Стерилизация металлических инструментов контроль стерильности: Стерилизация. Методы стерилизации инструментов и медицинских изделий

Содержание

Контроль стерильности в медицинских и косметологических учреждениях от лаборатории «Викинг»

Несмотря на то, что в медицине и в индустрии красоты с каждым годом все больше и больше используются одноразовые материалы для оказания услуг, тем не менее, ни одно лечебное или косметологическое учреждение пока не могут обойтись без стерилизации и дезинфекции своих многоразовых инструментов. Приходя в медицинский центр или в салон красоты, пациент доверяет не только свой внешний вид и красоту в руки мастера, а в первую очередь – здоровье. Когда при клиенте происходит вскрытие индивидуального крафтпакета и распечатывание комплекта инструментов – это вызывает доверие к специалисту и к заведению в целом.

Дезинфекция и стерилизация инструментов – вопрос, которому необходимо уделять пристальное внимание. Ведь даже при небольшом повреждении кожного покрова есть риск получения клиентом инфекции, если использовать некачественно обработанный материал. Бактерии, стафилококки и грибы оставшись на используемом инструменте, могут передаться человеку. При невыполнении надлежащих процедур стерилизации могут появиться ряд серьезных проблем. Их не сложно предотвратить, если правильно и своевременно дезинфицировать и стерилизовать инструменты.

Выделяют несколько этапов дезинфекции и стерилизации в ЛПУ, парикмахерских и в салонах красоты: дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация самих инструментов. В чем разница между дезинфекцией и стерилизацией? В том, что именно последний способ обеззараживания гарантирует полную ликвидацию микроскопических агентов вместе с их спорами.

Наша лаборатория «ВИКИНГ» аккредитована на весь спектр услуг по проверке качества дезинфекции, стерильности медицинских изделий и инструментов. Мы определяем эффективность процесса стерилизации с использованием биологических индикаторов, содержащих штаммы для контроля паровой и воздушной стерилизации, а также проверяем изделия медицинского назначения, инструментарий из салонов красоты на их стерильность.

Доверив нам контроль качества ваших инструментов, вы можете быть спокойны за результат, а клиенты вам будут доверять!

Оставить заявку на исследование

Дезинфекция и стерилизация инструментов в салоне красоты

Дезинфекция и стерилизация парикмахерских инструментов

Наши клиенты, приходя в педикюрный-маникюрный кабинет или в кабинет косметолога, озабочены одним и тем же вопросом: А все ли инструменты тщательно обработаны? Как правильно обрабатывается инструмент и как можно это проверить?

А часто такой же вопрос задают и сами мастера и не только начинающие.

Странно слышать от практикующих мастеров вопрос: » А Как надо обрабатывать инструмент?» Но пусть лучше спрашивают, чем молчат и не делают правильно.

Существуют единые правила обработки инструментов после применения, подтвержденные лабораторными исследованиями и зафиксированные в нормах СЭС.

Но, несмотря на то, что есть единые стандарты и правила обработки инструментов, часто слышу от мастеров, что их учили обрабатывать инструменты по-другому. Мастера, которые работают дома, зачастую вообще не задумываются о том, что инструменты надо как-то обрабатывать, для них как будто нет правил, нет законов, но это совсем не значит, что микробы и микроорганизмы обойдут их стороной.

Для того чтобы быть уверенными не только в правильности обработки используемых инструментов и их последующего хранения, но и в должной полной обработке кабинета, достаточно изучить Федеральный закон № 52 «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» от 30.03.1999 — СанПиН 2.1.2.1199-03 от 1.08.2010 «Парикмахерские. Санитарноэпидемиологические требования к устройству, оборудованию и содержанию», утвержденный главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г. Г. Онищенко, и Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения (приказ МЗ РФ № 90 от 14. 03.1996) — и самим убедиться в правильности полученных знаний.

А новичкам при выборе школы я рекомендую зайти сначала в ее учебный центр и посмотреть, соблюдаются ли требования СЭС в процессе обучения. Обратите особое внимание на то, как обрабатывается помещение, чем производятся дезинфекция и последующая стерилизация инструментов. Мастерам необходимо понимать, что санитарные правила разработаны с целью предотвращения возникновения и распространения инфекционных и неинфекционных заболеваний не только среди клиентов, но и среди персонала.

При несоблюдении этих правил возникает риск заражения как мастера (и членов его семьи!), так и пациентов, приходящих на процедуру. Учтите, что к вам могут приходить клиенты с различными заболеваниями, которые зачастую нельзя определить по внешним признакам. Именно поэтому каждого пациента специалист должен рассматривать как потенциально зараженного — и строго соблюдать все нормы СЭС по обработке не только инструментария и оборудования, но и дезинфекции помещения салона красоты в целом.

Не очищайте инструменты, не опустив их предварительно в дезинфицирующий раствор. Грязь и инфекции буквально распространяются в воздухе и воде, оседают на руках, в раковине, на полу, создавая условия для повторного инфицирования.

Требования к мастерам по маникюру-педикюру и косметологам предъявляются такие же, как к медицинскому персоналу в медучреждениях. И только выполняя требования СЭС, предъявляемые к специалисту и к педикюрному или косметологическому кабинету, мастер сможет защитить себя и клиентов от возможного инфицирования. Поэтому мне хочется еще раз затронуть тему, которая, как оказалось, интересна не только новичкам, но и мастерам, уже имеющим опыт работы.

ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ

Для того чтобы предотвратить распространение инфекций, необходимо проводить обязательные мероприятия по соблюдению правил гигиены, которые заключаются в должной обработке (после каждой процедуры) всех используемых инструментов (ручных и вращающихся). Программа включает:

1. Дезинфекцию и предстерилизационную очистку — замачивание (не орошение!) инструментов в специальных дезинфицирующих растворах, со строгим соблюдением времени пребывания инструментов в растворе, заданного производителями.

Обращаю ваше внимание на то, что после использования педикюрные инструменты без предварительного мытья и очистки (!) помещают в емкости с дезинфицирующим раствором.

2. Очистку — споласкивание под проточной водой продезинфицированных инструментов в течение нескольких минут, тщательное их высушивание с применением одноразовых салфеток. Инструменты необходимо полностью высушить на одноразовой салфетке.

3. Стерилизацию инструментов в приборах, предназначенных для этого (термостерилизатор или автоклав) или химическим способом в растворе Мультидез 4%.

4. Хранение инструментов в ультрафиолетовом стерилизаторе (УФО) или в емкости с герметично закрывающейся крышкой — либо в стерильных одноразовых пакетах, в которых производилась стерилизация.

Хочу еще раз подчеркнуть разницу между дезинфекцией и стерилизацией. Важно знать, что инфекционные болезни вызываются микроорганизмами (бактериями, патогенными грибами, простейшими) и вирусами. Существуют различные пути передачи инфекции. Это контактный путь, когда возбудитель может передаваться от больного человека здоровому через необработанные или неправильно обработанные инструменты и поверхности (пол, оборудование, находящееся в кабинете).

Слово «дезинфекция» в переводе с латыни означает «устранение заражения». Дезинфекция предполагает комплекс мероприятий, направленных на умерщвление патогенных микроорганизмов и исключение возможности их распространения в окружающей среде (заражения ими мастера и клиента).

Для профилактической дезинфекции используются дезинфекционные средства Тефлекс и Мультидез, разрешенные для применения в соответствии с их назначением Минздравом России в установленном порядке.

МЕРОПРИЯТИЯ ПО ДЕЗИНФЕКЦИИ

Дезинфекция кожи (рук мастера, рук и стоп пациента, кожи лица и тела пациента)

Кожа — это защитная оболочка, предотвращающая проникновение бактерий в организм человека. При ее повреждении в результате травм и порезов патогенные микроорганизмы могут проникать в организм и вызывать инфицирование. Антисептика рук — наиболее эффективное и наиболее простое мероприятие по предотвращению передачи инфекций.

Так как руки специалиста — самый активный источник экзогенной инфекции, мастер салона красоты должен тщательно за ними ухаживать, следить за тем, чтобы не было заусенцев, трещин, омозолелостей, которые являются местами скопления микробов. Основное внимание следует уделить смягчению, регенерации, питанию, укреплению и защите кожи и ногтей.

Необходимо помнить, что при поражении кожи и ногтей недопустимо работать в любом учреждении сферы обслуживания населения (приказ МЗ РФ от 14.03.1996). С целью профилактики заражения и для предупреждения распространения парентеральных гепатитов, ВИЧ-инфекций, грибковых заболеваний и других инфекций все манипуляции, при которых может произойти повреждение поверхности кожи, следует производить в защитных перчатках.

Во время работы все повреждения кожных покровов должны быть изолированы напальчниками, лейкопластырем. И именно медицинские защитные перчатки, используемые в педикюрных кабинетах, в настоящее время служат основным средством защиты рук специалиста.

До и после проведения каждой процедуры должна быть произведена дезинфекция кожи рук мастера. Многие мастера совершают ошибку, считая, что при использовании защитных одноразовых перчаток дезинфекция кожи рук не нужна.

• До начала проведения процедуры необходимо произвести дезинфекцию кожи пациента.

В обоих случаях используются дезинфицирующие средства для кожи, например, кожный антисептики «ТефлексА». Он имеет большие преимущества перед другими кожными антисептиками, так как не имеет запаха, не содержит спирта, уничтожает микробы за 28 секунд и его можно наносить на кожу даже с повреждениями, при этом он не вызывает неприятных ощущений и способствует заживлению. Учтите, что все дезинфицирующие растворы следует наносить методом орошения -до полного увлажнения обрабатываемой поверхности. Важно строго выдерживать время экспозиции, заданное производителями (28 секунд). И только после этого можно приступать к работе.

Необходимо знать: для обработки рук специалистов используются готовые кожные антисептики, разрешенные к применению и имеющие сертификат соответствия и методические указания по применению.

Обработка рук спиртосодержащими антисептиками приводит к сухости кожи, а в случае постоянного использования перчаток — к появлению микротрещин, снижающих барьерную функцию кожи. Поэтому лучше пользоваться антисептиком нового поколения «ТефлексА». Мастерам не следует забывать, что перед использованием любого кожного антисептика необходимо производить мытье рук антибактериальным мылом.

Использование антибактериального мыла реально снижает опасность передачи бактерий контактным путем, помогая предотвратить распространение патогенных микроорганизмов. Учтите, что антибактериальное мыло должно быть не кусковым, а жидким, расфасованным в емкости с дозатором.

Дезинфекция инструментов

Дезинфекции должны подлежать все используемые при проведении процедуры инструменты (и ручные и вращающиеся). Все ручные инструменты выполнены из медицинской нержавеющей стали, а рабочие поверхности вращающихся инструментов

(которые прикреплены к штифту) изготавливаются из различных материалов: керамики, резины, диаманта. Соответственно инструменты должны дезинфицироваться в разных растворах, находящихся в разных емкостях. Для дезинфекции нужно развести «Тефлекс концентрат» или «Мультидез концентрат» в нужной пропорции с водой. Этот препарат подходит для любых инструментов из разных материалов.

Важно

Выбирать растворы, обладающие широким спектром действия в отношении бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов, вирусов (включая вирусы гепатита В и ВИЧ).

При использовании любых дезинфицирующих средств строго соблюдать правила разведения, применения и замены раствора, указанные в инструкции.

По мере изменения цвета любой раствор подлежит замене, независимо от того, сколько дней он был в работе (даже если срок годности раствора еще не истек).

Рекомендации:

При выборе дезинфицирующих средств для инструментов обращайте внимание на то, чтобы в их состав входили антикоррозийные добавки. Они помогут вашим инструментам оставаться в рабочем состоянии длительное время, продлят срок их эксплуатации и сэкономят ваши средства на приобретение новых инструментов.

Важно то, что любой инструмент должен быть сразу же после использования (чтобы предотвратить подсушивание загрязнений) погружен в дезинфицирующий раствор.

Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками и внутренней вставкой с отверстиями для слива раствора, иметь маркировку с названием, концентрацией и датой приготовления. Применение и приготовление растворов дезинфицирующих средств осуществляют в соответствии с методическими указаниями.

Всем этим требованиям соответствуют средства «Тефлекс» и «Мультидез»

Существует два вида дезинфекции: ручная и ультразвуковая. При ручной дезинфекции инструменты погружаются в дезинфицирующий раствор и, после того как прошло время экспозиции, очищаются под проточной водой. Ультразвуковая дезинфекция производится с ипользованием ультразвукового стерилизатора, в который наливается дезинфицирующий раствор.

Еще раз обращаю внимание мастеров на то, что не все приборы, которые имеют название «стерилизатор», являются приборами для стерилизации.

Например, ультразвуковой стерилизатор, несмотря на название, предназначен только для одновременной предстерилизационной очистки и дезинфекции различных инструментов и приспособлений в дезинфицирующем растворе под воздействием ультразвука. Никакой стерилизации в нем не происходит! Этот метод особенно удобен, когда инструменты имеют сложную форму.

Эффективной очистке и дезинфекции подвергаются инструменты не только из металла, но и из стекла и пластмассы. Основные факторы, обеспечивающие качественную очистку и дезинфекцию, -потоки дезинфицирующего раствора и кавитация.

Небольшие размеры кавитационных пузырьков позволяют им тщательно и эффективно очищать шероховатые поверхности, глухие отверстия, щели и т. п. Процесс очистки и дезинфекции с использованием ультразвука менее энергоемок, чем обычные методы, и требует меньше времени.

При ультразвуковой очистке и дезинфекции используются дезинфицирующие растворы, предназначенные именно для работы с ультразвуком, что четко указывают производители в инструкции. Преимущество ультразвуковой дезинфекции перед ручной заключается в том, что достигается более интенсивная очистка, снижается время дезинфекции. Благодарятому что инструменты находятся в растворе непродолжительное время, сокращается риск появления коррозии. Почти все современные дезинфицирующие растворы обладают и очищающим и дезинфицирующим действием. Но это не исключает их последующей очистки под проточной водой и использования (при необходимости) ершика или щетки для очистки неровных поверхностей. Очистку водой проводят с целью удаления с изделий белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков дезинфицирующих средств. После очистки инструменты необходимо тщательно вытереть стерильной тканевой или одноразовой салфеткой и высушить при комнатной температуре. Только полностью высушенный инструмент готов к следующему этапу обработки — стерилизации!

Важно:

Если ручной инструмент состоит из двух или нескольких частей, его дезинфекция производится в раскрытом либо разобранном виде.

При дезинфекции и ручные и вращающиеся инструменты должны быть полностью погружены в раствор, над его поверхностью не должно быть никаких кончиков.

Время дезинфекции предусмотрено методическими указаниями и обязательно должно соблюдаться.

В кабинете всегда должен быть необходимый запас всех дезинфицирующих средств.

Выбор метода стерилизации инструментов зависит от особенностей обрабатываемых изделий. Стерилизация проводится в соответствии с методическими указаниями. Ее осуществляют с целью умерщвления всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, в том числе их споровых форм. Споры некоторых бацилл выдерживают кипячение и действие высоких концентраций дезинфицирующих веществ.

Попадая в благоприятные условия, споры прорастают и превращаются снова в вегетативные формы. В результате стерилизации инструмент должен быть полностью освобожден от всех видов жизнеспособных микроорганизмов.

Режимы стерилизации указаны в нормативных документах.

Следует отметить, что в стерилизаторы должен помещаться только продезинфицированный и сухой инструмент.

СТЕРИЛИЗАТОРЫ, РАЗРЕШЕННЫЕ К ПРИМЕНЕНИЮ

На сегодня для стерилизации инструментов разрешены воздушные и паровые стерилизаторы, а так же водный раствор 4% «Мультидез».

В воздушных стерилизаторах (сухожарах) используется сухой горячий воздух. При стерилизации горячим воздухом возбудители болезней уничтожаются высокой температурой (180-200 °С) в течение 60 минут. Разрешается стерилизация инструментов в неупакованном виде в открытых металлических лотках, при условии что их используют в течение часа или будут хранить в ультрафиолетовых установках!

В паровых стерилизаторах (автоклавах) используется горячий пар под давлением.

В этом случае возбудители болезней уничтожаются уже при более низкой температуре — 134 °С.

Автоклав — аппарат для стерилизации — представляет собой камеру, куда загружаются стерилизуемые инструменты и где производится их обработка паром при высоком давлении. Чтобы избежать повреждения инструментов или самого автоклава, для стерилизации паром должна применяться вода только высокого качества.

При паровой стерилизации инструменты должны быть запечатаны в специальные пакеты.

В зависимости от того, какие будут использованы пакеты, существуют разные сроки сохранения инструментов стерильными. В бумажных пакетах, запечатанных термосваркой, инструмент остается стерильным 30 суток, в крафт-пакетах заклеенных — 20 суток, в крафт-пакетах на скрепках — три дня.

При стерилизации средством «Мультидез (концентрат)» подготовленные инструменты полностью погружают в раствор, заполняя им все емкости изделия. После экспозиции, химической стерилизации, отмывать изделия следует только питьевой водой и хранить в стерильных емкостях. Срок хранения простерилизованных изделий не более трех суток.

Важно помнить, что чистота и соблюдение всех правил СЭС — обязательное условие работы салона красоты. Хочу так же предупредить всех мастеров, которые работают дома и устраивают кабинеты в своих жилых помещениях. Это не избавляет вас от ответственности, вы так же обязаны следовать всем правилам дезинфекции и стерилизации инструментов, это нужно и важно не только для ваших клиентов, но и для вас и для вашей семьи.

Все приборы и химические средства для стерилизации должны иметь санитарно-эпидемиологическое заключение: они должны быть зарегистрированы в установленном порядке как приборы или средства для стерилизации медицинских инструментов. Оборудование, аппаратура и материалы, используемые для стерилизации инструментов, должны иметь свидетельство о государственной регистрации, сертификат соответствия, инструкцию по применению (на русском языке).

Паровой метод стерилизации — режимы, особенности, процесс паровой стерилизации

В медицине применяют стерилизацию паровым методом, с помощью этиленоксидной смеси, а также горячего воздуха. Первый вариант производится с помощью автоклавов, которые нагнетают в рабочей части избыточное давление и ускоряют процедуру очистки поверхностей от патогенной микрофлоры. Исторически стерилизация материалов осуществлялась в специальных биксах – металлических коробках с отверстиями и фильтрами для задержания пыли. Также используют х/б ткани вместо биксы. Более современный подход — это использование многоразовых контейнеров для стерилизации, стерилизационных нетканных материалов, или бумажно-плёночных одноразовых стерилизационных пакетов. Паровой метод стерилизации один из самых старых, но до сегодняшнего дня он остается эффективным и недорогим.

Как происходит стерилизация инструмента?

Любые поверхности при обработке с помощью пара убивают микроорганизмы. Этот процесс применяется в производстве медицинских изделий, подготовке инструментария к повторному использованию, в стоматологии, лабораториях. Если используются биксы, срок сохранения стерильности составит 20 суток. При использовании тканей в качестве основы для стерилизации срок сокращается до 3 суток.

Процесс очистки имеет ряд особенностей:

существует два режима – температура в камере достигает 120 или 132 градусов, возможна погрешность в 2 градуса;

давление зависит от выбранного режима – от 1.1 до 2.0 кг/см², это важный фактор удачного выполнения работы;

время полного цикла в первом режиме – 45 минут, во втором режиме время сокращается до 20 минут;

каждый режим предназначен для определенного типа материалов, под высокими температурами обрабатывают металлический инструмент.

Процесс паровой стерилизации прост для оператора. Достаточно сложить объекты для очистки в биксы или на ткань, поместить их в стерилизатор, выбрать режим. Затем дверцы дистиллятора закрываются, запускается процесс. После завершения полного цикла современные устройства оповещают оператора и отключают поддержание созданных условий давления и температуры. Это менее затратный метод, чем химическая дезинфекция.

Подбор оборудования для стерилизации

Недостаточно просто паровой стерилизатор купить, нужно правильно его установить и настроить. Существуют компактные настольные модели для применения в стомтологии и других частных практиках, более функциональные комплекты для применения в оперблоках и ЦСО. Крупное оборудование для стерилизационных отделений дает больше возможностей настройки. Большие промышленные аппараты чаще всего применяются при производстве медицинского инструмента и прочих изделий с высокими требованиями к мониторингу процесса стерилизации.

Где приобрести стерилизационную технику?

Чтобы выполнять все требования режимов паровой стерилизации, воспользуйтесь оборудованием от компании «Стери-Про». Мы сотрудничаем с мировыми лидерами в области производства стерилизационных комплексов. Прямые поставки обеспечивают демократичные расценки для покупателей. Специалисты компании порекомендуют подходящие модели, доставят и установят комплекс, запустят его в работу, дадут четкие инструкции операторам. По вопросам консультаций и покупки оборудования звоните менеджерам компании.

Тестовый контроль на тему «Стерилизация изделий медицинского назначения»

Смоленское областное государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение

«Вяземский медицинский колледж имени Е.О. Мухина»

Тестовый контроль

по ПМ.04. и ПМ. 07. Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными

МДК 04.02. и МДК. 07.02. Безопасная среда для пациента и персонала

Специальности:

31.02.01. Лечебное дело — углубленный уровень СПО

34.02.01. Сестринское дело – базовый уровень СПО

Тема: «Стерилизация изделий медицинского назначения»

Составитель: Анискевич Т. Н.,

преподаватель

профессиональных модулей

г. Вязьма,

2017г.

Тестовый контроль

Тема: «Стерилизация изделий медицинского назначения»

Вариант I

Установите правильное соотношение между:

Определение: Его сущность:

1. стерилизация а) уничтожение вредных насекомых

2. дезинфекция б) полное уничтожение микроорганизмов

всех видов на всех стадиях развития

в) уничтожение патогенных и условно-

патогенных микроорганизмов

(кроме их спор) в объектах внешней

среды

Укажите правильное соответствие упаковок для стерилизации в автоклаве:

а) крафт-пакет, открытая емкость в) бикс, открытая емкость

б) крафт-пакет, 2-х слойная бязевая упаковка г) открытая емкость

Контроль работы стерилизаторов проводят физическим, химическим и ________________ методами.

Стерильный стол накрывают на _________ часов.

Режим стерилизации ИМН из металла в сухожаровом шкафу:

а) t = 100⁰С – 60 мин в) t = 180⁰С – 20 мин

б) t = 132⁰С – 20 мин г) t = 180⁰С – 60 мин

Режим стерилизации ИМН из стекла в автоклаве:

а) 160⁰ С – 150 минут в) 132⁰ С – 20 минут, давление 2 атм

б) 180⁰ С – 60 минут г) 132⁰ С – 20 минут, давление 1,1 атм

Недостатки воздушного метода стерилизации:

а) необходимость использования более высоких температур

б) не вызывает коррозии металлов

в) не происходит увлажнение упаковки

г) медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий

Стерильность ИМН в крафт-пакете сохраняется в течение:

а) не хранятся, используются сразу в) 3 суток

б) 1 сутки г) 20 суток

Преимущества парового метода стерилизации:

а) вызывает коррозию инструментов

б) обладает щадящим действием на стерилизуемый материал

в) осуществляется при сравнительно невысокой температуре

г) увлажняет стерилизуемые изделия

Перечислите химические методы стерилизации:

а) ____________ б) ____________ в)______________

Тестовый контроль

Тема: «Стерилизация изделий медицинского назначения»

Вариант II

Установите правильное соотношение:

Методы стерилизации:

Физический а) воздушный, газовый
Химический б) паровой, воздушный

в) газовый, плазменный

г) плазменный, гласперленовый

2. Резиновые перчатки стерилизуют в _____________________.

Недостатки парового метода стерилизации:

а) вызывает коррозию инструментов

б) обладает щадящим действием на стерилизуемый материал

в) осуществляется при сравнительно невысокой температуре

г) увлажняет стерилизуемые изделия

Преимущества воздушного метода стерилизации:

а) необходимость использования более высоких температур

б) не вызывает коррозии металлов

в) не происходит увлажнение упаковки

г) медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий

Стерильность ИМН в открытой емкости сохраняется в течение:

а) 6 часов в) 20 суток

б) 3 суток г) ИМН используются сразу после стерилизации

Укажите правильное соответствие упаковок для стерилизации в сухожаровом шкафу:

а) открытая ёмкость, крафт-пакет в) 2-х слойная бязевая упаковка

б) крафт-пакет, 2-х слойная бязевая упаковка г) бикс с фильтром

Контроль работы стерилизаторов проводят химическим, бактериологическим и ________________ методами.

Режим стерилизации ИМН из стекла в сухожаровом шкафу:

а) t = 180⁰С – 60 мин в) t = 132⁰С – 20 мин.

б) t = 180⁰C – 20 мин г) t = 120⁰С – 45 мин.

Режим стерилизации ИМН из резины в автоклаве:

а) 132⁰ С – 20 минут, 2 атм в) 180⁰ С – 60 минут, 2 атм

б) 120⁰ С – 45 минут, 1,1 атм г) 120⁰ С – 20 минут, 1,1 атм

Оптимальный режим использования 6 % перекиси водорода с целью стерилизации медицинских инструментов:

а) t = 18^о, 320 минут в) t = 50 ^о, 180 минут

б) t = 18^о, 180 минут г) t = 50^о, 160 минут

Эталоны ответа

на тестовый контроль по теме:

«Стерилизация изделий медицинского назначения»

Вариант I			Вариант II
1	1. б, 2.в	1		1.б 2.в
2	б	2		автоклаве
3	бактериологическим	3		а, г
4	6	4		б, в
5	г	5		г
6	в	6		а
7	а,г	7		физическим
8	в	8		а
9	б, в	9		б
10	применение растворов химических средств, газовый, плазменный	10		в

Паровая стерилизация — эффективный и экономичный способ обеззараживания

Паровые стерилизаторы – устройство для обеззараживания медицинского оборудования

Процедуру уничтожения всех видов микроорганизмов называют стерилизацией. Патогенные и непатогенные микроорганизмы погибают, если обработку инструментов проводят в строгом соответствии с предусмотренным инструкцией режимом, осуществляя прямой и непрямой контроль стерильности.

Разнообразные методы стерилизации

В современных медицинских учреждениях могут быть использованы разнообразные способы обеспечения стерильности.

Термические методы включают как воздушные, так и паровые способы обработки.

Химическая обработка предполагает воздействие обеззараживающих веществ в газообразной или жидкой форме (в растворе химических веществ).

Радиационный метод.

В лечебных учреждениях чаще всего используются термические и химические методы стерилизации.

Воздушные и паровые стерилизаторы

В сухожаровых шкафах микроорганизмы уничтожаются при воздействии на них очень высокой, доходящей до 180 градусов температуры. Стоят воздушные стерилизаторы недорого, но некоторые инструменты с трудом выдерживают высокие температуры, повреждаются при обработке. К тому же для качественной прожарки требуется длительная обработка, не меньше часа.

Паровая стерилизация безопасна для инструментов и цикл обработки в них короче, чем в сухожарках.

Классы паровых стерилизаторов

Согласно общепринятому европейскому стандарту все аппараты для обработки паром делят на три группы.

Класс «N» используется для работы с оборудованием без упаковки и для гладких металлических инструментов без пустот и щелей.

Класс «S» предназначен для стерилизации инструментов в упаковке и без нее.

Класс «B» снабжен функцией по образованию предварительного вакуума и вакуумной сушкой, поэтому обработка в подобных устройствах наиболее эффективна и универсальна.

Автоклавы класса «В» стоят дороже остальных. Зато в эксплуатации эти высокотехнологичные и универсальные устройства считаются самими экономичными.

Преимущества паровой стерилизации

Автоклавы отличаются от других типов стерилизаторов более высокой эффективностью.

Автоклавы надежны и долговечны.

Эти устройства безопасны не только для обрабатываемого медицинского оборудования, но и для персонала и окружающей среды.

Короткий цикл обработки повышает экономичность автоклава.

Вертикальные и горизонтальные автоклавы

По способу загрузки устройства могут быть вертикальными и горизонтальными. Горизонтальный паровой стерилизатор DGM AND, произведенный в Швейцарии, вы можете приобрести на нашем сайте. Главное достоинство горизонтальной загрузки в том, что она позволяет стерилизовать предметы в хрупкой и нежной упаковке, не повреждая её.

Обрабатывать паром можно не только хирургические инструменты, но и текстиль, одежду, изделия из резины, пластика, стекла. Дополнительные программы позволяют стерилизовать медицинские растворы, питательные среды и микробиологические культуры. Следовательно, такое оборудование востребовано не только в медучреждениях, но и в фармацевтических, пищевых, косметических лабораториях

Размеры стерилизаторов

Аппараты колонного типа вмещают большой объем обрабатываемого материала. Настольные стерилизаторы менее вместительны, зато более мобильны. Их легко перенести с одного места на другое.

Как выбирать устройство для паровой стерилизации

При покупке автоклава следует учитывать ряд специфичных параметров, важных не только для качественной стерилизации, но и для скорости или удобства работы. В среднем срок использования автоклава – 10 лет. Поэтому разумнее выбирать наиболее современное устройство, полностью отвечающее требованиям времени.

Современные аппараты не нуждаются в подключении к водопроводу- канализации. Замкнутый цикл позволяет длительное время работать на одной заправке дистиллированной воды.

Удобный режим автоматической или полуавтоматической обработки предпочтительнее ручного управления.

Дополнительные функции расширяют возможности использования стерилизаторов.

Защита от открывания и системы блокировки повышают надежность устройства.

Контролировать параметры работы стерилизатора не обязательно. Электронная система управления сигнализирует об ошибках и даже сама корректирует обработку.

Стандартным для современных устройств считается документирование процесса паровой стерилизации. Встроенный принтер или наличие специальных способов подключения к компьютеру позволяет фиксировать данные по каждой обработке.

Самотестирование нагревательных элементов, вакуума и прочих процессов называется самодиагностикой аппарата. Наличие подобных программ позволяет сократить количество обращений в сервисный центр по ремонту и профилактическому обслуживанию, что становится еще одним привлекательным параметром при выборе стерилизатора.

Способы стерилизации хирургических инструментов. Стерилизация хирургических инструментов методы стерилизации хирургических инструментов стерилизация

Стерилизация медицинского инвентаря – длительная и трудоемкая процедура, без которой не может обойтись ни одна клиника. Указанная манипуляция проходит в три этапа, каждый из которых нуждается в особой внимательности и скрупулезности. С целью облегчения работы медиков и качественного уничтожения вредоносных микроорганизмов на сегодняшний день активно применяются стерилизационные медицинские приборы. Главные их достоинства – удобность и надежность.

Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях?

Рассматриваемый вид обработки применяется в отношении всех медицинских инструментов, контактирующих с раневой поверхностью, слизистыми покровами, кровью потерпевшего.

Указанный инструментарий состоит из следующих компонентов:

Перевязочного материала.
Лабораторной посуды: мензурок, стеклянных тонких трубочек, колбочек.
Операционного белья.
Иголок.
Резиновых изделий, используемых в медицинских целях: катетеров, перчаток, зондов, дренажных трубок.
Приспособлений, которые касаются поврежденных поверхностей организма.
Мелких стоматологических инструментов: боров, каналонаполнителей, дрильборов.
Приборов и аппаратуры для диагностических мероприятий.

Видео: Чистка и дезинфекция конвенциональных медицинских инструментов

Основные этапы стерилизации

Рассматриваемая процедура проводится в три этапа, последовательность которых должна соблюдаться в обязательном порядке:

1.Дезинфекция

Предусматривает ликвидацию вредоносных микроорганизмов в помещении, на инструментах и расходных материалах, которые используются в клиниках. При этом, дезинфицируют не только полы, стены и жесткую мебель, но также воздух, средства ухода за пациентами, санитарно-технические устройства и т.д.

Пребывание в больнице человека с инфекционным недугом – повод для проведения очаговой дезинфекции
.
В целом же, еженедельно в операционных и манипуляционных кабинетах осуществляет генеральную уборку. Влажная уборка помещения осуществляется каждый день. Подобный комплекс мероприятий именуют профилактической дезинфекцией
.

Исходя из назначения инвентаря, который вступает в контакт с кожным покровом, дезинфекция бывает трех видов:

Низкого уровня
. Показана для обеззараживания приспособлений, что контактируют с неповрежденной кожей. Основные средства данного вида дезинфекции – препараты, содержащие хлор, фенол, этиловый или изопропиловый спирт, а также йодофоры. Указанные препараты не способны уничтожать продукты размножения грибов и бактерий, а также мелкие вирусы не липидной природы. С остальной группой болезнетворных микрочастиц они справляются хорошо.
Высокого уровня
. Применяется для обработки медицинских приспособлений, которые используют для контакта с кровью, растворами для инъекций, кровеносными сосудами, чистыми тканями организма. Главными компонентами указанного вида дезинфекции являются 6-процентный раствор перекиси водорода, соединения альдегида и хлора, а также препараты, включающие надуксусную кислоту. Подобные средства устраняют все болезнетворные микрочастицы, кроме продуктов размножения грибков.
Промежуточного уровня
. Дает возможность справиться с крупными липидными вирусами, вегетативными формами бактерий. Нелипидные микровирусы, продукты размножения бактерий устойчивы к подобной очистке. Дезинфекцию промежуточного уровня применяют в отношении инструментов, которые вступают в контакт со слизистыми оболочками либо с рваными кожными покровами.

Дезинфекция осуществляется несколькими способами:

Механическим.
Предусматривает протирание поверхностей влажной тряпкой, стирку операционного и постельного белья, обработку мебели и пола пылесосом. Кроме того, обязательным является регулярное проветривание всех помещений в клинике.
Биологическим.
Для ликвидации тех или иных вредоносных микроорганизмов обращаются к бактериофагам. Указанные антагонисты обладают узким спектром действия, в связи с чем их используют в основном для дезинфекции помещения и твердых поверхностей.
Физическим.
На объекты, которые подлежат обеззараживанию, воздействуют высокими температурами. Это может быть кипячение в растворе дистиллированной воды с содой, обработка паром, сухим воздухом. Данный метод не является опасным для сотрудников клиники и отличается своей надежностью.
Химическим.
Наиболее популярный метод дезинфекции в медучреждениях. Может быть весьма агрессивным для тех, кто работает с химическими реагентами, поэтому изделия, подлежащие дезинфекции рекомендуется располагать на решетках в камерах. Суть рассматриваемой методики заключается в погружении мединвентаря в обеззараживающие химрастворы. Емкость, в которую заливают указанные препараты, должна быть изготовлена из пластмассы, стекла, либо покрыта слоем эмали. Сами дезсредства нужно хранить в плотно закрытых емкостях с указанием точного названия препарата, даты его изготовления и сроков применения. При работе с такими веществами медсестрам необходимо надевать респираторную маску, очки и перчатки. Помещение в это время должно вентилироваться либо проветриваться. Не допускается разбавлять те или иные химические растворы теплой/горячей водой: это спровоцирует усиленное испарение вредных для организма веществ.

Все средства химической дезинфекции, в силу своего состава, условно делятся на 7 групп:

Кислородосодержащие препараты.
Активным компонентом здесь выступает кислород. Наиболее ярким представителем данной группы является перекись водорода.
Гуанидсодержащие средства.
Хорошо справляются с ликвидацией множества разнообразных патогенных бактерий. Они представлены следующими изделиями: Гибитан, Лизетол АФ, Фогуцид и т.д.
Галогеносодержащие вещества
, основу которых составляют йод, хлор, а также бром.
Поверхностно-активные вещества (ПАВы),
что не приводят к образованию ржавчины на металлах со временем. Благодаря их свойствам возможно совмещать процедуру дезинфекции и предстерилазционной очистки.
Спирты.
Показаны для обработки рабочих поверхностей, медтехники, а также для кожных покровов.
Препараты, содержащие янтарный или глутаровый альдегид
. Эффективно справляются с бактериями, вирусами, спорами, макроорганизмами.
Средства на основе фенола.
Зачастую их применяют для очищения помещений, где находятся больные туберкулезом.

Загрязненный рабочий инвентарь сразу после применения погружают специальную емкость, которая залита химическим обеззараживающим раствором. Высота жидкости над уровнем инструмента должна составлять не менее 1 см. При значительных загрязнениях очистку осуществляют дважды. Дезинфекция заканчивается промывкой медицинского инвентаря под проточной водой. Если присутствуют загрязнения на данном этапе, их устраняют механически, посредством ерша, салфетки либо щетки.

2. Предстерилазационная очистка (ПСО)

Она необходима для качественной обработки инструментария, который контактирует с раневыми поверхностями, слизистыми оболочками.

Указанные приспособления предварительно разбирают и погружают в емкость с заранее приготовленным раствором. Для подобной методики изготавливают специальные растворы — или же применяют уже готовые дезинфектанты. В первом случае используют воду, перекись водорода, а также моющие препараты.

Качество очищения мединструмента оценивают путем проведения специальных проб на трех единицах изделий.

3. Непосредственная стерилизация

Является обязательной методикой обработки инструментов, которые соприкасаются с чистыми тканями организма, кровеносными сосудами, а также кровью.

Полная стерилизация осуществляется при помощи стерилизаторов – специального оборудования.

Различают три основных методики стерилизации:

1) Термическая

Подразделяется на:

Паровую
, с применением автоклава. Обеззараживание достигается путем воздействия пара под избыточным давлением. Возбудители болезни здесь начинают гибнуть уже при температуре 120С. Указанная процедура может длиться от 15 минут до 1 часа. Время очистки зависит от материала, из которого изготовлено изделие и степени его загрязнения.
Воздушную
, при помощи сухожарового шкафа. Используется для обеззараживания предметов, которые в следствие специфической структуры не могут поддаваться воздействию газов и паров. Вредоносные микроорганизмы в таких устройствах ликвидируются под влиянием высоких температур (180 С).
Микроволновую
. Подходит для очистки небольшого количества хирургического либо лабораторного инвентаря. Принцип стерилизации заключается в помещении объектов в условия частичного вакуума, и воздействии на них микроволнами. Подобная манипуляция занимается всего 30 секунд.

2) Химическая

Бывает нескольких видов:

Плазменная. Предусматривает использование 20-процентного пероксида водорода.
Стерилизация озоном. Длится около 60 минут.
Очистка с применением паров химических соединений. Для подобных целей могут использоваться:

Окись этилена с бромистым метилом: для стерилизации резиновых, стеклянных, металлических, полимерных изделий, а также медоптики, кардиостимуляторов. Для подобного способа обеззараживания используют газовый стерилизатор.
Пары формальдегида и воды. При температуре 75С в стационарном формалиновом стерилизаторе на протяжении 5 часов обрабатывают инвентарь из резины, стекла, металла, полимера.

3) Радиоактивная

Основана на принципе трансформации ионной энергии в химическую и тепловую. Это благоприятствует разрушению ДНК возбудителей болезней, что останавливает процесс размножения патогенных микрочастиц, и полностью прекращает их существование.

Данный метод зачастую используют в заводских условиях, в ходе массового выпуска медицинского инвентаря (к примеру, разовые шприцы).

Видео: Процесс дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов

Все методы стерилизации инструментов, перевязочного материала и т.д. в медицине сегодня – необходимая аппаратура

На сегодняшний день, в медицинской практике чаще всего применяют стерилизаторы, которые производят очистку посредством горячего воздуха, либо пара.

Каждый из них имеет свои недостатки и преимущества.

Сухой метод стерилизации
негативно влияет на прочность стекла и металла. Страдают также мелкие стоматологические приспособления: при воздействии на них температурами свыше 160 С они притупляются и становятся хрупкими. Еще одним негативным моментом рассматриваемого вида обеззараживания является невозможность контролировать качество очистки предметов.
На сегодняшний день наиболее оперативным и качественным средством обеззараживания является паровая методика
. С ее помощью можно обрабатывать инструменты, которые чувствительны к высоким температурам. Посредством указанных приборов медицинские изделия проходят все три этапа стерилизации. Пар для стерилизации в автоклаве вырабатывается посредством кипячения воды в котле. В стерилизационную камеру, куда помещают загрязненные предметы, поступает указанный пар. С целью поддержания нормального давления предусмотрен предохранительный клапан. Кроме того, автоклав укомплектован манометром и термометром для измерения соответственно давления паровой массы и температуры.

Современные автоклавы бывают трех классов:

Оборудование класса
N.
Хорошо справляется с очищением неупакованных материалов из ткани, а также со сплошным гладким медицинским инвентарем.
Устройства класса
S.
Могут применяться для обеззараживания объектов из ткани, что упакованы, а также для пористых и гладких инструментов.
Автоклавы класса В.
Являются универсальным прибором для стерилизации, так как подходят для любого медицинского инвентаря. Они особенно популярны в стоматологических клиниках.

C целью облегчения и ускорения процесса стерилизации, рынок медицинских товаров предлагает следующее оборудование:

Приборы для тщательной упаковки инвентаря
перед проведением стерилизации.
Моечные аппараты для дезинфекции
. Помогают избавиться от видимых загрязнений. Их главная цель – предстерилизационная обработка медицинских инструментов.
Дистилляторы.
Актуальны для медицинских учреждений, которые активно практикуют автоклавы, — для паровой очистки применяют дистиллированную воду.

Стерилизация в хирургии
— используется для обеззараживания операционного белья, перевязочного материала, инструментов и некоторых аппаратов, применяемых во время операций и перевязок.

Операционное белье

(халаты, простыни, полотенца, маски) и перевязочный материал (марлевые тампоны, салфетки и вата) стерилизуются паром под давлением в автоклаве.

Как исключение (при отсутствии автоклава) прибегают к стерилизации текучим паром. При этом пар, нагретый до t° 100°, проходит через заложенные в аппарат биксы и выходит наружу. Такая стерилизация ненадежна, т. к. убивает не все бактерии (спороносные гибнут при t° выше 120°). Белье и перевязочный материал складывают в форме, наиболее облегчающей его употребление и предотвращающей излишние манипуляции с ним. Подготовку белья и материала производит медсестра, одетая в халат, шапочку или косынку. Люди с гнойничковыми заболеваниями не должны принимать в этом участия. Подготовленный материал и белье укладывают в металлические барабаны Шиммельбуша (биксы), причем в большие биксы укладывают халаты, простыни, полотенца, большие салфетки и тампоны, в маленькие — маски, маленькие салфетки, шарики и вату. Размещение белья и материала должно быть рыхлым. Простыни, халаты, салфетки и т. д. следует укладывать не горизонтальными, а вертикальными слоями. В крупных операционных укладку производят так, чтобы в каждом биксе находился один какой-либо вид белья или материала. В небольших операционных, а особенно для выездов на экстренную операцию, в один бикс закладывают все необходимое для производства одного вмешательства, притом так, чтобы любой предмет можно было извлечь, не касаясь всех остальных. Поверх всего содержимого помещают халат, шапочку, маску для операционной медсестры, которая первой проводит личную асептическую подготовку.

При стерилизации в автоклаве используют водяной насыщенный пар t° 120— 132° под давлением 1,5—2 атм.
Бактерицидные свойства пара усиливаются, если удалить из стерилизуемого материала воздух. Однако это затрудняется тем, что материал находится в биксах. В учреждениях, где имеются большие автоклавы, воздух удаляют при помощи вакуум-насосов. При отсутствии насоса воздух удаляют продувкой — в течение 10 мин. стерилизационная камера работает как текучепаровая установка, т. е. при открытом выходном кране, который затем закрывают. Время стерилизации зависит от давления и качества стерилизуемого материала. Отсчет времени начинают с момента установления требуемого давления и температуры. Одномоментно в автоклав следует закладывать биксы с однородным материалом. При стерилизации биксов с разнородным материалом время устанавливают по материалу, требующему большей продолжительности стерилизации. Перед закладкой в автоклав в биксе открывают все отверстия. Автоклав следует загружать из расчета 65—94 кг белья или материала на 1 м3 объема аппарата. Продолжительность стерилизации белья при давлении 2 am — 30 мин., 1,5 am — 45 мин.; для перевязочного материала — при 2 am — 20 мин., при 1,5 am — 30 мин. По окончании стерилизации автоклав открывают через 5—10 мин. после удаления пара (это необходимо для просушки материала). При выемке биксов отверстия в них тотчас закрывают.

Контроль над стерильностью материала осуществляют при каждой стерилизации физическими и химическими методами. Наиболее надежен биологический контроль. Пользоваться им следует для периодического контроля стерилизации, например раз в месяц, а также в случаях появления нагноений после «чистых» операций.

Стерилизация тазов для мытья рук производят обжиганием. В таз наливают 10— 15 мл денатурированного спирта и поджигают. Вращением таза в разных плоскостях обжигают всю его внутреннюю поверхность. Применение для этих целей эфира недопустимо из-за возможности взрыва.

Катетеры, трубки, дренажи стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 минут. Новые резиновые изделия перед кипячением промывают теплой проточной водой для удаления талька. Хранить их можно в растворе, который применяют для стерилизации перчаток.

Условия стерилизации резиновых изделий
в автоклаве аналогичны условиям, принятым для стерилизации перчаток. Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты
стерилизуют кипячением в 1—2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды — стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов — 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа.

Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180— 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты
при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты — 3 части, едкого натра — 15 частей, формалина — 20 частей, дистиллированной воды — 1000 частей; формалина — 20 частей, фенола чистого жидкого — 1,5 части, карбоната натрия — 7,5 части, воды дистиллированной — 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом.

Шприцы
стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45—50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация — суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами — в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови
и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6—8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) — 100 г, нашатырного спирта — 50 мл, воды — 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части — контрольные стекла и капельницы — промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно — проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30—40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, т. к. они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей
— интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок — осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида; водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5—2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15—30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части — переходные трубки, щипцы, зубные распорки — стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением. Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30—40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов:
сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов — производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке.

Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am
в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде — 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150—160° — 1 час.
Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.
Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12—24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.
Часто применяют модификации способа Кохера:

1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.

2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№ 0—4 в течение 15 мин., № 5—8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.

3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин.
под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в т. ч. и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк
, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.
Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала — кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12—24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0—1 на 30 сек., № 2—5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6—7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке — 40 г, в 5-литровой банке — 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным № 0—1 — через 3 суток, № 2—4 — через 4 суток, № 5—6 — через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7—10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8—10 суток после выдерживания его в течение 12—24 час. в эфире, а затем на 4— 6 суток — в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7—10 суток.

Стерилизация инструментария, в т. ч. и режущего, возможна при помощи ультразвука. Преимущество этого метода в том, что ультразвук осуществляет и механическую очистку инструментов от крови и гноя, не повреждая их. Инструменты помещают в сосуды с дистиллированной водой, туда же опускают излучатель. Применяют ультразвук частотой 800 кгц, мощностью 20—30 вт/см. Через 10 мин. достигается полная механическая очистка и стерильность. Очень эффективна стерилизация белья, перевязочного материала инструментария, аппаратуры, растворов и т. п. гамма-излучением. Доза проникающей радиации должна быть не менее 2 000 000 — 2 500 000 рентген.

ü 1 этап.
Дезинфекция.

Цель:
Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап.
Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель:
Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап.
Стерилизация.

Цель:
Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий:
Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.

ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85:
1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата:
можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает
есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с.
Этот метод используется для контроля СЭР
в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов.
Меняют цвет. При закладке светлые
– 120 0 С слегка песочного цвета
– 132 0 С светло-коричневые
– 180 0 С тёмно-коричневые
(почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ.
Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота
при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина
при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота
при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов.
Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120
– в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132
– в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180
– сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя.
М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача.
М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. — Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя.
М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают
не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так
, чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача.
М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. — Латексные.

ü Опудренные. — Неопудренные.

ü Диагностические. — Хирургические.

ü Стерильные. — Нестерильные.

Все перчатки д.б.
прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000.
Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции
1,5, 0,75, 2%, для стерилизации
8%.

ü Бланизол.
Для ПСО
ИМН, эндоскопов 1%
раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ.
Для дезинфекции
ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол.
Кожный антисептик
.

ü Хлорапин.
Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин.
Кожный антисептик
. Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение:
Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой
в направлении от себя
.

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню
. Развернуть в 1 слой
. Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола
, но не касалась пола.

ü 2 простынь
в 2 слоя
. Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см
.

ü 3 простынь
в 2 слоя
. Так, чтобы свисала с края стола на 10 см
.

ü 4 простынь
так же как 3
.

ü 5 простынь
в 1 слой
. Так, чтобы перекрыла край 2 простыни
.

ü Корнцанги
наложить на края 5 простыни
на уровне углов стола.

ü Поднимаем
простынь за корнцанги и складываем гармошкой
на дальнем конце стола в направлении от себя к себе
. Последнее направление на себя.Кладём
корнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3
. Складываем
гармошкой поверх корнцангов. Цапки
кладём кольцами друг к другу
.

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки
и перекрываем
. Берём корнцанги
иперекрываем
.

20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt

Количество слайдов: 20

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_3.jpg» alt=»>Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: — предметы, которые соприкасаются с поверхностью»>
Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: — предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами — диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_4.jpg» alt=»>Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют»>
Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления. Стерилизация инструментов – первый шаг на операции

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_5.jpg» alt=»>Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап — подготовительный. Цель — подготовка инструментов к стерилизации.»>
Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап — подготовительный. Цель — подготовка инструментов к стерилизации. Проводят замачивание инструментария в моющем растворе, мытье в моющем растворе с помощью щеток, тщательное промывание проточной водой, ополаскивание дистиллированной водой, высушивание; ІІ этап — основной. Цель — собственно стерилизация. Стерилизация инструмента осуществляется горячими и холодными методами. ІІІ этап — заключительный. Цель — контроль качества стерилизации. Проводят с помощью химических индикаторов, которые отображают уровень необходимой для стерилизации температуры, которые закладываются в шкаф вместе с инструментом, или бактериологическим методом — проводят посев из инструментов на питательную среду.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_6.jpg» alt=»>Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит»>
Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от особенностей изделия и самого метода – его достоинств и недостатков. Самые распространенные методы – паровой и воздушный.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_8.jpg» alt=»>Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют»>
Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют автоклав. Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумага-ламинат, бязь. Материалы: полимеры, стекло, латекс, ткань, коррозийностойкие металлы. Достоинства: высокая проницаемость пара, большой выбор упаковки, дольше сохраняется стерильность, дешевый и простой в использовании метод. Недостатки: увлажнение изделий, вызывает коррозию металлов.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_9.jpg» alt=»>Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три»>
Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три основных режима стерилизации: при давлении 1,1 атмосферы — 1 час, при давлении 1,5 атмосферы — 45 минут, при давлении 2 атмосферы — 30 минут.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_10.jpg» alt=»>Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах — сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент»>
Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах — сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент – сухой горячий воздух (160-200oС). Упаковки: крафт-пакеты, бязь. Материалы: металл, текстильные изделия. Достоинства: дешевый, простой метод, не вызывает коррозии металла, не происходит увлажнения упаковки и изделий. Недостатки: ограниченный выбор упаковки, медленное и неравномерное прогревание изделий, необходимость использования более высоких температур, невозможность использовать материалы из резины, полимеров.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_11.jpg» alt=»>Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30″>
Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30 минут при температуре 80°С с приоткрытой дверцей. Стерилизация осуществляется при закрытой дверце в течение 1 часа при температуре 180°С. После этого при остывании шкафа-стерилизатора до 50-70°С дверцу приоткрывают и при окончательном остывании разгружают камеру со стерильным инструментарием.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_12.jpg» alt=»>Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов»>
Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов не используется. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_13.jpg» alt=»>Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты»>
Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия — до 2% раствора). Обычное время стерилизации — 30 минут с момента закипания. После окончания стерилизации сетку с инструментами достают с помощью специальных стерильных ручек.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_15.jpg» alt=»>Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или»>
Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или этилен-оксид. Упаковки: бумага-ламинат, пергамент, крафт-бумага. Материалы: полимеры, стекло, металл. Достоинства: невысокая температура, использование любых материалов. Недостатки: токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности, продолжительный цикл стерилизации.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_16.jpg» alt=»>Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария,»>
Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_17. jpg» alt=»>Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных»>
Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующий агент – ионизирующие γ и β излучения. Упаковки: помимо бумажных используют пакеты из полиэтилена. Достоинства: надолго сохраняется стерильность в упаковке. Недостатки: дороговизна метода. Радиационный – основной метод промышленной стерилизации. Используется предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_18.jpg» alt=»>Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации»>
Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной — до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится). Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку).

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_19.jpg» alt=»>Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в»>
Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор*, 70° этиловый, 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие. Тройной раствор: карболовая кислота — 3 г, формалин — 20 г, сода — 15 г, вода — 1000 мл.

Src=»https://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_20.jpg» alt=»>Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде»>
Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода — через 6 часов. Считаю этот метод самым оптимальным для использования «в поле».

Обработка
всех инструментов включает последовательное
выполнение двух этапов: предстерилизационной
обработки и собственно стерилизации.
Способ стерилизации прежде всего зависит
от вида инструментов.

Предстерилизационная
подготовка.

Предстерилизационная
подготовка складывается из обеззараживания,
мытья и высушивания. Ей подвергают все
виды инструментов. Вид и объём
предстерилизационной обработки в
недавнем прошлом зависел от степени
инфицированности инструментов. Так,
раньше существенно отличалась обработка
инструментов после чистых операций
(перевязок), гнойных операций, операций
у больных, перенесших гепатит и относимых
к группе риска по СПИДу. Однако в
настоящее время, учитывая высокую
опасность распространения ВИЧ-инфекции,
правила предстерилизационной подготовке
ужесточены и приравнены к способам
обработки инструментов, предусматривающих
безусловную гарантию уничтожения ВИЧ.
Следует отметить, что инструменты после
гнойных операций, операций у больных,
перенесших в течение последних 5 лет
гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции
обрабатывают отдельно от других. Все
процедуры предстерилизационной обработки
обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание
(дезинфекция).

Непосредственно
после использования инструменты
погружают в ёмкость с дезинфицирующими
средствами (накопитель). При этом они
должны быть полностью погружены в
раствор. В качестве дезинфицирующих
средств используют 3% раствор хлорамина
(экспозиция 40–60 мин) или 6% раствор
перекиси водорода (экспозиция 90 мин).
После обеззараживания инструменты
промывают проточной водой.

Мытьё.

Инструменты
погружают в специальный моющий (щелочной)
раствор, в его состав входят моющее
средство (стиральный порошок), пероксид
водорода и вода. Температура раствора
50 – 60 “C,
экспозиция 20 мин. После замачивания
инструменты моют щётками в том же
растворе, а затем – в проточной воде.

Высушивание
можно
осуществить естественным путём. В
последнее время, особенно при последующей
стерилизации горячим воздухом, инструменты
сушат в сухожаровом шкафу при температуре
80 C
в течение 30 мин. После высушивания
инструменты готовы к стерилизации.

Собственно
стерилизация.

Выбор
метода стерилизации в первую очередь
зависит от вида хирургических инструментов.

Все
хирургические инструменты можно условно
разделить на три группы:

Металлические

(режущие:
скальпель, ножницы, хирургические иглы
и пр.) (нережущие: шприцы, иглы, зажимы,
пинцеты, крючки и пр.)

резиновые
и пластмассовые

(катетеры, зонды, дренажи, наконечники
для клизм и пр.)

оптические

(лапароскоп,
гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп
и пр.).

основной
метод стерилизации нережущих
металлических инструментов – стерилизация
горячим воздухом в сухожаровом шкафу
или автоклаве при стандартных режимах.
Некоторые виды простых инструментов
(пинцеты, зажимы и др.), предназначенные
для одноразового использования, можно
стерилизовать лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов.

Проведение
стерилизации режущих инструментов с
помощью термических методов приводит
к их затуплению и потере необходимых
свойств. Основной метод стерилизации
режущих инструментов – холодный
химический способ с применением растворов
антисептиков. Самыми лучшими способами
стерилизации считают газовую стерилизацию
(в озоново-воздушной камере) и лучевую
стерилизацию в заводских условиях.
Последний метод получил распространение
при использовании одноразовых лезвий
для скальпеля и хирургических игл
(атравматический шовный материал).

Тепловая стерилизация | Туттнауэр

Пламя: стерилизация в открытом пламени

Самый старый метод — это пламя, держа инструмент в открытом огне. Именно это и происходит, когда вы обжигаете кончик иглы, чтобы удалить шип. Этот метод существует с тех пор, как наши предки-охотники использовали пламя, чтобы мясо, на которое они охотились, было съедобным и вкусным. Им не требовалось никаких знаний об опасности бактерий, чтобы понять, что мясо, приготовленное на гриле, полезнее и вкуснее сырого.

Сжигание

Если вам нравится полное разрушение, этот метод для вас. При сжигании уничтожается все, а не только микроорганизмы. Сжигание применимо к материалам, используемым только один раз или когда уровень загрязнения настолько высок, что по соображениям безопасности его необходимо уничтожить. Радиоактивные материалы, конечно, не включены. Он превращает все в пепел, тем самым уменьшая объем загрузки на 90%.

Типичные области применения:

Заключительный этап обращения с медицинскими отходами
Обработка лабораторных отходов биологической опасности

Преимущества:

Полное уничтожение при необходимости предотвращает повторное использование материалов
Объем загрузки уменьшен на 90%
Устранение биологических агентов
Хорошо работает с большими партиями
Выделяемая энергия используется для производства электроэнергии

Недостатки:

Очень высокие затраты на строительство и монтаж
Требуется дорогое топливо по сравнению с потребляемой мощностью автоклава
Стоимость содержания очень высока
Дорогая инфраструктура
Для правильной работы требуется высококвалифицированный персонал
Риск загрязнения: обычное засорение фильтров приводит к неполному сгоранию и выделению ядовитых газов.
Для сжигания требуется двойная камера, первая — от 300 до 500 градусов, а вторая — от 800 до 1200. Если одна из камер не работает, что может случаться часто, процесс не завершен
Обычно ремонт сложен и требует много времени; следовательно, это может вызвать скопление грузов, что, в свою очередь, может привести к загрязнению.

Сухой жар

При сухом тепле бактерии сжигаются или окисляются. Сухой горячий воздух гораздо менее эффективен для передачи тепла, чем влажный.Вот почему микроорганизмы гораздо лучше переносят тепло в сухом состоянии. Процесс стерилизации сухим жаром занимает много времени и проводится при высокой температуре (2 часа при 160 ° C). Общее время цикла, включая нагрев и охлаждение до 80 ° C, может занять около 10-11 часов, что не самое лучшее решение для активной клиники, которая нуждается в легкодоступных инструментах. При принудительном охлаждении время может быть сокращено до пяти часов.

Приложения:

Стерилизация сухим жаром особенно применима к материалам, которые повреждены высоким давлением или влажностью и могут выдерживать высокие температуры.Сухой жар не вызывает коррозии металлических инструментов; таким образом, он хорошо подходит для стерилизации металлических инструментов, но не может использоваться для стерилизации тканей, пластмассы или резиновых изделий. Он также подходит для стеклянной посуды в лаборатории. Последняя категория — это материалы, в которые пар не может проникнуть или которые должны оставаться сухими: сюда входят фармацевтические порошки, которые должны оставаться сухими, масла и вещества, в которые пар не проникает.

Преимущества:

Подходит для стерилизации материалов и инструментов, которые нельзя автоклавировать
Обычно дешевле автоклава

Недостатки:

Для эффективности требуется очень высокая температура, 4 часа для стандартного цикла 160 градусов и 2 часа при 180 градусов
Длительность цикла очень велика, следовательно, очень малый оборот
Значительно более высокое энергопотребление и стоимость по сравнению с автоклавом, следовательно, гораздо более высокие эксплуатационные расходы.
Сухой жар может повредить некоторые инструменты
Нагревательные элементы ломаются быстрее, чем нагревательные элементы автоклава

В следующем посте мы обсудим стерилизацию паром, и мы объясним, почему это один из наиболее часто используемых методов, а также одна из областей нашей компетенции.Мы хотели бы услышать о других методах, преимуществах или недостатках, необычных или интересных приложениях, поэтому, пожалуйста, присоединяйтесь к разговору.

Как узнать, что ваши инструменты стерильны и соответствуют требованиям

Посмотрим правде в глаза, чистка и стерилизация инструментов для повторного использования может быть одной из самых утомительных и утомительных частей вашего дня. Но суть в том, что — это важная часть вашего дня. Обеспечение того, чтобы в инструментах не было потенциально инфекционных материалов и мусора, критически важно для качественного ухода, который стоматологи обязуются предоставлять.

Важность чистых стоматологических инструментов

Важнейшим первым шагом в обработке инструментов является успешная очистка, и очень важно делать все правильно. Если инструмент не очищен должным образом и на его поверхности осталась бионагрузка или посторонний материал, он может служить барьером для стерилизующего агента (обычно пара). Фактически, если инструмент не очищен должным образом, он не может быть стерильным.

Для обеспечения стерильности необходимо удалить все органические и неорганические остатки.Органический материал, такой как кровь и зубной налет, может вызвать инфекцию, связанную с оказанием медицинской помощи, если оставить его на инструменте. Неорганические материалы, такие как цемент и композиты, могут вызвать ржавление или точечную коррозию инструмента, что сделает его непригодным для использования и сократит срок его службы.

Общие сбои процесса

В наши дни большая часть очистки инструментов выполняется с помощью автоматизированных процессов, таких как ультразвуковые очистители или моечно-дезинфицирующие устройства. При использовании ультразвуковых очистителей инструменты полностью погружаются в раствор моющего средства, в то время как пузырьки (кавитация) непрерывно образуются и лопаются, удаляя загрязнения, разрушая связи, удерживающие мусор на инструментах.Стирально-дезинфекционные машины используют воду и моющее средство при высоких температурах, чтобы удалить мусор с инструментов как непосредственно под давлением, так и косвенно, замачивая в смеси воды и моющего средства.

В обоих процессах автоматической очистки задействовано несколько параметров, которые в совокупности обеспечивают эффективный процесс очистки:

Стирально-дезинфекторные машины	Ультразвуковые очистители
Время	Кавитация
Температура	Время
Концентрация моющего средства	Температура
Функция разбрызгивателя	Количество моющего средства
Замачивание ферментов / моющих средств	Количество инструментов

Все эти факторы работают вместе, чтобы эффективно очищать инструменты.Если один из этих параметров не работает или несовместим, ваш процесс очистки может оказаться под угрозой! Любое количество вещей может потенциально пойти не так с каждым параметром. Ниже приведены некоторые примеры вещей, которые могут привести к сбою или недостаточности одного из этих параметров:

Стирально-дезинфекторные машины	Ультразвуковые очистители
Недостаточное распыление воды / столкновение	Неэффективная кавитация
Забиты разбрызгиватели	Перегрузка
Перегрузка и затенение приборов	Недостаточно времени, температуры и / или моющего средства
Недостаточная / неправильная дозировка моющего средства

Контроль процесса очистки

Механизм контроля стерилизации довольно хорошо известен — химический индикатор в каждой упаковке и регулярное тестирование каждого стерилизатора с помощью биологического монитора. Они выполняются на регулярной основе в качестве проверки правильности функционирования процесса стерилизации. Но если неочищенный инструмент нельзя стерилизовать, не так ли важно контролировать процесс очистки, чтобы убедиться, что он выполняется правильно?

Конечно, вы можете взглянуть на инструменты после того, как они были очищены, чтобы увидеть, не осталось ли на них чего-нибудь, как если бы вы опорожняли посудомоечную машину дома, но не все компоненты крови всегда видны невооруженным глазом.А как насчет тех частей инструмента, которые не видны, например, петель ножниц и щипцов? Обычной практикой тестирования ультразвукового очистителя является проведение теста с фольгой. Для этого нужно поместить кусок фольги в работающий ультразвуковой очиститель и затем проверить его на наличие ровного рисунка отверстий. Проблема в том, что кавитация — это лишь один из факторов процесса ультразвуковой очистки, как отмечалось выше. Тест фольги не учитывает количество моющего средства, продолжительность очистки или емкость загрузочной корзины.

Согласно рекомендациям CDC, вы должны проверять паровой стерилизатор с помощью биологического индикатора не реже одного раза в неделю (желательно ежедневно). CDC не дает никаких рекомендаций по тестированию оборудования для вашей стирально-дезинфицирующей и ультразвуковой машины, но ANSI / AAMI рекомендует проверять моечно-дезинфекционные машины и ультразвуковые очистители ежедневно.

Решение: чистка мониторов

Если вы не всегда видите остатки мусора, а тест фольги показывает только один из параметров очистки, как вы контролируете процесс очистки, чтобы убедиться, что он эффективен? В течение ряда лет больницы выбирают мониторы, в которых используются искусственные тестовые почвы, имитирующие наличие крови и тканей, для регулярной проверки чистящего оборудования.Эти тесты обеспечивают последовательные и надежные данные о процессе очистки и значительно превосходят визуальный осмотр инструментов.

Мониторы для уборки Hu-Friedy являются примером одного из этих типов продуктов. Эти мониторы очистки предназначены для контроля эффективности процесса очистки при использовании моечно-дезинфицирующих или ультразвуковых очистителей. Система состоит из полосок мониторов для конкретного оборудования и многоразового держателя. Полоски монитора содержат тестовую грязь, которая имитирует наличие крови и тканей, которые могут быть обнаружены на поверхности инструмента после его использования.Полное удаление тестовой грязи с полоски во время цикла очистки указывает на эффективность процесса очистки. Тестовый грунт является нетоксичным синтетическим грунтом, поэтому в ваш чистящий раствор не добавляется ничего опасного. Держатель из нержавеющей стали удерживает монитор очистки на месте, чтобы обеспечить точный результат, а в случае монитора стирально-дезинфекционной машины он имитирует навесной инструмент и измеряет попадание воды и удаление загрязнений.

Купить товар

Мониторы для уборки Hu-Friedy — Магазин

Зная количество факторов, влияющих на процесс очистки, Ху-Фриди составил руководство по поиску и устранению неисправностей (на фото ниже), чтобы помочь вам понять, что может потребоваться изменить в вашем процессе для достижения лучшего результата.

Щелкните изображение, чтобы загрузить полноразмерный PDF-файл.

Чистые инструменты превращаются в стерильные инструменты, и знание того, чисты ли ваши инструменты, является важным элементом обеспечения качества. Добавление такого продукта, как мониторы для уборки Hu-Friedy в ваши ежедневные или еженедельные протоколы, дает неоценимую информацию об эффективности вашего процесса очистки, а также дает уверенность в том, что вы обеспечиваете безопасность себя и своих пациентов.

Откройте для себя лучший способ соответствовать требованиям

Поддержание программы соответствия не должно быть обузой.GreenLight Dental Compliance Center ™ от Hu-Friedy — это эксклюзивное членство, благодаря которому все ваши рекомендации и правила по профилактике инфекций удобно размещены на одном портале.

GreenLight помогает создавать индивидуальные протоколы профилактики инфекций и обработки инструментов в соответствии с рекомендациями CDC и правилами стоматологического совета вашего штата. GreenLight также экономит время на обучении и обновлении персонала, повышая эффективность ваших методов профилактики инфекций. С GreenLight вы найдете больше, чем просто удобство — вы также получите уверенность, которая исходит из того, что ваше предприятие соответствует требованиям.

Узнайте больше на сайте greenlightcompliancecenter.com.

Дополнительные ресурсы

Контент предоставлен HuFriedyGroup.

— — —

Хотите распечатать этот пост? Загрузите PDF-файл без изображений.

Ортопедические многоразовые устройства — английский

% PDF-1.5
%
135 0 объект
>>>
эндобдж
175 0 объект
> поток
False202015-06-11T20: 35: 17.605-05: 00 Библиотека Adobe PDF 11.04a02db437a22ae8c29aa4a68ecad4f9f4b2d9617310709null Библиотека Adobe PDF 11.0falseAdobe InDesign CC 2014 (Macintosh) 2015-05-26T14: 31: 13.000-05: 002015-05-26T14: 31: 13.000-05: 002015-05-26T11: 05: 01.000-05: 00application / pdf

Английский

2015-06-11T20: 36: 01.839-05: 00

Ортопедические многоразовые устройства — английский язык

null

Ортопедические многоразовые устройства — английский язык

xmp. id:595fcc6b-cd52-4b61-947d-fe26b8c5839cadobe:docid:indd:677c6f9f-2c53-11df-9035-f0c470dc9213proof:pdfuuid:4d348504-a96mpf-4340-bf79-b95cefd9.iid: bd006ae0-de0a-4fdc-a561-a705bea88f6aadobe: docid: indd: 677c6f9f-2c53-11df-9035-f0c470dc9213defaultxmp.did: bd006ae0-de0a-4fdc705did: bd006ae0-de0a-4fdc705-abea9-05-a-4fdc705-abea9-05 (2014D) CC-286-a-8a9-a-cd-8a9-a-cd-8a-8-dc06-d-a-a-8-a-8-a-cc-8-a-8-a-8-a-8-a-c-a-8 : 05: 01.000-05: 00от приложения / x-indesign к приложению / pdf /

конечный поток
эндобдж
126 0 объект
>
эндобдж
129 0 объект
>
эндобдж
130 0 объект
>
эндобдж
131 0 объект
>
эндобдж
132 0 объект
>
эндобдж
41 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0. 0 0,0 612,0 792,0] / Тип / Страница >>
эндобдж
43 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
45 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
47 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
49 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0,0 612,0 792,0] / Тип / Страница >>
эндобдж
56 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
58 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
60 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.0 0.0 612.0 792.0] / Type / Page >>
эндобдж
62 0 объект
> / ExtGState> / Font> / ProcSet [/ PDF / Text] / XObject >>> / Rotate 0 / TrimBox [0.CBAg, ZqmЉ {6YR4 ¢ pd (M1pE * ayi = CwKqA0mM0gpl) e @ UÝi
5v0% 7Fh9 (uWV ܆ (w; [e`Imc} K \ o Ef \: B
ʙ0 * (

Оценка и проверка имеющихся в продаже скороварок для лабораторной стерилизации

Abstract

Лабораторная наука требует тщательного ухода за стерильными реагентами и инструментами, а также стерилизации отходов перед утилизацией. Однако паровые автоклавы, обычно используемые для этой цели, могут быть недоступны для всех в научном сообществе, например для учителей K-12, исследователей в этой области, студентов из недостаточно финансируемых лабораторий или людей в развивающихся странах, которым не хватает финансирования и Ресурсы.В этой работе исследуется использование коммерческих электрических скороварок в качестве альтернативного метода стерилизации средств массовой информации, инструментов и отходов. Четыре общедоступных бренда скороварок были протестированы на их способность стерилизовать микробиологические среды, различные металлические инструменты и микробные культуры с высоким титром. Все четыре скороварки были способны стерилизовать эти исходные материалы, а также ряд типов микробов, включая грамположительные бактерии, грамотрицательные бактерии, нитчатые грибы, одноклеточные грибы и смешанные образцы окружающей среды.Однако только Instant Pot можно было стерилизовать автоклавные ампулы тестера со спорами Geobacillus stearothermophilus . Эти результаты показывают, что, в зависимости от характера выполняемой работы, покупные скороварки могут быть подходящей заменой коммерческих автоклавов. Их принятие может также помочь повысить доступность науки для более широкого круга исследователей.

Образец цитирования: Swenson VA, Stacy AD, Gaylor MO, Ushijima B., Philmus B, Cozy LM, et al.(2018) Оценка и проверка имеющихся в продаже скороварок для лабораторной стерилизации. PLoS ONE 13 (12):
e0208769.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769

Редактор: Цзунхуа Ван, Фуцзянский университет сельского и лесного хозяйства, КИТАЙ

Поступила: 20 августа 2018 г .; Одобрена: 21 ноября 2018 г .; Опубликован: 11 декабря 2018 г.

Авторские права: © 2018 Swenson et al.Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Все файлы последовательностей доступны в базе данных NCBI GenBank (номер доступа MH734615).

Финансирование: Эта работа была поддержана стипендией Голдуотера для VAS, исследовательским грантом факультета искусств и наук Государственного университета Дакоты для MOG, грантом AREA от Национальных институтов здравоохранения (номер гранта 1R15GM117541-01A1) для BP, грант на художественное и научное развитие Иллинойского университета Уэсли для LMC, а также средства на стартап от Университета Южного Орегона для PV. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

Лабораторные исследования, лечение, промышленное производство фармацевтических препаратов и широкий спектр других научных приложений — все это основано на процедурах стерилизации для защиты рабочих и потребителей от патогенных контаминантов.Это может проявляться как поддержание аксенических штаммов для изучения и хранения, изготовление хирургических устройств, рост больших культур для экстракции и очистки соединений, среди прочего. Даже лаборатории по исследованию космоса работают над стерилизацией оборудования, которое приземлится на других планетах, чтобы запретить внедрение земных микробов, способных к колонизации и, возможно, разрушению. Строгое определение стерилизации требует, чтобы каждый организм был инактивирован после процедуры стерилизации [1].Более реалистичное определение стерильности предусматривает, что в случае стерильности при инкубации в соответствующей питательной среде роста не будет. Это второе определение, вероятно, будет более точным при рассмотрении уровня стерильности, достигнутого в большинстве лабораторных или медицинских ситуаций, потому что может быть невозможно проверить, что все контаминанты инактивированы, но обычно возможно наблюдение за разрастанием или его отсутствием. С этой целью Всемирная организация здравоохранения, Фармакопея США, Международная организация по стандартизации, U.Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США и другие установили стандарты, которым необходимо соответствовать, чтобы считать поверхность или предмет стерильными для использования человеком.

Доступны различные методы стерилизации оборудования и поверхностей, включая газообразный оксид этилена, такие соединения, как фенол, глутаральдегид, надуксусную кислоту и перекись водорода, сухой жар, УФ-облучение и стерилизацию паром [2]. Стерилизация паром обычно проводится в автоклаве, который достигает и поддерживает температуру 121 ° C и 15 фунтов на квадратный дюйм в течение желаемой продолжительности, часто не менее 30 минут.В других случаях, однако, более длительное время стерилизации при температуре ниже 115 ° C считается подходящим для инактивации загрязняющих веществ. Автоклавы в качестве стерилизационных устройств широко используются в лабораториях и медицинских учреждениях из-за короткого времени, необходимого для стерилизации, простоты обучения и использования оборудования, отсутствия вредных химикатов и постоянной воспроизводимости как средства борьбы с патогенами [ 3]. Чтобы убедиться, что автоклав постоянно достигает желаемой температуры и давления для стерилизации, регулярно проводятся биологические тесты, чтобы продемонстрировать, что наиболее термостойкие организмы инактивированы, что означает, что все другие более чувствительные загрязнители будут стерилизованы аналогичным образом [4].В одном из наиболее распространенных тестов суспензия особо термостойких эндоспор Geobacillus stearothermophilus (первоначально депонированная как Bacillus stearothermophilus Donk) автоклавируется, и рост оценивается либо по росту на пластинке, либо по появлению помутнения и цвета. смена индикаторного красителя [5, 6]. Отсутствие прорастания и роста эндоспор указывает на то, что автоклав работает правильно.

Неспособность получить стерильные материалы, особенно те, которые предполагается использовать повторно (например, хирургические инструменты, такие инструменты, как бронхоскопы, аутотрансплантаты в медицине и посуда для культивирования в лабораториях), может быть результатом многих причин, ориентированных на пользователя и оборудование.Серьезный пример ошибки пользователя при стерилизации был описан Dancer et al; Вспышка инфекций в области хирургического вмешательства у ортопедических пациентов и эндофтальмита у офтальмологических пациентов произошла последовательно, несмотря на относительно небольшое совпадение специальных хирургических инструментов, используемых в этих двух отделениях [7]. Гораздо более частые причины сбоев стерилизации оборудования связаны с дефектами самого устройства, о чем свидетельствуют отчеты о первичной прививке туберкулеза после использования зараженных игл для акупунктуры, вспышке Pseudomonas aeruginosa после стерилизации паром, неадекватно удалявшем остаточный материал с артроскопических инструментов, Вспышка Mycobacterium chelonae после того, как лапароскопические инструменты были подвергнуты химической дезинфекции, но затем промыты в лотках, содержащих M . chelonae биопленка и аналогичная вспышка M . chelonae в частной клинике пластической хирургии после липосакции трубки была колонизирована биопленкой [8–11]. Хотя эти опубликованные отчеты подчеркивают неудачи стерилизации в медицине, не менее распространены и случаи, которые происходят в лаборатории, однако они редко публикуются, поскольку последствия относительно незначительны. Эти случаи заражения, приводящие к патологии, иллюстрируют необходимость стерилизации и проверки средств ее достижения.

В то время как паровая стерилизация является обычным средством обеззараживания инструментов и поверхностей, автоклавы могут быть чрезмерно дорогими для исследовательских и учебных заведений, у которых недостаточно средств. Кроме того, громоздкие размеры и вес как напольных, так и настольных автоклавов затрудняют их транспортировку к полевым участкам. Чтобы предоставить возможную альтернативу стерилизации большим дорогостоящим автоклавам, мы оценили жизнеспособность использования электрических автономных скороварок для стерилизации лабораторных инструментов и сред и инактивации высоких титров различных микробов.Из четырех протестированных 8-литровых скороварок все были способны нейтрализовать загрязняющие вещества в средах, расходных материалах, а также грибковые и бактериальные культуры в течение максимум 60 минут работы. В этой работе время работы — это время, проведенное при рабочей температуре и давлении скороварки, что может привести к стерилизации. Только скороварка марки Instant Pot смогла деактивировать G . stearothermophilus , что указывает на то, что это будет наиболее подходящий выбор для лабораторной скороварки.Эти результаты показывают, что скороварки могут стерилизовать лабораторные компоненты в достаточной степени для использования в относительно короткие сроки, что может сделать стерилизацию доступной для многих других групп по всему миру.

Материалы и методы

Условия роста бактерий

Все штаммы бактерий и грибов, использованные в этом исследовании, перечислены в таблице 1. Лизогенический бульон-Миллера (LB), триптиказо-соевый бульон (TSB), питательный бульон (NB) для роста бактерий и бульон Садуро с декстрозой (SDB) для роста грибков. были приобретены у Becton Dickenson и приготовлены в соответствии с инструкциями производителя.Среду дрожжевой экстракт-пептон-декстроза (YPD) для роста грибов готовили, как описано ранее [12]. Все среды затвердевали добавлением 1,5% (мас. / Об.) Агара, и штаммы выращивали в соответствующей среде при температуре и в течение времени, указанных в таблице 1. Штаммы хранили при -80 ° C в 20% глицериновой смеси. , которые наносили штрихами на чашку для визуальной оценки чистоты перед посевом для роста в больших культурах. Жидкие культуры аэрировали при встряхивании со скоростью 150 об / мин. Все среды и стеклянную посуду перед использованием стерилизовали в автоклаве, а манипуляции проводили в вытяжном шкафу с ламинарным потоком для сохранения стерильности.

Таблица 1. Все штаммы, использованные в этом исследовании, их условия роста и характеристики, а также время, необходимое для их стерилизации во всех испытанных скороварках.

КОЕ / мл, представленные для каждого штамма, определяли после 24–72 часов времени роста, отведенного для каждого штамма.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769.t001

Стерилизация скороварок

Скороварки на 8 литров, использованные в этом исследовании, работали в соответствии с инструкциями производителя (Таблица 2). Для стерилизации использовался ручной режим медленного приготовления при высокой температуре и давлении, и 0,5 л деионизированной воды добавлялись к каждому циклу для генерации пара. Скороварки вентилировались в течение пяти минут после завершения каждого цикла, чтобы быстро сбросить давление в инструменте, а не позволять ему медленно выдыхаться и поддерживать длительную температуру субстерилизации. При максимальной емкости можно стерилизовать 1,5 л жидкости во время каждого цикла в следующей конфигурации: стакан на 1,5 л наполнен на 1 л и два 0.Стаканы объемом 5 л, наполненные до 0,25 л каждый, все мензурки покрыты алюминиевой фольгой. Такое расположение облегчает стерилизацию максимального количества жидкости за цикл, предотвращая при этом переполнение стаканов. Для каждого условия испытания стерилизации проводили в трех экземплярах в каждой скороварке.

Для стерилизации среды для культивирования готовили 1,5 л жидкой среды, которую порциями распределяли по трем химическим стаканам, и добавляли соответствующее количество агара и мешалку для получения твердой среды.Жидкой среде давали остыть на столе, в то время как твердую среду охлаждали на пластине для перемешивания перед переливанием в чашки Петри в вытяжном шкафу с ламинарным потоком. Партию среды положительного контроля стерилизовали в автоклаве, а партию отрицательного контроля готовили, но не стерилизовали. После обработки все среды инкубировали при 30 ° C в течение одной недели и рост микробов оценивали визуально, так что оптически прозрачные, немутные жидкие среды и планшеты с отсутствующими колониями считались результатом надлежащей стерилизации.

Для инактивации микробов выращивали жидкие культуры каждого штамма в таблице 1 таким образом, чтобы 1,5 л жидкости можно было стерилизовать в каждой скороварке в трех экземплярах. После роста в течение необходимого времени и температуры для достижения плотной культуры была проведена 10-кратная серия серийных разведений из 10 ⁰ −10 ⁻⁹ в трех экземплярах и высеяна на ту же среду, что и жидкая культура, для определения КОЕ. / мл. После каждого испытания аликвоты по 1 мл из каждой культуры помещали в ту же среду, что и жидкую культуру, в трех экземплярах, инкубировали при температуре культивирования в течение одной недели (таблица 1), и стерилизацию определяли визуально по отсутствию обнаруживаемых колоний.Чтобы инактивировать не охарактеризованную гетерогенную смесь микробов, почву собирали в кампусе государственного университета Дакоты (широта, долгота: 44.01288, -97.1115) и ресуспендировали при концентрации 20 мг / л в стерильной воде MilliQ. После 20 минут перемешивания для создания суспензии смеси давали возможность отстояться в течение 30 минут, и жидкость декантировали в стерильный химический стакан для продолжения использования (далее именуемого почвенной водой), в то время как частицы оставались. КОЕ / мл определяли путем подготовки серии разведений, идентичной той, что была создана выше, и посева на питательный агар (NA) и агар с декстрозой Сабуро (SDA) для учета присутствия бактерий и грибов в смеси.Жидкость после стерилизации также была помещена на чашки и выращена при 30 ° C, как указано выше, как на NA, так и на SDA. Положительный контроль, почвенная вода, стерилизованная в автоклаве, и отрицательный контроль, нестерилизованная почвенная вода, были подготовлены для прямого сравнения с экспериментами по стерилизации, проведенными в скороварках.

В качестве оборудования для стерилизации были выбраны 15-сантиметровый зонд и искатель Молла, 15-сантиметровый шпатель для раскопки реагентов и ножницы для рассечения, все из стали. Каждый металлический инструмент был погружен в почвенную воду, чтобы покрыть его микробами, а затем подготовлен двумя способами: 1) завернут как минимум в два слоя алюминиевой фольги и поставлен вертикально в химический стакан для стерилизации, и 2) помещен в стерильный 25 мм x 150 мм культуральные пробирки и стояли вертикально в штативе для культуральных пробирок для стерилизации.По завершении цикла зонд Молла, а также стерилизованные в фольге шпатели для поиска и реагента помещали в стерильные культуральные пробирки размером 25 мм x 150 мм, а ножницы помещали в стерильные стаканы емкостью 0,3 л. Инструменты погружали в 30 мл или 120 мл NB или SDB в культуральные пробирки или стаканы емкостью 0,3 л, соответственно, в трех экземплярах для каждого типа сред. Погруженные металлические инструменты инкубировали при 30 ° C в течение недели, и стерилизацию определяли визуально по присутствию оптически прозрачной немутной жидкой среды; загрязненные инструменты привели к мутному росту микробов как в NB, так и в SDB.Эти металлические инструменты также стерилизовали в автоклаве, и инструменты для отрицательного контроля готовили, а не стерилизовали.

Ампулы со спорами, содержащие 1 мл 10 ⁶ спор Geobacillus stearothermophilus (CA # SA1-15-06) и 1 мл ампулы отрицательного контроля (CA # SA1-NC-10), использовали в соответствии с инструкциями производителя (Crosstex) . Одна ампула со спорами была привязана веревкой к металлической шайбе, чтобы утяжелить ее на дно 1 л деионизированной воды в 1.Стакан на 5 л и два стакана на 0,5 л, в каждом из которых содержится 0,25 л деионизированной воды, в каждой скороварке. После стерилизации воду сливали и ампулы инкубировали в вертикальном положении при 60 ° C в течение 48 часов. На стерилизацию указывает появление пурпурной не мутной жидкости внутри ампулы, в то время как нестерилизованные ампулы становятся желтыми и мутными по мере роста в течение 24 часов инкубации при 60 ° C. Ампулы со спорами также стерилизовали в автоклаве, ампулы со спорами отрицательного контроля не стерилизовали и инкубировали, чтобы продемонстрировать результат G . stearothermophilus рост, и для сравнения была включена ампула отрицательного контроля без спор.

Выделение и идентификация изолята грибка

После нескольких недель роста на чашке с сахарозой BG-11 + 5% (мас. / Об.), Содержащей Anabaena sp. штамм PCC 7120, наблюдалась колония грибов, которая подавляла рост цианобактерий [14]. Этот грибок наносили штрихами на чашки с сахарозой BG-11 + 5% (мас. / Об.) Для выделения несколько раз до тех пор, пока не наблюдали однородную морфологию. Геномную ДНК грибов экстрагировали фенол-хлороформной экстракцией, как описано ранее [15], и внутренние транскрибируемые пространства (ITS) 1 и 2 и 5.8S рРНК в рибосомном опероне были амплифицированы из этой геномной ДНК с помощью ПЦР с праймерами ITS1 и ITS4 [16]. Полученный фрагмент длиной 572 п.н. секвенировали с помощью секвенирования по Сэнгеру в Центре исследования генома и биокомпьютинга при Университете штата Орегон и депонировали в GenBank под номером доступа MH734615. На основании сходства с изолятами Penicillium citrinum , как определено с помощью поиска BLAST [17], 28 других последовательностей были выровнены с использованием Muscle [18].Филогенетический анализ был выполнен с использованием метода максимального правдоподобия и обобщенного алгоритма обратимости во времени (GTR) с 1000 повторениями начальной загрузки в MEGA7 [19, 20]. Выравнивание последовательностей для презентации проводилось с использованием Clustal Omega (1.2.4) с параметрами по умолчанию [21].

Результаты

Скороварки для стерилизации питательных сред

В последние годы растет популярность использования программируемых скороварок для планирования и ускорения приготовления пищи в домашних условиях.Вероятно, это связано с универсальностью скороварки как многогранного кухонного прибора, интегрированной конструкцией, которая сочетает в себе нагревательный элемент с внутренними элементами управления для точного поддержания различных температур и времени приготовления, а также их недорогой ценой около 100 долларов США. Рост популярности сопровождался появлением множества кулинарных книг, блогов и многих брендов, производящих скороварки. Одной из отличительных черт скороварок является то, что они очень быстро готовят пищу при высокой температуре и давлении, выделяя при этом пар.Способность денатурировать белки больших и толстых кусков мяса за короткое время напоминает автоклав, который стерилизует предметы при температуре около 121 ° C и давлении 15 фунтов на квадратный дюйм, используя пар, генерируемый внутри машины или подаваемый из бойлера. Многие исследовательские группы, включая нашу, использовали скороварки для приготовления стерильных сред в полевых условиях, но эти устройства были спроектированы таким образом, что герметичный отсек располагался на отдельном нагревательном элементе. Несмотря на надежность, они были старыми, иногда ломались и требовали двух единиц оборудования вместо одного, когда пространство было в дефиците.Предыдущая работа показала, что скороварки на плите могут стерилизовать основные медицинские принадлежности, но диапазон их полезности не исследовался [22, 23]. С ростом использования этих переработанных скороварок в государственном секторе, низкой ценой и доступностью, мы стремились определить, могут ли современные скороварки должным образом стерилизовать предметы, общие для микробиологии и других биологических наук.

Поиск в Интернете показывает, что торговая марка Instant Pot производит самые популярные и разрекламированные скороварки.Чтобы выбрать бренды скороварок, используемых в этом исследовании, была проведена оценка обзоров Amazon.com, чтобы найти три самых популярных бренда, производящих скороварки, похожие на Instant Pot, на основе их неизменно положительных отзывов пользователей о надежности и долговечности. В конечном итоге для исследования были выбраны скороварки Instant Pot, GoWISE, COSORI и Gourmia (таблица 2). 8-квартовые модели каждой марки были закуплены, потому что этот размер был общим для всех марок, достаточно большим, чтобы вместить не менее 1 л жидкости в лабораторной посуде, и стоил около 100 долларов, что сделало бы их общедоступными для многих людей.После приобретения всех четырех моделей было определено, что максимум 1,5 л жидкости (разделенных между одним стаканом на 1,5 л, содержащим 1 л жидкости, и двумя стаканами 0,5 л, содержащими 0,25 л жидкости каждый) может удобно поместиться в металлическую вставку внутри скороварки без пузырей и потери части содержимого во время стерилизации. Чтобы определить, могут ли скороварки стерилизовать питательные среды для микробов, было определено минимальное время, необходимое для надежной стерилизации 1,5 л питательного бульона (NB) (таблица 3). Питательный бульон массово готовили на лабораторном столе, разливали по трем химическим стаканам, чтобы в каждом скороварке было в общей сложности 1,5 л, и стерилизовали с пятиминутными интервалами от 5 до 30 минут, используя ручную настройку на максимальном уровне. Было обнаружено, что 15 минут — это минимальное время, необходимое для постоянной стерилизации 1,5 л NB во всех скороварках, о чем свидетельствует отсутствие роста микробов при инкубации при 30 ° C в течение одной недели (Таблица 3). Точно так же, когда в среду добавляли агар для разливки планшетов, минимальное время, необходимое для постоянной стерилизации 1, составляло 15 минут.5 л тарелок NA. Меньшее время нахождения в скороварках или отсутствие стерилизации приводило к мутному росту NB и колоний на чашках NA в течение 1-3 дней инкубации при 30 ° C. Эти результаты показывают, что скороварки обеспечивают достаточное количество тепла и давления для надежной стерилизации 1,5 л микробиологической питательной среды для лабораторного использования.

Этот начальный тест является простым условием, потому что питательная среда обычно однородна и вряд ли будет содержать большое количество микроорганизмов до стерилизации, хотя этого достаточно, чтобы определить, произошла ли стерилизация.Чтобы оценить способность скороварок стерилизовать гетерогенные образцы окружающей среды, была подготовлена почвенная вода и определено время, необходимое для инактивации микробов. В этом эксперименте почвенная вода была создана путем ресуспендирования 20 г / л почвы в воде MilliQ и ее осаждения для удаления крупных частиц, которые создавали суспензию как мелких частиц почвы, так и микробов, присутствующих в почве. Почвенную воду стерилизовали с 15-минутными интервалами от 15 до 60 минут в каждой из скороварок в трех экземплярах, как описано выше.Стерилизация в течение 45 минут была необходима для инактивации микробов в почвенной воде, которая включала 3 x 10 ⁴ КОЕ / мл на NA и 3,7 x 10 ³ КОЕ / мл на SDA, так что роста не наблюдалось ни на NA. или чашки с SDA после одной недели роста. Это указывает на то, что скороварки способны стерилизовать жидкие образцы окружающей среды, содержащие твердые частицы и содержащие неизвестное микробное сообщество. Мы пришли к выводу, что скороварки обычно хорошо подходят для инактивации микробов в жидкостях, используемых в лаборатории, и их стерилизации для использования и изучения.

Скороварки для стерилизации лабораторных предметов

Многочисленные рецепты приготовления супов и рагу в скороварках, доступные в Интернете, показывают, что они хорошо подходят для стерилизации жидкости. В то время как стерильная жидкость является неотъемлемой частью большинства лабораторий, стерильные металлические предметы часто одинаково важны для продолжения исследований. Чтобы определить, можно ли стерилизовать металлические лабораторные инструменты в скороварках, три обычных предмета погружали в почвенную воду, чтобы убедиться, что они несут микробы, и определяли время, необходимое для стерилизации инструментов.Инструменты были выбраны из-за их повсеместного распространения и различий по форме: 15-сантиметровый зонд и искатели Молла (далее зонды), 15-сантиметровые шпатели для реагентов (далее шпатели) и ножницы для рассечения. Зонды сделаны из толстого металла, шпатели тонкие, а ножницы состоят из двух частей, между которыми должен проникать пар для стерилизации. Отдельные испытания были проведены с предметами, завернутыми в алюминиевую фольгу и развернутыми либо в стеклянные пробирки для культивирования, либо в химические стаканы, и все они были стерилизованы с 15-минутными интервалами из 15-60 минут в каждой из скороварок в трех экземплярах.После стерилизации инструменты были погружены в NB или SDA на одну неделю, чтобы продемонстрировать, что все микробы, способные расти в этих средах, были инактивированы. Стерилизация в течение 15 минут была необходима для инактивации микробов на шпателе и зонде, но 30 минут в скороварке потребовалось для стерилизации ножниц (таблица 3). Поскольку почвенная вода, оставшаяся на предметах, соприкасалась с культуральными пробирками, и с ними время от времени манипулировали за пределами вытяжного шкафа, мы пришли к выводу, что культуральные пробирки также были стерилизованы в этих испытаниях, поскольку после инкубации с питательной средой роста не наблюдалось.Предметы, которые стерилизовали в течение меньшего времени или не проходили через скороварки, показали рост в обоих типах сред в течение трех дней инкубации. Это указывает на то, что скороварки можно использовать для стерилизации металлических инструментов и стеклянной посуды для лабораторных манипуляций.

Инактивация высоких титров бактерий и грибков в скороварках

Хотя в ходе экспериментов были стерилизованы самые большие объемы, которые поместятся в тестируемых скороварках, ни одна из манипуляций не использовала высокую концентрацию микроорганизмов.Обычно в лаборатории культивируют 10 ⁷ КОЕ / мл патогенных микробов или имеют такую концентрацию патогенов в образцах болезней из окружающей среды, а затем их необходимо утилизировать таким образом, чтобы не нанести вред исследователю или исследователю. население. Чтобы определить, могут ли скороварки инактивировать высокие титры микробов, различные бактерии и грибы культивировали в жидких средах и определяли время, необходимое для их инактивации. Были отобраны микроорганизмы с различной физиологией, включая грамположительные и отрицательные, палочковидные, кокковые и вибриональные бактерии, а также нитчатые и одноклеточные грибы, которые включают несколько патогенов, имеющих медицинское значение.В то время как большинство протестированных штаммов представляли собой лабораторные акклиматизированные штаммы, протестированный нитчатый гриб представлял собой лабораторный изолят, который сгруппировал Penicillium citrinum посредством филогенетического анализа последовательностей локуса 18S рРНК и назвал штамм castor (рис. Включение лабораторного изолята в анализ обеспечило реалистичное состояние, с которым могли столкнуться исследователи; уничтожение культуры, полученной из изолята окружающей среды. Были приготовлены большие культуры желаемого микроба, и количество КОЕ / мл было определено сериями разведений (таблица 1).Культуры запускали с 15-минутными интервалами в аликвотах объемом 1,5 л от 15 до 75 минут в каждой из скороварок в трех экземплярах, как описано выше. Инактивацию культуры определяли путем посева 1 мл стерилизованной культуры на соответствующую питательную среду в трех экземплярах и визуальной оценки образования колоний (S2, фиг.). Для подавления роста тестируемых бактериальных штаммов требовалось время стерилизации не менее 15 минут, а для подавления роста грибков — 60 минут. Эти результаты показывают, что протестированные скороварки способны инактивировать до 10 ¹⁰ КОЕ / мл бактерий и примерно 10 ⁷ КОЕ / мл грибков.

Рис. 1. Дендрограмма, отображающая филогенетические отношения между штаммом Penicillium citrinum castor и другими штаммами Penicillium .

Родство было установлено с использованием метода максимального правдоподобия, и было выполнено 1000 повторений начальной загрузки. Рядом с каждой веткой отображается процент деревьев с соответствующими таксонами. Шкала представляет 0,01 замен на сайт. Aspergillus terreus штамм QTYC38 был выбран в качестве внешней группы.Штамм, идентифицированный в этом исследовании, выделен жирным шрифтом, а инвентарные номера GenBank указаны в скобках рядом с названиями штаммов.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769.g001

Скороварка Instant Pot прошла тест на стерилизацию спор

Регулярное обслуживание и испытания необходимы для подтверждения работоспособности автоклавов и других устройств паровой стерилизации, используемых в промышленности, медицине и науке. Из множества доступных продуктов для проверки стерилизации один распространенный метод включает инактивацию спор Geobacillus stearothermophilus , которые, как давно известно, обладают особой термостойкостью [6].Эти тесты обычно предусматривают, что ампулу со спорами помещают в наиболее трудное для доступа пара место, запускают стандартный цикл, а затем либо инкубируют ампулу и записывают любые изменения цвета или мутности, либо разложите содержимое на тарелке и оцените образование колонии. Если ампула остается неизменной и прозрачной или на планшете не развиваются колонии, это означает, что споры инактивированы и стерилизационное устройство работает нормально. Рекомендации по работе стерилизатора в отношении времени, температуры и давления, необходимых для деактивации G . stearothermophilus были определены FDA, USP и ISO 11138–3. Если стерилизационное устройство способно пройти тест на споры, это означает, что все другие менее термостойкие организмы могут быть инактивированы и что устройство стерилизует содержимое до уровня, приемлемого для лабораторного использования. Чтобы убедиться, что имеющиеся в продаже скороварки способны стерилизовать лабораторные предметы на том же уровне, что и автоклав, дезактивация ампул, содержащих 10 ⁶ G . stearothermophilus спор оценивали. В этих скороварках наиболее трудным местом для стерилизации является, по-видимому, дно 1 л жидкости в стакане емкостью 1,5 л. В каждую скороварку загружали все три мензурки, содержащие 1,5 л воды, и ампулу со спорами утяжеляли до дна посредством прикрепления к металлической шайбе. Ампулы со спорами запускали с 30-минутными интервалами от 30 до 300 минут в каждой из скороварок в трех экземплярах, как описано выше, и оставляли для инкубации при 60 ° C в течение 48 часов.Положительные тесты на споры оставались фиолетовыми и прозрачными, что указывало на то, что споры были инактивированы, в то время как отрицательные тесты становились желтыми и показывали мутный рост. Время стерилизации не менее 150 минут требовалось для Instant Pot, чтобы инактивировать споры (рис. 2), которые по цвету и непрозрачности были похожи на ампулу со спорами, стерилизованную в автоклаве, и на отрицательный контроль. Ни один из других скороварок не инактивировал споры даже при времени стерилизации до 300 минут, что давало нестерилизованные ампулы со спорами, визуально идентичные положительному контролю.Эти данные показали, что скороварка Instant Pot может стерилизовать споры до уровня автоклава, и мы делаем вывод, что она способна инактивировать все другие менее термостойкие организмы, чтобы должным образом стерилизовать лабораторные предметы для исследований.

Рис. 2. В скороварке Instant Pot удалось инактивировать биологические тесты в ампулах со спорами Geobacillus stearothermophilus .

Ампулы со спорами обрабатывали в течение 60 минут в автоклаве (C) и 150 минут в скороварках COSORI (D), GoWise (E), Gourmia (F) или Instant Pot.Включены ампула отрицательного контроля (A) и ампула положительного контроля, которая не была стерилизована (B). Все ампулы инкубировали при 60 ° C в течение 48 часов и визуально оценивали изменение цвета с пурпурного на желтый и повышение мутности. Надпись на ампулах представлена в таблице S1.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769.g002

Обсуждение

Одним из отличительных признаков научных усилий является получение воспроизводимых данных, которые со временем выдерживают тщательную проверку.Чтобы манипулировать аксеническими культурами и постоянно поддерживать их чистоту, необходимо удалить или инактивировать все другие микробы, способные заразить желаемый исследуемый организм. Без стерильных расходных материалов в подготовленном рабочем пространстве нежелательные организмы могут быть введены в эксперименты, что изменит результаты и сделает исследование недействительным или поставит под угрозу пациента. Хотя мы можем принять это как должное в большей части США, такие стерилизованные предметы или поверхности недоступны для многих в развивающихся странах, в полевых условиях и после стихийных бедствий, разрушающих инфраструктуру.Немедленно необходимы альтернативные методы стерильной обработки предметов для демократизации науки и медицины, которые могут позволить тем, кто испытывает финансовые затруднения, улучшить доступ к методам стерилизации. В этой работе мы оценили жизнеспособность четырех марок скороварок емкостью 8 литров для стерилизации биологических расходных материалов и инструментов. Все четыре бренда инактивировали микробы, загрязняющие микробиологические питательные среды и металлические предметы, в течение 15 и 30 минут соответственно.Испытанные скороварки также инактивировали высокие титры бактерий и грибков, некоторые из которых являются медицински значимыми штаммами, в течение 15 и 60 минут соответственно. В отличие от других протестированных брендов, Instant Pot был способен деактивировать 10 ⁶ G . stearothermophilus spores, что указывает на то, что он может стерилизовать предметы до уровня, который обычно считается приемлемым для лабораторных автоклавов. Эти данные демонстрируют, что протестированные скороварки являются жизнеспособной альтернативой лабораторной стерилизации паром предметов, когда автоклав недоступен.

В этой работе было необходимо всего 15 минут в скороварках, чтобы инактивировать микробы в питательной среде, так что рост не наблюдался. Для инактивации культур грибов с высоким титром требовалось 60 минут, что было самым продолжительным временем анализа для тестированных живых организмов. В этих экспериментах отсутствие роста после продолжительной инкубации использовалось как индикатор микробной инактивации. Напротив, для последовательной деактивации G требовалось 150 минут работы. stearothermophilus , хотя половина тестированных ампул со спорами была инактивирована через 120 минут в Instant Pot. Повышенная устойчивость спор к теплу и давлению хорошо известна, поэтому разница во времени инактивации между вегетативными клетками и спорами не является неожиданной. Ни одно из условий, включающих неизвестные микробные компоненты (почвенная вода и среда), не требовало более 45 минут для инактивации. Это указывает на то, что в этих препаратах было потенциально меньше спор, присутствующие споры были более легко инактивированы, чем G . stearothermophilus , или споры, способные выдержать варку под давлением, присутствовали, но не могли прорасти в предоставленной среде. Независимо от причины, после проведения испытаний в течение указанной продолжительности колоний не обнаружено, что достаточно для того, чтобы считать микробы инактивированными и препарат можно использовать для лабораторных манипуляций. Действительно, это тот же стандарт, которому соответствуют автоклавы; устойчивые споры могут присутствовать в / на предметах, помещенных в автоклав, но они не могут прорасти, поэтому предметы считаются стерильными.

Все четыре испытанных скороварки смогли инактивировать микробы, присутствующие во всех испытаниях, за исключением инактивации G . stearothermophilus , в которых только Instant Pot мог производить пар, давление и тепло до уровня, необходимого для достижения условий стерилизации. При первоначальной покупке в преддверии праздников все скороварки продавались в розницу примерно по одинаковой цене, однако недавняя проверка цен показала, что Instant Pot — гораздо более дорогая модель (Таблица 2).Возможно, что Instant Pot изготовлен из материалов более высокого качества, которые позволяют ему достигать и поддерживать более высокое внутреннее рабочее давление и температуру и делают его более дорогим, чем другие модели. Механизмы блокировки и уплотнительные кольца, удерживающие крышки на месте, в разных моделях имеют разную конструкцию, и это может способствовать поддержанию более высокого давления. Мы также заметили, что для создания давления в Instant Pot требуется больше времени, чем в других моделях, что может указывать на то, что во время этого длительного повышения давления образуется больше пара.Также возможно, что нагревательные элементы в скороварках различаются, и это может объяснить различия в способности инактивировать высокостойкие споры, как в автоклаве.

Систематическая характеристика и валидация обычных скороварок как приемлемых устройств для лабораторной стерилизации дает стимул для их использования в ряде ситуаций. Использование скороварок цельной конструкции в качестве устройств для стерилизации может быть полезным для исследователей, проводящих полевые исследования, поскольку эти инструменты небольшие, довольно легкие и могут быть легко доставлены, когда размер и вес загрузки являются проблемой.В нашей предыдущей работе для приготовления стерильной питательной среды при проведении исследований на атолле Пальмира на островах Тихоокеанского побережья использовалась скороварка, что облегчило выделение и тестирование бактериального патогена кораллов [24]. Другие группы могут использовать их в научных круизах, в удаленных местах и когда все предметы должны быть упакованы в места. Поскольку протестированные скороварки стоят менее 100 долларов при покупке в непраздничные периоды, они также могут быть полезны для занятий в классе и демонстраций в средних и старших классах школ.Бюджетные ограничения в системе государственных школ Соединенных Штатов, как правило, не позволяют покупать большие дорогостоящие инструменты, но включение небольших недорогих инструментов в классы может предоставить дополнительные, ранее недоступные практические возможности для обучения и взаимодействия учащихся. Кроме того, эти скороварки могут расширить исследовательские возможности в недостаточно финансируемых лабораториях в развивающихся странах, где крупное оборудование, такое как автоклавы, является непомерно дорогим.Эта работа демонстрирует, что скороварки могут стерилизовать обычные лабораторные предметы и могут использоваться для улучшения исследовательских и учебных возможностей во многих ситуациях.

Вспомогательная информация

S1 Рис. Выравнивание последовательностей ITS.

Выравнивание последовательностей ITS из 30 штаммов, использованных для создания дендрограммы на рис. 1. Штамм, идентифицированный в этом исследовании, выделен жирным шрифтом, а консервативные основания обозначены звездочкой под выравниванием. Род, обозначенный A. — это Aspergillus , а P.- это Penicillium .

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769.s001

(PDF)

S2 Рис. Инактивация культур в скороварках.

Репрезентативная культура до (левые панели) и после (правые панели) стерилизации в скороварке. Bacillus subtilis выращивали в питательном бульоне в течение ночи с аэрацией, и культура была заметно мутной (верхняя левая панель) и давала лужайку роста при распределении на чашке с питательным агаром (нижняя левая панель).После стерилизации в скороварке бульон имел карамельный цвет с повышенным осаждением на дне стакана и почти прозрачным слоем вверху (верхняя правая панель). Полная оптическая прозрачность не была достигнута после стерилизации в скороварке или автоклаве, вероятно, потому, что цитоплазматическое содержимое лизированных клеток увеличивало непрозрачность бульона. Роста не было видно, когда стерилизованную в скороварке культуру разливали на чашку с питательным агаром (нижняя правая панель).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208769.s002

(PDF)

Благодарности

Авторы выражают благодарность Стивену Биру (Корнельский университет) за любезный подарок штамму Pantoea agglomerans Eh 355, Скотту Маккею и Дейлу Дроге за содержательные обсуждения (DSU) и Нэнси Пресун за административную помощь (DSU).

Ссылки

1.
фон Вёдтке Т., Крамер А. Пределы гарантии стерильности.GMS Krankenhhyg Interdiszip. 2008; 3 (3): Doc19.
2.
Ответ WHODoEaPAa. Руководство по биобезопасности лаборатории. 3-е изд. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2004.
3.
Рутала WA, Вебер DJ. Дезинфекция и стерилизация в медицинских учреждениях: что нужно знать клиницистам. Clin Infect Dis. 2004. 39 (5): 702–9. pmid: 15356786
4.
Эллисон Д.Г. Обзор: устранение стерильности из-за бесплодия. J Appl Microbiol. 1999. 87 (6): 789–93. pmid: 10664904
5.Huesca-Espitia LC, Suvira M, Rosenbeck K, Korza G, Setlow B, Li W и др. Влияние обработки паром в автоклаве на споры Geobacillus stearothermophilus . J Appl Microbiol. 2016; 121 (5): 1300–11. pmid: 27538778
6.
Donk PJ. Очень устойчивый термофильный организм. J Bacteriol. 1920; 5 (4): 373–4. pmid: 16558885
7.
Танцовщица С.Дж., Стюарт М., Куломб С., Грегори А., Вирди М. Инфекции в области хирургического вмешательства, связанные с зараженными хирургическими инструментами.J Hosp Infect. 2012. 81 (4): 231–8. pmid: 22704634
8.
Кампп Дж.Т., Мой Р.Л. Mycobacterium chelonae Инфекция после абдоминальной липосакции. AJCS. 2010. 27 (1): 26–9.
9.
Тош П.К., Дисбот М., Даффи Дж. М., Бум М.Л., Хеселтин Г., Сринивасан А. и др. Вспышка Pseudomonas aeruginosa инфекций в области хирургического вмешательства после артроскопических процедур: Техас, 2009 г. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 2011. 32 (12): 1179–86. pmid: 22080656
10.Виджаярагхаван Р., Чандрашекхар Р., Суджата Ю., Белагави К.С. Госпитальная вспышка атипичной микобактериальной инфекции портовых участков после лапароскопической операции. J Hosp Infect. 2006. 64 (4): 344–7. pmid: 17046106
11.
Wang J, Zhu MY, Li C, Zhang HB, Zuo GB, Wang MH и др. Вспышка первичной прививки туберкулеза в клинике акупунктуры на юго-востоке Китая. Epidemiol Infect. 2015; 143 (5): 943–8. pmid: 25148461
12.
YPD media. Протоколы Колд-Спринг-Харбор.2010; 2010 (9): pdb.rec12315.
13.
Джин М., Фишбах М.А., Кларди Дж. Кластер биосинтетических генов для ингибитора ацетил-КоА-карбоксилазы андримида. J Am Chem Soc. 2006. 128 (33): 10660–1. pmid: 16910643
14.
Риппка Р., Деруэльс Дж., Уотербери Дж. Б., Хердман М., Станье Р. Ю.. Родовые назначения, истории штаммов и свойства чистых культур цианобактерий. J Gen Microbiol. 1979; 111: 1–61.
15.
Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. Молекулярное клонирование: лабораторное руководство.2-е изд. Колд-Спринг-Харбор, штат Нью-Йорк: Лабораторная пресса Колд-Спринг-Харбор; 1989.
16.
Белый TJ, Брунс T, Ли S, Тейлор JW. Амплификация и прямое секвенирование генов рибосомных РНК грибов для филогенетики. В: Иннис М.А., Гельфанд Д.Х., Снинский Дж. Дж., Уайт Т. Дж., Редакторы. Протоколы ПЦР: руководство по методам и приложениям. Сан-Диего, Калифорния: Academic Press, Inc .; 1990. стр. 315–22.
17.
Альтшул С.Ф., Гиш В., Миллер В., Майер Е.В., Липман Д. Базовый инструмент поиска локального выравнивания.J Mol Biol. 1990; 215: 403–10. pmid: 2231712
18.
Эдгар RC. МЫШЦЫ: множественное выравнивание последовательностей с высокой точностью и высокой пропускной способностью. Nucleic Acids Res. 2004. 32 (5): 1792–7. pmid: 15034147
19.
Таваре С. Некоторые вероятностные и статистические проблемы анализа последовательностей ДНК. В: Миура Р.М., редактор. Лекции по математике в естественных науках. 17. Провиденс: Американское математическое общество; 1986. стр. 57–86.
20.
Кумар С., Стечер Г., Тамура К.MEGA7: молекулярно-эволюционный генетический анализ версии 7.0 для больших наборов данных. Mol Biol Evol. 2016; 33 (7): 1870–4. pmid: 27004904
21.
Сиверс Ф., Хиггинс Д.Г. Clustal omega, точное выравнивание очень большого количества последовательностей. Методы Мол биол. 2014; 1079: 105–16. pmid: 24170397
22.
Кристенсен Э.А., Скадхауге К., Равн-Йонсен А. Автоклавирование шприцев в скороварках. Acta Pathol Microbiol Scand. 1963: 58 (521–527).
23.
Анонимный.Использование скороварки в качестве автоклава. EPI Newsl. 1984. 6 (6): 5–8. pmid: 12267939
24.
Ushijima B, Videau P, Poscablo D, Stengel JW, Beurmann S, Burger AH и др. Мутация генов toxR или mshA из штамма Vibrio coralliilyticus OCN014 снижает инфицирование коралла Acropora cytherea . Environ Microbiol. 2016; 18 (11): 4055–67. pmid: 27348808

FAQ — Стерилизация — 2014

Мы вносим некоторые изменения в шкафы для хранения в нашей зоне стерилизации.По мере роста практики мы неуклонно увеличиваем количество операционных кассет, которые у нас есть. Мы больше не можем хранить их всех в их нынешних шкафах на стеллажах, на которых они находятся.

Мой вопрос: существует ли в настоящее время спецификация того, как далеко должны находиться обернутые кассеты после их извлечения из стерилизатора. Не накладываются друг на друга.

Второй вопрос: можно ли их хранить друг над другом? После определенного количества сушки / охлаждения?

Ответ на эти вопросы поможет нам понять, как расположить наши шкафы и место для хранения стерилизованных инструментов.

Ask OSAP может предоставить вам некоторую общую информацию по этой теме.

Кассеты — это перфорированные металлические или пластмассовые / полимерные контейнеры, используемые для размещения стоматологических инструментов. ¹

На веб-сайте Центров США по контролю и профилактике заболеваний (CDC) содержится следующая информация:

Можно ли использовать кассеты для стерилизации инструментов?

Использование кассет для инструментов облегчает обработку инструментов и может значительно улучшить организацию инструментов.Он также хранит вместе все инструменты для конкретной процедуры, начиная с процедуры в кабинете врача, до очистки, ополаскивания, сушки и стерилизации. После завершения стоматологического лечения инструменты могут быть размещены в кассете, транспортированы в зону обработки инструментов и помещены в ультразвуковой очиститель как единое целое. Таким же образом кассету можно ополаскивать и сушить. Кроме того, кассетная система может сократить прямое обращение с потенциально загрязненными инструментами перед стерилизацией.Кроме того, инструменты, предварительно уложенные в кассету, требуют меньшего обращения после стерилизации.

Доступны различные типы кассет. Важно следовать рекомендациям производителя по очистке, упаковке и стерилизации кассет . Перфорированные кассеты предпочтительны, поскольку полностью твердые контейнеры не позволяют пару или химическому пару достигать содержимого и позволяют проводить стерилизацию. Кассеты могут занимать больше места, чем отдельные упаковки, поэтому перед покупкой кассетных систем следует учитывать размер стерилизатора и объем доступного места для хранения.

Как следует хранить предметы после стерилизации?

Стерильные и одноразовые (одноразовые) предметы следует хранить в закрытых складских помещениях (например, в шкафу или ящике). Стоматологические принадлежности и инструменты не следует хранить под раковинами или в других местах, где они могут намокнуть. Стерилизованные предметы должны оставаться упакованными до тех пор, пока они не понадобятся для использования.

Неупакованные предметы подвержены загрязнению.Избегайте хранения предметов в ящиках или шкафах незакрепленными, поскольку неупакованные предметы нельзя хранить стерильными. Предметы, хранящиеся таким образом, подвержены загрязнению пылью, аэрозолями, образующимися во время обработки, и руками персонала, который должен с ними обращаться. ²

Руководство CDC 2003 г. по инфекционному контролю в стоматологии содержит следующую общую информацию:

Критические и полукритические инструменты, которые будут храниться, должны быть упакованы или помещены в контейнеры (например,(например, кассеты или лотки для хранения), предназначенные для поддержания стерильности во время хранения (2,247,255–257).

Упаковочные материалы (например, обертки или системы контейнеров) допускают проникновение стерилизующего агента и поддерживают стерильность обрабатываемого предмета после стерилизации. Материалы для поддержания стерильности инструментов во время транспортировки и хранения включают обернутые перфорированные кассеты для инструментов, пластиковые или бумажные пакеты для снятия изоляции и стерилизационные обертки (т. Е. Тканые и нетканые).Упаковочные материалы должны соответствовать типу используемого процесса стерилизации (256–259). ³

А,

Хранение стерилизованных предметов и чистых стоматологических принадлежностей
Зона хранения должна содержать закрытые хранилища для стерильных предметов и предметов одноразового использования (173). Правила хранения упакованных стерилизованных инструментов могут быть связаны либо с датой, либо с событием. Перед использованием упаковки со стерильными расходными материалами следует проверять на целостность и сухость барьера.Хотя некоторые медицинские учреждения продолжают датировать каждую стерилизованную упаковку и использовать правила срока годности, другие учреждения перешли на методы, связанные с событиями (243). Этот подход признает, что продукт должен оставаться стерильным в течение неопределенного времени, если только событие не приведет к его загрязнению (например, порванная или мокрая упаковка) (284). Даже для упаковки, связанной с событием, как минимум, дата стерилизации должна быть указана на упаковке, и если в помещении используется несколько стерилизаторов, используемый стерилизатор должен быть указан на внешней стороне упаковочного материала, чтобы облегчить извлечение обработанных предметов. в случае сбоя стерилизации (247).Если упаковка нарушена, инструменты следует повторно очистить, упаковать в новую упаковку и снова стерилизовать.

^{Чистые материалы и инструменты по возможности следует хранить в закрытых или закрытых шкафах (285). Стоматологические принадлежности}

и инструменты не следует хранить под раковинами или в других местах, где они могут намокнуть .3

Кроме того, Служба стоматологической оценки и консультаций ВВС США заявляет следующее:

Хранение стерильных инструментов (6/07)

Вопрос: Можете ли вы ознакомиться с рекомендациями по хранению стерильных инструментов?

Ответ: Обработка инструментов требует множества этапов, поэтому необходимо соблюдать осторожность, чтобы избежать загрязнения инструментов во время хранения.Все стерильные принадлежности и инструменты необходимо хранить таким образом, чтобы сохранить целостность упаковки. Перед использованием все упаковки необходимо тщательно осмотреть, чтобы убедиться, что защитная пленка не была повреждена во время хранения.

НЕ

+ Во избежание загрязнения дайте упаковкам высохнуть в стерилизаторе перед работой.

+ Храните стерильные предметы и стоматологические принадлежности в чистых, сухих и без пыли / ворсинок местах с ограниченным доступом — рекомендуется закрытые или закрытые шкафы.

+ Соблюдайте инструкции медицинского учреждения (MTF) при хранении чистых и стерильных материалов. (При отсутствии руководства МОГ храните чистые и стерильные материалы на высоте не менее 8-10 дюймов над полом, 18 дюймов ниже потолка и 2 дюйма от внешних стен.)

+ Храните одинаковые предметы вместе — стерильное с стерильным и чистое с чистым.

+ Внедрите методы ротации запасов (например, «первым пришел — первым ушел») с использованием более старых товаров в первую очередь.

— Не храните стерильные принадлежности или предметы ухода за пациентом под раковиной (или в любом месте, где они могут намокнуть), на полу, подоконниках или в любом другом месте, кроме специально отведенных полок или шкафов.

— Не храните стерильные предметы вместе с предметами, не предназначенными для клинического использования, такими как офисные или чистящие средства).

— Не используйте транспортировочные картонные коробки для выдачи стерильных или чистых предметов лечения пациентов в стоматологических кабинетах, лабораториях, при обработке инструментов и на участках снабжения.

— Не трогайте стерильные упаковки без необходимости, чтобы избежать заражения. ⁴

Эти признанные ресурсы содержат общую информацию и рекомендации по хранению стерильных инструментов.Поскольку существуют разные типы кассет, и требования могут отличаться, рекомендуется напрямую связаться с производителем кассет для получения более конкретных рекомендаций и процедур по хранению их продукта.

Ресурсы

1) Американская стоматологическая ассоциация. Стерилизация и дезинфекция стоматологических инструментов. https://www.ada.org/members/pdfs/instrument_sterilization.pdf, дата обращения 17 марта 2014 г.

2) Центры США по контролю и профилактике заболеваний.Стерилизация — Упаковка и хранение — Часто задаваемые вопросы — Инфекционный контроль в стоматологических условиях — Здоровье полости рта. http://www.cdc.gov/oralhealth/infectioncontrol/faq/sterilization.htm По состоянию на 17 марта 2014 г.

3) Kohn WG, Collins AS, Cleveland JL, Harte JA, Eklund KJ, Malvitz DM, Центры по контролю и профилактике заболеваний (CDC). Руководство по инфекционному контролю в стоматологических учреждениях — 2003 г. MMWR Recomm Rep 2003; 52 (RR-17): 1-61. http://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/rr5217a1.htm По состоянию на 17 марта 2014 г.

4) Служба стоматологической оценки и консультации ВВС США. Стерилизация — упаковка и хранение. http://www.afms.af.mil/shared/media/document/AFD-130321-062.pdf Проверено 17 марта 2014 г.

Обходите риск повторной стерилизации медицинских имплантатов и инструментов — In2Bones

Хотя заражение имплантата может происходить в операционной, время от времени возникает неадекватная очистка и дезактивация (частично из-за используемого процесса стерилизации, который может привести к неравномерному доступу ко всем частям устройства), состояние повторно стерилизованных устройств инструменты и их потенциальное влияние на пациентов вызывает растущую озабоченность.

Бионагрузка

Повторный запуск лотков с винтами и пластинами оставляет потенциальную бионагрузку, которая может привести к потенциальным осложнениям в виде органических остатков на винтах и пластинах перед имплантацией. Это может стимулировать воспалительную реакцию, согласно статье Мишель Альфа, PhD, FCCM, «Повторная обработка имплантируемых винтов и пластин в наборах ортопедических ложек ³».

Доктор Альфа заключает, что достаточно опубликованных данных подтверждают концепцию, согласно которой органические остатки на имплантируемых элементах действительно вызывают воспалительные реакции от повторно обработанных пластин и винтов.

Износ

Есть свидетельства того, что металлы могут разъедать внутри тела и влиять на близлежащие ткани. Металл подвержен электрохимической коррозии, которая может нарушить целостность имплантата.

Имплантаты также могут подвергаться обнаруживаемой деградации в результате повторной обработки, что теоретически увеличивает вероятность коррозии, что повышает вероятность усталости металла и последующего разрушения имплантата и потенциально влияет на надежность имплантата.

Несмотря на то, что существует множество опубликованных работ, в которых сообщается о выходе из строя имплантатов, все еще недостаточно исследований о влиянии повторной обработки на небольшие имплантаты, и поэтому эта тема требует большего внимания.

Устранение проблемы

Тем не менее, даже несмотря на эти анекдотические и теоретические риски, системы здравоохранения принимают к сведению все проблемы, связанные с повторной переработкой, и решили действовать.

Например, предыдущие исследования по этому вопросу побудили Шотландский исполнительный департамент здравоохранения заявить: «Повторно обработанные стальные имплантаты могут вызывать воспалительные реакции в гораздо большей степени, чем оригинальные устройства… Существуют также проблемы коррозии и ослабления, вызванные повторной обработкой.”

Таким образом, ортопедические блоки в Шотландии были преобразованы в одноразовые, предварительно стерилизованные и индивидуально упакованные пластины и винты в 2008 году.

Кроме того, исследование, проведенное в Австралии о влиянии повторной обработки одноразовых винтов в резьбовых контейнерах, выявило «визуальные доказательства… загрязнения и коррозии» и призвало к переходу от «обычного использования винтовых контейнеров к индивидуально упакованным» и стерилизованные пластины и винты. ⁴ ”

Итак, какие практические соображения вытекают из этих выводов? Во-первых, инструменты стерильны, что исключает любой риск заражения, а это означает, что гарантия стерильности теперь лежит непосредственно на производителе устройства.Когда дело доходит до предотвращения инфекции, многие медицинские работники согласятся, что одноразовые инструменты более безопасны и надежны для пациентов (за счет снижения риска инфицирования места операции), персонала и ответственности за их операции.

Тогда есть расходы. Примите во внимание все затраты больницы и хирургического центра на проведение операции по стерилизации и связанные с этим затраты рабочего времени персонала — расходные материалы, очистку и дезинфекцию — которые следует учитывать в фактических расходах на имплантаты и инструменты.

Стоимость задержек в операционной высока. Любой намек на загрязнение гарантирует, что инструменты будут возвращены на повторную обработку, что может привести к задержкам или отмене операций в операционной. Это лежит в основе потенциального дохода больницы или хирургического центра и их способности обеспечивать рентабельную помощь пациентам.

Наконец, может сложиться мнение, что расфасованные стерильные продукты дороже. С учетом всей потенциальной экономии фактическая стоимость единицы продукции становится менее важной проблемой.И по мере роста внедрения экономика улучшится с увеличением спроса.

В то время как требуется более детальное клиническое исследование повторной обработки одноразовых медицинских имплантатов и инструментов, медицинские работники находят больше преимуществ, чем недостатков, у предварительно стерилизованных устройств. Во многих случаях подойдет только новое.

Является ли использование предварительно стерилизованных устройств предметом обсуждения в вашей больнице?

В поисках подходящего партнера CDMO

Парентеральные продукты должны пройти некоторую форму стерилизации, и терминальная стерилизация, как правило, является предпочтительным методом.Поскольку производство стерильных продуктов требует специальных знаний, многие фармацевтические компании полагаются на контрактных поставщиков услуг. Выбор CDMO с продемонстрированным успехом в разработке и коммерциализации надежных процессов терминальной стерилизации имеет важное значение для обеспечения безопасности пациентов.

Растущий спрос на стерильные лекарства

Согласно исследованию рынка Transparency Market, спрос на стерильные инъекционные препараты в последние годы неуклонно растет и будет продолжать расти.Компания прогнозирует, что глобальный рынок стерильных инъекционных наркотиков будет расширяться среднегодовыми темпами роста на 11,1% с 348,5 млрд долларов в 2016 году до 901,3 млрд долларов в 2025 году. ¹

Расширение рынка биологических препаратов, которые можно вводить только путем инъекций, является одним из ключевых факторов. Также растет спрос на низкомолекулярные препараты для парентерального введения, включая сердечные препараты, антибиотики и анальгетики, а также стандартные внутривенные растворы глюкозы, калия и физиологические растворы. Внутривенное вливание обеспечивает немедленный терапевтический эффект за счет быстрой доставки лекарства непосредственно в кровоток, при этом большинство процедур проводится в больницах.

Стерильные инъекционные препараты могут быть приготовлены в виде концентрированных добавок, которые часто лиофилизируются в стеклянных флаконах и требуют разбавления перед введением, или в виде разбавленных предварительно смешанных растворов, упакованных в гибкие пластиковые пакеты.

Многочисленные методы стерилизации

Для обеспечения безопасности пациентов лекарственные препараты для парентерального / инъекционного введения необходимо стерилизовать для уничтожения любых потенциальных микробных загрязнителей (грибов, бактерий).

Наиболее распространенный метод стерилизации включает нагревание под давлением в присутствии воды для образования пара; этот метод рекомендован различными фармакопеями.Как правило, стерилизация паром выполняется в автоклаве и может использоваться для лекарственных препаратов, медицинских устройств, пластиковых пакетов и другого одноразового оборудования, стеклянных контейнеров, хирургических повязок и многого другого.

Стерилизация также может быть достигнута путем сухого нагрева. Для этого метода требуются гораздо более высокие температуры (180–200 ° C); однако эти температуры не подходят для большинства лекарственных препаратов. Сухое нагревание также не подходит для водных растворов и чаще всего используется для стерилизации стеклянной посуды, металла и других поверхностей.

Воздействие радиации — еще один метод стерилизации, используемый в промышленности. Гамма-излучение является наиболее распространенным, хотя другие варианты включают инфракрасное и ультрафиолетовое излучение и высокоскоростные электроны. Радиация обычно используется для стерилизации компонентов / систем одноразового использования, но ее можно использовать и для упакованных лекарственных препаратов.

Обработка газами также является альтернативой стерилизации. Такие газы включают оксид этилена, формальдегид, глутаральдегид, оксид пропилена, пероксид водорода и диоксид хлора.Этот метод чаще используется для стерилизации чистых комнат.

Стерилизация посредством фильтрации — единственный вариант, если другие процессы не подходят для конкретного продукта или компонента. При фильтрации конечный раствор лекарственного препарата пропускается через фильтр, который был произведен в асептических производственных условиях и спроектирован с соответствующими размерами пор / химическим составом поверхности, который удаляет бактерии за счет исключения размера, улавливания, электростатического притяжения и других факторов.

Тщательный отбор важен

Стерилизация часто проводится в суровых условиях. Выбор подходящего метода стерилизации требует глубокого понимания физико-химических свойств лекарственного вещества и характеристик конечного продукта. Например, методы стерилизации с использованием высокой температуры или излучения вызывают разложение большинства биологических лекарственных веществ. Поэтому для биофармацевтических продуктов требуется стерильная фильтрация в асептических условиях.

Низкомолекулярные АФИ также могут быть чувствительны к теплу или излучению. В некоторых случаях может подойти один из этих методов. В других случаях может потребоваться лишь незначительное снижение температуры стерилизации и увеличение времени обработки.

Почему терминальная стерилизация

Терминальная стерилизация является предпочтительным методом для лекарственных препаратов, поскольку в этом процессе стерилизация происходит после того, как продукт был помещен в первичную упаковку. Из-за этого больше нет возможности заражения из-за вмешательства человека.Как упоминалось выше, окончательная стерилизация влажным теплом (например, паром) рекомендуется всеми фармакопеями, обычно с нагреванием до 121 ° C при давлении 15 фунтов на квадратный дюйм в течение 15 минут.

Выбор подходящего метода стерилизации требует глубокого понимания физико-химических свойств лекарственной субстанции и характеристик конечного продукта.

Акцент на валидации

Поскольку стерилизация является важным процессом при производстве лекарственных препаратов и ключевым этапом в обеспечении безопасности пациентов, этот процесс необходимо контролировать, чтобы гарантировать, что продукт имеет заданное качество на основе информации, собранной в процессе производства.Мониторинг необходим для обеспечения соблюдения конкретных требований надлежащей производственной практики (GMP) и обеспечения стерильности.

В процессе разработки проводится всестороннее тестирование для определения подходящих условий стерилизации для данного API / лекарственного препарата. Таким образом определяется время, в течение которого нестерилизованный продукт может находиться в упаковке продукта без увеличения микробного загрязнения. Для каждого продукта также необходимо измерить температуру, давление и время стерилизации.

После разработки эффективного процесса стерилизации он подвергается валидации. Во время этого процесса учитываются три основных параметра: температура стерилизации, время стерилизации, давление и снижение бионагрузки. Еще один важный параметр, который следует учитывать, — это время выдержки между наполнением флакона / пакета и стерилизацией.

Время между наполнением и стерилизацией зависит от природы раствора для парентерального введения и его предрасположенности к культивированию микробов.Для некоторых растворов, например, концентрированных солевых растворов, вероятность роста микробов мала. Однако для других, например, растворов глюкозы, существует высокая вероятность роста микробов. Время выдержки для последних растворов должно быть минимальным.

Во время стерилизации также важно, чтобы желаемая температура достигалась во всех областях автоклава и поддерживалась на протяжении всего процесса. Для успешной проверки необходимо продемонстрировать, что все позиции в автоклаве, включая самые холодные, достигают требуемой температуры в течение требуемого периода времени.

Аналогичным образом, соответствующее давление должно поддерживаться во время процесса стерилизации паром. Комбинация температуры и давления создает условия, необходимые для стерилизации. Следовательно, если правильное давление не достигается и не поддерживается, полная стерилизация не может быть достигнута.

Наконец, должна быть подтверждена эффективность процесса стерилизации в отношении снижения бионагрузки до определенных уровней. Биологические индикаторы помещаются в контейнеры для продуктов перед стерилизацией, и подтверждение их уничтожения после завершения процесса предоставляет необходимые доказательства.

Фактически, до и после стерилизации оценивается множество различных химических параметров, чтобы подтвердить эффективность процесса стерилизации. В конечном итоге выбираются и проверяются несколько ключевых аналитических методов для использования в промышленном производстве.

Терминальная стерилизация в Grifols

Grifols использует множество различных процессов стерилизации в различных операциях. Однако для парентеральных лекарственных препаратов мы используем терминальную стерилизацию паром везде, где это возможно, из-за ее надежности и в соответствии с руководящими принципами фармакопеи.У нас есть возможность стерилизовать около 70 миллионов единиц в год, включая как продукцию Grifols, так и продукцию, производимую для наших клиентов.

Мы рассматриваем стерилизацию как наиболее важный процесс, которым мы управляем. Таким образом, мы разработали надежный процесс проверки, чтобы гарантировать, что каждый лекарственный продукт, производимый Grifols, соответствует самым высоким стандартам качества. Окончательная стерилизация парентеральных лекарственных препаратов по возможности проводится при 121 ° C. Для термочувствительных API используется более низкая температура в течение более длительного времени процесса.Например, липидные эмульсии разлагаются при 121 ° C, но могут выдерживать стерилизацию при 115 ° C.

Для медицинских устройств и компонентов изделий, таких как пластиковые (откручивающиеся) пробки, используемые при производстве предварительно смешанных парентеральных препаратов, гамма-излучение используется как экономичный и простой в реализации метод, не требующий сушки (т.е. чехол с паром). Паровая стерилизация выполняется на собственном предприятии. Стерилизация газом или гамма-излучением выполняется сторонними поставщиками, имеющими необходимое специализированное оборудование и знания.

При валидации учитываются три ключевых параметра: температура стерилизации, время стерилизации, давление и снижение бионагрузки.

Специалисты по готовым мешкам

И правительства, и фармацевтическая промышленность предпочитают, чтобы растворы лекарств для парентерального введения готовил производитель, а не больница / лицо, обеспечивающее уход, для снижения риска и обеспечения большей безопасности пациентов. Использование пакетов с предварительно приготовленной смесью устраняет необходимость в разбавлении и обеспечивает соответствие стандартам Совместной комиссии по аккредитации организаций здравоохранения (JCAHO) и U.S. Pharmacopeia 797 рекомендаций.

Grifols имеет обширный опыт в производстве парентеральных лекарственных препаратов в предварительно смешанных пакетах. На протяжении многих лет мы производим пакеты с глюкозой, физиологическим раствором и другими растворами для внутривенного введения сердечно-сосудистых препаратов, анальгетиков, антибиотиков и т. Д. Как CDMO, мы применяем этот опыт для составления низкомолекулярных парентеральных продуктов в предварительно смешанных пакетах и успешно производим множество лекарств на основе ряда различных API.

Хотя стандартные физиологические растворы / глюкоза и низкомолекулярные лекарственные препараты, производимые в предварительно смешанных пакетах, требуют окончательной стерилизации, процессы для каждого из них могут быть совершенно разными.Физиологический раствор и растворы глюкозы не разлагаются легко. Исторически стерилизация этих растворов выполнялась с использованием избыточных циклов с длительным временем обработки.

Лекарственные препараты на основе АФИ обычно не выдерживают условий, традиционно используемых для растворов для внутривенного вливания. Поскольку стерилизация должна выполняться без какого-либо разложения API, процессы конечной стерилизации должны быть адаптированы для соответствия конкретным свойствам каждого низкомолекулярного лекарственного продукта.

Стерилизация лекарственных препаратов в предварительно смешанных пакетах также требует учета потенциального воздействия пластиковых пакетов, используемых для хранения продуктов. Недавно регулирующие органы подчеркнули, что производителям лекарств необходимо подтверждать отсутствие выщелачиваемых или экстрагируемых веществ во время конечной стерилизации при высоких температурах.

Grifols тесно сотрудничает со своими поставщиками пластика, чтобы гарантировать, что пластиковые пакеты, которые мы используем для наших готовых лекарственных препаратов, не имеют вымываемых / извлекаемых проблем, которые могут повлиять на здоровье пациентов.Наш подход включает в себя не только тщательный выбор состава смолы, но также разработку и контроль процессов стерилизации, которые сводят к минимуму возможность выщелачивания и экстрагируемого образования, обеспечивая при этом эффективную стерилизацию.

Долгая история качественной стерилизации

Grifols производит стерильные продукты почти 75 лет и выполняет терминальную стерилизацию почти 50 лет. Фактически, мы в основном производим стерильные инъекционные продукты.Наши клиенты приносят нам свои проекты, потому что у нас есть обширный опыт автоклавирования растворов для внутривенного вливания и широкий спектр низкомолекулярных парентеральных лекарственных препаратов с различными свойствами, а также сложных пищевых продуктов и медицинских устройств. Наша база знаний включает разработку индивидуальных циклов стерилизации с учетом температуры, давления и времени.

Grifols также продемонстрировала способность разрабатывать эффективные процессы валидации для окончательной стерилизации парентеральных продуктов.В 2007 году мы стали первой испанской компанией, получившей одобрение регулирующих органов на параметрический выпуск парентеральных растворов в стеклянных и гибких контейнерах с наших производственных предприятий, сертифицированных EMA и FDA в Барселоне и Мерсии, Испания. Мы ожидаем получить одобрение параметрического выпуска от FDA США в ближайшее время.

Параметрический выпуск разрешен для компаний, которые исторически демонстрировали отличные результаты испытаний на стерильность и высокую согласованность в своих общих системах качества.Это гарантия того, что продукт достиг желаемого качества, и основывается на информации, собранной во время производства в соответствии с GMP.

Он также отражает культуру качества, эффективные системы качества и стремление к постоянному совершенствованию и постоянному достижению высочайших уровней качества, которыми руководствуется Grifols.

Список литературы

Рынок стерильных инъекционных препаратов к 2025 году достигнет 901,3 миллиарда долларов США, в глобальном масштабе: исследование рынка прозрачности.

Контроль стерильности в медицинских и косметологических учреждениях от лаборатории «Викинг»

Дезинфекция и стерилизация инструментов в салоне красоты

Дезинфекция и стерилизация парикмахерских инструментов

Паровой метод стерилизации — режимы, особенности, процесс паровой стерилизации

Как происходит стерилизация инструмента?

Подбор оборудования для стерилизации

Где приобрести стерилизационную технику?

Тестовый контроль на тему «Стерилизация изделий медицинского назначения»

Паровая стерилизация — эффективный и экономичный способ обеззараживания

Способы стерилизации хирургических инструментов. Стерилизация хирургических инструментов методы стерилизации хирургических инструментов стерилизация

Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях?

Видео: Чистка и дезинфекция конвенциональных медицинских инструментов

Основные этапы стерилизации

Исходя из назначения инвентаря, который вступает в контакт с кожным покровом, дезинфекция бывает трех видов:

Дезинфекция осуществляется несколькими способами:

Все средства химической дезинфекции, в силу своего состава, условно делятся на 7 групп:

Различают три основных методики стерилизации:

Данный метод зачастую используют в заводских условиях, в ходе массового выпуска медицинского инвентаря (к примеру, разовые шприцы).

Видео: Процесс дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов

Все методы стерилизации инструментов, перевязочного материала и т.д. в медицине сегодня – необходимая аппаратура

Современные автоклавы бывают трех классов:

C целью облегчения и ускорения процесса стерилизации, рынок медицинских товаров предлагает следующее оборудование:

Стерилизация режущих металлических инструментов.

Тепловая стерилизация | Туттнауэр

Пламя: стерилизация в открытом пламени

Сжигание

Сухой жар

Приложения:

Преимущества:

Недостатки:

Как узнать, что ваши инструменты стерильны и соответствуют требованиям

Важность чистых стоматологических инструментов

Общие сбои процесса

Контроль процесса очистки

Решение: чистка мониторов

Купить товар

Откройте для себя лучший способ соответствовать требованиям

Дополнительные ресурсы

Ортопедические многоразовые устройства — английский

Оценка и проверка имеющихся в продаже скороварок для лабораторной стерилизации

Abstract

Введение

Материалы и методы

Условия роста бактерий

Стерилизация скороварок

Выделение и идентификация изолята грибка

Результаты

Скороварки для стерилизации питательных сред

Скороварки для стерилизации лабораторных предметов

Инактивация высоких титров бактерий и грибков в скороварках

Скороварка Instant Pot прошла тест на стерилизацию спор

Обсуждение

Вспомогательная информация

S1 Рис. Выравнивание последовательностей ITS.

S2 Рис. Инактивация культур в скороварках.

Благодарности

Ссылки

FAQ — Стерилизация — 2014

Обходите риск повторной стерилизации медицинских имплантатов и инструментов — In2Bones

Бионагрузка

Износ

Устранение проблемы

В поисках подходящего партнера CDMO

Растущий спрос на стерильные лекарства

Многочисленные методы стерилизации

Тщательный отбор важен

Почему терминальная стерилизация

Выбор подходящего метода стерилизации требует глубокого понимания физико-химических свойств лекарственной субстанции и характеристик конечного продукта.

Акцент на валидации

Терминальная стерилизация в Grifols

При валидации учитываются три ключевых параметра: температура стерилизации, время стерилизации, давление и снижение бионагрузки.

Специалисты по готовым мешкам

Долгая история качественной стерилизации

Список литературы

Добавить комментарий Отменить ответ