)  сами оформляют требование

85 85.       Сильнодействующие и простые лекарственные вещества выписываются:

Варианты ответов

1 1)  на латинском языке (+)

2 2)  на русском языке

3 3)  на национальном языке

4 4)  на русском и на национальном языках

5 5)  на русском и латинском языках

86 86.      При назначении лекарственного средства врач указывает:

Варианты ответов

1 1)  суточную дозу препарата

2 2)  путь введения

3 3)  кратность приёма

4 4)  количество препарата на курс лечения

5 5)  всё выше перечисленное (+)

87 87.      При отсутствии необходимого лекарственного средства, назначенного
врачом, медицинская сестра обязана сообщить:

Варианты ответов

1 1)  в аптеку

2 2)  старшей медсестре

3 3)  заведующему отделением

4 4)  лечащему врачу (+)

5 5)  всем выше перечисленным

88 88.      Непосредственным исполнителем организации хранения и расхода меди-каментов
является:

Варианты ответов

1 1)  заведующий отделением

2 2)  палатные и процедурные  медсестры

3 3)  старшая медсестра (+)

4 4)  заместитель главного врача по лечебной работе

5 5)  все выше перечисленные

89 89.       При выписывании спиртов и спиртовых растворов указывается:

Варианты ответов

1 1)  фамилию, имя, отчество

2 2)  номер истории болезни

3 3)  суточная доза

4 4)  концентрацию (+)

5 5)  всё выше перечисленное

90 90.      На отдельных бланках выписываются:

Варианты ответов

1 1)  простые лекарственные средства

2 2)  сильнодействующие лекарственные средства

3 3)  наркотические средства

4 4)  спирты и спиртовые растворы

5 5)  все выше перечисленное (+)

91 91.      Что запрещается хранить вместе с лекарственными средствами:

Варианты ответов

1 1)  дезинфицирующие средства

2 2)  моющие растворы

3 3)  медицинскую документацию

4 4)  постельное бельё

5 5)  все выше перечисленное (+)

92 92.      Кто из нижеперечисленных специалистов не может получить лекарствен-ные
средства из аптеки:

Варианты ответов

1 1)  палатная медсестра

2 2)  главная медсестра

3 3)  старшая медсестра

4 4)  сестра-хозяйка (+)

5 5)  процедурная медсестра

93 93.       Все лекарственные средства выписываются с указанием:

Варианты ответов

1 1)  дозы одной таблетки

2 2)  количество упаковок

3 3)  количество таблеток в упаковке

4 4)  количество миллилитров в ампуле и процентной концентрацией раствора

5 5)  все вышеперечисленное верно (+)

94 94.      В шкафу, содержащем лекарственные средства для наружного и внутрен-него
применения, должны быть следующие отделения:

Варианты ответов

1 1)  «внутреннее»

2 2)  «наружное»

3 3)  «глазные капли»

4 4)  «растворы»

5 5)  все вышеперечисленное верно (+)

95 95.      Опасность отравления лекарственными средствами предотвращается их
хранением:

Варианты ответов

1 1)  хранение в оригинальной упаковке

2 2)  в стеклянных медицинских шкафах под замком

3 3)  раздельное хранение с дезинфекционными средствами

4 4)  в холодильнике

5 5)  все выше перечисленное (+)

96 96.       Скоропортящиеся лекарственные вещества необходимо хранить:

Варианты ответов

1 1)  в защищенном от света месте

2 2)  в шкафу на отдельной полке

3 3)  в холодильнике (+)

4 4)  в сейфе

5 5)  место расположения без особенностей

97 97.      Какие признаки имеет лекарственное средство, непригодное для исполь-зования:

Варианты ответов

1 1)  изменение цвета  и запаха

2 2)  помутнение раствора

3 3)  выпадение осадка в растворе

4 4)  расслаивание мази

5 5)  все выше перечисленные (+)

98 98.      Срок хранения стерильных растворов, изготовленных в аптеке и закупо-ренных
«под бумажную обвязку» (в сутках):

Варианты ответов

1 10

2 7

3 3

4 5 (+)

5 1

99 99.      Срок хранения стерильного раствора NaCl 0.9%, изготовленного в
аптеке и закупоренного «под обкатку» (в сутках):

Варианты ответов

1 30

2 15

3 90 (+)

4 10

5 3

100 100.     Запас лекарственных веществ у старшей медсестры должен быть на срок
(в днях):

Варианты ответов

1 10

2 7 (+)

3 5

4 3

5 2

101 101.    Лекарственная форма, изготовленная в аптеке для наружного употребле-ния,
должна иметь этикетку цвета:

Варианты ответов

1 1)  белого

2 2)  желтого (+)

3 3)  голубого

4 4)  розового

5 5)  чёрного

102 102.    Лекарственная форма, изготовленная в аптеке для внутреннего употреб-ления,
должна иметь этикетку цвета:

Варианты ответов

1 1)  белого (+)

2 2)  желтого

3 3)  голубого

4 4)  розового

5 5)  чёрного

103 103.    Стерильные растворы во флаконах, изготовленные в аптеке, должны
иметь этикетку цвета:

Варианты ответов

1 1)  белого

2 2)  желтого

3 3)  голубого (+)

4 4)  розового

5 5)  чёрного

104 104.     Скоропортящиеся лекарственные средства (настои, отвары, микстуры) должны
храниться в холодильнике не более (в сутках):

Варианты ответов

1 10

2 7

3 5

4 3 (+)

5 1

105 105.    В лечебном отделении на посту должен быть запас лекарств, обеспечи-вающий
потребность (в сутках):

Варианты ответов

1 30

2 20

3 10

4 7

5 1 (+)

106 106.    До какой температуры необходимо подогреть лекарственное вещество
перед закапыванием в ухо:

Варианты ответов

1 1)  28ºC

2 2)  34ºC

3 3)  37ºC (+)

4 4)  42ºC

5 5)  45ºC

107 107.    В каком положении головы больного необходимо производить закапыва-ние
капель в ухо?

Варианты ответов

1 1)  голову больного наклонить в противоположную сторону (+)

2 2)  голову больного наклонить в эту же сторону

3 3)  голову оставить в вертикальном положении

4 4)  голову пациента запрокинуть назад

5 5)  положение головы не имеет значения

108 108.     Ушную раковину для выпрямления наружного слухового прохода при
закапывании капель необходимо оттянуть у ребёнка:

Варианты ответов

1 1)  кзади и кверху (+)

2 2)  книзу

3 3)  кверху

4 4)  кпереди

5 5)  книзу и кпереди

109 109.    После закапывания капель в ухо пациенту необходимо полежать на боку
не менее:

Варианты ответов

1 1)  5 мин.

2 2)  10 мин. (+)

3 3)  15 мин.

4 4)  20 мин.

5 5)  30 мин.

110 110.    Ушную раковину для выпрямления наружного слухового прохода при
закапывании капель необходимо оттянуть у взрослого пациента:

Варианты ответов

1 1)  кзади и кверху

2 2)  книзу (+)

3 3)  кверху

4 4)  кпереди

5 5)  книзу и кпереди

111 111.    Ингаляцию лекарственных препаратов через рот  лучше выполнять в по-ложении:

Варианты ответов

1 1)  лежа

2 2)  стоя

3 3)  сидя (+)

4 4)  на боку

5 5)  без особенностей

112 112.     Камера, соединяющаяся с дозирующим аэрозольным ингалятором, в ко-торой
частицы аэрозоля находятся во взвешенном состоянии и вдыхаются боль-ным при
спокойном дыхании, называется:

Варианты ответов

1 1)  спейсер (+)

2 2)  аэрочембер

3 3)  небулайзер

4 4)  турбохалер

5 5)  спинхалер

113 113.    При использовании карманного ингалятора для лечения бронхиальной
астмы, необходимо нажать на дно баллончика:

Варианты ответов

1 1)  перед вдохом

2 2)  одновременно с вдохом (+)

3 3)  одновременно с выдохом

4 4)  перед выдохом

5 5)  независимо от фаз дыхания

114 114.    На какое время необходимо задержать дыхание после проведения ингаля-ции
лекарственного вещества в рот:

Варианты ответов

1 1)  на 10-20 секунд

2 2)  на 20-30 секунд

3 3)  на 30-40 секунд

4 4)  на 1-5 секунд

5 5)  на 5-10 секунд (+)

115 115.     При ингаляции лекарственных препаратов через рот количество ингаля-ций
и временной промежуток должен быть:

Варианты ответов

1 1)  две ингаляции с интервалом в 5 минут

2 2)  одна ингаляция

3 3)  по назначению врача (+)

4 4)  по усмотрению медсестры

5 5)  не менее трёх раз

116 116.    Для более эффективной ингаляции карманным ингалятором применяют:

Варианты ответов

1 1)  спейсер (+)

2 2)  спинхалер

3 3)  пикфлоуметр

4 4)  аппарат Боброва

5 5)  хандхалер

117 117.    К ингаляционному способу относится введение лекарственных средств:

Варианты ответов

1 1)  через дыхательные пути (+)

2 2)  под язык

3 3)  через нос

4 4)  на слизистые оболочки

5 5)  через рот

118 118.    Какие группы препаратов требуют особых условий для хранения, учета,
выписки, применения и контроля в ЛПУ:

Варианты ответов

1 1)  наркотические (+)

2 2)  антибиотики

3 3)  гипотензивные

4 4)  общеукрепляющие

5 5)  мази

119 119.     Токсикологические группы лекарств по фармакопее:

Варианты ответов

1 1)  список А (+)

2 2)  глазные капли

3 3)  общий список

4 4)  наружные

5 5)  внутренние

120 120.    В аптеках лечебных учреждений предметно — количественному учету под-лежат:

Варианты ответов

1 1)  ядовитые лекарственные средства

2 2)  этиловый спирт

3 3)  наркотические лекарственные средства

4 4)  дорогостоящие

5 5)  все перечисленное (+)

121 121.    Ответственным за хранение и расход, а также за соблюдение правил вы-дачи
и назначения лекарственных средств является:

Варианты ответов

1 1)  главная медсестра

2 2)  старшая медсестра

3 3)  процедурная медсестра

4 4)  заведующая отделением (+)

5 5)  лечащий врач

122 122.    Наркотические препараты выписываются на:

Варианты ответов

1 1)  латинском языке (+)

2 2)  русском языке

3 3)  национальном языке

4 4)  на русском и на национальном языках

5 5)  на русском и латинском языках

123 123.     Наркотические средства независимо от лекарственной формы должны
храниться:

Варианты ответов

1 1)  в процедурном кабинете, в шкафу медицинском

2 2)  в шкафу с замком для лекарственных препаратов

3 3)  в металлическом сейфе у старшей сестры

4 4)  в металлическом сейфе кабинете заведующего отделением

5 5)  в специально оборудованном помещении под охраной сигнализации (+)

124 124.    В местах хранения наркотических лекарственных средств  необходимо
иметь:

Варианты ответов

1 1)  таблицы высших суточных и высших разовых доз (+)

2 2)  список лекарственных препаратов

3 3)  список медицинских работников данного ЛПУ

4 4)  документацию процедурного кабинета

5 5)  треугольную печать ЛПУ

125 125.    Введение наркотических средств пациенту производится в присутствии:

Варианты ответов

1 1)  заведующий отделением

2 2)  лечащего врача (+)

3 3)  палатной медсестры

4 4)  родственников

5 5)  старшей сестры отделения

126 126.     Запись о введение наркотических средств делается в:

Варианты ответов

1 1)  истории болезни (+)

2 2)  тетради учета наркотиков

3 3)  журнале учета наркотических средств

4 4)  специальной статистической форме

5 5)  температурном листе

127 127.    Использованные ампулы из-под наркотических лекарственных средств:

Варианты ответов

1 1)  хранятся в сейфе отделения до уничтожения

2 2)  сдаются главной медсестре

3 3)  ежедневно уничтожаются на утренней конференции

4 4)  ежедневно сдаются главному врачу или его заместителю по лечебной
работе (+)

5 5)  ежедневно уничтожаются в отделении

128 128.    Место хранения наркотических и психотропных препаратов:

Варианты ответов

1 1)  стол на посту у медсестры

2 2)  шкаф с прочими лекарствами

3 3)  сейф

4 4)  отдельная полка в шкафу процедурного кабинета

5 5)  в специально оборудованном помещении под охраной сигнализации (+)

129 129.     Место хранения наркотических веществ:

Варианты ответов

1 1)  шкаф на посту

2 2)  сейф в процедурном кабинете

3 3)  процедурный кабинет

4 4)  холодильник

5 5)  в специально оборудованном помещении под охраной сигнализации (+)

130 130.    Медсестра может вводить наркотическое лекарственное средство:

Варианты ответов

1 1)  по устному распоряжению лечащего врача

2 2)  после оформления записи в истории болезни (+)

3 3)  по требованию больного

4 4)  после оформления записи в температурном листе

5 5)  после распоряжения заведующего отделением

131 131.    Запас наркотических веществ в отделении должен быть на срок:

Варианты ответов

1 1)  30 дней

2 2)  10 дней

3 3)  7 дней

4 4)  5 дней

5 5)  3 дня (+)

132 132.    При выписке наркотических средств указывают:

Варианты ответов

1 1)  фамилию, имя, отчество

2 2)  номер истории болезни

3 3)  путь введения

4 4)  диагноз

5 5)  всё выше перечисленное (+)

133 133.     Пустые ампулы из наркотических веществ участковая м/с должна:

Варианты ответов

1 1)  выбросить

2 2)  оставить дома у больного

3 3)  сдать в поликлинику ответственному лицу, утвержденному приказом по
ЛПУ (+)

4 4)  сдать участковому терапевту

5 5)  сдать заведующему поликлиники

134 134.    Основной регламентирующий документ по учету наркотических препара-тов:

Варианты ответов

1 1)  № 288

2 2)  № 330 (+)

3 3)  № 770

4 4)  № 691

5 5)  № 490

135 135.    Наркотические средства может выписать больному:

Варианты ответов

1 1)  участковая м/с

2 2)  лечащий врач (+)

3 3)  процедурная м/с

4 4)  старшая м/с

5 5)  только заведующий отделением

136 136.    Какой из перечисленных способов введения лекарственных средств явля-ется
энтеральным:

Варианты ответов

1 1)  внутримышечный

2 2)  внутривенный

3 3)  через спинно-мозговой канал

4 4)  в серозные полости (брюшную, суставную)

5 5)  через прямую кишку (+)

137 137.     Энтеральный путь введения лекарственных средств:

Варианты ответов

1 1)  через рот (+)

2 2)  через дыхательные пути

3 3)  внутрикожно

4 4)  на кожу

5 5)  внутримышечно

138 138.    Сублингвальный путь введения лекарственных веществ — это введение:

Варианты ответов

1 1)  через прямую кишку

2 2)  в дыхательные пути

3 3)  под язык (+)

4 4)  на кожу

5 5)  через рот

139 139.    Сульфаниламидные препараты запивают:

Варианты ответов

1 1)  молоком

2 2)  водой (+)

3 3)  киселем

4 4)  минеральной водой

5 5)  любым напитком

140 140.    Инсулин короткого действия вводится:

Варианты ответов

1 1)  за 30 минут до еды

2 2)  за 1 час до еды

3 3)  через 30 минут после еды

4 4)  через 1 час после еды

5 5)  непосредственно перед едой (+)

141 141.     Назовите недостаток введения лекарственных веществ через рот:

Варианты ответов

1 1)  частичная инактивация в печени (+)

2 2)  простота и доступность

3 3)  не требует соблюдения стерильности

4 4)  не требует специально подготовленного персонала

5 5)  не ограничивает пациента в движениях

142 142.    Вместимость одной столовой ложки (в мл):

Варианты ответов

1 1)  30

2 2)  20

3 3)  15 (+)

4 4)  10

5 5)  5

143 143.    Вместимость одной десертной ложки (в мл):

Варианты ответов

1 1)  30

2 2)  20

3 3)  15

4 4)  10 (+)

5 5)  5

144 144.    Вместимость одной чайной ложки (в мл):

Варианты ответов

1 1)  30

2 2)  20

3 3)  15

4 4)  10

5 5)  5 (+)

145 145.    Ферментные препараты, улучшающие пищеварение (сок желудочный, кислота
соляная разведенная, фестал), следует принимать:

Варианты ответов

1 1)  до еды

2 2)  во время еды

3 3)  после еды, запивая молоком или водой (+)

4 4)  между приемами пищи

5 5)  без связи с приёмом пищи

146 146.     Препараты, раздражающие ЖКТ, запивают:

Варианты ответов

1 1)  минеральной водой

2 2)  молоком (+)

3 3)  водой

4 4)  киселем

5 5)  соком

147 147.   Лекарства, раздражающие слизистую оболочку желудочно-кишечного
тракта (салицилаты, раствор кальция хлорида, Паск), следует принимать:

Варианты ответов

1 1)  до еды

2 2)  во время еды

3 3)  после еды, запивая молоком или водой (+)

4 4)  между приемами пищи

5 5)  без связи с приёмом пищи

148 148.    Пилюли, капсулы, применяются внутрь:

Варианты ответов

1 1)  в разжеванном виде

2 2)  содержимое высыпается под язык

3 3)  в неизменном виде (+)

4 4)  содержимое высыпать, растворить в воде, выпить

5 5)  всё перечисленное верно

149 149.    Бактериофаг запивается:

Варианты ответов

1 1)  водой (+)

2 2)  молоком

3 3)  минеральной водой

4 4)  соком

5 5)  любым напитком

150 150.     Препараты, назначенные «натощак», принимаются пациентом:

Варианты ответов

1 1)  за 1 час до еды

2 2)  за 30 минут до еды (+)

3 3)  за 20 минут до еды

4 4)  за 10 минут до еды

5 5)  непосредственно перед едой

151 151.    Наружный способ применения лекарственных средств:

Варианты ответов

1 1)  через рот

2 2)  через прямую кишку

3 3)  внутрикожно

4 4)  на кожу, слизистые (+)

5 5)  через нос

152 152.    Лекарственные вещества, применяемые наружно, оказывают воздействие
на организм:

Варианты ответов

1 1)  местное (+)

2 2)  общеукрепляющее

3 3)  общее

4 4)  тонизирующее

5 5)  резорбтивное

153 153.    К наружному способу относится введение лекарственных средств:

Варианты ответов

1 1)  через дыхательные пути

2 2)  введение подкожно

3 3)  в переднюю брюшную стенку

4 4)  через прямую кишку

5 5)  на слизистые оболочки (+)

154 154.     Как нужно производить закапывание капель в глаза?

Варианты ответов

1 1)  оттянув нижнее веко, в конъюнктивальную складку (+)

2 2)  оттянув верхнее веко, в конъюнктивальную складку

3 3)  на склеру

4 4)  в открытый глаз

5 5)  не имеет значение

155 155.    Ингалятор может быть:

Варианты ответов

1 1)  фреоновый

2 2)  безфреоновый

3 3)  пудросодержащий

4 4)  «лёгкое дыхание»

5 5)  всё перечисленное верно (+)

156 156.    Какое положение нужно придать пациенту при использовании судна?

Варианты ответов

1 1)  низкое положение Фаулера

2 2)  высокое положение Фаулера (+)

3 3)  положение Симса

4 4)  коленно-локтевое положение

5 5)  положение Тренделенбурга

157 157.    Необходимое количество пар чистых перчаток, которые использует мед-сестра
при подаче судна:

Варианты ответов

1 1)  две (+)

2 2)  три

3 3)  одна

4 4)  пять

5 5)  четыре

158 158.     Необходимый объём воды для проведения очистительной клизмы взрос-лому
пациенту:

Варианты ответов

1 1)  200-300 мл

2 2)  0,5-1 литр

3 3)  1-1,5 литра (+)

4 4)  2-2,5 литра

5 5)  2,5-3 литра

159 159.    Для очистительной клизмы нужно приготовить:

Варианты ответов

1 1)  кружку Эсмарха и наконечник (+)

2 2)  резиновый баллон

3 3)  шприц Жанэ

4 4)  два толстых зонда и воронку

5 5)  два тонких зонда и воронку

160 160.    Температура раствора используемого при постановке послабляющей
клизмы (в град С)

Варианты ответов

1 1)  60-70 °C

2 2)  40-42 °C

3 3)  38-42 °C

4 4)  37-38 °C (+)

5 5)  30-32 °C

161 161.    Очистительную клизму ставят пациенту:

Варианты ответов

1 1)  в первые дни после операции на ЖКТ

2 2)  при запоре на фоне массивных отеков

3 3)  перед родами (+)

4 4)  для введения в кишечник пациента больших доз лекарственных веществ

5 5)  кишечной непроходимости

162 162.     На какую глубину вводится наконечник при проведении очистительной
клизмы?

Варианты ответов

1 1)  на 2-3 см

2 2)  на 3-4 см

3 3)  на 5-10 см

4 4)  на 11-14 см (+)

5 5)  на 15-20 см

163 163.    При постановке очистительной клизмы опорожняется отдел кишечника:

Варианты ответов

1 1)  весь толстый кишечник

2 2)  нижний отдел тонкого кишечника

3 3)  нижний отдел толстого кишечника (+)

4 4)  только прямая кишка

5 5)  толстый и тонкий кишечник

164 164.    Показание для постановки очистительной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  острый аппендицит

2 2)  первые дни после операции на органах пищеварения

3 3)  запор (+)

4 4)  подготовка больного к извлечению желудочного содержимого

5 5)  трещина прямой кишки

165 165.    Температура раствора, используемого при постановке очистительной
клизмы при запорах:

Варианты ответов

1 1)  60-70°C

2 2)  40-42°C

3 3)  28-30°C (+)

4 4)  30-32°C

5 5)  18 — 20°C

166 166.     Для постановки очистительной клизмы используется:

Варианты ответов

1 1)  кружка Эсмарха и наконечник (+)

2 2)  грушевидный баллон и газоотводная трубка

3 3)  зонд с воронкой

4 4)  шприц Жане

5 5)  два толстых зонда и воронку

167 167.    Противопоказанием к постановке очистительной клизмы является:

Варианты ответов

1 1)  кишечное кровотечение (+)

2 2)  метеоризм

3 3)  подготовка к родам

4 4)  отсутствие стула более двух суток (запор)

5 5)  подготовка к ирригоскопии

168 168.    Какое положение должен принять пациент при постановке очистительной
клизмы:

Варианты ответов

1 1)  лежа на спине, ноги в коленях согнуты

2 2)  лежа на правом боку, левая нога согнута в колене

3 3)  лежа на левом боку, правая нога согнута в колене

4 4)  лежа на спине

5 5)  лежа на левом боку, ноги пациента должны быть согнуты в коленях и
слегка подведены к животу (+)

169 169.     Выберите из предложенных вариантов часть набора необходимого обору-дования
для постановки масляной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  кружка Эсмарха, стерильные перчатки

2 2)  газоотводная трубка, грушевидный баллон или шприц Жане (+)

3 3)  корнцанг, нестерильное масло в объёме 200-300 мл

4 4)  пинцет, лейкопластырь

5 5)  стерильный наконечник, 700 спирт

170 170.    Выберите необходимое количество растительного масла для постановки
масляной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  1000 мл

2 2)  500 мл

3 3)  200 мл

4 4)  100 мл (+)

5 5)  10 мл

171 171.    Укажите необходимую температуру масла для постановки масляной
клизмы:

Варианты ответов

1 1)  20°C

2 2)  36°C

3 3)  38°C (+)

4 4)  40°C

5 5)  42°C

172 172.    При постановке масляной клизмы пациенту напоминают о необходимости
задержать масляный раствор в кишечнике в течение:

Варианты ответов

1 1)  6-10 часов (+)

2 2)  10-12 часов

3 3)  1-2 часа

4 4)  3-4 часа

5 5)  4-6 часов

173 173.     Противопоказания для постановки масляной клизмы является:

Варианты ответов

1 1)  отеки

2 2)  выраженный метеоризм

3 3)  кровотечения из пищеварительного тракта (+)

4 4)  задержка стула более трёх дней

5 5)  геморрой

174 174.    Назовите время, необходимое для достижения эффекта при постановке
гипертонической клизмы:

Варианты ответов

1 1)  5-10 минут

2 2)  20-30 минут (+)

3 3)  1 час

4 4)  1,5-2 часа

5 5)  4-6 часов

175 175.    Какой раствор используется для проведения гипертонической клизмы?

Варианты ответов

1 1)  40% р-р глюкозы

2 2)  0,9 % р-р натрия хлорида

3 3)  10 % р-р натрия хлорида (+)

4 4)  5 % р-р сульфата магния

5 5)  5 3 % р-р перекиси водорода

176 176.    При постановке гипертонической клизмы вводимый раствор должен быть
подогрет до температуры:

Варианты ответов

1 1)  20 °C

2 2)  25 °C

3 3)  30 °C

4 4)  38 °C (+)

5 5)  45 °C

177 177.     При постановке гипертонической клизмы пациенту придают положение:

Варианты ответов

1 1)  лежа на спине, ноги в коленях согнуты

2 2)  лежа на правом боку, левая нога согнута в колене

3 3)  лежа на левом боку, правая нога согнута в колене

4 4)  лежа на спине

5 5)  лежа на боку, ноги пациента должны быть согнуты в коленях и слегка
под-ведены к животу (+)

178 178.    Опорожнение кишечника после постановки гипертонической клизмы, как
правило, наступает через:

Варианты ответов

1 1)  5-10 минут

2 2)  20-30 минут (+)

3 3)  30-40 минут

4 4)  2-3 часа

5 5)  12 часов

179 179.    Необходимое количество 20-30% раствора сульфата магния для постанов-ки
гипертонической клизмы:

Варианты ответов

1 1)  1000 мл

2 2)  500 мл

3 3)  100 мл

4 4)  50 мл (+)

5 5)  10 мл

180 180.   После масляной клизмы опорожнение кишечника, как правило, наступает
через (в час):

Варианты ответов

1 1)  1-2 часа

2 2)  20-30 минут

3 3)  6-8 часов (+)

4 4)  2-3 часа

5 5)  12 часов

181 181.     Показания к постановке гипертонической клизмы является:

Варианты ответов

1 1)  гипертонический криз

2 2)  массивные отеки (+)

3 3)  необходимость введения в кишечник больших доз лекарственных средств

4 4)  необходимость воздействия на слизистую оболочку кишечника

5 5)  подготовка к исследованию кишечника

182 182.    Какая процедура проводится только в присутствии врача?

Варианты ответов

1 1)  очистительная клизма

2 2)  масляная клизма

3 3)  сифонная клизма (+)

4 4)  гипертоническая клизма

5 5)  постановка газоотводной трубки

183 183.    На какую глубину вводится зонд в прямую кишку при постановке сифон-ной
клизмы?

Варианты ответов

1 1)  на 5-10 см.

2 2)  на 15-20 см.

3 3)  на 30-40 см. (+)

4 4)  на 50-60 см.

5 5)  на 70-80 см.

184 184.    Назовите обязательную часть необходимого оборудования для постанов-ки
сифонной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  кружка Эсмарха и наконечник

2 2)  грушевидный баллон и газоотводная трубка

3 3)  зонд с воронкой

4 4)  шприц Жане

5 5)  два толстых зонда и воронку (+)

185 185.     Для постановки сифонной клизмы надо подготовить чистой воды:

Варианты ответов

1 1)  10 литров (+)

2 2)  7 литров

3 3)  5 литров

4 4)  2 литров

5 5)  1 литров

186 186.    Одним из показаний для постановки сифонной клизмы является:

Варианты ответов

1 1)  рак прямой кишки

2 2)  подозрение на кишечную непроходимость

3 3)  необходимость выведения из кишечника ядовитых веществ (+)

4 4)  запоры у больного с массивными отеками

5 5)  подготовка к эндоскопическому исследованию прямой кишки

187 Какое состояние не являетсяпротивопоказанием к постановке сифонной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  непроходимость кишечника

2 2)  отравление

3 3)  кишечное кровотечение

4 4)  отсутствие эффекта от очистительной клизмы (+)

5 5)  подготовка к эндоскопическому исследованию прямой кишки

188 188.    Для постановки сифонной клизмы необходимо приготовить:

Варианты ответов

1 1)  кружку Эсмарха и наконечник

2 2)  резиновый баллон

3 3)  два желудочных зонда соединенных стеклянной трубкой с воронкой (+)

4 4)  два резиновых зонда соединенных стеклянной капельницей

5 5)  два тонких зонда

189 189.     Показания для постановки сифонной клизмы служат:

Варианты ответов

1 1)  необходимость выведения из кишечника ядовитых веществ (+)

2 2)  массивные отеки

3 3)  при задержке стула в течение двух дней

4 4)  введение в кишечник больших доз лекарственных веществ

5 5)  подготовка к эндоскопическому исследованию прямой кишки

190 190.    При спастических запорах у пациента чаше назначается клизма:

Варианты ответов

1 1)  гипертоническая

2 2)  обычная очистительная

3 3)  сифонная

4 4)  масляная (+)

5 5)  лекарственная

191 191.   После введения лекарственной клизмы пациент должен находиться в по-сте¬ли
(в час):

Варианты ответов

1 1)  6-8 часов

2 2)  4-6 часов

3 3)  2-3 часа

4 4)  1-2 часа

5 5)  не менее часа (+)

192 192.    Перед лекарственной клизмой за 20-30 мин. пациенту необходимо поста-вить:

Варианты ответов

1 1)  гипертоническую клизму

2 2)  масленую клизму

3 3)  очистительную клизму (+)

4 4)  сифонную клизму

5 5)  лекарственную клизму

193 193.     При постановке капельной клизмы скорость поступление капель:

Варианты ответов

1 1)  10-20 в минуту

2 2)  40-50 в минуту

3 3)  50-60 в минуту

4 4)  60-100 в минуту (+)

5 5)  100-120 в минуту

194 194.    Перед постановкой капельной клизмы необходимо:

Варианты ответов

1 1)  соблюдать диету в течение 2 дней

2 2)  сделать пациенту сифонную клизму

3 3)  поставить пациенту газоотводную трубку

4 4)  сделать очистительную клизму (+)

5 5)  освободить мочевой пузырь

195 195.    Для постановки капельной клизмы необходимо подготовить:

Варианты ответов

1 1)  1,5-1,0 л воды

2 2)  100 мл 10% натрия хлорида

3 3)  10-12 литров воды

4 4)  до 2 литров 5% раствора глюкозы (+)

5 5)  50 мл 0,9 % раствора натрия хлорида

196 196.    Концентрация раствора глюкозы, вводимого при постановке капельной
питательной клизмы:

Варианты ответов

1 1)  40%

2 2)  20%

3 3)  10%

4 4)  5% (+)

5 5)  1%

197 197.     Максимальное время использования газоотводной трубки (в час):

Варианты ответов

1 1)  4 часа

2 2)  3 часа

3 3)  2 часа

4 4)  не более 1 часа (+)

5 5)  30 минут

198 198.    Газоотводную трубку не оставляют в кишечнике надолго, потому что:

Варианты ответов

1 1)  могут образоваться пролежни в стенке кишечника (+)

2 2)  это утомит больного

3 3)  закончится лечебный эффект

4 4)  заканчивается ее стерильность

5 5)  может вызвать воспаление слизистой кишечника

199 При метеоризме газоотводная трубка вводится на глубину (в см):

Варианты ответов

1 1)  40-50 см

2 2)  30-40 см (+)

3 3)  20-30 см

4 4)  10-12 см

5 5)  2-4 см

200 200.    Какой показатель оценивают в первую очередь при исследовании пульса
на лучевой артерии?

Варианты ответов

1 1)  частоту

2 2)  ритм (+)

3 3)  наполнение

4 4)  напряжение

5 5)  не имеет значения

201 201.     Если пульс у 35-летнего мужчины на постельном режиме составляет 108
ударов в минуту это можно назвать:

Варианты ответов

1 1)  нормой

2 2)  тахикардией (+)

3 3)  брадикардией

4 4)  аритмией

5 5)  экстрасистолия

202 202.    Какая частота пульса при тахикардии:

Варианты ответов

1 1)  более 80 ударов в одну минуту

2 2)  более 85 ударов в одну минуту

3 3)  более 90 ударов в одну минуту

4 4)  более 95 ударов в одну минуту (+)

203 203.    У взрослого пациента частота пульса 45 в одну минуту. Назовите это
со-стояние:

Варианты ответов

1 1)  тахикардия

2 2)  брадикардия (+)

3 3)  аритмия

4 4)  тахиаритмия

5 5)  брадиаритмия

204 204.    Какая частота пульса при брадикардии:

Варианты ответов

1 1)  менее 40 ударов в одну минуту

2 2)  менее 45 ударов в одну минуту

3 3)  менее 50 ударов в одну минуту (+)

4 4)  менее 55 ударов в одну минуту

5 5)  менее 60 ударов в одну минуту

205 205.     Назовите нормальную частоту пульса взрослого пациента за одну
минуту:

Варианты ответов

1 1)  40-50

2 2)  60-80 (+)

3 3)  70-90

4 4)  50-70

5 5)  90-100

206 206.    Если пульс у тяжелобольного не определяется на лучевой артерии, то
медсестра обязана попробовать определить его на артерии:

Варианты ответов

1 1)  тыла стопы

2 2)  подколенной

3 3)  сонной (+)

4 4)  височной

5 5)  локтевой

207 207.    От чего зависит наполнение пульса:

Варианты ответов

1 1)  от величины сердечного выброса

2 2)  от артериального давления (+)

3 3)  от общего количества циркулирующей крови

4 4)  от частоты сердечных сокращений

5 5)  от возраста пациента

208 208.    Какими пальцами нащупывают пульсирующую лучевую артерию при
исследовании пульса?

Варианты ответов

1 1)  первым пальцем

2 2)  первым и вторым

3 3)  вторым и третьим

4 4)  вторым, третьим, четвертым (+)

5 5)  вторым, третьим, четвертым и пятым

209 209.     Выберете одно из свойств пульса:

Варианты ответов

1 1)  напряжение (+)

2 2)  гипотония

3 3)  тахипное

4 4)  атония

5 5)  дистония

210 210.    Определите, что не относится к свойствам пульса:

Варианты ответов

1 1)  глубина (+)

2 2)  частота

3 3)  ритм

4 4)  наполнение

5 5)  напряжение

211 211.    По величине пульс бывает:

Варианты ответов

1 1)  большим (+)

2 2)  полным

3 3)  пустым

4 4)  твёрдым

5 5)  мягким

212 212.    Дефицит пульса возникает при:

Варианты ответов

1 1)  тахикардии

2 2)  снижении АД

3 3)  мерцательной аритмии (+)

4 4)  повышении АД

5 5)  брадикардии

213 213.    По наполнению пульс различают:

Варианты ответов

1 1)  ритмичный, аритмичный

2 2)  скорый, медленный

3 3)  полный, пустой (+)

4 4)  твердый, мягкий

5 5)  правильный, не правильный

214 214.     Наиболее взаимосвязаны свойства пульса:

Варианты ответов

1 1)  напряжение и наполнение (+)

2 2)  напряжение и ритм

3 3)  частота и ритм

4 4)  скорость и частота

5 5)  наполнение и ритм

215 215.    Пульс ритмичный у взрослого пациента определяют:

Варианты ответов

1 1)  за одну минуту

2 2)  за 30 секунд, умножая результат на два (+)

3 3)  за 15 секунд, умножая результат на четыре

4 4)  за 10 секунд, умножая результат на шесть

5 5)  за 6 секунд, умножая результат на десять

216 216.    Пульс аритмичный у взрослого пациента определяют:

Варианты ответов

1 1)  за одну минуту (+)

2 2)  за 30 секунд, умножая результат на два

3 3)  за 15 секунд, умножая результат на четыре

4 4)  за 10 секунд, умножая результат на шесть

5 5)  за 6 секунд, умножая результат на десять

217 217.    По напряжению пульс различают:

Варианты ответов

1 1)  ритмичный, аритмичный

2 2)  скорый, медленный

3 3)  полный, пустой

4 4)  твердый, мягкий (+)

5 5)  тоничный, атоничный

218 218.     Места определения пульса все, кроме:

Варианты ответов

1 1)  сонной артерии

2 2)  височной артерии

3 3)  лучевой артерии

4 4)  брюшной аорты (+)

5 5)  артерии тыла стопы

219 219.    Какое условие обязательно должно быть соблюдено перед стандартным
измерением артериального давления:

Варианты ответов

1 1)  через 1-2 часа после еды

2 2)  через 1 час после курения

3 3)  через 1 час после приема кофе

4 4)  через 2 часа после водных процедур

5 5)  все  выше перечисленные (+)

220 220.    При измерении артериального давления медсестра услышала первые зву-ки
(систолическое давление), а диастолическое определить не смогла. В чём причина?

Варианты ответов

1 1)  слишком мало воздуха в манжете

2 2)  слишком плотно прижата головка фонендоскопа к плечевой артерии

3 3)  слишком много воздуха в манжете

4 4)  слишком быстро выпущен воздух из манжеты (+)

5 5)  несоответствие размера манжеты и окружности плеча

221 221.     Стандартное измерение артериального давления проводят:

Варианты ответов

1 1)  через 1-2 часа после еды

2 2)  через 1 час после курения

3 3)  через 1 час после приема кофе

4 4)  после 10 минутного отдыха

5 5)  всё перечисленное верно (+)

222 222.    Измерение  артериального давления проводится:

Варианты ответов

1 1)  только сидя

2 2)  только лёжа

3 3)  сидя или лёжа (+)

4 4)  только стоя

5 5)  не имеет особого  значения

223 223.    Как называется разность между систолическим и диастолическим артери-альным
давлением:

Варианты ответов

1 1)  максимальным артериальным давлением

2 2)  минимальным артериальным давлением

3 3)  пульсовым давлением (+)

4 4)  дефицитом пульса

5 5)  рабочим давлением

224 224.    Какое давление измеряется при исчезновении тонов над плечевой
артери-ей?

Варианты ответов

1 1)  пульсовое

2 2)  диастолическое (+)

3 3)  систолическое

4 4)  артериальное

5 5)  рабочее

225 225.     Какое давление измеряется при появлении тонов над плечевой артерией?

Варианты ответов

1 1)  пульсовое

2 2)  диастолическое

3 3)  систолическое (+)

4 4)  артериальное

5 5)  рабочее

226 226.    Какой аппарат используют для определения артериального давления?

Варианты ответов

1 1)  тонометр (+)

2 2)  термометр

3 3)  динамометр

4 4)  спирометр

5 5)  фонендоскоп

227 227.    Чем определяются тоны на плечевой артерии при измерении артериально-го
давления?

Варианты ответов

1 1)  пальпируются пальцами

2 2)  фонендоскопом (+)

3 3)  тонометром

4 4)  пикфлоуметром

5 5)  термометром

228 228.    Выберите правильное утверждение. Как плотно необходимо закреплять
манжетку при измерении артериального давления?

Варианты ответов

1 1)  чтобы между манжеткой и плечом ничего не проходило

2 2)  чтобы между манжеткой и плечом проходил 1 палец (+)

3 3)  чтобы между манжеткой и плечом проходило 2 пальца

4 4)  манжетка туго должна обхватывать плечо

5 5)  не имеет значения

229 229.     Каково правильное положение руки больного при измерении артериаль-ного
давления:

Варианты ответов

1 1)  согнута в локтевом суставе, ладонью вверх

2 2)  согнута в локтевом суставе, ладонью вниз

3 3)  разогнута в локтевом суставе ладонью вниз

4 4)  разогнута в локтевом суставе ладонью вверх (+)

5 5)  рука опущена вниз

230 230.    Измерять АД необходимо:

Варианты ответов

1 1)  1 раз на одной руке

2 2)  2 раза на одной руке

3 3)  3 раза на одной руке

4 4)  2 раза на обеих руках (+)

5 5)  1 раз на обеих руках

231 231.    К параметрам, определяющим величину артериального давления, относят:

Варианты ответов

1 1)  сила сокращений сердца

2 2)  частота сокращений сердца

3 3)  тонус стенки артерий (+)

4 4)  от физической нагрузки

5 5)  возраст пациента

232 232.    Нормальные цифры систолического артериального давления (мм. рт. ст.):

Варианты ответов

1 1)  120-130

2 2)  110-120 (+)

3 3)  100-110

4 4)  70-80

5 5)  40-50

233 233.    Нормальные цифры диастолического артериального давления (мм. рт. ст.)

Варианты ответов

1 1)  120-130

2 2)  110-120

3 3)  100-110

4 4)  70-80 (+)

5 5)  40-50

234 234.    У пациента артериальное давление 150/100 мм рт.ст. Как называется
со-стояние?

Варианты ответов

1 1)  гипертермией

2 2)  аритмией

3 3)  гипертонией (+)

4 4)  гипотонией

5 5)  нормотонией

235 235.    У пациента артериальное давление 80/50 мм рт.ст. Как называется
состоя-ние?

Варианты ответов

1 1)  гипертермией

2 2)  аритмией

3 3)  гипертонией

4 4)  гипотонией (+)

5 5)  нормотонией

236 236.    Частоту дыхания у взрослого пациента определяют:

Варианты ответов

1 1)  за одну минуту

2 2)  за 30 сек. , умножая результат на два (+)

3 3)  за 15 сек., умножая результат на четыре

4 4)  за 10 сек., умножая результат на шесть

5 5)  за 6 сек., умножая результат на десять

237 237.    По характеру одышка бывает:

Варианты ответов

1 1)  инспираторная

2 2)  экспираторная

3 3)  смешанная

4 4)  физиологическая

5 5)  всё перечисленное верно (+)

238 238.    Как называется одышка при затрудненном вдохе:

Варианты ответов

1 1)  смешанная

2 2)  периодического дыхания

3 3)  инспираторная (+)

4 4)  экспираторная

5 5)  патологическая

239 239.    Инспираторную одышку характеризует:

Варианты ответов

1 1)  затруднение на вдохе (+)

2 2)  кашель с большим количеством пенистой мокроты

3 3)  затруднение на выдохе

4 4)  затруднение на вдохе и выдохе

5 5)  кашель с трудноотделяемой мокротой

240 240.     Как называется одышка при затрудненном выдохе:

Варианты ответов

1 1)  смешанная

2 2)  периодического дыхания

3 3)  инспираторная

4 4)  экспираторная (+)

5 5)  патологическая

241 241.    Экспираторную одышку характеризует:

Варианты ответов

1 1)  затруднение на вдохе

2 2)  кашель с большим количеством пенистой мокроты

3 3)  затруднение на выдохе (+)

4 4)  затруднение на вдохе и выдохе

5 5)  кашель с трудноотделяемой мокротой

242 242.    Назовите нормальную частоту дыхания взрослого пациента за одну мину-ту:

Варианты ответов

1 1)  30-36

2 2)  24-28

3 3)  20-24

4 4)  16-20 (+)

5 5)  10-16

243 243.    При подсчёте частоты дыхательных движений учитывается только количе-ство:

Варианты ответов

1 1)  вдохов

2 2)  выдохов

3 3)  вдохов и выдохов (+)

4 4)  задержки на вдохе

5 5)  задержки на выдохе

244 244.     При сборе мочи для определения суточного диуреза:

Варианты ответов

1 1)  собирают мочу за любые 24 часа

2 2) собирают мочу с момента пробуждения пациента и до восьми утра следую-щего
дня

3 3)  в восемь часов утра пациент мочится в унитаз, затем до восьми утра
сле-дующего дня всю мочу собирают в ёмкость (+)

4 4)  собирают мочу каждые три часа, всего восемь порций

5 5)  собирают мочу за 12 часов, умножают полученный объём на два

245 245.    Плевральную пункцию проводят с целью:

Варианты ответов

1 1)  разъединение плевральных сращений

2 2)  отсасывание мокроты из бронхов

3 3)  уменьшение болевого синдрома

4 4)  удаление жидкости с плевральной полости (+)

5 5)  удаления инородного тела из плевральной полости

246 246.    Акроцианоз – это синюшность:

Варианты ответов

1 1)  губ

2 2)  губ и кончика носа

3 3)  губ и кончика носа, пальцев рук

4 4)  губ и кончика носа, пальцев рук и ног

5 5)  губ и кончика носа, пальцев рук и ног, ушных раковин (+)

247 247.     Скопление жидкости в брюшной полости это:

Варианты ответов

1 1)  анасарка

2 2)  гидроторакс

3 3)  асцит (+)

4 4)  гидроперикардит

5 5)  пастозность

248 248.    Распространенные отеки подкожной клетчатки по всему телу – это:

Варианты ответов

1 1)  асцит

2 2)  гидроперикардит

3 3)  анасарка (+)

4 4)  гидроторакс

5 5)  пастозность

249 249.    Медсестра может определить наличие наружных отеков у пациента мето-дом:

Варианты ответов

1 1)  взвешивания

2 2)  пальпации голеней (+)

3 3)  измерения суточного диуреза

4 4)  общего осмотра внешнего вида

5 5)  пальпации кистей рук

250 250.    При определении массы тела следует соблюдать условия все, кроме:

Варианты ответов

1 1)  натощак

2 2)  после опорожнения мочевого пузыря

3 3)  после опорожнения кишечника

4 4)  в одной и той же одежде

5 5)  после водных процедур (+)

251 251.     Скопление жидкости в плевральной полости это:

Варианты ответов

1 1)  анасарка

2 2)  гидроторакс (+)

3 3)  асцит

4 4)  гидроперикардит

5 5)  пастозность

 


 


 


 

Страницы  1 
2  

4 
5

 

 

Страница не найдена. Ошибка 404

Невский район
ул. Чудновского, д. 10
м. Проспект Большевиков


24 часа
190000, Санкт-Петербург, ул. Чудновского, д. 10

Московский район
ул. Пулковская д.11 к.1
м. Звездная


24 часа
190000, Санкт-Петербург, ул. Пулковская д. 11 к.1

Невский район
пр. Шлиссельбургский, д. 17
м. Рыбацкое


24 часа
190000, Санкт-Петербург, пр. Шлиссельбургский, д. 17

Приморский район
ул. Планерная, д. 47
м. Комендантский проспект


24 часа
190000, Санкт-Петербург, ул. Планерная, д. 47

Невский район
пр. Большевиков, д. 6, к.2
м. Проспект Большевиков


24 часа
190000, Санкт-Петербург, пр. Большевиков, д. 6, к. 2

Выборгский район
пр. Художников, д. 26
м. Проспект Просвещения


24 часа
190000, Санкт-Петербург, пр. Художников, д. 26

Кировский район
ул. Маршала Казакова д.1
м. Автово


24 часа
190000, Санкт-Петербург, пр. Маршала Казакова д.1

Красногвардейский район
Индустриальный пр., 17
м. Ладожская


24 часа
190000, Санкт-Петербург, Индустриальный пр., 17

МОСКВА
Маршала Катукова, д. 17 к.1
м. Строгино


24 часа
Маршала Катукова, д. 17 к.1

+7 (495) 230-17-05

  • . Nat Commun. 2017; 8: 184.

    Артикул

    Google ученый

  • 18.

    Рамирес Дж. Л., Шорт С. М., Баия А. С., Сараива Р. Г., Донг Й., Кан С. и др. Chromobacterium Csp_P снижает малярию и инфекцию денге у комаров-переносчиков и обладает энтомопатогенной активностью и антипатогенной активностью in vitro. PLoS Pathog. 2014; 10: 10.

    Артикул

    Google ученый

  • 19.

    Walker T, Johnson PH, Moreira LA, Iturbe-Ormaetxe I, Frentiu FD, McMeniman CJ, et al. Штамм wMel Wolbachia блокирует лихорадку денге и вторгается в клеточные популяции Aedes aegypti . Природа. 2011; 476: 450–3.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 20.

    Ван Х, Лю Т., Ву И, Чжун Д., Чжоу Г., Су Х и др. Набор бактериальной микробиоты у комаров Aedes albopictus и его влияние на развитие личинок. Mol Ecol. 2018; 27: 2972–85.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 21.

    Андреотти Р., Перес де Леон А.А., Дауд С.Е., Герреро Ф.Д., Бенделе К.Г., Скоулз Г.А.Оценка бактериального разнообразия клещей крупного рогатого скота Rhipicephalus ( Boophilus ) microplus посредством пиросеквенирования с использованием тегов. BMC Microbiol. 2011; 11: 6.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 22.

    Карпи Г., Каньяччи Ф., Виттекиндт Н. Э., Чжао Ф., Ци Дж., Томшо Л. П. и др. Метагеномный профиль бактериальных сообществ, ассоциированных с клещами Ixodes ricinus, . PLoS ONE. 2011; 6: e25604.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 23.

    Диас-Санчес С., Эрнандес-Яргин А., Торина А., де Мера IGF, Бланда В., Каракаппа С. и др. Характеристика бактериальной микробиоты выловленных в дикой природе Ixodes ventalloi . Клещи Tick Borne Dis. 2019; 10: 336–43.

    Артикул

    Google ученый

  • 24.

    Кху Дж.Дж., Чен Ф., Кхо К.Л., Ахмад Шаницца А.И., Лим Ф.С., Тан К.К. и др.Бактериальное сообщество у Haemaphysalis клещей домашних животных из сообществ оранг-асли в Малайзии. Клещи Tick Borne Dis. 2016; 7: 929–37.

    Артикул

    Google ученый

  • 25.

    Накао Р., Абэ Т., Нийхоф А.М., Ямамото С., Джонгеян Ф., Икемура Т. и др. Новый подход к анализу микробиома клещей, основанный на BLSOM (самоорганизующиеся карты пакетного обучения). ISME J. 2013; 7: 1003–15.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 26.

    Нарасимхан С., Фикриг Э. Микробиом клеща: сила внутри. Trends Parasitol. 2015; 31: 315–23.

    Артикул

    Google ученый

  • 27.

    Qiu Y, Nakao R, Ohnuma A, Kawamori F, Sugimoto C. Анализ микробной популяции слюнных желез клещей; возможная стратегия наблюдения за бактериальными патогенами. PLoS ONE. 2014; 9: e103961.

    Артикул

    Google ученый

  • 28.

    Swei A, Kwan JY. Микробиом клеща и приобретение патогенов изменяются при приеме пищи с кровью хозяина. ISME J. 2017; 11: 813–6.

    Артикул

    Google ученый

  • 29.

    Williams-Newkirk AJ, Rowe LA, Mixson-Hayden TR, Dasch GA. Характеристика бактериальных сообществ жизненных этапов свободноживущих клещей-одиночек ( Amblyomma americanum ). PLoS ONE. 2014; 9: e102130.

    Артикул

    Google ученый

  • 30.

    Зольник CP, Prill RJ, Falco RC, Daniels TJ, Kolokotronis S-O. Микробиом изменяется в процессе онтогенеза переносчика возбудителя клеща. Mol Ecol. 2016; 25: 4963–77.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 31.

    Дурон О., Морел О., Ноэль В., Байсс М., Бинетрю Ф., Ланселот Р. и др. Мутуализм клещевых бактерий зависит от путей синтеза витамина B. Curr Biol. 2018; 28 (1896–1902): e5.

    Google ученый

  • 32.

    Gottlieb Y, Lalzar I., Klasson L. Отличительные скорости сокращения генома, выявленные геномным анализом двух Coxiella -подобных эндосимбионтов у клещей. Genome Biol Evol. 2015; 7: 1779–96.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 33.

    Guizzo MG, Parizi LF, Nunes RD, Schama R, Albano RM, Tirloni L, et al. Симбионт мутуалистов Coxiella необходим для развития Rhipicephalus microplus .Научный доклад 2017; 7: 17554.

    Артикул

    Google ученый

  • 34.

    Brinkmann A, Hekimoğlu O, Dinçer E, Hagedorn P, Nitsche A, Ergünay K. Поперечный скрининг с помощью секвенирования следующего поколения показывает Rickettsia , Coxiella , Francisella

  • 00 Borrelia , Babesia , Theileria и Hemolivia у клещей из Анатолии. Векторы паразитов. 2019; 12:26.

    Артикул

    Google ученый

  • 35.

    Ладо П., Куролло Б., Уильямс К., Юнге Р., Кломпен Х. Микробиом Haemaphysalis lemuris (Acari: Ixodidae), возможный переносчик патогенов исчезающих видов лемуров на Мадагаскаре. Клещи Tick Borne Dis. 2018; 9: 1252–60.

    Артикул

    Google ученый

  • 36.

    Landesman WJ, Mulder K, Allan BF, Bashor LA, Keesing F, LoGiudice K, et al.Потенциальное влияние хозяина кровяной муки на состав бактериального сообщества у нимф Ixodes scapularis . Клещи Tick Borne Dis. 2019; 10: 523–7.

    Артикул

    Google ученый

  • 37.

    Бонне С.И., Бинетруй Ф., Эрнандес-Яргин А.М., Дурон О. Микробиом клещей: почему непатогенные микроорганизмы имеют значение в биологии клещей и передаче патогенов. Front Cell Infect Microbiol. 2017; 7: 236.

    Артикул

    Google ученый

  • 38.

    Gofton AW, Oskam CL, Lo N, Beninati T, Wei H, McCarl V и др. Ингибирование эндосимбионта Candidatus Midichloria mitochondrii во время профилирования гена 16S рРНК позволяет выявить потенциальные патогены у клещей Ixodes из Австралии. Векторы паразитов. 2015; 8: 345.

    Артикул

    Google ученый

  • 39.

    Lalzar I, Harrus S, Mumcuoglu KY, Gottlieb Y. Состав и сезонная изменчивость бактериальных сообществ Rhipicephalus turanicus и Rhipicephalus sanguineus .Appl Environ Microbiol. 2012; 78: 4110–6.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 40.

    Кемп Б.М., Смит Д.Г. Использование отбеливателя для удаления загрязняющих ДНК с поверхности костей и зубов. Forensic Sci Int. 2005. 154: 53–61.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 41.

    Принц А.М., Андрус Л. ПЦР: как убить нежелательную ДНК. Биотехнологии. 1992; 12: 358–60.

    CAS
    PubMed

    Google ученый

  • 42.

    Будачетри К., Гайлард Д., Уильямс Дж., Мукерджи Н., Карим С. Снимок микробиома клещей Amblyomma tuberculatum , заражающих черепаху суслика, находящийся под угрозой исчезновения. Клещи Tick Borne Dis. 2016; 7: 1225–9.

    Артикул

    Google ученый

  • 43.

    Clay K, Klyachko O, Grindle N, Civitello D, Oleske D, Fuqua C. Микробные сообщества и взаимодействия у одинокого звездчатого клеща, Amblyomma americanum .Mol Ecol. 2008; 17: 4371–81.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 44.

    Курильщиков А.В., Ливанова Н.Н., Фоменко Н.В., Тупикин А.Е., Рар В.А., Кабилов М.Р. и др. Сравнительное метагеномное профилирование симбиотических бактериальных сообществ, ассоциированных с клещами Ixodes persulcatus , Ixodes pavlovskyi и Dermacentor reticulatus . PLoS ONE. 2015; 10: e0131413.

    Артикул

    Google ученый

  • 45.

    Форель Fryxell RT, DeBruyn JM. Микробиом инфицированных Ehrlichia и неинфицированных клещей-одиночек ( Amblyomma americanum ). PLoS ONE. 2016; 11: e0146651.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 46.

    Zhang R, Huang Z, Yu G, Zhang Z. Характеристика разнообразия микробиоты собранных в полевых условиях Haemaphysalis longicornis (Acari: Ixodidae) в отношении пола и приема пищи кровью. J Basic Microbiol.2018; 59: 215–23.

    Артикул

    Google ученый

  • 47.

    Clayton KA, Gall CA, Mason KL, Scoles GA, Brayton KA. Характеристика бактериального микробиома древесного клеща Скалистых гор, Dermacentor andersoni , и манипуляции с ним. Векторы паразитов. 2015; 8: 632.

    Артикул

    Google ученый

  • 48.

    Галл Калифорния, Скоулз Г.А., Магори К., Мейсон К.Л., Брайтон К.А.Лабораторная колонизация стабилизирует естественный динамический состав микробиома собранных в полевых условиях клещей Dermacentor andersoni . Микробиом. 2017; 5: 133.

    Артикул

    Google ученый

  • 49.

    da Silva JB, da Fonseca AH, Barbosa JD. Молекулярная характеристика Anaplasma marginale у клещей, питающихся буйволами в естественных условиях. Заразить Genet Evol. 2015; 35: 38–41.

    Артикул

    Google ученый

  • 50.

    Сабо MPJ, Пинтер А, Лабруна МБ. Экология, биология и распространение клещевых переносчиков пятнистой лихорадки в Бразилии. Front Cell Infect Microbiol. 2013; 35: 38–41.

    Google ученый

  • 51.

    Дурон О., Бинетруй Ф., Ноэль В., Кремаски Дж., Маккой К.Д., Арнатау С. и др. Эволюционные изменения в структуре сообщества симбионтов клещей. Mol Ecol. 2017; 26: 11.

    Артикул

    Google ученый

  • 52.

    Дюрон О., Ноэль В., Маккой К.Д., Бонацци М., Сиди-Бумедин К., Морел О. и др. Недавняя эволюция эндосимбионта клещей, унаследованного от матери, привела к появлению возбудителя лихорадки Ку, Coxiella burnetii . PLoS Pathog. 2015; 11: e1004892.

    Артикул

    Google ученый

  • 53.

    Machado-Ferreira E, Dietrich G, Hojgaard A, Levin M, Piesman J, Zeidner NS, et al. Coxiella симбионтов в кайенском клещике Amblyomma cajennense .Microb Ecol. 2011; 62: 134–42.

    Артикул

    Google ученый

  • 54.

    Floch H, Fauran P. Ixodides de la Guyane et des Antilles Françaises. Publ Inst Pasteur Guyane Fr Inini. 1958; 19: 1–94.

    PubMed

    Google ученый

  • 55.

    Галан М., Раззаути М., Бард Э., Бернар М., Бруа С., Шарбоннель Н. и др. Секвенирование 16S рРНК Amplicon для эпидемиологических исследований бактерий в дикой природе.mSystems. 2016; 1: e00032-16.

    Артикул

    Google ученый

  • 56.

    Escudié F, Auer L, Bernard M, Mariadassou M, Cauquil L, Vidal K и др. ЛЯГУШКИ: быстро находите OTU с галактическим решением. Биоинформатика. 2018; 34: 1287–94.

    Артикул

    Google ученый

  • 57.

    Гокс Дж., Некрутенко А., Тейлор Дж., Galaxy Team. Galaxy: комплексный подход к поддержке доступных, воспроизводимых и прозрачных вычислительных исследований в области наук о жизни.Genome Biol. 2010; 11: R86.

    Артикул

    Google ученый

  • 58.

    Magoč T, Salzberg SL. FLASH: быстрая корректировка длины коротких чтений для улучшения сборки генома. Биоинформатика. 2011; 27: 2957–63.

    Артикул

    Google ученый

  • 59.

    Rognes T, Flouri T, Nichols B, Quince C, Mahé F. VSEARCH: универсальный инструмент с открытым исходным кодом для метагеномики. PeerJ. 2016; 4: e2584.

    Артикул

    Google ученый

  • 60.

    Mahé F, Rognes T., Quince C., de Vargas C., Dunthorn M. Swarm: надежный и быстрый метод кластеризации для исследований на основе ампликонов. PeerJ. 2014; 2: e593.

    Артикул

    Google ученый

  • 61.

    Бирер С., Тайсклинд Н., Зингер Л., Дюпле С. Сравнительный анализ методов выделения ДНК для изучения микробиоты поверхности тела насекомых: исследование на примере кутикулярных бактерий муравьев.Мол Экол Ресур. 2017; 17: e34–45.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 62.

    Бокулич Н.А., Субраманиан С., Фейт Дж. Дж., Геверс Д., Гордон Дж. И., Найт Р. и др. Качественная фильтрация значительно улучшает оценки разнообразия при секвенировании ампликонов Illumina. Нат методы. 2013; 10: 57–9.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 63.

    Цена МН, Дехал П.С., Аркин А.П. FastTree: вычисление больших деревьев минимальной эволюции с профилями вместо матрицы расстояний.Mol Biol Evol. 2009; 26: 1641–50.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 64.

    Чен Дж., Биттингер К., Чарлсон Э.С., Хоффманн С., Льюис Дж., Ву Г.Д. и др. Связывание состава микробиома с ковариатами окружающей среды с использованием обобщенных расстояний UniFrac. Биоинформатика. 2012; 28: 2106–13.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 65.

    Арбизу PM. Парное многоуровневое сравнение с использованием адониса.2018. https://github.com/pmartinezarbizu/pairwiseAdonis. По состоянию на 11 октября 2018 г.

  • 66.

    Holm S. Простая процедура последовательного множественного отбора. Scand J Stat. 1979; 6: 65–70.

    Google ученый

  • 67.

    Morawe M, Hoeke H, Wissenbach DK, Lentendu G, Wubet T, Kröber E, et al. Ацидотолерантные бактерии и грибы как поглотитель углерода, полученного из метанола, в почве лиственного леса. Front Microbiol. 2017; 8: 1361.

    Артикул

    Google ученый

  • 68.

    Чжан М.М., Поульсен М., Карри ЧР. Распознавание симбионтов мутуалистических бактерий муравьями-листорезами Acromyrmex . ISME J. 2007; 1: 313–20.

    Артикул

    Google ученый

  • 69.

    Росс Б.Д., Хейс Б., Радей М.К., Ли Х, Джозек Т., Бьорк Дж. И др. Ixodes scapularis не содержит стабильного микробиома средней кишки. ISME J. 2018; 12: 2596–607.

    Артикул

    Google ученый

  • 70.

    Wang M, Zhu D, Dai J, Zhong Z, Zhang Y, Wang J. Локализация в тканях и вариации основных симбионтов у Haemaphysalis longicornis , Rhipicephalus haemaphysaloides и Dermacentor silvarum в Китае. Appl Environ Microbiol. 2018; 84: e00029-18.

    Артикул

    Google ученый

  • 71.

    Hammer TJ, Janzen DH, Hallwachs W, Jaffe SP, Fierer N. Caterpillars отсутствует постоянный микробиом кишечника. Proc Natl Acad Sci USA.2017; 114: 9641–6.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 72.

    Джинг Х, Вонг AC-N, Честон Дж. М., Колвин Дж., Маккензи К. Л., Дуглас А. Е.. Бактериальные сообщества насекомых, питающихся флоэмой. Mol Ecol. 2014; 23: 1433–44.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 73.

    Meseguer AS, Manzano-Marín A, d’Acier AC, Clamens AL, Godefroid M, Jousselin E. Buchnera сменил соседа по квартире, но повторная замена ко-облигатных симбионтов не связана с экологическим расширением их хозяев тлей.Mol Ecol. 2017; 26: 2363–78.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 74.

    Михалкова В., Бенуа Дж.Б., Вайс Б.Л., Аттардо Г.М., Аксой С. Витамин B6, вырабатываемый облигатными симбионтами, имеет решающее значение для поддержания гомеостаза пролина и плодовитости мух цеце. Appl Environ Microbiol. 2014; 80: 5844–53.

    Артикул

    Google ученый

  • 75.

    Сигенобу С., Ватанабэ Х., Хаттори М., Сакаки Ю., Исикава Х.Последовательность генома внутриклеточного бактериального симбионта тлей Buchnera sp. APS. Природа. 2000. 407: 81–6.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • 76.

    Wernegreen JJ. Эндосимбиоз. Curr Biol. 2012; 22: R555–61.

    CAS
    Статья

    Google ученый

  • Лабораторные методы

    Лабораторные методы

    Часть G: Методы и материалы

    Лабораторные методы

    А.Стерильные методы

    Стерильная техника — дело относительное. Необходимые меры предосторожности зависят от
    экспериментальной ситуации, включая используемые питательные среды, конкурентоспособные способности
    экспериментальный организм, продолжительность эксперимента и предполагаемое использование культуры. За
    В этих экспериментах наиболее серьезной проблемой загрязнения является плесень. Растут многие распространенные плесени
    хорошо на дрожжевой среде и эффективно конкурируют, перерастая чашки и скрывая эти дрожжи
    которым удается расти.Бактерии представляют меньшую проблему, поскольку большинство из них плохо растут на
    эти среды и, имея небольшой опыт, можно легко отличить их от дрожжей. Другие штаммы
    дрожжей могут стать губительными для здоровья загрязнителями, если они останутся незамеченными. В частности, красные дрожжи, которые
    иногда появление может сбивать с толку, но отличается от наших красных дрожжей, потому что
    не требует аденина.

    Однако, в отличие от краткосрочных экспериментов, стерилизационная среда должна быть достаточно строгой.
    потому что хранение дает достаточно времени для развития даже медленно растущих загрязняющих веществ.У нас есть
    на основании своего опыта пришли к выводу, что хранение носителей в холоде на самом деле контрпродуктивно. Оно делает
    не предотвращает заражение, но замедляет его рост. Следовательно, загрязнение может остаться незамеченным.
    пока культуры не инкубируются. Намного лучше хранить носители при комнатной температуре и обнаруживать
    загрязнение до использования среды.

    (1) Стерилизация влажным теплом

    Влажное тепло, создаваемое автоклавом или скороваркой, является эффективным способом стерилизации
    большинство материалов.При давлении на 15 фунтов на квадратный дюйм выше атмосферного, вода достигает температуры
    приблизительно 121 ° C, прежде чем он закипит. Большинство материалов эффективно стерилизуются за 15 минут.
    воздействие этой температуры. Если автоклав недоступен, обычное бытовое давление
    плита эффективно стерилизует расходные материалы небольшими партиями.

    (2) Стерилизация сухим жаром

    Сухие материалы, такие как стекло и металл, можно стерилизовать в духовке, но это требует более высокой
    температура (160 ° C) и более длительное время (не менее 2 часов), чем в автоклаве.Это наиболее практично
    для стеклянной посуды, когда доступна духовка, управляемая автоматическим таймером, так что стерилизация и
    охлаждение может произойти в течение ночи. Использование одноразовой предварительно стерилизованной пластмассовой посуды делает печь менее
    важный.

    (3) Стерилизация пламенем

    Пламя газовой горелки эффективно стерилизует небольшие стеклянные или металлические предметы, такие как
    засевая петли, но следует избегать «поджаривания» дрожжей при контакте с предметами, нагретыми в пламени.Окуните стеклянные разбрасыватели в спирт, а затем воспользуйтесь пламенем, чтобы поджечь спирт. Поместите металлические инструменты такими
    как петли в пламени, пока они не станут докрасна. Охладите горячие инструменты, прикоснувшись ими к агару или внутри
    стерильной стеклянной пробирки. Однако, поскольку пламя опасно, этот метод можно и нужно
    по возможности избегать. Мы обнаружили, что пламя действительно необходимо только для стерилизации
    посевные петли и небольшие инструменты. Мы не смогли продемонстрировать какую-либо ценность в
    зажигание отверстий пробирок, бутылок или колб в этих экспериментах.

    (4) Стерилизация спиртом

    Во многих экспериментальных процедурах наиболее эффективный способ стерилизации предметов —
    этиловый спирт. Либо 95%, либо 70% будут работать. Последний на самом деле более эффективен, но первый
    часто удобнее. Конечно, спирт должен испариться или сгореть
    до того, как объект будет использован в контакте с дрожжами. Используйте огонь, чтобы сжечь спирт, свечу
    обычно дешевле и безопаснее, чем газовая горелка.Алкоголь больше, чем тепло,
    стерилизации, поэтому просто «зажгите» спирт, чтобы минимизировать нагревание и ускорить процесс. Также протрите
    скамейку со спиртом перед началом эксперимента по удалению заплесневелой пыли, наиболее
    общий источник загрязнения. Если ваша кожа не особенно чувствительна, протрите руки
    небольшое количество алкоголя тоже.

    (5) Обеспечение стерильности стерильными вещами

    Наиболее частые источники загрязнения во время эксперимента — пыль от
    скамейки, с воздуха и от людей.Это диктует несколько очевидных принципов:
    1) Сохраняйте
    вещи покрыты как можно больше.
    2) Не трогайте ничего, что может соприкасаться с
    культуру, и если вы все-таки дотронетесь до нее, стерилизуйте ее еще раз перед использованием.
    3) Протрите поверхность
    вокруг эксперимента с алкоголем и минимизировать турбулентность воздуха.
    4) Избегайте разговоров, пения,
    свист, кашель или чихание в направлении вещей, которые должны быть стерильными. Длинные волосы, если нет
    привязанный назад, может быть источником заражения.
    5) Поддерживайте подходящее место для подготовки,
    хранение и использование стерильных сред. К сожалению, домашние растения, животные и другие материалы, такие как
    Среда дрозофилы, обычно встречающаяся в классах биологии, является богатым источником плесени и
    следует держать подальше от зоны стерильных процедур.

    (6) Изучите свое загрязнение, чтобы его избежать.
    Время

    Если некоторые из ваших чашек с агаром загрязнены, вы часто можете сказать, исследуя
    табличка, как произошло заражение.Если загрязняющие вещества попадают в агар,
    Загрязнение, вероятно, было залито средой. Если заражение находится под агаром,
    могло быть в посуде до того, как ее налили, или в нее вошли, когда крышка открывалась, чтобы
    залить. Если загрязнение наверху, оно могло появиться до закрытия крышки после заливки.
    открывая крышку для удаления конденсата или пока пластина была
    прививается.

    (7) Адаптируйте свои методы к своим
    Потребности

    Соответствующая стерильная техника важна для успешных микробиологических экспериментов, но
    чрезмерные меры предосторожности могут серьезно отвлечь внимание.Дрожжи и бактерии требуют разных методов
    из тканевой культуры. Дрожжи быстро растут, опережая большинство вещей, кроме нескольких нитчатых
    (нечеткие) грибы и некоторые бактерии. Эксперименты могут стать загрязненными и все равно не потеряться, если
    студенты используют дрожжи, потому что дрожжи будут расти достаточно хорошо, несмотря на загрязнение, что
    результаты эксперимента можно прочитать через оскорбительный рост. Поэтому используйте как можно больше
    осторожность при приготовлении и заливке СМИ.

    Д.Рост Медиа

    В большинстве экспериментов в этом руководстве используются один или два из следующих типов средств массовой информации:

    1) питательно полноценная среда, содержащая субоптимальное количество аденина (YED),

    2) питательно полноценная среда, содержащая избыток аденина (YEAD),
    3) a
    химически определенная среда без аденина (MV),
    4) химически определенная среда с
    аденин (MV + Ade),
    5) среда для споруляции (YEKAC),
    6) среда, используемая для
    идентифицировать маленькие мутанты (PETITE) и
    7) богатую среду, используемую для хранения штаммов дрожжей (YEPAD).

    Мы используем среды, приготовленные из коммерчески доступных ингредиентов. Небольшие дополнительные расходы
    Использование этих ингредиентов более чем компенсируется их однородностью и надежностью. В
    экономия, которую можно получить, используя «домашние» ингредиенты, меньше, чем можно было бы ожидать
    потому что мы еще не нашли замену самому дорогому ингредиенту — агару. Несмотря на то что
    общие источники, такие как различные виды овощных соков, могут обеспечить большинство других
    ингредиенты, мы обнаружили, что жертвовать воспроизводимостью неоправданно.

    Среда YED (дрожжевой экстракт + декстроза) будет нашей стандартной питательной средой. Это называется
    «сложная» среда, потому что она сделана из натуральных ингредиентов (дрожжей) и точного химического состава
    состав не известен. Он содержит все, что есть в дрожжах, включая, конечно, аденин.
    это также «законченная» среда. Мутанты, требующие красного аденина, хорошо растут на этой среде и
    развивают характерный красный пигмент.

    Среда YEAD (дрожжевой экстракт + аденин + декстроза) содержит те же ингредиенты, что и YED, но
    добавлен избыток аденина.Мутанты, требующие красного аденина, хорошо растут на этой среде, и будет
    не
    развивают характерный красный пигмент.

    Среда YEPAD (дрожжевой экстракт + пептон + аденин + декстроза) содержит те же ингредиенты
    как YEAD, но с добавлением пептона. Это очень богатая среда, используемая для хранения штаммов дрожжей.

    Среда MV (Minimal plus Vitamins) — это среда определенного химического состава, то есть она состоит из
    минимум чистых химических ингредиентов, необходимых для поддержания роста дрожжей дикого типа.Мы
    будет использовать MV, когда нам нужна среда, не содержащая аденина.

    Среда MV + Ade (Минимал плюс витамины + аденин) содержит те же ингредиенты, что и MV, но
    добавлен избыток аденина.

    YEKAC (дрожжевой экстракт плюс ацетат калия) индуцирует диплоидных дрожжей для споруляции и
    пройти мейоз. Это несбалансированное питание, поэтому рост будет очень незначительным.

    Среда PETITE содержит глицерин в качестве источника углерода и используется для идентификации небольших колоний.
    мутанты.На этой среде маленькие клетки не будут расти.

    Рецепты агаровых сред для выращивания

    Если вы используете предварительно расфасованную смесь, следуйте инструкциям на упаковке. Если ты
    Для взвешивания сухих ингредиентов используйте следующие рецепты. Приведены рецепты приготовления
    100 миллилитров. Если вы хотите заработать больше, просто умножьте количество, чтобы получить объем, который вы
    хотеть. Пример: чтобы получить 500 миллилитров, умножьте каждый ингредиент на 5.Не кладите больше 600
    миллилитры в колбе на 1000 миллилитров. Если вы наполните емкости слишком полными, они могут выкипеть во время
    процесс стерилизации. Для того, чтобы налить одну стандартную 100 x 100 мл среды, требуется примерно 25 мл среды
    Пластина 15 мм. (Жидкая среда может быть приготовлена ​​по этим рецептам без агара.)

    Декстрозная среда с дрожжевым экстрактом (YED):

    1 грамм дрожжевого экстракта
    2 грамма безводной декстрозы (глюкозы)
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    100 мл воды

    Дрожжевой экстракт аденин-декстрозной среды
    (YEAD):

    1 грамм дрожжевого экстракта
    2 грамма безводной декстрозы (глюкозы)
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    8 мл основного раствора аденина
    92 мл воды

    Дрожжевой экстракт пептон аденин декстроза среда
    (YEPAD):

    1 грамм дрожжевого экстракта
    2 грамма пептона
    2 грамма безводной декстрозы (глюкозы)
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    8 мл основного раствора аденина
    92 мл воды

    PETITE Средний:

    1 грамм дрожжевого экстракта
    0.025 грамм декстрозы (глюкозы) безводной
    2,4 мл глицерина
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    98 мл воды

    Минимальный с витаминами (МВ):

    0,15 г дрожжевой азотной основы без аминокислот и сульфата аммония
    0,52 г сульфата аммония
    2 грамма безводной декстрозы (глюкозы)
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    100 мл воды

    Минимальная среда плюс аденин (MV + ade):

    0.15 грамм дрожжевой азотной основы без аминокислот и сульфата аммония
    0,52 г сульфата аммония
    2,0 г безводной декстрозы (глюкозы)
    2,0 г Агара (агар-агар; гумми-агар)
    8,0 мл основного раствора аденина
    92 мл воды

    Среда для споруляции (YEKAC):

    1 грамм ацетата калия
    0.25 грамм дрожжевого экстракта
    2 грамма агара (агар-агар; гумми-агар)
    100 мл воды

    Базовый раствор аденина

    400 мг аденина в 400 мл воды (1 мг / мл)
    Хранить при комнатной температуре.
    Используйте 2 мл основного раствора на 100 мл среды; уменьшить воду
    добавлен в среду по 2 мл.

    Диски для промокательной бумаги с аденином

    1.25 грамм аденина
    150 мл дистиллированной воды
    диски для промокательной бумаги арт
    Добавьте аденин в дистиллированную воду в достаточно большом стакане, чтобы раствор не закипал.
    над. Варить пять минут. Добавьте промокательные бумажные диски и прокипятите еще пять минут. Снимаем диски
    стерильными щипцами в стерильный закрытый контейнер, например чашку Петри. Поместите их в один слой
    и дайте им высохнуть в течение нескольких дней.

    Э.Стерильная вода

    Для многих краткосрочных экспериментов воду можно «стерилизовать» кипячением.

    1) налейте воду в неплотно закрытую емкость,
    2) поместите емкость в кастрюлю с
    кипяток 15 минут,
    3) после остывания закройте емкость для воды крышкой.

    Вероятно, лучший способ приготовить стерильную воду — это поставить неплотно прикрытую воду
    емкости в автоклаве или скороварке, а затем стерилизовать воду под тем же
    условия, используемые для питательных сред.

    F. Температура инкубации и скорость роста

    Оптимальная температура роста для этих штаммов составляет примерно 30 ° C, но они будут
    вполне удовлетворительно растут в гораздо более широком диапазоне. Все эти эксперименты можно провести в
    комфортная комнатная температура, но дрожжи переносят практически любую температуру, которую могут люди.
    Однако температура повлияет на скорость роста. При более низких температурах клетки будут расти
    медленнее, и скорость должна определяться экспериментально.Время инкубации оценивается в
    Эти эксперименты основаны на инкубации при температурах в пределах одного или двух градусов от 30 ° C.

    Фактически, можно замедлить дрожжи, охладив их, чтобы эксперименты соответствовали классу.
    расписания. Просто охладите или просто охладите тарелки на разных стадиях, чтобы замедлить рост.
    Однако имейте в виду, что после того, как культура была охлаждена, может наступить период задержки
    за несколько часов до того, как он снова начнет расти. Конечно, если он достиг стационарной фазы, он
    не будет расти дальше при любой температуре.

    Штаммы дрожжей действительно можно хранить в течение длительного времени в холодильнике при
    температуры чуть выше нуля. Некоторые штаммы будут продолжать расти, хотя и очень медленно, при
    эти температуры, но большинство из них остаются жизнеспособными в течение недель или месяцев, а некоторые — годами.

    Следует избегать температур выше 30 ° C. Хотя клетки будут расти при более высоких
    температуры, в них накапливаются нежелательные маленькие мутации, и спороношение сильно подавляется.Красный пигмент у мутантов аденина также подавляется при более высоких температурах. Безопаснее всего
    инкубируйте спорулирующие культуры при комфортной комнатной температуре.

    Инкубируйте культуры в темноте или при слабом освещении.
    удобный. Хотя это и не критично, длительное пребывание в нормальной комнате
    свет или более яркий свет снизят жизнеспособность клеток, которые
    содержат красный пигмент. Чувствительный к УФ-излучению штамм G948-1C / U не должен
    иметь длительное воздействие источников света.

    Для оптимального роста и развития красного пигмента чашки должны быть аэробными. Мы
    инкубируйте чашки в открытых пластиковых пакетах для хранения продуктов. Достаточно кислорода при открытых мешках
    для поддержки аэробного дыхания. Пластиковые пакеты предохраняют тарелки от слишком быстрого высыхания, защищают их
    от загрязнения и облегчить их переноску, не пролив.

    G. Использование зубочисток и инъекционных петель

    Для большинства целей самый простой способ переместить дрожжи из одного места в другое на агаре.
    средний — стерильной зубочисткой.Плоскую зубочистку использовать проще, чем круглую.
    Заостренный конец полезен для отбора образцов из отдельных колоний или для создания небольших пятен.
    или полосы. Плоский конец хорошо подходит для распределения дрожжей, для их разметки, чтобы изолировать отдельные
    колонии и для смешивания. Зубочистки стерильны непосредственно из коробки, если в коробке нет
    был загрязнен. Просто прорежьте один угол, чтобы сделать небольшое отверстие (от 1/4 до 1/2 дюйма в поперечнике).
    а коробка будет служить дозатором.Зубочистки в коробке направлены в обе стороны, но
    Вы можете легко выбрать желаемый конец для любой задачи. Конечно, нужно позаботиться о том, чтобы обращаться с
    каждую зубочистку только за конец, который не касается дрожжей или среды.

    Зубочистка — альтернатива традиционной петле для посева, которая доступна
    коммерчески, даже в платине. Мы делаем наши собственные петли для посева из куска от 6 до 8 дюймов.
    латунный пруток (используемый для пайки) и нихромовая проволока.Просверлите небольшое отверстие возле конца стержня, чтобы
    закрепите провод, вставьте конец провода в отверстие, намотайте несколько витков вокруг стержня и
    оставьте один-два дюйма проволоки прямыми. В конце прямого участка сформируйте петлю с парой
    плоскогубцы. Обжигайте провод в горелке Бунзена, пока он не станет красным, чтобы стерилизовать его перед каждым
    используйте и, конечно же, дайте ему остыть, прежде чем он коснется (или поджарится) дрожжей. Прикоснувшись к агару
    сразу охлаждает.

    ЧАС.Распределяющие ячейки

    Есть несколько способов разложить клетки. Они используют различные типы оборудования для дозирования и
    различные методы перемещения клеток по поверхности агара.
    Количественный метод заливки
    Этот метод требует подготовки отдельной пробирки для окончательного разведения для каждого планшета и
    затем все содержимое пробирки выливается на поверхность агара. Этот метод имеет
    преимущество в том, что не требуется использование пламени.Его недостаток в том, что он не такой
    воспроизводимый.

    1. Сделайте серии разведений от 1 до 10 суспензий дрожжевых клеток.
    2. Перенесите 0,1 мл соответствующей суспензии в стерильную пробирку, содержащую 0,9 мл
    стерильная вода. Вращайте пробирку, чтобы приостановить клетки, а затем вылейте все содержимое
    пробирку на поверхность агаровой среды. Наклоните и поверните пластину, чтобы
    распределить суспензию по поверхности агара.
    3. Если есть пятна, которые не покрываются, используйте стерильную зубочистку, чтобы размазать
    подвешивание на открытых участках.

    Суспензию необходимо дать впитаться в агар, прежде чем чашки будут подвергнуты воздействию
    экспериментальное лечение. Чтобы ускорить процесс, сделайте чашки с агаром несколько дней в
    заранее и дайте им немного подсохнуть, прежде чем заливать дрожжевую суспензию.

    В видео-разделе «Последовательное разведение и подсчет жизнеспособных клеток» показан метод заливки.

    Количественный метод распределения
    Если вам нужны точные данные, лучше использовать альтернативный метод покрытия. Клетка
    суспензия аккуратно наносится на поверхность агара, а затем распределяется стерильным
    разбрасыватель. Разбрасыватели бывают двух типов:

    Разбрасыватель скрепок No Flame
    Вы можете легко сделать недорогой разбрасыватель многоразового использования, выпрямив два изгиба в большом
    канцелярская скрепка, оставляя конец в форме шпильки для растягивания и прямую ручку под прямым углом к ​​нему.Вы можете стерилизовать несколько разбрасывателей вместе в закрытых мензурках или завернутых в фольгу или бумагу.
    Распылитель пламенного стекла
    Если у вас есть оборудование и навыки для работы со стеклянным стержнем, вы можете сделать простой разбрасыватель стекла.
    нагревая и сгибая один дюйм на конце короткого куска стеклянного стержня. Эти
    также можно приобрести разбрасыватели.

    1. Сделайте серии разведений от 1 до 10 суспензий дрожжевых клеток.
    2. Используйте новый наконечник для дозатора 0.1 мл соответствующей суспензии на агаре
    поверхность. Перед взятием пробы постучите по пробирке. Если вы делаете несколько тарелок
    Вы можете пипетировать клетки в каждую чашку, используя один и тот же наконечник для пипетки, а затем распределить их
    не поджигая распределитель между каждой пластиной.
    3. Стерилизуйте разбрасыватель в 95% этаноле, а затем пропустите разбрасыватель через пламя, чтобы
    зажечь спирт. Осторожно удерживайте разбрасыватель, пока весь спирт на распределителе не
    полностью горит.Использование пламени алкоголя — опасный шаг и требует осторожности.
    и тщательный контроль со стороны учителя.
    4. Охладите разбрасыватель, коснувшись им агара. Используйте плоскую сторону, чтобы разложить
    подвешивание над поверхностью; затем используйте изогнутую часть расширителя, чтобы сделать
    перекрывающиеся мазки. Поверните тарелку на 90 градусов и повторите процесс изготовления.
    перекрывающиеся мазки. Крышку можно держать над пластиной, чтобы минимизировать загрязнение.
    Избегайте распространения суспензии до края, где она может стекать между агаром.
    и сторона чашки Петри.

    В разделе видео «Использование дрожжей для измерения солнечного УФ-излучения» показано покрытие разбрасывателя из пламенного стекла.
    метод.

    Метод качественной заливки для создания газонов ячеек
    Этот метод обеспечивает густой равномерный рост клеток (газон) по поверхности агара.
    пластина. Это быстрый метод, который полезен для множества качественных экспериментов.

    1. Сделайте мутную суспензию дрожжевых клеток.
    2.Нанести пипеткой 1,0 мл суспензии на поверхность агаровой среды. Наклоните и поверните
    чашку, чтобы равномерно распределить суспензию по поверхности агара.
    3. Если есть пятна, которые не покрываются, используйте стерильную зубочистку, чтобы размазать
    подвешивание на открытых участках.

    Как и в методе количественного нанесения покрытия, суспензия должна быть пропитана .
    агар перед экспериментальной обработкой планшетов.Если вы сделаете чашки с агаром
    за несколько дней и дайте им немного подсохнуть, прежде чем заливать дрожжевую суспензию.
    ускорить процесс.

    Видео раздел Влияние солнечного ультрафиолета на элементы иллюстрирует метод заливки покрытия для
    лужайка.

    I. Автоматические микропипетки, серологические пипетки и
    Одноразовые пипетки с шариками

    Автоматические дозаторы — это рабочие лошадки современной молекулярной биологии и
    микробиология.Они быстрые и точные и позволяют сэкономить много времени и нервов. В
    Эксперименты в этом руководстве часто требуют использования дозатора 0,1 мл. Хотя они относительно
    дорогие, они делают работу настолько быстрой, что ее могут легко разделить несколько студентов или лабораторию
    группы. Вы будете использовать его для серийных разведений и для посева клеток на агаре. Стерильные наконечники
    расфасованы в многоразовые пластиковые диспенсеры. Практикуйтесь в использовании дозатора с водой, пока не почувствуете
    комфортно с этим.(Если автоматические микропипеточные дозаторы недоступны, их можно заменить
    одноразовые пипетки с шариками, серологические пипетки или градуированные капиллярные трубки)

    1. Плотно прижмите маленький конец дозатора к открытому концу наконечника, пока наконечник
    все еще в дозаторе.

    2. Чтобы заполнить его, медленно нажимайте на поршень, пока не почувствуете сопротивление, но не настолько, насколько это возможно.
    возможный. Погрузите наконечник в раствор, а затем медленно отпустите поршень.Если
    любые капли налипают на кончик, протрите их краем емкости.

    3. Поместите наконечник в жидкость в пробирке, в которую вы вводите пипетку, и медленно нажмите.
    поршень. На этот раз нажмите как можно глубже, чтобы удалить весь образец.
    Выньте кончик дозатора из раствора, отпустите поршень и выбросьте
    наконечник.

    Серологические пипетки и пипеточные насосы могут использоваться вместо автоматических пипеток.Эти
    пипетки дадут очень точные измерения объема. Возможна покупка предстерилизованных
    серологические пипцы нескольких размеров. У вас должен быть набор дозирующих насосов для студентов
    использовать с этими пипетками. Помните, что никогда не следует набирать жидкость ртом.
    пипетка. Даже стерильной воды!

    Одноразовые пипетки с луковицами также подходят для большинства экспериментов в этом справочнике.
    Три капли из пипетки объемом 1 миллилитр примерно равны 0.1 мл. Громкость
    измерения не такие точные, но эти пипетки дешевы и не требуют использования пипетки
    насосы. Эти пипетки также можно приобрести предварительно стерилизованными и индивидуально упакованными. В
    обертки предварительно стерилизованных пипеток служат удобным стерильным держателем для пипеток во время
    Экспериментальная процедура.

    J. Создание субкультуры дрожжей

    Питательные вещества для дрожжей могут поступать в твердую или жидкую среду.Когда дрожжи штаммы
    поступают от поставщика, они обычно выращиваются на скошенном агаре. Если вы держите эти уклоны плотно
    закрытые и охлажденные, их можно хранить до одного года. Меньшие наклоны позволяют использовать
    зубочистки, чтобы переместить дрожжи. Лучше всего иметь свежие культуры для ваших экспериментов. Итак, день
    перед тем, как вы собираетесь использовать дрожжи, перенесите небольшое количество клеток из исходной культуры в свежие
    средний (обычно ДА). Вы можете использовать обожженную петлю для переноса клеток, но стерильная зубочистка не помешает.
    обычно проще.Прикоснитесь зубочисткой к ячейкам на склоне; вам не нужно переносить много ячеек.
    Сделайте полосу из клеток на поверхности агара; старайтесь не выдавливать поверхность агара. Этот
    Процедура выращивания свежих дрожжей называется субкультивированием. Вы должны субкультивировать не менее 12 часов
    перед тем, как вы собираетесь использовать дрожжи.

    Иногда посевы будут отправлены из центров по производству дрожжей на бумажных носителях. Сделать свежий
    субкультура: стерильно откройте фольгу и с помощью стерильных пинцетов поместите небольшой квадрат молочной бумаги
    на стерильной чашке с агаром YED.Если вы протрите агар бумагой несколько раз, вы получите
    использовать отдельные колонии, и на месте размещения бумаги вырастет большое пятно клеток. Это займет
    от 3 до 5 дней для многих штаммов, выращенных таким образом, чтобы вырасти до подходящего размера. Культур отправлено
    таким образом они менее уязвимы для неблагоприятных погодных условий и длительного времени в пути.

    K. Изоляция одиночных колоний

    Многие эксперименты требуют выращивания колоний из изолированных одиночных клеток.Это легко
    выполняется штриховкой культур на пластине с агаром плоским концом зубочистки. В
    цель метода состоит в том, чтобы последовательно разбавить клетки на поверхности агара, перекрывая друг друга.
    полосы, пока отдельные клетки не будут разделены или распределены с образованием изолированных одиночных колоний. Фигура
    11> ниже проиллюстрирована техника, которую вы должны практиковать, пока не достигнете совершенства.

    Рисунок 11: Изоляция одиночных колоний

    Первый шаг — это
    сделайте одиночную короткую полоску клеток (длиной около 2 см) возле края агара в чашке Петри.Новой зубочисткой нанесите вторую полосу внахлест под углом примерно 15 градусов к
    первый, перетаскивая ячейки из первой полосы на
    свежий агар. Сделайте еще несколько параллельных полос с
    та же зубочистка. Затем возьмите новую зубочистку и
    повторить процесс, начиная с конца последнего
    полоса. Повторяйте эту последовательность, пока вся тарелка
    был покрыт. Поскольку популяция клеток,
    производится из одного
    родительская клетка является клоном, это процесс клонирования
    дрожжи.Если культура не чиста по какой-либо причине,
    это обеспечивает метод выделения чистых клонов. В
    такого же результата можно достичь, используя пламенный и
    охлаждаемая петля на каждом шаге, где свежая зубочистка
    использовал. Этот подход более медленный и рискует поджарить
    клетки.

    L. Replica
    Покрытие

    В некоторых экспериментах мы переносим
    многие культуры из одной среды
    к одному или нескольким другим видам, к
    определить рост культур
    требования.Это можно сделать с помощью
    зубочистки или петли, но если есть очень
    много штаммов для передачи становится
    трудоемкий. Простой, быстрый способ —
    покрытие реплики — сыграло важную роль в
    развитие микробной генетики
    и является одним из величайших экономистов всех
    время. Описанные ниже эксперименты
    можно обойтись без этой техники, но
    это увлекательно и стоит
    Проблема с настройкой. Даже при скромных
    эксперименты, усилие хорошее
    инвестиции в долгосрочной перспективе.

    Принцип покрытия реплики
    что из штампа.

    Рисунок
    13: Покрытие реплики

    Штамп из хлопкового вельвета используется для штамповки копии узора.
    клеток, растущих на одной пластине, на одну или несколько других пластин. Аппарат состоит из
    цилиндрический держатель для вельвета, размер которого идеально подходит для дна чашки Петри
    тарелку и какое-то кольцо, чтобы удерживать вельвет на месте. Для стандартных пластиковых тарелок 10 см
    соответствующий диаметр составляет примерно 3.3 дюйма. Держатель может быть цилиндром из дерева, металла,
    пластик или любой другой материал, который вы можете изготовить. Это может быть даже баночка с едой на фунт или другая
    тяжелая цилиндрическая емкость, если дно ровное. (Круг, вырезанный из подноса для мяса из пенопласта,
    плоская поверхность, чтобы надеть банку с едой) Кольцо для удержания вельвета может быть большим зажимом для шланга, некоторые
    другой найденный предмет, или даже большая резинка.

    Вельвет, конечно, нужно стерилизовать, а недавно разрезанный хлопковый вельвет обычно требует
    перед стерилизацией необходимо удалить липкую ленту.Автоклав и сушить
    тщательно. Мы используем шестидюймовые квадраты, которые складываем и оборачиваем бумагой, автоклавируем, а затем сушим.
    на настройках вакуума. Если автоклава нет, просушите их в теплой духовке или просто дайте им
    сядьте на стол, пока они не высохнут. Чтобы повторно использовать вельветовые квадраты, промойте их в простой воде и
    повторно стерилизовать. Вместо хлопка можно использовать другие ткани, например несколько слоев хлопковой марли.
    вельвет.

    Чтобы воспроизвести тарелку, переверните эталонную тарелку с дрожжами поверх вельвета.
    держатель и плотно прижмите пластину к стерильной тканевой поверхности.Затем медленно очистите тарелку
    выключить, оставив копию или отпечаток клеточного узора на вельвете. Перенести реплику на
    вельвета на одну или несколько стерильных тарелок, осторожно прижимая каждую тарелку к вельвету и
    выскакивает. Можно сделать до 20 копий с одной мастер-пластины, если
    необходимо. Процедура показана на Рисунке 13.

    Способ, которым вы снимаете пластину с вельвета, контролирует количество
    дрожжи перенесены из вельвета в тарелку или из тарелки в вельвет.Если вы очистите мастер-пластину
    от вельвета медленными перекатывающими движениями на бархате останется больше дрожжей, чем если бы вы лопнули
    выключите его быстрым вертикальным движением. Желательно перенести как можно меньше ячеек и при этом
    возможность видеть отпечаток ячеек на реплике пластины.

    М. Оценка количества дрожжевых клеток в
    Культура

    Существует множество способов прямого подсчета клеток, наиболее распространенными из которых является подсчет клеток.
    камеры для микроскопа или электронных счетчиков частиц.Они мало поучительны в
    генетика и не подходят для общего использования в классе. Поэтому мы разработали
    эксперименты, которые не зависят от точного подсчета частиц. Когда требуется подсчет клеток, мы
    определите их по количеству колоний на чашках (см. Разведение и посев
    Процедуры
    ).

    Однако многие эксперименты требуют приблизительных оценок количества
    клетки в жидкой суспензии, чтобы получить разумное количество колоний.Для этого вы
    будет использовать один из самых сложных и чувствительных существующих оптических инструментов: человеческий
    глаз. С удивительно небольшой практикой вы можете научиться оценивать количество клеток в суспензии.
    просто посмотрев на это.

    Визуальная оценка плотности клеток основана на довольно резком пороге зрения глаза для наблюдения
    помутнение. При осмотре в стандартной пробирке 13 x 100 мм дрожжевые суспензии менее примерно 1
    миллионов клеток на мл заметно не мутны.Выше этой пороговой плотности они заметно мутны. К
    доводя количество клеток в суспензии до едва заметного, можно получить суспензию
    известной плотности (приблизительно 1 x 106 клеток / мл), а затем использовать серийные разведения для получения других
    концентрации. (См. Также эксперимент Серийные разведения и подсчет жизнеспособных клеток )

    Материалы:

    • Стерильные закрытые культуральные пробирки 13 x 100 мл.
    • Стерильная вода
    • Стерильные пипетки 1 мл (одноразовые пипетки с шариками или серологические пипетки
      и пипеточный насос)
    • Микропипетка и стерильные наконечники (опция)

    Процедура:
    а.Налейте в пробирку 1-2 мл стерильной воды.

    б. Воспользуйтесь охлажденной, прокаленной инокуляционной петлей или стерильной зубочисткой, чтобы подвесить небольшой
    количество дрожжей размером с булавочную головку в воде.

    c. Тщательно перемешайте суспензию, свободно держа пробирку возле ее верха.
    между большим и указательным пальцами и ударьте по нему снизу
    ладонная сторона одного или нескольких пальцев другой руки, создавая завихрение
    движение.(Ударное движение приблизительно соответствует жесту, который можно было бы сделать, чтобы
    помани кого-нибудь сюда.)

    Эта суспензия должна содержать примерно 1 x 107 клеток / мл, но это
    плотность сложно судить, поэтому мы разбавим его, прежде чем судить о его
    плотность.

    d. Перенесите 0,9 мл стерильной воды в пробирку с помощью стерильной пипетки на 1,0 мл.

    е. Разбавьте 0.1 мл суспензии ваших клеток в эту пробирку и взбейте ее. Сравните это
    с пробиркой, содержащей стерильную воду. Если пробирка с клетками едва мутная,
    тогда он содержит почти 1 х 106 клеток / мл.

    f. Если пробирка не является заметно мутной, добавьте дополнительные 0,1 мл раствора.
    подвеска оригинальная, пока она есть. Если вы думаете, что он мутнее предела
    видимость, затем добавьте еще стерильной воды.Отрегулируйте объемы воды и ячеек
    пока вы не убедитесь. Следите за добавляемыми объемами, чтобы
    знать, какое окончательное разбавление вы сделали.

    N. Процедуры разбавления и нанесения покрытия

    Во многих экспериментах необходимо разложить на пластине примерно известное количество клеток.
    разрастаться в колонии. Мы используем серийные разведения, делая несколько небольших разведений одно за другим,
    вместо того, чтобы делать одно большое разведение.Метод позволяет сэкономить материал и избежать использования больших
    объемы, которые трудно измерить и стерилизовать.

    Материалы:

    • Стерильные закрытые культуральные пробирки 13 x 100 мл.
    • Стерильная вода
    • Стерильные пипетки на 1 мл (одноразовые пипетки с шариками или серологические пипетки и
      пипеточный насос)
    • Микропипетка и стерильные наконечники (опция)
    • Скрепка или разбрасыватель стекла: клетки распределены по поверхности
      агар с разбрасывателями.

    Приготовление серийных разведений:
    Следующая процедура дает серию разведений, которые различаются в десять раз.
    Вы сможете использовать эту процедуру для большинства экспериментов, требующих серийного
    разведения (рисунок 12).

    Рисунок 12: Последовательное разбавление-покрытие
    Стратегия

    а. Приготовьте суспензию, содержащую примерно 1 x 106 клеток / мл в стерильном
    воды, используя процедуру, описанную в Оценка количества дрожжей
    Клетки в культуре.

    б. Пипетка 0,9 мл стерильного
    воды в каждую из трех
    пробирки и промаркируйте их. Мы
    рекомендую сделать
    диаграмма в вашем блокноте
    показывая процедуру
    и смысл твоего
    этикетки.

    c. Ресуспендируйте клетки в
    оригинальная подвеска.
    Удалите 0,1 мл микропипеткой и свежим наконечником и перенесите его в один из
    трубки с водой.Затем постучите по трубке, чтобы приостановить клетки.

    d. Повторите процедуру последовательно, используя новую пипетку или наконечник для каждой пипетки.
    оставшиеся пробирки так, чтобы каждая пробирка содержала 1/10 числа ячеек
    Предыдущая. Третье разведение должно содержать примерно 1 х 103
    клеток / мл.

    Нанесение разведений:
    Если вы ожидаете, что все клетки вырастут, вы будете вносить только последнее разведение, так как
    другие трубки будут слишком концентрированными, и сделанные из них пластины будут
    содержат слишком много колоний для подсчета.Однако в радиационных экспериментах вы
    используйте разведения, содержащие больше клеток, чтобы компенсировать уменьшенное количество клеток
    которые выживают при облучении. Таким образом вы получите оптимальное количество колоний для
    считайте на каждой пластине, даже если большинство клеток мертво.

    е. У вас будут лучшие данные, если вы сделаете все посевы в двух или трех экземплярах. Первый
    маркируйте пластины маркером (Pilot SC-UF или Sharpie).(Ты сможешь
    также используйте эту же ручку для маркировки колоний при подсчете
    их.) Мы рекомендуем вам идентифицировать каждую пластину с номером деформации,
    доза (для радиационных экспериментов), табличка с разведением и ваши инициалы, но вы
    может предпочесть закодировать эту информацию в своих заметках и поставить кодовые буквы или
    цифры на табличке. Пишите только на крышке или маленькими буквами по краю
    дно, оставляя дно чистым для маркировки колоний, когда вы
    посчитай их.

    f. Ресуспендируйте клетки в каждой пробирке, ударив по ней перед взятием образца, затем
    нанесите пипеткой 0,1 мл в центр каждой дублирующей чашки. Если вы используете
    Распределители скрепок извлекают из конверта стерильный разбрасыватель. Если ты
    с помощью разбрасывателя стекла вынуть его из спирта, поджечь на пламени и после
    пламя горит, дотроньтесь до агара одной из пластин вдали от
    клетки.Распределите клетки по поверхности любым распределителем, стараясь
    держите клетки на расстоянии не менее 0,5 см от края агара. (Если вы используете
    Пипеткой для метода посева налейте 0,1 мл суспензии в 0,9 мл стерильной
    воды. Смешайте клетки с водой. Вылейте всю смесь на агар.
    поверхность, затем наклоните и поверните тарелку, пока смесь не распределится равномерно по поверхности.
    поверхность агара.)

    О.Микроскопическое исследование дрожжей

    Самый простой способ исследовать дрожжи под микроскопом — смотреть на них прямо на
    пластина. Это работает только с маломощными объективами (10x), потому что более мощные тоже
    близко к агару и затуманивается. Чтобы увидеть больше деталей, сделайте слайд с мокрым креплением. Капните на
    предметное стекло микроскопа. С помощью стерильной зубочистки перенесите небольшое количество дрожжей в воду и перемешайте.
    маленький. Затем накройте дрожжевую суспензию на предметном стекле покровным стеклом.Если подготовка должна быть
    при просмотре нескольких студентов, приклейте покровное стекло к слайду с помощью лака для ногтей и слайда
    будут доступны для просмотра в течение нескольких часов. Погружение в масло не требуется и просто
    наблюдая за формой клеток, окрашивать их не нужно. При использовании подходящих методов окрашивания
    ядро можно увидеть, но хромосомы дрожжей слишком малы, чтобы их можно было увидеть при большом количестве света
    микроскопы.

    Для демонстрации в классе вы можете использовать видеомикроскоп.Есть ряд
    очень хорошие видеомикроскопы, доступные на рынке. Если у вас его нет, можно получить
    многие из тех же результатов с классным микроскопом и домашней видеокамерой. Когда мы смотрим
    через микроскоп наши глаза фокусируются на бесконечности. Если разместить видеокамеру рядом с
    окуляра микроскопа и установите фокус камеры на бесконечность, он «увидит» то же, что и наш
    глаза. Помогает исключить попадание света сбоку, обернув объектив камеры и
    окуляр микроскопа с куском темной ткани или алюминиевой фольги.

    П. дрожжевые штаммы

    В экспериментах используются следующие штаммы:

    Гаплоиды:

    BSCS Stock
    Штамм № Генотип Комментарии Каталожный номер Номер центра
    HA0 a Дикий тип; будет расти
    MV
    a1 XP837-S10
    HB0 1 XP837-S11
    HA1 a ade1 Красный, требует аденина;
    wild
    XP300-38B
    HB1 ade1 тип для ADE2 XP823-S34
    HA2 Красный, требующий аденина; wild
    HAR a ade2 тип для ADE1 a2 XP832-S25
    HB2, Красный, требует аденина; wild
    HBR ade2 тип для ADE1 2 XP820-S4
    HA12 a ade1 ade2 Красный, требует аденина;
    двойной
    XP300-29C
    HB12 ade1 ade2 мутанты XP300-40C
    HAT a trp5 Белый, триптофан-
    требуется
    a3 XP837-S5
    HBT trp5 3 XP837-S6
    HART a ade2 trp5 Красный, требующий аденина, a4 XP837-S8
    HBRT ade2 trp5 триптофан-требующий 4 XP837-S9
    HA1L a ade1 leu2 Красный, аденин
    и
    лейцин
    требуется
    G948-1C / U рад1 рад18 phr1 ура3 мутант в эксцизионной репарации, склонной к ошибкам репарации и
    фотореактивация, требуется урацил
    Диплоиды:
    Штамм No. Генотип Кросс
    D02 a /
    ade2 / ADE2
    HA2 x HB0
    D12 a / ade1 / ADE1
    ade2 / ADE2
    HA1 x HB2

    В. Облучение дрожжей ультрафиолетом
    Радиация

    Стандартные бактерицидные УФ-лампы с разрядом паров ртути низкого давления
    Пробирки являются идеальным источником УФ-излучения для облучения дрожжей дикого типа нормальными ферментами репарации ДНК.Солнечные или кварцевые галогенные фонари являются хорошими источниками УФ-излучения для облучения мутантных штаммов
    дрожжи с дефицитом нормальных ферментов репарации ДНК.

    Стандартные бактерицидные лампы УФ-С представляют собой обычные люминесцентные лампы без люминесцентной лампы.
    покрытие и оболочка, прозрачная для ультрафиолета. Ртуть низкого давления
    Спектр представляет собой линейчатый спектр с наиболее заметной линией с длиной волны 253,7
    нанометры. Это случайно близко к 260 нанометрам, которые оптимальны для поглощения
    ДНК.

    Дизайн У.В. Радиационная камера продиктована несколькими соображениями,
    наиболее важным является безопасность. (См. Инструкцию по созданию камеры УФ-излучения )
    Излучение бактерицидных ламп вызывает болезненные и опасные ожоги глаз и кожи.
    поэтому они должны быть эффективно защищены. Воздействие на клетки невозможно контролировать, поворачивая
    лампа включается и выключается, поскольку выходная интенсивность лампы сильно зависит от температуры.Следовательно, он должен быть заключен в экранированный ящик с механизмом заслонки, чтобы он мог нагреваться до
    постоянная температура перед использованием. Дверь и ставни должны быть заблокированы, чтобы они
    не могут быть открыты одновременно.

    Порядок работы камеры УФ-излучения:

    1. Подключите лампу и включите ее. Вы можете с уверенностью сказать, когда лампа
    на, увидев световой индикатор.

    2. Если возможно, дайте лампе нагреться в течение 30 минут.

    3. Отцентрируйте чашку Петри по метке на дне чашки.
    ящик, снимите крышку пластины, осторожно опустите дверцу и откройте заслонку.
    Измерьте время экспозиции с момента открытия затвора. Когда
    время истекло, закройте ставни, аккуратно поднимите дверцу, наденьте крышку
    чашку Петри и удалите ее. Слишком быстрое перемещение двери вызывает воздух
    турбулентность, которая может вызвать загрязнение чашек с агаром.Если
    коробка оснащена лампой UV-B, процедура может быть аналогична
    последовал.

    Порядок экспонирования при использовании солнечного света или кварцевых галогенных ламп:

    1. Накройте посуду темной бумагой и, пока она остается накрытой,
    блюдо под углом 90 градусов к источнику света. Если вы используете
    кварцевый галогенный свет снимите стеклянную крышку с светильника. В то время как
    солнце и уличный свет производят меньше УФ-излучения, чем бактерицидные
    трубки следует принимать разумные меры предосторожности.Не смотри прямо
    у источника и избегайте любого длительного прямого контакта с кожей.

    ВНИМАНИЕ! Кварцевая галогенная лампа сильно нагревается. Использование этой лампы должно быть под прямым
    присмотр учителя.

    2. Снимите темную крышку с пластины и начните измерять
    время воздействия. По истечении времени накройте блюдо и переместите его.
    в инкубатор. Обычно нет необходимости снимать крышку с
    пластиковые чашки Петри при использовании солнечных или кварцевых галогенных ламп
    как источник УФ.Большинство пластиковых чашек Петри прозрачны для
    длины волн УФ, создаваемого этими источниками. Вы можете захотеть бежать
    пробный эксперимент на каждой новой партии чашек Петри. Если вы получаете
    выживаемость выше, чем вы ожидаете, возможно, вы захотите удалить крышки
    при УФ-облучении. Если загрязнение становится проблемой, вы можете
    хотите накрыть посуду тонкой полиэтиленовой пленкой или пакетом для бутербродов.
    Эти тонкие пластиковые пленки не поглощают значительное количество УФ-излучения.

    Нажмите здесь, чтобы вернуться

    Последнее обновление Среда, 24 февраля 1999 г.

    Рентгеновская стерилизация | Услуги медицинской стерилизации Steri-Tek

    Лучшие характеристики проникновения

    Стерилизация рентгеновскими лучами предлагает лучшие характеристики проникновения, чем гамма- или электронно-лучевые. Более глубокое проникновение рентгеновских лучей позволяет использовать этот метод для многих продуктов и конфигураций упаковки, которые недоступны для электронного луча.Рентгеновские лучи можно использовать на изделиях из всех типов материалов, включая металлы, жидкости, а также на высокоплотные и многокомпонентные изделия. Кроме того, более глубокое проникновение позволяет стерилизовать более крупные конфигурации упаковки и поддоны.

    Коэффициент однородности дозы (DUR)

    Хотя гамма-излучение способно проникать в большинство тех же материалов и конфигураций, что и рентгеновская стерилизация, существует большая проблема с однородностью дозы гамма-излучения.В случае гамма-излучения DUR может вызывать беспокойство во время стерилизации. Использование рентгеновских лучей решает эту проблему и позволяет выдерживать жесткие диапазоны доз.

    Снижение реакции полимеров

    Одна из основных проблем любого облучения полимеров — это взаимодействие и эффекты, которые оно оказывает на материалы. Высокая экспозиция может вызвать значительные изменения свойств материала и даже цвета. Благодаря короткому времени экспонирования и улучшенному DUR стерилизация рентгеновскими лучами может использоваться для продуктов, в которых единственным вариантом ранее было использование оксида этилена.

    Более высокая скорость обработки

    Рентгеновская стерилизация

    предлагает одно из самых быстрых времен обработки среди всех методов стерилизации. Он не имеет требований ETO по времени выдержки или выделению газов и способен стерилизовать продукты быстрее, чем гамма-излучение. Это может сократить время стерилизации во многих случаях на несколько дней.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *