Воздушный метод стерилизации проводится в: Воздушный метод стерилизации: режимы. Стерилизация изделий медицинского назначения: воздушный метод стерилизации (сухой горячий воздух)

Содержание

Воздушный метод стерилизации: режимы. Стерилизация изделий медицинского назначения: воздушный метод стерилизации (сухой горячий воздух)

Спасать человеческие жизни – это очень ответственная задача, возложенная на медицинских работников. И чтобы качественно справиться с ней, важно использовать простерилизованные, чистые медицинские инструменты. В статье подробно рассмотрим воздушный метод стерилизации и его особенности, положительные и отрицательные стороны.

Что такое стерилизация медицинских принадлежностей?

Стерилизация – это очищение медоборудования, удаление с его поверхности микробов, их спор, вирусов путем химического и физического воздействия. Медицинское изделие является стерильным, когда его вероятная биологическая нагрузка меньше или равна 10 в -6 степени. Все, в том числе и воздушный метод стерилизации, применяется для изделий из металла, стекла (подробнее рассмотрим ниже), которые контактируют с кровью человека, с поверхностью ран, прикасаются к слизистым оболочкам и могут нарушить их целостность.

Основные этапы стерилизации

Весь процесс стерилизации состоит из трех этапов:

  1. Дезинфекция медицинских принадлежностей.
  2. Проведение тщательной предстерилизационной очистки.
  3. Непосредственно стерилизация.

Важно помнить, что стерилизация изделий медицинского назначения (воздушный метод) будет проведена качественно только при последовательном выполнении всех трех этапов. В противном случае на инструментах могут остаться микроорганизмы, которые при контакте с ранами или слизистой оболочкой приведут к заражению. Паровой, воздушный методы стерилизации очень похожи между собой, но у них есть существенные различия в режимах работы. Рассмотрим подробнее.

Главные требования к стерилизации мединструментов

Стерилизация является сложным процессом, поэтому для качественного ее проведения нужно соблюдать некоторые требования:

  1. Эффективное очищение.
  2. Необходимые упаковочные материалы.
  3. Упаковка медицинских инструментов должна проходить с соблюдением всех правил.
  4. Загружать стерилизатор медицинскими изделиями нужно по определенной технологии.
  5. Мединструменты, которые подвергаются стерилизации, должны быть отличного качества и в строго соблюдаемом количестве.
  6. После проведения стерилизации материал нужно правильно хранить, умело обращаться с ним и соблюдать правила транспортировки.

Весь процесс стерилизации инструментов проводится с того момента, когда была закончена операция, и до момента, когда инструмент сложен на хранение (либо до следующего использования). Правильно проведенная дезинфекция обеспечит стерильность и продлит возможный срок использования инструментов.

Все, в том числе и воздушный метод стерилизации, проводится по следующему алгоритму:

  1. Провести механическую очистку использованного инструмента.
  2. Проверить, нет ли повреждений на поверхности.
  3. Затем помыть изделия.
  4. Потом инструменты сушатся.
  5. Затем их нужно сложить в стерилизационную упаковку.
  6. Проводится непосредственно стерилизация.
  7. После этого изделия хранятся в стерильном месте или используются при ближайшей необходимости. При правильной упаковке мединструменты могут храниться от суток до полугода.

Воздушный метод стерилизации

Способ воздушной стерилизации используется для обработки медицинских изделий, деталей аппаратов, которые сделаны из металлов, устойчивых к коррозии, стеклянных изделий с пометкой 200°С, а также резиновых медицинских изделий.

Перед стерилизацией нужно обязательно провести предстерилизационную очистку и тщательно высушить инструменты при температуре 85°С. Для сушки используют специальный сушильный шкаф. Весь процесс стерилизации по времени занимает около 2,5 часа (150 минут).

Предстерилизационная обработка медицинских изделий

Воздушный метод стерилизации может быть использован только после тщательной подготовки инструментов к этому процессу.

Итак, предстерилизационная обработка – это мероприятия, с помощью которых с поверхности медицинских инструментов удаляют белковые, жировые и лекарственные загрязнения. Этот процесс помогает сделать стерилизацию более эффективной, снизить риск пирогенных реакций.

Для правильной подготовки инструментов к стерилизации:

  1. Готовят моюще-дезинфицирующий раствор и замачивают в нем использованные медицинские принадлежности.
  2. Используя ватно-марлевые тампоны или ершики, тщательно вымывают инструменты в этом же растворе. Особое внимание нужно уделить местам соединений (замкам, просветам каналов), так как именно в них скапливаются вредные микроорганизмы. Ершики после использования нужно помыть и оставить в сухом месте, а ватные тампоны – выбросить.
  3. Чистый инструмент прополаскивают в проточной воде, чтобы удалить следы и запах моющего раствора.
  4. После этого каждый мединструмент отдельно прополаскивают в дистиллированной воде в течение 30 секунд.
  5. После полоскания изделие тщательно высушивают. Его можно оставить сохнуть на открытом воздухе, а можно воспользоваться сухожаровым шкафом при температуре 85 градусов.
  6. После проведения всех этапов проводится контроль качества предстерилизационной обработки путем постановки проб.

Когда обработка закончена, можно приступать непосредственно к стерилизации инструментов сухим горячим воздухом.

Режимы воздушного метода

Воздушный метод стерилизации режимы имеет разнообразные. Каждый из них отличается температурой и временем стерилизации. Именно разнообразие режимов работы и делает таким популярным воздушный метод стерилизации (сухой горячий воздух). Таблица расположена ниже.

Режимы и способы контроля за стерилизацией сухим горячим воздухом
Температура Время Контроль за процессом
Значение Допустимое отклонение Значение Допустимое отклонение
160 +/- 3 150 +/- 5 Левомицетин
180 +/- 3 60 +/- 5 Винная кислота, тиомочевина
200 +/- 3 30 +/- 3 Ртутный термометр

Основной режим стерилизации воздушным методом – это температура 180°С и час времени. Такой режим является наиболее надежным и оптимальным.

Условия проведения воздушной стерилизации

Чтобы медицинские инструменты были продезинфицированы правильно сухим горячим воздухом, необходимо соблюдение некоторых условий:

  1. Стерилизовать можно только полностью высушенные изделия.
  2. Стерилизовать можно изделия, упакованные в мешочную непропитанную бумагу, устойчивую к влаге бумагу или вовсе без упаковки. В зависимости от выбора упаковки (или ее отсутствия) будет определено время хранения простерилизованных инструментов.
  3. Запрещена стерилизация х/б материала.

Максимальные сроки хранения стерильных инструментов

Если инструменты были простерилизованы в упаковке (в бумаге), то их стерильность сохранится на протяжении трех суток. Что касается изделий, которые обрабатывались сухим горячим воздухом без упаковки, то их необходимо использовать сразу же после окончания процесса стерилизации.

Порядок работы на стерилизаторе при воздушном способе

Для проведения стерилизации горячим сухим воздухом используют воздушный стерилизатор. Есть несколько правил, которые необходимо соблюдать, чтобы избежать некачественной обработки инструментов.

Во-первых, нельзя загружать все предметы в стерилизатор навалом, они все должны быть аккуратно разложены.

Во-вторых, большие инструменты, которые занимают много места, нужно класть на верхнюю полку. Таким образом поток горячего воздуха будет равномерно распределен.

В-третьих, сложные изделия, такие как ножницы или зажимы, нужно складывать в стерилизатор раскрытыми, чтобы обработка воздухом была более качественной. Шприцы надо класть в разобранном виде, а медицинскую посуду нельзя складывать одну в другую. То есть нельзя поместить стакан в стакан. Каждый инструмент должен быть отдельно разложен.

Алгоритм работы на воздушном стерилизаторе

  1. Стерилизатор не нужно предварительно разогревать, все инструменты складываются внутрь холодного оборудования.
  2. После этого его включают, и он нагревается.
  3. Когда стерилизатор нагреется до нужной температуры (180 градусов), начинается отсчет времени стерилизации (один час).
  4. По истечении времени оборудование выключают и ждут, пока оно остынет до 40-50 градусов.
  5. Затем достают обработанные медицинские инструменты.

Преимущества воздушного способа стерилизации

Воздушный метод стерилизации имеет неоспоримое преимущество перед паровым методом: низкая себестоимость необходимого оборудования.

Кроме того, есть и другие положительные качества:

  1. Такой метод обладает низкими коррозийными свойствами.
  2. Глубоко проникает в материал и обеспечивает качественную обработку.
  3. Не нуждается в аэрации.
  4. Не наносит вреда окружающей среде.

Недостатки стерилизации сухим горячим воздухом

Несмотря на ряд преимуществ, воздушный метод стерилизации имеет и отрицательные стороны.

Недостатки этого метода:

  1. Большая энергоемкость метода.
  2. Слишком длительный цикл. Для стерилизации необходимо минимум полчаса и дополнительное время (около часа) на нагревание и остывание оборудования.
  3. Таким способом невозможно стерилизовать тканевые и пластмассовые изделия.
  4. Многие металлические инструменты не очень хорошо переносят обработку такой высокой температурой: они теряют свои свойства и быстро тупятся.

Заключение

В статье мы подробно изучили самый известный и широко используемый метод стерилизации медицинских инструментов — обработка сухим горячим воздухом (воздушный способ), его особенности, положительные и отрицательные стороны. Именно этим методом пользуются большинство современных больниц.

В заключение хочется сказать, что неважно, какой метод стерилизации был выбран, главное, чтобы чистка и дезинфекция изделий были проведены качественно и с соблюдением всех правил.

Операционная медицинская сестра — Мегаобучалка

Опорные тесты.

Цикл: Сестринское операционное дело. Специализация.

Специальность: Операционное дело

Должность: Операционная медицинская сестра.

 

 

2. Медицинский персонал может выполнять дезинфекционные работы в возрасте : ОТВЕТЫ:

1. 16 лет

2. 17 лет

3. Старше 18 лет

 

4. Санитарно-противоэпидемиологический режим означает проведение комплекса мероприятии :

ОТВЕТЫ:

1. по профилактике экзогенных интоксикаций

2. направленных на пропаганду «Здорового образа жизни»

3. по профилактике внутрибольничной инфекции

 

5. При подозрении на дифтерию мазок берется:

ОТВЕТЫ:

1. из слизистой зева и носа

2. только из слизистой носа

3. только из слизистой зева

 

6. При. выявлении, носителя австралийского, антигена, текущая дезинфекция проводится:
ОТВЕТЫ:

1. 1% раствором хлорамина

2. 3 % раствором хлорамина

3. только 5 %раствором хлорамина

 

 

8. Контактным с больными вирусным гепатитом вводится:

ОТВЕТЫ:

1. гамма-глобулин

2. интерферрон

3. сыворотка

 

9. Иммунно-гаммаглобулино-профилактика (ИГГП), проводимая при вирусных гепатитах относится к:
ОТВЕТЫ:

1. санитарно-гигиеническим мероприятиям

2. санитарно-противоэпидемическим мероприятиям

 

10. Взрослым пациентам, бывшим в контакте с больным гепатитом «А» вводится :
ОТВЕТЫ:

1. 3 мл гамма- глобулина

2. 1 мл витамина «В6»

3. 5-мл витамина. «Е»

 

12. Инкубационный период гепатита «В» :

ОТВЕТЫ:

1. 35 дней

2. 6 месяцев

3. 2 месяца

 

13. Постельные принадлежности пациента вирусным гепатитом подлежат :
ОТВЕТЫ:

1. камерной дезинфекции

2. стирки в прачечной

3. дезинфекции в 2 % р-ре соды

 

17. Предметы ухода за пациентами вирусным гепатитом можно обеззараживать :
ОТВЕТЫ:
1. путем двухкратного протирания ветошью, смоченной в 3 % растворе хлорамина

3. однократным протиранием ветошью смоченной 3 % растворе хлорной извести

 

18. Пути передачи гепатита «А» :

ОТВЕТЬ:

1. половой

2. парентеральный

3. фекально-оральный

 

19. Инкубационный период гепатита «А» :

ОТВЕТЫ:

1. 35 дней

2. 6 месяцев

3. 1 год

 

20. Выделения больного вирусным гепатитом засыпают сухой хлорной известью: ОТВЕТЫ:

1. в отношении 1:5 на 60 минут

2. в отношении 1:2 на 30 минут

 

21. После дезинфекции, выделения больного (кал, моча, рвотные массы):

ОТВЕТЫ:

1. выливают в канализацию

2. собирают, в отдельную емкость

 

22. После перевода инфекционного пациента в инфекционный стационар в очаге проводят:

ОТВЕТЫ:

1. заключительную дезинфекцию

2. текущую дезинфекцию

3. профилактическую дезинфекцию

 

23. Цель заключительной дезинфекции :

ОТВЕТЫ:

1. одномоментное уничтожение возбудителя инфекционного заболевания на объектах внешней среды

2. изоляция пациента в отдельную палату, исключение контакту с родственниками и окружающими пациентами

 

24. Для предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения разрешается использовать :

ОТВЕТЫ:

1. 1 % раствор хлорамина

2. 2 % раствор питьевой соды

3. 5 % раствор питьевой соды

 

25. При повреждении кожи рук медсестры, во время манипуляции проходимой ВИЧ-инфицированному, необходимо :

ОТВЕТЫ:

1. выдавить кровь из раны, обработать рану 5 % спиртовым раствором йода

2. обработать рану 5 % спиртовым раствором йода

3. обработать рану 0,05 % раствором марганцовокислого калия

 

29. Срок хранения стерильных изделий в асептических условиях без упаковки :

ОТВЕТЫ:

1. 6 часов

2. 3 суток

3. 20 суток

 

30. Растворы Сайдекса и Глутарала могут быть использованы для стерилизации до: ОТВЕТЫ:

1. 14 суток, при условии погружения изделия в раствор в сухом виде

2. одного месяца, при соблюдении определенных условий

 

  1. Сроки хранения стерильности медицинских изделий при вскрытии бикса:

ОТВЕТЫ:

1. 10 дней

2. 7 дней

3. 3 дня

4. 1 рабочая смена (6 часов)

 

39. Изделия из резины стерилизуются при режиме :

ОТВЕТЫ:

1. 1,1 атмосфер — 120 градусов — 45минут

2. 2 атмосфер — 180 градусов — 30 минут

3. 2 атмосфер — 132 градуса — 20минит

 

40. Срок хранения изделий простерилизованных в 2х слойной мягкой упаковке из крепированной бумаги :

ОТВЕТЫ:

1. 20 суток

2. 1 год

 

41. Срок хранения изделий простерилизованных в однослойном прозрачном или комбинированном пакете «СТЕРИКИНЧ» :

ОТВЕТЫ:

1. до 1 года

2. 20 суток

3. 1 месяц

 

42. Химический контроль стерильности при режиме 132 градуса — 2 атмосферы — 20 минут:ОТВЕТЫ:

1. бензойная кислота

2. алиментарная сера

3. Т-маноза

4. никотинамид

5. мочевина

 

43. Неостывшие биксы из ЦСО (Центрального стерилизационного отделения) выдавать : ОТВЕТЫ:

1. разрешается

2. не разрешается

 

44. Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в биксах без фильтра :

ОТВЕТЫ:

1. 3 суток

2. 1 день

3. 20 суток

 

45. Срок хранения стерильность изделий простерилизованных в двойной мягкой упаковке из бязи :

ОТВЕТЫ:

1. 3 суток

2. 1 день

3. 20 суток

 

46. Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в бумаге мешочной влагопрочной :

ОТВЕТЫ:

1. 3 суток

2. 6 суток

 

 

47. Cpок хранения стерильности, изделий, простерилизованных в биксе с фильтром : ОТВЕТЫ:

1. 20 суток

2. 30 дней

 

48. Паровой метод стерилизации проводится в :

ОТВЕТЫ:

1. паровых стерилизаторах

2. воздушных стерилизаторах

3. кастрюле, с крышкой

 

49. Химический контроль стерилизации при режиме 132 градуса — 20 минут — 2 атмосфер:ОТВЕТЫ:

1. мочевина

2. никотинамид

3. ТВИИС 132

4. бензойная кислота

 

50. Химический контроль качества стерилизации при режиме 1,1 атмосфер — 120 градусов 45 минут :

ОТВЕТЫ:

1. бензойная кислота

2. сера алиментарная

3. ТВИНС — 120 градусов

4. мочевина

5. никотинамид

 

51. Химический контроль при воздушном методе стерилизации проводится:

ОТВЕТЫ:

1. сахарозой

2. тиомочевиной

3. винной кислотой

4. бензойной кислотой

5. аспирином

 

52. Режимы при паровом методе стерилизации :

ОТВЕТЫ:

1. 2 атм. — 132 градуса — 20 минут

2. 1,1 атм. — 120 градусов — 45 минут

3. 160 градусов — 2,5 – часа

4. 180 градусов 1 час

 

53. Объекты стерилизации при паровом методе стерилизация :

ОТВЕТЫ:

1. изделия из металла, стекла

2. резиновые перчатки

3. текстильный материал

4. изделия из полимерных материалов

5. только- изделия из хлопчатобумажной ткани

54. Медицинская сестра простерилизовала шприцы воздушным методом в открытом виде. Тактика медсестры :

ОТВЕТЫ:

1. правильная

2. неправильная

 

55. Химические вещества для контроля стерильности при воздушном методе ставятся (при объеме камеры до 80 куб.дм. ):

ОТВЕТЫ:

1. в 5 точках

2. в 3 точках

3. на одной полке

 

56. Время начала стерилизации при воздушном методе отсчитывается с : ОТВЕТЫ:

1. момента поднятия температуры до 132 градусов

2. момента закрытия сухожарового шкафа

3. момента, поднятия температуры до 160 градусов

4. момента поднятия температуры до 180 градусов

 

57. Воздушный метод стерилизации проводится в :

ОТВЕТЫ:

1. автоклаве

2. сухожаровом шкафу

3. в специальном помещений при температуре 100 С

 

58. Воздушный метод стерилизации проводится в:

ОТВЕТЫ:

1. открытом виде — без упаковки

2. крафт – пакетах

3. мешочной непропитанной бумаге

4. мешочной влагопрочной бумаге

5. упаковке из хлопчатобумажной, ткани

 

59. В качестве контроля стерильности в воздушный стерилизатор закладывается : ОТВЕТЫ:

1. левомицетин

2. бензойная кислота

3. сера — алиментарная, очищенная

4. фуксин

 

60. Изделия, простерилизованные воздушным методом, в упаковке из бумаги мешочной непропитанной :

ОТВЕТЫ:

1. могут храниться 3 суток

2. используются в течение суток

3. хранятся до 20 суток

 

61. Срок хранения изделий в упаковке из бумаги мешочной влагопрочной : ОТВЕТЫ:

1. 3 суток

2. 20 суток

3. 1 сутки

62. Изделия — простерилизованные без упаковки используются :

ОТВЕТЫ:

1. непосредственно после стерилизации

2. в течение суток, в асептических условиях

 

63. Химический контроль, качества стерилизации воздушным методом при режиме 180 градусов — 60 минут :

ОТВЕТЫ:

1. тиомочевина

2. гидрохинон

3. кислота винная

4. индикаторы воздушной стерилизации

5. бензойная кислота

 

64. Химический контроль качества стерилизации воздушным методом при режиме 160 градусов — 2,5 часа :

ОТВЕТЫ:

1. левомицетин

2. индикатор, воздушной стерилизации

3. сера алиментарная, очищенная

4. сахароза

 

65. После проведения предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения показана :

ОТВЕТЫ:

1. сушка горячим воздухом до полного исчезновения влаги

2. стерилизация одним из методов, без предварительной сушки изделия

3. сушка в открытом виде до полного исчезновения влаги

 

66. Методы стерилизации :

ОТВЕТЫ:

1. паровой

2. воздушный

3. химический

4. газовый

5. механический

 

67. Воздушный метод стерилизации применяется для изделий из :

ОТВЕТЫ:

1. металла

2. хлопчатобумажной ткани

3. стекла

4. силиконовой резины

 

68. Азопирамовая проба ставится :

ОТВЕТЫ:

1. на горячих инструментах

2. при температуре окружающей среды свыше 30 С

3. при комнатной температуре

 

69. Раствор азопирама хранится :

ОТВЕТЫ:

1. на ярком свете

2. вблизи нагревательных приборов

3. в холодильнике

 

70. Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют нанесением :

ОТВЕТЫ:

1. 2х- 3х капель раствора на кровяное, пятно

2. 2 — 3 капель раствора на стерильный ватный шарик

 

71. Для постановки фенолфталеиновой пробы готовят :

ОТВЕТЫ:

1. 1 % — ный спиртовой раствор фенолфталеиина

2. 5 % спиртовой раствор фенолфталеина

 

72. Рабочий раствор азопирана готовят:

ОТВЕТЫ:

1. непосредственно перед постановкой пробы

2. накануне за день до постановки пробы

 

73. Рабочий раствор азопирама готовится смешиванием равного количества:

ОТВЕТЫ:

1. азопирама

2. 3 %перекиси водорода

3. 5 % спиртового раствора амидопирина

 

74. Рабочий раствор азопирама может быть использован в течение:

ОТВЕТЫ:

1. 1-2 часов

2. 24 часов

3. 7 дней

 

75. При положительной амйдопириновой пробе повторный контроль инструментов проводят :

ОТВЕТЫ:

1. ежедневно до получения 10 — кратного отрицательного результата

2. до получения отрицательного результата

 

76. Реактив для проведения азопирамовой пробы готовят из :

ОТВЕТЫ:

1. 1,0 — 1,5 % раствора солянокислого анилина

2. 95 % этилового спирта

3. 70 % этилового спирта

 

77. Готовый исходный раствор азопирама хранится в закрытом флаконе при :

ОТВЕТЫ:

1. 4 С (в холодильнике) — 2 месяца

2. 18 – 20 С (в темном помещении) — 1 месяц

3. 18 — 20 С — 2 месяца

 

78. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка : ОТВЕТЫ:

1. не снижает его рабочих качеств

2. снижает качество реактива

 

79. Реактив для постановки амидопириновой пробы готовят смешиванием в равных количествах (по 2-3 мл):

ОТВЕТЫ:

1. 5 % спиртового раствора амидопирина

2. 30 % уксусной кислоты

3. 3 % раствора перекиси водорода

4. 6 % раствора перекиси водорода

 

80. При постановке амидопириновой пробы контролю подлежат :

ОТВЕТЫ:

1. поршень шприца

2. цилиндр шприца с наружной и внутренней стороны

3. иглы, канюля

4. только канюли и иглы

 

81. Мойка каждого изделия в моющем растворе проводится в течение :

ОТВЕТЫ:

1. 0,5 минут (.30 секунд)

2. 1 минуты (60 секунд)

 

82. Ополаскивание инструментов проточной водой после моющего средства «Биолот» проводится в течение :

ОТВЕТЫ:

1. 3 минуты

2. 5 минут

3. 10 минут

 

83. Ополаскивание изделий .медицинского назначения под проточной водой после моющих средств «Лотос», «Лотос — автомат» проводится в течение:

ОТВЕТЫ:

1. 10 минут

2. 3 минуты

3. 5 минут

 

84. При применении питьевой соды для предстерилизационной очистки:

ОТВЕТЫ:

1. изделие ополаскивается только дистиллированной водой

2. каждое изделие ополаскивается вначале проточной водой, затем дистиллированной

 

85. При предстерилизационной очистке медицинского инструментария замачивание в моющем средстве проводится:

ОТВЕТЫ:

1. при полном их погружении в раствор

2. в зависимости от вида моющего средства

 

86. Режим предстерилизационной очистки при применении моющего средства «Лотос» : ОТВЕТЫ:

1. 50 градусов — 15 минут

2. 40 градусов — 15 минут

3. 60 градусов 10 минут

 

87. Режим предстерилизационной очистки при применении средства «Бланизол» :

ОТВЕТЫ:

1. (18-20 градусов) – 1 % 15 минут

2. (50 градусов) –1 % -5 минут

 

88. Для контроля изделия на скрытую кровь берется :

ОТВЕТЫ:

1. 5 – 6 изделий

2. 1 % обработанных изделий

3. не менее 50 % изделий

 

89. Моющий раствор подлежит замене :

ОТВЕТЫ:

1. при изменении его окраски

2. каждые три часа

3. при снижении температуры ниже 50 С

 

90. Температура моющего раствора во время замочки инструментария : ОТВЕТЫ:

1. поддерживается в пределах 40 — 50 С

2. не поддерживается

3. поддерживается в зависимости от вида моющего средства

 

91. Для приготовления моющего раствора было взято 5 грамм «Астры», до 1 литра воды и :

ОТВЕТЫ:

1. 6 % перекиси водорода 78 мл.

2. 6 % перекиси водорода 156 мл.

 

92. Контроль качества предстерилизационной обработки инструментария процедурной сестрой проводится :

ОТВЕТЫ:

1. 1 раз в неделю

2. 1 раз в 10 дней

3. ежедневно

 

93. Ополаскивание шприцев и игл под проточной водой от моющего раствора проводится :
ОТВЕТЫ:

1. в зависимости от вида моющего средства от 3 до 10 минут

2. в течение 10 минут

 

94. Наличие остатков моющих средств на инструментах проверяется с помощью:

ОТВЕТЫ:

1. фенолфталеиновой пробы

2. азопирамовой или амидопириновой пробы

 

95. Время выдержки 5 % осветленного раствора гипохлорида кальция :
ОТВЕТЫ:

1. 12 часов

2. 24 часа

3. 30 минут

 

96. Стерилизация скальпелей, ножниц проводится в 6 % перекиси водорода в течение :
ОТВЕТЫ:

1. 3 часов при температуре 50 С

2. 6 часов при температуре 18- С

3. 6 часов при температуре 50 С

 

97. Для приготовления моющего раствора из средства «Биолот» :

ОТВЕТЫ:

1. используется 3 % перекись водорода

2. перекись водорода не используется

 

98. Химическая очистка инструментария из нержавеющей стали проводится :

ОТВЕТЫ:

1. 1 раз в неделю

2. 1-2 раза в квартал

3. 1 раз в год

 

99. Для приготовления моющего комплекса берут 5 грамм порошка до 1 литра воды и :
ОТВЕТЫ:

1. пергидроль 33 % — 14,5 — 15 мл

2. пергидроль 30 % — 17 мл

 

100. Амидопириновая проба проводится для определения остатков:

ОТВЕТЫ:

1. крови

2. хлора

3. моющего средства

 

101. Азопирамовая проба проводится для определения остатков :

ОТВЕТЫ:

1. крови

2. гноя

3. хлора

4. моющего средства

 

102. Моющий раствор из средства «Луч» готовят :

ОТВЕТЫ:

1. в емкостях из любого материала

2. только в эмалированной кастрюле

3. только в стеклянной посуде

 

103. Средство «Луч» предназначено для предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения из :

ОТВЕТЫ:

1. металла

2. стекла

3. резины и пластмасс

4. каучука

 

104. Средство «Луч» применяется ввиде видных растворов в концентрации :

ОТВЕТЫ:

1. 1 %

2. 0,5 %

3. 3 %

4. 5 %

 

105. После мойки изделия в моющем средстве «Зифа» ополаскивание изделия проводится: ОТВЕТЫ:

1. под проточной водой в течение 3 минут

2. в течение 1 минуты

3. полным погружением на 10 минут в питьевую водопроводную воду

 

106. Для приготовления 1 литра моющего средства «Зифа» необходимо : ОТВЕТЫ:

1. 5 гр порошка и 995 мл воды

2. 50 гр порошка и 950 мл воды

 

107. Средство. «Зифа» применяется, ввиде водных растворов в концентрации (по препарату):

ОТВЕТЫ:

1. 0,5 %

2. 1 %

3. 3 %

4. 5 %

 

108. Моющее средство «Зифа» обеспечивает предстерилизационную очистку:

ОТВЕТЫ:

1. изделий медицинского назначения из металла

2. изделий из резины и стекла

3. пластмассовых изделий

4. только изделий из металла

 

109. Моющий растворе использованием средства «Зифа» может быть использован : ОТВЕТЫ:

1. дважды в течение рабочей смены, если его внешний вид не изменился

2. до 6 раз, если внешний вид раствора не изменился

 

110. Срок годности моющего раствора из средства «Зифа» :

ОТВЕТЫ:

1. 1 рабочая смена (6 часов)

2. 12 часов

3. 24 часа

 

111. Дезинфекция и предстерилизационная очистка объединяются в один этап при использовании:

ОТВЕТЫ:

1. 0,5 % раствора нейтрального анолита

2. 2 % питьевой соды

3. 3 % хлорамина

 

112. Режим дезинфекции нейтральным анолитом (установка — СТЭЛ):

ОТВЕТЫ:

1. 0,05 % — 30 минут

2. 0,05 % — 60 минут

 

 

113. Нейтральный анопит, Виркон, Лизетол можно использовать :
ОТВЕТЫ:

1. для дезинфекции и предстерилизационой очистки

2. только для дезинфекции

 

114. Химический метода дезинфекции медицинского назначения :
ОТВЕТЫ:

1. 70 % спирт — 30 минут

2. 6 % водорода – 60 минут

3. 70 % спирт — 60 минут

4. 3 % перекись водорода – 60 минут

 

115. Дезинфекция и одновременная предстерилизационная очистка ЛИЗОФОРМИНОМ –3000:
ОТВЕТЫ:

1. проводится при режиме (1,5 %-30 минут)

2. осуществляется при режиме (0,75 % — 30 минут)

 

116. Концентрация раствора и время дезинфекции при применении «Деохлор» :
ОТВЕТЫ:

1. 1 таблетка на 10 литров воды 30 минут

2. 1 таблетка на 1 литр воды — 30 минут

 

117. Концентрация раствора и время выдержки при применении «Дезоформ» :
ОТВЕТЫ:

1. 5 % -10 минут

2. 3% — 30 минут

3. 1 % — 60 минут

4. 5 % — 60 минут

 

118. «Дезоформ» и «Бланизол» могут быть применены для:

ОТВЕТЫ:

1. одновременной дезинфекции и предстерилизационной очистки

2. одновременного проведения всех этапов обработки медицинского инструментария

 

119. Режимы химического метода стерилизации изделий медицинского назначения:

ОТВЕТЫ:

1. 6 % перекиси водорода при температуре 18 С – 6 часов

2. 6 % перекись водорода при температуре 50 С — 3 часа

3. 3 % перепись водорода при температуре 50 С — 3 часа

 

120. Режимы химического метода стерилизации с применением раствора Сайдекс или Глутарал :

ОТВЕТЫ:

1. 2 % — 18 С 4 часа

2. 2 % — 18 С — 10 часов

3. 1 % — 18 С – 24 часа

 

121. Режим стерилизации изделий из металла, стекла с применением Сайдекса или Глутарала :

ОТВЕТЫ:

1. 2 % — 18 С – 4 часа

2. 2 % — 18 С – 10 часов

3. 1 % — 18 С – 24 часа

 

122. Режим стерилизации изделий из полимерного материалу с применением Сайдекса или Глутарала :

ОТВЕТЫ:

1. 2 % -18 С — 10 часов

2. 1 % — 18 С – 24 часа

 

123. Режим дезинфекции изделий медицинского назначения средством «Гибитая» : ОТВЕТЫ:

1. 2,5 % 30 минут

2. 2,5 % — 240 минут

3. 2,5 % — 120 минут

 

124. Режим дезинфекции изделий медицинского назначения хлоргексидином:

ОТВЕТЫ:

1. 2,5 % — 30 минут

2. 2,5 % — 120 минут

3. 2,5 % — 60 минут

 

125. Режимы дезинфекции с применением дезинфицирующего агента «Лизоформин 3000»: ОТВЕТЫ:

1. 2 % — 15 минут

2. 1,5% — 30 минут

3. 0,75 % 60 минут

4. 0,75 % — 30 минут

 

126. Режим дезинфекции изделий медицинского назначения дезинфицирующим агентом «Пресепт» :

ОТВЕТЫ:

1. 0,1 % — 90 минут

2. 0,5 % 90 минут

3. 1 % — 60 минут

 

127. Дезинфекция медицинского инструментаpия средством «Сайдекс» проводится при режиме :

ОТВЕТЫ:

1. 2 % — 15 минут

2. 2 % — 60 минут

3. 2 % — 20 минут

 

128. Режим дезинфекции при применении «Глутарала» :

ОТВЕТЫ:

1. 2 % — 15 минут

2. 2 % — 60 минут

3. 2 % — 20 минут

 

129. Инструменты из металла, изделия из стекла можно дезинфицировать : ОТВЕТЫ:

1. сухим горячим воздухом при режиме 120 С — 45 минут

2. сухим горячим воздухом, при режиме 160 С — 2,5 часа

 

130. Дезинфекция инструментария сухим горячим воздухом проводится : ОТВЕТЫ:

1. без упаковки (на лоткax), в воздушном стерилизаторе

2. только в упаковке из бязи, в воздушном стерилизаторе

 

131. Химический метод дезинфекции медицинского инструментария проводится в :

ОТВЕТЫ:

1. 3 % хлорамине – 60 минут

2. 5 % хлорамине — 240 минут

3. 1 % хлорамине – 60 минут

 

132. Химический метод дезинфекции медицинского инструментария проводится в : ОТВЕТЫ:

1. закрытых емкостях из стекла, пластмассы

2. открытых емкостях, покрытых эмалью

3. закрытых емкостях покрытых эмалью

133. Физический метод дезинфекции :

ОТВЕТЫ:

1. кипячение

2. протирание, выколачивание

3. обработка хлорамином

 

134. Методы дезинфекции :

ОТВЕТЫ:

1. физический

2. химический

3. биологический

 

135. Инструменты из металла, изделия из стекла, резины можно дезинфецировать:

ОТВЕТЫ:

1. кипячением

2. замачиванием в моющем средстве Лотос, Биолот

 

136. Физический метод можно применять при дезинфекции изделий из:

ОТВЕТЫ:

1. термостойких полимерных материалов

2. термолабильных полимерных материалов

 

137. Основной принцип асептики:

ОТВЕТЫ:

1. все, что попадает в рану должно быть уничтожено

2. все, что соприкасается с раной должно быть стерильно

 

138. Уничтожение болезнетворного начала на различных объектах внешней среды это:

ОТВЕТЫ:

1. дезинфекция

2. стерилизация

3. асептика

4. антисептика

 

139. Дезинфекция уничтожает:

ОТВЕТЫ:

1. все формы жизнедеятельности микробов

2. только вегетативные формы микробов

 

140. При попадании крови ВИЧ-инфицированного пациента на кожу медицинской сестры необходимо:

ОТВЕТЫ:

1. сообщить об этом старшей сестре отделения

2. обработать рану 70-градусным спиртом, вымыть под проточной водой с мылом, повторить обработку спиртом

3. обработать кожу 5 % спиртовым раствором йода

 

141. Контроль качества дезинфекции проводится постановкой:

ОТВЕТЫ:

1. йод — крахмальной пробы

2. фенолфталеиновой пробы

3. азапирамовой пробы

 

142. Режимы стерилизации при воздушном методе:

ОТВЕТЫ:

1. 160 градусов – 2,5 часа

2. 180 градусов – 1 час

3. 160 градусов – 1 час

 

143. 3 % раствор хлорной извести готовиться из трех литров маточного раствора и : ОТВЕТЫ:

1. воды до 10 литров

2. воды до 3 литров

 

144. Контактные с больным гепатитом «В» подлежат наблюдению в течение :

ОТВЕТЫ:

1. 6 месяцев

2. 35 дней

145. Источником инфекции при гепатите «А.» является :

ОТВЕТЫ:

1. больном человек

2. столовая посуда

3. предметы ухода

 

146. Ватные шарики и изделия из хлопчатобумажной ткани :

ОТВЕТЫ:

1. стерилизуются паровым методом

2. воздушным методом

3. стерилизуются только химическим методом

 

147. Срок хранения стерильных изделий простерилизованных в бумаге меточной непропитанной :

ОТВЕТЫ:

1. 20 суток

2. 3 суток

3. 1 день

148. Выбор метода стерилизации зависит от :

ОТВЕТЫ:

1. особенностей стерилизуемого изделия

2. степени загрязненности изделия

 

149. Срок хранения изделий в упаковке из двухслойной бумаги крепированной для медицинских целей :

ОТВЕТЫ:

1. 20 суток

2. 3 суток

3. 7 дней

 

150. При температуре окружающей среды выше 25 С рабочий раствор азопирама используется :

ОТВЕТЫ:

1. в течение 30 – 40 минут

2. в течение 1 2 часов

 

151.Режим стерилизации при воздушном методе :

ОТВЕТЫ:

1. 180 градусов — 60 минут

2. 180 градусов — 2,5 часа

3. 160 градусов — 60 минут

 

152. Положительная реакция при проведении амидопириновой пробы

ОТВЕТЫ:

1. бывает при наличии остатков крови

2. может быть при наличии остатков лекарственных средств

3. при наличии остатков моющего средства

 

153. Режим предстерилизационной очистки при использовании средства «Биолот» : ОТВЕТЫ:

1. 40 градусов – 15 минут

2. 50 градусов — 15 минут

3. 20 градусов — 5 минут

 

154. Моющий раствор может подогреваться до 6 раз при использовании порошка : ОТВЕТЫ:

1. Лотос, Лотос – автомат

2. Айна, Астра, Маричка

3. Биолот

4. Зифа

5. Луч

 

155. Для приготовления моющего комплекса берут 5 грамм порошка, до 1 литра воды и :

ОТВЕТЫ:

1. 3 % перекись водорода 156 мл.

2. 6 % перекись водорода 78 мл.

3. 3 % перекись водорода 50 мл.

 

156. Средство “Зифа” предназначено для предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения:

ОТВЕТЫ:

1. ручным способом

2. механизированным способом

 

157. Средство «Зифа» в процессе использования можно подогревать:

ОТВЕТЫ:

1. дважды до температуры 50 С

2. 6 раз до температуры 40 С

 

158. Дезинфекция изделий медицинского назначения проводится при режиме:

ОТВЕТЫ:

1. 6 % перекись водорода – 60 минут

2. 6 % перекись водорода – 2,5 часа

 

159. 20 % спиртовой раствор хлоргексидина это:

ОТВЕТЫ:

1. гибитан

2. сайдекс

3. пресепт

 

160. Комплекс мер по предупреждению попадания микробов в рану при медицинских манипуляциях это:

ОТВЕТЫ:

1. асептика

2. антисептика

3. заключительная дезинфекция

4. текущая дезинфекция

 

161.При лечении перелома важнейшей задачей является

ОТВЕТЫ:

1. правильно сопоставить костные отломки

2. фиксировать костные отломки после сопоставления

3. достичь нормального функционирования конечностей

 

162. Наиболее важной задачей ортопедической помощи является

ОТВЕТЫ:

1. предотвращение- контрактурных деформаций

2. предотвращение мышечного спазма

3. стремитьсяк уменьшению подвижности сустава

4. укреплять сустав

 

163.Кожное вытяжение

ОТВЕТЫ:

1. это введение гвоздя в мягкие ткани

2. производится посредством давления, создаваемое врачом (т.е. вытяжение производится усилием врача)

3. накладывается на кожу

4. накладывается непосредственно на скелетную систему

 

164. При ходьбе на костылях вес пациента переносится с помощью:

ОТВЕТЫ:

1. здоровых конечностей

2. ладоней рук

3. плечевых суставов

4. мышц плеча

5. подмышечной впадины

 

165. Треножные костыли:

ОТВЕТЫ:

1. используются пациентами с пораженными нижними конечностями

2. имитируют модель нормальной походки

3. имитирую походку на двух конечностях

4. могут быть легко приспособлены к пациенту

 

166. Перед тем, как пациент начнет ходить на костылях, сестра обязана:

ОТВЕТЫ:

1. измерить пациента для правильного подбора костылей

2. научить его правильной походке

3. научить пациента отталкивающим упражнениям

4. поощрять при неудачных упражнениях

 

167. Ухаживая за больными с переломом, сестра должна предотвратить образование контрактуры. Контрактура?

ОТВЕТЫ:

1. является результатом растяжения мышц

2. образуется если матрац слишком жесткий

3. является следствием длительного, порочного положения конечности

 

168. Послеоперационными осложнениями, возникающими впервые 24 часы после операции на кости, является?

ОТВЕТЫ:

1. задержка мочи

2. тромбофлебит

3. жировая эмболия

 

169. У пациента с остеосаркомой обычно выявляется:

ОТВЕТЫ:

1. низкий сахар крови

2. повышения щелочной фосфотазы

3. высокий, сахар крови

 

170. Лучшим методом диагностики костной опухоли является:

ОТВЕТЫ:

1. рентгенодиагностика

2. посев, крови

3. исследование костной мозоли

4. биопсия

 

171. Холодный абсцесс является симптомом:

ОТВЕТЫ:

1. туберкулезиого артрита

2. остемиоелита

3. ревмотоидного артрита

4. полиартрита

 

172. Диагностика суставного туберкулеза производится-с помощью:

ОТВЕТЫ:

1. посева культуры

2. рнтгенодиагностики

3. внутрикожной пробы

 

173. Костный туберкулез поражает чаще всего:

ОТВЕТЫ:

1. трубчатые кости

2. ребра

3. бедро

4. позвоночник

5. плечо

 

174. Для туберкулеза позвоночника характерно:

ОТВЕТЫ:

1. быстрое начало

2. ночные поты

3. боли в спине

4. постепенное начало

 

175. Осложнением туберкулеза позвоночника является:

ОТВЕТЫ:

1. поражение грудной клетки

2. ночные поты

3. ночные приступы

4. образование абсцесса

 

176. Костный или суставной туберкулез может проявляться только?

ОТВЕТЫ:

1. тендо –синовиитом

2. бурситом

3. артритом

4. остемиелитом

 

177. Синдактилия – это:

ОТВЕТЫ:

1. порок развития кости

2. укорочение мышц

3. наличие добавочных пальцев

4. сращение двух или больше пальцев руки или ноги

 

178. Ухаживая за больным, находящимся на вытяжении, медсестра:

ОТВЕТЫ:

1. может поверуть больного при уходе за ним

2. не должна поворачивать больного при ходе

3. может положить подушки под голову больного

179.Иммобилизация при переломе костей предплечья осуществляется:

ОТВЕТЫ:

1. от кончиков пальцев до верхней трети плеча

2. от основания пальцев до верхней трети плеча

3. от лучезапястного сустава до верхней трети плеча

180. Иммобилизация при переломе костей голени осуществляется:

ОТВЕТЫ:

1. от кончиков пальцев до нижней трети бедра

2. от головок плюсневых костей до верхней трети бедра

3. от конников пальцев до верхней трети бедра

4. от кончиков пальцев до подмышечной впадины

 

181.Иммобилизация при переломе плечевой кости осуществляется:

ОТВЕТЫ:

1. от кончиков пальцев до верхней трети плеча

2. от основания пальцев до лопатки с больной стороны

3. от кончиков пальцев до лопатки со здоровой стороны

 

182. Иммобилизация при переломе бедренной кости осуществляется:

ОТВЕТЫ:

1. от кончиков- пальцев до пояса

2. от кончиков пальцев до подмышечной впадины

3. от головок плюсневых костей до подмышечной впадины

 

183. Кровоостанавливающий жгут летом накладывается на время:

ОТВЕТЫ:

1. до 2-х часов

2. до 1 часа

3. до 30 минут

4. до 15 минут

 

184. При ожогах кистей обеих рук площадь ожогов составляет:

ОТВЕТЫ:

1. 1 %

2. 2 %

3. 3 %

4. 4 %

5. 6 %

 

185. При ожоге ступни и голени правой ноги площадь ожогов составляет:

ОТВЕТЫ:

1. 5 %

2. 9 %

3. 18 %

4. 20 %.

 

186. При ожоге кисти правой руки площадь ожога составляет:

ОТВЕТЫ:

1. 1%

2. 2 %

3. 4 %

4. 6%

 

187. При ожоге лица, волосистой части головы и шеи у взрослого площадь ожогов составляет:

ОТВЕТЫ:

1. 9 %

2. 18%

3. 20 %

 

188. При ожоге лица, волосистой части головы и шеи у годовалого ребенка площадь ожогов составляет:

ОТВЕТЫ :

1. 9 %

2. 18 %

3. 20 %

4. 25%

 

189. Показанием для плевральной пункции при травмах грудной клетки является:

ОТВЕТЫ:

1. проникающее ранение грудной клетки

2. подкожная энфизема больного с переломами ребер

3. открытый пневмоторакс

4. напряженный пневмотаракс

 

190. Пункция плевральной полости с целью удаления из нее воздуха производится:

ОТВЕТЫ:

1. во II межреберье по переднеподмышечной линии

2. во II межреберье по среднеключичной линии

3. в IV межреберье по переднеподмышечной линии

4. в VII межреберье по задней подмышечной линии

 

191. Пункция плевральйой полости с целью удаления из нее крови производится: ОТВЕТЫ:

1. в II межреберье по среднеключичной линии

2. в IV межреберье по передней подмышечной линии

3. в VII — VIII межреберье по задней подмышечной лнии

4. в IX-Х межреберье по задней подмышечной линии

 

192.Кожу вокруг раны обрабатывают 3 % раствором йода в радиусе не менее:

ОТВЕТЫ:

1. 5 см

2. 10 см

3. 20 см

4. 30. см

 

193. При переломах ребер показано:

ОТВЕТЫ:

1. спиральная повязка на грудную клетку

2. повязка Дезо

3. крестообразная повязка на грудную клетку

4. наложение фиксирующей повязки не показано

 

194. Для циркулярной блокады места перелома применяют новокаин:

ОТВЕТЫ:

1. 0,25 %

2. 0,5 %

3. 2 %

4. 1 %

 

195. При вскрытии панариция в амбулаторных условиях лучший обезболиванием является:

ОТВЕТЫ:

1. по Лукашевичу-Оберсту

2. местная инфильтрационная новокаином

3. введение п/к промедола 1% — 1,0

4. хлорэтилом

 

196. Эффективная инфузионная среда применяемая при травматическом шоке:

ОТВЕТЫ:

1. гидролизин

2. гемодез

3. полиглокин

4. раствор Рингера

 

197. Осложнение калькулезного холецистита:

ОТВЕТЫ :

1. перфорация желчного пузыря

2. острый панкреатит

3. эмпиема желчного пузыря

4. механическая желтуха

 

198. Первая помощь при открытом пневмотораксе:

ОТВЕТЫ:

1. блокада места перелома ребер

2. обезболивание наркотиками

3. наложение окклюзионной герметизирующей повязки

4. коникотомия

5. введение антибиотиков

 

199. Существует реальная угроза воздушной эмболии при кровотечении:

ОТВЕТЫ:

1. артериальном

2. капиллярном

3. ранение вен шеи

4. ранение артерий шеи

 

200. Травма — это :

ОТВЕТЫ:

1. нарушение какой-либо жизненноважной системы организма, чаще всего двигательной

2. нарушение анатомической целостности тканей или органов, вызванное воздействием различных факторов внешней среды

3. острое заболевание, вызванное неблагоприятным воздействием факторов среды

 

Стерилизация. Виды, методы, цели, задачи. ЦСО. Устройство, функции. — КиберПедия

Внимательно изучите предложенный теоретический материал и дайте ответы на следующие вопросы:

1. Стерилизация, цели стерилизации, документы, регламентирующие стерилизацию в ЛПУ.

2. Методы стерилизации.

3. Паровой метод стерилизации, режимы, сроки сохранения стерильности. Материалы, подвергаемые стерилизации паровым методом. Индикаторы стерильности парового метода стерилизации. Понятие ЦСО. Функции.

4. Воздушный метод стерилизации, режимы, сроки сохранения стерильности. Материалы, подвергаемые воздушному методу стерилизации. Индикаторы стерильности воздушного метода стерилизации.

5. Гласперленовая стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков.

6. Химический метод стерилизации. Особенности проведения данного метода. Недостатки химического метода стерилизации.

7. Газовый метод стерилизации. Особенности данного метода.

8. Контроль качества стерильности.

 

Выполните следующие тестовые задания:

1. Умерщвление микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития: патогенных и непатогенных, в том числе спорообразующих, обладающих высокой устойчивостью к конкретному стерилизующему средству – это ____________________

2. Установите последовательность обработки изделий многоразового использования

А._____________________________________________________________________

Б._____________________________________________________________________

В._____________________________________________________________________

 

3. Документы, регламентирующие стерилизацию

А._____________________________________________________________________

Б._____________________________________________________________________

В._____________________________________________________________________

 

4. Укажите методы стерилизации

А._________________________________________

Б._________________________________________

 

5. К физическом методам стерилизации относят

А. Паровой

Б. Газовый

В. Воздушный

 

6. К химическим методам стерилизации относят

А. Газовый

Б. 6% перекись водорода

В. Горячим воздухом

 

7. Как называется прибор, применяемый для паровой стерилизации

А. Сухожаровый шкаф

Б. Автоклав

В. Гласперленовый стерилизатор

 

8. Укажите режим стерилизации, применяемый для металлов

А. 132°, 2,2 атм – 20 мин

Б. 180° — 60 мин

В. 120 °, 1, 1 атм, 45 мин

 

9. В стерилизационных коробках с фильтром изделия сохраняют стерильность в течение

А. 3 суток

Б. рабочей смены

В 20 суток

 

10. В стерилизационных коробках без фильтра изделия сохраняют стерильность в течение

А. 3 суток

Б. рабочей смены

В 20 суток

 

11. Стерилизацию изделий горячим воздухом производят

А. В металлических лотках

Б. В биксах

В. В открытых емкостях

 

12. Режим стерилизации в сухожаровом шкафу изделий из стекла

А. 132°, 2,2 атм – 20 мин

Б. 180° — 60 мин

В. 120 °, 1, 1 атм, 45 мин

 

13. Воздушный стерилизатор загружают при температуре стерилизационной камеры

А. 20-30°С

Б. 40-50°С

85°С

 

14. После стерилизации горячим воздухом стерильные изделия

А. Используются сразу

Б. Выкладываются на «стерильный стол» на 6 часов

В. Сохраняют стерильность 3 суток

 

15. При организации маникюрного салона целесообразно приобрести

А. Сухожаровый шкаф

Б. Автоклав

В. Гласперленовый стерилизатор

 

16. При химической стерилизации, стерилизуемые изделия, погружаемые в раствор должны быть

А. Влажными

Б. Сухими

В. Не имеет значения

 

17. После стерилизации химическим методом, простерилизованные изделия сохраняют стерильность

А. сутки после стерилизации

Б. 6 часов после стерилизации

В. 3 суток в биксе.

 

18. Методы контроля режимов стерилизации

А. _____________________________________________

Б.______________________________________________

В._____________________________________________

 

19. Для контроля стерилизации применяются индикаторы

А._____________________________

Б._____________________________

 

20. Как называется прибор, представленный на рисунке. Для какого метода стерилизации применяется данный прибор.

 

_______________________________________

21. Как называется прибор, представленный на рисунке. Для какого метода стерилизации применяется данный прибор.

 

_______________________________________

 

22. Как называется индикатор стерильности, представленный на рисунке. Для какого режима стерилизации он используется

_____________________

 

23. Заполните таблицу

Метод
стерилизации
Стерилизующий агент Стерилизуемые изделия Срок сохранения стерильности
Воздушный
 
 
     
Паровой
 
 
     
Химический
 
 
     
Газовый
 
 
     

 

Решите ситуационные задачи.

1. М/с проводит стерилизацию стоматологического инструментария в сухожаровом шкафу в открытой емкости (лотках). Режим стерилизации: 160° — 60 мин. Правильно ли проводится стерилизация? Ответ обоснуйте.

 

2. В ЦСО проводится стерилизация медицинского инструментария в автоклаве при температуре 132° — 2,2 атм. – 20 мин. без контроля качества стерилизации. Укажите индикатор стерильности. Какие материалы стерилизуют при данном режиме?


 

3. Укажите возможные режимы стерилизации стекла. Назовите индикаторы стерильности.

 

Стерилизация. Способы, методы стерилизации.

Стерилизация –это комплекс мероприятий, направленных на полное уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на медицинских инструментах, а также их спор и продуктов жизнедеятельности (токсинов).

 

Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистыми оболочками и могут вызвать их повреждение.

Стерилизация проводится после дезинфекции и ПСО, является завершающим этапом обработки изделий медицинского назначения.

Методы стерилизации:

Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздушный, в среде нагретых шариков) и химическими (применение растворов химических средств, газовый) методами.

При промышленной стерилизации медицинских изделий однократного применения используется радиационный метод, действующим агентом является ионизирующее γ – и β – излучение.

Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

 

Режим стерилизации Применение Срок сохранения
стерильности
Давление
пара
(МПа)
Температура,
0 С
Время
выдержки
(мин)
0,2 МПа 1320 С 20 мин Для изделий из коррозионностойкого металла, стекла, текстильного материала, резины СК без фильтра -3 сут,
упаковка из бязи-3 сут,
крепированная бумага — 3 сут.
СК с фильтром — 20 сут.
0,11МПа 1200 С 45 мин Для изделий из резины, латекса
и полимерных материалов

Паровой метод стерилизации (водяной насыщенный пар под избыточным давлением):

Воздушный метод стерилизации (сухой горячий воздух):

Режим стерилизации Применение Срок сохранения
стерильности
Температура,
0 С
Время
выдержки (мин)
1800 С 60 мин Для изделий из металла, стекла, силиконовой резины В упаковке — 3 сут,
Изделия без упаковки используются сразу после стерилизации.
1600 С 150 мин

 

Порядок работы на воздушных стерилизаторах:


1.Загрузка инструментов производится в холодный стерилизатор.

2.Нагревание стерилизатора.

3.Стерилизация: отсчет времени стерилизации начинать от достижения нужной температуры стерилизации (1800С) до истечения срока экспозиции (60 минут).

4.Охлаждение до 40-500С стерилизатора.

5.Разгрузка стерилизатора.

Химический метод стерилизации:

Стерилизация химическим методом проводится при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

По окончании срока экспозиции изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов). Удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной воде погружением на 5 минут с троекратной сменой воды. Затем изделия помещают в стерильную стерилизованную коробку на стерильную простыню (хранить можно 3 суток) или выкладывают на стерильный инструментальный стол для использования.

Стерилизующий
агент
Режим стерилизации Применение
Температура,
0 С
Время выдержки
(мин)
Пероксид водорода 6%
Пероксид водорода 6%
18 0С
50 0С
360 мин
180 мин
Для изделий из
коррозионностойкого металла,
стекла, резины, полимерных
материалов.
Дезоксон-1 (l % р-р по
надуксусной кислоте)
18 0С 45 мин

Газовый метод стерилизации:

Стерилизация производится в стационарном газовом стерилизаторе.

Рекомендуется выполнять газовую стерилизацию ряда медицинских изделий (оптическое и радиоэлектронное оборудование, кардиостимуляторы, режущие и колющие инструменты с микронной заточкой, кетгут, предметы одноразового использования и изделия из термонеустойчивых пластмасс).

СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ПОНЯТИЕ, МЕТОДЫ

Тема 14.


СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ПОНЯТИЕ, МЕТОДЫ


План.


ЦСО: устройство, функции.


Понятие «стерилизация».


Методы и режимы стерилизации.


Паровой и горячевоздушный методы стерилизации.


Виды контроля режима и качества стерилизации.


Сроки сохранения стерильности.

 

Стерилизация проводится в специальном отделении, которое называется центральным стерилизационным отделением (ЦСО).

В ЦСО проводится:

1. Предстерилизационная очистка мединструментария.

2. Стерилизация:

а) мединструментария

б) белья и перевязочного материала

в) хирургических перчаток и резиновых изделий

 

Задачи ЦСО:

1. Полноценная стерилизация инструментов и материалов с помощью современных методов очистки и стерилизации.

2. Обеспечение всех отделений необходимым количеством стерильных материалов.

 

Принципы эффективной работы ЦСО:

1. Облегчение труда персонала отделений.

2. Уменьшение числа постинфекционных осложнений.

3. Экономия электроэнергии.

Структура стерилизационного отделения

 

Нестерильная зона
1. Приемное помещение
1.1. Прием. (фото 1)
1.2. Проверка исправности
и комплектности (фото 2)
(брокераж).
2. Моечное отделение
(фото 3)
2.1. Замачивание и мытье
(предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения)
(фото 4)
2.2. Механическая очистка.
. (фото 5)
2.3. Промывание проточной водой. (фото 6)
2.4. Промывание дистиллированной водой. (фото 6)
2.5. Сушка. (фото 7)
2.6. Постановка проб.
(фото 8, 9)
3.Упаковочное отделение
 
3.1. Комплектование.
3.2. Упаковка (или
укладка в биксы).(фото 2)
При работе необходимо использовать латексные перчатки, пластиковый фартук, маску и защитный экран (очки)!
 
Стерильная зона
4.Аппаратное отделение
 
4.1. Суховоздушные и паровые стерилизаторы.
(фото 10, 11, 12, 13)
4.2. Наблюдение за режимами стерилизации.
4.3. Выгрузка.
4.4. Оформление документации.(фото 13. 14)
5.Помещение выдачи
стерильных материалов
5.1. Хранение стерильных материалов.(фото 15)
5.2. Выдача стерильных материалов в отделение.(фото 16, 17)
Для контроля работы стерилизации ведутся специальные журналы (фирмы «Винар»).
Перед выемкой материала должна быть включена бактерицидная лампа на 30 минут!
Для выемки стерильного материала необходимо иметь чистый, сменяемый не реже 1 раза
в смену, комплект спецодежды: халат, матерчатые перчатки.
(Эти мероприятия дают возможность медработникам соблюдать элементы асептики.
Асептика-комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания инфекций в рану, в организм человека.
Антисептика- комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение или подавление роста и развития микроорганизмов.)
Вспомогательные помещения

  1. Мастерская по ремонту и заточке инструментов.
  2. Подготовка биксов с бельем и перевязочным материалом.
  3. Помещение для хранения уборочного материала, инвентаря.
  4. Помещение для персонала.
  5. Санузел и душевая.

 

       

 



Стерилизация

Цель:Профилактика внутрибольничного инфицирования пациентов и профес-сионального инфицирования персонала. Удаление всех видов микроорганизмов и спор.

 

Показания: критические и полукритические предметы

 

Существуют различные методы стерилизации (ОСТ 42-21-2-85):

1. Физический метод:

А) паровой

Б) воздушный

2. Химический метод:

А) газовый

Б) с использованием химических растворов

3. Радиационный метод

 

В практике работы лечебных учреждений наиболее широкое распространение получил физический метод стерилизации с использованием насыщенного пара и сухого горячего воздуха.

Преимущества:

· надежность, удобство и оперативность работы персонала;

· возможность использования разных видов упаковок, с целью удлинения сроков стерильности изделий;

· отсутствие необходимости удаления остатков химичских средств с изделий.

 

 

Методы стерилизации

           
     
 

физический радиационный химический

(термический)

— паровой; — газовый;

— воздушный; — озоново-воздушный;

— инфракрасный; — с использованием хим. р-ров

— гласперленовый

Физические методы


В) Гласперленовый метод

Метод предназначен для быстрой стерилизации небольших цельнометаллических инструментов, не имеющих полостей, каналов и замковых частей.

Метод крайне прост — инструмент погружается в среду мелких стеклянных шариков, нагретых до температуры 190 — 2900С (таким образом, чтобы над рабочей поверхностью инструмента оставался слой шариков не менее 10 мм) на 20 — 180 секунд, в зависимости от размера и массы инструмента.

Преимущества метода — короткое время стерилизации и отсутствие расходных материалов.

Химические методы


Радиационный метод

Таким методом стерилизуют изделия из термолабильных материалов в т.ч. изделия одноразового использования. Упаковка – бумага, полиэтилен. В этих упаковках стерильность может быть сохранена в течение многих лет, но она также ограничена. На упаковке указывается: дата, год стерилизации, а под ними – дата и год реализации.

В основном этот метод используется в медицинской промышленности.

Стерилизантом при радиационной стерилизации является проникающее гамма — или бета -излучение. Эффективность радиационной стерилизации зависит от общей дозы излучения и не зависит от времени. Средняя летальная доза для микроорганизмов всегда одинакова, проводится ли облучение при низкой интенсивности в течение длительного промежутка времени или недолго при высокой интенсивности излучения. Доза 25 кГр (2,5 Мрад) надежно гарантирует уничтожение высокорезистентных споровых форм микроорганизмов.

Радиационная стерилизация обладает рядом технологических преимуществ: высокая степень инактивации микроорганизмов, возможность стерилизации больших партий материалов, автоматизация процесса, возможность стерилизации материалов в любой герметичной упаковке (кроме радионепрозрачной). Немаловажным обстоятельством является то, что температура стерилизуемых изделий в ходе стерилизации не повышается.

Тема 14.


СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ПОНЯТИЕ, МЕТОДЫ


План.


ЦСО: устройство, функции.


Понятие «стерилизация».


Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:

Режим Стерилизации Мединструментов В Воздушном Стерилизаторе – Telegraph

👉🏻👉🏻👉🏻 ВСЯ ИНФОРМАЦИЯ ДОСТУПНА ЗДЕСЬ ЖМИТЕ 👈🏻👈🏻👈🏻

Домой Развлечения Воздушный метод стерилизации изделий медицинского назначения: преимущества и недостатки

Пожалуйста, авторизуйтесь чтобы добавить комментарий.
Я разрешаю создать мне учетную запись
Когда вы первый раз заходите с помощью соцсетей, мы получаем публичную информацию из вашей учетной записи, предоставляемой провайдером услуги соцсети в рамках ваших настроек конфиденциальности. Мы также автоматически получаем ваш e-mail адрес для создания вашей учетной записи на нашем веб сайте. Когда она будет создана, вы будете авторизованы под этой учетной записью.

новые последующие комментарии
новые ответы на мои комментарии

Write CSS OR LESS and hit save. CTRL + SPACE for auto-complete.
Перед использованием любых медицинских приборов и принадлежностей в обязательном порядке их необходимо простерилизовать. Издавна основным методом обработки было кипячение, сегодня инструменты обеззараживают разными способами, в числе которых воздушный метод стерилизации.
Стерилизация изделий медицинского назначения — это процедура, в процессе которой путем физического или химического воздействия с поверхности инструментов удаляются все виды вирусов, вредоносные микробы и их споры. Медицинский прибор считается стерильным в случае, когда его биологическая нагрузка равна или менее 10-6.
Все способы стерилизации, в том числе и метод воздушной обработки, используются для обработки изделий из стекла или металла, которые контактировали с кровью человека или животного, поверхностью ран, слизистой оболочкой.
Воздушная стерилизация изделий медицинского назначения состоит из трех взаимосвязанных процессов:
Стоит отметить, что обработка предметов медицинского назначения горячим сухим воздухом проводится только при условии последовательного соблюдения всех перечисленных этапов. Несоблюдение норм одного из шагов обработки не гарантирует стерильности инструментов, на них могут остаться микробы, которые в результате контакта со слизистой и открытыми ранами неизбежно приведут к заражению. Зачастую воздушный метод путают с паровой стерилизацией, однако, несмотря на то, что они похожи, у них есть некоторые различия.
Качественная стерилизация медицинских инструментов требует соблюдения ряда мероприятий:
Процесс стерилизации медицинских инструментов начинается после завершения операции и продолжается вплоть до момента их упаковки на хранение. Соблюденная по всем требованиям дезинфекция обеспечивает стерильность и продлевает срок эксплуатации инструментов.
Все виды стерилизации, в числе которых и воздушный метод, выполняются по следующему алгоритму:
Данный способ очистки применяется для обработки медицинских принадлежностей, деталей приборов, которые изготовлены из металлов с антикоррозийным покрытием, стеклянных элементов с маркировкой 200 °С, резиновых медицинских принадлежностей.
Перед процедурой требуется выполнить предстерилизационную очистку, а затем высушить изделия при температуре +85 °С. Для дезинфекции необходим специальный воздушный стерилизатор (сухожар). Полный цикл процесса стерилизации занимает приблизительно 2,5 часа.
Одним из важнейших этапов является предстерилизационная обработка, она подразумевает мероприятия, во время которых с поверхности медицинских изделий удаляются загрязнения, возникшие в процессе использования. В результате процесс стерилизации проходит более эффективно, а риск протекания пирогенных реакций сведен к минимуму.
Подготовка выполняется следующим образом:
В крупных лечебных учреждениях предстерилизационная очистка инструментов проводится механическим способом. Все предметы помещают в специально предназначенное оборудование, главной функцией которого является дезинфекция и предстерилизационная очистка. Для этого вида работ применяются дезинфицирующие составы, которые также обладают моющим действием. Если очистка проводится термическим способом, то достаточно использования только моющего средства. К высокотехнологичному оборудованию может подбираться определенная группа средств.
На сегодняшний день предстерилизационная обработка механическим способом является приоритетной. Главным образом потому, что она практически исключает возможность заражения медперсонала при работе с инструментами, экономит время на обработке большого количества предметов, минимизирует вероятность повредить дорогостоящий инструмент.
Воздушный метод применяется с использованием разных режимов. Их характерные отличия — это температура и время воздействия. Именно возможность применения разных режимов делает данный метод стерилизации таким востребованным.
Чаще всего для дезинфекции используется основной режим стерилизации воздушным методом. Он заключается в 60-минутной обработке при температуре 180 °С.
Также доступен другой режим. Устанавливается температура 200 °С, продолжительность составляет 30 минут.
Самыми востребованными на рынке моделями считаются:
Время дезинфекции для предметов из разного материала:
Для корректной стерилизации воздушным методом принадлежностей важно соблюдать следующие условия:
Если обработка предмета в упаковке проводилась воздушным методом стерилизации, то стерильность сохраняется в течение 24 часов. Если речь идет о дезинфекции инструментов воздушным методом без упаковки, то их используют сразу после окончания процесса обработки.
Обработка горячим сухим воздухом проводится с использованием воздушного стерилизатора. Существует несколько правил, которые в обязательном порядке требуется соблюдать во избежание низкокачественной обработки принадлежностей:
Перед использованием стерилизатор не нужно разогревать, все предметы размещаются внутри холодного прибора. Затем он приводится в действие, устанавливается температура стерилизации и время.
Когда температура в оборудовании поднялась до 180 °С, активируется таймер прибора на 60 минут. По истечении заданного времени воздушный стерилизатор выключают и ждут, когда температура опустится до 40-50 °С. После этого стерильные медицинские инструменты вынимают.
По сравнению с паровым способом стерилизация воздушным способом имеет ряд преимуществ:
Как и любой другой способ стерилизации, несмотря на преимущества, обработка сухим горячим воздухом имеет и ряд отрицательных моментов.
Недостатки воздушного метода стерилизации:
В заключение стоит отметить, что несмотря на все преимущества и недостатки метода воздушной стерилизации, в последнее время все больше современных медицинских учреждений переходят именно на такой способ дезинфекции предметов.
Нашли опечатку? Выделите фрагмент и отправьте нажатием Ctrl+Enter
Информационно-развлекательный портал «Klevo.Net» © 2004-2020

Гинекологические комбайны

Производители

Гинекологические кресла

Вид кресла
Производители

Датчики УЗИ

Аналоги
Б/У
Вид
Производители

Кольпоскопы

Вид
Производители

ЛОР-комбайны

Atmos
Chammed
Dantschke
Dixion
Heinemann
Смотреть все

Медицинские светильники

Вид
Производители

Операционные столы

Вид
Производители
Тип привода

Расходные материалы для гинекологии

Гинекологические зеркала
Гинекологические наборы для осмотра
Урогенитальные зонды

УЗИ аппараты

Вид
Исследования
Класс
Производитель
Состояние
Смотреть все

Фетальные мониторы

Производители

Хирургические отсасыватели

Вид
Производители

Электрохирургические аппараты (ЭХВЧ)

Аргоноплазменный коагулятор
Биполярный электрокоагулятор
Монополярный электрокоагулятор
Производители
Радиочастотные аппараты
Смотреть все

Расходные материалы для гинекологии

Электрохирургические аппараты (ЭХВЧ)

Электрохирургические аппараты (ЭХВЧ)

Электрохирургические аппараты (ЭХВЧ)

Доставка в сервис
Лицензии и сертификаты
Сотрудничество
Цены и оплата

Вакансии
Выкуп оборудования
Лицензии и сертификаты
Мероприятия для гинекологов
О нас
Оплата и доставка
Политика конфиденциальности
Пользовательское соглашение

Валюта

€ Euro
$ US Dollar
р. Рубль

Ассортимент под любую задачу и бюджет!

Сервис
Сервис

Воздушная стерилизация. Температура в сухожаре

Воздушная стерилизация. Температура в сухожаре

Вызвать инженера Заказать консультацию

Мною прочитаны и я даю согласие с документом Политика конфиденциальности

Мною прочитаны и я даю согласие с документом Политика конфиденциальности
ЛОР комбайны (рабочие места), кресла, аудиометры, электрохирургическое и лазерное ЛОР-оборудование, инструмент и расходные материалы. Комплексное оснащение ЛОР-кабинетов для лицензирования, модернизация, сервис и техническое сопровождение.
Принцип работы воздушного (сухожарового) стерилизатор а заключается в обработке материалов горячим воздухом. Никакие дополнительные стерилизующие агенты не используются.
Метод стерилизации воздухом основан на разрушающем воздействии высокой температуры по отношению к микроорганизмам и спорам. Высокое давление или вакуум в данном случае не требуются, но во время стерилизации рабочая камера сухожара может оставаться герметичной.
Воздушная стерилизация технически проще автоклавирования, никакие компрессоры, водяные контуры или сложные системы датчиков не применяются. 
Используются только сенсоры температуры. В более дорогих моделях могут присутствовать датчики двери и некоторые другие системы защиты. Но как правило, указанные датчики и контроллер ТЭНа с цепями питания — вся электроника, которую можно встретить в бюджетных воздушных стерилизаторах (сухожарах).
Воздушная стерилизация подходит для хирургических, гинекологических, стоматологических, косметологических инструментов из металла, огнеупорного стекла, силикона.
Воздушная стерилизация в сухожаре запрещена для жидкостей, питательных сред, резины и синтетических мате­риалов.
Свяжитесь с нами: ответим на любые вопросы по сухожарам и стерилизационному оборудованию. Поможем проверить текущее состояние. Проведем
Воздушный метод стерилизации изделий медицинского назначения…
Воздушный метод стерилизации изделий медицинского назначения… | Klevo.Net
Температура и режимы работы сухожара ( воздушный стерилизатор ) | Cordismed
Воздушный метод стерилизации
Преимущества и особенности воздушной стерилизации медицинского оборудования
Маникюр Аппаратом Фото Поэтапно
Пилинг Для Кожи Головы Оллин Отзывы
Наконечник Для Маникюрного Аппарата
Режим Стерилизации Мединструментов В Воздушном Стерилизаторе

Методы стерилизации среды и воздуха (со схемой)

Прочтите эту статью, чтобы узнать о различных методах стерилизации сред и воздуха.

Стерилизация питательных сред и газов :

Для успешного брожения абсолютно необходимо обеспечить:

а. Стерильность питательных сред.

г. Стерильность входящего и выходящего воздуха.

г.Стерильность биореактора.

г. Предотвращение загрязнения во время брожения.

Биореактор можно стерилизовать, уничтожая организмы с помощью тепла / химикатов / излучения или иногда с помощью физических процедур, таких как фильтрация.

Стерилизация среды и воздуха обсуждается ниже:

1. Стерилизация питательных сред :

Компоненты питательной среды, воды и контейнеров способствуют заражению вегетативными клетками и спорами.Перед использованием в ферментации среда должна быть очищена от загрязнений. Стерилизация среды чаще всего достигается путем применения тепла и, в меньшей степени, другими способами (физическими методами, химической обработкой и облучением).

Тепловая стерилизация :

Тепловая стерилизация — это наиболее широко используемый метод стерилизации. Качество и количество загрязнения (т. Е. Тип и количество микроорганизмов), состав среды, ее pH и размер взвешенных частиц являются важными факторами, влияющими на успех тепловой стерилизации.

Обычно вегетативные клетки разрушаются при более низкой температуре за короткое время (около 60 ° C за 5-10 минут). Однако для разрушения спор требуется более высокая температура и относительно более длительное время (около 80 ° C в течение 15-20 минут). Наиболее термостойкими являются споры Bacillus stearothermophilus. Фактически, этот организм используется для проверки стерильности оборудования для ферментации.

Физические методы :

Используются физические методы, такие как фильтрация, центрифугирование и адсорбция (на ионообменниках или активированном угле).Среди них наиболее широко используется фильтрация. Некоторые компоненты (витамины, компоненты крови, антибиотики) питательных сред термолабильны и, следовательно, разрушаются при тепловой стерилизации. Такие компоненты среды полностью растворяются (абсолютно необходимы, иначе они будут удалены вместе с микроорганизмами) и затем подвергаются стерилизации на фильтре.

Есть несколько ограничений технологии фильтрации:

1. Применение высокого давления в фильтрации непригодно для промышленных предприятий.

2. Некоторые компоненты среды могут быть потеряны из среды во время фильтрации.

Иногда применяется комбинация фильтрации и тепловой стерилизации. Например, вода, используемая для приготовления сред, фильтруется, а концентрированный питательный раствор подвергается тепловой стерилизации. Теперь добавляется фильтрованная вода для соответствующего разбавления среды. Химические методы (с использованием дезинфицирующих средств) и лучевые процедуры (с использованием УФ-лучей, γ-лучей, рентгеновских лучей) обычно не используются для стерилизации сред.

Стерилизация партии:

Питательные среды подвергают стерилизации при 121 ° C в порционных объемах в биореакторе. Стерилизация партии может выполняться путем впрыска пара в среду (прямой метод) или нагнетания пара во внутренние змеевики (непрямой метод). Для прямой стерилизации партии пар должен быть чистым и не содержать всех химических добавок (которые обычно поступают в процессе производства паром).

У серийной стерилизации есть два недостатка:

1.Повреждение питательных сред:

Изменение питательных веществ, изменение pH и изменение цвета питательной среды являются обычными явлениями.

2. Высокое потребление энергии:

Для того, чтобы все содержимое биореактора достигло необходимой температуры (т.е. 120 ° C), требуется несколько часов (2-4 часа). Еще 20-60 минут на собственно процесс стерилизации с последующим охлаждением в течение 1-2 часов. Весь этот процесс требует потерь энергии, поэтому стерилизация партии обходится довольно дорого.

Непрерывная стерилизация :

Непрерывная стерилизация выполняется при 140 ° C в течение очень короткого периода времени от 30 до 120 секунд. (В отличие от периодической ферментации, проводимой при 121 ° C в течение 20-60 минут). Это основано на том принципе, что время, необходимое для уничтожения микроорганизмов, намного меньше при более высокой температуре. Непрерывная стерилизация осуществляется путем прямого впрыска пара или с помощью теплообменников.

В любом случае температура очень быстро повышается до 140 ° C и поддерживается в течение 30–120 секунд. Этапы непрерывного процесса стерилизации и соответствующие температуры показаны на рис. 19.7. Различные стадии: теплообменник, нагреватель, блок поддержания тепла, рекуперация остаточного тепла, охлаждение и ферментер.

В процессе непрерывной стерилизации используются 3 типа теплообменников. Первый теплообменник поднимает температуру до 90-1 20 ° C за 20-30 секунд.Второй теплообменник дополнительно повышает температуру до 140 ° C и поддерживает ее в течение 30-120 секунд. Третий теплообменник снижает температуру за счет охлаждения в течение следующих 20-30 секунд. Фактическое время, необходимое для стерилизации, зависит от размера взвешенных частиц. Чем больше размер, тем больше требуется времени.

Основным преимуществом непрерывной стерилизации является сохранение около 80-90% энергии. Однако ограничение состоит в том, что определенные соединения в среде осаждаются (например,g., фосфат кальция, оксалат кальция) из-за очень высокой разницы температур, которая возникает за очень короткое время между стерилизацией и охлаждением. Культуральная среда, содержащая крахмал, становится вязкой при непрерывной стерилизации и поэтому не используется.

2. Стерилизация воздуха :

Обычно промышленные ферментации проводят при интенсивной и непрерывной аэрации. Для эффективного брожения воздух должен быть полностью стерильным и свободным от всех микроорганизмов и взвешенных частиц.Количество взвешенных частиц и микробов в атмосферном наружном воздухе сильно различается.

Микроорганизмы могут составлять от 10 до 2000 / м 3 , а взвешенные частицы могут составлять от 20 до 100,00 / м 3 . Среди микроорганизмов, присутствующих в воздухе, преобладают споры грибов (50%) и грамотрицательные бактерии (40%). Воздух или другие газы можно стерилизовать фильтрацией, нагреванием, УФ-излучением и газоочисткой. Среди них чаще всего используются тепло и фильтрация.

(a) Стерилизация воздуха с помощью тепла :

В первые годы воздух пропускали через электрически нагреваемые элементы и стерилизовали. Но это довольно дорого, поэтому в наши дни не используется.

(b) Стерилизация воздуха фильтрацией :

Фильтрация воздуха — это наиболее часто используемая стерилизация в ферментационной промышленности.

Глубинные фильтры:

Когда воздух проходит через стекловату, содержащую глубинные фильтры, частицы улавливаются и удаляются (рис.19,8). Этот метод фильтрации в первую очередь включает физические эффекты, такие как инерция, блокирование, гравитация, электростатическое притяжение и диффузия. Фильтры из стекловаты можно подвергать стерилизации паром и использовать повторно. Но есть ограничение на их повторное использование, поскольку стекловата сжимается и затвердевает при стерилизации паром. В последние годы используются фильтрующие картриджи из стекловолокна (которые не имеют ограничений, присущих фильтрам из стекловаты).

Мембранные картриджные фильтры:

Это съемные гофрированные мембранные фильтры, изготовленные из эфира целлюлозы, нейлона или полисульфона.Мембранные картриджные фильтры меньше по размеру, проще в эксплуатации и замене. Самым важным ограничением стерилизации воздуха является отсутствие фильтра, который может удалить бактериофаги. Бактериофаги способны нарушить промышленное брожение. например, бактериофаги препятствуют выработке глутаминовой кислоты Corynebacterium glutamicum.

Стерилизация сухим жаром для дезинфекции

Контроль загрязнения при инкубации клеточных культур

Устранение болезнетворных микробов человека: гигиена vs.бактерии

Чтобы предотвратить заражение нежелательными микробами, необходимо принять соответствующие меры в зависимости от конкретного применения. Медицинские и фармацевтические приложения в исследованиях и на местах различают процессы дезинфекции и стерилизации. Во многих случаях одной дезинфекции недостаточно, если необходимо эффективно уничтожить бактерии, вирусы и споры грибов, поскольку дезинфекция только снижает количество микробов с целью защиты от инфекций.

С другой стороны, когда продукты, изготовленные для медицинского или фармацевтического использования, должны оставаться свободными от патогенных для человека микроорганизмов, стерилизация всех инструментов и инструментов предпочтительнее дезинфекции. Это единственный способ достичь требуемой стабильности процесса для сложных процедур, таких как, например, культивирование клеток в CO2-инкубаторах.

Методы стерилизации

При стерилизации используются как физические, так и химические методы.Поверхности, инструменты и инструменты можно стерилизовать воздействием высоких температур в результате испарения воды (под давлением) или сухого тепла, УФ-излучения, газообразования или химической обработки. Выбор правильного метода стерилизации зависит от свойств материала стерилизуемых предметов (термостойкость, геометрическая форма) и требований, специфичных для конкретного применения (например, отсутствие допустимых остатков), но это также зависит от того, должны ли бактерии, вирусы или споры грибов быть устраненным. Кроме того, следует принимать во внимание любую потенциальную резистентность — все более частое явление, в частности, среди бактерий.

Стерилизация сухим жаром при высоких температурах: максимально возможный уровень безопасности

Стерилизация сухим жаром работает с горячим и сухим воздухом. Это позволяет пользователям надежно уничтожать болезнетворные микробы человека, не оставляя следов. Полная дезактивация достигается за счет воздействия определенной температуры в течение определенного периода времени, например, 180 градусов Цельсия в течение 30 минут. Преимущество этого метода заключается в том, что обеззараживание возможно даже для узких отверстий или труднодоступных полостей в очень сложных конструкциях, которые в противном случае представляют опасность как потенциальные укрытия для микробов.

Установки, используемые для этого метода — сушильные шкафы — работают более рентабельно, чем автоклавы, использующие воду (стерилизация паром), требуют меньше обслуживания и чрезвычайно удобны в использовании. Их широкий температурный диапазон (например, от 5 до 300 градусов Цельсия) означает, что, помимо стерилизации сухим жаром, они также могут использоваться для ряда других функций, например, для сушки или нагрева образцов.

Стерилизация сухим жаром подходит только для материалов, не чувствительных к нагреванию, поскольку в отличие от стерилизации с использованием пара, этот метод требует более высокой температуры для эффективного уничтожения бактерий, вирусов или спор грибов с помощью сухого тепла.Это означает, что, например, можно стерилизовать многоразовые металлические и стеклянные инструменты.

Особые области применения требуют особых мер

Методы стерилизации, доступные в настоящее время для лабораторных инструментов, уже являются высокоразвитыми. Однако в некоторых случаях необходимо также принять меры для эффективного предотвращения загрязнения технологической среды. Эти случаи включают все процедуры, в которых основное внимание уделяется культивированию клеток, например, в исследованиях рака, регенеративной медицине, экстракорпоральном оплодотворении, диагностическом анализе, производстве биосенсоров и многих других.Если культуры клеток, в конечном итоге предназначенные для внешнего или внутреннего использования на людях, заражены микробами, пациенты будут подвергаться очень серьезному риску, который может быть опасным для жизни при некоторых обстоятельствах. Следовательно, очень важно, чтобы все этапы процесса были максимально безопасными, с особым упором на сами интерфейсы процессов. Еще более важной для нас, как производителя камер для моделирования, является необходимость постоянного совершенствования соответствующих мер безопасности, а для вас, пользователя, — применять эти меры на практике, при этом оставаясь в курсе последних технологических разработок.

Культивирование клеток в CO2-инкубаторе

Культивирование клеток выполняется в среде, имитирующей естественные условия инкубации материала. В CO2-инкубаторах подача газа (углекислый газ, кислород, азот) и установка температуры могут быть запрограммированы соответствующим образом и поддерживаться с помощью датчиков. Однако выращиваемые культуры клеток in vitro не имеют собственной защитной системы. Проблема здесь в том, что нежелательные микроорганизмы часто чувствуют себя как дома в тех же условиях, которые идеальны для культур клеток.Например, бактерии семейства Enterobacteriaceae размножаются при температуре 37 градусов Цельсия. Поэтому очень важно поддерживать как можно меньшую микробную нагрузку, принимая эффективные меры гигиены на всех этапах процесса. Это означает, что, помимо тщательной дезинфекции и стерилизации всех используемых поверхностей, сосудов и инструментов, необходимо выбрать правильные единицы, например сушильные шкафы или инкубаторы с CO2 также играют важную роль.

Решение «два в одном»: автоматическая стерилизация для обеспечения безопасности на всех этапах процесса.

В наших инкубаторах с CO2 особое внимание уделяется высокотемпературной стерилизации сухим жаром.Внутреннее пространство инкубатора должно быть стерильным, чтобы культивировать клетки. Чтобы исключить любую возможность заражения, мы интегрировали в наши машины программу автостерилизации при 180 градусах Цельсия (2 часа). Чтобы запустить программу, все, что нужно сделать пользователю, это нажать кнопку после удаления образца. Особенностью наших инкубаторов серии CB является то, что датчик CO2 можно стерилизовать нагреванием, поэтому его не нужно снимать с устройства.

Программа автостерилизации основана на предыдущих спецификациях DIN58947.Информацию о тестировании программы стерилизации, которое необходимо регулярно проводить с использованием биологических индикаторов, можно найти в стандартах DIN EN ISO 11138-4 и DIN EN ISO 18472, которые можно приобрести в издательстве Beuth-Verlag. Издательство также предлагает регулярные учебные курсы по различным аспектам технологий здравоохранения.

Установки BINDER помогают обеспечить стерильную рабочую среду

Оборудование и функции наших машин для культивирования клеток были разработаны для создания стерильной рабочей среды с использованием как стерилизации сухим жаром, так и других дополнительных мер.Установки чрезвычайно удобны в использовании, что исключает ошибки и помогает надежно производить безопасные продукты. Одним из примеров этого является бесшовная конструкция внутренней камеры, которая упрощает выполнение необходимой регулярной дезинфекции протиранием. Для предотвращения образования конденсата используется специальная технология, которая также предотвращает накопление нежелательных микробов. Интеграция стеклянной внутренней двери дает пользователям возможность видеть внутреннюю часть камеры, не пропуская потенциально загрязненный наружный воздух.И последнее, но не менее важное: наши установки включают высокочувствительную автоматическую диагностическую систему для непрерывного мониторинга CO2.

В сочетании с нашими сушильными шкафами, которые доступны в широком ассортименте для удовлетворения различных требований и являются полезным инструментом для стерилизации использованных лабораторных инструментов, эти устройства помогут вам достичь высочайшего уровня безопасности.

Вы в безопасности с инкубаторами Binder CO2, произведенными в Германии.

Мы предлагаем две отдельные серии разных размеров для инкубации ваших клеточных культур.Обе серии обеспечивают функциональность стерилизации сухим жаром внутри устройства и оснащены бесшовной внутренней камерой, технологией защиты от конденсации и двойными дверцами. Наши CO2-инкубаторы также обладают рядом других функций, а это означает, что вы всегда найдете в Binder подходящее устройство — как для рутинных процедур, так и для высокочувствительных приложений.

Фильтрация воздуха в автоклавах | Tuttnauer

Фильтрация воздуха при стерилизации паром

Фильтры

используются в автоклавах для двух целей:

  • защита окружающей среды от потенциально опасных газов, выходящих из автоклава
  • защита стерилизованной загрузки от потенциального внешнего загрязнения

Зачем фильтровать воздуховыпускное отверстие при использовании автоклава?

Воздух необходимо фильтровать при стерилизации лабораторных инструментов и биологически опасных материалов на этапе предварительного вакуумирования, поскольку он может содержать инфекционные вещества.Например, воздух внутри камеры автоклава может содержать медицинские отходы, которые могут быть загрязнены вирусами или токсинами. В случае выброса биологической опасности есть вероятность, что она нанесет вред дренажу и окружающему воздуху, а также персоналу лаборатории

Воздушный фильтр HEPA блокирует выход всех микроорганизмов из камеры на этапе удаления воздуха. Фильтр настолько мал, что блокирует вирусы, которые в среднем в 10 раз меньше стандартных бактерий. Таким образом, эта блокировка предотвращает утечку загрязненного воздуха в атмосферу и вместо этого улавливает вредные микроорганизмы внутри, удаляя воздух, свободный от микробов.

Как это работает?

Цикл стерилизации в автоклаве начинается с удаления воздуха с помощью вакуума. Воздух, удаленный из камеры автоклава для оптимального проникновения пара, попадает в лабораторную среду. Итак, перед стерилизацией содержимого камеры мы уже начинаем отсасывать воздух из камеры, создавая этот вакуум. Но есть одна загвоздка. : воздух, выходящий из камеры, потенциально имеет высокий уровень загрязнения, что создает опасность для окружающей среды. Фильтр биологической опасности, расположенный на линии выпуска биологической опасности, блокирует выход этих опасных микроорганизмов из камеры автоклава вместе с воздухом, обеспечивая безопасность лаборатории.

Кто боится воды?

Фильтры

HEPA гидрофобны. Гидрофобные фильтры не пропускают воду, поэтому их называют гидрофобными: по-гречески гидра — это вода, а фобия — страх. Гидрофобные фильтры предназначены для фильтрации газа для вентиляции. Гидрофобный фильтр должен оставаться сухим. Если он намокнет, он заблокируется, и воздух не сможет пройти в камеру или из нее. Кстати, поскольку HEPA-фильтр является гидрофобным, выпускное отверстие для биологической опасности расположено в верхней средней части камеры автоклава.Это необходимо для того, чтобы в выпускном отверстии не образовывался конденсат, а вода не блокировала проход воздуха.

Выпускное отверстие для воздуха загрязнено, так как стерилизация еще не проводилась. Фильтры гарантируют, что воздух, удаляемый из автоклава, не содержит вредных микроорганизмов. Стерилизация воздуха с помощью HEPA-фильтров на этапе предварительного вакуумирования также называется стерилизацией зеленой стерилизацией , поскольку ее основная цель — не стерилизовать среду, а поддерживать безопасность окружающей среды, оставляя все бактерии и вирусы внутри камеры.После завершения цикла стерилизации в автоклаве эти микроорганизмы погибнут.

Дополнительные меры безопасности

Мы не закончили просто блокировать бактерии с помощью HEPA-фильтра. После того, как потенциально загрязненный воздух прошел через фильтр, остается загрязненный HEPA-фильтр, заполненный микроорганизмами. Фильтр также необходимо стерилизовать, чтобы очистить его от живых микроорганизмов. Некоторые пользователи стерилизуют фильтр в рамках цикла биологической стерилизации.В других случаях существует специальная программа, предназначенная для стерилизации цикла пост-стерилизации фильтра. В некоторых лабораториях BSL4 два фильтра размещаются последовательно для дополнительной безопасности: в случае выхода из строя одного из фильтров второй фильтр служит для предотвращения проникновения каких-либо микроорганизмов.

Важность удаления воздуха и проверки

14 октября 2019 г.

Очистка | Фармацевтика

Не все регулирующие органы согласны с частотой или типами тестирования, поэтому компании должны устанавливать график тестирования, основанный на рисках, связанных с их конкретным процессом.Аарон Мертенс, менеджер по техническому обслуживанию STERIS, объясняет

Присутствие воздуха в цикле стерилизации в автоклаве отрицательно влияет на проникновение пара и контакт с стерилизуемыми материалами. Важно регулярно выполнять проверочный тест на удаление воздуха в автоклаве, чтобы продемонстрировать, что захваченный воздух удаляется и, таким образом, не может препятствовать процессу стерилизации паром. Эти испытания подвергают сомнению эффективность удаления воздуха на этапе предварительного вакуумирования автоклава, а также могут указывать на утечки в камере и / или связанном трубопроводе.Рекомендуется проводить ежедневные проверочные испытания на удаление воздуха в соответствии с инструкциями производителя стерилизатора.

Фармацевтическая промышленность, биотехнология и производство медицинского оборудования должны соответствовать нормативным требованиям в отношении использования тестов на удаление воздуха в предвакуумных автоклавных стерилизаторах. Руководство Международной организации по стандартизации (ISO) вместе с Ассоциацией по развитию медицинского оборудования (AAMI), Управлением по контролю за продуктами и лекарствами США (FDA), Британским институтом стандартов (BSI) и Европейским комитетом стандартов (EN). использование тестов на удаление воздуха.Проблема заключается в том, что не все агентства согласованы по частоте или типам тестирования, и это оставлено на усмотрение отдельных компаний, чтобы установить график тестирования, основанный на рисках для их конкретного процесса.

Проверочные испытания на удаление воздуха помогают соответствовать требованиям cGMP, демонстрируя эффективность циклов предварительного вакуумирования в паровых стерилизаторах

Текущая надлежащая производственная практика (cGMP) требует как демонстрации, так и документации того, что процесс стерилизации является эффективным, контролируемым и воспроизводимым.Использование проверочных тестов на удаление воздуха помогает соответствовать требованиям cGMP, демонстрируя эффективность циклов предварительного вакуумирования в паровых стерилизаторах. Таблицы химических индикаторов, взятые из тестов на удаление воздуха, служат доказательством для целей документации.

Обзор стерилизации

Насыщенный пар, конденсирующийся на поверхности, необходим для уничтожения микроорганизмов, которые могут присутствовать на поверхности материала. Важно удалить воздух перед стерилизацией паром (предварительное вакуумирование) и убедиться, что воздух не втягивается в автоклав во время процесса предварительного вакуумирования.Интегральная герметичная камера автоклава и система трубопроводов имеют жизненно важное значение. Наличие воздуха предотвращает контакт насыщенного пара с поверхностями стерилизуемых материалов, что снижает время контакта и температуру воздействия, необходимые для успешной стерилизации.

В автоклавах, где для удаления воздуха используются импульсы предварительного вакуума, воздух в камере заменяется насыщенным паром посредством серии чередующихся импульсов вакуума и впрыска пара. Это показано в начале цикла между промежутками времени от 10 до 30 минут, где кривая давления имеет «пилообразный» рисунок, как показано на Рисунке 1. 1

Рисунок 1: Упрощенная кривая температуры и давления для цикла стерилизатора с предварительным вакуумированием

Число импульсов предварительного вакуума, глубина предварительного вакуума и давление впрыска пара должны быть проверены и подтверждены как адекватные, поскольку эти параметры имеют наибольшее влияние на удаление воздуха. Другие параметры цикла, которые влияют на эффективность удаления воздуха, включают время продувки и выдержки при различных заданных значениях вакуума и / или давления.

Кроме того, элементы загрузки и их расположение в камере автоклава должны быть определены и протестированы для обеспечения надлежащего удаления воздуха.

Проверочные испытания на удаление воздуха

Исторически удаление воздуха и проникновение пара подтверждалось обработкой стопки полотенец из хлопчатобумажной ткани с химической индикаторной лентой, вставленной в центр в течение цикла автоклава. Полотенца затрудняли удаление воздуха и проникновение пара. Если химический индикатор полностью изменил цвет, это указывало на полное воздействие пара и успешный процесс удаления воздуха.

В 1963 году журнал Lancet опубликовал информацию о тесте Боуи-Дика, основанном доктором Дж.Боуи и мистер Дж. Дик. Этот тест стандартизировал и оптимизировал исходный тест пакета полотенец 2 . Теперь, согласно ANSI / AAMI / ISO 11140-4 3 тест на удаление воздуха может принимать одну из многих форм, эквивалентных оригинальным пакетам полотенец. Обычно одноразовая упаковка состоит из небольшой стандартизированной испытательной загрузки и химической индикаторной системы для обнаружения присутствия пара. В стандарте ISO 11140-4 эти испытания называются «испытаниями типа Боуи и Дика».

Например, коммерчески доступный набор для испытаний Боуи-Дика от STERIS Corporation состоит из обернутого пакета барьеров для проникновения пара (удаления воздуха) с химическим индикаторным листом в центре.Тестовая упаковка помещается непосредственно в пустую камеру парового стерилизатора без использования удерживающего устройства.

Как это работает

Во время обработки цикл должен удалять или вытеснять воздух из барьерного материала и заменять его паром по всей упаковке. Изменение цвета индикатора с желтого на однородный синий / фиолетовый указывает на адекватное проникновение пара, как показано на рисунке 2. Состав термохромных чернил также может помочь в выявлении проблем с качеством пара (наличие неконденсируемых газов, влажного пара и / или перегретый пар) и не содержит свинца и других тяжелых металлов. 4

Рисунок 2: Химический индикатор Боуи-Дика. L-R: неиспользованный, пройденный, типичный отказ

Тестовые наборы Боуи и Дика — это предварительно собранные одноразовые тестовые наборы, предназначенные для оценки работы системы удаления воздуха стерилизатора с предварительным вакуумом при 121 ° -124 ° C (250 ° -255 ° F) или 132 °. -135 ° С (270-275 ° F). Тестовые пакеты соответствуют ANSI / AAMI / ISO 11140-4: 2001 и BS EN867-4, класс 2 / B: 2001. 5

Пакет для испытания на удаление воздуха помещается в место, где воздух с наибольшей вероятностью может попасть в камеру, обычно в нижней части автоклава и близко к сливу, как показано на рисунке 3.Важно, чтобы для цикла проверки удаления воздуха и цикла производственного автоклава использовались одни и те же параметры предварительного вакуумирования, поскольку это единственный способ, которым тест точно измеряет производительность фазы удаления воздуха из автоклава.

Тестовый набор Боуи-Дика в камере автоклава

Нормы и стандарты

Следующие документы представляют собой соответствующие правила и руководство по использованию проверочных испытаний на удаление воздуха:

ANSI / AAMI / ISO 17665-1: 2006 (R) 2013 .Раздел 12.1.6 гласит: «Если процесс стерилизации основан на удалении воздуха из камеры стерилизатора для достижения быстрого и равномерного проникновения пара в загрузку стерилизатора, испытание на проникновение пара должно проводиться каждый день перед запуском стерилизатора. использовал.

«Испытание на проникновение пара проводится с использованием устройства, имеющего определенные проблемы с удалением воздуха и проникновением пара для процесса. Для промышленных применений, если в процессе насыщенного пара используются постоянные и определенные стерилизационные нагрузки, которые, как известно, не препятствуют проникновению пара, могут использоваться альтернативные методы, основанные на определенных физических измерениях и оценке риска вероятности отказа процесса.” 6

В то время как второй абзац может предполагать, что ежедневное испытание на проникновение пара (испытание на удаление воздуха) не является обязательным для некоторых типов нагрузок, регулярное выполнение испытания сопряжено с риском и должно быть оценено. Альтернативные методы проверки проникновения пара могут быть ненадежными, воспроизводимыми или неприемлемыми для регулирующих органов.

Нравится эта история? Подпишитесь на журнал Cleanroom Technology, чтобы получать подробный анализ последних новостей и разработок в сфере высокотехнологичного производства в контролируемой среде.

ISO / TS 17665-2: 2009 . Этот документ предоставляет руководство по применению ISO 17665-1 и определяет использование ежедневных тестов на удаление воздуха. В разделе A.5.1 о тесте Боуи и Дика говорится: «Этот тест представляет собой тест на проникновение пара, аналогичный тесту с небольшой нагрузкой и предназначенный для повседневного использования». 7

Приложение A (Оценка процесса стерилизации, в основном основанная на измерении физических параметров), Таблица A.3 предлагает ежедневное использование тестов Боуи и Дика.

Приложение B (Оценка процесса стерилизации, в основном основанная на биологической инактивации и сопутствующей процедуре механического удаления воздуха), Таблица B.1 предлагает рутинное использование тестов на удаление воздуха.

ANSI / AAMI ST79: 2017 . Хотя это применимо в основном к медицинским учреждениям, ANSI / AAMI также рекомендует ежедневно использовать тесты Боуи-Дика для проверки удаления воздуха. В разделе 10.7.6.1 говорится: «Тест Боуи-Дика следует проводить каждый день использования стерилизатора перед первой обработанной загрузкой.” 8

Руководство FDA для промышленности: 2004 . В этом документе агентство США заявляет: «Важно удалить воздух из камеры автоклава как часть цикла стерилизации паром». 9

EN 285: 2015 . В разделе 8.1.3 говорится: «Неудачный результат любого испытания на проникновение пара может быть вызван неэффективной стадией удаления воздуха, наличием утечки воздуха в камеру стерилизатора и / или наличием неконденсирующихся газов в паре. поставлять.” 10

EU GMP Приложение 1, проект 2017 г. . Раздел 8.59 гласит: «Когда процесс стерилизации включает продувку воздухом (например, пористые загрузки автоклавов, камеры лиофилизатора), должна быть обеспечена адекватная гарантия удаления воздуха до и во время стерилизации. Стерилизуемые грузы должны быть спроектированы таким образом, чтобы обеспечивать эффективное удаление воздуха и обеспечивать свободный дренаж для предотвращения накопления конденсата ». 11

Снижение риска

Частота выполнения теста на удаление воздуха определяется путем оценки рисков для качества, бизнеса и нормативных требований.Следует учитывать влияние отсутствия недостаточного удаления воздуха во время цикла предварительного вакуумирования в автоклаве, поскольку стерильность всех материалов, обработанных с момента последнего успешного прохождения теста, может быть поставлена ​​под сомнение.

Неадекватное удаление воздуха из автоклава оказывает прямое влияние на производительность автоклава и, следовательно, на качество продукта. Несоблюдение требований к регулярному проведению испытаний по удалению воздуха может привести к длительному расследованию по обеспечению качества с участием множества партий продукции.В зависимости от результатов расследования худший сценарий — нестерильный продукт и возможный отзыв продукта.

Восстановление оборудования требует простоев и производственных потерь, что сказывается на бизнесе в целом. Несоблюдение нормативных требований и cGMP может привести к цитированию и другим негативным последствиям.

При обычном производстве вероятность неадекватного удаления воздуха из камеры автоклава может быть низкой. Тем не менее, если не обнаруживать неадекватное удаление воздуха, то последствия очень серьезны, так как это оказывает прямое влияние на обеспечение стерильности материалов.

Использование ежедневного проверочного теста на удаление воздуха соответствует рекомендациям производителя автоклава и является самой простой, наименее разрушительной и наиболее надежной формой обнаружения.

Ссылки

  1. Технический совет STERIS № 5518, «Важность удаления воздуха в процессе стерилизации паром в автоклаве», 2016 г.
  2. Боуи, JH, Келси, JC и Томпсон, GR. «Тест автоклавной ленты Боуи и Дика». Ланцет, 1963 г., i: 586.
  3. ANSI / AAMI / ISO 11140-4, «Стерилизация медицинских изделий — Химические индикаторы — Часть 4: Индикаторы класса 2 как альтернатива тесту Боуи и Дика для обнаружения проникновения пара», 2007 г.
  4. STERIS Технический паспорт, «Тестовый набор Steraffirm TM Боуи-Дика для температуры воздействия 121-124 o C (250-255 o F)».
  5. BS EN 867-4, «Небиологические системы для использования в стерилизаторах. Спецификации индикаторов как альтернативы тесту Боуи и Дика для обнаружения проникновения пара », 2001.
  6. AANSI / AAMI / ISO 17665, «Стерилизация медицинских изделий — влажное тепло — Часть 1: Требования к разработке, валидации и текущему контролю процесса стерилизации медицинских изделий», 2006 г. (R2013).
  7. ISO / TS 17665-2, «Стерилизация медицинских изделий — влажное тепло — Часть 2: Руководство по применению ISO 17665-1», 2009.
  8. ANSI / AAMI ST79, Всеобъемлющее руководство по стерилизации паром и обеспечению стерильности в медицинских учреждениях », 2017.
  9. Руководство FDA для промышленности, «Стерильные лекарственные препараты, полученные путем асептической обработки — Текущая надлежащая производственная практика», 2004 г.
  10. DS / EN 285, «Стерилизация — паровые стерилизаторы — большие стерилизаторы», 2015 г.
  11. EudraLex, «Правила, регулирующие использование лекарственных средств в Европейском союзе», том 4 Руководства ЕС по надлежащей практике производства лекарственных средств для человека и ветеринарии, Приложение 1 «Производство стерильных лекарственных средств», ПРОЕКТ, декабрь 2017 г.

N.B. Эта статья опубликована в выпуске Cleanroom Technology за октябрь 2019 г. Подпишитесь сегодня и получите печатную копию!

Последнее цифровое издание доступно в Интернете.

Рекомендуемые компании

Печь с горячим воздухом для стерилизации: определение и принцип работы — видео и стенограмма урока

Типы сушильных шкафов с горячим воздухом

Существует два типа сушильных шкафов с горячим воздухом.Один из них представляет собой печь с принудительным нагревом воздуха, а другой — печь со статическим воздухом с горячим воздухом. Духовка с принудительной подачей горячего воздуха более эффективна, чем статическая печь с горячим воздухом.

Духовка с принудительной подачей воздуха работает, нагревая духовку и используя вентилятор для перемещения горячего воздуха. Это помогает предотвратить попадание горячего воздуха в верхнюю часть духовки и удержание более прохладного воздуха внизу. Вентилятор поддерживает циркуляцию горячего воздуха в духовке с постоянной температурой.

Духовка со статическим воздухом и горячим воздухом работает с использованием нагревательной спирали в нижней части духовки.Тепло усиливается по всей духовке, и требуется больше времени, чтобы достичь желаемой температуры. Поскольку тепло не циркулирует, как в духовке с принудительной подачей горячего воздуха, температура в духовке неодинакова.

Джина узнает, что больница избавилась от всех своих статических печей с горячим воздухом и теперь использует только печи с принудительной подачей горячего воздуха. Ее менеджер объясняет, как работает духовка.

Функции сушильных шкафов с горячим воздухом

Духовки с горячим воздухом представляют собой большие стальные ящики с двойной изоляцией.Температура контролируется цифровым способом, а внутренние части духовок выполнены из алюминия или нержавеющей стали. Их легко устанавливать и обслуживать, поскольку они сварены вместе и окрашены эпоксидным полиэфиром, чтобы не допустить выхода тепла. Двойные слои духовки изолированы стекловолокном из асбеста, а полки из проволочной сетки или алюминия регулируются, чтобы помочь разместить необходимое оборудование. Нагревательные элементы находятся в нижней части духовки, а вентилятор помогает циркулировать тепло, чтобы поддерживать равномерную температуру с помощью духовки с принудительной подачей воздуха.Установлен термостат, показывающий внутреннюю температуру духовки. Предметы помещаются в духовку, а затем ее включают. Духовка работает в зависимости от температуры и продолжительности работы печи для стерилизации. Прежде чем вынимать предметы из духовки, их необходимо охладить как минимум до 40 градусов Цельсия.

Менеджер Джины объясняет, что, поскольку процесс стерилизации печи горячим воздухом занимает очень много времени, печи обычно запускаются в конце каждого дня. Таким образом, оборудование будет доступно для использования на следующий день.При определенных обстоятельствах печь с горячим обдувом используется в течение дня, если оборудование необходимо во второй раз позже в течение дня.

Краткое содержание урока

Духовки с горячим воздухом — это тип стерилизации сухим жаром. Сухой жар используется для стерилизации материалов, которые не могут намокнуть. Примерами материалов, которые стерилизуют в духовке с горячим воздухом, являются стеклянная посуда, порошки, предметы, содержащие масло, и металлическое оборудование.

Духовки с горячим воздухом работают с использованием кондукции для нагрева поверхности оборудования и поглощения тепла по направлению к центру.Есть два типа сушильных шкафов с горячим воздухом: сушильные шкафы с принудительным обдувом и статические сушильные шкафы с горячим воздухом. Духовки с горячим воздухом с принудительной подачей воздуха предпочтительнее, потому что они распространяют тепло по всей духовке с помощью вентилятора, чтобы поддерживать постоянную температуру по всей духовке. Духовки со статическим воздухом и горячим воздухом , с другой стороны, используют нагревательную спираль в нижней части духовки. Время стерилизации зависит от установленной температуры и продолжительности работы духовки.

Заявление об ограничении ответственности: информация на этом сайте предназначена только для вашего сведения и не заменяет профессиональные медицинские консультации.

Исследование стерилизации воздуха в помещении в больницах / поликлиниках с помощью электронного ветрогенератора

Int J Environ Res Public Health. 2019 Dec; 16 (24): 4935.

Эва Марчвинска-Вырвал

3 Факультет общественного здравоохранения Силезского медицинского университета, 41-902 Бытом, Польша; [email protected]

3 Факультет общественного здравоохранения Силезского медицинского университета, 41-902 Бытом, Польша; [email protected]

Поступило 24.10.2019; Принято 4 декабря 2019 г.

Лицензиат MDPI, Базель, Швейцария. Эта статья представляет собой статью в открытом доступе, распространяемую в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution (CC BY) (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/).

Abstract

(1) Справочная информация: поскольку воздействие переносимых по воздуху бактерий и грибков может быть особенно опасным в больницах и амбулаторных условиях, важно стерилизовать воздух в таких помещениях. Целью этого исследования было оценить снижение концентрации переносимых по воздуху бактерий и грибков в выбранных палатах больницы и клиники из-за работы электронного ветрогенератора (EWG).(2) Методы: EWG — это устройство для движения и очистки воздуха, в котором используется сложная комбинация топологии электродов и специально разработанного источника питания высокого напряжения. (3) Результаты. Концентрация бактерий и грибков в маленькой палате пациента упала примерно до 25% от начальной (фоновой) концентрации. В большой палате пациента концентрация упала до 50% и 80% от фоновой концентрации бактерий и грибков, соответственно. (4) Выводы. Полученные данные показывают, что исследуемый процесс стерилизации можно описать экспоненциальной функцией времени.Кроме того, применение фильтра с активированным углем в EWG значительно снижает концентрацию озона в стерилизованном помещении. Стерилизация с помощью EWG значительно изменяет характеристики видов и родов переносимых по воздуху бактерий и смещает основной пик распределения переносимых по воздуху бактерий по размерам на более крупные биочастицы.

Ключевые слова: электронный ветрогенератор (EWG), бактерии, грибки, больницы, палата для пациентов, зал ожидания, озон, распределение бактерий по размеру, распределение грибов по размеру

1.Введение

Биоаэрозоли — это четко определенная группа переносимых по воздуху частиц биологического происхождения, обычно включающая бактерии, грибы и вирусы, а также пыльцу, их фрагменты и различные антигены. Они могут вызывать множество неблагоприятных последствий для здоровья, включая аллергические, токсические и инфекционные реакции [1,2,3,4]. Поскольку люди проводят большую часть времени в помещении, концентрация переносимых по воздуху бактерий и грибов в помещении интенсивно изучалась в течение последних двух десятилетий [5,6,7,8,9,10,11].Воздействие биоаэрозолей может быть особенно опасным в клиниках и больницах. Известно, что некоторые бактерии, такие как Streptococcus pyogenes, Neisseria meningitides, Corynebacterium diphtheria, и Mycobacterium tuberculosis , передаются преимущественно воздушно-капельным путем от инфицированных людей и могут вызывать внутрибольничную инфекцию [12,13]; однако характер воздушного потока в помещении также играет важную роль в переносе биоаэрозолей [14].

Поэтому очень важно очищать воздух в таких зданиях, особенно в операционных.За прошедшие годы был проведен ряд исследований по разработке технологий очистки воздуха. Среди этих технологий очень популярными стали методы фильтрации [15]. Особенно интересны фильтры из углеродных нанотрубок для сбора аэрозольных биологических и небиологических частиц [16]. Однако соответствующие методы должны не только собирать биологические частицы из воздуха, но и дезактивировать их. Для достижения этой цели были предприняты попытки использования различных технологий, включая использование электростатического поля [17], а также униполярных эмиттеров ионов и элементов TiO 2 с УФ-излучением [18].Среди множества различных портативных чистящих средств электростатические устройства кажутся особенно многообещающими [19].

Целью данного исследования было оценить снижение концентрации биологических аэрозолей в выбранных больничных и клинических палатах из-за работы электронного ветрогенератора (EWG). Это устройство для движения и очистки воздуха, в котором используется сложная комбинация топологии электродов и специально разработанного высоковольтного источника питания. В качестве альтернативы, это представляет собой простую конструкцию, позволяющую производить сборку без современного оборудования или технически квалифицированного персонала.

Наша работа также была направлена ​​на уменьшение выбросов озона, вызванных сильным искрением, возникающим после нескольких часов работы этого устройства. Поэтому на следующем этапе нашего исследования стерилизатор EWG был оснащен угольным фильтром. Первый этап наших исследований по этому предмету начался в 2001–2009 гг. И продолжается в течение последних десяти лет. Были представлены предварительные результаты первого этапа наших исследований [20].

2. Материалы и методы

В ходе этого исследования были проведены измерения концентрации бактериальных и грибковых аэрозолей в двух больницах и клиниках в зависимости от рабочего времени устройства EWG, являющегося портативным стерилизатором воздуха.Мы использовали два устройства EWG () от ООО «ПОЛЮС» (ООО «Бытом Полюс Энтерпрайзис» было организовано в рамках польско-американского сотрудничества в 2001–2018 гг.).

Фотография устройства электронного ветрогенератора (ЭВГ).

Измерения проводились в двух больницах и одной медицинской клинике, расположенных в Сосновце и Забже, Верхняя Силезия, Польша. Подробная информация о местах отбора проб представлена ​​в.

Таблица 1

Характеристики участков отбора проб в больницах.

Место отбора проб Город Объем, м 3 No.
пациентов
Температура в помещении, ° C Относительная влажность,% Вентиляция Окна
Палата пациента
малая (PR S )
Sosnowiec Sosnowiec Sosnowiec 24 65–54 механический закрытый
Палата пациента
большая (PR L )
Забже 110 8 23 естественный открытый
Зал ожидания (WR) Сосновец 77 4–13 * 22 62–66 естественный закрытый

Микроорганизмы были собраны импактор на питательных средах, специфичных для грибов или бактерий, в чашках Петри, расположенных на всех ступенях импактора.Насос обеспечивал постоянный расход 28,3 дм 3 мин -1 во время измерений. Аэродинамический диаметр разреза для этих стадий был следующим: 7,0, 4,7, 3,3, 2,1, 1,1 и 0,65 мкм. Время отбора проб согласно Nevalainen et al. [21] составлял 5–10 минут. Как минимум, для каждого измерения были получены последовательные дублирующие пробы, по крайней мере, было взято три пробы. Во время измерения импактор Андерсена размещался в центре комнат на высоте 1,5 м, а устройство EWG — на той же высоте, но рядом с закрытой дверью (на расстоянии около 2 м).

Агар с солодовым экстрактом (MEA 2%) и соевый агар с трипказой (TSA) применяли для грибов и бактерий соответственно. Все образцы инкубировали в течение семи дней при температуре (22 ° C). Концентрации жизнеспособных бактерий и грибов были рассчитаны как колониеобразующие единицы на кубический метр воздуха (КОЕ м -3 ) с использованием положительной поправки на отверстие. Кроме того, для всех выбранных комнат были идентифицированы два образца бактерий (фоновый и когда уменьшающаяся концентрация начинала стабилизироваться).Образцы бактериального аэрозоля идентифицировали по окраске по Граму и морфологии. Затем видимые колонии субкультивировали либо на агаре Чепмена, либо на агаре МакКонки. Грамположительные и грамотрицательные бактерии были окончательно идентифицированы с помощью теста API активных фармацевтических ингредиентов.

Следует отметить, что метод культивирования, использованный в этом исследовании, включает, вероятно, только около 10% от общего количества микроорганизмов, присутствующих в воздухе [22]; однако он по-прежнему предоставляет ценную информацию для оценки воздействия на пациентов и эффективности стерилизации с использованием устройства EWG.Кроме того, отбор проб воздуха на наличие жизнеспособных бактерий, образующих колонии на агаре, может быть ценным для идентификации видов бактерий в окружающей среде, которые были особенно связаны с болезнями [23].

Чтобы уменьшить выброс озона из устройства EWG, этот стерилизатор на следующем этапе нашего исследования был оборудован угольным фильтром, а также тканевым фильтром, который улавливает крупные частицы. Однако тогда необходимо увеличить всасываемый воздушный поток, что может быть достигнуто с помощью небольшого вентилятора.

Количественное определение уровня озона проводилось колориметрическим методом с диметил-п-фенилендиамином. Отбор проб включал пропускание 10 дм 3 воздуха со скоростью 1 дм 3 / мин через двухскруббер, содержащий 10 см 3 1% раствора KI. Определение концентрации озона в образце включало 5 см 3 абсорбирующего раствора, перенесенного в колориметрическую трубку, следующие 0,5 см 3 0.Добавляли 02% гидрохлорид диметил-п-фенилендиамина и перемешивали. Через 15 минут цвет исследуемого раствора сравнивали в видимом свете (λ = 550 нм) с эталоном, приготовленным в соответствии со шкалой стандартов. Концентрации озона в абсорбирующем растворе были измерены с помощью сканирующего спектрофотометра UV-VIS фирмы Shimadzu (Shimadzu Corporation, Киото, Япония).

3. Результаты и обсуждение

Изменения уровней концентрации жизнеспособных бактерий и грибков в результате стерилизации с использованием устройств EWG в выбранных больничных палатах представлены в, и.В исследуемых помещениях фоновая концентрация бактериального аэрозоля составляла от 10 2 до 10 3 КОЕ м −3 , а уровень концентрации грибкового аэрозоля составлял около 10 2 КОЕ м −3 . Как и следовало ожидать, полученные результаты показывают, что концентрация жизнеспособных биоаэрозолей сильно зависит от количества пациентов, присутствующих в комнате, вместимости / объема комнаты и метода вентиляции.

Таблица 2

Изменения уровня концентрации бактериального и грибкового аэрозоля в маленькой палате пациента (PR S ) в больнице в Сосновце из-за стерилизации с использованием одного устройства EWG.

Концентрация жизнеспособных микроорганизмов в помещении [КОЕ м −3 ]
Параметр Бактерии Грибки
Фон 2 ч 4 ч Фон 2 ч 4 ч
C Всего 204 63 905 48 905
C Resp 91 42 21 257 261 84
C Resp / C 0,5045 0,67 0,43 0,75 1,00 1,00
Относительная влажность,% 65 58 54 65 58

54 65 58

905 Всего / C Справочная информация Итого

0,24 0,25

Таблица 3

Изменения уровня концентрации бактериального и грибкового аэрозоля в большой палате пациента (PR L ) в университете Больница в Забже из-за стерилизации с использованием одного устройства EWG.

9055 9055 9055 9055

Всего85

Концентрация жизнеспособных микроорганизмов в помещении [КОЕ м −3 ]
Параметр Бактерии Грибки
Фон 2 часа 4 часа Фон 2 часа 4 часа
C Всего 848 452
C Resp 721 339 346 784 763 635
C Resp / C 0,75 0,78 0,90 0,89 0,91
Относительная влажность,% 80 79 80 80 79

905 Итого / C Справочная информация Итого

0,52 0,80

Таблица 4

Изменение уровня концентрации бактериального и грибкового аэрозоля в зале ожидания (амбулаторном отделении), ВР, в клинике профессиональных заболеваний в г. Сосновец из-за стерилизации с использованием одного устройства EWG.

9055

Концентрация жизнеспособных микроорганизмов в помещении [КОЕ м −3 ]
Параметр Бактерии Грибки
Фон 1 час 2 час 4 час Фон 1 час 2 час 4 час
C Всего 5 1148 1148

501 713 671 515 345
C Респ C Resp / C Итого 0.72 0,89 0,64 0,53 0,91 0,93 0,89 0,78
RH,% 75 66 64 9048 75 66 64 9048 62
C 4 часа Всего / C Фон Итого 0,42 0.48

Анализ показывает, что после четырех часов стерилизации с использованием двух устройств EWG концентрация бактерий и грибков в маленькой палате пациента (PR S ) упала примерно до 25% от начальной (фоновой) концентрации. . Также интересно, что во время стерилизации относительная влажность снизилась с 65% до 54% ​​через 4 часа.

показывает, что в большей палате пациента (PRL) и во время более слабого процесса стерилизации (использовалось только одно устройство EWG, в то время как пространство этой комнаты было больше по сравнению с другими комнатами) снижение концентрации биоаэрозоля в больнице в Забже был не так сконцентрирован, как в больнице в Сосновце.Однако даже в этой комнате концентрация упала до 50% и 80% от фоновой концентрации бактерий и грибов соответственно.

Значительное снижение уровня биоаэрозолей из-за работы устройства EWG было также получено в клинической приемной (). Следует отметить, что после четырех часов стерилизации концентрация бактерий и грибков снизилась по сравнению с фоновым уровнем примерно до 40% и 50% соответственно. Продолжение процесса стерилизации в этом зале ожидания до 6 часов показало (), что этот процесс можно описать экспоненциальной функцией времени:

где k определяет эффективность стерилизации.

Длительное снижение уровня концентрации переносимых по воздуху бактерий и грибков в зале ожидания клиники в Сосновце за счет стерилизации воздуха с помощью аппарата EWG.

Таким образом, для помещения WR с определенным количеством людей коэффициент стерилизации, k , может быть определен как 0,23 и 0,11 h -1 для переносимых по воздуху бактерий и грибов, соответственно. Следовательно, для текущего или предполагаемого уровня концентрации C (0) время стерилизации, t , необходимое для снижения концентрации биоаэрозоля до приемлемого уровня, C принято , можно рассчитать следующим образом:

Для Например, если предположить, что измеренная концентрация бактерий в этом клиническом WR составляет 1000 КОЕ на метр −3 , а принятый уровень составляет 100 КОЕ на метр −3 , необходимое время стерилизации составляет около 10 часов.Поскольку аэродинамический диаметр переносимых по воздуху частиц, в том числе биоаэрозольных частиц, определяет их поведение не только в воздухе, но и в дыхательных путях человека после ингаляции, важно знать, каково распределение переносимых по воздуху бактерий и грибов по размерам в исследуемой внутренней среде. . Такие распределения представлены на рисунках и рисунках S1 – S4. Как можно видеть, модели распределения по размерам без какой-либо стерилизации (исходные данные) различаются, в основном, в зависимости от типа вентиляции и количества людей в комнате.Следует отметить, что основной пик в гранулометрическом составе переносимых по воздуху бактерий в помещениях с механической вентиляцией (PR S ) в Сосновце проявляется в диапазоне размеров 3,3–4,7 мкм, т. Е. Смещен на более крупные частицы по сравнению с распределение по размерам в больнице в Забже (PR L ) и поликлинике в Сосновце (WR), где была только естественная вентиляция. Похожая, но не столь четкая взаимосвязь наблюдается для грибов, переносимых по воздуху. Этот результат показывает, что биологические частицы, прикрепленные к относительно крупным частицам пыли, могут выходить из вентиляционных каналов.Также возможен процесс ресуспендирования / повторного выброса более крупных частиц бактерий, присутствующих в осевшей пыли, образующейся при продувке воздухом из системы отопления, вентиляции и кондиционирования воздуха.

Распределение переносимых по воздуху бактерий в палате пациента (PR S ) в больнице в Сосновце: ( a ) фон, ( b ) через 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG.

Распределение переносимых по воздуху грибков в палате пациента (PRS) в больнице в Сосновце: ( a ) Общие сведения, ( b ) через 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG.

Подобный сдвиг основного пика в сторону более крупных биочастиц можно увидеть по форме кривых распределения по размерам бактерий, переносимых по воздуху, после четырех часов стерилизации по сравнению с распределением по размерам до стерилизации. Безусловно, это является следствием того факта, что самые мелкие бактерии, переносимые по воздуху, могут быть привлечены стерилизатором EWG легче, чем крупные и тяжелые частицы. В результате доля мелких частиц биоаэрозоля в общем количестве переносимых по воздуху бактерий и грибов после стерилизации уменьшается.Однако в помещении с механической вентиляцией концентрация биоаэрозоля довольно низкая, особенно концентрация мелких частиц (). В результате отношение концентрации вдыхаемых бактериальных частиц, имеющих аэродинамический диаметр до 4,7 мкм, к общему количеству переносимых по воздуху бактерий уменьшилось лишь незначительно; от 0,45 до 0,43. С другой стороны, в больнице в Забже и поликлинике (WR) без ИВЛ это снижение составило с 0,85 до 0,78 и с 0,72 до 0.53 соответственно (и).

Эффективность стерилизации грибов была намного меньше, чем у бактерий (см., И). Это подтверждает общее утверждение о том, что переносимые по воздуху бактерии гораздо более чувствительны к воздействию различных физических и химических стрессов, чем переносимые по воздуху грибы. Важную информацию об изменении воздействия биоаэрозоля из-за работы устройства EWG можно получить из подробного анализа родов и видов бактерий. Общая картина этих изменений жизнеспособных родов и видов бактерий из-за стерилизации была одинаковой для всех изученных помещений и может быть проиллюстрирована на примере палаты пациента (PR L ) в университетской больнице в г. Забже ().Как видно, доминирующей группой бактерий, выделенных из исследуемого госпитального воздуха, был стафилококк / микрококк . Основным источником этих бактерий в помещениях является человеческий организм, особенно кожа человека [24]. Видно, что грамположительные кокки составляли 77% от всех обнаруженных бактерий, переносимых по воздуху. Неспоровые грамположительные палочки, включая в основном Corynebacterium , составляли 19% от общей бактериальной флоры. Следует отметить, что в больнице в Забже были обнаружены актиномицеты.

Таблица 5

Изменения в родах жизнеспособных бактерий в палате пациентов (PR L ) в университетской больнице в Забже, после 4 часов стерилизации с использованием очистителя EWG (работали два очистителя, начало в 10:00 после измерения «фоновой» концентрации).

Виды и роды бактерий Предпосылки 4 часа стерилизации *
[КОЕ м −3 ] [%] % [КОЕ м −3 ] ]
грамположительные кокки, в том числе: 573 77 381 90
Staph.эпидермис 198 0
Staph. saprophyticus 74 148
Staph. хоминис 11 14
Staph. ксилоз 85 0
Staph. cohnii cohnii 11 7
Micrococcus spp. 166 191
Кочурия 28 21
Грамположительные палочки без спор, в том числе: 140 19 28 7
Corynebacterium striatum / amycolatum 75 0
Corynebacterium aquaticum 25 7
Corynebacterium propinquum 25 7
Corynebacterium pseudodiphtheriticum 4 0
Microbacterium spp. 11 0
Brevibacterium spp. 0 14
Актиномицеты, в том числе: 33 14 3
Rhodococcus spp. 21 14
Прочие 12 4 0
Всего 746 100 423 100

После 4 часов стерилизации грамположительные кокки стали еще более доминирующими, составляя 90% от общего числа бактерий.Вероятно, у такого результата было две причины. Во-первых, только эти роды / виды бактерий в настоящее время выделяются из организмов пациента в значительной степени во время стерилизации. Во-вторых, эти микроорганизмы благодаря своей сферической форме могут быть уничтожены более эффективно, чем палочки.

Во время измерений все пациенты находились в своих палатах, лежа или сидя на кроватях. Некоторые ходили в туалет минут на 15. В среднем от двух до трех пациентов сходили в туалет за 4–5 часов измерения.Во время исследования в палаты пациентов никто не заходил.

Во время наших измерений в больнице в Сосновце все окна были закрыты. К сожалению, в старой больнице в Забже окна часто открывались, хотя мы просили пациентов держать окна закрытыми. Можно подсчитать, что в течение 4 часов одно окно было открыто трижды примерно на 10–15 минут (в каждом случае разные окна).

Хотя эффективность стерилизации воздуха внутри помещений в исследуемых больницах и клиниках с помощью EWG была приемлемой для их руководителей, к сожалению, высокое напряжение, используемое в этом устройстве, привело к значительному выбросу озона.Поэтому на следующем этапе нашего исследования мы применили угольный фильтр в EWG, чтобы уменьшить выброс озона. показывает концентрацию озона в офисном помещении с естественной вентиляцией площадью 85 м -3 (OR L ) как функцию времени стерилизации для EWG с угольным фильтром и без него. Как видно, концентрация озона, испускаемого модернизированным гибридным устройством EWG, была примерно в три раза ниже по сравнению с озоном, высвобожденным при этой стерилизации без угольного фильтра.

Таблица 6

Зависимость от времени концентрации озона в офисном помещении (OR L ), стерилизованном с помощью устройства EWG.

905
Концентрация
озона [мкг м −3 ]
Время стерилизации [ч]
0 2 4 6 44

без угольного фильтра 0.50 2,65 3,15 3,25
с угольным фильтром 0,20 0,60 1,20 1,25

Измерения концентрации бактерий в воздухе небольших помещений 40 м -3 (OR S ) в зависимости от времени, отсчитываемого от начала стерилизации с использованием нового гибридного очистителя, показали (), что эффективность стерилизации для модернизированного устройства EWG все еще является адекватной.

Таблица 7

Изменение уровня концентрации бактериального аэрозоля в офисном помещении (OR S ) из-за стерилизации с использованием одного устройства EWG с угольным фильтром.

Параметр Концентрация жизнеспособных бактерий в помещении [КОЕ м -3 ]
0 1 6 9
(фон) Время (фон) 9 Часы, отсчитываемые от начала стерилизации)
C Всего 1293 1166 385 293
C n часов

0,90 0,30 0,23

4. Выводы

Эти исследования были ориентированы на оценку снижения концентрации бактериального и грибкового аэрозоля в выбранных палатах больницы и поликлиники в результате работы портативного электронного ветрогенератора (ЭВГ). Это устройство для движения и очистки воздуха, в котором используется сложная комбинация топологии электродов и специально разработанного высоковольтного источника питания.

Наилучшие результаты были получены в небольших помещениях, например, в палате на три-четыре пациента в больнице (PR S ). В таких помещениях, где окна открывались только время от времени, концентрация бактериального и грибкового аэрозоля после четырех часов работы EWG упала до 24% и 25% от предыдущего фонового уровня соответственно. В большой палате пациента (PR L ) и / или во время более слабого процесса стерилизации концентрация упала до 50% и 80% от фоновой концентрации бактерий и грибов, соответственно.

Было показано, что процесс стерилизации можно описать экспоненциальной функцией времени, где эффективность стерилизации, k , составляла 0,23 и 0,11 ч -1 для бактерий и грибов, соответственно. Изученный процесс стерилизации существенно изменил вид и роды переносимых воздухом бактерий. После четырех часов стерилизации грамположительные кокки составляли 90% от общего числа бактерий. После четырех часов стерилизации с помощью устройства EWG основной пик распределения переносимых по воздуху бактерий по размерам сместился в сторону более крупных биочастиц, что означает, что мелкие частицы легче отделяются от воздуха.

Эффективность стерилизации грибов была намного ниже, чем у бактерий, что подтверждает известное утверждение о том, что бактерии, переносимые по воздуху, намного более чувствительны к воздействию различных физических и химических стрессов, чем грибы, переносимые по воздуху. Во всяком случае, аналогичные, но не столь четкие зависимости, как для бактерий, были получены и для грибкового аэрозоля.

Применение фильтра с активированным углем в портативном высоковольтном стерилизаторе воздуха (EWG) снижает выброс озона из этого устройства на 60–80%.Такое значительное снижение выбросов приводит к снижению концентрации озона в воздухе примерно в три раза после нескольких часов работы стерилизатора, оснащенного угольным фильтром, в офисном помещении с естественной вентиляцией (OR L ) площадью 85 м 3 по сравнению с концентрацией озона, который образуется, когда стерилизатор работает без угольного фильтра. Испытанный угольный фильтр гарантирует снижение выбросов озона при непрерывной работе исследуемого устройства до шести часов.При длительной эксплуатации необходимо использовать фильтр с более высокой массовой плотностью активированного угля.

Возможное применение модернизированных гибридных устройств EWG в больницах и медицинских клиниках представляется очень многообещающим, поскольку предлагаемый метод уменьшения количества биоаэрозолей в медицинских учреждениях не требует, чтобы люди покидали комнату.

Благодарности

Мы очень признательны за аренду устройства EWG для наших внутренних исследований у компании POLUS.

Дополнительные материалы

Следующая информация доступна в Интернете по адресу https://www.mdpi.com/1660-4601/16/24/4935/s1, Рисунок S1: Распределение размеров переносимых по воздуху бактерий в палате пациента (PR L ) в университетской больнице в Забже: а) фон, б) через 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG., Рисунок S2: Распределение размеров переносимых по воздуху грибков в палате пациента (PR L ) в университетской больнице в Забже: a) фон, b) 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG, Рисунок S3: Распределение размеров переносимых по воздуху бактерий в зале ожидания (WR) в клинике в Сосновце: фон, b) через 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG, Рисунок S4: Распределение размеров переносимых по воздуху грибов в зале ожидания (WR) в клинике в Сосновце: а) фон, б) через 4 часа после начала стерилизации с использованием устройства EWG.

Вклад авторов

Концептуализация, J.S.P. и E.M.-W .; методология, Д.Л .; анализ, A.W .; расследование, W.M .; курирование данных, W.M .; письмо — подготовка оригинального черновика, J.S.P. написание-редактирование, А.М .; визуализация, J.S.P. и W.M .; надзор, J.S.P.

Финансирование

Это исследование было частично поддержано школой InnoEnergy Master School, Эйндховен, Нидерланды (Grant Smog-Health-For), а частично — грантом No. 08/020 / BK18 / 0015 (Исследования качества наружного и внутреннего воздуха).«Расходы на обработку статьи APC покрывались двумя источниками: 40% — магистрацией InnoEnergy, Эйндховен, Нидерланды (Grant Smog-Health-For), грант №. 08/020 / BK18 / 0015, и 60% — факультетом энергетики и экологической инженерии Силезского технологического университета (обязательное исследование).

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Список литературы

1. Доуес Дж., Торн П., Пирс Н., Хедерик Д. Оценка воздействия биоаэрозолей на здоровье и воздействия: прогресс и перспективы.Аня. Ок. Hyg. 2003. 47: 187–200. [PubMed] [Google Scholar] 2. Фунг Ф., Хьюсон У.Г. Воздействие биоаэрозолей грибов в помещении на здоровье. Прил. Ок. Environ. Hyg. 2003. 18: 535–544. DOI: 10.1080 / 10473220301451. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 3. Хусман Т. Воздействие на здоровье микроорганизмов в воздухе помещений. Сканд. J. Work Environ. Здоровье. 1996; 22: 5–13. DOI: 10.5271 / sjweh.103. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 4. Невалайнен А., Тойбель М., Хювяринен А. Грибы, бактерии и другие биозагрязняющие вещества. В: Pastuszka J.С., редактор. Синергическое влияние газообразных, твердых частиц и биологических загрязнителей на здоровье человека. CRC Press, Taylor & Francis Group; Бокка Ратон, Флорида, США: 2016. С. 153–175. [Google Scholar] 5. Пастушка Ю.С., Чжо Тха Пав У., Лис Д.О., Влазло А., Ульфиг К. Бактериальный и грибковый аэрозоль в помещениях в Верхней Силезии, Польша. Атмос. Environ. 2000; 34: 3833–3842. DOI: 10.1016 / S1352-2310 (99) 00527-0. [CrossRef] [Google Scholar] 6. Ди Джулио М., Гранде Р., Ди Кампли Э., Ди Бартоломео С., Челлини Л.Качество воздуха в помещениях университетов. Environ. Монит. Оценивать. 2010. 170: 509–517. DOI: 10.1007 / s10661-009-1252-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 7. Blais-Lecours P., Perrott P., Duchaine C. Некультурируемые биоаэрозоли в помещениях: влияние на здоровье и молекулярные подходы к обнаружению. Атмос. Environ. 2015; 110: 45–53. DOI: 10.1016 / j.atmosenv.2015.03.039. [CrossRef] [Google Scholar] 8. Brgoszewska E., Mainka A., Pastuszka J.S. Бактериальные аэрозоли в городском детском саду в Гливице, Польша: тематическое исследование.Аэробиология (Болонья) 2016; 32: 469–480. DOI: 10.1007 / s10453-015-9419-х. [CrossRef] [Google Scholar] 9. Brgoszewska E., Biedroń I., Kozielska B., Pastuszka J.S. Микробиологическое качество воздуха в помещении в офисном здании в Гливице, Польша: Анализ тематического исследования. Air Qual. Атмос. Здоровье. 2018; 11: 729–740. DOI: 10.1007 / s11869-018-0579-z. [CrossRef] [Google Scholar] 10. Kobza J., Pastuszka J.S., Bragoszewska E. Представляют ли воздействие аэрозолей риск для стоматологов? Ок. Med. (Chic. Ill) 2018; 68: 454–458.DOI: 10.1093 / occmed / kqy095. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 11. Мэдсен А.М., Мослехи-Дженабиан С., Ислам М.З., Франкель М., Спилак М., Фредериксен М.В. Концентрации видов стафилококков в воздухе помещений, связанные с другими бактериями, временем года, относительной влажностью, скоростью воздухообмена и положительным результатом на S. aureus пассажиры. Environ. Res. 2018; 160: 282–291. DOI: 10.1016 / j.envres.2017.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Сарица С., Асан А., Откун М.Т., Туре М. Мониторинг переносимых по воздуху грибков и бактерий в различных помещениях Университетской больницы Тракья, Эдирне, Турция.Внутренняя встроенная среда. 2002; 11: 285–292. DOI: 10.1177 / 1420326X0201100505. [CrossRef] [Google Scholar] 13. Пастушка Ю.С., Марчвинска-Вырвал Э., Влазло А. Бактериальный аэрозоль в больницах Силезии: предварительные результаты. Pol. J. Environ. Stud. 2005; 14: 883–890. [Google Scholar] 14. King M.-F., Camargo-Valero M., Matamoros-Veloza A., Sleigh P., Noakes C. Эффективный метод суррогатного индикатора для биоаэрозолей S. aureus в аналоге больничной палаты с механической вентиляцией с использованием разбавленного водного раствора хлорида лития.Атмосфера (Базель) 2017; 8: 238. DOI: 10.3390 / atmos8120238. [CrossRef] [Google Scholar] 15. Лю Г., Сяо М., Чжан Х., Гал С., Чен Х., Лю Л., Пан С., Ву Дж., Тан Л., Клементс-Крум Д. Обзор технологий фильтрации воздуха для экологически безопасных и экологически чистых технологий. вентиляция здорового здания. Поддерживать. Cities Soc. 2017; 32: 375–396. DOI: 10.1016 / j.scs.2017.04.011. [CrossRef] [Google Scholar] 16. Гуань Т., Яо М. Использование фильтра из углеродных нанотрубок для удаления биоаэрозолей. J. Aerosol Sci. 2010. 41: 611–620. DOI: 10.1016 / j.jaerosci.2010.03.002. [CrossRef] [Google Scholar] 17. Яо М., Майнелис Г., Ан Х. Р. Инактивация микроорганизмов с помощью электростатических полей. Environ. Sci. Technol. 2005; 39: 3338–3344. DOI: 10.1021 / es048808x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 18. Гриншпун С.А., Майнелис Г., Трунов М., Адхикари А., Репонен Т., Виллеке К. Оценка ионных очистителей воздуха для снижения воздействия аэрозолей в закрытых помещениях. Внутренний воздух. 2005. 15: 235–245. DOI: 10.1111 / j.1600-0668.2005.00364.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 19.Хуанг Р., Аграновский И., Пьянков О., Гриншпун С. Удаление жизнеспособных частиц биоаэрозоля с помощью малоэффективного фильтра HVAC, усиленного непрерывной эмиссией униполярных аэроионов. Внутренний воздух. 2008. 18: 106–112. DOI: 10.1111 / j.1600-0668.2007.00512.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 20. Pastuszka J.S., Mucha W., Marchwińska-Wyrwał E. Портативное очистное устройство для фильтрации и стерилизации воздуха в помещениях; Труды Европейской конференции по аэрозолям; Карлсруэ, Германия. 6–11 сентября 2009 г .; п.Аннотация T1082A21. [Google Scholar] 21. Невалайнен А., Пастушка Дж., Либхабер Ф., Виллеке К. Характеристики пробоотборников биоаэрозолей: характеристики сбора и соображения по конструкции пробоотборника. Атмос. Environ. Часть A Gen. Top. 1992; 26: 531–540. DOI: 10.1016 / 0960-1686 (92) -I. [CrossRef] [Google Scholar] 22. Ли Ю., Лу Р., Ли В., Се З., Сун Ю. Концентрации и распределение по размерам жизнеспособных биоаэрозолей при различных погодных условиях в типичном полузасушливом городе на северо-западе Китая. J. Aerosol Sci.2017; 106: 83–92. DOI: 10.1016 / j.jaerosci.2017.01.007. [CrossRef] [Google Scholar] 23. Диллон Х.К., Хайнсон П.А., Миллер Дж.Д., Американская ассоциация промышленной гигиены. Комитет по биобезопасности. Полевое руководство по определению биологических загрязнителей в пробах окружающей среды. Американская ассоциация промышленной гигиены; Fairfax, VA, USA: 1996. [Google Scholar] 24. Ментезе С., Рад А.Ю., Арисой М., Гуллу Г. Сезонные и пространственные изменения биоаэрозолей в закрытых городских средах, Анкара, Турция. Внутренняя встроенная среда.2012; 21: 797–810. DOI: 10.1177 / 1420326X11425965. [CrossRef] [Google Scholar] Принцип

, преимущества, недостатки • Microbe Online

Последнее обновление 21 июня 2021 г.

Стерилизация сухим жаром (уничтожение или удаление всех микроорганизмов, включая бактериальные споры) требует более длительного времени воздействия (1,5 до 3 часов) и более высоких температур, чем стерилизация влажным теплом . Доступны различные методы стерилизации сухим жаром: печь горячего воздуха , сжигание , пламя (проволочная петля) и т. Д.

Сушильные шкафы используются для стерилизации предметов, которые могут быть повреждены влажным теплом или которые непроницаемы для влажного тепла (например, порошки, нефтепродукты, острые инструменты).

Закрытый вид печи с горячим воздухом

Принцип стерилизации сухим жаром с использованием печи с горячим воздухом

Стерилизация сухим жаром осуществляется с помощью проводимости . Тепло поглощается внешней поверхностью предмета, а затем слой за слоем проходит к центру предмета.В конечном итоге все изделие нагреется до температуры, необходимой для стерилизации.

Сухое тепло вызывает большую часть повреждений путем окисления молекул. Основные составляющие клетки разрушаются, и организм умирает. Температура поддерживается в течение почти часа, чтобы убить наиболее трудноустойчивые споры.

Наиболее распространенные соотношения времени и температуры для стерилизации с помощью стерилизаторов горячим воздухом:

  1. 170 ° C (340 ° F) в течение 30 минут,
  2. 160 ° C (320 ° F) в течение 60 минут и
  3. 150 ° C (300 ° F) в течение 150 минут или дольше в зависимости от объема.

Споры Bacillus atrophaeus следует использовать для контроля процесса стерилизации на предмет сухого тепла, поскольку они более устойчивы к сухому теплу, чем споры Geobacillus stearothermophilus . Первичным летальным процессом считается окисление компонентов клетки.

Существует два типа стерилизаторов сухого нагрева:

  1. статический воздушный тип и
  2. принудительный воздушный тип.

Стерилизатор со статическим воздухом типа называется стерилизатором печного типа, поскольку нагревательные змеевики в нижней части устройства заставляют горячий воздух подниматься внутри камеры за счет гравитационной конвекции.Этот тип стерилизатора сухого нагрева намного медленнее нагревается, требует больше времени для достижения температуры стерилизации и менее однороден в регулировании температуры по всей камере, чем стерилизатор с принудительной подачей воздуха.

Стерилизатор с принудительной или механической конвекцией оснащен вентилятором с приводом от двигателя, который обеспечивает циркуляцию нагретого воздуха по камере с высокой скоростью, что позволяет более быстро передавать энергию от воздуха к инструментам.

Преимущества стерилизации сухим жаром

  1. Шкаф сухого нагрева прост в установке и имеет относительно низкие эксплуатационные расходы;
  2. Проникает в материалы
  3. Нетоксичен и не наносит вреда окружающей среде;
  4. И это некоррозионный для металла и острых инструментов.

Недостатки стерилизации сухим жаром

  1. Метод трудоемкий из-за низкой скорости проникновения тепла и уничтожения микробов.
  2. Высокие температуры не подходят для большинства материалов, например пластмассовые и резиновые изделия нельзя стерилизовать сухим жаром, поскольку используемые температуры (160–170 ° C) слишком высоки для этих материалов.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *